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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Fiebre manchada por Rickettsia rickettsii en las Américas: un problema creciente de salud pública]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Rocky mountain spotted fever is a public health problem in America. The disease remains as a challenge for Health Systems at regional level. It is an illness of medical relevance due to its high case-fatality rate when it is not diagnosed and treated early. Although anyone is susceptible to infection, some groups are more vulnerable due to increased exposure to ticks, including children who have higher morbidity and fatal outcomes. A myriad of biological, ecological and social factors, complexly interrelated, are associated with its epidemiological pattern, which requires integrated and multidisciplinary interventions at different levels. The incidence of the disease may continue to increase in the region and its actual occurrence required an urgent call for regional action. Preventive actions that reduce contact with ticks and increase early disease suspicion should be priorities in the health agenda of various nations in America.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Fiebre maculosa de las Montañas Rocosas]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[   <font size="2" face="Verdana">     <p align="center"><font size="4"><b>Fiebre manchada por <i>Rickettsia    <br> rickettsii</i> en las Am&eacute;ricas: un    <br> problema creciente de salud p&uacute;blica</b></font></p>      <p align="center">Gerardo &Aacute;lvarez-Hern&aacute;ndez<sup>1</sup>, Maria del Carmen Candia-Plata<sup>1</sup>, Enrique Bolado-Mart&iacute;nez<sup>1</sup>,    <br> Jes&uacute;s Delgado-de la Mora<sup>1</sup>, Adriana Soto-Guzm&aacute;n<sup>1</sup>, Luis Fernando L&oacute;pez-Soto<sup>1</sup></p> 	     <p align="left">1. Universidad de Sonora. Hermosillo, M&eacute;xico.    <br> <b>Correspondencia:</b> Gerardo &Aacute;lvarez-Hern&aacute;ndez. Direcci&oacute;n: Departamento de Medicina y Ciencias de la Salud, Universidad de Sonora.    <br> Blvd. Luis D. Colosio SN, col. Centro, C.P. 83000, Hermosillo, Sonora, M&eacute;xico. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:galvarez@guayacan.uson.mx">galvarez@guayacan.uson.mx</a>.    <br> Tel&eacute;fono: (662) 2592121.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <b>Recibido:</b> Abril 08 de 2015 <b>Aprobado:</b> Junio 1 de 2015</p>  <hr>      <p align="justify"><b>Forma de citar:</b> &Aacute;lvarez-Hern&aacute;ndez G, Candia-Plata MC, Bolado-Mart&iacute;nez E, Delgado-de la Mora J, Soto-Guzm&aacute;n A, L&oacute;pez-Soto LF.Fiebre manchada por <i>Rickettsia rickettsii</i> en las Am&eacute;ricas: un problema creciente de salud p&uacute;blica. Rev Univ Ind Santander Salud. 2015; 47(3): 243-259. <b>DOI:</b> <a href="http://dx.doi.org/10.18273/revsal.v47n3-2015001" target="_blank">http://dx.doi.org/10.18273/revsal.v47n3-2015001</a></p>  <hr>      <p align="center"><font size="3"><b>RESUMEN</b></font></p> 	     <p align="justify">El comportamiento epidemiol&oacute;gico de la fiebre manchada por <i>Rickettsia rickettsii</i> constituye un desaf&iacute;o para los sistemas de salud del continente americano. Es un padecimiento de relevancia m&eacute;dica por la letalidad que provoca si no es diagnosticado ni tratado oportunamente. Aunque cualquier persona es susceptible a la infecci&oacute;n, algunos grupos poblacionales son m&aacute;s vulnerables debido a un mayor contacto con la garrapata transmisora, entre ellos los ni&ntilde;os, quienes tienen mayor morbilidad por lo que se asocian con resultados fatales. En su origen participa una multitud de factores biol&oacute;gicos, ecol&oacute;gicos y sociales, interrelacionados complejamente, y cuyo abordaje requiere de intervenciones integradas y multidisciplinarias. La incidencia de la enfermedad puede continuar aumentando en la regi&oacute;n, de modo que su ocurrencia actual constituye un llamado urgente para la acci&oacute;n regional. Acciones preventivas que disminuyan el contacto con garrapatas e incrementen la sospecha temprana de la enfermedad, son prioritarias en la agenda de salud de varias naciones de las Am&eacute;ricas.</p> 	     <p align="justify"><b>Palabras clave:</b> Fiebre maculosa de las Monta&ntilde;as Rocosas, Enfermedades por picaduras de Garrapatas, Am&eacute;rica Central, Am&eacute;rica del Sur.</p>      <p align="center"><font size="3"><b><i>Rickettsia rickettsii</i> spotted fever in the    <br> Americas: a growing public health problem</b></font></p> 		     <p align="center"><font size="3"><b>ABSTRACT</b></font></p> 	     <p align="justify">Rocky mountain spotted fever is a public health problem in America. The disease remains as a challenge for Health Systems at regional level. It is an illness of medical relevance due to its high case-fatality rate when it is not diagnosed and treated early. Although anyone is susceptible to infection, some groups are more vulnerable due to increased exposure to ticks, including children who have higher morbidity and fatal outcomes. A myriad of biological, ecological and social factors, complexly interrelated, are associated with its epidemiological pattern, which requires integrated and multidisciplinary interventions at different levels. The incidence of the disease may continue to increase in the region and its actual occurrence required an urgent call for regional action. Preventive actions that reduce contact with ticks and increase early disease suspicion should be priorities in the health agenda of various nations in America.</p> 	     <p align="justify"><b>Keywords:</b> Rocky mountain spotted fever, Tick-borne diseases, Central America, South America</p>  <hr>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>      <p align="justify">La Fiebre Manchada por <i>Rickettsia rickettsii</i> (FMRR)<a href="#_suis1" name="_ref1"><sup>1</sup></a>, es un problema emergente de salud p&uacute;blica en varios pa&iacute;ses del continente americano, con casos reportados desde Canad&aacute; hasta Argentina<sup>1-3</sup>. El padecimiento cobra adicional relevancia debido a la elevada letalidad que presenta cuando no es diagnosticado ni tratado con oportunidad<sup>4</sup>. Como es bien sabido, la FMRR es producida por el cocobacilo polimorfo <i>Rickettssia rickettsii</i>, cuyo ciclo de vida involucra un artr&oacute;podo vector y un hu&eacute;sped vertebrado<sup>5</sup>.</p>      <p align="justify">La bacteria es transmitida al ser humano por la mordedura de garrapatas infectadas de la familia <i>ixodidae</i> que act&uacute;an como su reservorio. Varias especies de garrapatas pueden transmitir a <i>R. rickettsii</i> pero los principales incluyen a <i>Dermacentor andersonii, Dermacentor variabilis, Rhipicephalus sanguineus, Amblyomma cajennense y Amblyomma aureolatum</i>, con variaciones regionales a lo largo del continente<sup>1,2,6</sup>. Los hospederos m&aacute;s comunes de <i>R. rickettsii</i> son animales vertebrados de mediano a gran tama&ntilde;o, especialmente mam&iacute;feros silvestres (v.gr. venados, ciervos, liebres) y dom&eacute;sticos (v.gr. bovinos, equinos, perros, gatos), pero tambi&eacute;n pueden ser roedores (v.gr. capibaras, zarig&uuml;eyas) e incluso aves<sup>6,7</sup>.</p>      <p align="justify">Aunque la FMRR es una enfermedad prevenible y tratable, contin&uacute;a como la m&aacute;s letal de las infecciones del grupo de las fiebres manchadas. Si bien puede afectar  a cualquier persona, los ni&ntilde;os menores de 10 a&ntilde;os de edad presentan usualmente las tasas de incidencia m&aacute;s elevadas<sup>8,9</sup> y pueden tener el mayor riesgo de resultados fatales en regiones donde el padecimiento es end&eacute;mico10,11 y en el caso particular de algunas regiones, si viven en condiciones de rezago social<sup>12-14</sup>. Dicha mortalidad ha sido asociada fundamentalmente a dos factores: (a) falta de sospecha diagn&oacute;stica; y (b) retraso en el inicio del tratamiento espec&iacute;fico con doxiciclina, el antibi&oacute;tico de elecci&oacute;n<sup>4,15,16</sup>.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>EPIDEMIOLOG&Iacute;A</b></font></p>      <p align="justify">La fiebre manchada por <i>Rickettsia rickettsii</i> forma parte del llamado grupo de fiebres manchadas de origen rickettsial (<a href="#t01">Tabla 1</a>), de amplia distribuci&oacute;n mundial, con caracter&iacute;sticas de distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica y comportamiento cl&iacute;nico distintivo, pero que en general comparten similar mecanismo fisiopatol&oacute;gico. La FMRR limita su incidencia a pa&iacute;ses del continente americano, con casos reportados en Norte, Centro y Sudam&eacute;rica. Los primeros enfermos fueron documentados en Estados Unidos de Am&eacute;rica (EUA) a finales del siglo XIX en la mayor cordillera del Oeste de ese pa&iacute;s: las Monta&ntilde;as Rocosas, de donde tom&oacute; su nombre. Desde su identificaci&oacute;n, fue considerada como una amenaza para quien la padec&iacute;a y el exantema petequial t&iacute;pico de las formas graves dio origen a la etiqueta de &quot;fiebre manchada&quot; o &quot;sarampi&oacute;n negro&quot;<sup>1</sup>. A pesar de que existen pacientes en los que no hay exantema y los casos de FMRR se presentan a lo largo del continente, la b&uacute;squeda de ambas caracter&iacute;sticas (la relaci&oacute;n con un lugar geogr&aacute;fico espec&iacute;fico y la presencia de exantema) en los pacientes, probablemente ha contribuido para que el diagn&oacute;stico presuntivo de FMRR sea dif&iacute;cil incluso en regiones end&eacute;micas provocando el subregistro de su incidencia<sup>17</sup>.</p>      <p align="center"><a name="t01"></a><img src="img/revistas/suis/v47n3/v47n3a02t1.jpg"></p>      <p align="justify">La FMRR es end&eacute;mica en varios pa&iacute;ses del continente americano, la mayor incidencia registrada del padecimiento corresponde a tres pa&iacute;ses: EUA, Brasil y M&eacute;xico, pero existen reportes aislados en otras naciones del continente. No hay precisi&oacute;n en las cifras pues se reconoce que diversos factores relacionados con los procedimientos de registro epidemiol&oacute;gico han contribuido a la subestimaci&oacute;n de la morbilidad y mortalidad real de la enfermedad<sup>18,19</sup>. No obstante esto, en EUA durante la &uacute;ltima d&eacute;cada, la incidencia de FMRR se triplic&oacute;, al pasar de dos a seis casos por mill&oacute;n de habitantes, en tanto la letalidad declin&oacute; considerablemente tras la introducci&oacute;n de la doxiciclina como tratamiento electivo y de ubicarse en casi 30&#37; en la d&eacute;cada de 1940, disminuy&oacute; hasta 0.5&#37; en la poblaci&oacute;n general durante el a&ntilde;o 2010<sup>20</sup>. Es importante sin embargo, resaltar que en algunas regiones y poblaciones ind&iacute;genas de ese pa&iacute;s, la incidencia es mucho mayor. Por ejemplo, se ha reportado que en indios americanos ocurren 94.6 casos por mill&oacute;n de habitantes, con un incremento significativo de la tendencia a partir del a&ntilde;o 2000<sup>21,22</sup>.</p>      <p align="justify">Menos claro es el comportamiento en Brasil de la FMRR, aunque si se reconoce que es la enfermedad rickettsial m&aacute;s frecuente en dicho pa&iacute;s, principalmente en Sao Paulo, Minas Gerais y Rio de Janeiro. Diversas investigaciones en ese pa&iacute;s han reportado series de casos de variada amplitud geogr&aacute;fica y extensi&oacute;n temporal, pero no es f&aacute;cil identificar una incidencia poblacional, aunque seroencuestas regionales confirman la endemicidad del padecimiento<sup>23</sup>. Del Fiol<sup>24</sup> se&ntilde;al&oacute; que durante el per&iacute;odo 1997-2009 hubo 808 casos notificados en todo Brasil, la mayor proporci&oacute;n (45.2&#37;) en habitantes de Sao Paulo, seguido por el estado de Minas Gerais que concentr&oacute; al 22.9&#37; de la incidencia; en ese reporte se apunt&oacute; que la letalidad del per&iacute;odo oscil&oacute; entre 20 y 30&#37;, lo que coincide con un estudio de Angerami<sup>25</sup>, pero es un poco menor a la letalidad documentada por Amancio en una serie de 132 casos<sup>26</sup>, en la que se apreci&oacute; que fue de 40.2&#37;. En otra serie de 202 casos, sesenta (29.7&#37;) correspondieron a sujetos menores de 18 a&ntilde;os de edad; en el total de la serie, la letalidad fue de 28.4&#37;<sup>27</sup>.