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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación del efecto citotóxico de una resina dental a base de siloranos sobre fibroblastos L929]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: The resins dental based on siloranes, are the result of chemical bonding between siloxanes and oxiranes. In the process of evolution of the resins, they have changed their formulations to optimize their physical, mechanical and aesthetic properties. However have problems as polymerization shrinkage, allergic and toxicological problems. Objective: determine the potential cytotoxic effect of siloranes based resins on cell viability in cultured fibroblast line L929. Methodology: The exposure of mouse L929 fibroblasts to commercial dental resins based on either, methacrylate Filtek P60 or silorane Filtek P90 for three curing times was assessed throughout 6 days. Its effect on the cell viability was determined by vital exclusion tests, electron micrographs and ionic composition (Mg, Na, K and Ca) by ESEM/EDAX. Results: The dental resin Filtek p90 displayed a higher cytotoxic effect for prolonged curing times (20 seconds or more) than the resin Filtek P60. Moreover, such an effect was stronger at 20 seconds of curing, as long as the concentration of Ca and K on the cell&#39;s surface were the more affected. Conclusions: The dental resin Filtek p90 exerts a relatively low cytotoxic effect on L929 fibroblast cells (p < 0.01), and then, its use can be considered biologically safe in practical dentistry but a prolonged curing time of the silorane-based resin could significantly affect the viability of dental tissues]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[citotoxicidad]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[   <font size="2" face="Verdana">      <p align="left"><b>DOI:</b> <a href="http://dx.doi.org/10.18273/revsal.v48n1-2016008" target="_blank">http://dx.doi.org/10.18273/revsal.v48n1-2016008</a></p>      <p align="center"><font size="4"><b>Evaluaci&oacute;n del efecto citot&oacute;xico    <br> de una resina dental a base de    <br> siloranos sobre fibroblastos L929</b></font></p>      <p align="center">Milena Guerrero F.<sup>1</sup>, Claudia X. Maya C.<sup>1</sup>, Maricela Vallejo L.<sup>1</sup></p> 	     <p align="left">1. Universidad Cooperativa de Colombia, Pasto, Colombia    <br> <b>Correspondencia:</b> Maricela Vallejo Labrada. Direcci&oacute;n: Facultad de Odontolog&iacute;a, Universidad Cooperativa de Colombia, calle 18    <br> No.47-150, piso 1 bloque A. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:maricela.vallejo@campusucc.edu.co">maricela.vallejo@campusucc.edu.co</a>. Tel&eacute;fono: +057 2-7336706.    <br> <b>Recibido:</b> Enero 1 de 2015 <b>Aprobado:</b> Septiembre 1 de 2015</p>  <hr>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>Forma de citar:</b> Guerrero Fl&oacute;rez M, Maya Cer&oacute;n CX, Vallejo Labrada M. Evaluaci&oacute;n del efecto citot&oacute;xico de una resina dental a base de siloranos sobre fibroblastos L929. Rev Univ Ind Santander Salud. 2016; 48(1): 71-80.</p>  <hr>      <p align="center"><font size="3"><b>RESUMEN</b></font></p> 	     <p align="justify"><b>Introducci&oacute;n:</b> Las resinas dentales basadas en siloranos, son el resultado de la uni&oacute;n qu&iacute;mica de siloxanos y oxiranos. Dentro del proceso de evoluci&oacute;n de las resinas, se han modificado sus formulaciones para optimizar sus propiedades f&iacute;sicas, mec&aacute;nicas y est&eacute;ticas. Sin embargo, a&uacute;n presentan problemas como la contracci&oacute;n de polimerizaci&oacute;n, problemas al&eacute;rgicos y toxicol&oacute;gicos. <b>Objetivo:</b>  Determinar el potencial efecto citot&oacute;xico de las resinas a base de siloranos sobre la viabilidad celular en un cultivo de fibroblastos de la l&iacute;nea L929. <b>Metodolog&iacute;a:</b>  Se estudi&oacute; la exposici&oacute;n de fibroblastos de rat&oacute;n L929 a resinas dentales a base de siloranos Filtek p90 y metacrilatos Filtek p60 en tres tiempos de fotocurado durante 6 d&iacute;as. Se evalu&oacute; el efecto sobre la viabilidad celular mediante pruebas de exclusi&oacute;n vital, micrograf&iacute;as electr&oacute;nicas y composici&oacute;n elemental de superficie (Mg, Na, K y Ca) por ESEM/EDAX.  <b>Resultados:</b> La resina Filtek p90 mostr&oacute; un mayor efecto citot&oacute;xico a tiempos de fotocurado prolongados (20 segundos o m&aacute;s) respecto a la resina Filtek p60. El efecto result&oacute; m&aacute;s marcado para 20 segundos de fotocurado, ya que las concentraciones de Ca y K en la superficie celular fueron las m&aacute;s afectadas. <b>Conclusiones:</b> La resina dental Filtek p90 ejerce un efecto citot&oacute;xico relativamente bajo sobre las c&eacute;lulas de fibroblastos L929 (p &lt;0.01). Su uso en la pr&aacute;ctica odontol&oacute;gica se puede considerar bioseguro, pero un tiempo de fotocurado prolongado con la resina dental a base de siloranos puede afectar significativamente la viabilidad de los tejidos dentales.</p> 	     <p align="justify"><b>Palabras clave:</b> citotoxicidad, viabilidad celular, Fibroblastos, Microscop&iacute;a electr&oacute;nica de barrido.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>Evaluation of the cytotoxic effect of a    <br> silorane-based dental resin on fibroblasts L929</b></font></p> 		     <p align="center"><font size="3"><b>ABSTRACT</b></font></p> 	     <p align="justify"><b>Introduction:</b> The resins dental based on siloranes, are the result of chemical bonding between siloxanes and oxiranes. In the process of evolution of the resins, they have changed their formulations to optimize their physical, mechanical and aesthetic properties. However have problems as polymerization shrinkage, allergic and toxicological problems. <b>Objective:</b> determine the potential cytotoxic effect of siloranes based resins on cell viability in cultured fibroblast line L929. <b>Methodology:</b> The exposure of mouse L929 fibroblasts to commercial dental resins based on either, methacrylate Filtek P60 or silorane Filtek P90 for three curing times was assessed throughout 6 days. Its effect on the cell viability was determined by vital exclusion tests, electron micrographs and ionic composition (Mg, Na, K and Ca) by ESEM/EDAX. <b>Results:</b> The dental resin Filtek p90 displayed a higher cytotoxic effect for prolonged curing times (20 seconds or more) than the resin Filtek P60. Moreover, such an effect was stronger at 20 seconds of curing, as long as the concentration of Ca and K on the cellâ€™s surface were the more affected. <i>Conclusions:</i> The dental resin Filtek p90 exerts a relatively low cytotoxic effect on L929 fibroblast cells (p < 0.01), and then, its use can be considered biologically safe in practical dentistry but a prolonged curing time of the silorane-based resin could significantly affect the viability of dental tissues.