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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Actividad antiparasitaria de extractos de plantas colombianas de la familia Euphorbiaceae]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: The Euphorbiaceae family is a heterogeneous group of plants distributed in the Colombian territory used for medicinal proposes. Objective: To determine the toxic activity of Euphorbiaceae family essential oils and plant extract against tripanosomatides. Materials and methods: Essential oil from Croton pedicellatus Kunth (EO1) and C.leptostachyus Kunth(EO 2) and plant extract from Phyllanthus acuminatus Vahl (Ext1) were obtained by microwave-assisted hidrodistillation and characterized by gas chromatography coupled with mass spectrometry and methanol maceration. They were assessed against extracellular and intracellular forms of Trypanosoma cruzi, Leishmania(Viannia) panamensis, L.(Viannia)braziliensis and Vero and THP-1 cells. The parasite activity was determined by microscopic counting and cell toxicity by MTT colorimetric test. The results were expressed as the inhibitory (ICz50) or citotoxic (CC50) concentration for 50% of parasites or cells. Results: The EO-major components were borneol, &gamma;-terpinene and trans-ß-caryophyllene. The EO1 and EO2 inhibited both T.cruzi-epimastigotes and L(V.) panamensis and L.(V.) brazilienses promastigotes growth with IC50 between 7.14 to 8.78 &mu;g/mL They were active against intracellular amastigotes of L. (V.) braziliensis (EO1:IC50:36.74 and EO2:19.77&mu;g/mL). The Ext 1 showed low activity against both parasites. The EOs and extracts were partially toxic to THP-1 (CC50 9.29 to 64.12&mu;g/mL) and Vero cells (CC50 24.86 to 63.52&mu;g/mL). Conclusions: The EO obtained from plants of the Euphorbiaceae family showed antiparasitic activity with some toxicity against mammalian cells]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font size="2" face="Verdana">     <p align="center"><font size="4"><b>Actividad antiparasitaria de    <br> extractos de plantas colombianas    <br> de la familia Euphorbiaceae</b></font></p>      <p align="center">Laura Fernanda Neira<sup>1</sup>, Elena Stashenko<sup>2</sup>, Patricia Escobar<sup>1</sup></p> 	     <p align="left">1. Centro de Investigaci&oacute;n de Enfermedades Tropicales (CINTROP), Escuela de Medicina, Departamento de Ciencias B&aacute;sicas, Universidad Industrial de Santander, Bucaramanga, Colombia.    <br> 2. Centro de Investigaci&oacute;n en Biomol&eacute;culas (CIBIMOL), Escuela de Qu&iacute;mica, Universidad Industrial de Santander, Bucaramanga, Colombia.    <br> <b>Correspondencia:</b> Patricia Escobar. <b>Direcci&oacute;n:</b> Km2 v&iacute;a Refugio Piedecuesta sede UIS Guatiguar&aacute;.    <br> <b>Correo electr&oacute;nico:</b> <a href="mailto:pescobarwww@yahoo.co.uk">pescobarwww@yahoo.co.uk</a> <b>Tel&eacute;fono:</b> 6344000 extensi&oacute;n 3565.    <br> <b>Recibido:</b> septiembre 5 de 2013 <b>Aprobado:</b> marzo 5 de 2014</p>  <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>Forma de citar:</b> Neira LF, Stashenko E, Escobar P. Actividad antiparasitaria de extractos de plantas colombianas de la familia Euphorbiaceae. rev.univ.ind.santander.salud 2104; 46 (1): 15-22</p> <hr>      <p align="center"><font size="3"><b>RESUMEN</b></font></p> 	     <p align="justify"><b>Introducci&oacute;n:</b> La familia Euphorbiaceae es un grupo heterog&eacute;neo de plantas distribuidas en el territorio colombiano utilizadas algunas de ellas, como plantas medicinales. <b>Objetivo:</b> Determinar la actividad t&oacute;xica de aceites esenciales (AE) y extractos de plantas obtenidos de la familia Euphorbiaceae contra tripanosom&aacute;tidos. <b>Materiales y m&eacute;todos:</b> Los AE de <i>Croton pedicellatus</i> Kunth (AE1) y <i>C.leptostachyus</i> Kunth (AE2) y el extracto de <i>Phyllanthus acuminatus</i> Vahl fueron obtenidos por hidrodestilaci&oacute;n asistida por la radiaci&oacute;n de microondas y maceraci&oacute;n con metanol; se caracterizaron por cromatograf&iacute;a de gases acoplada a espectrometr&iacute;a de masas. Fueron evaluados contra las formas extracelulares e intracelulares de <i>Trypanosoma cruzi, Leishmania (Viannia) panamensis</i>, L. (V.) braziliensis y c&eacute;lulas Vero y THP-1. La actividad antiparasitaria fue determinada por recuento microsc&oacute;pico y el efecto t&oacute;xico en c&eacute;lulas por la prueba colorim&eacute;trica de MTT. Los resultados fueron expresados como la concentraci&oacute;n que inhibe (CI<sub>50</sub>) o destruye (CC<sub>50</sub>) el 50% de par&aacute;sitos o c&eacute;lulas. <b>Resultados:</b> Los componentes mayoritarios de los AE fueron borneol, &gamma;-terpineno, germacreno D y trans-&szlig;-cariofileno. Los AE1 y AE2 inhibieron el crecimiento de epimastigotes de <i>T.cruzi</i> y de promastigotesde <i>L. (V.) panamensis y L. (V.) braziliensis</i> con CI<sup>50</sup> entre 7,14-8,78&mu;g/mL y fueron activos contra amastigotes intracelulares de <i>L. (V.) braziliensis</i> (AE1:CI<sup>50</sup> 36,74 y AE2:19,77&mu;g/mL). El extracto 1 mostr&oacute; baja actividad contra los par&aacute;sitos. Los AE y extractosmostraron toxicidad en c&eacute;lulas THP-1(CC<sub>50</sub> 9,29-64,12&mu;g/mL) y c&eacute;lulas Vero (CC<sub>50</sub> 24,86-3,52&mu;g/mL). <b>Conclusi&oacute;n:</b> Los AE obtenidos de plantas de la familia de Euphorbiaceae mostraron actividad antiparasitaria con toxicidad moderada en c&eacute;lulas de mam&iacute;fero.