</p>      <p align="justify">Por otra parte, en M&eacute;xico la FMRR cuenta con registros hist&oacute;ricos que datan de la d&eacute;cada de 1940<sup>28</sup>. Por razones desconocidas, no se registraron casos por un largo per&iacute;odo de tiempo, hasta que a comienzos de la d&eacute;cada del 2000 reemergi&oacute; en varios estados del pa&iacute;s, con una incidencia anual que fluct&uacute;a entre 4.0 y 12.6/100,000 habitantes en estados como Sonora<sup>29</sup>, Coahuila<sup>30</sup>, Yucat&aacute;n<sup>31</sup> y Baja California<sup>32</sup>. La FMRR en M&eacute;xico es un padecimiento de notificaci&oacute;n obligatoria para el Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiol&oacute;gica y durante el per&iacute;odo 2007-2014 se reportaron 3978 casos de la enfermedad, con una letalidad de 2.9&#37; (SSA, 2014)<sup>33</sup>, aunque reportes de investigaci&oacute;n en poblaci&oacute;n pedi&aacute;trica han documentado tasas de letalidad que oscilan entre 20&#37; y 32&#37;<sup>14,34</sup>.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Las discrepancias en las cifras de morbilidad y mortalidad que se observan en los tres pa&iacute;ses con mayor incidencia de FMRR ejemplifican la dificultad de su registro. Esto es importante para Latinoam&eacute;rica porque aunque existen recientes reportes acerca de su presencia en Colombia<sup>35</sup>, Argentina<sup>36</sup>, Per&uacute;<sup>37</sup>, Panam&aacute;<sup>38,39</sup> y Costa Rica<sup>40</sup>, la mayor&iacute;a de estos fueron casos fatales agrupados en peque&ntilde;os conglomerados, pero no hay datos sobre la incidencia de la enfermedad a nivel poblacional, por lo que su ocurrencia puede ser mayor que la registrada en los sistemas de vigilancia epidemiol&oacute;gica, especialmente porque en algunas regiones son tambi&eacute;n end&eacute;micas otras enfermedades  febriles exantem&aacute;ticas que semejan las manifestaciones cl&iacute;nicas de la FMRR, como el dengue, leptospirosis y malaria, lo que puede dificultar a&uacute;n m&aacute;s la identificaci&oacute;n de casos.</p>      <p align="justify">No obstante las dificultades para el registro de la FMRR, en general se ha observado un incremento de su carga de morbilidad y mortalidad, que es consecuencia de una compleja interacci&oacute;n de factores biol&oacute;gicos, ambientales y sociales. Es probable que tambi&eacute;n el mayor nivel de conciencia de los m&eacute;dicos para sospechar la enfermedad, aunado a la mejor&iacute;a en los procedimientos para su diagn&oacute;stico y notificaci&oacute;n, e incluso la apertura pol&iacute;tica para reconocer los casos cl&iacute;nicos han contribuido al repunte observado en diversas regiones<sup>10</sup>. Adem&aacute;s, debe considerarse el papel de diversas actividades humanas que han beneficiado el contacto con garrapatas transmisoras, por ejemplo: aumento de pr&aacute;cticas recreativas al aire libre como el campismo y el excursionismo<sup>4,25</sup>; la acelerada urbanizaci&oacute;n que favorece el asentamiento de vecindarios humanos en suburbios o espacios previamente silvestres<sup>41</sup>; y pr&aacute;cticas culturales o incluso sociopol&iacute;ticas, que han aumentado la convivencia estrecha con hu&eacute;spedes competentes de las garrapatas, como los perros, hospederos comunes de <i>Rh. sanguineus</i><sup>42,43</sup> o con animales silvestres como las capibaras y zarig&uuml;eyas, hospederos de <i>A. cajennense</i><sup>44</sup>.</p>      <p align="justify">En adici&oacute;n, cambios ecol&oacute;gicos o clim&aacute;ticos, como el calentamiento global, han modificado los comportamientos de alimentaci&oacute;n y reproducci&oacute;n de las garrapatas, lo que por un lado ha incrementado los ataques a humanos<sup>45</sup> y por otro, ha promovido una mayor densidad vectorial tanto en &aacute;reas end&eacute;micas como en otras en las que previamente no se hab&iacute;a documentado su presencia<sup>42,46,47</sup>. De relevancia es tambi&eacute;n el hecho de que la emergencia de brotes epid&eacute;micos en ciertas regiones del continente americano est&aacute; relacionado con condiciones de rezago social como la pobreza, deterioro ambiental y limitada educaci&oacute;n, lo que por un lado, expone a un mayor riesgo de exposici&oacute;n y resultados fatales a poblaciones vulnerables como los ind&iacute;genas<sup>21,22</sup>, y ni&ntilde;os que viven y juegan en ambientes con intensa infestaci&oacute;n ambiental de garrapatas<sup>12</sup> o que tienen dificultades de acceso a la atenci&oacute;n m&eacute;dica oportuna<sup>34</sup>; por el otro lado, ese rezago social tiene un efecto negativo en la forma en que la poblaci&oacute;n percibe el riesgo de la exposici&oacute;n a la garrapata, su manera de convivir con perros ectoparasitados o realizar actividades en sitios con elevada infestaci&oacute;n de garrapatas, as&iacute; como el sentido que otorga a las manifestaciones cl&iacute;nicas iniciales de la enfermedad, todo esto contribuyendo al retraso de solicitud de atenci&oacute;n m&eacute;dica y profundizando la vulnerabilidad de ciertos grupos<sup>13</sup>. Por lo descrito, es conveniente que se impulsen intervenciones e investigaciones multidisciplinarias que integren la compleja interacci&oacute;n de numerosos factores y promuevan una modificaci&oacute;n positiva de la percepci&oacute;n del riesgo (<a href="#f01">Figura 1</a>).</p>      <p align="center"><a name="f01"></a><img src="img/revistas/suis/v47n3/v47n3a02f1.jpg"></p>      <p align="center"><font size="3"><b>ASPECTOS BIOL&Oacute;GICOS DEL VECTOR Y EL AGENTE ETIOL&Oacute;GICO</b></font></p>      <p align="left"><b>El vector</b></p>      <p align="justify">Diversas especies de garrapatas de la familia <i>Ixodidae</i> (garrapatas de cuerpo duro) act&uacute;an como reservorios naturales de <i>R. rickettsii</i>. Las de mayor inter&eacute;s son: <i>Dermacentor andersonii</i> y <i>Dermacentor variabilis</i>, que son los principales artr&oacute;podos implicados en EUA; <i>Amblyomma cajennense</i> y <i>Amblyomma aureolatum</i>, los m&aacute;s importantes en Sudam&eacute;rica y el Caribe; y <i>Rhipicephalus sanguineus</i>, el vector m&aacute;s importante en M&eacute;xico y recientemente en el sur de EUA y otras regiones del continente, todas ellas relacionadas con la ocurrencia de infecciones humanas y animales<sup>44</sup>. En promedio, las garrapatas pueden vivir entre dos y seis a&ntilde;os, pasando entre 95 y 98&#37; de sus vidas, fuera de sus hu&eacute;spedes. Todas ellas se alimentan exclusivamente de sangre, linfa o tejidos de vertebrados. El proceso de alimentaci&oacute;n es necesario para su supervivencia, desarrollo y reproducci&oacute;n, y es por este proceso que una garrapata puede da&ntilde;ar a su hu&eacute;sped transmiti&eacute;ndole organismos pat&oacute;genos desde otro hu&eacute;sped infectado. La ingesti&oacute;n de sangre de las garrapatas de cuerpo duro es un proceso lento, que lleva entre dos y seis horas, y que favorece la inoculaci&oacute;n de dosis altas de cargas pat&oacute;genas al hu&eacute;sped, que por lo general no percibe la mordedura de la garrapata ya que usualmente es indolora<sup>48</sup>.</p>      <p align="justify">La garrapata <i>Rh. sanguineus</i> (garrapata caf&eacute;) es el vector de pat&oacute;genos m&aacute;s importante entre los artr&oacute;podos, es el m&aacute;s com&uacute;n y abundante a nivel global y funge como vector de varios agentes causales de enfermedades en humanos y/o animales como <i>R. rickettsii, R. conorii, Coxiella burnetii</i> y <i>Ehrlichia canis</i>. Esta garrapata posee ciertas caracter&iacute;sticas que le confieren su importancia en salud p&uacute;blica y veterinaria; por ejemplo, es una especie endof&iacute;lica (adaptada a ambientes intradomiciliarios), monotr&oacute;pica (todos sus estadios de desarrollo se alimentan de la misma especie de hu&eacute;sped) y tri-hu&eacute;sped (cada estadio de vida requiere un nuevo hu&eacute;sped de donde alimentarse). Aunque es endof&iacute;lica, tiene tambi&eacute;n gran capacidad de sobrevivir en espacios exteriores, especialmente en donde haya refugios (v.gr. huecos en las paredes y pisos), y se adapta bien a condiciones de calor extremo y poca humedad ambiental como se ha observado en el sur de EUA y en el norte de M&eacute;xico<sup>42,49</sup>.</p>      <p align="justify">La garrapata <i>Rh. sanguineus</i> es principalmente un par&aacute;sito de perros, especialmente los errantes y que viven sin due&ntilde;o, y ocasionalmente puede parasitar al humano<sup>42,50</sup>. Formas adultas de <i>Rh. sanguineus</i> pueden adquirir a <i>R. rickettsii</i> al momento de alimentarse de un hu&eacute;sped ricketts&eacute;mico, y transferirla en forma transov&aacute;rica a sus huevecillos, en los que permanece hasta su madurez, por un mecanismo trans-estadial, de larva a ninfa y de ninfa a garrapata adulta<sup>50</sup>. Se ha determinado que tambi&eacute;n en estadio de larva, <i>Rh. sanguineus</i>, al alimentarse de un hu&eacute;sped ricketts&eacute;mico, puede adquirir la infecci&oacute;n y transmitirla a estadio de ninfa, fungiendo la garrapata como un reservorio y amplificador (promotor de la reproducci&oacute;n) de <i>R. rickettsii</i><sup>5</sup>.</p>      <p align="justify">Por otra parte, <i>A. cajennense</i> (garrapata Cayenne) es la principal especie de garrapatas en Brasil y otros pa&iacute;ses de Sudam&eacute;rica. Los hospederos m&aacute;s frecuentes de esta garrapata son los caballos, las capibaras (<i>Hydrochoerus hydrochaeris</i>) y las zarig&uuml;eyas, que de modo similar a los perros por Rh. sanguineus, son parasitadas por todos los estadios de vida de <i>A. cajennense</i><sup>44</sup>. Una caracter&iacute;stica importante de este artr&oacute;podo es que las formas adultas predominan en la primavera y el verano, las larvas en oto&ntilde;o e invierno, y las ninfas en invierno y primavera. En Brasil, la mayor&iacute;a de infecciones de FMRR ocurren durante el estadio ninfal, lo que puede estar relacionado con una mayor agresividad de las ninfas hacia los humanos, tambi&eacute;n que sean de peque&ntilde;o tama&ntilde;o evita que sean f&aacute;cilmente detectadas, y adem&aacute;s poseen una mayor capacidad de dispersi&oacute;n en &aacute;reas infestadas. El principal escenario en donde ocurren los casos humanos de FMRR asociados a <i>A. cajennense</i> son &aacute;reas con abundancia de capibaras, que son usualmente cercanas a cuerpos de agua, como peque&ntilde;as represas y zonas boscosas en los m&aacute;rgenes de los r&iacute;os, en donde las personas realizan actividades recreativas<sup>7</sup>.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Finalmente, en los EUA <i>R. rickettsii</i> es transmitida al humano por varias especies de garrapatas, aunque las predominantes son <i>D. variabilis</i> (garrapata Americana del perro), <i>D. andersoni</i> (garrapata madera de la Monta&ntilde;a) y recientemente, <i>Rh. sanguineus</i><sup>4</sup>. La m&aacute;s com&uacute;n de ellas es <i>D. variabilis</i>, ampliamente distribuida en el este de las Monta&ntilde;as Rocosas y en algunas &aacute;reas de la costa del Pac&iacute;fico. En este punto es importante resaltar que la distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica y la ecolog&iacute;a del vector son fundamentales para explicar los mecanismos de transmisi&oacute;n de la FMRR; por ejemplo, <i>D. variabilis</i> reside en &aacute;reas suburbanas y rurales, y sus larvas y ninfas tiene como hospederos comunes a peque&ntilde;os mam&iacute;feros silvestres, mientras que sus formas adultas prefieren alimentarse de perros y otros mam&iacute;feros de mediano tama&ntilde;o. Estas caracter&iacute;sticas pueden explicar por qu&eacute; ciertas actividades recreacionales como el campismo y el excursionismo incrementan el contacto con el vector, y por supuesto, son tambi&eacute;n indicativas de las actividades preventivas que deben tomarse. Por otra parte, <i>D. andersoni</i> se encuentra fundamentalmente en los estados de las Monta&ntilde;as Rocosas, al oeste de EUA, y sus hospederos comunes son mam&iacute;feros de gran tama&ntilde;o<sup>4,41</sup>.</p>      <p align="left"><b>El agente etiol&oacute;gico</b></p>      <p align="justify">El g&eacute;nero <i>Rickettsia</i> agrupa a un conjunto de especies bacterianas Gram negativas con prote&iacute;nas de superficie que favorecen la evasi&oacute;n de la fagocitosis<sup>51,52</sup>. Todas las bacterias del g&eacute;nero son intracelulares obligadas y altamente pleom&oacute;rficas, pudi&eacute;ndose encontrar en el citoplasma y menos frecuentemente en el n&uacute;cleo de las c&eacute;lulas infectadas, en forma de cocos y/o bacilos de peque&ntilde;o tama&ntilde;o<sup>5,53</sup>.</p>      <p align="justify">Brevemente, una vez que la garrapata inocula a <i>R. rickettsii</i> en la dermis del hu&eacute;sped vertebrado, la bacteria se disemina r&aacute;pidamente por v&iacute;a sangu&iacute;nea y/o linf&aacute;tica<sup>54</sup>, gracias a su capacidad para invadir y multiplicarse en las c&eacute;lulas endoteliales vasculares.</p>      <p align="justify">La infecci&oacute;n celular por <i>R. rickettsii</i> inicia con la adherencia de la bacteria a las c&eacute;lulas endoteliales. Este proceso se compara para su estudio con el de <i>R. conorii</i> (agente causal de la fiebre manchada Mediterr&aacute;nea), porque en &eacute;l intervienen las prote&iacute;nas de superficie membranal OmpA y OmpB, codificadas por los genes  <i>ompA</i> y <i>ompB</i> bacterianos, respectivamente, as&iacute; como otros componentes no proteicos de la microc&aacute;psula bacteriana<sup>5,54</sup>.