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<journal-title><![CDATA[Revista Facultad de Odontología Universidad de Antioquia]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[INFLUENCIA DEL TIEMPO POSBLANQUEAMIENTO SOBRE LA ADHESIÓN DE UNA RESINA COMPUESTA AL ESMALTE DENTAL]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[INFLUENCE OF POST-BLEACHING TIME ON A COMPOSITE RESIN BOND STRENGTH TO ENAMEL]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Nacional de Colombia, Sede Bogotá Facultad de Odontología ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[INTRODUCTION: despite the aesthetic advantages of tooth whitening, it has been shown to alter the adhesion of composite resins to enamel&mdash;a process determined by the residual concentration of oxygen-free radicals on the enamel's surface and subsurface due to degradation of the bleaching agents' hydrogen peroxide&mdash;. The goal of this study was to evaluate the effect of hydrogen peroxide on a composite resin's bond strength to enamel in different time intervals after whitening. METHODS: 90 human premolars were selected and sorted out in 6 groups: the control group, which was subjected to the adhesive technique only, and five study groups treated with the bleaching agent and each of them being later subjected to the adhesive technique at different time intervals after whitening (0, 1, 7, 14, and 28 days), in order to determine the shear bond strength of the resin adhered to enamel. The obtained data were analyzed by means of the ANOVA test with the F statistical test and Fisher & Duncan multiple comparisons, using p values of < 0.05 as statistically significant differences. RESULTS: The groups undergoing bleaching from 0 to 28 days presented adhesion values statistically lower than those of the control group. CONCLUSIONS: hydrogen peroxide reduces the values of adhesion to enamel. Post-bleaching time is crucial to recover the composite resin bonding strength to dental structure.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[canales radiculares]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[transportación]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[instrumentación rotatoria]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[CBCT]]></kwd>
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<kwd lng="en"><![CDATA[hydrogen peroxide]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[   <font size="2" face="Verdana">      <p align="right"><b>ART&Iacute;CULOS ORIGINALES DERIVADOS DE INVESTIGACI&Oacute;N</b></p>          <p>&nbsp;</p>       <p align="center"><font size="4" face="Verdana"><b>INFLUENCIA DEL TIEMPO POSBLANQUEAMIENTO SOBRE LA ADHESI&Oacute;N DE UNA RESINA COMPUESTA AL ESMALTE DENTAL<sup>1</sup> </b></font></p>          <p>&nbsp;</p>           <p>&nbsp;</p>     <b>Paula Alejandra Baldi&oacute;n Elorza<SUP>2</SUP></b></p>         <p>&nbsp;</p>         <p><sup>1 </sup>Art&iacute;culo derivado de trabajo para optar por la categor&iacute;a de Profesor asociado. Grupo de Investigaci&oacute;n en Materiales dentales (GRIMAD). Apoyo institucional de la Facultad de Odontolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia</p>     <p>    <sup>2</sup>Odont&oacute;loga, especialista en Rehabilitaci&oacute;n Oral, Facultad de Odontolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia. Docente, Departamento de Salud Oral, Facultad de Odontolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, Sede Bogot&aacute;. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:pabaldione@unal.edu.co">pabaldione@unal.edu.co</a></p>     <p> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><b>RECIBIDO: OCTUBRE 23/2012-ACEPTADO: FEBRERO 5/2013</b></p>      <p>&nbsp;</p>        <p>Baldi&oacute;n PA. Influencia del tiempo posblanqueamiento sobre la adhesi&oacute;n de una resina compuesta al esmalte dental. Rev Fac Odontol Univ Antioq 2013; 25(1): 92-116.</p>      <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr noshade>      <p><b>RESUMEN</b></p>           <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N:</b> a pesar de las ventajas est&eacute;ticas del blanqueamiento dental, se ha demostrado que puede producir alteraciones en la adhesi&oacute;n de las resinas compuestas al esmalte dental, proceso dependiente de la concentraci&oacute;n residual de radicales libres de ox&iacute;geno en la superficie y subsuperficie del esmalte por la degradaci&oacute;n del per&oacute;xido de hidr&oacute;geno del agente blanqueador. El objetivo del estudio fue evaluar el efecto del per&oacute;xido de hidr&oacute;geno sobre la resistencia de uni&oacute;n de una resina compuesta al esmalte dental en diferentes intervalos de tiempo posterior al blanqueamiento dental.  <b>M&Eacute;TODOS:</b> se seleccionaron 90 premolares humanos divididos en 6 grupos: el grupo control al que solo se le hizo t&eacute;cnica adhesiva y 5 grupos de estudio, a los cuales se les aplic&oacute; el agente blanqueador para luego hacer la t&eacute;cnica adhesiva a cada grupo en diferentes intervalos de tiempo posterior al blanqueamiento dental (0, 1, 7, 14 y 28 d&iacute;as) para luego determinar la resistencia de uni&oacute;n al corte de la resina adherida al esmalte dental. Los datos fueron analizados mediante la prueba ANOVA con la prueba estad&iacute;stica F y las comparaciones m&uacute;ltiples de Fisher y Duncan, con valores de p &lt; 0,05 como diferencias estad&iacute;sticamente significativas.  <b>RESULTADOS: </b>los valores de adhesi&oacute;n en los grupos con blanqueamiento de los 0 a los 28 d&iacute;as fueron estad&iacute;sticamente menores al grupo control.  <b>CONCLUSIONES:</b> el per&oacute;xido de hidr&oacute;geno reduce los valores de adhesi&oacute;n al esmalte dental. El tiempo posblanqueamiento es determinante para recuperar la resistencia de uni&oacute;n de la resina compuesta a la estructura dental.</p>       <p><b>Palabras clave:</b> canales radiculares, transportaci&oacute;n, instrumentaci&oacute;n rotatoria, CBCT.</p>  <hr noshade>             <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>INTRODUCCI&Oacute;N </b></font></p>       <p>En m&uacute;ltiples investigaciones como las de Dishman y colaboradores,<sup>1</sup> van der Vyver y colaboradores,<sup>2</sup> Homewood y colaboradores<sup>3</sup> y Cappeletto y colaboradores<sup>4</sup> se han descrito los efectos de los agentes blanqueadores sobre los tejidos dentales y la adhesi&oacute;n de las resinas compuestas posteriores al tratamiento de blanqueamiento dental. Sin embargo, lo que se sabe sobre c&oacute;mo minimizar o revertir los efectos indeseables a&uacute;n est&aacute; en estudio, y en la actualidad es una preocupaci&oacute;n importante determinar la mejor manera de hacer un procedimiento cl&iacute;nico est&eacute;ticamente exitoso y que adem&aacute;s, brinde seguridad biol&oacute;gica, disminuyendo los efectos adversos durante y despu&eacute;s del tratamiento sobre los tejidos orales y los materiales dentales.<sup>5, 6</sup> Por esta raz&oacute;n, se requieren estudios que sustenten alternativas de protocolos cl&iacute;nicos que mejoren el pron&oacute;stico de las restauraciones adhesivas posblanqueamiento.</p>      <p>Cobankara y colaboradores,<sup>7</sup> y Pinto y colaboradores,<sup>8</sup> han reportado alteraciones producidas por la aplicaci&oacute;n de agentes blanqueadores sobre la estructura dental como cambios microestructurales y rugosidades del esmalte dental valoradas por microscop&iacute;a electr&oacute;nica. Gotz y colaboradores<sup>9</sup> demostraron cambios en la composici&oacute;n qu&iacute;mica del esmalte por p&eacute;rdida del contenido mineral y alteraci&oacute;n en la fluorescencia y deshidrataci&oacute;n dental.