</p> 	     <p align="justify"><b>Palabras Clave:</b> <i>Trypanosomacruzi</i>, <i>Leishmania</i>, plantas colombianas, aceites esenciales, Euphorbiaceae</p>      <p align="center"><font size="3"><b><i>Activity</i> of Colombian plant extracts derived    <br> from the Euphorbiaceae family</b></font></p> 	     <p align="center"><font size="3"><b>ABSTRACT</b></font></p> 	     <p align="justify"><b>Introduction:</b> The Euphorbiaceae family is a heterogeneous group of plants distributed in the Colombian territory used for medicinal proposes. <b>Objective:</b> To determine the toxic activity of Euphorbiaceae family essential oils and plant extract against tripanosomatides. <b>Materials and methods:</b> Essential oil from <i>Croton pedicellatus</i> Kunth (EO1) and <i>C.leptostachyus</i> Kunth(EO 2) and plant extract from <i>Phyllanthus acuminatus</i> Vahl (Ext1) were obtained by microwave-assisted hidrodistillation and characterized by gas chromatography coupled with mass spectrometry and methanol maceration. They were assessed against extracellular and intracellular forms of <i>Trypanosoma cruzi, Leishmania(Viannia) panamensis, L.(Viannia)braziliensis</i> and Vero and THP-1 cells. The parasite activity was determined by microscopic counting and cell toxicity by MTT colorimetric test. The results were expressed as the inhibitory (ICz<sub>50</sub>) or citotoxic (CC<sub>50</sub>) concentration for 50% of parasites or cells. <b>Results:</b> The EO-major components were borneol, &gamma;-terpinene and <i>trans</i>-&szlig;-caryophyllene. The EO1 and EO2 inhibited both <i>T.cruzi</i>-epimastigotes and L(V.) <i>panamensis</i> and L.(V.) <i>brazilienses</i> promastigotes growth with IC<sub>50</sub> between 7.14 to 8.78 &mu;g/mL They were active against intracellular amastigotes of <i>L. (V.) braziliensis</i> (EO1:IC<sub>50</sub>:36.74 and EO2:19.77&mu;g/mL). The Ext 1 showed low activity against both parasites. The EOs and extracts were partially toxic to THP-1 (CC<sub>50</sub> 9.29 to 64.12&mu;g/mL) and Vero cells (CC<sub>50</sub> 24.86 to 63.52&mu;g/mL). <b>Conclusions:</b> The EO obtained from plants of the Euphorbiaceae family showed antiparasitic activity with some toxicity against mammalian cells.</p> 	     <p align="justify"><b>Keywords:</b> <i>Trypanosomacruzi</i>, <i>Leishmania</i>, Colombian plants, essential oils, Euphorbiaceae</p>  <hr>      <p align="center"><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Las plantas, sus extractos y AE han sido utilizados en la medicina tradicional por muchos a&ntilde;os, constituy&eacute;ndose en una fuente de mol&eacute;culas potencialmente activas contra par&aacute;sitos pat&oacute;genos<sup>1</sup>. Algunas mol&eacute;culas obtenidas de plantas como la artemisa, la quinina y la emetina, entre otras, han sido utilizadas en el tratamiento de la malaria y la amebiasis<sup>1</sup>. Estos resultados han motivado los estudios, cada vez m&aacute;s numerosos, de la actividad antiparasitaria de componentes de plantas especialmente arom&aacute;ticas y medicinales en modelos experimentales.</p>      <p align="justify">La leishmaniasis y la enfermedad de Chagas son enfermedades parasitarias producidas por protozoarios de la familia Tripanosomatidae; consideradas &quot;enfermedades hu&eacute;rfanas u olvidadas&quot;, afectando principalmente a personas que habitan en condiciones de pobreza o miseria<sup>2</sup>. La leishmaniasis se encuentra distribuida en m&aacute;s de 60 pa&iacute;ses en el mundo estando en riesgo m&aacute;s de 200 millones de personas con 500.000 casos nuevos por a&ntilde;o en pa&iacute;ses end&eacute;micos<sup>3</sup>. La enfermedad de Chagas es end&eacute;mica en 21 pa&iacute;ses del continente Americano donde est&aacute;n en riesgo m&aacute;s de 100 millones de personas con 56.000 casos nuevos por a&ntilde;o<sup>4,5</sup>. No existe una vacuna ni un tratamiento ideal para su cura. El tratamiento de la leishmaniasis consiste en la administraci&oacute;n de antimoniales pentavalentes (Glucantime y Pentostam) y en caso de falla se utiliza la anfotericina B (AmB), la pentamidina y la miltefosina. Para la enfermedad de Chagas el tratamiento de basa en el uso de benznidazol y nifurtimox. Estos tratamientos presentan contraindicaciones, efectos t&oacute;xicos, eficacia variable, y generalmente son aplicados en protocolos largos y dolorosos<sup>6,7</sup>.