</p> 	     <p align="justify"><b>Keywords:</b> cytotoxicity, cell viability, Fibroblast, Scanning Electron Microscopy.</p>  <hr>      <p align="center"><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Las resinas dentales compuestas han evolucionado significativamente desde que se introdujeron los materiales en la industria odontol&oacute;gica<sup>1</sup>. Las resinas compuestas disponibles en el mercado tienen una base com&uacute;n en la polimerizaci&oacute;n de radicales libres de metacrilatos<sup>2</sup>. El alto volumen de contracci&oacute;n de resinas dentales basadas en acrilatos, se constituy&oacute; en la fuerza promotora para el desarrollo de materiales que contengan una matriz org&aacute;nica m&aacute;s ventajosa<sup>3</sup>. En el a&ntilde;o 2007, la casa comercial 3M, introdujo al mercado la resina dental Filtek p90 a base de siloranos, cuya mol&eacute;cula es un producto de la reacci&oacute;n de las mol&eacute;culas de oxirano y siloxano. El sistema de siloranos tiene una menor contracci&oacute;n de polimerizaci&oacute;n respecto a las t&iacute;picas resinas basadas en dimetacrilatos debido a la reacci&oacute;n de curado ep&oacute;xido que involucra la apertura del anillo oxirano. Algunas ventajas del uso de resinas a base de siloranos son el menor deterioro y p&eacute;rdida de color de los dientes, menor riesgo de fractura y como consecuencia menor posibilidad de infecciones y caries de los dientes restaurados. Adem&aacute;s, estas resinas han demostrado buenas propiedades mec&aacute;nicas 0,94-1,5&#37; en volumen y fuerza de contracci&oacute;n, comparable con las obtenidas con resinas a base de metacrilatos.</p>      <p align="justify">Las investigaciones m&aacute;s recientes en el &aacute;rea odontol&oacute;gica y de los materiales dentales se han concentrado especialmente en la matriz de relleno, las propiedades mec&aacute;nicas y est&eacute;ticas<sup>4</sup>. Algunas investigaciones han establecido que varios composites son liberados a partir de matrices polimerizadas de solventes org&aacute;nicos e inorg&aacute;nicos, algunos de los cuales producen efectos adversos <i>in vitro</i><sup>5</sup>. En este sentido, los composites contienen resinas oxirano/poliol que al ser fotocuradas con luz visible han mostrado una resistencia a la compresi&oacute;n comparable con aquellos materiales restaurativos de uso cl&iacute;nico basados en la qu&iacute;mica de los acrilatos<sup>3</sup>. En un estudio cl&iacute;nico sobre color marginal, la resistencia de compresi&oacute;n ha demostrado ser inferior que la de un composite nanoh&iacute;brido<sup>1</sup>.</p>      <p align="justify">Por su parte, los estudios sobre compatibilidad biol&oacute;gica y citotoxicidad son una herramienta eficaz para garantizar el uso de biomateriales; los ensayos in vitro son &uacute;tiles para evaluar los efectos de los biomateriales a nivel celular, no requieren animales de experimentaci&oacute;n y tienen una buena relaci&oacute;n costo/efectividad. Para determinar la compatibilidad y bioseguridad de un material se puede evaluar el comportamiento de c&eacute;lulas vivas en un ambiente controlado, analizando caracter&iacute;sticas del crecimiento celular, alteraci&oacute;n de la membrana, replicaci&oacute;n y transcripci&oacute;n de ADN, s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas, hormonas y enzimas, metabolismo energ&eacute;tico, transformaci&oacute;n celular, mutag&eacute;nesis y carcinog&eacute;nesis.</p>      <p align="justify">Entre las pruebas m&aacute;s usadas para evaluar la permeabilidad celular y consecuente da&ntilde;o a nivel de membrana tras el uso de materiales dentales, se utiliza con frecuencia la prueba de exclusi&oacute;n vital con azul de tripan, la cual, se basa en la incapacidad de las c&eacute;lulas vivas parar incorporar dicho colorante, penetrando tan solo en las c&eacute;lulas muertas cuya membrana plasm&aacute;tica est&aacute; alterada<sup>6</sup>. Para an&aacute;lisis de ultraestructura a nivel de superficie celular, se han utilizado metodolog&iacute;as tales como Microscop&iacute;a electr&oacute;nica de barrido (Scanning Electron Microscopy-SEM) y Microscop&iacute;a Electr&oacute;nica de Transmisi&oacute;n (Transmission Electron Microscopy- TEM) para obtener im&aacute;genes en tres dimensiones. SEM y la microscopia de fuerza at&oacute;mica (Atomic Force  Microscopy-AFM), tambi&eacute;n resultan complementarias en el an&aacute;lisis morfol&oacute;gico por im&aacute;genes.</p>      <p align="justify">En general, son muy pocas las investigaciones desarrolladas y reportadas en la literatura odontol&oacute;gica respecto a biocompatibilidad de resinas dentales a base de siloranos. Algunos hallazgos sobre efectos biol&oacute;gicos de oxiranos con base en mecanismos gen&eacute;ticos han sido contradictorios. Con la resina Cyracure TM UVR-6105 se ha reportado un test de Ames negativo en cepas de prueba de Salmonella TA100<sup>7</sup>. Existen evidencias experimentales de que algunos ep&oacute;xidos reactivos son inductores m&aacute;s potentes de aberraciones cromosomales en c&eacute;lulas de organismos superiores. En contraste, se han encontrado mutaciones inducidas de genes por varios oxiranos en cepas de <i>Salmonella</i> TA100 y TA102, pero no se han detectado efectos con siloranos<sup>5</sup>.</p>      <p align="justify">Las resinas dentales tradicionales a base de metacrilatos, han demostrado tener un gran efecto citot&oacute;xico sobre una variedad de cultivos celulares; &eacute;sta raz&oacute;n junto con la importancia de garantizar el uso de materiales seguros, biocompatibles y con la m&iacute;nima citotoxicidad para los tejidos que se encuentran en contacto directo con el material, permitieron buscar una mejor aproximaci&oacute;n del efecto citot&oacute;xico que las nuevas resinas a base de siloranos puedan ejercer en c&eacute;lulas de fibroblastos y conllev&oacute; al desarroll&oacute; del presente estudio en condiciones de laboratorio donde se analiz&oacute; la resina Filtek p90 sobre la viabilidad celular de fibroblastos de rat&oacute;n de la l&iacute;nea celular L929.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>METODOLOG&Iacute;A</b></font></p>      <p align="justify"><b>Descripci&oacute;n.