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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Influencia de campos magnétivos en el crecimiento de E. coli y S. cerevisiae y la capacidad de solubilizar fósforo en Pseudomonas sp y Bacillus sp de uso industrial]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Magnetic stimulation of microorganisms has been investigated because of its industrial applications. Furthermore, the cellular growth is the most important parameter in the microbiological microorganisms, such as the metabolism and the production of substances of scientific and Escherichia coli is described, for being the most studied micro-organism due to living in daily human habitats, and Saccharomyces cerevisiae for its applications in the food processing industry. Moreover, microorganisms solubilizers of phosphates are really important for the agricultural industry. They make possible for plants to assimilate the phosphorus that they cannot process by themselves, helping them grow. In this review we will deepen on Pseudomonas sp and Bacillus sp for being good solubilizers of phosphorus and for its aptitude to degrade the substratum. Hence, it is important to compile the and solubilizing phosphorus, and the response of Escherichia coli, Saccharomyces cerevisiae, Pseudomonas sp and Bacillus sp]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font size="2" face="verdana">      <p align="center"><font size="4"><b>Influencia de campos magn&eacute;tivos en el crecimiento de <I>E. coli</I> y <I>S. cerevisiae</I> y la capacidad de solubilizar f&oacute;sforo en <I>Pseudomonas sp</I> y <I>Bacillus sp</I> de uso industrial </b></font></p>      <p align="center"><font size="3"><b>Magnetic Field Influence in <I>E. coli</I> and <I>S. cerevisiae</I> Growth and the Ability of <I>Pseudomoanas sp</I> and <I>Bacillus sp</I> to be Phosphorus Solubilizers for Industrial Usage</b></font></p>      <p><i>Sandra Johana Hern&aacute;ndez Jim&eacute;nez</i>    <br> Facultad de Tecnolog&iacute;as, Universidad Tecnol&oacute;gica de Pereira, Pereira - Colombia    <br> E-mail: <a href="mailto:sajohernandez@utp.edu.co">sajohernandez@utp.edu.co</a></p>      <p><i>Estefan&iacute;a Lucero Dom&iacute;nguez Toro</i>    <br> Facultad de Tecnolog&iacute;as, Universidad Tecnol&oacute;gica de Pereira, Pereira - Colombia    <br> E-mail: <a href="mailto:eldominguez@utp.edu.co">eldominguez@utp.edu.co</a></p>      <p><i>Luis Gonzaga Guti&eacute;rrez</i>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Facultad de Ciencias Ambientales, Universidad Tecnol&oacute;gica de Pereira, Pereira - Colombia    <br> E-mail: <a href="mailto:luisgon@utp.edu.co">luisgon@utp.edu.co</a></p>      <p><b>Recived:</b> October 31, 2014    <br> <b>Accepted:</b> March 19, 2015</p>  <hr>       <p><font size="3"><b>Resumen</b></font></p>      <p>La estimulaci&oacute;n magn&eacute;tica de microorganismos ha sido de inter&eacute;s investigativo debido a sus aplicaciones industriales. Adem&aacute;s, el crecimiento celular es el par&aacute;metro m&aacute;s importante propiedades de los microorganismos, tales como el metabolismo y la producci&oacute;n de sustancias de <I>Escherichia coli, </I>el microorganismo m&aacute;s estudiado por habitar en ambientes cotidianos para el ser humano,y<I> Saccharomyces cerevisiae </I>con aplicaciones en la industria alimenticia. Por otra parte, los microorganismos solubilizadores de fosfatos son de gran importancia para la industria agr&iacute;cola. Gracias a ellos las plantas pueden asimilar el f&oacute;sforo que no logran procesar por s&iacute;mismas, ayudando as&iacute;a su crecimiento. En esta revisi&oacute;n se profundiza en <I>Pseudomonas sp y Bacillus sp </I>por ser buenossolubilizadores de f&oacute;sforo y por su capacidad para degradar los sustratos. De ah&iacute;, que sea importante recopilar la informaci&oacute;n cient&iacute;fica disponible, donde se describen los mecanismos por los cuales las microbios se reproducen y/o solubilizan f&oacute;sforo, y la respuesta de <I>Escherichia coli, Saccharomyces cerevisiae</I>, <I>Pseudomonas sp y Bacillus sp, </I>a campos magn&eacute;ticos con densidades variables. </P >     <p><b>Palabras clave:</b> Crecimiento celular, solubilizadores de fosfatos, <I>Escherichia coli, Saccharomyces cerevisiae</I>, <I>Pseudomonas sp </I>y<I> Bacillus sp. </I></P >  <hr>      <p><font size="3"><b>Abstract</b></font></p>      <p> Magnetic stimulation of microorganisms has been investigated because of its industrial applications. Furthermore, the cellular growth is the most important parameter in the microbiological microorganisms, such as the metabolism and the production of substances of scientific and <I>Escherichia coli</I> is described, for being the most studied micro-organism due to living in daily human habitats, and <I>Saccharomyces cerevisiae</I> for its applications in the food processing industry. Moreover, microorganisms solubilizers of phosphates are really important for the agricultural industry. They make possible for plants to assimilate the phosphorus that they cannot process by themselves, helping them grow. In this review we will deepen on <I>Pseudomonas sp</I> and <I>Bacillus sp</I> for being good solubilizers of phosphorus and for its aptitude to degrade the substratum. Hence, it is important to compile the and solubilizing phosphorus, and the response of <I>Escherichia coli, Saccharomyces cerevisiae, Pseudomonas sp and Bacillus sp. </I></P >     <p><b>Keywords:</b> Cellular growth, solubilizers of phosphorus, <I>Escherichia coli, Saccharomyces cerevisiae, Pseudomonas sp </I>y<I> Bacillus sp</I>.