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<journal-title><![CDATA[Revista Facultad de Odontología Universidad de Antioquia]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[EFECTO DE LA PEROXIDASA SOBRE LA ADHESIÓN DE UNA RESINA COMPUESTA AL ESMALTE DENTAL POSBLANQUEAMIENTO]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[EFFECT OF PEROXIDASE ON COMPOSITE RESIN ADHESION TO DENTAL ENAMEL AFTER WHITENING]]></article-title>
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<self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0121-246X2012000200002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0121-246X2012000200002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0121-246X2012000200002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[INTRODUCCIÓN: se ha reportado que el oxígeno residual liberado por los agentes blanqueadores interfieren en la adhesión de las resinas compuestas a la estructura dental, razón por la cual se tiene como objetivo comparar la resistencia de unión al corte (RUC) de una resina compuesta al esmalte dental posblanqueamiento con peróxido de hidrógeno al 38%, antes y después de tratar la superficie con la enzima peroxidasa previo a la adhesión. MÉTODOS: se seleccionaron 45 premolares humanos sanos, divididos en tres grupos de 15 dientes cada uno. Grupo 1: control (solo adhesión); grupo 2: blanqueamiento y adhesión; grupo 3: blanqueamiento, aplicación de peroxidasa y adhesión. Posterior al tratamiento se midió la RUC en la máquina de ensayos Shimadzu, para determinar diferencia estadísticamente significativa entre los tres grupos con nivel de confianza de 95% y con valor de p < 0,05. RESULTADOS:el grupo control obtuvo la RUC de 12,8 Mpa (&plusmn; 3,2), el grupo con blanqueamiento tuvo el promedio de 3,5 Mpa (&plusmn; 1,43) y el grupo con blanqueamiento y aplicación de peroxidasa presentó promedio de 12,2 Mpa (&plusmn; 3,12). CONCLUSIONES: los valores de RUC disminuyeron significativamente con la aplicación de peróxido de hidrógeno al 38%, sin embargo, se logró el aumento significativo al aplicar la peroxidasa previa a la adhesión]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[INTRODUCTION: some reports suggest that residual oxygen released by whitening agents interfere with composite resin adhesion to dental structure. The objective of this study is therefore to compare composite resins' shear bond strength to dental enamel after whitening using 38% hydrogen peroxide pre- and post- treatment with peroxidase enzyme before adhesion. METHODS: a total of 45 healthy human premolars were selected and divided into three groups of 15 teeth each. Group 1: control group (only adhesion); group 2: whitening and adhesion; group 3: whitening, application of peroxidase, and adhesion. After treatment, shear bond strength was measured with a Shimadzu testing machine in order to determine significant statistical differences among the three groups, with a confidence level of 95% and p < 0.05. RESULTS: the control group obtained a shear bond strength of 12.8Mpa (&plusmn; 3.2), the whitening group showed an average 3.5 Mpa (&plusmn; 1.43), and the group treated with whitening and peroxidase presented an average 12.2 Mpa (&plusmn; 3.12). CONCLUSIONS: shear bond strength values significantly decreased with application of 38% hydrogen peroxide; however, a significant increase was also obtained by applying peroxidase before adhesion.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[peroxidasa de rábano silvestre]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[adhesión dental]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[blanqueamiento dental]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[resinas compuestas]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[   <font size="2" face="Verdana">      <p align="right"><b>ART&Iacute;CULOS ORIGINALES DERIVADOS DE INVESTIGACI&Oacute;N</b></p>          <p>&nbsp;</p>       <p align="center"><font size="4" face="Verdana"><b>EFECTO DE LA PEROXIDASA SOBRE LA ADHESI&Oacute;N DE UNA RESINA COMPUESTA AL ESMALTE DENTAL POSBLANQUEAMIENTO<sup>1</sup> </b></font></p>          <p>&nbsp;</p>           <p>&nbsp;</p>     </font>    <p><font size="2" face="Verdana"><b>Paula Alejandra Baldi&oacute;n Elorza<sup>2</sup>, Laura Nathalia Viteri Lucero<sup>3</sup>, Edilberto Lozano Torres<sup>3</sup> </b></font></p>     <font size="2" face="Verdana">    <p>&nbsp;</p>        <p><sup>1</sup> Art&iacute;culo derivado de una investigaci&oacute;n para optar al t&iacute;tulo de Odont&oacute;logo, como proyecto del grupo de Investigaci&oacute;n en Materiales Dentales (Grimad). Apoyo financiero de la Facultad de Odontolog&iacute;a de la Universidad Nacional de Colombia dentro de la convocatoria interna para apoyo de la investigaci&oacute;n, a&ntilde;o 2009    <br>  <sup>2</sup> Odont&oacute;loga, especialista en Rehabilitaci&oacute;n Oral, Facultad de Odontolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia. Docente, Facultad de Odontolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>      <sup>3</sup> Odont&oacute;logos, Facultad de Odontolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia</p>      <p>&nbsp;</p>      <p><b>RECIBIDO: ENERO 17/2012-ACEPTADO: JUNIO 5/2012</b></p>      <p>&nbsp;</p>  </font>      <p><font size="2" face="Verdana">Baldi&oacute;n PA, Viteri LN, Lozano E. Efecto de la peroxidasa sobre la resistencia de uni&oacute;n de una resina compuesta al esmalte dental posblanqueamiento. Rev Fac Odontol Univ Antioq 2012; 24(1): 8-21.</font></p>  <font size="2" face="Verdana">    <p>&nbsp;</p> <hr noshade>      <p><b>RESUMEN</b></p>           <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N:</b> se ha reportado que el ox&iacute;geno residual liberado por los agentes blanqueadores interfieren en la adhesi&oacute;n de las resinas compuestas a la estructura dental, raz&oacute;n por la cual se tiene como objetivo comparar la resistencia de uni&oacute;n al corte (RUC) de una resina compuesta al esmalte dental posblanqueamiento con per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 38%, antes y despu&eacute;s de tratar la superficie con la enzima peroxidasa previo a la adhesi&oacute;n.    <br>  <b>M&Eacute;TODOS:</b> se seleccionaron 45 premolares humanos sanos, divididos en tres grupos de 15 dientes cada uno. Grupo 1: control (solo adhesi&oacute;n); grupo 2: blanqueamiento y adhesi&oacute;n; grupo 3: blanqueamiento, aplicaci&oacute;n de peroxidasa y adhesi&oacute;n. Posterior al tratamiento se midi&oacute; la RUC en la m&aacute;quina de ensayos Shimadzu, para determinar diferencia estad&iacute;sticamente significativa entre los tres grupos con nivel de confianza de 95% y con valor de p &lt; 0,05.    <br>  <b>RESULTADOS:</b>el grupo control obtuvo la RUC de 12,8 Mpa (&plusmn; 3,2), el grupo con blanqueamiento tuvo el promedio de 3,5 Mpa (&plusmn; 1,43) y el grupo con blanqueamiento y aplicaci&oacute;n de peroxidasa present&oacute; promedio de 12,2 Mpa (&plusmn; 3,12).    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  <b>CONCLUSIONES:</b> los valores de RUC disminuyeron significativamente con la aplicaci&oacute;n de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 38%, sin embargo, se logr&oacute; el aumento significativo al aplicar la peroxidasa previa a la adhesi&oacute;n.</p>      <p><b>Palabras clave:</b> peroxidasa de r&aacute;bano silvestre, adhesi&oacute;n dental, blanqueamiento dental, resinas compuestas, per&oacute;xido de hidr&oacute;geno.</p>   <hr noshade>             <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>INTRODUCCI&Oacute;N </b></font></p>     <p>Existe controversia en cuanto a los efectos de los agentes de blanqueamiento sobre los tejidos orales duros y blandos. Se ha intentado promulgar el uso racional y responsable de los mismos, as&iacute; como la elecci&oacute;n de productos que hayan sido sometidos a investigaci&oacute;n, par&aacute;metros que dar&aacute;n seguridad y &eacute;xito en el tratamiento, minimizando los posibles efectos adversos. Las alteraciones del esmalte reportadas en algunos estudios incluyen incremento de la porosidad, formaci&oacute;n de fisuras, erosi&oacute;n de la superficie y zonas de desmineralizaci&oacute;n de las &aacute;reas interprism&aacute;ticas,<sup>1-6</sup> como tambi&eacute;n, cambios en su composici&oacute;n qu&iacute;mica y alteraciones de sus propiedades mec&aacute;nicas.<sup>1, 7-13</sup> Autores como Dishman y colaboradores<sup>14</sup> y Villarreal y colaboradores,<sup>15</sup> aseguran que los agentes blanqueadores interfieren en la adhesi&oacute;n de las resinas compuestas a la estructura dental, a trav&eacute;s de la interacci&oacute;n con el ox&iacute;geno residual en forma de radicales libres que permanecen en los tejidos de dos a cuatro semanas despu&eacute;s de concluido el tratamiento de blanqueamiento dental,<sup>7, 8, 10</sup> inhibiendo la capacidad adhesiva de las mismas. Sin embargo, se ha intentado probar algunos m&eacute;todos que ayuden a inactivar los radicales libres de ox&iacute;geno residual para tratar de reversar las consecuencias fisicoqu&iacute;micas indeseables sobre la estructura dental y la adhesi&oacute;n al sustrato adamantino.<sup>15, 16</sup> Esperar un lapso de tiempo prudente posterior al tratamiento de blanqueamiento dental<sup>17</sup> o el uso de sustancias antioxidantes, <sup>15, 18, 19</sup> se han propuesto como estrategias para eliminar el per&oacute;xido residual de la estructura dental para poder efectuar restauraciones adhesivas inmediatamente despu&eacute;s de terminado el proceso de blanqueamiento, y a la vez, proteger la estructura del esmalte de los posibles efectos adversos del per&oacute;xido residual de los agentes de blanqueamiento, como cambios microestructurales, <sup>2, 4, 5</sup> disminuci&oacute;n de la dureza superficial<sup>20</sup> y alteraci&oacute;n en su composici&oacute;n qu&iacute;mica.<sup>7, 9</sup></p>     <p>Estudios como el de T&uuml;rk&uuml;n y colaboradores<sup>19, 21</sup> y de G&ouml;k&ccedil;e y colaboradores<sup>22</sup> han sugerido el uso de ascorbato de sodio como m&eacute;todo eficaz para revertir el efecto oxidante de sustancias blanqueadoras, mientras que Rotstein y colaboradores<sup>18</sup> encontraron que, la catalasa aplicada t&oacute;picamente por tres minutos fue efectiva en eliminar totalmente el per&oacute;xido de hidr&oacute;geno residual contenido en las estructuras dentarias despu&eacute;s de la aplicaci&oacute;n del per&oacute;xido de hidr&oacute;geno a nivel intracoronal.</p>     <p>Este estudio pretendi&oacute; evaluar comparativamente el efecto de un tratamiento antioxidante con la enzima peroxidasa sobre la resistencia de uni&oacute;n inmediata de una resina compuesta al esmalte dental expuesto a un agente de blanqueamiento con base en per&oacute;xido de hidr&oacute;geno de alta concentraci&oacute;n (38%).</p>      <p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se hizo un estudio de tipo experimental cuantitativo <i>in vitro</i>, para el cual se seleccionaron 45 dientes premolares humanos sanos, con formaci&oacute;n radicular completa reci&eacute;n extra&iacute;dos por razones ortod&oacute;nticas, se verific&oacute; ausencia de caries, fracturas, desgastes, defectos del esmalte y restauraciones previas, las muestras fueron mantenidas en el medio de almacenamiento durante un periodo no mayor a tres meses. Se tuvieron en cuenta las consideraciones &eacute;ticas para la recolecci&oacute;n, manejo y desecho de las muestras, seg&uacute;n la resoluci&oacute;n N.&deg; 008430 de 1993 del Ministerio de Salud,<sup>23</sup> en la cual este estudio se clasifica como una investigaci&oacute;n de riesgo m&iacute;nimo, para la que fue necesario diligenciar un formato firmado por cada paciente, quien dio su consentimiento para la donaci&oacute;n de sus dientes espec&iacute;ficamente para este estudio, el cual fue aprobado por el Comit&eacute; de &eacute;tica de la Facultad de Odontolog&iacute;a de la Universidad Nacional de Colombia.</p>     <p>Las muestras se fijaron en cloramina al 0,5% por 24 h y luego fueron almacenadas en agua destilada hasta el momento de las pruebas. Los dientes fueron embebidos en moldes de resina acr&iacute;lica para conformar sostenedores en forma de cubo para facilitar la colocaci&oacute;n de las muestras en la m&aacute;quina de ensayos Shimadzu AG-SI Series. El &aacute;rea adhesiva se delimit&oacute; previamente mediante el empleo de un c&iacute;rculo de papel <i><b>Contact<sup>&reg;</sup></b></i> con un agujero en el centro del mismo de 2 mm de di&aacute;metro. Despu&eacute;s se aplic&oacute; &aacute;cido fosf&oacute;rico al 37% para hacer el acondicionamiento superficial al esmalte, se sec&oacute; con papel absorbente y luego se aplicaron dos capas de adhesivo Tetric N-Bond<sup>&reg;</sup> (Ivoclar/Vivadent, Alemania, <i>Liechtenstein</i>) con un aplicador hasta obtener una superficie brillante, se aire&oacute; suavemente y se fotopolimeriz&oacute; durante 20 s en cada superficie (M-D-V) con la l&aacute;mpara Bluephase C8 G2<sup>&reg;</sup> (Ivoclar/Vivadent, Alemania, <i>Liechtenstein</i>) en el programa <i>Low</i> o de baja potencia, seg&uacute;n las instrucciones del fabricante.