</p>      <p align="justify">No se conocen con precisi&oacute;n las prote&iacute;nas receptoras de las c&eacute;lulas endoteliales, pero una vez que se ha producido la adherencia de <i>R. rickettsii</i>, el material gen&eacute;tico y algunas prote&iacute;nas bacterianas penetran a las c&eacute;lulas endoteliales utilizando el sistema de secreci&oacute;n tipo 4 (T4SS). Este sistema est&aacute; constituido por una estructura de al menos 12 prote&iacute;nas que forman una especie de t&uacute;nel que atraviesa la membrana interna y se extiende hasta la membrana externa de la bacteria. La entrada del material gen&eacute;tico bacteriano activa el proceso de fagocitosis en la c&eacute;lula endotelial, pero la bacteria escapa de la acci&oacute;n del fagosoma probablemente por un mecanismo mediado por la fosfolipasa A2. Estudios realizados tanto en modelos animales como <i>in-vitro</i>, han evidenciado el incremento en la expresi&oacute;n de la ciclooxigenasa 2 (COX2) por las c&eacute;lulas infectadas con <i>R. rickettsii</i>, pero la enzima es r&aacute;pidamente neutralizada por una hemo oxigenasa producida por la bacteria. Este mecanismo favorece un ambiente &oacute;ptimo para la viabilidad y r&aacute;pida multiplicaci&oacute;n de la bacteria en la c&eacute;lula hu&eacute;sped<sup>5</sup>. En el citosol de la c&eacute;lula endotelial vascular, la bacteria es capaz de dirigir unidireccionalmente su movimiento y es probable que tambi&eacute;n sea capaz de modular negativamente la apoptosis de la c&eacute;lula infectada<sup>55</sup>.</p>      <p align="justify">Las complicaciones m&aacute;s severas de la infecci&oacute;n por <i>R. rickettsii</i> son secundarias a la r&aacute;pida diseminaci&oacute;n sist&eacute;mica de la bacteria a trav&eacute;s de la microvasculatura<sup>56,57</sup>. En el interior de la c&eacute;lula endotelial, <i>R. rickettsii</i> se ancla al citoesqueleto de actina a trav&eacute;s del dominio WH2, una secuencia conservada evolutivamente en las prote&iacute;nas WASP (prote&iacute;nas relacionadas con el S&iacute;ndrome de Wiskott-Aldrich que controlan la polimerizaci&oacute;n de actina), de la prote&iacute;na de superficie RickA, la cual activa a Arp 2/3 (prote&iacute;nas relacionadas a actina 2/3). As&iacute;, la bacteria modula la nucleaci&oacute;n de nuevos filamentos de actina para lograr su desplazamiento en el espacio intracelular y producir neoformaciones, tipo filipodios, para interaccionar e invadir las c&eacute;lulas endoteliales adyacentes sin exponerse al espacio extracelular<sup>5,58</sup>. La invasi&oacute;n y multiplicaci&oacute;n bacteriana masivas estimulan simult&aacute;neamente la respuesta inmunol&oacute;gica del organismo infectado. Las c&eacute;lulas del sistema inmunol&oacute;gico (principalmente c&eacute;lulas T y macr&oacute;fagos), activadas por componentes de la microc&aacute;psula del agente, llegan al sitio de infecci&oacute;n y liberan citosinas pro-inflamatorias (v.gr. interfer&oacute;n-&gamma;, Interleucina-1 e Interleucina-6, entre otras) as&iacute; como factores vasodilatadores como la histamina y el &oacute;xido n&iacute;trico, que inducen la liberaci&oacute;n del factor de von Willebrand (FvW), prote&iacute;na procoagulante contenida en el interior de los cuerpos de Weibel-Palade<i>5,60</i>, contribuyendo con ello a los da&ntilde;os org&aacute;nicos propios de la fiebre manchada<sup>56</sup>.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>ASPECTOS CL&Iacute;NICOS</b></font></p>      <p align="left"><b>Fisiopatolog&iacute;a</b></p>      <p align="justify">En general, la FMRR tiene lugar una vez que <i>R. rickettsii</i> es inoculada desde las gl&aacute;ndulas salivales de una garrapata infectada en la dermis de un hu&eacute;sped susceptible, disemin&aacute;ndose y replic&aacute;ndose en el citoplasma de las c&eacute;lulas endoteliales, lo que provoca intensa vasculitis, hipoperfusi&oacute;n y da&ntilde;o org&aacute;nico inducido por la permeabilidad vascular, especialmente grave en el cerebro y pulmones<sup>41,61</sup>.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Para producir las alteraciones fisiopatol&oacute;gicas, <i>R. rickettsii</i> cuenta con dos prote&iacute;nas inmunog&eacute;nicas de membrana externa (OmpA y OmpB), que son utilizadas al igual que otros lipopolisac&aacute;ridos, como adhesinas para unirse principalmente a c&eacute;lulas endoteliales de peque&ntilde;os y medianos vasos. Tras esta uni&oacute;n, ocurre un reordenamiento citoesquel&eacute;tico que permite la entrada de este pat&oacute;geno a la c&eacute;lula &quot;blanco&quot;. Los mecanismos de lesi&oacute;n de este pat&oacute;geno se basan en su supervivencia, r&aacute;pida reproducci&oacute;n y capacidad de infectar las c&eacute;lulas vasculares, as&iacute; como en su potencial para estimular el sistema inmune, trayendo consigo la liberaci&oacute;n de m&uacute;ltiples citosinas que son responsables del progresivo da&ntilde;o a la integridad endotelial y la consecuente extravasaci&oacute;n de l&iacute;quido y la agregaci&oacute;n plaquetaria. La vasculitis inducida por la rickettsemia provoca peque&ntilde;as zonas de microhemorragias, aumento de la permeabilidad vascular, edema, as&iacute; como activaci&oacute;n de mecanismos humorales inflamatorios y de coagulaci&oacute;n<sup>5,61-63</sup>.</p>      <p align="justify"><i>R. rickettsii</i> cuenta con la capacidad de diseminarse de una c&eacute;lula a otra atravesando su membrana celular sin causar da&ntilde;o severo, a una sorprendente velocidad de 4.8 &mu;m/min, raz&oacute;n por la cual raramente se encuentra acumulada en las c&eacute;lulas de ingreso y el cuadro cl&iacute;nico es de r&aacute;pida instauraci&oacute;n. La diseminaci&oacute;n de la bacteria incluye m&uacute;ltiples &oacute;rganos como piel, cerebro, ri&ntilde;&oacute;n, bazo, pulmones, coraz&oacute;n, entre otros; por consecuencia, no es sorprendente que los s&iacute;ntomas iniciales sean altamente variables e inespec&iacute;ficos, y conformen un cuadro cl&iacute;nico de dif&iacute;cil sospecha m&eacute;dica<sup>4, 61-64</sup>.</p>      <p align="left"><b>Manifestaciones cl&iacute;nicas</b></p>      <p align="justify">Es dif&iacute;cil establecer el diagn&oacute;stico temprano de FMRR, entre otras cosas, porque se sustenta en la sospecha emp&iacute;rica de un conjunto inespec&iacute;fico de signos y s&iacute;ntomas, que son comunes a una diversidad de padecimientos infecciosos. La tr&iacute;ada compuesta por fiebre, cefalea y malestar general, que puede o no estar acompa&ntilde;ada por exantema, es el conjunto cl&iacute;nico m&aacute;s frecuente de la FMRR y es poco orientador sino se le vincula a pistas epidemiol&oacute;gicas como la historia de contacto con garrapatas<sup>4,34,64</sup>. Adem&aacute;s, la exploraci&oacute;n f&iacute;sica de los pacientes, excluyendo el exantema caracter&iacute;stico, rara vez aportar&aacute; datos diagn&oacute;sticos certeros<sup>61</sup>.</p>      <p align="justify">Las manifestaciones cl&iacute;nicas de la FMRR var&iacute;an desde un cuadro leve e inespec&iacute;fico a uno de evoluci&oacute;n grave o fatal. Tras un per&iacute;odo de incubaci&oacute;n que oscila entre 2 y 14 d&iacute;as posteriores a la mordedura de la garrapata infectada, con una mediana de 7 d&iacute;as, comienza usualmente un conjunto de s&iacute;ntomas poco espec&iacute;fico en el que predominan fiebre &gt;38.9&deg;C, cefalea, mialgias, artralgias, dolor abdominal, v&oacute;mito y diarrea, todos ellos comunes a numerosos padecimientos<sup>4,64,65</sup>. Debido a que los vestigios de la mordedura de una garrapata son dif&iacute;ciles de identificar, es vital la sospecha emp&iacute;rica y su asociaci&oacute;n con pistas epidemiol&oacute;gicas para establecer tempranamente el diagn&oacute;stico presuntivo<sup>3,34</sup>. En general, podemos identificar dos fases cl&iacute;nicas diferentes en la evoluci&oacute;n de la FMRR: una fase temprana (menor al 5&ordm; d&iacute;a) y tard&iacute;a (mayor o igual al 5&ordm; d&iacute;a).</p>      <p align="left"><b>Fase temprana</b></p>      <p align="justify">Caracterizada por s&iacute;ntomas poco espec&iacute;ficos que dificultan el diagn&oacute;stico en el per&iacute;odo en el que el tratamiento muestra mayor eficacia. Inicialmente ocurre fiebre de inicio s&uacute;bito (generalmente &gt;38.9&deg;C) que suele acompa&ntilde;arse de bradicardia relativa y escalofr&iacute;os; as&iacute; mismo, es com&uacute;n que ocurra cefalea intensa, pero sin ubicaci&oacute;n particular. Hay artralgias y mialgias con predominio dorsal, pantorrillas, cuello (que puede sugerir rigidez del cuello posterior) y abdomen, esta &uacute;ltima localizaci&oacute;n puede confundirse con un cuadro de abdomen agudo (v.gr. colecistitis aguda o apendicitis) y por consecuencia generar una incorrecta intervenci&oacute;n quir&uacute;rgica. Tras aproximadamente 48-72 horas de evoluci&oacute;n, puede presentarse edema en el dorso de las manos o pies, lo que ha sido se&ntilde;alado como un signo clave, ya que s&oacute;lo ocurre en otras dos patolog&iacute;as: el s&iacute;ndrome de choque t&oacute;xico en adultos y la enfermedad de Kawasaki en ni&ntilde;os. Tambi&eacute;n hay n&aacute;usea, v&oacute;mito y diarrea; adicionalmente es posible encontrar manifestaciones secundarias al da&ntilde;o vascular como hiperemia conjuntival, edema periorbitario bilateral, edema conjuntival y fotofobia<sup>11,27,29,34,66-68</sup>.</p>      <p align="justify">Menci&oacute;n especial merece el exantema de FMRR, pues muestra una gran variaci&oacute;n en su presentaci&oacute;n, algunas series lo han documentado desde el 18 hasta el 100&#37; de los pacientes<sup>27,29,34,65,67,69</sup>; en caso de presentarse, comienza entre el d&iacute;a tres y cinco de la enfermedad. Morfol&oacute;gicamente, inicia en forma de un sutil y peque&ntilde;o (1-5 mm de di&aacute;metro) exantema evanescente maculo-papular, generalizado, de dif&iacute;cil identificaci&oacute;n, especialmente en individuos de piel oscura. Tras 48 horas de evoluci&oacute;n puede localizarse en mu&ntilde;ecas y tobillos, y usualmente desaparece a la digito-presi&oacute;n, posteriormente puede tornarse petequial o de aspecto purp&uacute;rico. La localizaci&oacute;n en palmas de manos y plantas de pies (Figuras <a href="#f02a">2a</a> y <a href="#f02b">2b</a>) es caracter&iacute;stica de esta patolog&iacute;a, aunque puede estar ausente en fases tempranas y es usualmente una se&ntilde;al del incremento de la severidad de la enfermedad y de la evoluci&oacute;n tard&iacute;a del padecimiento<sup>29,34,61,68</sup>.</p>      <p align="center"><a name="f02a"></a><img src="img/revistas/suis/v47n3/v47n3a02f2a.jpg"></p>      <p align="center"><a name="f02b"></a><img src="img/revistas/suis/v47n3/v47n3a02f2b.jpg"></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left"><b>Fase tard&iacute;a</b></p>      <p align="justify">Las manifestaciones tard&iacute;as de la FMRR reflejan el da&ntilde;o vascular en etapas avanzadas. En esta fase, la triada cl&aacute;sica de fiebre, cefalea y exantema ocurre en el 60- 70&#37; de los pacientes<sup>66</sup>. As&iacute;, el exantema puede tomar un aspecto petequial y purp&uacute;rico, en casos graves puede evolucionar a necrosis y gangrena en las partes distales de las extremidades, mientras en otras se forman grandes placas equim&oacute;ticas (Figura <a href="#f03a">3a</a> y <a href="#f03b">3b</a>). Por otra parte, una de las complicaciones m&aacute;s severas de la FMRR es la falla renal aguda (FRA), que incrementa considerablemente la probabilidad de muerte de los enfermos<sup>34,70,71</sup>. La falla renal de estos pacientes es consecuencia de m&uacute;ltiples factores como la necrosis tubular aguda inducida por hipotensi&oacute;n, la trombosis intravascular o la inflamaci&oacute;n intersticial vascular causada por la infecci&oacute;n directa de las c&eacute;lulas endoteliales<sup>61,72</sup>.</p>      <p align="center"><a name="f03a"></a><img src="img/revistas/suis/v47n3/v47n3a02f3a.jpg"></p>      <p align="center"><a name="f03b"></a><img src="img/revistas/suis/v47n3/v47n3a02f3b.jpg"></p>      <p align="justify">Igualmente, en la fase tard&iacute;a m&uacute;ltiples des&oacute;rdenes neurol&oacute;gicos han sido reportados, entre los que se encuentran convulsiones, ceguera transitoria, alteraciones del estado mental que en algunos casos cuando son acompa&ntilde;adas por mialgias cervicales severas pudieran semejar un cuadro de meningitis, aunque la FMRR no se acompa&ntilde;a de rigidez de nuca. Tambi&eacute;n ocurren manifestaciones oculares m&aacute;s severas como conjuntivitis, papiledema y hemorragias retinales en llama, secundarias a la fuga de l&iacute;quido por el da&ntilde;o vascular<sup>61,66,68</sup>.