</p>      <p>Claus<sup>10</sup> y Moreira de Freitas y colaboradores<sup>11</sup> reportan disminuci&oacute;n de la dureza superficial y de la resistencia al desgaste de la estructura del esmalte y la dentina. Estos inconvenientes han sido atribuidos al mecanismo de acci&oacute;n de los agentes blanqueadores, el cual se fundamenta en la degradaci&oacute;n del per&oacute;xido de hidr&oacute;geno; que es una sustancia altamente reactiva e inestable con capacidad de descomponerse lentamente en ox&iacute;geno y agua con liberaci&oacute;n de calor. La velocidad de descomposici&oacute;n puede aumentar en presencia de catalizadores, desencadenando una reacci&oacute;n redox o de &oacute;xido-reducci&oacute;n que consiste en una trasferencia de electrones entre las sustancias reactivas dando lugar a un cambio en los estados de oxidaci&oacute;n de estas con respecto a los productos.<sup>12</sup></p>      <p>El per&oacute;xido de hidr&oacute;geno act&uacute;a como un agente oxidante que tiende a captar los electrones del medio quedando reducido; mientras que las mol&eacute;culas de pigmentos de cadenas moleculares largas que se encuentran inmersas en la estructura funcionan como un agente reductor que suministra electrones de su estructura qu&iacute;mica al medio siendo oxidado, gener&aacute;ndose un rompimiento de enlaces simples y dobles de las cadenas conjugadas extensas. Este proceso qu&iacute;mico resulta en la conversi&oacute;n de pigmentos oscuros o crom&oacute;foros que frecuentemente incluyen hetero&aacute;tomos, carbonilos y anillos fen&iacute;licos,<sup>13</sup> a estructuras de cadenas moleculares lineales no saturadas d&eacute;bilmente pigmentadas hasta convertirse en estructuras hidrof&iacute;licas no pigmentadas que facilitan el paso de la luz a trav&eacute;s de la estructura del esmalte dental hasta llegar al denominado ''punto de saturaci&oacute;n'',<sup>14</sup> que se define como el fraccionamiento completo de las cadenas lineales de pigmentos.</p>      <p>Las mol&eacute;culas de ox&iacute;geno gaseoso liberadas tienen la capacidad de penetrar a trav&eacute;s de la estructura por v&iacute;as naturales de permeabilidad del esmalte dental como son las vainas de los prismas, la matriz intercristalina, las estr&iacute;as de Retzius, las lamelas del esmalte y los cuerpos fusiformes o husos adamantinos<sup>15</sup> o por zonas porosas creadas por desmineralizaci&oacute;n asociadas al bajo pH de algunos agentes blanqueadores.<sup>16</sup></p>      <p>Los radicales de ox&iacute;geno son mol&eacute;culas muy peque&ntilde;as que penetran f&aacute;cilmente y son altamente reactivas debido a la presencia de una capa de electrones de valencia no apareada, su reactividad depende de las condiciones de la reacci&oacute;n, incluyendo la temperatura, el pH, la luz y la presencia de metales de transici&oacute;n.<sup>13</sup> El per&oacute;xido de hidr&oacute;geno es capaz de producir diferentes tipos de especies reactivas de ox&iacute;geno (ROS); bajo condiciones alcalinas, el per&oacute;xido de hidr&oacute;geno procede v&iacute;a el ani&oacute;n perhidroxil (HO<sub>2</sub><sup>-</sup>) y bajo condiciones diferentes de pH se forman radicales libres tipo: ani&oacute;n super&oacute;xido (O<sup>2-</sup>) y el ani&oacute;n hidroxilo (OH<sup>-</sup>),<sup>13, 17</sup> que se pueden presentar a partir de la reacci&oacute;n de Fenton, que involucra la presencia de iones y subespecies met&aacute;licas o por la reacci&oacute;n de Haber-Weiss a partir de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno y super&oacute;xido, generando radicales (OH<sup>-</sup>).<sup>18</sup></p>      <p>El estr&eacute;s oxidativo se ha definido como el fen&oacute;meno por el cual se desencadenan alteraciones significativas en las estructuras, esto es debido a la exposici&oacute;n de tejidos vitales a diversas fuentes que producen una ruptura del equilibrio que debe existir entre la cantidad de especies reactivas de ox&iacute;geno y las sustancias o factores prooxidantes y los mecanismos antioxidantes (como la peroxidasa) encargados de eliminar dichas especies qu&iacute;micas. <sup>19</sup> Este mecanismo, en el caso del blanqueamiento dental, no se regula adecuadamente por el incremento exagerado en la producci&oacute;n de especies reactivas del ox&iacute;geno a partir de la utilizaci&oacute;n de per&oacute;xidos de carbamida e hidr&oacute;geno o de perborato de sodio.<sup>20</sup> </p>      <p>Mc Guckin y colaboradores<sup>20</sup> y Titley y colaboradores<sup>21</sup> han reportado que la presencia de per&oacute;xido residual u ox&iacute;geno liberado por los agentes de blanqueamiento, adem&aacute;s de tener un potencial nocivo sobre los tejidos bucales, pueden inhibir el proceso de polimerizaci&oacute;n de los sistemas adhesivos y las resinas compuestas, por interrupci&oacute;n en la conformaci&oacute;n de la red tridimensional de la cadena larga de pol&iacute;mero de las resinas a base de metacrilato, disminuyendo el grado de conversi&oacute;n. Como consecuencia de este fen&oacute;meno, se reporta una disminuci&oacute;n de la fuerza adhesiva que ha llevado a sugerir por parte de varios autores como van der Vyver y colaboradores,<sup>2</sup> Cappeletto y colaboradores,<sup>4</sup> Carvalli y colaboradores,<sup>22</sup> Rotstein y colaboradores,<sup>23</sup> Shinora y colaboradores<sup>24</sup> y Sung y colaboradores<sup>25</sup> que los procedimientos restaurativos deben postergarse de dos a cuatro semanas despu&eacute;s del blanqueamiento dental, ya que la reducci&oacute;n de la resistencia de uni&oacute;n ha demostrado ser transitoria.<sup>24</sup></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Dishman y colaboradores,<sup>1</sup> reportan una disminuci&oacute;n en la adhesi&oacute;n al esmalte dental luego de la aplicaci&oacute;n de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 25%, resultado que atribuyen a una formaci&oacute;n inadecuada de las interdigitaciones del adhesivo en la interfase resina-esmalte.</p>      <p>Shinohara y colaboradores<sup>24</sup> demostraron que los valores de resistencia de uni&oacute;n al corte posblanqueamiento son dependientes del tiempo, por lo que recomiendan esperar dos semanas despu&eacute;s del blanqueamiento dental para poder hacer restauraciones adhesivas satisfactorias en esmalte y dentina; hallazgos similares a los reportados por van der Vyver y colaboradores<sup>2</sup> quienes describen el mismo fen&oacute;meno de disminuci&oacute;n en los valores de fuerza adhesiva cuando se aplicaba per&oacute;xido de carbamida y este era activado por luz.</p>      <p>Sung y colaboradores<sup>25</sup> concluyeron que la resistencia de uni&oacute;n adhesiva al esmalte dental se disminu&iacute;a con la aplicaci&oacute;n previa de un agente blanqueador a base de per&oacute;xido de carbamida al 10%, encontrando una correlaci&oacute;n con el tipo de solvente utilizado en la composici&oacute;n de los sistemas adhesivos, reportando mayor afectaci&oacute;n de la uni&oacute;n para adhesivos a base de acetona comparado con los adhesivos a base de alcohol.