</p>     <p>Las muestras fueron separadas en tres grupos; grupo 1: adhesi&oacute;n, limpieza de la superficie con bicarbonato de sodio y agua, aplicaci&oacute;n de &aacute;cido fosf&oacute;rico al 37%, lavado, secado, adhesivo y resina; grupo 2: blanqueamiento -adhesi&oacute;n, aplicaci&oacute;n de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 38% (Opalescence X-tra Boost<sup>&reg;</sup>/Ultradent Products, South Jordan, USA); siguiendo las indicaciones del fabricante, se mezcl&oacute; la jeringa activadora con el agente blanqueador para hacer dos aplicaciones consecutivas de 15 min cada una, formando una capa no mayor a 1 mm de espesor; limpieza de la superficie con bicarbonato de sodio y agua, aplicaci&oacute;n de &aacute;cido fosf&oacute;rico al 37%, lavado, secado, adhesivo, resina; grupo 3: blanqueamiento-enzima; el antioxidante enzim&aacute;tico utilizado fue peroxidasa de r&aacute;bano picante (Peroxidase from horseradish type I/ SIGMA-ALDRICH, St. Louis, USA), que contiene 50-150 unidades/mg s&oacute;lido, la cual fue disuelta en un <i>buffer</i> de fosfato, dando una concentraci&oacute;n final de peso volumen de 472 mg/ml a pH de 6,9 a 7, la soluci&oacute;n fue almacenada a -20 &deg;C hasta el momento de su utilizaci&oacute;n, momento en el cual se aplic&oacute; una capa delgada en la superficie dental con un aplicador y se dej&oacute; actuar durante 15 min. Luego, se hizo el lavado de las muestras con agua destilada, se sec&oacute; la superficie con papel absorbente y se hizo el proceso de adhesi&oacute;n convencional.</p>     <p>Posterior a los tratamientos de superficie y adhesi&oacute;n de la resina compuesta, cada muestra fue probada en la m&aacute;quina de ensayos universales Shimadzu AG-IS Series, ubicando la l&aacute;mina de corte a 0,5 mm de la interfase adhesiva para aplicar la carga de 50 N, a velocidad constante de 1 mm/min, hasta producir la fractura de esp&eacute;cimen y as&iacute;, registrar los valores en los que se produjo la falla. Teniendo en cuenta el &aacute;rea de adhesi&oacute;n (A = p r<sup>2</sup>) en mm<sup>2</sup> y la magnitud de la carga registrada en Newtons, se calcul&oacute; el correspondiente esfuerzo en Mpa (N/mm<sup>2</sup>), consignando los datos en una tabla que relacionaba las dos variables del estudio: tratamiento de la superficie por grupo y la fuerza de adhesi&oacute;n al esmalte dental (resistencia de uni&oacute;n al corte en Mpa).</p>     <p>Los datos fueron analizados mediante la prueba no param&eacute;trica basada en rangos de ANOVA Kruskal-Wallis de una v&iacute;a para contrastar la hip&oacute;tesis de igualdad de las medianas de los tratamientos y posteriormente la prueba no param&eacute;trica de Mann-Whitney para contrastar la hip&oacute;tesis de igualdad de los grupos de inter&eacute;s,con el empleo del paquete estad&iacute;stico Social Sciences Statistical Package SPSS, 15.0 (SPSS Inc., Chicago, IL, USA). Se aplicaron medidas de tendencia central (media y desviaci&oacute;n est&aacute;ndar) para resumir la presentaci&oacute;n de los datos por grupo. Consider&aacute;ndose valores de p  	&lt; 0,05 como diferencias estad&iacute;sticamente significativas, entre el grupo control y los grupos tratados con blanqueador y la enzima peroxidasa.</p>      <p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana"><b>RESULTADOS</b></font></p>      <p>Con un nivel de significancia de 5% (nivel de confianza de 95%) se rechaza la hip&oacute;tesis nula de igualdad de medianas entre tratamientos. Se encontr&oacute; evidencia estad&iacute;sticamente significativa de disminuci&oacute;n de la RUC de la resina compuesta al esmalte luego de aplicar per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 38% en comparaci&oacute;n con el grupo control (p = 0,003). Adem&aacute;s, aumento en la RUC hallada en el grupo del blanqueamiento con posterior aplicaci&oacute;n de la peroxidasa al compararla con la RUC del grupo con blanqueamiento y adhesi&oacute;n inmediata (p = 0,0025); y se observ&oacute; recuperaci&oacute;n del valor de RUC inicial al no encontrar diferencia estad&iacute;stica entre el grupo control de solo adhesi&oacute;n y el grupo en que se aplic&oacute; la peroxidasa (p = 0,069) (<a href="#t1">tabla 1</a>).</p>      <p align="center"><a name="t1"><img src=/img/revistas/rfoua/v24n1/v24n1a02t1e.jpg></a> </p>       <p>Los resultados encontrados demuestran que en el grupo 1 (adhesi&oacute;n), se obtuvo mayor promedio de resistencia de uni&oacute;n al corte con valor de 12,8 Mpa (&plusmn; 3,2), con respecto al grupo 2 (blanqueamiento-adhesi&oacute;n) en el que se observ&oacute; disminuci&oacute;n en los valores de resistencia de uni&oacute;n del 72,65% en comparaci&oacute;n con el grupo 1 con promedio de 3,5 Mpa (&plusmn; 1,43).</p>  Al aplicar la peroxidasa posblanqueamiento en el grupo 3 se obtuvo recuperaci&oacute;n del 95,3% con respecto al  grupo 1 con promedio de 12,2 Mpa (&plusmn; 3,12) (<a href="#f1">figuras 1</a> y <a href="#f2">2</a>).      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f1"><img src=/img/revistas/rfoua/v24n1/v24n1a02f1e.jpg></a> </p>       <p align="center"><a name="f2"><img src=/img/revistas/rfoua/v24n1/v24n1a02f2e.jpg></a> </p>       <p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>      <p>Se ha reportado que los agentes blanqueadores con base en per&oacute;xido pueden inducir cambios morfol&oacute;gicos y estructurales en la interfase resina-esmalte, interfiriendo con la adhesi&oacute;n de las resinas compuestas a la estructura dental.<sup>8, 10, 14, 15</sup></p>     <p>El prop&oacute;sito del estudio fue determinar el efecto de la enzima peroxidasa sobre la adhesi&oacute;n de una resina compuesta al esmalte dental previamente expuesto a per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 38%; con este fin se hicieron pruebas de adhesi&oacute;n aplicando una carga tangencial a tres grupos; grupo 1: grupo control en el cual se hizo &uacute;nicamente adhesi&oacute;n, grupo 2: adhesi&oacute;n posterior al blanqueamiento y grupo 3: blanqueamiento, tratamiento con peroxidasa y adhesi&oacute;n inmediata.