</P >  <hr>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><b>1. Introducci&oacute;n</b></font></p>      <p><font size="3">1.1 Estimulaci&oacute;n Magn&eacute;tica y Crecimiento Microbiano</font></p>      <p><I>Escherichia coli</I></p>      <p>Es el microorganismo m&aacute;s estudiado por el ser humano. Su descubrimiento se remonta a 1885, gracias al pediatra Theodor Escherich (1857-1911) quien aisl&oacute; la bacteria de las heces de uno de sus pacientes (Johnson, 2001). Se reproduce con facilidad en ambientes cotidianos para el hombre y animales tales como tierra, agua y plantas, ya que, su temperatura &oacute;ptima de crecimiento se encuentra en 37&ordm;C (Allauca y Villacres, 2005), lo que la hace pertenecer al grupo de los mes&oacute;filos. Dicha caracter&iacute;stica vuelve a este bacilo un ser habitual en los intestinos grueso y delgado, por ello es el microorganismo m&aacute;s relacionado con enfermedades gastrointestinales (Koneman y Allen, 2008). </P >     <p>Se identifica por ser miembro de la familia <I>enterobacteriaceae</I>. Es un bacilo gram negativo, aerobio facultativo que mide 1 x 2 mm; goza de una sola cadena en espiral de ADN, se mueve mediante flagelos per&iacute;tricos, no produce esporas y forma fimbrias y <I>pilis </I>(S&aacute;nchez &amp; Trejo, 2006). <I>E. coli </I>es fermentadora de lactosa y a partir de glucosa fermenta manitol; adem&aacute;s es positiva para indol y descarboxilasa de lisina. Tambi&eacute;n, es motivo de investigaci&oacute;n su resistencia a antimicrobianos y la capacidad de producir toxinas (Romero, 2007).</P >     <p>En lo referente a la estimulaci&oacute;n magn&eacute;tica <I>E. coli </I>ha sido objeto de varios estudios, entre ellos se ha observado la respuesta del crecimiento del bacilo. Seg&uacute;n Shin-ichiro <I>et al. </I>(2002) y Zhang <I>et al. </I>(2002), <I>E. coli </I>fue expuesta a campos magn&eacute;ticos de intensidad variable, durante el periodo de crecimiento exponencial resultando en muerte bacterial al presentarsedisminuci&oacute;n de c&eacute;lulas, en comparaci&oacute;n con el control, por lo que, los investigadoressugieren que la estimulaci&oacute;n ocasiona cambios en el metabolismo de la c&eacute;lula y varia el pH del medio Luria Bertani a b&aacute;sico, porque <I>E. coli</I> toma los amino&aacute;cidos y los transforma en sustancias como el amoniaco. Adem&aacute;s, al afectar la proliferaci&oacute;n del microorganismo tambi&eacute;n existe interferencia en la actividad oxido-reductiva y esa variaci&oacute;n se incrementa a medida que aumenta el tiempo de exposici&oacute;n (Stras&aacute;k, 2002). </P >     <p>Asimismo, mediante un ensayo, Fojt<I> et al. </I>(2004) comparan los efectos de la estimulaci&oacute;n magn&eacute;tica con la viabilidad del bacilo, mediante conteo de Unidades Formadoras de Colonias(UFC). En esta ocasi&oacute;n <I>E. coli </I>fue expuesta al campo magn&eacute;tico de 10 mT y 30 minutosen la fase logar&iacute;tmica, encontrando que el n&uacute;mero de unidades disminuye, en equivalencia con el control, de manera exponencial al aumentar dos variables: tiempo de exposici&oacute;n y densidad de flujo magn&eacute;tico. La causa de muerte bacterial no es clara, pero se presume, se debe a posibles cambios biol&oacute;gicos como es la alteraci&oacute;n en el transporte de iones y formaci&oacute;n de radicales libres producidos por la estimulaci&oacute;n electromagn&eacute;tica. Adem&aacute;s, hallaron que dicho efecto empieza desde el momento en que se enciende el campo magn&eacute;tico. </P >     <p>De la misma forma, Wenjin<I> et al.</I> (2009) encontraron como el n&uacute;mero de UFC se ve afectado negativamente cuando incrementa el tiempo de estimulaci&oacute;n electromagn&eacute;tica y aumenta la temperatura a la que es realizado este ensayo (25 a 40 &deg;C), produci&eacute;ndose da&ntilde;o en la superficie de las c&eacute;lulas implicadas. Sin embargo, una vez <I>E. coli</I> ha logrado adaptarseal ambiente hostil, empieza a disminuir la cantidad de bacterias inhibidas. Seg&uacute;n Filipic<I>et al.</I> (2012) <I>E. coli </I>responde dependiendo la densidad de flujo magn&eacute;tico, por ejemplo, a 17 mT se afect&oacute; el crecimiento de manera negativa, pero a 5 y 50 mT la influencia fue menos pronunciada. Aun as&iacute;, la estimulaci&oacute;n magn&eacute;tica aument&oacute; los niveles de ATP y la actividad enzim&aacute;tica, que se presume es manifestada al luchar <I>E. coli</I> por adaptarse al entorno, porla presencia del campo magn&eacute;tico. </P >     <p>En otro caso, Bajpai <I>et al. </I>(2014) demostraron como utilizar la estimulaci&oacute;n magn&eacute;tica a&ntilde;adiendo un sustrato con propiedades de magnetizaci&oacute;n, la cual afecta el crecimiento de la poblaci&oacute;n bacteriana, pues los resultados revelaron inhibici&oacute;n en un 83 % al pasar 4 h de exposici&oacute;n. No obstante, confirmaron que sin implementar el sustrato tambi&eacute;n se influye negativamente en la propagaci&oacute;n de <I>E. coli </I>porque causa da&ntilde;o en su membrana desintegr&aacute;ndola y produciendo liberaci&oacute;n de material intracelular (Bajpai et al., 2012). Asimismo, seg&uacute;n Kamel<I> et al. </I>(2013), a 40, 80, 120 y 160 mT se produce disminuci&oacute;n de c&eacute;lulas viables y variaciones en la sensibilidad a ciertos antibi&oacute;ticos. </P >     <p>Debido a los resultados, Belyaeva (2011) afirm&oacute; que tales efectos dependen directamente de las variables f&iacute;sicas y biol&oacute;gicas que forman parte del entorno que envuelve almicroorganismo al ser estimulado magn&eacute;ticamente. Por tal raz&oacute;n, <I>E. coli </I>disminuye la tasade crecimiento cuando es tratada a 2 mT y con tiempos de exposici&oacute;n de 4,6 y 8 horas, y pasadas 24 horas el n&uacute;mero de c&eacute;lulas bacterianas aumenta, por lo que, los investigadores opinan que el microorganismo posee capacidad de adaptarse al campo magn&eacute;tico (Segatore 2012). </P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Por otro lado, seg&uacute;n la densidad de flujo magn&eacute;tico y el tiempo de exposici&oacute;n, ser&aacute; el efecto en las c&eacute;lulas expuestas (<a href="#tab1">Tabla 1</a>). Muestra de ello, es que en algunos casos <I>E. coli </I>sometida a este tipo de estimulaci&oacute;n electromagn&eacute;tica no ha sufrido ning&uacute;n tipo de transformaci&oacute;n en su capacidad de multiplicarse como lo afirman Del Re<I> et al. </I>(2003). Y Seg&uacute;n Esmekaya <I>et al. </I>(2013), a 2 mT y 24 horas la exposici&oacute;n al campo no produce cambio en la viabilidad de las c&eacute;lulas, pero s&iacute;afecta su morfolog&iacute;a al formarse poros y desintegrar la membrana. </P >     <p>Por el contrario, Nawrotek <I>et al. </I>(2014) y Fija&#322;kowski <I>et al.</I> (2014) encontraron que la exposici&oacute;n al campo magn&eacute;tico incrementa la reproducci&oacute;n celular de <I>E. coli</I>. Del mismo modo, un estudio realizado por Nascimento<I> et al.