</p>      <p align="justify">La familia Euphorbiaceae est&aacute; constituida por cerca de 8000 especies agrupadas en 317 g&eacute;neros; aunque recientemente ha sido dividida en aproximadamente 14 familias<sup>8</sup>. Se caracterizan por presentar un l&aacute;tex o exudado coloreado, est&iacute;pulas y est&aacute;n distribuidas en zonas tropicales, subtropicales y templadas. En Colombia se han encontrado 78 g&eacute;neros con m&aacute;s de 390 especies distribuidas en todas las regiones del pa&iacute;s principalmente en la regi&oacute;n andina y la regi&oacute;n amaz&oacute;nica siendo <i>Euphorbia</i> el g&eacute;nero m&aacute;s cultivado<sup>8</sup>. Esta familia heterog&eacute;nea de plantas tiene importancia en diferentes &aacute;reas como en la obtenci&oacute;n de productos industriales (i.e. <i>Hevea brasilienses</i> se obtiene el caucho), alimentos (i.e. <i>Manihotesculentase</i> obtiene la yuca o mandioca), en medicina (i.e. <i>Ricinuscommunis</i> de donde se obtienen el aceite de ricino) y ornamentaci&oacute;n<sup>8</sup>. Experimentalmente numerosos trabajos resaltan la actividad de esta familia de plantas en medicina. <i>R. communis</i> ha mostrado actividad insecticida y actividad contra promastigotes de <i>L. major</i> cuando es utilizado como parte de la dieta del vector <i>Phlebotomuspapatasi</i>. Extractos o componentes del l&aacute;tex de <i>Euphorbia splendens var. hislopii (E. milli)</i> han presentado actividad contra los moluscos hospederos intermediarios de los esquistosomas; siendo seg&uacute;n sus autores uno de los m&aacute;s potentes y espec&iacute;ficos molusquicidas descubiertos hasta la fecha<sup>9</sup>. Extractos de <i>Euphorbia prostrata</i> Ait han mostrado actividad antiinflamatoria, antiglicemiante, insecticida y antihelm&iacute;ntica<sup>10</sup>. Especies de g&eacute;nero <i>Croton</i> han presentado propiedades antinflamatorias, antitumorales, leishmanicidas y antimal&aacute;rica<sup>11-13</sup>.    <br> Dado que la leishmaniasis y enfermedad de Chagas constituyen un problema grave de salud p&uacute;blica en los pa&iacute;ses que las padecen y la problem&aacute;tica de los tratamientos actuales, la b&uacute;squeda de alternativas terap&eacute;uticas es un tema prioritario de investigaci&oacute;n. Como parte del programa realizado en Colombia orientado a la evaluaci&oacute;n de la actividad biol&oacute;gica de AE y extractos de plantas arom&aacute;ticas obtenidas de diferentes regiones del pa&iacute;s, el objetivo del presente trabajo fue evaluar la actividad de AE obtenidos de <i>C. leptostachyus y C. pedicellatus</i> y extractos metan&oacute;licos de <i>P. acuminatus contra T. cruzi, L. (V.) brazilienses y L. (V.) panamensis</i> y sus c&eacute;lulas hospederas.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>      <p align="justify"><font size="3"><b>Aceites esenciales (AE), extractos de plantas y medicamentos de referencia</b></font></p>      <p align="justify">Los AE de C. <i>pedicellatus y C. leptostachyus</i> fueron obtenidos de hojas frescas de las plantas por hidrodestilaci&oacute;n asistida por la radiaci&oacute;n de microondas (MWHD) y caracterizados por espectrofotometr&iacute;a de masas acoplado a un cromat&oacute;grafo de gases (GC-MS)<sup>14</sup>. El extracto de <i>Phyllanthusacuminatus</i> fue obtenido a partir de hojas secas por extracci&oacute;n por maceraci&oacute;n en metanol<sup>15</sup>. Muestras de las especies fueron identificadas por el Dr. J. Murillo y los pliegos testigo de cada planta quedaron depositados como muestra permanente en el Herbario Nacional Colombiano, Universidad Nacional de Colombia sede Bogot&aacute;. La composici&oacute;n qu&iacute;mica de los AE est&aacute; formada principalmente por el borneol, &gamma;-terpineno, germacreno D y 	<i>trans</i>-&szlig;-cariofileno y el extracto contiene 4,30 mg fenoles/100 g. Como medicamento de referencia se utiliz&oacute; la AmB (Sigma Aldrich, St. Louis, MO, USA) y el nifurtimox (Bayer, Germany).</p>      <p align="justify">Se prepararon soluciones patr&oacute;n de los compuestos en dimetilsulf&oacute;xido (DMSO, Carlo Erba, Rodano, MI, Italy) y soluciones de trabajo en medio de cultivo RPMI 1640 (Gibco, Grand Island, NY, USA) antes de cada experimento. El porcentaje de DMSO en las soluciones de trabajo fue menor al 0,5%. Esta concentraci&oacute;n no fue t&oacute;xica para las c&eacute;lulas ni par&aacute;sitos.</p>      <p align="left"><font size="3"><b>Par&aacute;sitos y c&eacute;lulas de mam&iacute;fero</b></font></p>      <p align="justify">Los promastigotes de <i>L. (V.) panamensis</i> (MHOM/ PA/71/LS94) y <i>L. (V.) braziliensis</i> (MHOM/BR/75/ M2903) fueron cultivados en medio Schneider (Sigma- Aldrich) suplementado con 10% de suero bovino fetal inactivado con calor (SFBi, Gibco) a 28&ordm;C. Los epimastigotes de <i>T. cruzi</i> (Silvio-X10, ATCC<sup>&#174;</sup> 50823) fueron cultivados en medio infusi&oacute;n de h&iacute;gado triptosa (LIT) suplementado con 10% de SBFi a 28&ordm;C. Las c&eacute;lulas de monocitos leuc&eacute;micos humanos,THP-1 (ATCCTIB-202) y c&eacute;lulas epiteliales de ri&ntilde;&oacute;n de mono verde africano, Vero (CCL1-81 ATCC) se mantuvieron en medio de cultivo RPMI 1640 suplementado con 10% de SBFi a 37&ordm;C, 5% de CO<sub>2</sub> y 95% de humedad.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left"><font size="3"><b>Ensayos de actividad en par&aacute;sitos</b></font></p>      <p align="justify">Los promastigotes de <i>Leishmania</i> o epimastigotes de <i>T. cruzi</i> fueron tratados con diluciones seriadas 1:3 de los compuestos (3,7-100 &mu;g/mL), por 72 horas a 28&ordm;C. Par&aacute;sitos control fueron mantenidos sin compuesto. La inhibici&oacute;n del crecimiento fue determinada microsc&oacute;picamente por conteo directo de par&aacute;sitos vivos en c&aacute;mara de Neubauer<sup>16</sup>.