</p>     <p>Se logr&oacute; demostrar la disminuci&oacute;n de 8,93 Mpa en la resistencia de uni&oacute;n al corte de la resina adherida inmediatamente al esmalte blanqueado, en comparaci&oacute;n con el grupo control en donde solo se hizo adhesi&oacute;n, esto confirma que el uso de agentes blanqueadores con base en per&oacute;xido de hidr&oacute;geno de alta concentraci&oacute;n durante los tiempos establecidos por el fabricante genera una reducci&oacute;n de la resistencia de uni&oacute;n de las resinas compuestas al esmalte dental. La fundamentaci&oacute;n del an&aacute;lisis de dicho efecto ha sido sustentada por autores como Bulut y colaboradores,<sup>24</sup> Miles y colaboradores<sup>25</sup> y McGuckin y colaboradores<sup>26</sup> por la presencia de per&oacute;xido residual u ox&iacute;geno liberado por los agentes de blanqueamiento que inhiben el proceso de polimerizaci&oacute;n de los sistemas adhesivos y las resinas compuestas, y por una alteraci&oacute;n de la estructura superficial del esmalte asociada a una erosi&oacute;n de la capa aprism&aacute;tica, y a una p&eacute;rdida del contenido de calcio y f&oacute;sforo.<sup>15, 27</sup> Esta disminuci&oacute;n de la fuerza adhesiva ha llevado a sugerir, por parte de autores como Miranda y colaboradores<sup>28</sup> y Shinohara y colaboradores,<sup>29</sup> que los procedimientos restaurativos deben postergarse de dos a cuatro semanas despu&eacute;s del blanqueamiento dental, ya que la reducci&oacute;n en la resistencia de uni&oacute;n de la resina compuesta al esmalte reci&eacute;n blanqueado ha demostrado ser transitoria.<sup>30</sup> Esto se atribuye a que el esmalte pasa por un proceso de remineralizaci&oacute;n,<sup>31</sup> que permite el remplazo de iones de fosfato, calcio y otros minerales perdidos, por los mismos elementos u otros iones provenientes de la saliva; incluyendo los de fluoruro, que van a fomentar la formaci&oacute;n de cristales aportando una matriz m&aacute;s consolidada para la adhesi&oacute;n. La sobresaturaci&oacute;n en la saliva de iones calcio y fosfato, tiene un papel importante en el proceso de remineralizaci&oacute;n, sin embargo, autores como Larsen y colaboradores<sup>32</sup> reportan que este proceso requiere tiempo, porque a pesar de que la saliva y las soluciones remineralizantes se encuentran sobresaturadas con respecto a la apatita del esmalte, la cantidad total de calcio y fosfato disuelto es peque&ntilde;;o, as&iacute; que despu&eacute;s de la precipitaci&oacute;n de los minerales disueltos solo 1/20.000-1/30.000 del volumen de la soluci&oacute;n de mineralizaci&oacute;n est&aacute; ocupado por mineral. Adem&aacute;s, que los gradientes de concentraci&oacute;n de la soluci&oacute;n de mineralizaci&oacute;n en el esmalte son bajos, lo que indica la lenta difusi&oacute;n dentro de la estructura,<sup>32</sup> raz&oacute;n por la cual es prudente esperar el tiempo recomendado por autores como Shinohara y colaboradores,<sup>29</sup> Basting y colaboradores<sup>33</sup> y Cavalli y colaboradores<sup>34</sup> para recuperar una superficie de esmalte con menores cambios aparentes.</p>     <p>Situaciones cl&iacute;nicas tales como, restauraciones antiguas en el sector anterior que afectan la apariencia est&eacute;tica, necesidad de inicio de un tratamiento de ortodoncia o simplemente la disponibilidad de tiempo del paciente para un tratamiento cosm&eacute;tico que requiera procedimientos adhesivos posblanqueamiento,<sup>25, 35</sup> ponen al cl&iacute;nico en una postura dif&iacute;cil en el momento de decidir si acceder a hacer el tratamiento restaurador, antes de esperar el tiempo prudente para hacer la adhesi&oacute;n posblanqueamiento dental. Por esta raz&oacute;n, ha surgido la necesidad de buscar la forma de permitir al cl&iacute;nico hacer restauraciones adhesivas inmediatamente despu&eacute;s de un blanqueamiento dental sin el riesgo al fracaso de las mismas.</p>     <p>Villarreal y colaboradores<sup>15</sup> reportan que el uso complementario de sustancias antioxidantes reducen el efecto adverso sobre la resistencia de uni&oacute;n de las resinas al esmalte acondicionado y sobre los cambios en su morfolog&iacute;a y composici&oacute;n qu&iacute;mica. Antioxidantes enzim&aacute;ticos como la catalasa y la super&oacute;xido dismutasa,<sup>15, 18, 36</sup> y no enzim&aacute;ticos<sup>37</sup> como el ascorbato de sodio al 10% han sido probados como agentes inactivadores del ox&iacute;geno residual, capaces de reversar el efecto negativo de los agentes blanqueadores sobre la resistencia de uni&oacute;n al esmalte dental, obteniendo hasta el momento buenos resultados.<sup>19, 21, 24, 38</sup> Rotstein y colaboradores<sup>12</sup> demostraron que la aplicaci&oacute;n de catalasa por tres minutos tiene la capacidad de eliminar totalmente el per&oacute;xido de hidr&oacute;geno residual y lo recomiendan como protocolo posblanqueamiento intracameral en dientes no vitales para eliminar el ox&iacute;geno de la c&aacute;mara pulpar y de los tejidos periodontales circundantes para disminuir su da&ntilde;o potencial.</p>     <p>Lai y colaboradores<sup>39</sup> T&uuml;rk&uuml;n y colaboradores<sup>19</sup> y Feiz y colaboradores<sup>38</sup> comprobaron que con la inmersi&oacute;n de las muestras en agua por 24 horas<sup>39</sup> y el uso de un agente antioxidante como el ascorbato de sodio se inhibe la disminuci&oacute;n en la resistencia de uni&oacute;n de las resinas compuestas posblanqueamiento.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La peroxidasa tambi&eacute;n ha sido probada en estudios por Bowles y colaboradores<sup>40</sup> y Gimeno y colaboradores,41 quienes demostraron que durante o inmediatamente despu&eacute;s del tratamiento blanqueador con per&oacute;xido de hidr&oacute;geno, su uso puede prevenir efectos nocivos sobre los tejidos blandos de la cavidad oral y la pulpa dentaria. Masaki y colaboradores,<sup>42</sup> Spector y colaboradores<sup>43</sup>y Bj&ouml;rkman y colaboradores<sup>44</sup> hicieron investigaciones sobre cultivos celulares de fibroblastos, c&eacute;lulas epiteliales y tiroideas demostrando un efecto protector de tejidos mediante la utilizaci&oacute;n de catalasa y peroxidasa frente a los radicales libres de ox&iacute;geno.