</b> El presente estudio se desarroll&oacute; dentro de la l&iacute;nea de investigaci&oacute;n en Biomateriales de la Facultad de Odontolog&iacute;a de la Universidad Cooperativa de Colombia- Sede Pasto. En esta investigaci&oacute;n se evalu&oacute; el efecto citot&oacute;xico de la resina dental a base de siloranos 3M&trade; Filtek&trade; P90 <i>in vitro</i>. Para todos los an&aacute;lisis se realiz&oacute; la exposici&oacute;n directa de fibroblastos de la l&iacute;nea celular L929 - ATCC CCL-1 a las resinas a base de siloranos Filtek p60 y Filtek p90 3M&trade;. Se analiz&oacute; la viabilidad a trav&eacute;s de una prueba de exclusi&oacute;n vital, desarrollada en el laboratorio de Microbiolog&iacute;a de la Universidad Cooperativa de Colombia - Pasto, as&iacute; como tambi&eacute;n el da&ntilde;o morfol&oacute;gico y la alteraci&oacute;n en la composici&oacute;n elemental de potasio (K), magnesio (Mg), sodio (Na) y calcio (Ca) sobre la superficie celular de fibroblastos L929 expuestos a resina mediante ESEM/EDAX. Ã‰sta &uacute;ltima prueba se llev&oacute; a cabo en el laboratorio de f&iacute;sica del plasma de la Universidad Nacional de Colombia - Manizales.</p>      <p align="justify"><b>Dise&ntilde;o experimental.</b> El ensayo de citotoxicidad se realiz&oacute; en placas de poliestireno de 24 pozos, donde se deposit&oacute; un bot&oacute;n de resina Filtek p90 y Filtek p60 m&aacute;s un volumen de medio DMEN que conten&iacute;a una cantidad inicial aproximada de 7,5 x 10<sup>5</sup> c&eacute;lulas/ml c&eacute;lulas de fibroblastos L929 ATCC CCL-1 por un tiempo de 6 d&iacute;as. Se evaluaron los factores experimentales: tiempo de fotocurado (0, 10 y 20 segundos) y tipo de resina (p90 y p60). Las variables respuesta analizadas fueron el porcentaje de viabilidad y de composici&oacute;n elemental de Ca, Mg, Na y K. De todos los ensayos (E) se tomaron muestras cada 24 horas por triplicado para un total de 42 muestras analizadas en la prueba de viabilidad y 18 mediante EDAX.</p>      <p align="justify"><b>Cultivo celular.</b> El cultivo de fibroblastos L929 ATCCCCL1 se obtuvo de la colecci&oacute;n de cultivos celulares de la Fundaci&oacute;n <i>in vitro</i>, Cali-Valle. Las c&eacute;lulas de la l&iacute;nea L929 fueron cultivadas en condiciones est&aacute;ndar bajo los protocolos descritos por Takashima<sup>8</sup>. Todos los procedimientos de mantenimiento y cultivo se desarrollaron bajo estrictas condiciones de asepsia y bioseguridad.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>Preparaci&oacute;n de c&eacute;lulas de Fibroblastos L929.</b> Para obtener la monocapa y la cantidad inicial de c&eacute;lulas a utilizar en los ensayos de citotoxicidad, a partir del cultivo celular previamente descrito se tom&oacute; una botella de cultivo de 24 horas con 50 ml de medio con fibroblastos en confluencia total, se descart&oacute; la totalidad del medio de cultivo y se lav&oacute; la monocapa tres veces con 1.0 ml de Buffer Salino Fosfato (PBS) est&eacute;ril. Se hizo una tripsinizaci&oacute;n y se adicion&oacute; 1 ml de medio de crecimiento consistente en medio DMEN (Dulbecco- Sigma) suplementado al 10&#37; con Suero Fetal Bovino (SFB) (GIBCO). Para colectar las c&eacute;lulas, se trasvas&oacute; el contenido de la botella a un tubo de pl&aacute;stico (Biologix) de 15 ml y se centrifug&oacute; a 2500 rpm x 5 minutos. Al terminar este tiempo, se descart&oacute; el sobrenadante y se lav&oacute; el pellet 3 veces con PBS est&eacute;ril, se adicionaron 5 ml del medio de crecimiento, se llev&oacute; a incubaci&oacute;n por 12 horas con atm&oacute;sfera de 5&#37; de CO<sub>2</sub> a 37 &deg;C, posteriormente se realiz&oacute; el conteo y ajuste de la densidad celular.</p>      <p align="justify"><b>Preparaci&oacute;n de la resina sobre placas de poliestireno.</b> Se tomaron 0,15g de resina Filtek p90 y Filtek p60 y se depositaron sobre un moldeador est&eacute;ril en forma de bot&oacute;n con fondo plano y superficie convexa. Se polimerizaron con l&aacute;mpara LED radii plus SDI con una intensidad mayor a 1000 mWatts/cm<sup>2</sup>, en el modo no rampa. Exposici&oacute;n de las c&eacute;lulas de fibroblastos L929 a las resinas. Se realiz&oacute; en placas de poliestireno de 24 pozos, (Biologix). Una vez transferidos los botones de las resinas a cada pozo  de las placas de cultivo se adicion&oacute; un volumen de 0,5 ml de cultivo ajustado a la densidad celular requerida y se complet&oacute; con 1,5 ml de medio DMEN (Dulbecco- Sigma) para un volumen de cultivo final de 2.0 ml en cada pozo. La incubaci&oacute;n se realiz&oacute; por 6 d&iacute;as a 37&deg;C, 5&#37; de CO<sub>2</sub> y atm&oacute;sfera humidificada. <a href="#t01">Tabla 1</a>.</p>      <p align="center"><a name="t01"></a><img src="img/revistas/suis/v48n1/v48n1a10t1.jpg"></p>      <p align="justify">Prueba de viabilidad por exclusi&oacute;n vital. Se tomaron muestras cada 24 horas por duplicado para un total de 42, se utiliz&oacute; la coloraci&oacute;n azul de tripan para determinar la densidad celular inicial y para la determinaci&oacute;n del porcentaje de viabilidad<sup>9</sup>.A partir de una diluci&oacute;n 1:10 preparada con 1 &mu;L de la suspensi&oacute;n celular en 9 &mu;L de azul de trip&aacute;n, se deposit&oacute; en c&aacute;mara de Neubauer y se observ&oacute; con microscopio &oacute;ptico OHAUS con el objetivo de 40, se realiz&oacute; el conteo y se obtuvieron los datos de viabilidad en n&uacute;mero de c&eacute;lulas/ml. Para calcular el porcentaje de viabilidad se utiliz&oacute; la f&oacute;rmula: &#37; viabilidad= (&#35; de c&eacute;lulas viables / &#35; total de c&eacute;lulas) x 100). Para estimar el porcentaje de mortalidad se utiliz&oacute; la f&oacute;rmula: &#37; mortalidad = (&#35; total de c&eacute;lulas muertas / &#35; total de c&eacute;lulas) x 100. Y el n&uacute;mero total de c&eacute;lulas se obtuvo as&iacute;: &#35; total c&eacute;lulas = Promedio C&eacute;lulas x 10 x Vol x 10000, siendo 10 una constante; vol el volumen de 100 &mu;L depositado en la c&aacute;mara de conteo y 10000, el factor de diluci&oacute;n).</p>      <p align="justify"><b>Procesamiento de muestras para el ESEM/ EDAX.</b> Se seleccionaron 18 muestras para su an&aacute;lisis, siguiendo los procedimientos y recomendaciones de preparaci&oacute;n para ESEM descritos en <i>Current Protocols</i><sup>10</sup>. Se analizaron muestras de resinas expuestas a las c&eacute;lulas directamente y muestras de c&eacute;lulas suspendidas en medio de cultivo l&iacute;quido (no expuestas).</p>      <p align="justify"><b>Fijaci&oacute;n de material para EDAX.</b> Se sumergieron portaobjetos de 0,7 mm de di&aacute;metro en &aacute;cido n&iacute;trico 5 M por 15 minutos a temperatura ambiente, en c&aacute;mara extractora de aire. Se decant&oacute; el &aacute;cido n&iacute;trico y se lav&oacute; 10 veces con agua doblemente destilada. Se decantaron todos los remanentes de agua antes del lavado final. Se lav&oacute; cada portaobjetos dos veces con metanol y se colocaron en cajas de petri est&eacute;riles.