</p>      <p align="justify">Otras complicaciones reportadas incluyen insuficiencia respiratoria, falla card&iacute;aca secundaria a infartos de miocardio o miocarditis, inestabilidad hemodin&aacute;mica secundaria a hipovolemia y choque, falla hep&aacute;tica con ictericia, sangrado en m&uacute;ltiples sitios usualmente asociados a una posterior falla org&aacute;nica m&uacute;ltiple<sup>61,66,68,69</sup>. En autopsias se ha evidenciado la repercusi&oacute;n de la vasculitis sist&eacute;mica, document&aacute;ndose miocarditis, encefalitis, nefritis, neumon&iacute;a intersticial y linfadenitis generalizada principalmente<sup>3,61,68</sup>.</p>      <p align="justify">En esta fase tard&iacute;a, la letalidad puede ser muy alta. Por ejemplo, en algunas series latinoamericanas las muertes oscilan entre 20 y 40&#37;, aunque en algunas reportes pocos casos la muerte puede alcanzar hasta el 95&#37;<sup>3</sup>. Como fue se&ntilde;alado previamente, si bien la FMRR puede afectar a personas de cualquier edad, los ni&ntilde;os menores de 10 a&ntilde;os tienen incidencia m&aacute;s elevada y est&aacute;n en mayor riesgo de resultados fatales<sup>14,31,34,73-75</sup>.</p>      <p align="justify">Es oportuno reiterar que los resultados fatales de la FMRR pueden evitarse si se sospecha tempranamente el diagn&oacute;stico y se inicia el tratamiento espec&iacute;fico con doxiciclina, incluso a ni&ntilde;os peque&ntilde;os y embarazadas, dentro de los primeros 5 d&iacute;as de comenzado el cuadro<sup>4</sup>. La renuencia de parte del personal m&eacute;dico para administrar la doxiciclina puede incrementar la probabilidad de muerte y otras complicaciones en la salud de los pacientes y no tiene raz&oacute;n de ser<sup>15,16</sup>, pues la evidencia reciente indica que el principal argumento para no indicarlo -te&ntilde;ido de los dientes- es insostenible, pues no ocurre incluso cuando el antibi&oacute;tico se indica a ni&ntilde;os menores de 8 a&ntilde;os de edad<sup>76</sup>.</p>      <p align="left"><b>Hallazgos de laboratorio cl&iacute;nico</b></p>      <p align="justify">De modo semejante a las manifestaciones cl&iacute;nicas, los datos de laboratorio de pacientes infectados con <i>R. rickettsii</i> son poco espec&iacute;ficos. No obstante esto, la trombocitopenia (&lt;100,000 por mm<sup>3</sup>) secundaria al secuestro y destrucci&oacute;n de plaquetas a nivel de la microcirculaci&oacute;n, es uno de los rasgos m&aacute;s frecuentes.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Otros incluyen a la hipoalbuminemia subsecuente al da&ntilde;o capilar, y la alteraci&oacute;n de pruebas de funci&oacute;n hep&aacute;tica (elevaci&oacute;n de enzimas hep&aacute;ticas), lo que pueden orientar la sospecha diagn&oacute;stica<sup>34,65,66,68-69</sup>. El comportamiento de la cuenta leucocitaria es indistinto y ocurre desde leucopenia hasta leucocitosis, y por lo tanto, no es de gran ayuda para establecer la sospecha diagn&oacute;stica. En cambio la hiponatremia es uno de los hallazgos bioqu&iacute;micos anormales m&aacute;s comunes, y puede estar presente en hasta 50&#37; de los pacientes con FMRR<sup>34,61,66,68</sup>.</p>      <p align="justify">Otros hallazgos menos comunes en la fase tard&iacute;a de la enfermedad incluyen la elevaci&oacute;n en los valores de creatinina y nitr&oacute;geno ureico en sangre, as&iacute; como el aumento de la creatina quinasa, secundario al da&ntilde;o muscular inducido por la vasculitis. Adicionalmente, en el l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo se ha observado pleocitosis linfoc&iacute;tica y polimorfonuclear, elevaci&oacute;n moderada de prote&iacute;nas, e incremento de leucocitos que usualmente no supera las 250 c&eacute;lulas por mm<sup>3</sup>, sin embargo no es una prueba realizada de forma rutinaria en este padecimiento<sup>3,34,61,68</sup>.</p>      <p align="left"><b>Secuelas</b></p>      <p align="justify">Es poca la evidencia actual sobre las secuelas en los pacientes sobrevivientes a FMRR, en una peque&ntilde;a serie mexicana<sup>67</sup> de siete ni&ntilde;os sobrevivientes; tres de ellos permanecieron con secuelas neurol&oacute;gicas, incluyendo d&eacute;ficit motor con dificultad para la marcha, el habla, la degluci&oacute;n e indiferencia a los est&iacute;mulos externos, lo que es consistente con datos de otros reportes<sup>77</sup>. Tambi&eacute;n, el da&ntilde;o de piel y del tejido secundario a la vasculitis generalizada puede evolucionar hasta necrosis y gangrena, lo que puede requerir amputaci&oacute;n de dedos, ortejos y pabell&oacute;n auricular principalmente<sup>4,64</sup>. La sordera bilateral ha sido ya tambi&eacute;n reportada como una secuela fatal<sup>78</sup>, pero poco es conocido acerca de su incidencia en estudios de seguimiento.</p>      <p align="left"><b>La confirmaci&oacute;n diagn&oacute;stica por laboratorio</b></p>      <p align="justify">El diagn&oacute;stico de FMRR se basa fundamentalmente en la sospecha cl&iacute;nica. La detecci&oacute;n de anticuerpos mediante t&eacute;cnicas de serolog&iacute;a como la inmunofluorescencia indirecta (IFI) confirma la sospecha, pero su prop&oacute;sito es de monitoreo epidemiol&oacute;gico. La confirmaci&oacute;n del diagn&oacute;stico por cualquier m&eacute;todo o t&eacute;cnica de laboratorio no debe guiar el inicio del tratamiento, sino que debe sustentarse en un cuidadoso interrogatorio y exploraci&oacute;n de signos y s&iacute;ntomas, as&iacute; como en la identificaci&oacute;n de pistas epidemiol&oacute;gicas.</p>      <p align="justify">No obstante lo anterior, algunas t&eacute;cnicas de biolog&iacute;a molecular, como la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR por sus siglas en ingl&eacute;s), han sido paulatinamente incorporadas en algunos laboratorios de microbiolog&iacute;a cl&iacute;nica, lo que ha contribuido positivamente al establecimiento del diagn&oacute;stico<sup>79</sup>. Aunque gu&iacute;as actuales<sup>4</sup> recomiendan iniciar con tratamiento emp&iacute;rico ante la presencia de un caso sospechoso, el desarrollo de pruebas moleculares m&aacute;s sensibles que puedan ser aplicadas a muestras de pacientes durante la fase aguda de la enfermedad puede mejorar la identificaci&oacute;n de casos, la puntualidad de acciones de salud p&uacute;blica despu&eacute;s de la detecci&oacute;n de un caso, y puede ayudar en los esfuerzos de vigilancia para definir mejor el espectro y la carga de las infecciones por diversas rickettsias transmitidas por garrapatas<sup>80</sup>.</p>      <p align="justify">Recientemente, por mediaci&oacute;n del CYTED (Programa Iberoamericano de Ciencia y Tecnolog&iacute;a para el Desarrollo), se cre&oacute; la Red Iberoamericana para la Investigaci&oacute;n y Control de las Enfermedades Rickettsiales (RIICER). Al igual que otras sociedades cient&iacute;ficas de EUA y Europa que han elaborado sus gu&iacute;as<sup>4,81</sup>, los miembros de la RIICER ofrecen estas gu&iacute;as consensuadas para el diagn&oacute;stico de las rickettsiosis transmitidas por garrapatas en Latinoam&eacute;rica<sup>79</sup>, mismas que recomendamos sean consultadas para una revisi&oacute;n m&aacute;s detallada del tema.</p>      <p align="left"><b>Toma de muestra</b></p>      <p align="justify">La selecci&oacute;n de las muestras depender&aacute; de cada paciente en particular y est&aacute; determinada por varios hechos, por ejemplo, la duraci&oacute;n de los signos y s&iacute;ntomas, y el tiempo de evoluci&oacute;n de la enfermedad, as&iacute; como de la disponibilidad de infraestructura y capacidades de diagn&oacute;stico. La obtenci&oacute;n de la muestra debe realizarse bajo condiciones de asepsia y, de ser posible, antes del inicio del tratamiento antibacteriano. Los espec&iacute;menes m&aacute;s adecuados para el diagn&oacute;stico de FMRR y otras fiebres manchadas, incluyen: sangre total anticoagulada con heparina, EDTA o citrato de sodio; suero; biopsia cut&aacute;nea de las p&aacute;pulas, ves&iacute;culas o escara de inoculaci&oacute;n; hisopado de la escara; y la propia garrapata. En aquellos casos donde el procesamiento de la muestra no sea de inmediato (antes de 24 horas), las muestras se deben congelar a -70&deg;C o en nitr&oacute;geno l&iacute;quido para procedimientos que involucren la recuperaci&oacute;n de los microorganismos en cultivo o a -20&deg;C para diagn&oacute;stico molecular<sup>79,81,82</sup>.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left"><b>Cultivo</b></p>      <p align="justify">El cultivo es la prueba de referencia o est&aacute;ndar de oro de los estudios microbiol&oacute;gicos. Adem&aacute;s, es indispensable para la obtenci&oacute;n de ant&iacute;genos y para estudiar la sensibilidad a los antimicrobianos. Por otro lado, es necesario para establecer una nueva especie de <i>Rickettsia</i>. No obstante esto, el aislamiento mediante cultivo celular convencional a partir de una muestra procedente de un paciente con FMRR, es un proceso muy laborioso y solamente puede ser realizado en laboratorios de referencia ya que se requiere un nivel de bioseguridad<sup>34,79</sup>.</p>      <p align="justify">Dado que los miembros de este g&eacute;nero bacteriano son bacterias intracelulares obligadas, no crecen en medios de cultivo convencionales, por lo que para su aislamiento y proliferaci&oacute;n se requiere de animales de laboratorio, huevos embrionados o l&iacute;neas celulares como Vero, HEL, L-929 o l&iacute;neas celulares de artr&oacute;podos. El crecimiento de <i>R. rickettsii</i> en estas l&iacute;neas celulares es un proceso lento y adem&aacute;s, el efecto citop&aacute;tico no es siempre visible, y en el caso de que se produzca, no es espec&iacute;fico de especie<sup>4,79</sup>. Algo importante de subrayar es que para cultivar muestras cl&iacute;nicas no se debe utilizar EDTA como anticoagulante, ya que &eacute;ste es perjudicial para las monocapas de c&eacute;lulas utilizadas en la recuperaci&oacute;n de rickettsias<sup>81</sup>.</p>      <p align="justify">En los &uacute;ltimos a&ntilde;os se ha empleado una adaptaci&oacute;n del cultivo celular tradicional denominado <i>shellvial</i> o cultivo celular r&aacute;pido en tubo cerrado. Este consiste en inocular la muestra sobre una monocapa de c&eacute;lulas susceptibles previamente crecidas sobre un portaobjetos circular y posteriormente, realizar una centrifugaci&oacute;n para facilitar la penetraci&oacute;n en las c&eacute;lulas. Esta t&eacute;cnica es m&aacute;s r&aacute;pida, eficiente (menor &aacute;rea de cultivo para una misma cantidad de bacterias en la muestra) y segura para el manipulador, ya que se trabaja en un tubo cerrado, por lo que actualmente se considera el m&eacute;todo de elecci&oacute;n para el aislamiento de <i>Rickettsia sp</i><sup>79</sup>.</p>      <p align="left"><b>Tinciones simples</b></p>      <p align="justify">El examen microsc&oacute;pico de frotis de sangre te&ntilde;idos con colorantes de tipo eosina-azul de metileno (por ejemplo, Wright o Giemsa) no es &uacute;til para el diagn&oacute;stico de la FMRR<sup>4</sup>. Cuando se trabaja con biopsias de tejido, la tinci&oacute;n de Gram no permite observar a estos microorganismos, aunque aparecen como peque&ntilde;os bacilos con las tinciones de Giemsa o Gim&eacute;nez<sup>82</sup>. No obstante esto, los procedimientos de tinci&oacute;n simple, como los mencionados anteriormente, no se consideran un procedimiento diagn&oacute;stico v&aacute;lido para FMRR.</p>      <p align="left"><b>Inmunohistoqu&iacute;mica</b></p>      <p align="justify">La inmunohistoqu&iacute;mica (IHQ) para ant&iacute;genos de <i>Rickettsia</i>, en biopsias de tejidos incluidos en parafina y fijados en formol, puede ser &uacute;til durante la fase aguda de la fiebre manchada, con valores que van hasta 100&#37; de especificidad y 70&#37; de sensibilidad, particularmente en pacientes con una erupci&oacute;n cut&aacute;nea. Aunque este m&eacute;todo se ha utilizado para diagnosticar casos no fatales de rickettsiosis, parece ser m&aacute;s &uacute;til para detectar al agente pat&oacute;geno en tejidos de necropsia como h&iacute;gado, bazo, pulm&oacute;n, coraz&oacute;n, ri&ntilde;&oacute;n, y cerebro<sup>66</sup>.</p>      <p align="justify">Debido a que las rickettsias se pueden distribuir de manera focal en el tejido, esta prueba no siempre permite la detecci&oacute;n del agente. No obstante esto, la IHQ es el procedimiento diagn&oacute;stico m&aacute;s &uacute;til para documentar la presencia de organismos en los pacientes antes de iniciar el tratamiento o dentro de las primeras 48 horas despu&eacute;s de que se ha iniciado el tratamiento antibi&oacute;tico, sobre todo cuando no hay evidencia serol&oacute;gica disponible<sup>4,81</sup>.