</p>     <p>Al evaluar la acci&oacute;n antioxidante de la enzima peroxidasa, bajo las condiciones de este estudio, se observ&oacute; el aumento en la resistencia de uni&oacute;n al corte al aplicarla sobre la superficie dental inmediatamente posterior al blanqueamiento con per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 38%, demostrando la recuperaci&oacute;n significativa de la fuerza adhesiva de la resina compuesta al esmalte dental por medio de la eliminaci&oacute;n de los radicales liberados por el agente blanqueador gracias a su acci&oacute;n enzim&aacute;tica en procesos de oxidorreducci&oacute;n,<sup>15, 16, 18</sup> lo que indica que la actividad enzim&aacute;tica de la peroxidasa permite la eliminaci&oacute;n del per&oacute;xido residual. Por tratarse de una mol&eacute;cula de tama&ntilde;o del orden de 40.000 Da, tiene la capacidad de penetrar a trav&eacute;s de la matriz adamantina entre las varillas del esmalte y quiz&aacute;, hasta los t&uacute;bulos dentinales, permitiendo la interacci&oacute;n con las mol&eacute;culas de ox&iacute;geno, causando su oxidaci&oacute;n y degrad&aacute;ndose a subproductos como el agua, evitando as&iacute;, la inhibici&oacute;n en el proceso de polimerizaci&oacute;n de las resinas compuestas y sistemas adhesivos al conformarse una red tridimensional estable de enlaces carbono-carbono de los grupos metacrilato.<sup>38, 39</sup></p>     <p>Rocha y colaboradores<sup>45</sup> reportaron que la aplicaci&oacute;n de catalasa y glutati&oacute;n peroxidasa mejoraron la resistencia de uni&oacute;n al esmalte en comparaci&oacute;n con el grupo control positivo con aplicaci&oacute;n de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno, sin embargo, la catalasa demostr&oacute; mejor actividad que la peroxidasa. Este resultado lo atribuyen al mecanismo de acci&oacute;n de la catalasa, el cual requiere un n&uacute;mero reducido de mol&eacute;culas para generar su acci&oacute;n enzim&aacute;tica. A pesar de esto, los autores afirman que ambas enzimas no tuvieron la capacidad de neutralizaci&oacute;n completa pues la resistencia de uni&oacute;n fue significativamente m&aacute;s baja que la del grupo control negativo, infiriendo que el uso de una soluci&oacute;n m&aacute;s concentrada probablemente podr&iacute;a presentar mejores resultados. Concepto que aclarar&iacute;a el porqu&eacute; de la diferencia en los resultados con respecto a este estudio. Rocha y colaboradores<sup>45</sup> utilizaron una peroxidasa de eritrocitos de bovino de 680 unidades/mg de prote&iacute;nas con una concentraci&oacute;n de 10 mg/ml, mientras que en este estudio se hizo la aplicaci&oacute;n de peroxidas de r&aacute;bano picante de 150 unidades/mg de prote&iacute;nas con una concentraci&oacute;n de 472 mg/ml, aumentando la cantidad final de peso volumen de la enzima,arrojando mejores resultados en la recuperaci&oacute;n de la resistencia de uni&oacute;n al esmalte dental posblanqueamiento.</p>     <p>Para que se cumplan las condiciones inherentes en las reacciones enzim&aacute;ticas, las enzimas deben manipularse bajo condiciones que no favorezcan su desnaturalizaci&oacute;n, puesto que esta conduce a su inactivaci&oacute;n. El uso de agentes antioxidantes enzim&aacute;ticos, como la catalasa, peroxidasa y super&oacute;xido dismutasa, presentan mayor sensibilidad de la t&eacute;cnica para su aplicaci&oacute;n cl&iacute;nica comparado a los antioxidantes no enzim&aacute;ticos. La actividad enzim&aacute;tica est&aacute; condicionada a los siguientes factores: el efecto de la concentraci&oacute;n enzim&aacute;tica, la temperatura, el pH del medio y su agitaci&oacute;n. El efecto de la concentraci&oacute;n de la enzima determina la velocidad de la reacci&oacute;n por la proporcionalidad entre la cantidad de enzima <i>versus</i> el sustrato, la velocidad de la reacci&oacute;n disminuye, a medida que aumenta la concentraci&oacute;n del sustrato. Con respecto al control de la temperatura, la mayor&iacute;a de reacciones enzim&aacute;ticas ocurren a temperaturas entre 0 y 60 &deg;C, la temperatura &oacute;ptima est&aacute; usualmente relacionada con la temperatura del medio ambiente celular de la cual es derivada la enzima, para la activaci&oacute;n de la peroxidasa esta temperatura es de 37 &deg;C. Su estructura proteica terciaria se mantiene gracias a enlaces de naturaleza f&iacute;sica no covalentes, los cuales son altamente sensibles a cambios de temperatura. Otro factor importante es el efecto del pH, la enzima peroxidasa tiene pH &oacute;ptimo caracter&iacute;stico de 6,9 a 7,0; los cambios en las concentraciones de los iones H+ y OH- modifican el pH de la soluci&oacute;n alterando las interacciones entre las mol&eacute;culas de prote&iacute;nas y, por tanto, su estructura tridimensional y su actividad. Y por &uacute;ltimo, el efecto de la agitaci&oacute;n, condici&oacute;n en la que cuando se agitan violentamente, forman espuma por la baja tensi&oacute;n superficial que presentan las soluciones de prote&iacute;nas, lo que hace que se favorezca su desnaturalizaci&oacute;n.<sup>15, 46-48</sup></p>     <p>Es necesario considerar que el protocolo planteado para el procesamiento del preparado enzim&aacute;tico y conservaci&oacute;n de la peroxidasa, que permiti&oacute; que la actividad catal&iacute;tica se llevara a cabo sobre el sustrato de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno residual y los radicales libres en la superficie dental, contiene par&aacute;metros de preparaci&oacute;n, conservaci&oacute;n y aplicaci&oacute;n de la enzima espec&iacute;ficos, que aumentan la sensibilidad y dificultad de la t&eacute;cnica cl&iacute;nica, ya que podr&iacute;a alterarse f&aacute;cilmente su actividad catal&iacute;tica debido a su naturaleza biol&oacute;gica, raz&oacute;n por la cual es importante evaluar la aplicabilidad del protocolo de manejo cl&iacute;nico de la peroxidasa de r&aacute;bano picante (<i>Horseradish</i> Tipo I/SIGMA-ALDRICH, St. Louis, USA)en nuestro medio, pues fue evidente su elevado costo y dificultad de consecuci&oacute;n, al igual que ocurre con cualquier tipo de enzima antioxidante de caracter&iacute;sticas similares como la catalasa u otros tipos de peroxidasa derivadas de sangre, levadura o habichuela. La presentaci&oacute;n de la peroxidasa de polvo liofilizado requiri&oacute; una preparaci&oacute;n en una soluci&oacute;n amortiguadora de fosfato, a pH de 7 como medio estable para que hiciera su acci&oacute;n catal&iacute;tica sin desnaturalizarse, y poder conseguir una preparaci&oacute;n l&iacute;quida o gel de f&aacute;cil aplicaci&oacute;n, adem&aacute;s fue necesario el riguroso almacenamiento a -20&deg;C, transporte cuidadoso de la enzima, y el tiempo de espera prolongado para el env&iacute;o del producto a nuestro pa&iacute;s; estas limitaciones hacen sugerir la posibilidad de b&uacute;squeda de nuevas alternativas para la producci&oacute;n de la enzima a menor costo, con facilidades de adquisici&oacute;n y distribuci&oacute;n, aislando la enzima directamente de productos que se puedan obtener de forma pr&aacute;ctica o con un proceso sencillo de separaci&oacute;n de la misma en el laboratorio.