</p>      <p align="justify"><b>Fijaci&oacute;n de c&eacute;lulas con glutaraldehido para EDAX.</b> A 0.15 ml de suspensi&oacute;n celular se adicionaron 1.35 ml de glutaraldehido al 2.5&#37; precalentado y se mezcl&oacute; suavemente por inversi&oacute;n. Se sellaron los tubos con parafina y se incubaron por 2 horas a 37&deg;C, con agitaci&oacute;n suave de 100 rpm en agitador autom&aacute;tico.</p>      <p align="justify">Se obtuvo el pellet de c&eacute;lulas por centrifugaci&oacute;n durante 5 min a 2500 rpm y temperatura ambiente. Se removi&oacute; el sobrenadante completamente con una pipeta y resuspendi&oacute; el pellet de c&eacute;lulas completamente en 1 ml de PBS pH 7.4. Este procedimiento se repiti&oacute; una vez m&aacute;s. Luego del segundo lavado, se removi&oacute; el sobrenadante y se resuspendieron las c&eacute;lulas en 20 &mu;L de PBS pH 6.0.</p>      <p align="justify"><b>Deshidrataci&oacute;n y Secado de las muestras fijadas.</b> A las muestras fijadas previamente se les realiz&oacute; una serie de lavados con etanol al 25&#37;, 50&#37;, 75&#37;, 90&#37; y 100&#37;, incubando por 20 minutos a temperatura ambiente en cada grado de etanol. Las muestras se secaron en horno a 80&deg;C durante 4 horas. Finalmente, se procedi&oacute; a recortar con asa bistur&iacute; el fondo de cada pozo y se llevaron al an&aacute;lisis por ESEM/EDAX.</p>      <p align="justify"><b>An&aacute;lisis por ESEM/EDAX.</b> Las muestras se llevaron al equipo de ESEM, al cual se aplic&oacute; vac&iacute;o y enfriamiento con Nitr&oacute;geno l&iacute;quido -196&deg;C. Se tomaron micrograf&iacute;as en 40x, 180x y 1400x de aumento. Los espectros EDAX se obtuvieron tras realizar un barrido a nivel de superficie celular. Se tomaron 3 espectros por cada muestra, los resultados se obtuvieron en porcentaje de peso at&oacute;mico (&#37;At) y se graficaron para establecer tras este tiempo de exposici&oacute;n, las c&eacute;lulas mayormente afectadas.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>An&aacute;lisis de resultados.</b> Con los resultados de la prueba de exclusi&oacute;n vital se calcul&oacute; el porcentaje de viabilidad con el promedio de tres r&eacute;plicas por tratamiento. Se obtuvo el n&uacute;mero de c&eacute;lulas totales y se calcul&oacute; el porcentaje de viabilidad y de mortalidad con base en el promedio de c&eacute;lulas vivas y c&eacute;lulas muertas respectivamente. Posteriormente, se aplic&oacute; una prueba F de normalidad al 95&#37; de significancia, an&aacute;lisis unidimensional y an&aacute;lisis de varianza. Los resultados de composici&oacute;n elemental obtenidos por EDAX se determinaron para cada elemento mediante la raz&oacute;n pico/fondo. El an&aacute;lisis del porcentaje de los elementos Mg y Ca se realiz&oacute; por separado y el an&aacute;lisis de los elementos K/Na se realiz&oacute; utilizando el cociente de ambos. Para el an&aacute;lisis de estos resultados se tuvo en cuenta la funci&oacute;n de transporte celular a trav&eacute;s de la membrana en la cual participan estos elementos qu&iacute;micos.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>RESULTADOS</b></font></p>      <p align="justify">Mediante el uso de la tinci&oacute;n de exclusi&oacute;n vital, se verific&oacute; la morfolog&iacute;a compatible con las c&eacute;lulas de estudio. Se observaron c&eacute;lulas alargadas, fusiformes, m&oacute;viles, sin coloraci&oacute;n azul aparente, por lo cual se garantiz&oacute; la viabilidad del cultivo para los ensayos posteriores.</p>      <p align="justify">Los resultados de la prueba de viabilidad obtenidos durante los 6 d&iacute;as del ensayo de exposici&oacute;n de las c&eacute;lulas de fibroblastos L929 a las resinas dentales Filtek p90 y Filtek p60 muestran que la mortalidad en todos los casos fue baja. Todos los datos fueron obtenidos por triplicado para cada tratamiento durante los 6 tiempos de seguimiento. <a href="#t02">Tabla 2</a>.</p>      <p align="center"><a name="t02"></a><img src="img/revistas/suis/v48n1/v48n1a10t2.jpg"></p>      <p align="justify">El an&aacute;lisis unidimensional mostr&oacute; todos los resultados de los siete ensayos (E1-E7), ajustados a una distribuci&oacute;n normal dado que los valores de la asimetr&iacute;a tipificada y el coeficiente de Curtosis se encontraron dentro del rango esperado (-2,+2). En el an&aacute;lisis de varianza para la comparaci&oacute;n de medias, no se encontraron diferencias estad&iacute;sticamente significativas en los resultados de viabilidad entre los ensayos E1-E7.</p>      <p align="justify">Si se comparan los resultados del ensayo E7 correspondiente a c&eacute;lulas de fibroblastos L929 sin exponer a resinas dentales, cuya prueba de viabilidad no present&oacute; diferencias significativas respecto a los ensayos con c&eacute;lulas expuestas, se puede considerar un bajo efecto citot&oacute;xico de las resinas sobre las c&eacute;lulas estudiadas.</p>      <p align="justify">Al comparar la exposici&oacute;n de cada una de las resinas sobre la viabilidad celular, existe un efecto en promedio menor con p60 y con p90 en ausencia de fotocurado. Por otro lado, la combinaci&oacute;n de la resina Filtek p90t20 evidencio un mayor efecto sobre la viabilidad celular respecto a los tratamientos p90t10 y p90t0. <a href="#f01">Figura 1</a>.</p>      <p align="center"><a name="f01"></a><img src="img/revistas/suis/v48n1/v48n1a10f1.jpg"></p>      <p align="justify">El an&aacute;lisis de composici&oacute;n elemental por ESEM/ EDAX se obtuvo a partir de muestras de c&eacute;lulas fijadas en placas de vidrio. Para confirmar la adhesi&oacute;n de las c&eacute;lulas de fibroblastos L929 a la resina dental, se tomaron microfotograf&iacute;as de la resina con las c&eacute;lulas adheridas y se encontr&oacute; que p90t20 fue el tratamiento que m&aacute;s efecto tuvo sobre la composici&oacute;n i&oacute;nica analizada.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Los resultados de composici&oacute;n elemental de Na, K, Mg y Ca se obtuvieron en porcentaje de peso molecular (Wt) y peso at&oacute;mico (At). Con los resultados de &#37;At se construyeron gr&aacute;ficas de composici&oacute;n de Mg, Ca, K y Na, as&iacute; como tambi&eacute;n del cociente de K/Na con el fin de establecer la relaci&oacute;n existente entre la variaci&oacute;n de estos iones respecto al da&ntilde;o de la membrana celular evidenciado a trav&eacute;s de la prueba de exclusi&oacute;n vital. A las 24 horas del ensayo la composici&oacute;n elemental de Ca est&aacute; significativamente baja en el tratamiento p90t20 respecto a los dem&aacute;s tratamientos. <a href="#f02a">Figura 2A</a>.