</p>      <p>Adicionalmente, Cadenaro y colaboradores<sup>26</sup> afirman que el grado de conversi&oacute;n de los sistemas adhesivos aplicados posblanqueamiento sobre la superficie de dentina es bajo, debido a la inhibici&oacute;n de la polimerizaci&oacute;n por el ox&iacute;geno residual impregnado en la estructura dental y que un tiempo de catorce d&iacute;as o una polimerizaci&oacute;n prolongada pueden mejorar el grado de conversi&oacute;n de los adhesivos dentinales.</p>      <p>Por otro lado, autores como Ben-Amar y colaboradores, <sup>27</sup> y Josey y colaboradores,<sup>28</sup> atribuyen este efecto al cambio en la composici&oacute;n qu&iacute;mica de la estructura del esmalte posterior al blanqueamiento dental.<sup>29</sup></p>      <p>El prop&oacute;sito de este estudio fue evaluar el efecto del blanqueamiento con per&oacute;xido de hidr&oacute;geno de alta concentraci&oacute;n (38%) sobre la resistencia de uni&oacute;n al corte de un sistema adhesivo a base de etanol y de una resina compuesta nanoh&iacute;brida al esmalte dental, en diferentes intervalos de tiempo (0, 1, 7, 14 y 28 d&iacute;as) posterior al tratamiento de blanqueamiento dental.</p>      <p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana"><b>M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p>Se hizo un estudio de tipo experimental cuantitativo in vitro, para el cual se seleccionaron 90 dientes premolares humanos recientemente extra&iacute;dos por razones ortod&oacute;ncicas con un tiempo de almacenamiento m&aacute;ximo posterior a la extracci&oacute;n de tres meses.</p>      <p>Todos los dientes fueron seleccionados seg&uacute;n los criterios de inclusi&oacute;n, verificando que tuvieran formaci&oacute;n radicular completa y ausencia de: caries o defectos del desarrollo del esmalte, restauraciones previas, l&iacute;neas de fracturas o fracturas completas del esmalte, dentina expuesta por desgaste o lesiones superficiales. Se tuvieron en cuenta las consideraciones &eacute;ticas para el estudio seg&uacute;n la Declaraci&oacute;n de Helsinki<sup>30</sup> y la resoluci&oacute;n N.&deg; 8430 de 1993 del Ministerio de Salud,<sup>31</sup> en donde se clasifica como una investigaci&oacute;n con riesgo m&iacute;nimo, para la cual se diligenci&oacute; un formato firmado por cada paciente quien dio su consentimiento para la donaci&oacute;n de sus dientes para el presente estudio espec&iacute;ficamente, que fue aprobado por el Comit&eacute; de &Eacute;tica de la Facultad de Odontolog&iacute;a de Universidad Nacional de Colombia.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se hizo una limpieza mec&aacute;nica de los restos de tejido blando a nivel radicular de cada diente y se fijaron en cloramina al 0,5% por 24 h.<sup>32</sup></p>      <p>Posteriormente, se aplic&oacute; formaldeh&iacute;do al 2% en el foramen apical con una lima de endodoncia de calibre delgado recubierta con algod&oacute;n. Se sell&oacute; el foramen apical con acr&iacute;lico de autopolimerizaci&oacute;n y se cubri&oacute; la ra&iacute;z con espaciador de troqueles hasta la l&iacute;nea amelocementaria para disminuir la permeabilidad dentinal.</p>      <p>Las muestras se mantuvieron en agua destilada desionizada en un refrigerador a una temperatura nominal de 4&deg; C, en recipiente con selle herm&eacute;tico que fue reemplazada peri&oacute;dicamente a fin de minimizar el deterioro, hasta 24 h antes de hacer las pruebas, momento en el cual se procedi&oacute; a colocarlas en agua destilada a 37&deg; C, seg&uacute;n las recomendaciones de la Norma T&eacute;cnica Colombiana 4882.<sup>32</sup></p>       <p>Para la aplicaci&oacute;n de la prueba de resistencia de uni&oacute;n al corte, y facilitar la colocaci&oacute;n de las muestras en la m&aacute;quina de ensayos universales Shimadzu AG-SI Series (Corporaci&oacute;n Shimadzu, Tokio, Jap&oacute;n), se conformaron moldes sostenedores en forma de cubo para embeber en resina acr&iacute;lica cada diente dejando expuesta la superficie vestibular del esmalte, previa amputaci&oacute;n radicular con disco de diamante 2 mm por debajo de la uni&oacute;n amelocementaria. </p>       <p>La superficie del esmalte vestibular expuesta fue desgastada con lija de SiC n.&deg; 1000 para retirar la capa aprism&aacute;tica y mejorar el tipo de acondicionamiento superficial del esmalte y crear una superficie plana para garantizar la aplicaci&oacute;n de una fuerza de cizalla pura.<sup>32</sup></p>      <p>Los 90 dientes se dividieron aleatoriamente en seis grupos de quince dientes cada uno, a los que se les hizo la t&eacute;cnica adhesiva dependiendo del intervalo de tiempo estimado para cada grupo de la siguiente manera: grupo control adhesi&oacute;n sin blanqueamiento previo; grupo I blanqueamiento y adhesi&oacute;n inmediata; grupo II blanqueamiento y adhesi&oacute;n 1 d&iacute;a despu&eacute;s; grupo III blanqueamiento y adhesi&oacute;n siete d&iacute;as despu&eacute;s; grupo IV blanqueamiento y adhesi&oacute;n 14 d&iacute;as despu&eacute;s; grupo V blanqueamiento y adhesi&oacute;n 28 d&iacute;as despu&eacute;s. La aplicaci&oacute;n del per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 38% (Opalescence Xtra Boost<sup>&reg;</sup>/Ultradent Products, South Jordan, USA) se hizo seg&uacute;n las instrucciones del fabricante, haciendo tres aplicaciones consecutivas con un espesor m&aacute;ximo de 0,5 mm, dej&aacute;ndose actuar cada una durante un periodo de 8 min, sin lavar entre aplicaci&oacute;n y aplicaci&oacute;n.</p>      <p>Luego de terminado el proceso de blanqueamiento se procedi&oacute; a retirar el agente blanqueador con agua corriente, cepillo manual extra suave<sup>33, 34</sup> y crema dental sin fl&uacute;or (FitoKids<sup>&reg;</sup>, PF Farmac&eacute;utica SA/Tecser Laboratorios Ltda, Bogot&aacute;, Colombia).</p>      <p>Los dientes se mantuvieron inmersos en saliva artificial (Salivar<sup>&reg;</sup>, Laboratorios Farpag, Bogot&aacute;, Colombia) a 37&deg; C desde que se inici&oacute; el procedimiento de blanqueamiento dental hasta el momento del ensayo de resistencia de uni&oacute;n seg&uacute;n el intervalo de tiempo asignado a cada grupo de prueba, se hizo recambio de la saliva artificial cada 2 d&iacute;as.<sup>35</sup></p>      <p>Para comenzar la t&eacute;cnica adhesiva los dientes fueron limpiados con bicarbonato de sodio y agua. El &aacute;rea en donde se aplic&oacute; el adhesivo se delimit&oacute; previamente mediante el empleo de un c&iacute;rculo de papel Contact<sup>&reg;</sup> de 6 mm de di&aacute;metro con un agujero en el centro del mismo de 2 mm de di&aacute;metro, esto para estandarizar el &aacute;rea de adhesi&oacute;n.</p>      <p>Se aplic&oacute; &aacute;cido fosf&oacute;rico al 35% en gel Scotchbond<sup>&reg;</sup> (3M ESPE, St Paul, Minnesota, USA) como agente grabador durante 15 s, se lav&oacute; y se sec&oacute; con papel absorbente y se aplicaron dos capas consecutivas de sistema adhesivo Single Bond Plus<sup>&reg;</sup> (3M ESPE, St Paul, Minnesota, USA) con un aplicador tipo cepillo (<i>brush</i>) para facilitar la impregnaci&oacute;n, hasta que la superficie quedara brillante, manteni&eacute;ndolo en posici&oacute;n antes de airear durante 20 s; posteriormente se aire&oacute; entre 2 a 5 s y se fotopolimeriz&oacute; con una l&aacute;mpara de luz hal&oacute;gena Elipar<sup>&reg;</sup> 2500 (3M ESPE, St Paul, Minnesota, USA) con una intensidad de 600 mW/cm<sup>2</sup> durante 10s a una distancia de 2 mm, siguiendo las instrucciones del fabricante.