</p>     <p>Los hallazgos se consideran importantes en cuanto a su alcance, ya que aportan evidencia significativa para ahondar en procedimientos cl&iacute;nicos que disminuyan los efectos nocivos de los agentes blanqueadores, pues pese a las m&uacute;ltiples investigaciones que demuestran las alteraciones a niveles fisiol&oacute;gico,<sup>49-53</sup> qu&iacute;mico,<sup>7, 9, 54</sup> mec&aacute;nico1,<sup>8-11, 13, 20, 55</sup> y estructural<sup>1-3, 6, 12</sup> por acci&oacute;n de per&oacute;xidos, sigue siendo uno de los tratamientos est&eacute;ticos m&aacute;s solicitados por los pacientes y m&aacute;s ejecutados por los odont&oacute;logos en la actualidad.</p>      <p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana"><b>RECOMENDACIONES</b></font></p>      <p>Se recomiendan estudios para encontrar una alternativa de aplicaci&oacute;n de la peroxidasa evaluando la actividad catal&iacute;tica cuantitativamente, en cuanto a la velocidad de reacci&oacute;n y tiempo, al igual que la evidencia microsc&oacute;pica de su acci&oacute;n sobre los cambios microestructurales del esmalte dental.</p>     <p>Se necesita determinar las constantes catal&iacute;ticas y el tiempo de vida media de la peroxidasa con respecto al per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 38% de uso odontol&oacute;gico sobre la superficie del esmalte dental, para tener un par&aacute;metro o determinar la cantidad de unidades catal&iacute;ticas m&aacute;s cercanas que aseguren la eliminaci&oacute;n total del per&oacute;xido de hidr&oacute;geno residual y sus radicales libres.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>       <p>Entre de las limitaciones de este estudio se puede concluir que:</p>     <p>Existe una significativa reducci&oacute;n estad&iacute;stica en la resistencia de uni&oacute;n al corte de la resina compuesta adherida al esmalte dental sometido a blanqueamiento con per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 38%.</p>     <p>Hay recuperaci&oacute;n en los valores de resistencia de uni&oacute;n al corte de la resinas compuestas al aplicar la enzima peroxidasa sobre la superficie dental inmediatamente posterior a la aplicaci&oacute;n del per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 38%.</p>      <p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>       <p>A la Facultad de Odontolog&iacute;a de la Universidad Nacional de Colombia por su apoyo financiero para la elaboraci&oacute;n de este estudio dentro de la convocatoria interna de la Facultad, a&ntilde;o 2009.</p>      <p>&nbsp;</p>       <p><font size="3" face="Verdana"><b>REFERENCIAS</b></font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>1. Akal N, Over H, Olmez A, Bodur, H. Effects of carbamide peroxide containing bleaching agents on the morphology and subsurface hardness of enamel. J Clin Pediatric Dent 2001; 25: 293-296.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0121-246X201200020000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>2. Cavalli V, Arrais CAG, Giannini M. Scanning electron microscopy observations of human bleached enamel surface. Acta Microsc 2001; 1 (supl A): 41-42.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0121-246X201200020000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>3. Flaitz CM, Hicks MJ. Effects of carbamide peroxide whitening agents on enamel surfaces and caries-like lesion formation: An SEM and polarized light microscopic in vitro study. J Dent Child 1996; 63: 249-256.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0121-246X201200020000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>4. Heged&uuml;s C, Bistey T, Fl&oacute;ra-Nagy E, Keszthelyi G, Jenei A. An atomic force microscopy study on the effect of bleaching agents on enamel surface. J Dent 1999; 27: 509-515.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0121-246X201200020000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>5. Perdig&atilde;o J, Francci C, Swift Jr EJ, Ambrose WW, Lopes M. Ultramorphological study of the interaction of dental adhesives with carbamide peroxide-bleached enamel. Am J Dent 1998; 11: 291-301.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0121-246X201200020000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>6. Shannon H, Spencer P, Gross K, Tira D. Characterization of enamel exposed to 10% carbamide peroxide bleaching agents. Quintessence Inter 1993; 24: 39-44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0121-246X201200020000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>7. Attin T, Kielbassa AM, Schwanenberg M, Hellwig E. Effect of fluoride treatment on remineralization of bleached enamel. J Oral Rehabil 1997; 24: 282-286.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0121-246X201200020000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>8. Cavalli V, Giannini M, Carvalho R. Effect of carbamide peroxide bleaching agents on tensile strength of human enamel. Dent Mater 2004; 20: 733-739.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0121-246X201200020000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>9. Cimilli H, Pameijer CH. Effect of carbamide peroxide bleaching agents on the physical properties and chemical composition of enamel. Am J Dent 2001; 14: 63-66.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0121-246X201200020000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>10. Murchison DR, Charlton DG, Moore BK. Carbamide peroxide bleaching: effects on enamel surface hardness and bonding. Oper Dent 1992; 17: 181-185.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0121-246X201200020000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>11. Potocnik I, Kosec L, Gaspersic D. Effect of 10% carbamide peroxide bleaching gel on enamel microhardness, microstructure and mineral content. J Endod 2000; 26: 203-206.