</p>      <p align="center"><a name="f02a"></a><img src="img/revistas/suis/v48n1/v48n1a10f2a.jpg"></p>      <p align="justify">Es de tener en cuenta que la variaci&oacute;n en la composici&oacute;n de Ca permite explicar el tipo de muerte celular, para este caso asociada a la exposici&oacute;n de las c&eacute;lulas a la resina a base de siloranos. Los iones de calcio tienen un papel significativo en una amplia variedad de actividades celulares, entre ellas la contracci&oacute;n muscular, divisi&oacute;n celular, secreci&oacute;n, fecundaci&oacute;n, transmisi&oacute;n sin&aacute;ptica, metabolismo, transcripci&oacute;n y movimiento celular. La concentraci&oacute;n de iones calcio en un compartimiento celular particular est&aacute; bajo el control de la actividad reguladora de bombas de Ca y canales i&oacute;nicos para Ca que se localizan dentro de las membranas que rodean el compartimiento<sup>11</sup>.</p>      <p align="justify">Respecto al i&oacute;n Mg, presenta una clara disminuci&oacute;n en el tratamiento con la resina Filtek p60t0 a base de metacrilatos, mientras que en los tratamientos con la resina a base de siloranos se mantiene constante durante todo el experimento en los tres tiempos de fotocurado. Cabe mencionar que la disminuci&oacute;n de Mg es af&iacute;n con el descenso en la concentraci&oacute;n de ATP, fen&oacute;meno que algunos autores lo han relacionado con procesos de muerte celular por necrosis<sup>12,13</sup>. Adem&aacute;s es un elemento presente dentro de las c&eacute;lulas tanto en citoplasma como en membranas mitocondrial y plasm&aacute;tica y tiene un importante papel como cofactor de muchas enzimas implicadas en el metabolismo de las c&eacute;lulas, sin embargo, el an&aacute;lisis en este estudio se ve limitado debido a que el &quot;screening&quot; por EDAX se realiz&oacute; solamente a nivel de la superficie de celular.</p>      <p align="justify">En el &iacute;ndice de K/Na, se puede evidenciar que con el tratamiento p90t0 se ve m&aacute;s afectado el equilibrio de estos dos iones, considerados importantes en el transporte a nivel de la membrana celular. <a href="#f02b">Figura 2B</a>.</p>      <p align="center"><a name="f02b"></a><img src="img/revistas/suis/v48n1/v48n1a10f2b.jpg"></p>      <p align="justify">La concentraci&oacute;n t&iacute;pica de K dentro de una c&eacute;lula de mam&iacute;fero es cercana a 100 mM, mientas que fuera de la c&eacute;lula es solo de 5mM. Por consiguiente, existe un intenso gradiente de concentraci&oacute;n de K a trav&eacute;s de la membrana plasm&aacute;tica que favorece la difusi&oacute;n de K hacia afuera de la c&eacute;lula. Los iones de Na tambi&eacute;n se distribuyen en concentraci&oacute;n desigual a ambos lados de la membrana plasm&aacute;tica, pero el gradiente es opuesto respecto a la concentraci&oacute;n de K, ya que la concentraci&oacute;n de Na es cercana a 150 mM fuera de la c&eacute;lula y de 10-20 mM a nivel intracelular.</p>      <p align="justify">El &iacute;ndice de K/Na, fue significativamente m&aacute;s bajo en los tratamientos p90t0 y p60t10. El estudio del &iacute;ndice de K/Na que seg&uacute;n Roomans<sup>14</sup>, constituye uno de los criterios m&aacute;s sensibles y confiables de viabilidad celular, muestra para los tratamientos p90T0 y p60T10 la menor variaci&oacute;n en la composici&oacute;n i&oacute;nica, lo que corresponde con una menor p&eacute;rdida de la viabilidad, a su vez, el desbalance entre estos dos elementos qu&iacute;micos, algunos autores lo han relacionado con procesos proapopt&oacute;ticos celulares<sup>13</sup>.</p>      <p align="justify">El descenso en los niveles de K est&aacute; asociado principalmente a procesos de muerte celular por apoptosis, proceso que en muchas c&eacute;lulas es normal y hasta necesario cuando cumplen con un ciclo de vida y funciones particulares, aunque tambi&eacute;n es un mecanismo para la eliminaci&oacute;n de c&eacute;lulas anormales.</p>      <p align="justify">Con base en los anteriores resultados se realiz&oacute; un seguimiento a los tratamientos que presentaron las mayores variaciones es decir, p90t0, p90t20, p60t10 y se construyeron gr&aacute;ficas para evaluar el efecto del tratamiento en dos tiempos de seguimiento. Se muestra que los iones K y Mg, disminuyeron con el tiempo de exposici&oacute;n a la resina dental y tiempo de fotocurado de 20 segundos, y el i&oacute;n Ca presenta un ligero incremento con el tiempo de exposici&oacute;n a la resina dental. <a href="#f03">Figura 3</a>.  Comportamiento diferente al observado para las c&eacute;lulas sin exposici&oacute;n, las cuales mantuvieron sus concentraciones i&oacute;nicas estables durante todo el tiempo de experimentaci&oacute;n.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f03"></a><img src="img/revistas/suis/v48n1/v48n1a10f3.jpg"></p>      <p align="justify">Estos resultados podr&iacute;an dar indicios de eventos proapopt&oacute;ticos que permitir&iacute;an explicar el incrementado efecto citot&oacute;xico que tuvo la combinaci&oacute;n p90t20, respecto a la c&eacute;lulas sin exponer a materiales dentales o a&uacute;n expuestas pero con tiempos cortos de 10 segundos o incluso sin fotocurado.</p>      <p align="justify">Con microscop&iacute;a electr&oacute;nica de barrido en ambiente ESEM, los fibroblastos disminuyeron su tama&ntilde;o y perdieron su morfolog&iacute;a caracter&iacute;stica, esto puede deberse adem&aacute;s de lo explicado anteriormente a una disminuci&oacute;n en la capacidad para producir el col&aacute;geno.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>      <p align="justify">La l&iacute;nea celular L929 (fibroblastos de rat&oacute;n), ha sido ampliamente utilizada en estudios de biocompatibilidad de materiales odontol&oacute;gicos<sup>15,16</sup> y es adem&aacute;s la l&iacute;nea celular recomendada en las normas ISO 10993-5 para estudios <i>in vitro</i><sup>17</sup>. El uso de cultivos celulares como parte de las pruebas recomendadas para evaluar el comportamiento biol&oacute;gico de los materiales al ser puestos en contacto con los tejidos humanos, se considera relativamente simple, reproducible, efectivo y de f&aacute;cil manipulaci&oacute;n<sup>18,19,20</sup>.</p>      <p align="justify">La lesi&oacute;n ocasionada por el efecto de biomateriales de uso odontol&oacute;gico a nivel celular, puede tener como objetivo los organelos celulares tales como las mitocondrias (responsables de la respiraci&oacute;n celular), los ribosomas (s&iacute;ntesis proteica), el ret&iacute;culo endoplasm&aacute;tico (inducci&oacute;n enzim&aacute;tica y biodegradaci&oacute;n) y las lesiones de n&uacute;cleo (replicaci&oacute;n del ADN)<sup>21</sup>.