</p>      <p align="left"><b>Serolog&iacute;a</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Los anticuerpos (Ac&#39;s) contra <i>R. rickettsii</i> no son detectables sino hasta 7-10 d&iacute;as despu&eacute;s de la aparici&oacute;n de la enfermedad. Por consiguiente, las pruebas serol&oacute;gicas tienen un valor diagn&oacute;stico limitado, es decir, cuando se realizan ensayos individuales con fines diagn&oacute;sticos un resultado negativo no excluye la posibilidad de infecci&oacute;n y un resultado positivo no necesariamente confirma la presencia de la infecci&oacute;n<sup>66</sup>. El estudio serol&oacute;gico m&aacute;s sencillo para el diagn&oacute;stico presuntivo de infecci&oacute;n por <i>Rickettsia sp.</i> es la prueba de Weil-Felix, que implica la demostraci&oacute;n de anticuerpos heter&oacute;filos a cepas de <i>Proteus mirabilis</i> (OX-19, OK-2, OX-K); sin embargo, esta prueba es negativa hasta en el 50&#37; de los casos, por lo que pr&aacute;cticamente est&aacute; en desuso<sup>66,83</sup>.</p>      <p align="justify">Entre los estudios serol&oacute;gicos, la inmunofluorescencia indirecta (IFI) es la t&eacute;cnica m&aacute;s utilizada para el diagn&oacute;stico de las rickettsiosis. IFI se basa en la detecci&oacute;n de Ac&#39;s en el suero del paciente que reaccionan con ant&iacute;genos fijados en una laminilla. Posteriormente, mediante una anti-globulina humana marcada con fluoresce&iacute;na, se pueden visualizar las bacterias mediante microscop&iacute;a de fluorescencia<sup>4</sup>. Para realizar la IFI, ese utiliza el suero del paciente, que puede mantenerse a  temperatura ambiente por corto tiempo o refrigerado durante varios d&iacute;as. En el caso de que no se vaya a procesar en las siguientes 48 horas, se debe congelar (m&iacute;nimo a -20&deg;C)<sup>79</sup>. A pesar de que este procedimiento sigue siendo la principal herramienta para el diagn&oacute;stico de infecciones rickettsiales, no ha habido un proceso de estandarizaci&oacute;n (anal&iacute;tico-cl&iacute;nico) internacional, por lo que no hay un s&oacute;lo m&eacute;todo para desarrollar la IFI ni un m&eacute;todo de referencia para evaluar su trazabilidad<sup>4</sup>.</p>      <p align="justify">Adicionalmente, la confirmaci&oacute;n de infecci&oacute;n rickettsial mediante IFI es complicada, fundamentalmente por dos hechos: (a) la respuesta inmune de un paciente infectado por <i>Rickettsia</i> puede tardar varias semanas para producir una cantidad detectable de Ac&#39;s; y (b) puede existir una prevalencia elevada de Ac&#39;s en la poblaci&oacute;n sana. Por ello, se debe llevar a cabo un an&aacute;lisis comparativo con muestras pareadas. Esto implica que es necesario obtener una muestra de suero en la fase aguda de la enfermedad (7-10 d&iacute;as de evoluci&oacute;n) y otra muestra durante la fase de convalecencia (al menos dos semanas despu&eacute;s). En estas muestras pareadas, debe detectarse un incremento m&iacute;nimo de cuatro veces del t&iacute;tulo entre la primera muestra y la obtenida en la fase de convalecencia. Si no se observa un incremento de cuatro veces en el t&iacute;tulo de anticuerpos, deber&aacute; llevarse a cabo una tercera colecci&oacute;n de muestra despu&eacute;s de 4-6 semanas<i>4,79,81</i>, pero como podr&aacute; inferirse, esto hace impr&aacute;ctica a la IFI para prop&oacute;sitos cl&iacute;nicos, pues dada la evoluci&oacute;n de la enfermedad, una proporci&oacute;n de pacientes habr&aacute; resuelto su cuadro o habr&aacute; fallecido para cuando puedan tomarse las muestras de seguimiento.</p>      <p align="justify">Por otro lado, se recomienda que el diagn&oacute;stico de una infecci&oacute;n por <i>R. conorii</i> mediante la prueba de IFI se haga con un t&iacute;tulo de anticuerpos IgG de 1:128 &oacute; de 1:64 para IgM mientras que para determinar una infecci&oacute;n producida por el resto del g&eacute;nero <i>Rickettsia</i>, es recomendable que el t&iacute;tulo de anticuerpos IgG sea de 1:64 o de 1:32 para IgM<sup>66,81,82,84</sup>. Es importante enfatizar que IFI es afectada por la presencia del factor reumatoide, por lo que se requiere realizar un proceso de inmunoabsorci&oacute;n antes de la determinaci&oacute;n de los anticuerpos espec&iacute;ficos para el g&eacute;nero <i>Rickettsia</i><sup>82</sup>. Esta limitaci&oacute;n ha llevado a se&ntilde;alar que la prueba es una mala elecci&oacute;n para el diagn&oacute;stico de rickettsiosis, pues la t&eacute;cnica no puede superar la incapacidad del paciente para generar una respuesta del tipo humoral en contra de la infecci&oacute;n bacteriana, en etapas tempranas de la enfermedad<sup>85</sup>.</p>      <p align="justify">Tambi&eacute;n se ha descrito que pacientes infectados con <i>R. africae</i> generan una respuesta humoral tard&iacute;a y requieren de 25 a 28 d&iacute;as para la seroconversi&oacute;n de IgM a IgG<sup>86</sup>. Tambi&eacute;n, el tratamiento con dicloxacilina durante siete d&iacute;as para combatir la infecci&oacute;n con <i>R. africae</i>, disminuye de manera significativa la respuesta humoral. Es posible que estos hechos ocurran igualmente en infecciones por <i>R. rickettsii</i>, por lo que se ha sugerido un tiempo de espera de cuatro semanas despu&eacute;s de la aparici&oacute;n de los primeros s&iacute;ntomas, para recolectar la muestra s&eacute;rica y analizarle<sup>4,86</sup>. Tomando una cuidadosa consideraci&oacute;n de tales caracter&iacute;sticas, se ha sugerido el uso de la IFI en &aacute;reas donde la seroprevalencia de las enfermedades rickettsiales est&aacute; claramente establecida. Asimismo, se ha propuesto que las t&eacute;cnicas que permiten la detecci&oacute;n directa de rickettsias deben ser utilizadas para la detecci&oacute;n de garrapatas infectadas, donde IFI podr&iacute;a ser de gran utilidad para detectar a este microorganismo pat&oacute;geno en la hemolinfa de los vectores<sup>82</sup>.</p>      <p align="justify">No obstante su potencial utilidad, otra limitaci&oacute;n que hay que tomar en cuenta es que la IFI no permite identificar la especie de <i>Rickettsia</i> que provoca la reactividad. Es decir, existen reacciones cruzadas entre las diferentes especies de <i>Rickettsia</i> e incluso con otros g&eacute;neros bacterianos<sup>4,79,81</sup>. Para aumentar la especificidad de la t&eacute;cnica se ha recomendado realizar ensayos de absorci&oacute;n cruzada antes de la IFI espec&iacute;fica, o utilizar diferentes ant&iacute;genos y, en funci&oacute;n de los t&iacute;tulos que se obtengan, considerar como agente causal de la infecci&oacute;n a la especie que muestre mayor reactividad<sup>79</sup>.</p>      <p align="justify">M&eacute;todos alternos al IFI son los inmunoensayos enzim&aacute;ticos (ELISA), que se est&aacute;n convirtiendo en procedimientos cada vez m&aacute;s frecuentemente utilizados en la pr&aacute;ctica. De manera an&aacute;loga a la IFI, la exactitud de los procedimientos de ELISA depende de la realizaci&oacute;n de la prueba de laboratorio, la calidad y la especificidad del ant&iacute;geno, as&iacute; como de los niveles del umbral que debe rebasar una muestra considerada como positiva. No obstante en la actualidad las pruebas de ELISA disponibles son cualitativas y no pueden ser utilizados eficazmente para monitorear incrementos o disminuciones en los t&iacute;tulos de anticuerpos<sup>4,87</sup>.</p>      <p align="left"><b>Detecci&oacute;n molecular</b></p>      <p align="justify">El desarrollo de t&eacute;cnicas de biolog&iacute;a molecular como la prueba de PCR ha permitido el diagn&oacute;stico de casos agudos de infecciones rickettsiales y la identificaci&oacute;n de nuevas especies en el mundo, utilizando protocolos que var&iacute;an en la localizaci&oacute;n gen&oacute;mica de sus iniciadores, as&iacute; como en su sensibilidad y especificidad<sup>88,89</sup>. La t&eacute;cnica de PCR puede dar resultados positivos en muestras biol&oacute;gicas tomadas entre el 2&ordm; y 4&ordm; d&iacute;a del comienzo  de s&iacute;ntomas y la respuesta se obtiene r&aacute;pidamente, en unas 24 horas. Se ha considerado que PCR es probablemente m&aacute;s &uacute;til para detectar <i>R. rickettsii</i> en una biopsia de piel o una muestra de tejido de autopsia, que en una muestra de sangre obtenida durante la fase aguda de la enfermedad, ya que t&iacute;picamente circula un bajo n&uacute;mero de rickettsias en la sangre en ausencia de enfermedad avanzada o infecci&oacute;n fulminante<sup>4</sup>. No obstante este supuesto, PCR y sus variantes como PCR cuantitativa, se han convertido en herramientas r&aacute;pidas, v&aacute;lidas y confiables para la detecci&oacute;n e identificaci&oacute;n de rickettsias en distintos tipos de muestras como sangre, paquete celular, biopsias cut&aacute;neas, LCR, exudados, raspado de escaras, e incluso en garrapatas<sup>66,79,81</sup>.</p>      <p align="justify">En la actualidad existen b&aacute;sicamente dos procesos para la identificaci&oacute;n de rickettsias: (a) la amplificaci&oacute;n por PCR y digesti&oacute;n con enzimas de restricci&oacute;n<sup>90</sup>; y (b) la amplificaci&oacute;n mediante PCR anidada y la posterior secuenciaci&oacute;n de segmentos cortos<sup>79,82</sup>. En el &uacute;ltimo de los casos se deber&aacute; llevarse a cabo una alineaci&oacute;n de secuencias, utilizando el algoritmo BLAST (acceso gratuito) del National Center for Biotechnology Information (<a href="http://blast.ncbi.nlm.nih" target="_blank">http://blast.ncbi.nlm.nih</a>. <a href="gov/Blast.cgi" target="_blank">gov/Blast.cgi</a>). Los genes m&aacute;s com&uacute;nmente utilizados para la identificaci&oacute;n de las especies de <i>Rickettsia</i> del grupo fiebre manchada son el gen <i>gltA</i>, que codifica la enzima citrato sintetasa (presente en todas la rickettsias) y los que codifican dos prote&iacute;nas de la membrana externa: OmpA (presente en todas las especies del grupo de fiebres manchadas) y OmpB (presente en todas las especies de Rickettsia, excepto <i>R. bellii</i>)<sup>79,82</sup>. En los &uacute;ltimos a&ntilde;os tambi&eacute;n se ha utilizado exitosamente la PCR en tiempo real o PCR cuantitativa para la detecci&oacute;n de rickettsias en distintas muestras cl&iacute;nicas. Esta variante es un procedimiento r&aacute;pido, espec&iacute;fico y permite la obtenci&oacute;n de resultados en menos de 1 hora para completar la identificaci&oacute;n entre especies de rickettsias pertenecientes al grupo de fiebres manchadas<sup>80</sup>.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="3"><b>PREVENCI&Oacute;N</b></font></p>      <p align="justify">La FMRR es resultado de una compleja cadena causal en donde m&uacute;ltiples eslabones interact&uacute;an unos con otros de forma din&aacute;mica. Siguiendo enfoques socioecol&oacute;gicos, como el modelo multinivel, podr&iacute;amos afirmar que m&uacute;ltiples determinantes de nivel individual (v.gr. raza, deficiencia de la enzima glucosa- 6-fosfato deshidrogenasa, edad) se interrelacionan con variables de niveles m&aacute;s complejos como la familia (v.gr. nivel educativo de los padres, pr&aacute;cticas culturales que exponen a mayor contacto con hu&eacute;spedes parasitados por garrapatas), el vecindario (v.gr. nivel de urbanizaci&oacute;n, n&uacute;mero de hospederos), la localidad (v.gr. programas y pol&iacute;ticas para el control urbano y silvestre de hospederos como perros, caballos, capibaras), e incluso m&aacute;s globales (v.gr. el calentamiento global, la humedad ambiental). Toda esta mir&iacute;ada de factores, conforman un escenario que desaf&iacute;a a la sociedad, gobiernos y sistemas sanitarios, y demanda que se pongan en pr&aacute;ctica intervenciones multidisciplinarias e integradas para prevenir y controlar los impactos negativos que produce el padecimiento. Las siguientes son algunas intervenciones, basadas en el modelo de la historia natural de la enfermedad, que contribuir&iacute;an a mitigar el efecto de la FMRR a nivel poblacional.</p>      <p align="left"><b>Prevenci&oacute;n primaria</b></p>      <p align="justify">Al momento, las mejores estrategias preventivas de nivel primario para evitar la infecci&oacute;n por <i>R. rickettsii</i> son: (1) evitar las mordeduras de garrapatas, y (2) si se ha tenido contacto con garrapatas, removerlas r&aacute;pida y correctamente del cuerpo, sin tocarlas directamente con los dedos. En este sentido, las personas deben evitar el contacto directo con perros u otros animales potencialmente parasitados, as&iacute; como los sitios en donde se sospeche haya infestaci&oacute;n por garrapatas. Es conveniente que ante posible contacto con garrapatas, se utilicen ropas de color claro que permitan su f&aacute;cil visualizaci&oacute;n. Si se sospecha contacto, debe revisarse el cuerpo meticulosamente para identificar garrapatas adheridas a la piel, pues su mordedura es indolora y usualmente no es posible percatarse de que ha ocurrido un contacto con ellas. Si se encuentra una garrapata adherida a la piel debe removerse sujet&aacute;ndola firmemente con una pinza fina (como la empleada para la depilaci&oacute;n), colocada lo m&aacute;s cercano posible a la piel y tirando r&aacute;pidamente en un solo movimiento para desprenderla, no deben emplearse remedios populares como gasolina, petr&oacute;leo, barniz de u&ntilde;as, calor local, entre otros, para removerlas del cuerpo. Es positivo el uso de repelentes a base de Dietil Metatoluamida (DEET) en concentraciones del 10 al 25&#37;, siempre que se visiten lugares en los que se sospeche infestaci&oacute;n<sup>4,61,64</sup>.