</I> (2003) mostr&oacute; que la magneto-estimulaci&oacute;npuede influir positivamente la multiplicaci&oacute;n en presencia de glucosa, al incrementar la entrada del az&uacute;car por la membrana celular, disminuir la fase estacionaria y aumentar el tiempo que <I>E. coli </I>permanece en periodo de crecimiento logar&iacute;tmico. </P >     <p>Es evidente que los resultados cambian dependiendo del campo magn&eacute;tico aplicado. Por tal raz&oacute;n, Babushkina<I> et al.</I> (2005) aseguran que utilizar frecuencias bajas produceincremento de la proliferaci&oacute;n bacteriana. Tambi&eacute;n, Gaafar<I> et al.</I> (2006) concluyeron que el tiempo de exposici&oacute;n hace variar dr&aacute;sticamente el crecimiento de este bacilo, por lo que, depende en mucho del tiempo como factor clave. Por ello, Rodr&iacute;guez<I> et al. </I>(2006), hallaron modificaci&oacute;n en el crecimiento bacterial a 0,1 T y 6,5 horas, al manifestarse incremento de 100 % compar&aacute;ndolo con el control no estimulado. </P > <I>Saccharomyces cerevisiae </I>     <p>El g&eacute;nero <I>Saccharomyces </I>fue expuesto por primera vez en 1838 por Meyer. <I>Saccharomyces cerevisiae </I>es eucariota, anaerobia facultativa, la forma de su c&eacute;lula eselipsoidal de aproximadamente 5 mm de di&aacute;metro, posee una temperatura optima decrecimiento entre 37-40 &ordm;C y se reproduce por gemaci&oacute;n multilateral, m&aacute;s o menos cada 90 minutos. Adem&aacute;s, la levadura puede propagarse como haploide o diploide y sufrir mitosis (Dickinson &amp; Schweizer, 2004). Por otra parte, las levaduras han sido de inter&eacute;s investigativo porque son eucariotas unicelulares, f&aacute;ciles de manipular y con capacidad de reproducirse de manera r&aacute;pida. Adem&aacute;s, <I>S. cerevisiae </I>es extensamente estudiada por su uso en alimentos, entre ellos vino y pan, por lo que se considerada muy &uacute;til en la elaboraci&oacute;n de diferentes tiposde v&iacute;veres que enriquecen las mesas de muchos hogares (Blackburn, 2006). Esto es posible, debido a que son utilizadas en sustancias de desecho que provienen de la fermentaci&oacute;n alcoh&oacute;lica, tales como etanol y di&oacute;xido de carbono, y contribuyen en la producci&oacute;n de comestibles (Tortora et al., 2007). </P >     <p>La estimulaci&oacute;n magn&eacute;tica de <I>S. cerevisiae </I>ha mostrado resultados variables. Nov&aacute;k <I>et al.</I> (2007) y Otabe<I> et al. </I>(2009), encontraron que el campo magn&eacute;tico adem&aacute;s de disminuir el n&uacute;mero de UFC, retarda el crecimiento de esta levadura cuando elimina parte de ella, mientras otras c&eacute;lulas, se adaptan al ambiente adverso en el que se encuentran. Por ello, Iwasaka<I> et al. </I>(2004) afirman que la exposici&oacute;n al campo magn&eacute;tico tiene efecto bactericida. Tambi&eacute;n, Markkanen<I> et al.</I> (2001) hallan como la radiaci&oacute;n UV, junto con este tipo deestimulaci&oacute;n electromagn&eacute;tica, tiene mayor capacidad de disminuir la cantidad de c&eacute;lulas presentes de <I>S. cerevisiae,</I> compar&aacute;ndolo con la falta de electro-estimulaci&oacute;n. </P >     <p>Por otro lado, seg&uacute;n Egami<I> et al.</I> (2010) el efecto depende del tiempo y la intensidad delcampo magn&eacute;tico suministrado. En vista de ello, Anton-Leberre<I> et al.</I> (2010) afirman que lainteracci&oacute;n con el campo magn&eacute;tico a 16 T y 8 horas, no produce cambios en la forma en que se propaga <I>S. cerevisiae</I> o su sistema biol&oacute;gico. Al igual, Ruiz<I> et al.</I> (2004) hallan que el crecimiento de <I>S. cerevisiae </I>puede ejecutarse sin ninguna variaci&oacute;n. Adem&aacute;s, El-Gaddar <I>et al.</I> (2013) y Ruiz<I> et al. </I>(2010) concordaron que las c&eacute;lulas expuestas siguen su ciclo natural. </P >     <p>Motta<I> et al. </I>(2001) observaron a <I>S. cerevisiae</I> antes, durante y despu&eacute;s de la estimulaci&oacute;n magn&eacute;tica, concluyendo que existe un ligero incremento en la proliferaci&oacute;n de esta levaduraresultando positivo para su propagaci&oacute;n. Tambi&eacute;n, han implementado densidades de campodiferentes, resultando que a 20 mG y 30 segundos de exposici&oacute;n magn&eacute;tica la concentraci&oacute;ncelular aumento 30% con respecto al control (Zapata et al., 2002). Seg&uacute;n Zapata<I> et al.</I> (2005), en un estudiodesarrollado en Medell&iacute;n, Colombia, hallaron que el cultivo de <I>S. cerevisiae</I> puede superar elefecto inhibitorio del campo magn&eacute;tico y aprovechar mejor el sustrato (miel virgen de ca&ntilde;a),por lo que, fue observado un aumento en el volumen celular en un 14%, en comparaci&oacute;n con el control, con menor consumo de miel virgen. </P >     <p>Asimismo, mostrando como este tipo de estimulaci&oacute;n magn&eacute;tica intensifica el n&uacute;mero de individuos, a 25 mT se obtuvo aumento en el crecimiento de <I>S. cerevisiae </I>entre 8.7 a 43.1 %, encontrando que el volumen celular depende del tiempo de exposici&oacute;n al campo (Oliveira et al., 2010), y con este incremento de la poblaci&oacute;n, mejorar la producci&oacute;n de etanol (Deutmeyer et al., 2011). En la siguiente tabla se describe la respuesta de <I>S. cerevisiae</I> y <I>E. coli </I>al ser sometida a diferentes campos magn&eacute;ticos:</P >      <p align="center">Tabla 1. Resumen de algunos par&aacute;metros utilizados para estimular magn&eacute;ticamente <i>E. coli</i> y <i>S. cerevisiae</i></p>      <p align="center"><a name="tab1"><img src="img/revistas/rcien/v19n1/v19n1a08-tab01.jpg"></a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">Fuente: Diferentes Autores </P >      <p><font size="3"><b>Estimulaci&oacute;n magn&eacute;tica y capacidad de solubilizar f&oacute;sforo</b></font>      <p>Existen bacterias que poseen la capacidad de solubilizar compuestos ricos en f&oacute;sforo. Estos organismos toman este elemento que no est&aacute; disponible para las plantas y mediante su actividad fisiol&oacute;gica secretan &aacute;cidos org&aacute;nicos y enzimas denominadas fosfatasas, lo queproduce liberaci&oacute;n del f&oacute;sforo para aprovecharlo por las plantas. Adem&aacute;s, estas bacterias tienen la facultad de promover el crecimiento vegetal a trav&eacute;s de la s&iacute;ntesis de hormonas reguladoras del crecimiento, como el &aacute;cido indolac&eacute;tico, as&iacute;como de inhibir el crecimiento e incidencia de pat&oacute;genos de h&aacute;bito radical, mediante la secreci&oacute;n de sustancias de tipo antibi&oacute;ticas. El estudio sobre este fen&oacute;meno ha permitido entender c&oacute;mo las bacteriaspueden superar la estrategia terap&eacute;utica mediante intercambio gen&eacute;tico, generando as&iacute;un aumento en la capacidad de solubilizar f&oacute;sforo (S&aacute;nchez &amp; Trejo, 2006). </P >     <p><I>Pseudomonas sp </I></P > </font>     <p> <font size="2" face="verdana"><I>Pseudomonas sp.