</p>      <p align="justify">Los amastigotes intracelulares de <i>Leishmania spp</i> fueron obtenidos infectando las c&eacute;lulas hospederas THP- 1 diferenciadas con forbolmiristato acetato (PMA, siglas en ingl&eacute;s, Sigma-Aldrich) con promastigotes en fase estacionaria de crecimiento, en una proporci&oacute;n par&aacute;sito:c&eacute;lula de 5:1 por 48 horas. Los amastigotes intracelulares de <i>T. cruzi</i> se obtuvieron infectando las c&eacute;lulas Vero con tripomastigotes, en una proporci&oacute;n par&aacute;sito:c&eacute;lula de 10:1 por 24 horas. Los amastigotes intracelulares fueron tratados con los AEs y el extracto (3,7-100&mu;g/mL), durante 120 horas a 37&ordm;C, 5% de CO2 y 95% de humedad. Las c&eacute;lulas infectadas control fueron mantenidos sin compuesto. Los porcentajes de infecci&oacute;n fueron determinados por conteo microsc&oacute;pico de c&eacute;lulas infectadas y no infectadas en preparaciones fijadas con metanol y coloreadas con Giemsa.</p>      <p align="left"><font size="3"><b>Ensayo de toxicidad en c&eacute;lulas</b></font></p>      <p align="justify">Las c&eacute;lulas Vero y THP-1 fueron tratadas con diferentes concentraciones de los compuestos (3,7-100 &mu;g/mL). C&eacute;lulas control fueron mantenidas sin compuesto. La toxicidad fue determinada por el m&eacute;todo de colorim&eacute;trico de MTT (3-(4,5-dimetiltiazol-2-il)- 2,5difenil-tetrazolio bromuro)<sup>17</sup>. La densidad &oacute;ptica se determin&oacute; por espectrofotometr&iacute;a a 580 nm usando un lector de microplacas (Anthos2020). El porcentaje de citotoxicidad fue calculado mediante la f&oacute;rmula: Porcentaje de citotoxicidad =100<sup>*</sup> (DO grupo control- DO grupo tratado)/ DO grupo control.</p>      <p align="left"><font size="3"><b>An&aacute;lisis de resultados:</b></font></p>      <p align="justify">La actividad fue expresada como la concentraci&oacute;n del AE o extracto metan&oacute;lico capaz de inhibir el 50% y el 90% de los par&aacute;sitos (CI<sub>50</sub>,CI<sub>90</sub>) o la concentraci&oacute;n toxica para el 50% y 90% de las c&eacute;lulas (CC<sub>50</sub>, CC<sub>90</sub>) calculados por regresi&oacute;n sigmoidal utilizando el software Msxlfit<sup>TM</sup>(ID <i>Business Solution</i>,UK). Los resultados mostrados corresponden al promedio de dos experimentos. Se calcul&oacute; el &iacute;ndice de selectividad (IS) dividiendo la CC50/IC50 (c&eacute;lulas /par&aacute;sitos); IS de tres o superior se consider&oacute; selectiva (m&aacute;s activa contra los par&aacute;sitos que contra la c&eacute;lula de mam&iacute;fero).</p>      <p align="center"><font size="3"><b>RESULTADOS</b></font></p>      <p align="left"><font size="3"><b>Actividad contra <i>Leishmania</i></b></font></p>      <p align="justify">Los AE1 y AE2 derivados de <i>Croton</i> mostraron actividad contra las formas extracelulares de las dos especies de <i>Leishmania</i> estudiadas. De igual manera, el AE2 fue activo contra amastigotes intracelulares de ambas especies de <i>Leishmania</i>, sin embargo, el AE1 solo fue activo contra amastigotes de <i>L. (V.) braziliensis</i> (<a href="#t01">Tabla 1</a>). Los AEs tambi&eacute;n fueron t&oacute;xicos contra las c&eacute;lulas hospederas THP-1 mostrando IS menores de tres (<a href="#t01">Tabla 1</a>). El extracto metan&oacute;lico estudiado mostr&oacute; baja actividad contra los par&aacute;sitos y fue ligeramente t&oacute;xico para las c&eacute;lulas THP-1. La AmB present&oacute; actividad contra <i>Leishmania</i> presentando IS mayores de 30. Los amastigotes intracelulares de <i>L. (V.) panamensis</i> fueron menos susceptibles a la AmB que los de <i>L. (V.) braziliensis</i> (p=0,001).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="t01"></a><img src="img/revistas/suis/v46n1/v46n1a03t1.jpg"></p>      <p align="left"><font size="3"><b>Actividad contra</b> <i>T. cruzi</i></font></p>      <p align="justify">Los AE1 y AE2 derivados de Croton mostraron actividad contra las formas extracelulares de <i>T. cruzi</i> (<a name="t02"></a><a href="img/revistas/suis/v46n1/v46n1a03t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>). El AE2 present&oacute; actividad en amastigotes intracelulares, sin embargo, fue t&oacute;xico contra las c&eacute;lulas Vero mostrando IS de 0,85. El Ext1 fue poco activo contra el par&aacute;sito. El nifurtimox fue activo contra el <i>T. cruzi</i> presentando IS mayores de 15 (<a name="t02"></a><a href="img/revistas/suis/v46n1/v46n1a03t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>).</p>      <p align="left"><font size="3"><b>Actividad en c&eacute;lulas Vero y THP-1</b></font></p>      <p align="justify">Los AE de <i>C. pedicellatus y C. leptostachyus</i> mostraron actividad tanto en las c&eacute;lulas THP-1 (CC<sub>50</sub> 16,57 y 9,29 &mu;g/mL) como en las c&eacute;lulas Vero (CC<sub>50</sub> de 46,67 y 24,86 &mu;g/mL) respectivamente (<a href="#t01">Tabla 1</a> y <a name="t02"></a><a href="img/revistas/suis/v46n1/v46n1a03t2.jpg" target="_blank">2</a>). El extracto metan&oacute;licode <i>P.acuminatus</i> fue menos t&oacute;xico para estas c&eacute;lulas de mam&iacute;fero.