</p>      <p align="justify">La limpieza del entorno domiciliario, quitando maleza y evitando la acumulaci&oacute;n de muebles sin utilizar, as&iacute; como evitar huecos en paredes y techos, y el aplanado de los pisos pueden disminuir la infestaci&oacute;n por garrapatas. Tambi&eacute;n es muy importante la desparasitaci&oacute;n frecuente de los perros que conviven cercanamente con las personas, la tenencia responsable de mascotas y campa&ntilde;as de esterilizaci&oacute;n y control de perros callejeros. Adem&aacute;s, es esencial una mejor informaci&oacute;n de la comunidad m&eacute;dica y la poblaci&oacute;n  general acerca de las caracter&iacute;sticas de la enfermedad, enfatizando la importancia de percibir correctamente el riesgo de exposici&oacute;n a garrapatas, lo que puede ayudar a disminuir su transmisi&oacute;n<sup>4,64</sup>.</p>      <p align="left"><b>Prevenci&oacute;n secundaria</b></p>      <p align="justify">El diagn&oacute;stico temprano y el inicio oportuno (&lt; 5 d&iacute;as tras el inicio de s&iacute;ntomas) de doxiciclina, o cloranfenicol como alternativa antibi&oacute;tica, son las estrategias fundamentales de la prevenci&oacute;n secundaria y son fundamentales para reducir la mortalidad y complicaciones cl&iacute;nicas de las formas graves<sup>4,64,91</sup>. Como fue se&ntilde;alado con anterioridad, el diagn&oacute;stico del padecimiento puede ser dif&iacute;cil si &uacute;nicamente se consideran los datos cl&iacute;nicos y no se le vincula a datos epidemiol&oacute;gicos como la historia de contacto con garrapatas<sup>34</sup>. Deben evitarse criterios de exclusi&oacute;n geogr&aacute;fica o estacional, pues los casos puede ocurrir en cualquier lugar y &eacute;poca del a&ntilde;o; tampoco son motivo de exclusi&oacute;n la ausencia de exantema, pues hasta 40&#37; de los casos pueden ocurrir sin su presencia) ni de la huella de una mordedura de garrapata<sup>92</sup>, pues en FMRR es raro que pueda notarse con facilidad, a diferencia de otras rickettsiosis como la producida por <i>R. conorii</i>.</p>      <p align="justify">A&uacute;n con las limitaciones de la pr&aacute;ctica emp&iacute;rica, es recomendable que en pacientes que residan o procedan de &aacute;reas end&eacute;micas, en los que haya un cuadro persistente (&gt; 3d&iacute;as) de fiebre &gt;38.0 &deg;C, acompa&ntilde;ado por alguno de los siguientes signos o s&iacute;ntomas: cefalea, mialgias, dolor abdominal, v&oacute;mito, diarrea y exantema, se descarte la presencia de FMRR mediante un cuidadoso interrogatorio y exploraci&oacute;n f&iacute;sica<sup>64</sup>.</p>      <p align="justify">El inicio del tratamiento espec&iacute;fico no debe estar supeditado a la confirmaci&oacute;n por laboratorio, sea por cualquier m&eacute;todo o t&eacute;cnica, y debe sustentarse totalmente en la sospecha emp&iacute;rica de la enfermedad<sup>4,64,93</sup>. Esto porque el laboratorio es uno de los eslabones m&aacute;s d&eacute;biles para atender el problema y no existe al momento, ninguna t&eacute;cnica que se encuentre ampliamente disponible ni con la suficiente rapidez para ayudar a prop&oacute;sitos cl&iacute;nicos<sup>41</sup>. Tampoco hay evidencia cient&iacute;fica que sustente la renuencia m&eacute;dica para indicar doxiciclina a ni&ntilde;os e incluso mujeres embarazadas, y el antibi&oacute;tico debe iniciarse sin dilaci&oacute;n<sup>76</sup>, pues el riesgo de muerte y otros resultados fatales se incrementa con el retraso de la doxiciclina<sup>4,34,69,71,73</sup>.</p>      <p align="left"><b>Prevenci&oacute;n terciaria</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">La rehabilitaci&oacute;n de complicaciones vasculares severas que requieran amputaci&oacute;n, es una de las principales acciones en este nivel de prevenci&oacute;n. Pero tambi&eacute;n debe considerarse que en algunos sobrevivientes de cuadros graves, secuelas neurol&oacute;gicas que provoquen deterioro motor como dificultad para la marcha, la expresi&oacute;n oral y la degluci&oacute;n deben recibir soporte especializado. Aunque menos com&uacute;n, tambi&eacute;n debe buscarse apoyo para los pacientes que sufran sordera como consecuencia de la enfermedad<sup>4,64,78</sup>.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>      <p align="justify">La fiebre manchada por <i>Rickettsia rickettsii</i> es un problema de salud p&uacute;blica en varios pa&iacute;ses del continente Americano. Aunque es una enfermedad de relevancia m&eacute;dica debido a su potencial letalidad, es un padecimiento prevenible y tratable mediante intervenciones de diversa complejidad, casi todas accesibles a la mayor&iacute;a de las naciones de la regi&oacute;n. Debido a la interacci&oacute;n de m&uacute;ltiples factores de orden biol&oacute;gico, ecol&oacute;gico y social, su abordaje requiere de enfoques integrados, centrados en las siguientes l&iacute;neas estrat&eacute;gicas:</p>  <ol> 	    <li>Inclusi&oacute;n de la FMRR en la agenda regional de prioridades asistenciales y de investigaci&oacute;n, con la asignaci&oacute;n de recursos financieros para la implementaci&oacute;n de programas espec&iacute;ficos de prevenci&oacute;n y control</li>         <li>Mejoramiento de la capacidad diagn&oacute;stica y la vigilancia epidemiol&oacute;gica</li>         <li>Fortalecimiento de la capacitaci&oacute;n del personal de salud</li>         <li>Control poblacional del vector y tenencia responsable de mascotas</li>         <li>Promoci&oacute;n de la salud y prevenci&oacute;n de la enfermedad</li>         <li>Fomento de la investigaci&oacute;n regional</li>     </ol>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Es claro que existe la necesidad de fortalecer la educaci&oacute;n m&eacute;dica y cambiar la pr&aacute;ctica cl&iacute;nica en la FMRR. Tambi&eacute;n debe reconocerse que la incidencia de la enfermedad puede continuar aumentando en la regi&oacute;n debido a que diferentes fen&oacute;menos sociales y ecol&oacute;gicos contin&uacute;an desafiando a los sistemas de salud y otras organizaciones sociales, de modo que su ocurrencia actual constituye un llamado urgente para la acci&oacute;n regional.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>CONFLICTOS DE INTER&Eacute;S</b></font></p>      <p align="justify">Los autores declaran no tener conflictos de inter&eacute;s de ning&uacute;n tipo.</p>  <hr>      <p align="justify"><a href="#_ref1" name="_suis1"><sup>1</sup></a> En el resto del manuscrito nos referiremos a Fiebre Manchada por <i>Rickettsia rickettsii</i> (CIE 10ma Rev. A77.0) para estandarizar las diversas denominaciones regionales que recibe como Fiebre Manchada de las Monta&ntilde;as Rocosas, Fiebre Manchada de Brasil, Fiebre Manchada de Sao Paulo, Fiebre Manchada de Tobia, Fiebre Manchada del Choix, entre varias otras.</p>   <hr>      <p align="center"><font size="3"><b>REFERENCIAS</b></font></p>      <!-- ref --><p align="justify">1. Childs JE, Paddock CD. Rocky Mountain spotted fever. In: Rickettsial diseases (Infectious Diseases and Therapy). Ed. Raoult D, Parola P. Informa Health Care. New York, USA. 2007: p.97-116.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0121-0807201500030000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">2. Labruna MB, Mattar S, Nava S, Bermudez S, Venzal JM, Dolz G, et al. Rickettsioses in Latin America, Caribbean, Spain and Portugal. Rev MVZ C&oacute;rdoba. 2011; 16(2): 2435-2457.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0121-0807201500030000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">3. Abarca K, Oteo J. Aproximaci&oacute;n cl&iacute;nica y principales rickettsiosis transmitidas por garrapatas presentes en Latino Am&eacute;rica. Rev Chilena Infectol. 2014; 31(5): 569-576.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0121-0807201500030000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">4. Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Diagnosis and Management of Tickborne Rickettsial Diseases: Rocky Mountain spotted fever, Ehrlichioses, and Anaplasmosis. United States. A Practical Guide for Physicians and Other Health- Care and Public Health Professionals. MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 2006; 55(RR-4): 1-28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0121-0807201500030000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">5. Walker DH, Paddock CD, Dumler JS. Emerging and re-emerging tick-transmitted rickettsial and ehrlichial infections. Med Clin North Am. 2008; 92(6): 1345-1361.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0121-0807201500030000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">6. Goddard J. Ticks. In: Physician&#39;s guide to arthropods of medical importance. 5th Ed. USA: Taylor &amp; Francis Group; 2007.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0121-0807201500030000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">7. Szab&oacute; MPJ, Pinter A, Labruna MB. Ecology, biology and distribution of spotted fever tick vectors in Brazil. Front Cell Infect Microbiol. 2013; 3(27): 1-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0121-0807201500030000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">8. Dalton MJ, Clarke MJ, Holman RC, Krebs JW, Fishbein DB, Olson JG, et al. National surveillance for Rocky Mountain spotted fever, 1981-1992: epidemiologic summary and evaluation of risk factors for fatal outcome. Am J Trop Med Hyg. 1995; 52: 405-413.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0121-0807201500030000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">9. Treadwell TA, Holman RC, Clarke MJ, Krebs JW, Paddock CD, Childs JE. Rocky Mountain spotted fever in the United States, 1993-1996. Am J Trop Med Hyg. 2000; 63(1,2): 21-26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0121-0807201500030000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">10. Openshaw JJ, Swerdlow DL, Krebs JW, Holman RC, Mandel E, Harvey A, et al. Rocky Mountain spotted fever in the United States, 2000-2007: interpreting contemporary increases in incidence. Am J Trop Med Hyg. 2010; 83(1): 174-182.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0121-0807201500030000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">11. Angerami RN, Resende MR, Feltrin AFC, Katz G, Nascimento EM, Stucchi RSB et al. Brazilian spotted fever: a case series from an endemic area in southeastern Brazil. Clinical aspects. Ann NY Acad Sci. 2006; 1078: 252-254.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0121-0807201500030000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">12. Demma LJ, Traeger MS, Nicholson WL, Paddock CD, Blau DM, Eremeeva ME, et al. Rocky Mountain spotted fever from an unexpected tick vector in Arizona. N Engl J Med. 2005; 353: 587-594.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0121-0807201500030000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">13. Su&aacute;rez R, Beltr&aacute;n EM, S&aacute;nchez T. El sentido del riesgo desde la antropolog&iacute;a m&eacute;dica: consonancias y disonancias con la salud p&uacute;blica en dos enfermedades transmisibles. Antipoda Rev Antropol Arqueol. 2006; 3: 123-154.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S0121-0807201500030000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">14. &Aacute;lvarez-Hern&aacute;ndez G, Contreras-Soto JJ. Letalidad por Fiebre Manchada por <i>Rickettsia rickettsii</i> en pacientes de un hospital pedi&aacute;trico del estado de Sonora, 2004-2012 &#91;Carta al Editor&#93;. Salud P&uacute;blica Mex. 2013; 55 (2): 151-152.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000154&pid=S0121-0807201500030000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">15. Mosites E, Carpenter LR, McElroy K, Lancaster MJ, Ngo TH, McQuiston JH, et al. Knowledge, attitudes, and practices regarding Rocky Mountain spotted fever among healthcare providers, Tennessee, 2009. Am J Trop Med Hyg. 2013; 88(1): 162-166.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000156&pid=S0121-0807201500030000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">16. Zientek J, Dahlgreen SF, McQuiston JH, Regan J. Self-reported treatment practices by healthcare providers could lead to death from Rocky Mountain spotted fever. J Pediatr. 2014; 164: 416-418.