</I> es un Bacilo Gram negativo, aerobio, no formador de esporas. Puedepresentar de 1.5 a 5 &micro;m de largo y un di&aacute;metro de 0.5 a 1 &micro;m. Las especies de este g&eacute;nero son m&oacute;viles, debido a las presencia de 1 o m&aacute;s flagelos polares. Es oxidasa y catalasa positiva, no fermentadores de lactosa. La mayor&iacute;a de especies del g&eacute;nero, no crecen bajo condiciones &aacute;cidas (pH 4.5 o menor). El g&eacute;nero <I>Pseudomonas</I> es bien conocido por su versatilidad metab&oacute;lica y plasticidad gen&eacute;tica. Las especies de <I>Pseudomonas</I>, en general,crecen r&aacute;pidamente y presentan habilidad para metabolizar una gran variedad de sustratos (Ruiz, 2007). </font></P >      <p><font size="2" face="verdana">En lo referente a estimulaci&oacute;n magn&eacute;tica, investigadores pasaron a <I>Pseudomonas sp</I>. por imanes para estimulaci&oacute;n magn&eacute;tica de microorganismos. Se inocul&oacute; una muestra de bacterias tratada en el intervalo de 0.01-0.16 T junto a ant&iacute;genos de <I>B. cereus y P. aeruginosa.</I>El incremento de la proliferaci&oacute;n microbiana ha permitido proponer su uso como ayudante inmunol&oacute;gico para la obtenci&oacute;n de sueros policlonales antibacterianos y sugerir su empleo en otros inmunobiol&oacute;gicos (Mart&iacute;nezet al., 2004). </font></P >     <p><font size="2" face="verdana">Seg&uacute;n Anaya<I> et al.</I> (2011), al someter <I>Pseudomonas sp.</I> a campos magn&eacute;ticos de 0.015, 0.03 y 0.06mTy diferentes tiempos de exposici&oacute;n, se evidencia un aumento en el crecimiento bacteriano. Ibraheim<I> et al.</I> (2013) concluyeron que al someter <I>P. aeruginosa</I> a un campo magn&eacute;tico controlado de 4 mT y 50 Hz hubo una disminuci&oacute;n en la sensibilidad de las c&eacute;lulas expuestas a los campos magn&eacute;ticos. Los resultados indican que la viabilidad de las c&eacute;lulas tratadas magn&eacute;ticamente durante 14 horas disminuy&oacute; en comparaci&oacute;n con las c&eacute;lulas no expuestas. Se evidenci&oacute; un incremento en la sensibilidad de las c&eacute;lulas estudiadas a norfloxacina y la ciprofloxacina. Tambi&eacute;n las c&eacute;lulas estimuladas a 14 h se hicieron m&aacute;s resistentes a estos antibi&oacute;ticos. Todo esto indica que hay efectos del campo electromagn&eacute;tico utilizado en la acci&oacute;n del medicamento sobre la c&eacute;lula bacteriana a trav&eacute;s de la inhibici&oacute;n de la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas, s&iacute;ntesis de la pared celular, la transcripci&oacute;n de ARN y la replicaci&oacute;n de ADN, la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas y con ello, aumento en la solubilizaci&oacute;n de f&oacute;sforo (<a href="#tab2">Tabla 2</a>). </font></P > <font size="2" face="verdana">      <p align="center">Tabla 2. Resumen de algunos par&aacute;metros utilizados para estimular magn&eacute;ticamente <i>Pseudomonas sp</i> y <i>Bacillus sp</i></p>      <p align="center"><a name="tab2"><img src="img/revistas/rcien/v19n1/v19n1a08-tab02.jpg"></a></p>      <p>Por otra parte, la fuerza magn&eacute;tica alta en <I>P. aeruginosa </I>gener&oacute; sensibilidad a losantibi&oacute;ticos durante un corto per&iacute;odo de tiempo (4-6 horas) y aument&oacute; su resistencia al mismoantibi&oacute;tico a largo plazo de exposici&oacute;n (18-20 h) mostrando, por lo tanto, efecto positivo en la capacidad del microorganismo de degradar f&oacute;sforo insoluble. Adem&aacute;s, las enzimas bacterianas como TDA (Tript&oacute;fano desaminasa), GLU (glutamato), ARA (angiotensina), se efect&uacute;an por el campo magn&eacute;tico (Kamel et al., 2013). </P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Segatore<I> et al. </I>(2012) observaron que los efectos de la exposici&oacute;n a campos magn&eacute;ticos de baja frecuencia (2 mT; 50 Hz) sobre la tasa de crecimiento y la sensibilidad a losantibi&oacute;ticos de <I>P. aeruginosa </I>influenci&oacute; la tasa de la cepa cuando se incub&oacute; en presencia de concentraciones subinhibitorias de amikacina. En particular, a las 4, 6, y 8 h de incubaci&oacute;n el n&uacute;mero de c&eacute;lulas disminuy&oacute; significativamente en las bacterias expuestas a campos electromagn&eacute;ticos, y de la misma manera la solubilizaci&oacute;n de f&oacute;sforo. Adem&aacute;s, a las 24 h de incubaci&oacute;n, el porcentaje de c&eacute;lulas de <I>Pseudomonas aureginosa</I> aument&oacute; en los grupos tratados con respecto al control. </P >     <p><I>Bacillus sp </I></P >     <p> El g&eacute;nero <I>Bacillus</I> pertenece a la familia <I>Bacilliaceae</I>, e incluye m&aacute;s de 60 especies de bacilos. Son gram positivos, anaerobios o aerobios facultativos, quimioheterotrofos, formadores de endosporas, m&oacute;viles, rodeados de flagelos per&iacute;ticos y catalasa positiva.El tama&ntilde;o de las c&eacute;lulas bacterianas var&iacute;a entre 0,5- 2,5 &micro;m x 1,2-10 &micro;m. Se encuentra usualmente en plantas y suelos donde desempe&ntilde;a un papel importante en ciclo del carbono y el nitr&oacute;geno (Cuervo, 2010). </P >     <p>Estimular magn&eacute;ticamente <I>Bacillus sp</I> facilit&oacute; la disponibilidad de los nutrientes.Algunas especies del g&eacute;nero son capaces de solubilizar el f&oacute;sforo encontrado encompuestos no asequibles, mejorando por ende, la concentraci&oacute;n fosf&oacute;rica de los suelos. Para la aplicaci&oacute;n de esta tecnolog&iacute;a, una muestra de <I>Bacillus sp </I>es sometida al campo electromagn&eacute;tico de 4 mT con frecuencia de 25 Hz durante 2 h (Z&uacute;&ntilde;iga et al., 2011) (<a href="#tab2">Tabla 2</a>). </P >     <p>Seg&uacute;n Nakamura<I> et al.