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0121-246X201200020000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>12. Rotstein I, Dankner E, Goldman A, Heling I, Stabholz A, Zalkind M. Histochemical analysis of dental hard tissues following bleaching. J Endod 1996; 22: 23-26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0121-246X201200020000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>13. Seghi RR, Denry I. Effects of external bleaching on indentation and abrasion characteristics of human enamel. J Oral Rehabil 1992; 71: 1340-1344.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0121-246X201200020000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>14. Dishman MV, Covey DA, Baughan LW. The effects of peroxide bleaching on resin composite to enamel bond strength. Dent Mater 1994; 10(1): 33-36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0121-246X201200020000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>15. Villarreal B, Einer N. Funci&oacute;n de las sustancias antioxidantes sobre esmalte blanqueado con per&oacute;xido de hidr&oacute;geno ante la adhesi&oacute;n inmediata de resina compuesta y sus cambios estructurales y morfol&oacute;gicos superficiales. Rev Paul Odontol 2004; 26(3): 27-31.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0121-246X201200020000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>16. Hakan B, Murat T, Aysegul D. Effect of an antioxidizing agent on the shear bond strength of brackets bonded to bleached human enamel. Am J Orthod Dentofacial Orthop 2006; 29(2): 266-272.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0121-246X201200020000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>17. Van der Vyver PJ, Lewis SB, Marais JT. The effect of bleaching agent on composite/enamel bonding. J Dent Assoc S Afr 1997; 52(10): 601-603.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0121-246X201200020000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>18. Rotstein I. Role of catalase in the elimination of residual hydrogen peroxide following tooth bleaching. J Endod 1993; 19(11): 567-569.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0121-246X201200020000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>19. T&uuml;rk&uuml;n M, Kaya AD. Effect of 10% sodium ascorbate on the shear bond strength of composite resin to bleached bovine enamel. J Oral Rehabil 2004; 31(12): 1184-1191.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0121-246X201200020000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>20. Attin T, Muller T, Patyk A, Lennon AM. Influence of different bleaching systems on fracture toughness and hardness of enamel. Oper Dent 2004; 29(2): 188-195.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0121-246X201200020000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>21. T&uuml;rk&uuml;n M, Celik EU, Kaya AD, Arici M. Can the hydrogel form of sodium ascorbate be used to reverse compromised bond strength after bleaching? J Adhes Dent 2009; 11(1): 35-40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0121-246X201200020000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>22. G&ouml;k&ccedil;e B, C&ouml;mlekoglu ME, Ozpinar B, T&uuml;rk&uuml;n M, Kaya AD. Effect of antioxidant treatment on bond strength of a luting resin to bleached enamel. J Dent 2008; 36(10): 780-785.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0121-246X201200020000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>23. Colombia. Ministerio de Salud. Resoluci&oacute;n N.&deg; 8430 de 1993 (4 de octubre). Por la cual se establecen las normas cient&iacute;ficas, t&eacute;cnicas y administrativas para la investigaci&oacute;n en salud. T&iacute;tulo II. De la investigaci&oacute;n en seres humanos. Cap&iacute;tulo 1. De los aspectos &eacute;ticos de la investigaci&oacute;n en seres humanos: art&iacute;culos 5.&deg; al 16. &#91;en l&iacute;nea&#93; &#91;fecha deacceso 15 de octubre de 2011&#93; Disponible en:   <a href="http://www.dib.unal.edu.co/promocion/etica_res_8430_1993.pdf"target="_blank">http://www.dib.unal.edu.co/promocion/etica_res_8430_1993.pdf</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0121-246X201200020000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Bulut H, Turkun M, Demirbas AK. Effect of an antioxidizing agent on the shear bond strength of brackets bonded to bleached human enamel. Am J Orthod Dentofacial Orthop 2006; 129(2): 266-272.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0121-246X201200020000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>25. Miles PG, Pontier J, Bahiraei D, Close J. The effect of carbamide peroxide bleach on the tensile bond strength of ceramic brackets: an in vitro study. Am J Orthod Dentofacial Orthop 1994; 106(4): 371-375.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0121-246X201200020000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>26. McGuckin RS, Thurmond BA, Osovitz S. Enamel shear bond strengths after vital bleaching. Am J Dent 1992; 5(4): 216-222.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0121-246X201200020000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>27. Torneck CD, Titley KC, Smith DO, Adibfar A. Effect of water leaching on the adhesion of composite resin to bleached and unbleached bovine enamel. J Endod 1991; 17(4): 156-160.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0121-246X201200020000200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <p>28. Miranda AM, Bermejo GN, Baz&aacute;n JE, Saravia MA. Efectos de un blanqueamiento dental con ozono y otro con per&oacute;xido de carbamida al 22% sobre la fuerza de adhesi&oacute;n al esmalte en diferentes intervalos de tiempo. Acta Odontol Venez 47(4): 69-77.</p>      <!-- ref --><p>29. Shinohara MS, Peris AR, Pimenta LA, Ambrosano GM. Shear bond strength evaluation of composite resin on enamel and dentin after non vital bleaching. J Esthet Restor Dent 2005; 17(1): 22-29.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0121-246X201200020000200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>30. Sung EC, Chan SM, Mito R, Caputo AA. Effect of carbamide peroxide bleaching on the shear bond strength of composite to dental bonding agent enhanced enamel. J Prosthet Dent 1999; 82(5): 595-599.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0121-246X201200020000200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>31. Chen HP, Chang CH, Liu JK, Chuang SF, Yang JY. Effect of fluoride containing agents on enamel surface properties. J Dent 2008; 36(9): 718-725.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0121-246X201200020000200030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>32. Larsen MJ, Fejerkov O. Chemical and structural challenges in remineralization of dental enamel lesions. Eur J Oral Sci 1989; 97(4): 285-296.