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>	      <p align="justify">Los extractos obtenidos de plantas de la familia Euphorbiaceae presentan una gran variedad en su composici&oacute;n qu&iacute;mica, por su alto contenido de terpenos, flavonoides, &aacute;cidos grasos y alcaloides 18,19. Una de las motivaciones para probar estos compuestos en tripanosomatidos fueron los resultados encontrados en la literatura principalmente en especies de los g&eacute;neros <i>Crotonsppy Phyllanthus spp</i>.</p>      <p align="justify">En el g&eacute;nero <i>Phyllanthus</i> especies como <i>P. amarus</i>, <i>P. embirica</i>, <i>P. urinaria</i> y <i>P. nenuri</i> han sido utilizadas ampliamente en la medicina tradicional y en la ayuv&eacute;dica<sup>20</sup>. <i>Phyllanthus amarus</i> ha mostrado propiedades hepatoprotectivas, radioprotectivas, an titripanosoma,antibacteriana,antiviral y antimal&aacute;rica<sup>21,22</sup>. <i>Phyllanthus emblica</i> actividad hepatoprotectiva, antioxidante, antiviral, antibacteriana y anticancer&iacute;gena<sup>20,23,24</sup>; <i>P. urinaria</i> ha mostrado actividad contra el c&aacute;ncer<sup>25</sup> y <i>P. niruri</i> antibacteriana y antitumoral<sup>26</sup>. La actividad de P. acuminatus o grosella de Jamaica ha sido menos estudiada; estudios realizados en 1990 encontraron una sustancia llamada filantostatina<sup>6</sup> en las ra&iacute;ces de esta planta que inhib&iacute;a el crecimiento de l&iacute;neas tumorales<sup>27</sup>, sin embargo no existen reportes de estudios recientes con esta mol&eacute;cula. En este trabajo la actividad del extracto de <i>P. acuminatus</i> en c&eacute;lulas de mam&iacute;fero tumorales y en par&aacute;sitos fue similar presentando valores por encima de 50 &mu;g/mL. Aunque la actividad presentada en amastigotes intracelulares de <i>L. (V.) braziliensis</i> no deja de ser interesante, la baja selectividad en esta respuesta nos indica que el efecto de inhibici&oacute;n del par&aacute;sito se debe posiblemente a los efectos que tienen los componentes de los extractos sobre la c&eacute;lula hospedera.</p>      <p align="justify">El g&eacute;nero <i>Crotones</i> el segundo g&eacute;nero m&aacute;s numeroso y diverso de las Euphorbiaceae, (con cerca de 800 especies de distribuci&oacute;n pantropical) ocupando en Colombia principalmente las regiones Andina y Caribe<sup>7</sup>. En este trabajo AE obtenidos de <i>C .pedicellatus</i> y <i>C. leptostachyus</i> fueron activos contra las formas extracelulares de los par&aacute;sitos y mostraron alguna toxicidad en las c&eacute;lulas hospederas. Sin embargo los resultados obtenidos especialmente en las formas intracelulares de <i>L. (V.) braziliensis</i> son bastante interesantes.</p>      <p align="justify">La actividad de AE obtenidos de la especie de <i>Croton (C. cajucara)</i> obtenida en la regi&oacute;n de la Amazon&iacute;a brasile&ntilde;a contra las diferentes formas parasitarias de <i>L. amazonensis</i> fue demostrada previamente<sup>11</sup>. Valores de actividad extremadamente bajos (LD<sub>50</sub>0,0083 &mu;g/ mL contra promastigotes y LD<sub>50</sub>0,0220 &mu;g/mL contra amastigotes intracelulares) fueron encontrados<sup>11</sup>. Los valores de actividad de los AE1 y AE2 hallados en este trabajo fueron aproximadamente 1000 veces mayores indicando que estos fueron menos activos. Estas diferencias podr&iacute;an deberse a varios aspectos tales como las diferencias en la composici&oacute;n de los AE utilizados, a la especie de <i>eishmania</i> estudiada y a diferencias en las metodolog&iacute;as empleadas. En otro estudio realizado con el AE obtenido de <i>C. macrostachyus</i> especie de Croton recolectada en Etiopia, se registraron actividades contra promastigotes y amastigotes intracelulares de <i>L. donovani</i> y <i>L. aethiopica</i> 28. Los IS calculados (IS de 0,5 para <i>L. donovani</i> 1,5 para <i>L. aethiopica</i>), fueron similares a los encontrados por nosotros indicando la baja selectividad de los AE por los par&aacute;sitos. Por otro lado, algunos componentes de los AE de <i>Croton</i> han sido evaluados<sup>29</sup>. Un derivado alcaloide llamado &quot;julocrotine&quot;, mol&eacute;cula extra&iacute;da de la especie <i>C. pullei</i> obtenida en el territorio brasile&ntilde;o ha mostrado actividad contra <i>L. amazonensis</i> con valores de IC<sub>50</sub> 67,0 &mu;M en promastigotes y IC<sub>50</sub> 19,8 &mu;M en amastigotes intracelulares<sup>29</sup>.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">En un estudio reciente, el extracto metan&oacute;lico de <i>C. cajuara</i> obtenido tambi&eacute;n en la Amazon&iacute;a Brasilera, mostr&oacute; actividad en diferentes aislados de <i>T. cruzi</i><sup>30</sup>. El extracto de <i>C. cajuara</i> mostr&oacute; actividad en tripomastigotes (IC50 10,7-49,4 &mu;g/mL), epimastigotes (IC50 103-166 &mu;g/mL) y en amastigotes intracelulares (IC50 19,5-69,7&mu;g/mL) sin presentar toxicidad en macr&oacute;fagos peritoneales de rat&oacute;n a la m&aacute;xima concentraci&oacute;n evaluada de 100 &mu;g/mL. Con respecto a esto, nuestros resultados de actividad con los AE1 y AE2 mostraron ser hasta 12 veces m&aacute;s activos que el extracto de <i>C. cajuara</i> en los epimastigotes. En relaci&oacute;n a la actividad en amastigotes intracelulares y dada las diferencias en la actividad en relaci&oacute;n al aislado de <i>T. cruzi</i>, podemos decir que el AE2 mostr&oacute; una actividad similar al extracto de <i>C. cajuara</i>.