</I> (1997), se desarroll&oacute; un biosistema implementando un im&aacute;n superconductor, que puede proporcionar campos magn&eacute;ticos de 0,5-7 T, donde las reacciones biol&oacute;gicas se llevan a cabo bajo condiciones de temperatura controlada. El crecimiento aer&oacute;bico de <I>B. subtilis</I> se investig&oacute; bajo campos magn&eacute;ticos homog&eacute;neos y no homog&eacute;neos.</P >     <p> En la fase estacionaria, el n&uacute;mero de c&eacute;lulas en un campo magn&eacute;tico no homog&eacute;neo fue aproximadamente dos veces mayor que la referencia no estimulada, lo que indica que la disminuci&oacute;n en el n&uacute;mero de c&eacute;lulas se produjo por el campo magn&eacute;tico de alta densidad.La inhibici&oacute;n de la formaci&oacute;n de esporas a partir de las c&eacute;lulas vegetativas tambi&eacute;n se observ&oacute; en un campo magn&eacute;tico, que se refleja en la reducci&oacute;n de la actividad de la fosfatasa alcalina. Transformada gen&eacute;ticamente, <I>B. subtilis</I> produce una mayor concentraci&oacute;n de un antibi&oacute;tico lipop&eacute;ptido surfactina, y por lo tanto aumenta la capacidad de degradar fosfatoen la fase estacionaria en un campo magn&eacute;tico no homog&eacute;neo, debido al mayor n&uacute;mero de c&eacute;lulas alteradas por la magneto-estimulaci&oacute;n. </P >     <p>Por otra parte, Gu<I> et al. </I>&#91;49&#93; demostraron que al someter <I>Bacillus subtilis</I> a densidades de campos magn&eacute;ticos altos (5.2 -6.1T) y frecuencia de 0 -0.03 Hz se inhibi&oacute; completamenteel crecimiento ocasionando la muerte y con ello afectando la acci&oacute;n de <I>B. subtilis </I>sobre el f&oacute;sforo. De la misma forma, estudios realizados por Raichenko<I> et al.</I> (2012) dieron comoresultado, en todos los casos, un retardo en el crecimiento en <I>Bacillus cereus </I>durante el per&iacute;odo de 1 - 2 d&iacute;as, seguido de la restauraci&oacute;n del crecimiento de la poblaci&oacute;n al someterlosa un campo magn&eacute;tico de 30 - 50mT durante 2 a 15 minutos. </P >     <p>Seg&uacute;n Jin<I> et al.</I> (2009) <I>B. subtilis </I>fue expuesto a campos magn&eacute;ticos de 0,085 a 0,092T durante 12h en agar nutritivo, generando resultados diferentes en cada etapa. El cultivo se compar&oacute; con el grupo control del campo geomagn&eacute;tico normal. El valor experimentalde densidad &oacute;ptica de este aerobio fue significativamente m&aacute;s alto que el del control de 3h a 9h. Sin embargo, despu&eacute;s de 11 h, no hubo diferencia notable con respecto a los valores de densidad &oacute;ptica entre los dos grupos. Los resultados mostraron que los camposferromagn&eacute;ticos aumentaron significativamente el contenido de ox&iacute;geno disuelto en agarnutritivo. En la siguiente tabla se describe la respuesta de de <I>Pseudomonas sp y Bacillus sp </I>al ser sometida a diferentes campos magn&eacute;ticos (Ver <a href="#tab2">Tabla 2</a>).</P >      <p><font size="3"><b>3. Discusi&oacute;n general</b></font></p>      <p>La magneto-estimulaci&oacute;n de <I>E.coli</I> y <I>S. cerevisiae </I>son ejemplos de la influencia que tiene el campo magn&eacute;tico en el crecimiento de las bacterias. El tiempo que permanece el microorganismo bajo el magnetismo, la temperatura y la intensidad de este, son factores importantes, pues de ellos depender&aacute; en gran medida el efecto del campo magn&eacute;tico sobre las c&eacute;lulas (<a href="#tab1">Tabla 1</a>). Cuando el campo magn&eacute;tico produce muerte bacterial, siempre va acompa&ntilde;ado de cambios en el entorno o la estructura del microorganismo produciendotales efectos. Despu&eacute;s de la estimulaci&oacute;n magn&eacute;tica, <I>E. coli</I> presenta algunas diferenciascomo: alteraci&oacute;n en el transporte de iones debido a que cambia la velocidad de reproducci&oacute;ncelular, la variaci&oacute;n del metabolismo lo que ocasiona en el medio de cultivo aumento del pH a b&aacute;sico, afectando el crecimiento y con ello, la desintegraci&oacute;n de la pared celular, produciendo liberaci&oacute;n del material interno porque se forman poros que permiten la salida del mismo. </P >     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Por otra parte, en el caso de <I>S. cerevisae</I> se destacan algunos aspectos con respecto asu respuesta a la estimulaci&oacute;n electromagn&eacute;tica. La levadura sometida al campo magn&eacute;tico sufri&oacute; inhibici&oacute;n del crecimiento celular, aunque tiene la capacidad de adaptarse al ambientecon magnetismo. Tambi&eacute;n es notable que utilizar radiaci&oacute;n UV y electromagnetismo para inhibir la proliferaci&oacute;n de microorganismos es una alternativa viable, pues presenta resultados m&aacute;s eficaces. Al igual que <I>E.coli</I>, la levadura <I>S. cerevisiae</I> puede incrementarel volumen celular tras ser sometida a campos magn&eacute;ticos, not&aacute;ndose aumentos de 8.7 hasta 43.1% lo que es de gran utilidad en la industria alimentaria y en la producci&oacute;n de etanol, pues se conoce a este organismo unicelular como ayudante en la fabricaci&oacute;n de diferentes productos. La <a href="#tab3">Tabla 3</a> refleja la dependencia del crecimiento con otras variables. Aunque en los tres casos<I> E.coli </I>fue sometida a 2 mT, el tiempo de exposici&oacute;n electromagn&eacute;tica fue diferente para cada estimulaci&oacute;n, afectado el crecimiento de forma distinta.