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000158&pid=S0121-0807201500030000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">17. Wu JJ, Huang DB, Pang KR, Tyring SK. Rickettsial infections around the world, Part 1: Pathophysiology and the Spotted Fever Group. J Cutan Med Surg. 2005; 9(2): 54-62.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000160&pid=S0121-0807201500030000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">18. Childs JE, Paddock CD. Passive surveillance as an instrument to identify risk factors for fatal Rocky Mountain spotted fever: is there more to learn? Am J Trop Med Hyg. 2002; 66(5): 450-457.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000162&pid=S0121-0807201500030000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">19. Paddock CD, Holman RC, Krebs JW, Childs JE. Assessing the magnitude of fatal Rocky Mountain spotted fever in the United States: comparison of two national data sources. Am J Trop Med Hyg. 2002; 67(4): 349-354.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000164&pid=S0121-0807201500030000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">20. Centers for Disease Control and Prevention. Rocky Mountain spotted fever: statistics and epidemiology.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000166&pid=S0121-0807201500030000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">21. Holman RC, McQuiston JH, Haberling DL, Cheek JE. Increasing incidence of Rocky Mountain spotted fever among the American Indian population in the United States. Am J Trop Med Hyg. 2009; 80(4): 601-605.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000168&pid=S0121-0807201500030000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">22. Folkema AM, Holman RC, McQuiston JH, Cheek JE. Trends in clinical diagnoses of Rocky Mountain spotted fever among American Indians, 2001-2008. Am J Trop Med Hyg. 2012; 86(1): 152-158.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000170&pid=S0121-0807201500030000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">23. de Lemos ERS, Alvarenga FB, Cintra ML, Ramos MC, Paddock CD, Ferebee TL et al. Spotted fever in Brazil, a serological study and description of clinical cases in an endemic area of the state of Sao Paulo. Am J Trop Med Hyg. 2001; 65(4): 329-334.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000172&pid=S0121-0807201500030000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">24. Del Fiol FS, Junqueira FM, Rocha MCP, Toledo MI, Barberato Filho S. A febre maculosa no Brasil. Rev  Panam Salud Publica. 2010; 27(6): 461-466.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000174&pid=S0121-0807201500030000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">25. Angerami RN, Resende MR, Feltrin AFC, Katz G, Nascimento EM, Stucchi RSB et al. Brazilian spotted fever: a case series from an endemic area in southeastern Brazil. Epidemiological aspects. Ann NY Acad Sci. 2006; 1078:170-172.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000176&pid=S0121-0807201500030000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">26. Amancio FF, Amorim VD, Chamone TL, de Brito MG, Calic SB, Leite AC, et al. Epidemiological characteristics of Brazilian spotted fever in Minas Gerais, Brazil, 2000-2008. Cad Sa&uacute;de P&uacute;blica. 2011; 27(10): 1969-1976.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000178&pid=S0121-0807201500030000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">27. Angerami RN, Morais EO, Katz G, da Silva LJ. Brazilian spotted fever in the paediatric age-segment in the State of Sao Paulo, southeastern Brazil, 2003- 2006. Clin Microbiol Infect. 2009; 15 (suppl 2): 205-206.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000180&pid=S0121-0807201500030000200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">28. Bustamante ME, Varela G. Una nueva rickettsiosis en M&eacute;xico. Resistencia de la fiebre manchada en los estados de Sinaloa y Sonora. Rev Inst Saud Enf Trop. 1943; 4:189:211.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000182&pid=S0121-0807201500030000200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">29. G&oacute;mez-Rivera N, &Aacute;lvarez-Hern&aacute;ndez G, Garc&iacute;a- Z&aacute;rate MG, Fonseca-Chon I, Villalobos-Garc&iacute;a L, Cano-Rangel MA. Fiebre Manchada de las Monta&ntilde;as Rocosas: experiencia hospitalaria. Rev Mex Pediatr. 2013; 80(6): 227-231.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000184&pid=S0121-0807201500030000200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">30. De Lara-Huerta F, C&aacute;rdenas-Barrag&aacute;n R. Fiebre Manchada de las Monta&ntilde;as Rocosas en pediatr&iacute;a. Revisi&oacute;n cl&iacute;nica de una serie de 115 casos. Rev Enf Infec Pediatr. 2008; 22(85): 4-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000186&pid=S0121-0807201500030000200030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">31. Zavala-Castro JE, Dzul-Rosado KR, Arias-Le&oacute;n JJ, Walker D, Zavala-Vel&aacute;zquez JE. An increase in human cases of spotted fever rickettsiosis in Yucatan, Mexico, involving children. Am J Trop Med Hyg. 2008; 79(6): 907-910.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000188&pid=S0121-0807201500030000200031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">32. Secretar&iacute;a de Salud. Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiol&oacute;gica. Bolet&iacute;n Epidemiol&oacute;gico &quot;Actualizaci&oacute;n en la vigilancia epidemiol&oacute;gica de <i>Rickettsiosis</i>&quot;. Secretar&iacute;a de Salud, M&eacute;xico. 2010; 27(6): 1-4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000190&pid=S0121-0807201500030000200032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">33. Secretar&iacute;a de Salud. Panorama Nacional de la fiebre manchada por <i>Rickettsia rickettsii</i> y las estrategias para su prevenci&oacute;n y control. Programa de Acci&oacute;n Espec&iacute;fico (PAE) para la prevenci&oacute;n y control de las <i>Rickettsiosis</i> 2013-2018. Secretar&iacute;a de Salud, M&eacute;xico; 2015.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000192&pid=S0121-0807201500030000200033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">34. Alvarez-Hernandez G, Murillo-Benitez C, Candia- Plata MC, Moro M. Clinical profile and predictors of fatal Rocky Mountain spotted fever in children from Sonora, Mexico. Pediatr Infect Dis J. 2015; 34(2): 125-130.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000194&pid=S0121-0807201500030000200034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">35. Hidalgo L, Orejuela M, Fuya P, Carrillo P, Hern&aacute;ndez J, Parra E, et al. Rocky Mountain Spotted Fever, Colombia. Emerg Infect Dis. 2007;13(7): 1058- 1060.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000196&pid=S0121-0807201500030000200035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">36. Paddock CD, Fernandez S, Echenique GA, Sumner JW, Reeves WK, Zaki SR et al. Rocky Mountain spotted fever in Argentina. Am J Trop Med Hyg. 2008; 78(4): 687-692.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000198&pid=S0121-0807201500030000200036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">37. Forshey BM, Stewart A, Morrison AC, Galvez H, Rocha C, Astete H, et al. Epidemiology of spotted fever group and typhus group rickettsial infection in the Amazon Basin of Peru. Am J Trop Med Hyg. 2010; 82(4): 683-690.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000200&pid=S0121-0807201500030000200037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">38. Estripeaut D, Arambur&uacute; MG, S&aacute;ez-Llorens X, Thompson HA, Dasch GA, Paddock CD, et al. Rocky Mountain spotted fever, Panam&aacute;. Emerg Infect Dis. 2007; 13(11): 1763-1765.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000202&pid=S0121-0807201500030000200038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">39. Tribaldos M, Zaldivar Y, Bermudez S, Samudio F, Mendoza Y, Martinez AA et al. Rocky Mountain spotted fever in Panama: a cluster description. J Infect Dev Ctries. 2011; 5(10): 737-741.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000204&pid=S0121-0807201500030000200039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">40. Arg&uuml;ello AP, Hun L, Rivera P, Taylor L. Case report: a fatal urban case of Rocky Mountain spotted fever presenting an eschar in San Jos&eacute;, Costa Rica. Am J Trop Med Hyg. 2012; 87(2): 345-348.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000206&pid=S0121-0807201500030000200040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">41. Dumler JS, Walker DH. Rocky Mountain spotted fever - changing ecology and persisting virulence. N Engl J Med. 2005; 353(6): 551-553.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000208&pid=S0121-0807201500030000200041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">42. Dantas-Torres F. Biology and ecology of the brown dog tick, <i>Rhipicephalus sanguineus</i>. Parasites Vectors. 2010; 3: 26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000210&pid=S0121-0807201500030000200042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">43. McQuiston JH, Guerra MA, Watts MR, Lawaczeck E, Levy C, Nicholson WL, et al. Evidence of exposure to spotted fever group <i>Rickettsiae</i> among Arizona dogs outside a previously documented outbreak area. Zoonoses Public Health. 2011; 58: 85-92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000212&pid=S0121-0807201500030000200043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">44. Labruna M. Ecology of <i>Rickettsia</i> in South America. Ann NY Acad Sci. 2009; 1166: 156-166.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000214&pid=S0121-0807201500030000200044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">45. Parola P, Socolovschi C, Jeanjean L, Bitam I, Fournier PE, Sotto A, et al. Warmer weather linked to tick attack and emergence of severe rickettssioses. PLoS Negl Trop Dis. 2008; 2(11): e38.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000216&pid=S0121-0807201500030000200045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">46. Nicholson WL, Paddock CD, Demma L, Traeger M, Johnson B, Dickson J, et al. Rocky Mountain spotted fever in Arizona: documentation of heavy environmental infestation of <i>Rhipicephalus sanguineus</i> at an endemic site. Ann NY Acad Sci. 2006; 1078: 338-341.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000218&pid=S0121-0807201500030000200046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">47. S&uuml;ss J, Klaus C, Gerstengarben FW, Werner FC. What makes ticks tick? Climate change, ticks, and tick-borne diseases. J Trav Med. 2008; 15(1):39-45.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000220&pid=S0121-0807201500030000200047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">48. Anderson JF, Magnarelli LA. Biology of ticks. Infect Dis Clin N Am. 2008; 22: 195-215.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000222&pid=S0121-0807201500030000200048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">49. Drexler N, Miller M, Gerding J, Todd S, Adams L, Dahlgreen FS, et al. Community-based control of  the brown dog tick in a region with high rates of Rocky Mountain spotted fever, 2012-2013. PLoS ONE. 2014; 9(12): e112368.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000224&pid=S0121-0807201500030000200049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">50. Azad AF, Beard CB. Rickettsial pathogens and their arthropod vectors. Emerg Infect Dis. 1998; 4(2):179-186.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000226&pid=S0121-0807201500030000200050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">51. Silverman DJ, Wisseman CL, Jr., Waddell AD, Jones M. External layers of <i>Rickettsia prowazekii</i> and <i>Rickettsia rickettsii</i>: occurrence of a slime layer. Infect Immunity. 1978; 22(1): 233-246.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000228&pid=S0121-0807201500030000200051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">52. Silverman DJ, Wisseman CL, Jr. Comparative ultrastructural study on the cell envelopes envelops of <i>Rickettsia prowazekii</i>, <i>Rickettsia rickettsii</i>, and <i>Rickettsia tsutsugamushi</i>. Infect Immunity. 1978; 21(3): 1020-1023.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000230&pid=S0121-0807201500030000200052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">53. Walker DH. Rickettsiae. 4 ed. Galveston, Texas, USA: Medical Microbiology; 1996.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000232&pid=S0121-0807201500030000200053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">54. Walker DH, Valbuena GA, Olano JP. Pathogenic mechanisms of diseases caused by Rickettsia. Ann NY Acad Sci. 2003; 990: 1-11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000234&pid=S0121-0807201500030000200054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">55. Rydkina E, Sahni A, Silverman DJ, Sahni SK. <i>Rickettsia rickettsii</i> infection of cultured human endothelial cells induces heme oxygenase 1 expression. Infect Immunity. 