</p>      <p align="justify">La toxicidad presentada por los AE en el presente estudio puede deberse en parte a que las l&iacute;neas utilizadas como hospederas de los par&aacute;sitos son l&iacute;neas tumorales o diferenciadas. La actividad de estos tipos de compuestos han sido demostradas en diferentes l&iacute;neas celulares. Extractos metan&oacute;licos de <i>C. lechleri</i> han mostrado actividad contra c&eacute;lulas HeLa con IC<sub>50</sub> de 17&mu;g/mL relacionada con la expresi&oacute;n de annexina<sup>31</sup>. Un compuesto derivado de <i>C. malambo</i> (ent-16beta-17alpha-dihidroxikaurano), ha mostrado actividad contra c&eacute;lulas MCF-7 de carcinoma mamario con actividades de IC<sub>50</sub> de 2,5&mu;g/mL dosis que es 2,6 veces menor al valor correspondiente a las c&eacute;lulas no malignas<sup>32</sup>.</p>      <p align="justify">La actividad de los componentes mayoritarios de los AE han sido reportados en la literatura cient&iacute;fica como el caso del borneol el metabolito que se encontr&oacute; en mayor proporci&oacute;n en los AE. Este se caracteriza por su baja toxicidad y ha mostrado acci&oacute;n analg&eacute;sica, antiinflamatoria en estudios <i>in vivo</i> a concentraciones de 5, 25 y 50 mg/kg<sup>33</sup>, adem&aacute;s de actividad contra nematodos como <i>Meloidogyne</i> incognita a concentraciones de 500 mg/L<sup>34</sup>. Otros componentes mayoritarios de los AE estudiados han reportado actividad antiparasitaria contra formas libres de <i>T. cruzi y L. chagasi</i> como el caso del &gamma;-terpineno (IC<sub>50</sub> de 145.1 a 162.9 &mu;g/mL) y <i>p</i>-cimeno (IC<sub>50</sub> de 28.1 a 149.1 &mu;g/mL)<sup>35</sup> y de actividad antimicobacteriana contra Mycobacterium tuberculosis MIC 250 &mu;g/mL en ambos monoterpenos 36. Los sesquiterpenos <i>trans</i>-&szlig;-cariofileno y germacreno D se encuentran com&uacute;nmente en la naturaleza, hacen parte importante de la composici&oacute;n qu&iacute;mica de muchos AE de plantas arom&aacute;ticas y es desconocido el efecto sin&eacute;rgico en mezclas complejas; sin embargo los resultados obtenidos del estudio del <i>trans</i>-&szlig;-cariofileno han sido interesantes por su acci&oacute;n leishmanicida y selectiva en <i>L. infantum</i> (IC<sub>50</sub> 2,89 a 24,54 &mu;g/mL)<sup>37</sup> y L. amazonensis (IC50 1,3 &mu;g/mL) con un IS de 48,9 en macr&oacute;fagos peritoneales murinos<sup>38</sup>, lo que orienta al estudio particular de este compuesto con el fin de desarrollar nuevas formulaciones que puedan ser evaluada en modelos <i>in vitro e in vivo</i> contra la leishmaniasis.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>      <p align="justify">En el presente estudio se demostr&oacute; la capacidad de AE obtenidos de <i>C. pedicellatus</i> y <i>C. leptostachyus</i> y en menos proporci&oacute;n del extracto de <i>Phyllanthus acuminatus</i>, de inhibir las formas extracelulares e intracelulares de <i>L. (V.) panamensis y L. (V.) braziliensisy T. cruzi.</i> Se encontraron IS&lt; 2, indicando el efecto de los compuestos contra la c&eacute;lula hospedera. Dada la actividad que este tipo de compuestos han presentados en c&eacute;lulas tumorales se sugiere realizar experimentos utilizando c&eacute;lulas no tumorales. Igualmente se sugiere evaluar la actividad de los componentes mayoritarios de los AE y determinar cu&aacute;les est&aacute;n implicados en la muerte del par&aacute;sito y cuales en las c&eacute;lulas de mam&iacute;fero.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>CONFLICTO DE INTERESES</b></font></p>      <p align="justify">Los autores declaran que no existe conflicto de inter&eacute;s en la realizaci&oacute;n del presente trabajo.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>      <p align="justify">Este trabajo fue financiado por Colciencias (Contrato RC-245-2011), Patrimonio Aut&oacute;nomo del Fondo Nacional de Financiamiento para la Ciencia, la Tecnolog&iacute;a y la Innovaci&oacute;n, Francisco Jos&eacute; de Caldas) y por la Universidad Industrial de Santander.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>REFERENCIAS</b></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">1. Anthony JP, Fyfe L, Smith H. Plant active components a resource for antiparasitic agents?. Trends Parasitol. 2005; 21:562-68.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0121-0807201400010000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">2. Hotez PJ, Dumonteil E, Woc-Colburn L, Serpa JA, Bezek S, Edwards MS et al. Chagas Disease: &quot;The New HIV/AIDS of the Americas&quot;. PloS Negl Trop Dis. 2012; 6(5): 498.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0121-0807201400010000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">3. Shakya N, Sane SA, Vishwakarma P, Bajpai P, Gupta S. Improved treatment of visceral Leishmaniasis (Kala-azar) by using combination of ketoconazole, Miltefosine with an immunomodulator-Picroliv. Acta Trop. 2011; 119: 188-93.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0121-0807201400010000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">4. Rodrigues J, Pinto JC. Epidemiology, control and surveillance of Chagas disease - 100 years after its discovery. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2009;104: 31- 40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0121-0807201400010000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">5. Organizaci&oacute;n Panamericana de la Salud. Estimaci&oacute;n cuantitativa de la enfermedad de Chagas en las Am&eacute;ricas (Documento OPS/HDM/CD/425.06.). OPS; 2006.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0121-0807201400010000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">6. Sota S, Arment A, Araujo G, Viotti R, Lococo B, Vera B, et al. Tratamiento de la enfermedad de Chagas con Benznidazol y Acido Tioctico. Medicina (B. Aires) 2004; 64: 1-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0121-0807201400010000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">7. Kirchhoff LV. American trypanosomiasis (Chagas&#39; disease)-a tropical disease now in the United States. N Engl J Med. 1993; 329:639-44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0121-0807201400010000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">8. Murillo J. Las Euphorbiaceae de Colombia. Biota Colombiana. 2004; 5: 183-99.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0121-0807201400010000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">9. Schall VT, de Vasconcellos MC, de Souza CP, Baptista DF. The molluscicidal activity of Crown of Christ (<i>Euphorbia splendensvar. hislopii</i>) latex on snails acting as intermediate hosts of <i>Schistosoma mansoni and Schistosoma haematobium.</i> Am J Trop Med Hyg. 1998;58:7-10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0121-0807201400010000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">10. Xavier JR, Gnanam R, Murugan MP, Pappachan A. Clonal propagation of <i>Phyllanthus amarus:</i> A hepatoprotector. Pharmacogn Mag. 2012;8:78-82.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0121-0807201400010000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">11. Rosa MS, Mendon&ccedil;a-Filho RR, Bizzo HR, Rodrigues IA, Soares RM, Souto-Padr&oacute;n T, et al. Antileishmanial activity of a linalol-rich essential oil from <i>Croton cajucara.</i> Antimicrob Agents Chemother. 2003;47:1895-901.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0121-0807201400010000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">12. Block S, Gerkens P, Peulen O, Jolois O, Mingeot- Leclercq MP, De Pauw-Gillet MC, et al. Induction of apoptosis in human promyelocytic leukemia cells by a natural trachylobanediterpene. Anticancer Res. 2005; 25:363-68.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0121-0807201400010000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">13. Garavito G, Rincon J, Arteaga L, Hata Y, Bourdy G, Gimenez A, et al. Antimalarial activity of some Colombian medicinal plants. J Ethnopharmacol. 2006; 107: 460-62.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0121-0807201400010000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">14. Stashenko E, Jaramillo BE, Mart&iacute;nez JR. Comparison of different extraction methods for the analysis of volatile secondary metabolites of <i>Lippia alba</i> (Mill.) N.E. Brown, grown in Colombia, and evaluation of its <i>in vitro</i> antioxidant activity. J Chromatogr A.2004; 1025(1): 93-103.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0121-0807201400010000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">15. V&aacute;squez A, Cala M, Miranda I, Tafurt G, Martinez J, Stashenko E. Actividad antioxidante y contenido total de fenoles de los extractos etan&oacute;licos de <i>Salvia</i> <i>aratocensis, Salvia sochensis</i>, <i>Bidensreptons</i> y Montanoaovalifolia. Scientia Et Technica. 2007; 13: 205-07.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0121-0807201400010000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">16. Escobar P, Herrera LV, Leal SM, Duran C, Stashenko E. Composici&oacute;n qu&iacute;mica y actividad antitripanosomal de aceites esenciales obtenidos de <i>Tagetes</i> (Fam. Asteraceae), recolectados en Colombia. Salud UIS. 2009; 41: 280-86&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0121-0807201400010000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">17. Mosman T. Rapid colorimetric assay for celular growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assays. J Inmunol Meth. 1983;65:55- 63.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0121-0807201400010000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">18. Cateni F, Falsone G, Zilic J. Terpenoids and Glycolipids from Euphorbiaceae. Rev Med Chem. 2003;3:425-37.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0121-0807201400010000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">19. Bittner M, Alarc&oacute;n J, Aqueveque P, Becerra V, Hoeneisen M, Silva M. Estudio Qu&iacute;mico de la familia Euphorbiaceae en Chile. Bol Soc Chil Qu&iacute;m. 2001; 46:4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0121-0807201400010000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">20. Srirama R, Deepak HB, Senthilkumar U, Ravikanth G, Gurumurthy BR, Shivanna MB, et al. Hepatoprotective activity of Indian <i>Phyllanthus</i>. Pharm Biol. 2012; 50:948-53.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0121-0807201400010000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">21. Appiah-Opong R, Nyarko AK, Dodoo D, Gyang FN, Koram KA, Ayisi NK. Antiplasmodial activity of extracts of <i>Tridax procumbens and Phyllanthus amarus in in vitro Plasmodium falciparum</i> culture systems. Ghana Med J. 2011;45:143-50.