</P>      <p align="center">Tabla 3. <i>E.coli</i> sometida a 2 mT</p>      <p align="center"><a name="tab3"><img src="img/revistas/rcien/v19n1/v19n1a08-tab03.jpg"></a></p>      <p>Por otro lado, el f&oacute;sforo soluble es un elemento esencial para las plantas ya que restringela producci&oacute;n de los cultivos, por ello, el suelo se vale del ciclo del P para recircularel nutriente. Existen bacterias solubilizadoras de fosfatos que tienen la capacidad deproducir sustancias antibi&oacute;ticas, por lo tanto esas propiedades est&aacute;n relacionadas. Cuando <I>Pseudomonas sp </I>es sometida a la estimulaci&oacute;n magn&eacute;tica, incrementa su resistencia a los antibi&oacute;ticos, concluyendo que su capacidad de solubilizar f&oacute;sforo aumenta. Tambi&eacute;n se presenta el caso contrario, disminuci&oacute;n de la oposici&oacute;n al agente, notando que todos los resultados van ligados al tiempo y la intensidad de campo magn&eacute;tico suministrado (<a href="#tab2">Tabla 2</a>). </P >     <p>La exposici&oacute;n magn&eacute;tica de colonias del g&eacute;nero <I>Bacillus sp</I>. ha mostrado el doble de crecimiento compar&aacute;ndolo con el microorganismo no estimulado, produciendo mayor concentraci&oacute;n de antibi&oacute;ticos, y en consecuencia, superior capacidad de solubilizar el f&oacute;sforopara ser asimilado por las plantas, revelando que el campo magn&eacute;tico altera esta propiedad en <I>Bacillus sp</I>. Muestra de ello es que la magneto-estimulaci&oacute;n produce que el bacilo tenga una fase de muerte m&aacute;s lenta, aunque inhibe la formaci&oacute;n de endosporas. </P >     <p>En la industria es posible aprovechar la estimulaci&oacute;n magn&eacute;tica de microorganismos. Implementarlo en el sector alimenticio es viable debido a que produce inhibici&oacute;n celular, por lo que los microorganismos no contaminaran los alimentos. Adem&aacute;s, utilizarlo para esterilizar art&iacute;culos que no pueden ser sometidos a altas temperaturas ahorrar&iacute;a parte del dinero invertido en utensilios microbiol&oacute;gicos desechables u otros elementos que deben mantenerse inocuos. Otras ventajas de la t&eacute;cnica es que disminuye el impacto negativo de los productos qu&iacute;micos en el medio ambiente, pues los agentes t&oacute;xicos ser&aacute;n utilizados en menor medida al ser remplazados por la electro-estimulaci&oacute;n; tambi&eacute;n los microorganismosestimulados pueden ayudar a la absorci&oacute;n de nutrientes de las plantas para la agroindustria. </P >     <p><font size="3"><b>Agradecimientos</b></font></p>      <p> Al Profesor Fernando Areiza de la Universidad Tecnol&oacute;gica de Pereira, quien fue el autor de la idea original, la cual se convirti&oacute; en monograf&iacute;a. </P>  <hr>      <p><font size="3"><b>Referencias</b></font></p>      <!-- ref --><p>Allauca, V., y Villacres, E. (2005). <i>Desarrollo de la tecnolog&iacute;a de elaboraci&oacute;n de chochogerminado fresco para aumentar el valor nutritivo de grano</i>. Riobamba, Ecuador: INIAP.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408784&pid=S0121-1935201500010000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Anaya, M., Guzm&aacute;n, T. M., y Acea, C. M. (2011). <i>El campo magn&eacute;tico aplicado a la industria alimentaria</i>. Buenos Aires, Argentina: Publitec.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408786&pid=S0121-1935201500010000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Anton-Leberre, V., Haanappel, E., Marsaud, N., Trouilh, L., Benbadis, L., Boucherie, H. et al. (2010). Exposure to high static or pulsed magneticfields does not affect cellular processes in the yeast Saccharomyces cerevisiae. <i>Bioelectromagnetics</i>, <i>31</i>, 28-38.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408788&pid=S0121-1935201500010000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Babushkina, I.V., Borodulin, V. B., Shmetkova, N. A., Morrison, V. V., Usanov, A. D., Skripal, A. V., &amp; Usanov, D. (2005). 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Synergistic effect of static magnetic field andHA-Fe3 O4 magnetic composites on viability of S. aureus and E. coli bacteria. <i>Journal of biomedical materials research: Part B, Applied biomaterials</i>, <i>102</i>, 524- 532.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408792&pid=S0121-1935201500010000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Bajpai, I., Saha, N., &amp; Basu, B. (2012). Moderate intensity static magnetic field has bactericidal effect on E. coli and S. epidermidis on sintered hydroxyapatite. <i>Journal of Biomedical Materials Research. Part B, Applied Biomaterials</i>, <i>100</i>, 1206- 1217.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408794&pid=S0121-1935201500010000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Belyaeva, I. (2011) Toxicity and SOS-response to ELF magnetic fields and nalidixic acid in E. coli cells. <i>Mutation Research</i>, <i>722</i>, 56-61.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408796&pid=S0121-1935201500010000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Blackburn, C. (2006). <i>Food Spoilage Microorganisms</i>. Abington, USA: Woodhead Publishing.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408798&pid=S0121-1935201500010000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Cuervo, J. P. (2010). <i>Aislamiento y Caracterizaci&oacute;n de Bacillus spp como FijadoresBiol&oacute;gicos de Nitr&oacute;geno y Solubilizadores de Fosfatos en Dos Muestras deBiofertilizantes Comerciales</i>. Bogot&aacute;. 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Effectsof rotating magnetic field exposure on the functional parameters of different species of bacteria. <i>Electromagn Biol Med</i>, 1 -8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408814&pid=S0121-1935201500010000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Filipic, J., Kraigher, B., Tepus, B., Kokol, V., &amp; Mandic-Mulec, I. (2012) Effects oflow-density static magnetic fields on the growth and activities of wastewater bacteriaEscherichia coli and Pseudomonas putida. <i>Bioresource Technology</i>, <i>120</i>, 225-232.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408816&pid=S0121-1935201500010000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Fojt, L., Stras&aacute;k, L., Vetterl, V., &amp; Smarda, J. (2004) Comparison of the low-frequency magnetic field effects on bacteria Escherichia coli, Leclercia adecarboxylata and Staphylococcus aureus. <i>Bioelectrochemestry</i>, <i>63</i>, 337- 371.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408818&pid=S0121-1935201500010000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Gaafar, E. A., Hanafy, M. S., Tohamy, E. Y., &amp; Ibrahim, M. H. (2006). Stimulation and control of E.coli by using an extremely low frequency magnetic field. <i>Romanian J. Biophys</i>, <i>16</i>, 283-296.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408820&pid=S0121-1935201500010000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Gu, S., Lu, G., Wu, Y., Li, S., &amp; Zhao, K. (2012) A Study of the Interaction betweenELF-EMF and Bacteria. <i>Advances in Electric and Electronics, 155</i>, 243- 254.