</p>      <p align="justify">Sin embargo, en este estudio se utiliz&oacute; la prueba de exclusi&oacute;n vital con azul de trip&aacute;n, un m&eacute;todo colorim&eacute;trico que permite realizar una aproximaci&oacute;n cuantitativa de sobrevivencia/viabilidad, en la cual la p&eacute;rdida de viabilidad evidenciada en aquellas c&eacute;lulas que incorporan el colorante es un indicativo de da&ntilde;o a nivel de su membrana<sup>22</sup>. En este sentido, los valores de supervivencia celular en todos los grupos superaron el 90&#37;, estos resultados podr&iacute;an explicarse en parte porque en este estudio el fotocurado de las resinas se realiz&oacute; con l&aacute;mpara de fotopolimerizaci&oacute;n de luz de emisi&oacute;n de diodos (LED).</p>      <p align="justify">En diferentes estudios realizados sobre fotopolimerizacion con l&aacute;mpara LED han mostrado notables ventajas con respecto a las l&aacute;mparas hal&oacute;genas convencionales, l&aacute;mparas de arco de plasma y l&aacute;mparas de cuarzo de tungsteno, tales como una mejor calidad en la polimerizaci&oacute;n, una estructura interna del material m&aacute;s estable y una menor generaci&oacute;n de calor, adem&aacute;s de ventajas de tipo t&eacute;cnico como un mayor tiempo de vida &uacute;til (superior a 10.000 horas), mayor resistencia a los impactos, recalentamiento y vibraci&oacute;n<sup>23,24, 25,26</sup>.</p>      <p align="justify">El tiempo de exposici&oacute;n de las c&eacute;lulas a los materiales dentales, es un importante factor descrito en la literatura que influye sobre el grado de toxicidad de las resinas compuestas. En este sentido, en un estudio realizado por Ferracane y Condon<sup>27</sup>, encontraron que los efectos m&aacute;s t&oacute;xicos de las resinas hacia las c&eacute;lulas ocurren a las 24 horas de exposici&oacute;n, estos resultados se contradicen con los de otros autores en donde la m&aacute;xima liberaci&oacute;n de compuestos sin reaccionar ocurre despu&eacute;s de este tiempo de exposici&oacute;n<sup>28</sup>. Con nuestros resultados, llama la atenci&oacute;n que el efecto del tiempo de fotocurado es inverso entre Filtek p90 y Filtek p60. Es decir, aunque con Filtek p60 se afecta m&aacute;s la viabilidad sin fotocurado, en la medida que se aumenta el tiempo de fotocurado, disminuye ese efecto negativo sobre la viabilidad, mientras que para p90 es inverso, es decir, sin fotocurado se afecta la viabilidad celular en menor grado que con los 20 segundos de fotocurado.</p>      <p align="justify">Cuando el cultivo es expuesto a las resinas sin fotopolimerizar (p90T0 y p60T0), se observa que con la resina en base a metacrilatos Filtek p60, se presenta una mortalidad celular m&aacute;s alta, esto podr&iacute;a ser debido a que el mecanismo de polimerizaci&oacute;n de estas resinas es por radicales libres y se ha comprobado que una polimerizaci&oacute;n inadecuada o un bajo grado de conversi&oacute;n afecta la biocompatibilidad. Diferentes estudios comprueban que cuando el porcentaje de conversi&oacute;n de mon&oacute;meros aumenta, la toxicidad celular disminuye<sup>29</sup>. Sin embargo, el porcentaje de mon&oacute;meros sin reaccionar despu&eacute;s de la polimerizaci&oacute;n inicial es m&aacute;s bajo en los nuevos materiales, aunque a&uacute;n no existe una conversi&oacute;n total durante la polimerizaci&oacute;n, los efectos citot&oacute;xicos dependen de la permeabilidad dentinaria o grosor de la dentina remanente que son factores no controlables por parte del operador<sup>30,31,32</sup>.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Estudios in vitro han mostrado que la reacci&oacute;n de polimerizaci&oacute;n nunca es completa y los efectos adversos son debidos a la liberaci&oacute;n de mon&oacute;meros no polimerizados como el TEDGMA - BISGMA O UDMA. En otros estudios co-mon&oacute;meros TEDGMA han sido identificados como los principales componentes que son liberados dentro de un medio acuoso causando citotoxicidad e inhibiendo el crecimiento celular en las primeras horas despu&eacute;s de la polimerizaci&oacute;n inicial<sup>33,34</sup>. En cuanto a la resina Filtek p90 sin polimerizar se observa que la citotoxicidad es m&iacute;nima, esta resina tiene un m&eacute;todo de polimerizaci&oacute;n distinto, el estudio del m&eacute;todo de polimerizaci&oacute;n por apertura de anillos y su relaci&oacute;n con el nivel de celularidad de esta resina deber&iacute;a ser materia de inter&eacute;s ya que existen muy pocos estudios al respecto.</p>      <p align="justify">Los resultados evidenciaron diferencias sustanciales entre las dos resinas con relaci&oacute;n al tiempo de fotocurado y el efecto de este sobre la viabilidad; se podr&iacute;a decir entonces, que la resina Filtek p90 requiere tiempos de fotocurado cortos y Filtek p60 requiere tiempos de fotocurado m&aacute;s largos, para mantener una mayor viabilidad celular.</p>      <p align="justify">La p&eacute;rdida en los valores de calcio como la registrada en este experimento para el tratamiento p90t20, permiten inferir que a mayor tiempo de fotocurado mayor efecto sobre la viabilidad. Los iones de Ca pueden activar o inhibir varios sistemas enzim&aacute;ticos y de transporte, cambiar la permeabilidad i&oacute;nica de las membranas, inducir fusi&oacute;n de membranas o alterar la estructura y funci&oacute;n del citoesqueleto.</p>      <p align="justify">Sin embargo, el Ca precipita estas reacciones junto con diversas prote&iacute;nas de uni&oacute;n con calcio, como la calmodulina (CaM), que se encuentra presente en c&eacute;lulas vegetales, animales, humanas y de microorganismos y cuyo papel es esencial en la funci&oacute;n del Ca intracelular sobre todo cuando las c&eacute;lulas est&aacute;n expuestas a alg&uacute;n est&iacute;mulo. El complejo Ca<sup>2+</sup> - CaM, puede unirse con el sistema de transporte de Ca de la membrana plasm&aacute;tica, en cuyo caso, los niveles elevados de calcio en la membrana celular, activan el sistema encargado de liberar a la c&eacute;lula de cantidades  excesivas del i&oacute;n, lo que constituye un mecanismo de autoregulaci&oacute;n para mantener las concentraciones intracelulares bajas de Ca tal como sucede en c&eacute;lulas en reposo o sin est&iacute;mulos ex&oacute;genos<sup>11</sup>.</p>      <p align="justify">Por otro lado, niveles bajos de Ca a nivel de la superficie celular podr&iacute;an explicar una posible activaci&oacute;n de la v&iacute;a extr&iacute;nseca de apoptosis en la cual varios estudios soportan la activaci&oacute;n de oncogenes como Bcl-2<sup>35</sup>, lo cual permitir&iacute;a explicar otro posible mecanismo de muerte celular desencadenado en los fibroblastos por la exposici&oacute;n a la resina dental.