<sup>36</sup></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se introdujo el material restaurador de resina compuesta Filtek Z350 XT<sup>&reg;</sup> Color A2E (3M ESPE, St Paul, Minnesota, USA) dentro de un tubo de polipropileno de 2,08 mm de di&aacute;metro externo y una luz interna de 2 mm de di&aacute;metro que correspond&iacute;a al &aacute;rea adhesiva. Los agregados se hicieron en dos incrementos de 1 mm cada uno, utilizando una esp&aacute;tula de acero inoxidable con recubrimiento de tefl&oacute;n y se asent&oacute; sobre la superficie del esmalte preparada evitando burbujas y excesos laterales. Por &uacute;ltimo, se fotopolimeriz&oacute; por 40 s por la superficie mesial, distal y vestibular. </p>       <p>Despu&eacute;s de hecha la adhesi&oacute;n de la resina, los espec&iacute;menes fueron inmersos en agua destilada a 37&deg; C por 24 h.</p>      <p>Posteriormente, las muestras fueron llevadas a la m&aacute;quina universal de ensayos Shimadzu AG-SI Series (Corporaci&oacute;n Shimadzu, Tokio, Jap&oacute;n), la cual consta de una l&aacute;mina de corte, que fue colocada a 0,5 mm de la interfase de uni&oacute;n para aplicar la carga de 50 N a una velocidad de 1 mm/min, y registrar los valores en los que se produjo la falla. Teniendo en cuenta el &aacute;rea de adhesi&oacute;n () en mm<sup>2</sup> y la magnitud de la carga registrada en Newtons se calcul&oacute; el correspondiente esfuerzo en Mpa (N/mm<sup>2</sup>).</p>      <p>Los datos fueron procesados en el <i>software</i> de operaci&oacute;n para la prueba de materiales TRAPEZIUM X (<i>Microsoft Windows</i><sup>&reg;</sup>, USA) para ser consignados en una tabla que relacionaba las dos variables del estudio: intervalos de tiempo posblanqueamiento (0, 1, 7, 14 y 28 d&iacute;as) y la fuerza de adhesi&oacute;n al esmalte dental en cada momento de prueba (resistencia de uni&oacute;n al corte en Mpa).</p>      <p>Una vez hecha la fractura de los espec&iacute;menes, se procedi&oacute; a determinar el tipo de falla que se present&oacute; en cada una de las muestras, mediante la utilizaci&oacute;n del est&eacute;reomicroscopio Leica Zoom<sup>&reg;</sup> 2000 (Leica Microsystems, Buffalo NY, USA) a un aumento de 15X.</p>      <p>La evaluaci&oacute;n de las fracturas, consisti&oacute; en clasificar el tipo de falla en: adhesiva (&gt; 75% de falla entre el esmalte y la resina compuesta), cohesiva en esmalte (&gt; 75% de falla en el espesor del esmalte), cohesiva en resina (&gt; 75% de falla en el espesor de la resina compuesta), y mixta (combinaci&oacute;n de las anteriores).</p>      <p>Para la prueba de resistencia de uni&oacute;n al corte los datos fueron analizados mediante el test de varianza unidireccional (ANOVA) con la prueba estad&iacute;stica F con el empleo del paquete estad&iacute;stico Social Sciences Statistical Package SPSS, 15,0 (SPSS Inc., Chicago, IL, USA). Por medio de las comparaciones m&uacute;ltiples de Fisher y Duncan, estas &uacute;ltimas avaladas por la homogeneidad de varianzas con la prueba de Levene, se aplicaron medidas de tendencia central (media y desviaci&oacute;n est&aacute;ndar) para resumir la presentaci&oacute;n de los datos por grupo. Consider&aacute;ndose valores de p &lt; 0,05 como diferencias estad&iacute;sticamente significativas entre el grupo control y los grupos tratados con blanqueador en diferentes intervalos de tiempo.</p>         <p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana"><b>RESULTADOS</b></font></p>      <p>Los valores de resistencia de uni&oacute;n al corte de cada muestra por grupo en los diferentes intervalos de tiempo se observan en la <a href="#f1">figura 1</a>. La media y el promedio de los valores de resistencia de uni&oacute;n al corte obtenidos en cada grupo se presentan en la <a href="#t1">tabla 1</a>, y se observa el porcentaje de recuperaci&oacute;n de la resistencia de uni&oacute;n a medida que trascurre el tiempo posblanqueamiento.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f1"><img src=/img/revistas/rfoua/v25n1/v25n1a06f1.jpg></a> </p>     <p align="center"><a name="t1"><img src=/img/revistas/rfoua/v25n1/v25n1a06t1.jpg></a> </p>       <p>En la <a href="#f2">figura 2</a> se presentan las medias en cada uno de los intervalos de tiempo. Se observa que a medida que pasa el tiempo, la resistencia de uni&oacute;n al corte se recupera. Se establece que en el d&iacute;a 28 el promedio de la resistencia se acerca a la obtenida en el grupo control.</p>      <p align="center"><a name="f2"><img src=/img/revistas/rfoua/v25n1/v25n1a06f2.jpg></a> </p>      <p>Con respecto a la variabilidad en cada uno de los grupos, el comportamiento de la varianza es homog&eacute;neo. Este resultado hace que los grupos sean comparables y que se puedan hacer las pruebas necesarias para saber si existen diferencias estad&iacute;sticas entre los grupos. La descripci&oacute;n de los datos da como hip&oacute;tesis que el d&iacute;a 28 se obtiene el mejor promedio entre los grupos de tratamiento y se acerca al promedio del grupo control.</p>       <p>Con un nivel de confianza de 95% con el cual el valor de &Alpha; (nivel de significancia) es de 0,05, en la primera prueba se establece si hay diferencia entre el grupo control y los diferentes tiempos de exposici&oacute;n, el resultado es que al menos uno de los grupos es estad&iacute;sticamente diferente al grupo control (p &lt; 0,001), determinando que hay evidencia estad&iacute;stica para asegurar que existe al menos un tratamiento que es diferente.</p>      <p>Los valores de resistencia de uni&oacute;n con las diferencias entre cada uno de los grupos con sus respectivos valores <i>p</i> se presentan en la <a href="#t2">tabla 2</a>. Se rechaza la hip&oacute;tesis nula de igualdad entre medias de tratamientos. Se encontr&oacute; una disminuci&oacute;n estad&iacute;sticamente significativa en los valores de resistencia de uni&oacute;n al corte al esmalte dental posblanqueamiento con respecto al grupo control en los grupos I (0 d&iacute;as p = 0,000), II (1 d&iacute;a p = 0,000), y III (7 d&iacute;as p = 0,000), IV (14 d&iacute;as p = 0,000) y V (28 d&iacute;as p = 0,002). </p>      <p align="center"><a name="t2"><img src=/img/revistas/rfoua/v25n1/v25n1a06t2.jpg></a> </p>      <p>La prueba de Duncan es m&aacute;s fuerte en su composici&oacute;n, por lo cual los resultados confirman que estad&iacute;sticamente existen diferencias entre todas las medias de los tratamientos. La media del grupo I es estad&iacute;sticamente menor que la del grupo II, esta es menor que la del grupo III, la del grupo III menor que la media del grupo IV y al igual que la del grupo V y finalmente este &uacute;ltimo grupo es estad&iacute;sticamente menor que el control. </p>       <p>El tipo de falla m&aacute;s frecuente fue la mixta adhesiva y cohesiva. En algunas muestras la falla cohesiva se present&oacute; en el esmalte y en otras en la resina o en el espesor de la capa adhesiva. M&aacute;s espec&iacute;ficamente, se observ&oacute; que las muestras del grupo control la mayor&iacute;a tuvieron fallas cohesivas en esmalte; entre los 0 y 14 d&iacute;as posblanqueamiento se presentaron la mayor&iacute;a de fallas adhesivas y aument&oacute; la frecuencia de fallas cohesivas en la resina, a los 28 d&iacute;as se presentaron menor cantidad de fallas cohesivas en la resina y aumentaron las fallas cohesivas en el esmalte asemej&aacute;ndose al comportamiento del grupo control (<a href="#t3">tabla 3</a>). </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="t3"><img src=/img/revistas/rfoua/v25n1/v25n1a06t3.jpg></a> </p>        <p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>      <p>&nbsp;</p>      <p>Varias investigaciones como las de Dishman y colaboradores, <sup>1</sup> van der Vyver y colaboradores,<sup>2</sup> Homewood y colaboradores<sup>3</sup> y Cappeletto y colaboradores<sup>4</sup> reportan disminuci&oacute;n transitoria de la resistencia de uni&oacute;n de resinas compuestas al esmalte posblanqueamiento,<sup>37, 38</sup> es relevante cl&iacute;nicamente tener conocimiento del comportamiento de la adhesi&oacute;n con respecto al tiempo por la necesidad de intervenciones est&eacute;ticas adhesivas como remplazo de restauraciones preexistentes, modificaciones de contorno y forma, y cementaci&oacute;n de carillas indirectas, entre otras.