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408822&pid=S0121-1935201500010000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Ibraheim, M. H., &amp; El-Din, D. B. (2013). 50 Hz Frequency Magnetic Field Effects on Pseudomonas Aeruginosa and Bacillus Subtilis Bacteria. <i>IOSR Journal of Applied Physics</i>, <i>3</i>, 49-56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408824&pid=S0121-1935201500010000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Iwasaka, M., Ikehatab, M., Miyakoshic, J., &amp; Ueno, S. (2004). Strong static magnetic field effects on yeast proliferation and distribution. <i>Bioelectrochemistry</i>, <i>65</i>, 59-68.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408826&pid=S0121-1935201500010000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>Jin, F., Liu, T., Li, F., &amp; El, J. (2009). Effects of Static Magnetic Fields on Aerobes: Escherichia coli, Staphylococcus aureus and Bacillus subtilis. <i>Journal of Biomedical Engineering</i>, <i>26</i>, 757-760.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408828&pid=S0121-1935201500010000800023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Johnson, T. J. (2011). Impacts of fecal bacteria on human and animal health-pathogens and virulence genes. In, <i>The Fecal Bacteria</i>, (pp. 135 -164). Washington D.C., USA: ASM Press.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408830&pid=S0121-1935201500010000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Kamel, F. H., Amin, A. M., Salih, K. K., &amp; Qader, S. S. (2013). ComparativeStudy of the Static Magnetic Field Effects on Growth Rate with Relative Antibiotic Susceptibility in Escherichia coli. <i>Journal of Life Sciences</i>, <i>7</i>, 690-694.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408832&pid=S0121-1935201500010000800025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Kamel, F. H., Saeed, C. H., &amp; Qader, S. S. (2013). The static magnetic field effect on Pseudomonas Aeruginosa. <i>DAMA International</i>, <i>2</i>, 32-35.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408834&pid=S0121-1935201500010000800026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Koneman, E. W., y Allen, S. (2008). <i>Diagnostico Microbiol&oacute;gico</i>,  (ed. 6). Madrid, Espa&ntilde;a: M&eacute;dica Panamericana.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408836&pid=S0121-1935201500010000800027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Markkanen, A., Juutilainen, J., Lang, S., Pelkonen, J., Ryt&ouml;maa, T., &amp; Naarala, J. (2001). Effects of 50 Hz magnetic field on cell cycle kinetics and the colony forming ability of budding yeast exposed to ultraviolet radiation. <i>Bioelectromagnetics</i>, <i>22</i>, 345-350.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408838&pid=S0121-1935201500010000800028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Mart&iacute;nez, C. E., P&eacute;rez, I., Morris, H., y Fontainer, R. (2004). Efectos de la soluci&oacute;n de sales CM-95 tratada magn&eacute;ticamente sobre c&eacute;lulas mononucleares. <i>Biotecnolog&iacute;a Aplicada</i>, <i>21</i>, 224- 228.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408840&pid=S0121-1935201500010000800029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Motta, M. A., Montenegro, E. J., Stamford, T. L., Silva, A. R., &amp; Silva, F. R. (2001). Changes in Saccharomyces cerevisiae development induced by magnetic fields. <i>Biotechnol Prog.</i>, <i>17</i>, 970-973.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408842&pid=S0121-1935201500010000800030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Nakamura, K., Kazumasa, O., Takashi, A., &amp;  Makoto, S. (1997). Effect of high magnetic field on the growth of Bacillus subtilis measured in a newly developedsuperconducting magnet biosystem. <i>Bioelectrochemistry and Bioenergetics</i>, <i>43</i>, 123-128.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408844&pid=S0121-1935201500010000800031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Nascimento, L. F., Botura, G. J., &amp; Mota, R. P. (2003). Glucose consume and growthof E. coli under electromagnetic field. <i>Revista do Instituto de Medicina, Tropical de S&atilde;o Paulo</i>, <i>45</i>, 65 -67.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408846&pid=S0121-1935201500010000800032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Nawrotek, P., <font face="Lucida Grande, Lucida Sans Unicode, Lucida Sans, DejaVu Sans, Verdana, sans-serif">Fija&#322;kowski</font>, K., Struk, M., Kordas, M., &amp; Rakoczy, R. (2014). Effectsof 50 hz rotating magnetic field on the viability of Escherichia coli and Staphylococcus aureus. <i>Electromagn Biol and Med.</i>, <i>33</i>, 29-34.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408848&pid=S0121-1935201500010000800033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Nov&aacute;k, J., Stras&aacute;k, L., Fojt, L., Slaninov&aacute;, I., &amp; Vetterl, V. (2007). Effects of low-frequency magnetic fields on the viability of yeast Saccharomyces cerevisiae. <i>Bioelectrochemistry</i>, <i>70</i>, 115-121.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408850&pid=S0121-1935201500010000800034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Oliveira, L., Monte Alegre, R., Garcia-Diego, C., &amp; Cuellar, J. (2010). Effects of magnetic fields on biomass and glutathione production by the yeast Saccharomyces cerevisiae. <i>Process Biochemistry</i>, <i>45</i>, 1362-1367.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408852&pid=S0121-1935201500010000800035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Otabe, E. S., Kuroki, S., Nikawa, J., Matsumoto, Y., Ooba, T., Kiso, K., &amp; Hayashi, H. (2009). Yeast cells proliferation on various strong static magnetic fields andtemperatures. <i>Journal of Physics</i>, <i>156</i>, 1-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408854&pid=S0121-1935201500010000800036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Raichenko, O. I., Mosienko, V. S., Shlyakhovenko, V. O., Derev'yanko, O. V., Yanish, Y. V., &amp; Karnaushenko, O. V. (2012). Combined action of low temperature and magnetic field of different intensities on growth of some bacterial species in vitro. <i>Health</i>, <i>4</i>, 249-252.