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>      <p align="justify">El tratamiento p90t20 presenta el mayor efecto citot&oacute;xico respecto a los dem&aacute;s tratamientos, lo cual se evidenci&oacute; con los resultados de la prueba de exclusi&oacute;n vital y se confirm&oacute; con los an&aacute;lisis de composici&oacute;n elemental por EDAX.</p>      <p align="justify">El an&aacute;lisis de composici&oacute;n i&oacute;nica permiti&oacute; evidenciar que las concentraciones de K y de Ca son principalmente afectadas tras la exposici&oacute;n de los fibroblastos a las dos resinas dentales, siendo afectados en mayor grado con la resina a base de metacrilatos (Filtek P60).</p>      <p align="justify">Nuestros resultados evidencian que las dos resinas dentales tienen efecto citot&oacute;xico ya que en ambos casos la viabilidad se ve afectada respecto al control L929 (C&eacute;lulas sin exposici&oacute;n a resina dental), sin embargo, se garantiza su uso en la pr&aacute;ctica odontol&oacute;gica ya que el grado de citotoxicidad evidenciado se ajusta al permitido para materiales de uso cl&iacute;nico.</p>      <p align="justify">Hay diferencias estad&iacute;sticamente significativas entre las dos resinas con relaci&oacute;n al tiempo de fotocurado y efecto de este sobre la viabilidad; se podr&iacute;a decir que la resina Filtek p90 requiere tiempos de fotocurado cortos y Filtek p60 requiere tiempos de fotocurado m&aacute;s largos, para garantizar un menor efecto citot&oacute;xico en ambos casos.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Los resultados del an&aacute;lisis de composici&oacute;n elemental podr&iacute;an sugerir un efecto citot&oacute;xico mediado por la posible activaci&oacute;n de un mecanismo apopt&oacute;tico inducido por las resinas al utilizar la combinaci&oacute;n tiempos de fotocurado y tiempos de exposici&oacute;n prolongados. Sin embargo, conclusiones al respecto requieren futuros estudios.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>CONFLICTOS DE INTER&Eacute;S</b></font></p>      <p align="justify">Los autores declaramos no tener conflicto de inter&eacute;s.</p>  <hr>      <p align="center"><font size="3"><b>REFERENCIAS</b></font></p>      <!-- ref --><p align="justify">1. Schneider LF, Cavalcante LM, Silikas N. Shrinkage stresses generated during resin-composite applications: A Review. J Dent Biomech. 2010; 131630. DOI: 10.4061/2010/131630.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998395&pid=S0121-0807201600010001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">2. Palasuk J, Platt JA, Cho SD, Levon JA, Brown DT, Hovijitra ST. Effect of surface treatments on microtensile bond strength of repaired aged silorane resin composite. Oper Dent. 2013; 38(1): 91-99. DOI: 10.2341/11-057-L.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998397&pid=S0121-0807201600010001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">3. Schweikl H, Schmalz G, Weinmann W. The induction of gene mutations and micronuclei by oxiranes and siloranes in mammalian cells in vitro. J Dent Res. 2004; 83(1): 17-21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998399&pid=S0121-0807201600010001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">4. Lien W, Vandewalle KS. Physical properties of a new silorane-based restorative system. Dent Mater. 2010; 26(4): 337-344. DOI: 10.1016/j. dental.2009.12.004.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998401&pid=S0121-0807201600010001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">5. Schweikl H, Schmalz G, Weinmann W. Mutagenic activity of structurally related oxiranes and siloranes in Salmonella typhimurium. Mutat Res. 2002; 521(1- 2): 19-27. DOI: 10.1016/S1383-5718(02)00207-3.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998403&pid=S0121-0807201600010001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">6. Schmalz G, Arenholt-Bindslev D. Determination of biocompatibility. Biocompatibility of dental materials. Germany. Edit springer S.A; 2009: p. 13-43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998405&pid=S0121-0807201600010001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">7. Eick JD, Kostoryz EL, Rozzi SM, Jacobs DW, Oxman JD, Chappelow CC, et al. In vitro biocompatibility of oxirane/polyol dental composites with promising physical properties. Dent Mater. 2002; 18(5): 413-421. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/s0109- 5641(01)00071-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998407&pid=S0121-0807201600010001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">8. Bonifacino JS. Preparation and isolation of cells. Short protocols in cell biology: a compendium of methods from Current protocols in cell biology. 1ra ed. Michigan: John Wiley &amp; Sons Inc; 2004: p. 2-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998409&pid=S0121-0807201600010001000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">9. Strober W. Trypan blue exclusion test of cell viability. Curr Protoc Immunol. 2001; Appendix 3: Appendix 3B. DOI: 10.1002/0471142735.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998411&pid=S0121-0807201600010001000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">10. Passey S, Pellegrin S, Mellor H. Scanning electron microscopy of cell surface morphology. Curr Protoc Cell Biol. 2007; Chapter 4:Unit4.17. DOI: 10.1002/0471143030.cb0417s37.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998413&pid=S0121-0807201600010001000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">11. Hook SS, Means AR. Ca2+/CaM- dependent kinases: From activation to function. Annu Rev Pharmacol Toxicol. 2001; 41: 471-505. DOI: 10.1146/annurev.pharmtox.41.1.471.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998415&pid=S0121-0807201600010001000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">12. Rodriguez IA. Efecto citot&oacute;xico de los sistemas adhesivos dentales. Estudio microsc&oacute;pico y microanal&iacute;tico &#91;Tesis Doctoral&#93;. Espa&ntilde;a: Universidad de Granada; 2005.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998417&pid=S0121-0807201600010001000012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">13. L&oacute;pez G. Evaluaci&oacute;n biol&oacute;gica de la toxicidad por  2-hidroxietil metacrilato (HEMA) en fibroblastos gingivales humanos &#91;Tesis doctoral&#93;. Espa&ntilde;a: Universidad de Granada; 2006.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998419&pid=S0121-0807201600010001000013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">14. Roomans GM. Pharmacological treatment of the ion transport effect in cystic fibrosis. Expert Opin Investig Drugs. 