<sup>37</sup></p>      <p>Por este motivo, en el presente estudio se pretendi&oacute; evaluar el efecto de la aplicaci&oacute;n de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 38% sobre la resistencia de uni&oacute;n al corte de una resina compuesta, haciendo el procedimiento adhesivo en diferentes intervalos de tiempo (0, 1, 7, 14 y 28 d&iacute;as) despu&eacute;s de haber culminado el tratamiento de blanqueamiento dental, para poder determinar el lapso de tiempo en el que este procedimiento afecta significativamente la adhesi&oacute;n al esmalte dental y as&iacute;, poder contrastar los resultados con lo reportado por otros autores. En este estudio se determin&oacute; que hay una reducci&oacute;n significativa de la adhesi&oacute;n despu&eacute;s de haber aplicado per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 38%, efecto que es inmediato y puede prolongarse durante los d&iacute;as posteriores al blanqueamiento dental, resultado que concuerda con los hallazgos de Kimyai y colaboradores<sup>39</sup> y Shinohara y colaboradores, <sup>24</sup> quienes afirman que la aplicaci&oacute;n de agentes blanqueadores en diferentes concentraciones afectan adversamente la uni&oacute;n inmediata de las resinas compuestas.</p>      <p>Sin embargo, autores como Dishman y colaboradores1 y Homewood y colaboradores<sup>3</sup> concluyeron que al cabo de 24 horas no se presentaron diferencias estad&iacute;sticamente significativas en la adhesi&oacute;n posblanqueamiento, pero reportan haber encontrado una disminuci&oacute;n en la formaci&oacute;n de las interdigitaciones de resina e inhibici&oacute;n de la polimerizaci&oacute;n de la misma, por contacto con el ox&iacute;geno residual; teor&iacute;a que podr&iacute;a explicar una de las posibles razones por las cuales se puede observar en el presente estudio, alta frecuencia de fallas adhesivas y cohesivas en la resina entre los 0 y 14 d&iacute;as; mientras que en el grupo control se presentaron fallas cohesivas en el esmalte, resultado que demuestra que la resistencia de uni&oacute;n en la interfase adhesiva es mayor que la misma resistencia cohesiva del tejido; comportamiento similar a lo obtenido a los 28 d&iacute;as en el que se presentaron menor cantidad de fallas cohesivas en la resina y aumentaron las fallas cohesivas en el esmalte.</p>      <p>Van der Vyver y colaboradores<sup>2</sup> reportan que hay disminuci&oacute;n importante de los valores de resistencia de uni&oacute;n, pero solo durante las dos primeras semanas, mientras que bajo las condiciones del presente estudio se determin&oacute; que las alteraciones en la resistencia de uni&oacute;n adhesiva pueden prolongarse hasta cuatro semanas despu&eacute;s de culminado el blanqueamiento, a las dos semanas solo se logr&oacute; una recuperaci&oacute;n del 76,93% de la resistencia de uni&oacute;n, resultado que puede explicarse por los hallazgos de un estudio anterior<sup>29</sup> en el que se determinaron los cambios en la composici&oacute;n qu&iacute;mica del esmalte luego de la aplicaci&oacute;n de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 38%, encontrando disminuci&oacute;n de calcio del 9,25%; un aumento de peso del ox&iacute;geno en 9,43% con respecto al grupo control, y luego de esperar durante dos semanas, solamente se alcanz&oacute; a disminuir el porcentaje de ox&iacute;geno 2,5%, lo que indica que este tiempo no fue suficiente para que se liberara la totalidad del ox&iacute;geno residual de la superficie del esmalte dental.</p>      <p>Seg&uacute;n Suelieman y colaboradores<sup>40</sup> los radicales libres de ox&iacute;geno y el per&oacute;xido residual penetran en el esmalte, hasta alcanzar el tejido dentinal e incluso la pulpa dental, lo que dificulta la liberaci&oacute;n de ox&iacute;geno residual del blanqueador a trav&eacute;s del tiempo, a lo que se puede atribuir la disminuci&oacute;n en la adhesi&oacute;n por alteraci&oacute;n del grado de conversi&oacute;n del sistema adhesivo y de la resina compuesta restauradora.</p>      <p>Titley y colaboradores,<sup>41</sup> reportan una formaci&oacute;n de zonas porosas de aspecto granular y apariencia de burbuja en la interfase adhesiva atribuidas a la retenci&oacute;n de per&oacute;xido que reacciona oxid&aacute;ndose en la superficie del esmalte.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Miranda y colaboradores,<sup>42</sup> argumentan que la reducci&oacute;n en la resistencia de uni&oacute;n microtensil al utilizar per&oacute;xido de carbamida al 22% se puede dar hasta tres semanas despu&eacute;s de la aplicaci&oacute;n del agente blanqueador por dos razones: la primera, una alteraci&oacute;n estructural, asociada a una p&eacute;rdida y erosi&oacute;n de la capa aprism&aacute;tica del esmalte, adem&aacute;s de una reducci&oacute;n en el porcentaje de calcio y f&oacute;sforo; y la segunda, una de car&aacute;cter residual, debido a la penetraci&oacute;n de radicales de ox&iacute;geno en el esmalte, que pueden inhibir la polimerizaci&oacute;n.<sup>43</sup></p>      <p>En este estudio, fue necesario retirar la capa aprism&aacute;tica del esmalte, para obtener una superficie plana, est&aacute;ndar y reproducible para aplicar adecuadamente la fuerza de corte en la prueba de resistencia de uni&oacute;n siguiendo los recomendaciones de la Norma t&eacute;cnica Colombiana 4882.<sup>32</sup> Se ha reportado que esta capa est&aacute; presente en un 70% de los dientes permanentes<sup>44</sup> y su espesor var&iacute;a entre los diferentes tipos de dientes.<sup>45</sup> Shi y colaboradores<sup>46</sup> la describen como una capa superficial altamente mineralizada comparada con la subsuperficie del esmalte, siendo a su vez m&aacute;s resistente a la desmineralizaci&oacute;n. De esta manera, la funci&oacute;n protectora que puede existir a partir de esta estructura se pierde, por lo tanto, el efecto del agente blanqueador a nivel estructural y qu&iacute;mico, se presenta en la zona prism&aacute;tica del esmalte afectando la superficie que va a ser acondicionada, disminuyendo as&iacute;, la resistencia de uni&oacute;n.<sup>28</sup></p>      <p>Josey y colaboradores,<sup>28</sup> sugieren que el grabado &aacute;cido posblanqueamiento produce una p&eacute;rdida estructural en los l&iacute;mites de los prismas del esmalte, y que dichos cambios podr&iacute;an afectar las cualidades de retenci&oacute;n de los sistemas adhesivos, por la formaci&oacute;n inadecuada de las interdigitaciones de resina. Basados en estas afirmaciones, la disminuci&oacute;n en la resistencia de uni&oacute;n en dientes con blanqueamiento previo, se puede atribuir en general a dos posibles factores: la modificaci&oacute;n microestructural de la superficie y la difusi&oacute;n de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno residual y de los radicales libres de ox&iacute;geno en la estructura dental.