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0121-0807201400010000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">22. Patel JR, Tripathi P, Sharma V, Chauhan NS, Dixit VK. <i>Phyllanthus amarus</i>: ethnomedicinal uses, phytochemistry and pharmacology: a review. J Ethnopharmacol. 2011; 18:286-313.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0121-0807201400010000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">23. Baliga MS, Dsouza JJ. Amla (<i>Emblica officinalis</i> Gaertn), a wonder berry in the treatment and prevention of cancer. Eur J Cancer Prev. 2011; 20:225-39.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0121-0807201400010000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">24. Krishnaveni M, Mirunalini S. Therapeutic potential of <i>Phyllanthus emblica</i> (amla): the ayurvedic wonder. J Basic Clin Physiol Pharmacol. 2010; 21:93-105.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0121-0807201400010000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">25. Huang ST, Pang JH, Yang RC. Anti-cancer effects of <i>Phyllanthus urinaria</i> and relevant mechanisms. Chang Gung Med J. 2010; 33:477-87.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0121-0807201400010000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">26. Ranilla LG, Apostolidis E, Shetty K. Antimicrobial activity of an amazon medicinal plant (Chancapiedra) (<i>Phyllanthu sniruri L.</i>) against <i>Helicobacter pylori</i>	 and lactic acid bacteria. Phytother Res. 2012;26:791- 99.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0121-0807201400010000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">27. Pettit GR, Schaufelberger DE, Nieman RA, Dufresne C, Saenz-Renauld JA. Antineoplastic agents, 177. Isolation and structure of phyllanthostatin 6. J Nat Prod. 1990;53:1406-13.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0121-0807201400010000300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">28. Tariku Y, Hymete A, Hailu A, Rohloff J. Constituents, antileishmanial activity and toxicity profile of volatile oil from berries of <i>Croton macrostachyus</i>. Nat Prod Commun. 2010;5:975-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0121-0807201400010000300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">29. Leda R, Guimar&atilde;es C, Rodriguez A, Marinho P, Muller A, Guilhon G, et al. Activity of the julocrotine, a glutarimide alkaloid from <i>Croton pullei</i> var. glabrior, on <i>Leishmania (L.) amazonensis</i>. Parasitol Res. 2010;107: 1075-81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0121-0807201400010000300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">30. Campos MC, Salom&atilde;o K, Castro-Pinto DB, Leon LL, Barbosa HS, Maciel MA, de Castro SL. <i>Croton cajucara</i> crude extract and isolated terpenes: activity on <i>Trypanosoma cruzi</i>. Parasitol Res. 2010; 107(5):1193-204.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0121-0807201400010000300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">31. Alonso AJ, Ortiz E, Dom&iacute;nguez F, L&oacute;pez G, Ch&aacute;vez M, Ortiz J, Garc&iacute;a A. Antitumor effect of <i>Croton lechleri</i>. Mull. Arg. (Euphorbiaceae). J Ethnopharmacol. 2012; 27:438-42.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0121-0807201400010000300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">32. Morales A, P&eacute;rez P, Mendoza R, Compagnone R, Suarez AI, Arvelo F, et al. Cytotoxic and proapoptotic activity of ent-16beta-17alpha-dihydroxykaurane on human mammary carcinoma cell line MCF-7. Cancer Lett. 2005;218:109-16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0121-0807201400010000300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">33. Almeida JR, Souza GR, Silva JC, Saraiva SR, J&uacute;nior RG, QuintansJde S, Barreto Rde S, Bonjardim LR, et al. Borneol, a bicyclic monoterpene alcohol, reduces nociceptive behavior and inflammatory response in mice. ScientificWorld Journal. 2013; 2013: 808460.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0121-0807201400010000300033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">34. Echeverrigaray S, Zacaria J, Beltrao R. Nematicidal activity of monoterpenoids against the root-knot nematode Meloidogyne incognita. Phytopathology. 2010;100:199-203.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0121-0807201400010000300034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">35. Escobar P, Leal S, Herrera LV, Martinez JR, Stashenko E. 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Leal S, Pino N, Stashenko E, Martinez R, Escobar P. Antiprotozoal activity of essential oils derived from <i>Piper</i> spp. grown in Colombia. J Essential Oil Research 2013; 25(6): 512-519.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0121-0807201400010000300037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">38. Soares D, Portella N, Freiman M, Siani A, Saraiva E. <i>trans-&szlig;</i>-Caryophyllene: An Effective antileishmanial compound found in commercial copaiba oil (Copaifera spp.). 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