2001; 10(1): 1-19. DOI: 10.1517/13543784.10.1.1.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998421&pid=S0121-0807201600010001000014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">15. Jorge JH, Giampaolo ET, Pavarina AC. Citotoxicidade dos materiais dent&aacute;rios, revis&atilde;o de Literatura. Revista da odontolog&iacute;a de UNESP. 2004; 33(2): 65-68.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998423&pid=S0121-0807201600010001000015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">16. Ming Gene T, Wen Miin L, Tai Chin W, San Yue Ch. Evaluation of cytotoxicity of resin bonding materials toward human oral epithelial cells using three assay systems. J Dent Sci. 2009; 4(4): 178-186. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/S1991-7902(09)60024-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998425&pid=S0121-0807201600010001000016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">17. International Standard Organization. ISO 10993- 5:1992. Biological evaluation of medical devices - part 5: tests for cytotoxicity: in vitro methods. 1992.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998427&pid=S0121-0807201600010001000017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">18. Vajrabhaya L, Pasasuk A, Harnirattisai C. Cytotoxicity evaluation of single component dentin bonding agents. Oper Dent. 2003; 28(4): 440-444.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998429&pid=S0121-0807201600010001000018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">19. Moharamzadeh K, Brook IM, Van Noort R. Biocompatibility of Resin-based Dental Materials. Materials. 2009; 2(2): 514-548. DOI: 10.3390/ ma2020514.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998431&pid=S0121-0807201600010001000019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">20. Wataha JC. Principles of biocompatibility for dental practitioners. J Prosthet Dentistry. 2001; 86(2): 203- 209. DOI: 10.1067/mpr.2001.117056.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998433&pid=S0121-0807201600010001000020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">21. Gisbert JA. Toxicolog&iacute;a Especial. En: Villanueva Ca&ntilde;adas E. Medicina legal y toxicolog&iacute;a. 5ta Edici&oacute;n. Barcelona: Masson S.A; 1998: p.1058- 1073.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998435&pid=S0121-0807201600010001000021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">22. R&iacute;os Hern&aacute;ndez M, Cepero Ca&ntilde;as J, Davidenko N, Krael R, Gonz&aacute;lez P&eacute;rez A, P&eacute;rez K et al. Evaluaci&oacute;n toxicol&oacute;gica in vitro de materiales polim&eacute;ricos de restauraci&oacute;n dental compuestos por BIS-GMA. Anuario Toxicolog&iacute;a. 2001; 1(1): 65-72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998437&pid=S0121-0807201600010001000022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">23. Erg&uuml;n G, E&#287;ilmez F, &Uuml;&ccedil;ta&#351;li MB, Yilmaz S. Effect of light curing type on cytotoxicity of dentinebonding agents. Int Endod J. 2007; 40(3): 216-222. DOI: 10.1111/j.1365-2591.2007.01225.x.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998439&pid=S0121-0807201600010001000023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">24. Soares LE, Liporoni PC, Martin AA. The effect of soft-start polymerization by second generation LEDs on the degree of conversion of resin composite. Oper Dent. 2007; 32(2): 160-165. DOI: http:// dx.doi.org/10.2341/06-45.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998441&pid=S0121-0807201600010001000024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">25. Beriat NC, Ertan AA, Canay S, Gurpinar A, Onur MA. Effect of different polymerization methods on the cytotoxicity of dental composites. Eur J Dent. 2010; 4(3): 287-292.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998443&pid=S0121-0807201600010001000025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">26. Ergun G, Egilmez F, Cekic-Nagas I. The cytotoxicity of resin composites cured with three light curing units at different curing distances. Med Oral Patol Oral Cir Bucal. 2011; 16(2): 252-259. DOI: 10.4317/ medoral.16.e252.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998445&pid=S0121-0807201600010001000026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">27. Ferracane JL, Condon JR. Rate of elution of leachable components from composite. Dent Mater. 1990; 6(4): 82-287. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/ s0109-5641(05)80012-0.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998447&pid=S0121-0807201600010001000027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">28. Ferracane J-L. Resin composite-State of the art. Review. Dent Mater. 2011; 27(1): 29-38. DOI: 10.1016/j.dental.2010.10.020&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998449&pid=S0121-0807201600010001000028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">29. Guiraldo RD, Consani S, Xediek Consani RL, Bittencourt Berger S, Batista Mendes W, Coelho Sinhoreti MA, et al. Comparison of Silorane and Metacrylate-Based composite resins on the curing light transmission. Braz Dent J. 2010; 21(6): 538-542.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998450&pid=S0121-0807201600010001000029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">30. Visvanathan A, Ilie N, Hicke R, Kunzelmann K. The influence of curing times and light curing methods on the polymerization shrinkage stress of a shrinkageoptimized composite with hybrid- type prepolymer fillers. Dent Mater. 2007; 23(7): 777-784. DOI: http: //dx.doi.org/10.1016/j.dental.2006.06.019.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998452&pid=S0121-0807201600010001000030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">31. Yap AJ, Seneviratne C. Influence of light energy density on effectiveness of composite cure. Oper Dent. 2001; 26(5): 460-466.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998454&pid=S0121-0807201600010001000031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">32. Nomoto R, Asada M, McCabe J, Hirano S. Light exposure required for optimum conversi&oacute;n of Light activated resin systems. Dent Mater. 2006; 22(12): 1135-1142. DOI: http: //dx.doi.org/10.1016/j. dental.2005.10.011&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3998456&pid=S0121-0807201600010001000032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">33. Ogunyinka A, Palin WM, Shortall AC, Marquis PM. Photoinitiation chemistry affects Light transmission and degree of conversion of curing experimental dental resin composites. Dent Mater. 2007: 23(7): 807-813. 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