</p>      <p>La diferencia en los datos reportados por varios autores incluyendo el presente estudio, con respecto al tiempo en el cual se recupera la resistencia de uni&oacute;n de las resinas compuestas puede deberse a varios factores, entre ellos al tipo de agente blanqueador empleado (per&oacute;xido de carbamida, per&oacute;xido de hidr&oacute;geno, perborato de sodio u ozono), pues cada uno difiere en la cantidad de per&oacute;xido que tiene la capacidad de degradarse a ox&iacute;geno. El per&oacute;xido de carbamida al 10% se descompone en 3% de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno y urea, por lo que la cantidad de mol&eacute;culas de ox&iacute;geno gaseoso liberadas se reduce, a comparaci&oacute;n de los per&oacute;xidos de alta concentraci&oacute;n, a los que se les atribuye en estudios como el de Heged&uuml;s y colaboradores,<sup>47</sup> que se incrementa la posibilidad de da&ntilde;o estructural de la superficie y subsuperficie del esmalte dental.</p>      <p>Adicionalmente, P&eacute;rez y colaboradores<sup>48</sup> afirman que los cambios en la morfolog&iacute;a superficial del esmalte est&aacute;n relacionados con el tiempo de exposici&oacute;n y la concentraci&oacute;n del agente blanqueador y que un tiempo de exposici&oacute;n mayor a 20 horas produce cambios histol&oacute;gicos en los prismas del esmalte, efecto que puede interferir en el patr&oacute;n de grabado del esmalte dental.<sup>21</sup> Tambi&eacute;n se reportan cambios en el comportamiento de los agentes blanqueadores con respecto a la estructura dental por la adici&oacute;n de otras sustancias como carbopol,<sup>49</sup> fl&uacute;or<sup>50, 51</sup> o fosfato de calcio amorfo,<sup>52, 53</sup> sustancias que incluidas en el producto o utilizadas previamente o posterior al procedimiento de blanqueamiento dental influyen en los cambios microestructurales y en las propiedades mec&aacute;nicas del esmalte como la dureza superficial.<sup>50, 54</sup></p>      <p>Es importante resaltar que las muestras fueron mantenidas inmersas en saliva artificial hasta el momento de la prueba para simular mejor las condiciones intraorales, aunque autores como Cappeletto y colaboradores<sup>4</sup> mencionan que, a pesar de la exposici&oacute;n prolongada in vitro a saliva artificial para revertir los efectos delet&eacute;reos del ox&iacute;geno residual, no se logra una r&aacute;pida neutralizaci&oacute;n del per&oacute;xido de hidr&oacute;geno. Es posible que los niveles adecuados de adhesi&oacute;n en el esmalte <i>in vivo</i> se alcancen en un menor tiempo que el obtenido en este estudio por la acci&oacute;n remineralizante y antioxidante de los componentes salivares.</p>      <p>Se han sugerido diferentes t&eacute;cnicas a fin de reducir el tiempo de espera para hacer t&eacute;cnicas adhesivas posblanqueamiento, como la remoci&oacute;n de la capa externa superficial del esmalte,<sup>55</sup> el uso de agentes antioxidantes enzim&aacute;ticos como la catalasa<sup>56</sup> y la peroxidasa<sup>57</sup> y no enzim&aacute;ticos como el ascorbato de sodio,<sup>57, 58</sup> la aplicaci&oacute;n de etanol,<sup>59</sup> de bicarbonato de sodio y vitamina E,<sup>60</sup> procedimientos que se plantean como una alternativa para eliminar las mol&eacute;culas residuales de la superficie del esmalte y as&iacute;, recuperar la resistencia de uni&oacute;n de las resinas compuestas adheridas al esmalte dental y prevenir los efectos biol&oacute;gicos adversos.<sup>61</sup></p>      <p>En la b&uacute;squeda de componentes que act&uacute;en disminuyendo los problemas que producen los agentes blanqueadores en el esmalte dental, se ha estudiado el uso de los fluoruros para la estabilizaci&oacute;n del proceso c&iacute;clico de intercambio i&oacute;nico al cual es sometido el diente. Los &aacute;tomos de fl&uacute;or remplazan al ion hidroxilo (OH), formando la fl&uacute;orapatita, compuesto que ha demostrado tener mayor resistencia a los cambios del pH y por ende a la desmineralizaci&oacute;n. T&uuml;rk&uuml;n y colaboradores<sup>59</sup> y Da Costa y colaboradores<sup>62</sup> reportan que la aplicaci&oacute;n t&oacute;pica de fl&uacute;or tiene la capacidad de revertir los efectos adversos de la desmineralizaci&oacute;n causada por la aplicaci&oacute;n de agentes de blanqueamiento como la disminuci&oacute;n de la dureza superficial del esmalte dental.     <p>El uso de la crema dental libre de fl&uacute;or tuvo como objetivo en la metodolog&iacute;a aplicar una sustancia que permitiera retirar completamente el per&oacute;xido por un efecto mec&aacute;nico por medio del cepillado, y no el de hacer modificaci&oacute;n de la estructura por medio de aplicaci&oacute;n de sustancias remineralizantes.</p>      <p>La crema dental utilizada adicionalmente, contiene Lauril sulfato de sodio que es una sustancia limpiadora que ejerce un efecto detergente que tiene la capacidad de penetrar y favorecer la eliminaci&oacute;n de las impurezas depositadas a nivel superficial. Sin embargo, autores como Barkvoll<sup>63</sup> han descrito que esta sustancia puede reducir el efecto cariost&aacute;tico del fluoruro cuando est&aacute; presente conjuntamente con monofluorofosfato de sodio durante la aplicaci&oacute;n t&oacute;pica y que puede interactuar en la deposici&oacute;n del fluoruro en el esmalte dental, situaci&oacute;n que no es la que se presenta en la composici&oacute;n de la crema dental utilizada en el presente estudio, pero es importante analizar que a pesar de no encontrar reportes en la literatura espec&iacute;ficos donde se determine si el Lauril sulfato afecta la deposici&oacute;n de iones calcio y fosfato en la capa superficial de esmalte, puede ser probable que se produzca alguna interacci&oacute;n similar a la ocurrida en la formaci&oacute;n de la fluorapatita, inhibiendo la acci&oacute;n protectora remineralizante que se deseaba obtener a partir del uso de saliva artificial como medio de conservaci&oacute;n durante la fase experimental, asemejando las condiciones normales de cavidad oral in vivo.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Adicionalmente, la crema dental FitoKids<sup>&reg;</sup> (PF Farmac&eacute;utica SA/Tecser Laboratorios Ltda, Bogot&aacute;, Colombia) tiene en su composici&oacute;n extractos de Cal&eacute;ndula officinalis, Salvia officinalis y Cardamomo, plantas a las que se les atribuyen propiedades antioxidantes, estrog&eacute;nicas y antiinflamatorias.<sup>64-67</sup> Su composici&oacute;n se fundamenta en principios activos relacionados con su actividad biol&oacute;gica como los alcaloides, saponinas, flavonoides, taninos, terpenos, cumarinas, entre otros.<sup>68</sup></p>      <p>Este amplio espectro de tipos de compuestos qu&iacute;micos, est&aacute; en concordancia con la diversidad de acciones farmacol&oacute;gicas que presentan estas plantas. Su funci&oacute;n antioxidante se fundamenta en el contenido de polifenoles que son fitoqu&iacute;micos de bajo peso molecular, que conforman mol&eacute;culas simples como el &aacute;cido fen&oacute;lico y los flavonoides, hasta compuestos altamente estructurados como los taninos. Su actividad antioxidante, proviene de su gran reactividad como donador de electrones y de la capacidad del radical formado para estabilizar el electr&oacute;n desapareado para interrumpir la reacci&oacute;n en cadena. Los flavonoides tienen una poderosa acci&oacute;n antioxidante in vitro, siendo capaces de actuar sobre un amplio rango de especies reactivas del ox&iacute;geno, nitr&oacute;geno y cloro, tales como el super&oacute;xido, el radical hidroxilo, el radical perhidroxilo, el &aacute;cido hipocloroso, actuando como agentes reductores.