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408856&pid=S0121-1935201500010000800037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Rodr&iacute;guez, O., Haber, V., Chac&oacute;n, D., &amp; Monte Alegre, R. (2006) Growth ofEscherichia coli under Extremely Low-Frequency Electromagnetic Fields. <i>Applied Biochemistry and Biotechnology</i>, <i>134</i>, 155 -163.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408858&pid=S0121-1935201500010000800038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Romero, R. (2007). <i>Microbiolog&iacute;a y parasitolog&iacute;a humana: Bases etiol&oacute;gicas de las enfermedades infecciosas y parasitarias</i>. (ed. 3). M&eacute;xico D.F., M&eacute;xico: M&eacute;dica Panamericana S.A.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408860&pid=S0121-1935201500010000800039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Ruiz, L. (2007). <i>Pseudomonas aeruginosa: aportaci&oacute;n al crecimiento de su estructuray al de los mecanismos que contribuyen a su resistencia a los antimicrobianos</i>. Barcelona, Espa&ntilde;a: Universidad de Barcelona.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408862&pid=S0121-1935201500010000800040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Ruiz, M. J., Prieto, M. I., Ristori, E., &amp; Mart&iacute;nez, M. (2004). Static and 50 Hz magnetic fields of 0.35 and 2.45 mT have no effect on the growth of Saccharomyces cerevisiae. <i>Bioelectrochemistry</i>, <i>64</i>, 151-155.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408864&pid=S0121-1935201500010000800041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Ruiz, M. J., Prieto, M. I., Ristori, E., &amp; Mart&iacute;nez, M. (2010). No evidence of cellularalterations by MilliTesla-level static and 50 Hz magnetic fields on S. cerevisiae. <i>Electromagnetic biology and medicine</i>, <i>29</i>, 154-164.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408866&pid=S0121-1935201500010000800042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>S&aacute;nchez, D. J., &amp; Trejo, N. I. (2006). <i>Evoluci&oacute;n y Diversidad de Los Seres Vivos</i>. Biolog&iacute;a celular y molecular, 243. M&eacute;xico DF, M&eacute;xico: Alfil.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408868&pid=S0121-1935201500010000800043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Segatore, B., Setacci, D., Bennato, F., Cardino, R., Amicosante, G., &amp; Iorio, R. (2012). Evaluations of the Effects of Extremely Low-Frequency Electromagnetic Fields on Growth and Antibiotic Susceptibility of Escherichia coli and Pseudomonas aeruginosa. <i>International Journal of Microbiology</i>, <i>2012</i>, 1- 7. Recovered 15/10/215 <a href="http://downloads.hindawi.com/journals/ijmb/2012/587293.pdf" target="_blank">http://downloads.hindawi.com/journals/ijmb/2012/587293.pdf</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408870&pid=S0121-1935201500010000800044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Shin-ichiro, H., Yoshimasa, I., Kazumasa, O., Takashi, A., &amp; Makoto, S. (2002). Change in broth culture is associated with significant suppression of Escherichia coli death under high magnetic field. <i>Bioelectrochemistry</i>, <i>57</i>, 139-144.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408871&pid=S0121-1935201500010000800045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Stras&aacute;k, L., Vetterl, V., &amp; Smarda, J. (2002) Effects of low-frequency magnetic fields on bacteria Escherichia coli. <i>Bioelectrochemestry</i>, <i>55</i>, 161-164.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408873&pid=S0121-1935201500010000800046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Tortora, G. J., Funke, B. R., &amp; Case, C. L. (2007). <i>Introducci&oacute;n a la microbiolog&iacute;a</i>, (ed. 9). Buenos Aires, Argentina: M&eacute;dica Panamericana.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408875&pid=S0121-1935201500010000800047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Wenjin, J., Huimin, H., Aihua, D., &amp; Chunyang, P. (2009) Effects of static magneticfields on Escherichia coli. <i>Micron.</i>, <i>40</i>, 894-898.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408877&pid=S0121-1935201500010000800048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Zapata, J. E., Hoyos, M., &amp; Moreno, G. (2005). Acci&oacute;n de un campo magn&eacute;ticosobre un cultivo aireado de Saccharomyces cerevisiae. <i>Interciencia</i>, <i>30</i>, 409-413.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408879&pid=S0121-1935201500010000800049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Zapata, J. E., Moreno, G., &amp; M&aacute;rquez, E. J. (2002). Efectos de los camposmagn&eacute;ticos sobre el crecimiento de Saccharomyces cerevisiae. <i>Interciencia</i>, <i>10</i>, 544- 550.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408881&pid=S0121-1935201500010000800050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Zhang, S., Wei, W., Zhang, J., Mao, Y., &amp; Liu, S. (2002) Effect of static magnetic field on growth of Escherichia coli and relative response model of series piezoelectric quartz crystal. <i>The Analyst</i>, 127, 373- 377.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408883&pid=S0121-1935201500010000800051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Z&uacute;&ntilde;iga, O., Cuero, R., &amp; Pe&ntilde;a, J. A. (2011). Estimulaci&oacute;n con campo electromagn&eacute;ticovariable de microorganismos ben&eacute;ficos aplicados a la cachaza para mejorar su uso como biofertilizante. <i>Biotecnolog&iacute;a en el Sector Agropecuario y Agroindustrial</i>, <i>9</i>, 150-158.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6408885&pid=S0121-1935201500010000800052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <p><img src="img/revistas/rcien/v19n1/cc.jpg">    <br> Revista de Ciencias por Universidad del Valle se encuentra bajo una licencia <a href="https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/" target="_blank">Creative Commons Reconocimiento 4.0.</a></p>  </font>      ]]></body><back>
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