2002; 70(8): 4045- 4052.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000236&pid=S0121-0807201500030000200055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">56. Kao GF, Evancho CD, Ioffe O, Lowitt MH, Dumler JS. Cutaneous histopathology of Rocky Mountain spotted fever. J Cutan Pathol. 1997; 24(10): 604-610.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000238&pid=S0121-0807201500030000200056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">57. Woods ME, Olano JP. Host defenses to <i>Rickettsia rickettsii</i> infection contribute to increased microvascular permeability in human cerebral endothelial cells. J Clin Immunol. 2008; 28(2): 174-185.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000240&pid=S0121-0807201500030000200057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">58. Heinzen RA, Grieshaber SS, Van Kirk LS, Devin CJ. Dynamics of actin-based movement by <i>Rickettsia rickettsii</i> in vero cells. Infect Immunity. 1999; 67(8): 4201-4207.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000242&pid=S0121-0807201500030000200058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">59. Van Kirk LS, Hayes SF, Heinzen RA. Ultrastructure of <i>Rickettsia rickettsii</i> actin tails and localization of cytoskeletal proteins. Infect Immunity. 2000; 68(8): 4706-4713.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000244&pid=S0121-0807201500030000200059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">60. Sporn LA, Shi RJ, Lawrence SO, Silverman DJ, Marder VJ. <i>Rickettsia rickettsii</i> infection of cultured endothelial cells induces release of large von Willebrand factor multimers from Weibel-Palade bodies. Blood. 1991; 78(10): 2595-2602.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000246&pid=S0121-0807201500030000200060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">61. Chen LF, Sexton DJ. What&#39;s new in Rocky Mountain spotted fever?. Infect Dis Clin N Am. 2008; 22: 415-432.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000248&pid=S0121-0807201500030000200061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">62. Woods CR. Rocky Mountain spotted fever in children. Pediatr Clin N Am. 2013; 60: 455-470.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000250&pid=S0121-0807201500030000200062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">63. Kulkarni A. Childhood rickettsiosis. Indian J Pediatr. 2010; 78: 81-87.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000252&pid=S0121-0807201500030000200063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">64. Secretar&iacute;a de Salud. Gu&iacute;a de pr&aacute;ctica cl&iacute;nica &quot;Prevenci&oacute;n, diagn&oacute;stico y tratamiento de la fiebre manchada por <i>Rickettsia rickettsii</i> en poblaci&oacute;n pedi&aacute;trica y adulta en el primer y segundo nivel de atenci&oacute;n&quot;. Secretar&iacute;a de Salud. M&eacute;xico; 2013.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000254&pid=S0121-0807201500030000200064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">65. Helmick CG, Bernard KW, D&#39;Angelo LJ. Rocky Mountain spotted fever: clinical, laboratory and epidemiological features of 262 cases. J Infect Dis. 1984; 150(4): 480-488.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000256&pid=S0121-0807201500030000200065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">66. Dantas-Torres F. Rocky Mountain spotted fever. Lancet Infect Dis. 2007; 7: 724-732.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000258&pid=S0121-0807201500030000200066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">67. Mart&iacute;nez-Medina MA, &Aacute;lvarez-Hern&aacute;ndez G, Rojas-Guerra MG, Padilla-Zamudio JG. Fiebre manchada de las Monta&ntilde;as Rocosas en ni&ntilde;os. Consideraciones cl&iacute;nicas y epidemiol&oacute;gicas. Gac Med Mex. 2007; 143: 137-140.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000260&pid=S0121-0807201500030000200067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">68. Cunha BA. Clinical features of Rocky Mountain spotted fever. Lancet. 2008; 8: 143-144.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000262&pid=S0121-0807201500030000200068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">69. Buckingham SC, Marshall GS, Schutze GE, Woods CR, Jackson MA, Patterson LER, et al. Clinical and laboratory features, hospital course, and outcome of Rocky Mountain spotted fever in children. J Pediatr. 2007; 150: 180-184.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000264&pid=S0121-0807201500030000200069&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">70. Conlon PJ, Procop GW, Fowler V, Eloubeidi MA, Smith SR, Sexton DJ. Predictors of prognosis and risk of acute renal failure in patients with Rocky Mountain spotted fever. Am J Med. 1996; 101: 621-626.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000266&pid=S0121-0807201500030000200070&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">71. Holman RC, Paddock CD, Curns AT, Krebs JW, McQuiston JH, Childs JE. Analysis of risk factors for fatal Rocky Mountain spotted fever: evidence for superiority of tetracyclines for therapy. J Infect Dis. 2001; 184: 1437-1444.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000268&pid=S0121-0807201500030000200071&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">72. Walker DH, Mattern WD. Acute renal failure in Rocky Mountain spotted fever. Arch Intern Med. 1979; 139: 443-448.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000270&pid=S0121-0807201500030000200072&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">73. Buckingham SC. Tick-borne Infections in Children: epidemiology, clinical manifestations and optimal management strategies. Pediatr Drugs. 2005; 7(3): 163-176.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000272&pid=S0121-0807201500030000200073&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">74. Razzaq S, Schutze GE. Rocky Mountain spotted fever: A physician&#39;s challenge. Pediatr Rev. 2005; 26(4): 125-130.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000274&pid=S0121-0807201500030000200074&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">75. Alvarez G, Rosales C, Sepulveda R. Rocky mountain spotted fever, a reemerging disease in Arizona and Sonora - Case study. J Case Rep Stud. 2014; 1(6): 601.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000276&pid=S0121-0807201500030000200075&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">76. Todd SR, Dahlgreen FS, Traeger MS, Beltr&aacute;n- Aguilar ED, Marianos DW, Hamilton C, et al. No visible dental staining in children treated with doxycycline for suspected Rocky Mountain spotted fever. J Pediatr. 2015; 166(5): 1246-1251.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000278&pid=S0121-0807201500030000200076&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">77. Ripoll CM, Remodegui CE, Ordo&ntilde;ez G, Arazamendi R, Fusaro H, Hyman MJ, et al. Evidence of rickettsial spotted fever and ehrlichial infections in a subtropical territory of Jujuy, Argentina. Am J Trop Med Hyg. 1999; 61: 350-354.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000280&pid=S0121-0807201500030000200077&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">78. Sexton DJ. Acute hearing loss and rickettsial diseases &#91;Letter&#93;. Clin Infect Dis. 2006; 42: 1506.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000282&pid=S0121-0807201500030000200078&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">79. Oteo JA, Nava S, Sousa RD, Mattar S, Venzal JM, Abarca K, et al. Gu&iacute;as Latinoamericanas de la RIICER para el diagn&oacute;stico de las rickettsiosis transmitidas por garrapatas. Rev Chilena Infectol. 2014; 31(1): 54-65.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000284&pid=S0121-0807201500030000200079&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">80. Kato CY, Chung IH, Robinson LK, Austin AL, Dasch AG, Massung RF. Assessment of Real-Time PCR assay for detection of <i>Rickettsia spp.</i> and <i>Rickettsia rickettsii</i> in banked clinical samples. J Clin Microbiol. 2013; 51(1): 314-317.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000286&pid=S0121-0807201500030000200080&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">81. Brouqui P, Bacellar F, Baranton G, Birtles RJ, Bjo&euml;rsdorff A, Blanco JR, et al. Guidelines for the diagnosis of tick-borne bacterial diseases in Europe. Clin Microbiol Infect. 2004; 10(12): 1108-1132.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000288&pid=S0121-0807201500030000200081&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">82. La Scola B, Raoult D. Laboratory diagnosis of rickettsioses: current approaches to diagnosis of old and new rickettsial diseases. J Clin Microbiol. 1997; 35(11): 2715-2727.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000290&pid=S0121-0807201500030000200082&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">83. Cowan G. Rickettsial diseases: the typhus group of fevers - a review. Postgrad Med J. 2000; 76: 269- 272.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000292&pid=S0121-0807201500030000200083&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">84. Lacz NL, Schwartz RA, Kapila R. Rocky Mountain Spotted Fever. J Eur Acad Dermatol Venereal. 2006; 20(4): 411-417.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000294&pid=S0121-0807201500030000200084&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">85. Dong J, Olano JP, McBride JW, Walker DH. Emerging pathogens: challenges and successes of molecular diagnostics. J Mol Diagnos. 2008; 10(3): 185-197.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000296&pid=S0121-0807201500030000200085&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">86. Fournier PE, Jensenius M, Laferl H, Vene S, Raoult D. Kinetics of antibody responses in <i>Rickettsia africae</i> and <i>Rickettsia conorii</i> infections. Clin Diagn Lab Immunol. 2002; 9(2): 324-328.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000298&pid=S0121-0807201500030000200086&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">87. Kowalczewska M, Vellaiswamy M, Nappez C, Vincentelli R, Scola BL, Raoult D. Protein candidates for the serodiagnosis of rickettsioses. FEMS Immunol Med Microbiol. 2012; 64(1): 130-133.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000300&pid=S0121-0807201500030000200087&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">88. Bouyer DH. Avances en el diagn&oacute;stico de la rickettsiosis en las Am&eacute;ricas. En: Consulta OPS/ OMS de expertos sobre rickettsiosis en las Am&eacute;ricas. Informe final. Organizaci&oacute;n Panamericana de la Salud. Washington, USA, 2004: 35-42.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000302&pid=S0121-0807201500030000200088&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">89. De Lemos-Sampaio LE. Investigaci&oacute;n sobre Rickettsiosis: Diagn&oacute;stico y avances. En: Consulta OPS/OMS de expertos sobre rickettsiosis en las Am&eacute;ricas. Informe final. Organizaci&oacute;n Panamericana de la Salud. Washington, USA, 2004: 33-34.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000304&pid=S0121-0807201500030000200089&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">90. Regnery RL, Spruill CL, Plikaytis BD. Genomic identification of rickettsiae and estimation of intraspecies sequence divergence for portions of two rickettsial genes. J. Bacteriol. 1991; 173: 1576- 1589.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000306&pid=S0121-0807201500030000200090&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">91. Centers for Disease Prevention and Control. Consequences of Delayed Diagnosis of Rocky Mountain spotted fever in children-West Virginia, Michigan, Tennessee, and Oklahoma, May-July 2000. MMWR. 2000; 49: 885-888.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000308&pid=S0121-0807201500030000200091&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">92. Masters EJ, Olson GS, Weiner SJ, Paddock CD. Rocky Mountain spotted fever. A clinician&#39;s dilemma. Arch Intern Med. 2003; 163: 769-774.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000310&pid=S0121-0807201500030000200092&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">93. Minniear TD, Buckingham SC. Managing Rocky Mountain spotted fever. Expert Rev Anti Infect Ther. 2009; 7(9): 1131-1137.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000312&pid=S0121-0807201500030000200093&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>  <hr>  </font>      ]]></body><back>
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