<sup>69, 70</sup></p>      <p>Es importante analizar que seg&uacute;n los resultados de resistencia de uni&oacute;n logrados posterior a la limpieza de la superficie posblanqueamiento, se estima que no hubo una influencia positiva de la sustancia como agente antioxidante, lo que puede deberse a la relaci&oacute;n entre la concentraci&oacute;n del per&oacute;xido y la del antioxidante, lo cual est&aacute; sustentado por Freire y colaboradores,<sup>71</sup> quienes reportan que los antioxidantes son &uacute;tiles en la eliminaci&oacute;n de radicales libres de ox&iacute;geno de la superficie, pero que debe existir una relaci&oacute;n directa entre la concentraci&oacute;n del per&oacute;xido de hidr&oacute;geno y la concentraci&oacute;n del antioxidante. Reportan que para eliminar completamente 2 g de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 35% se requieren 20 ml de ascorbato de sodio al 25%, como m&iacute;nimo. Por lo que se considera que una soluci&oacute;n de menor concentraci&oacute;n no alcanza a ser efectiva para neutralizar los radicales producidos por per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 38%.</p>      <p>Con relaci&oacute;n al tiempo de aplicaci&oacute;n de la crema como posible agente antioxidante, Lai y colaboradores<sup>72</sup> afirman que el tiempo que se debe dejar actuar el agente antioxidante en la superficie dental es de al menos una tercera parte del tiempo empleado en el procedimiento de blanqueamiento dental, as&iacute; por ejemplo, si el blanqueamiento dental dur&oacute; 8 horas el agente antioxidante debe estar en contacto m&iacute;nimo durante 3 horas.</p>     <p>En el presente estudio no se cumple este par&aacute;metro, ya que el agente blanqueador se aplic&oacute; seg&uacute;n las instrucciones del fabricante durante 24 minutos (3 aplicaciones de 8 minutos cada una y la crema estuvo en contacto con la superficie dental aproximadamente durante 30 segundos. Este tiempo no fue efectivo para lograr recuperaci&oacute;n de los valores adhesivos desde los 0 hasta los 28 d&iacute;as posblanqueamiento, demostr&aacute;ndose poca influencia de la sustancia limpiadora.</p>      <p>Como la disminuci&oacute;n en la resistencia de uni&oacute;n se ha atribuido a la alteraci&oacute;n de la relaci&oacute;n de calcio y fosfato de la estructura cristalina,<sup>9, 73</sup> a los cambios microestructurales de los cristales de hidroxiapatita, y por ende, al inadecuado patr&oacute;n de grabado que se pueda producir en el esmalte durante la t&eacute;cnica adhesiva,<sup>74, 75</sup> se han utilizado diferentes productos para lograr un efecto de remineralizaci&oacute;n en la estructura dental que ha sido alterada, mecanismo que ha sido definido por Cochrane NJ,<sup>76</sup> como el proceso por el cual los iones se suministran desde una fuente externa al diente para promover la deposici&oacute;n de iones en los cristales en esmalte desmineralizado para producir ganancia de la red mineral, y de esta manera procurar obtener una mejor calidad del tejido frente a la t&eacute;cnica adhesiva.</p>      <p>Para lograr este efecto se han probado diferentes sustancias, entre ellas: el fluoruro de sodio<sup>74, 77</sup> y calcio,<sup>78</sup> que act&uacute;a como un agente remineralizante que inhibe la p&eacute;rdida mineral y evita la disminuci&oacute;n de la microdureza superficial; el fosfato de calcio amorfo en su forma cristalina, el cual ha demostrado tener dificultad para lograr una remineralizaci&oacute;n del esmalte adecuada por la poca solubilidad de las fases de fosfato de calcio, de tal manera que los iones de calcio y de fosfato no est&aacute;n disponibles para la remineralizaci&oacute;n;<sup>76</sup> de la misma manera ha sido reportado por Da Costa<sup>62</sup> y Tschoppe y colaboradores,<sup>79</sup> que tanto el nitrato de potasio como el fosfato de calcio amorfo no tienen la capacidad de evitar la disminuci&oacute;n de la dureza superficial del esmalte.</p>      <p>Tambi&eacute;n, se ha intentado agregar fosfato tric&aacute;lcico (TCP) a los productos dentales, del cual se reporta que mejora la microdureza de la superficie del esmalte desmineralizado en comparaci&oacute;n con productos con solo fluoruro, posiblemente a trav&eacute;s de un efecto abrasivo. Sin embargo, ning&uacute;n estudio de este material ha sido publicado demostrando su capacidad para remineralizar las lesiones subsuperficiales de esmalte.<sup>76</sup></p>      <p>Con respecto al fosfato de calcio amorfo estabilizado con fosfop&eacute;ptidos de case&iacute;na (CPP-ACP), se ha encontrado un aumento de la microdureza pos blanqueamiento para muestras blanqueadas con per&oacute;xido de hidr&oacute;geno utilizando pasta de CPP-ACP antes y despu&eacute;s del blanqueamiento, sugiriendo una deposici&oacute;n de minerales en el esmalte. El sistema CPP-ACP proporciona un dep&oacute;sito superior de calcio biodisponible y iones fosfato en comparaci&oacute;n con ACP solo, conduciendo a mayor potencial de remineralizaci&oacute;n.<sup>76</sup></p>      <p>Dado que siguen siendo controversiales los resultados sobre los efectos adversos de los agentes de blanqueamiento sobre la estructura dental y la adhesi&oacute;n posblanqueamiento, se evidencia la necesidad de replantear protocolos cl&iacute;nicos para procurar un mejor manejo de los agentes de blanqueamiento, de las sustancias remineralizantes y del tiempo necesario para lograr neutralizaci&oacute;n y remineralizaci&oacute;n de la estructura dental posblanqueamiento.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>      <p>&nbsp;</p>  <ul>     <p>    <li>Bajo las condiciones que se desarrollaron en este estudio se concluye que:</li></p>      <p>    <li>Hay una reducci&oacute;n significativa de la resistencia de uni&oacute;n al corte de una resina compuesta al esmalte dental, luego de la aplicaci&oacute;n de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 38% hasta los 28 d&iacute;as posblanqueamiento.</li></p>      <p>    <li>La resistencia de uni&oacute;n obtenida en los diferentes intervalos de tiempo es estad&iacute;sticamente inferior a la del grupo control, el grupo V de 28 d&iacute;as descriptivamente se parece al grupo control pero sigue siendo estad&iacute;sticamente inferior por lo cual el tiempo de espera deber&iacute;a ser mayor a los 28 d&iacute;as si se desea recuperar al 100% el valor de resistencia de uni&oacute;n al corte de la resina adherida al esmalte dental posblanqueamiento.</li></p>     </ul>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>       <p><font size="3" face="Verdana"><b>RECOMENDACIONES</b></font></p>      <p>&nbsp;</p>      <P>Se espera el desarrollo de nuevas investigaciones que incluyan el uso de sustancias antioxidantes de f&aacute;cil manejo cl&iacute;nico y de bajo costo, para disminuir el tiempo posblanqueamiento necesario para neutralizar el ox&iacute;geno residual y poder efectuar restauraciones adheridas al esmalte dental sin esperar un periodo de tiempo prolongado.</P>      <p>&nbsp;</p>       <p><font size="3" face="Verdana"><b>CONFLICTO DE INTER&Eacute;S</b></font></p>      <p>&nbsp;</p>      <P>Se declara que no existe ning&uacute;n conflicto de inter&eacute;s en el presente estudio.