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0121-246X201200020000200031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>33. Basting RT, Rodrigues JA, Serra MC, Pimenta LA. Shear bond strength of enamel treated with seven carbamide peroxide bleaching agents. J Esthet Restor Dent 2004; 16(4): 250-259.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0121-246X201200020000200032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>34. Cavalli V, Reis AF, Giannini M, Ambrosano GM. The effect of elapsed time following bleaching on enamel bond strength of resin composite. Oper Dent 2001; 26: 597-602.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0121-246X201200020000200033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>35. Nour El-din AK, Miller BH, Griggs JA, Wakefield C. Immediate bonding to bleached enamel. Oper Dent 2006; 31(1): 106-114.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0121-246X201200020000200034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>36. Marklund SL. Regulation by citokynes of extracellular superoxide dismutase and other superoxide dismutase isoenzimes in fibroblastes. J Biol Chem 1992; 267(6): 696-701.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0121-246X201200020000200035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>37. Sies H, Stahl W, Sundquist AR. Antioxidant functions of vitamins. Vitamin E and C, beta-carotene, and other carotenoids. Ann NY Acad Sci 1992; 669: 7-20.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0121-246X201200020000200036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>38. Feiz A, Khoroushi M, Gheisarifar M. Bond strength of composite resin to bleached dentin: effect of using antioxidant versus buffering agent. J Dent 2011; 8(2): 60-66.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0121-246X201200020000200037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>39. Lai S, Tay F, Cheung G, Mak Y, Carvalho R, Wei S et al. Reversal of compromised bonding enamel. J Dent Res 2002; 81(7): 477-481.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0121-246X201200020000200038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>40. Bowles WH, Burns H Jr. Catalase/peroxidase activity in dental pulp. J Endod 1992; 18(11): 527-534.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0121-246X201200020000200039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>41. Gimeno I, Riutord P, Tauler P, Tur JA, Pons A. The whitening effect of enzymatic bleaching on tetracycline. J Dent 2008; 36: 795-800.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0121-246X201200020000200040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>42. Masaki H, Okano Y, Sakurai H. Differential role of catalase and glutathione peroxidase in cultured human fibroblasts under exposure of H2O2 or ultraviolet B light. Arch Dermatol Res. 1998; 290(3): 113-118.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0121-246X201200020000200041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>43. Spector A, Yang Y, Ho YS, Magnenat JL, Wang RR, Ma W et al. Variation in cellular glutathione peroxidase activity in lens epithelial cells, transgenics and knockouts doesnot significantly change the response to H2O2 stress. Exp Eye Res 1996; 62(5): 521-540.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0121-246X201200020000200042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>44. Bj&ouml;rkman U, Ekholm R. Hydrogen peroxide degradation and glutathione peroxidase activity in cultures of thyroid cells. Mol Cell Endocrinol 1995; 111(1): 99-107.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0121-246X201200020000200043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>45. Rocha C, Fuzuko A, Buhler A. The effects of anti-oxidants agents as neutralizers of bleaching agents on enamel bond strength. Braz J Oral Sci 2006; 5(16): 971-976.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0121-246X201200020000200044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>46. Fleschin S, Fleschin M, Nita S, Pavel E, Magearu V. Free radical mediated protein oxidation in Biochemistry. Roun Biotechnol Lett 2000; 5: 479-495.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0121-246X201200020000200045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>47. Southorn PA, Powis G. Free radicals in medicine. II. Involvement in human disease. Mayo Clin Proc 1988; 63: 390-408.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S0121-246X201200020000200046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>48. Southorn PA, Powis G. Free radicals in medicine. I. Chemical nature and biologic reactions. Mayo Clin Proc 1988; 63: 381-389.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S0121-246X201200020000200047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>49. Tredwin CJ, Naik S, Lewis NJ, Scully C. Hydrogen peroxide tooth-whitening (bleaching) products: review of adverse effects and safety issues. Br Dent J 2006; 200: 371-376.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S0121-246X201200020000200048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>50. Haywood VB, Leonard RH, Nelson CF, Brunson WD. Effectiveness, side effects and long-term status of night guard vital bleaching. J Am Dent Assoc 1994; 125(9): 1219-1226.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S0121-246X201200020000200049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>51. Dias AP, Sacono NS, Campos FR, Rosetti FL, Nogueira I, Coldebella CR et al. Cytotoxic effect of a 35% hydrogen peroxide bleaching gel on odontoblast-like MDPC-23 cells. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod 2009; 108: 458-464.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000171&pid=S0121-246X201200020000200050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
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<body><![CDATA[<p>Paula Alejandra Baldi&oacute;n Elorza    <br> Cra. 30 N.&deg; 45-03    <br> Universidad Nacional de Colombia    <br> Facultad de Odontolog&iacute;a    <br> Ciudad Universitaria    <br> Tel&eacute;fono: 316 50 00, Ext. 16015    <br> Fax: 623 08 59    <br> Bogot&aacute;, Colombia    <br> Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:pabaldione@unal.edu.co">pabaldione@unal.edu.co</a></p>  </font>       ]]></body><back>
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