</P>      <p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana"><b>REFERENCIAS</b></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>      <!-- ref --><p>1. Dishman MV, Covey DA, Baughan LW. The effects of peroxide bleaching on composite to enamel bond strength. Dent Mater 1994; 10(1): 33-36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0121-246X201300020000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><P>2. Van der Vyver PJ, Lewis SB, Marais JT. The effect of bleaching agent on composite/enamel bonding. J Dent Assoc S Afr 1997; 52(10): 601-603.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0121-246X201300020000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></P>      <!-- ref --><P>3. Homewood C, Tyas M, Woods. Bonding to previously bleached teeth. Aust Orthod J 2001; 17(1): 27-34.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0121-246X201300020000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>4. Cappeletto E, Pedroso C, Takeo A, Campos M. Influence of post-bleaching time intervals on dentin bond strength. Braz Oral Res 2004; 18(1): 75-79.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0121-246X201300020000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>5. Haywood VB, Leonard RH, Nelson CF, Brunson WD. Effectiveness, side effects and long-term status of nightguard vital bleaching. J Am Dent Assoc 1994; 125(9): 1219-1226.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0121-246X201300020000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>6. Dahl J, Pallesen U. Tooth bleaching a critical review of the biological aspects. Crit Rev Oral Biol Med 2003; 14(4): 292-304.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0121-246X201300020000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>7. Cobankara FK, Unlun N, Altinoz HC, Fusun O. Effect of home bleaching agents on the roughness and surface morphology of human enamel and dentine. Int Dent J 2004; 54(4): 211-218.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0121-246X201300020000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>8. Pinto CF, Oliveira R, Cavalli V, Giannini M. Peroxide bleaching agent effects on enamel surface microhardness, roughness and morphology. Braz Oral Res 2004; 18(4): 306-311.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0121-246X201300020000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>9. Gotz H, Duschner H, White DJ, Klukowska A, Malgorzata A. Effects of elevated hydrogen peroxide 'strip' bleaching on surface and subsurface enamel including subsurface histomorphology, micro-chemical composition and fluorescence changes. J Dent 2007; 35: 457-466.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0121-246X201300020000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>10. Claus PE. Effects of hydrogen peroxide-containing bleaching agents on the morphology of human enamel. Quintessence Int 1996; 27(1): 53-56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0121-246X201300020000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>11. Moreira de Freitas PM, Turssi CP, Hara AT, Serra MC. Dentin microhardness during and after whitening treatments. Quintessence Int 2004; 35(5): 411-417.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0121-246X201300020000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>12. Romero AD, Bueno GJ. Radicales libres del ox&iacute;geno y antioxidantes en medicina. Rev Clin Espa&ntilde;ola 1998; 184(7): 345-346.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0121-246X201300020000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>13. Joiner E. The bleaching of teeth: A review of the literature. J Dent 2006; 34(7): 412-419.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0121-246X201300020000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>14. Goldstein RE, Garber DA. Complete dental bleaching. Chicago: Quintessence Publishing; 1995.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0121-246X201300020000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>15. Dom&iacute;nguez MN, Gonz&aacute;lez LS, Men&eacute;ndez NM. Study of the diffusion ways in the white spot enamel lesion. RCOE 2002; 7(5): 469-476.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S0121-246X201300020000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>16. Price RBT, Sedarous M, Hiltz GS. The pH of tooth-whitening products. J Can Dent Assoc 2000; 66: 421-426.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000154&pid=S0121-246X201300020000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>17. Cheesman KH, Slater TF. Free radicals in medicine. Br Med Bull 1998; 49: 118-121.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000156&pid=S0121-246X201300020000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>18. Floyd RA. The effect of peroxides and free radicals on body tissues. J Am Dent Assoc 1997; 128: 37-44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000158&pid=S0121-246X201300020000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>19. Venereo JR. Da&ntilde;o oxidativo, radicales libres y antioxidantes. Rev Cub Med Mil 2002; 31(2): 126-133.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000160&pid=S0121-246X201300020000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>20. Mc Guckin RS, Thurmond BA, Osovitz S. Enamel shear bond strengths after vital bleaching. Am J Dent 1992; 5: 216-222.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000162&pid=S0121-246X201300020000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>21. Titley KC, Torneck CD, Smith DC, Chernecky R, Adibfar A. Scanning electron microscopy observation on the penetration and structure of resin ''tags'' in bleached and unbleached bovine enamel. J Endod 1991; 17: 72-75.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000164&pid=S0121-246X201300020000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>22. Carvalli V, Giannini M, Carvalho R. Effect of carbamide peroxide bleaching agents on tensile strength of human enamel. Dent Mater 2004; 20: 733-739.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000166&pid=S0121-246X201300020000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>23. Rotstein I. Role of catalase in the elimination of residual hydrogen peroxide following tooth bleaching. J Endod 1993; 19: 567-569.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000168&pid=S0121-246X201300020000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>24. Shinohara MS, Peris AR, Pimenta LA, Ambrosano GM. Shear bond strength evaluation of composite resin on enamel and dentin after nonvital bleaching. J Esthet Restor Dent 2005; 17(1): 22-29.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000170&pid=S0121-246X201300020000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>25. Sung EC, Chan SM, Mito R, Caputo AA. Effect of carbamide peroxide bleaching on the shear bond strength of composite to dental bonding agent enhanced enamel. J Prosthet Dent 1999; 82(5): 595-599.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000172&pid=S0121-246X201300020000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>26. Cadenaro M, Breschi L, Antoniolli F, Mazzoni A, Di Lenarda R. Influence of whitening on the degree of conversion of dental adhesives on dentin. Eur J Oral Sci. 2006; 114(3): 257-262.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000174&pid=S0121-246X201300020000600026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>27. Ben-Amar A, Liberman R, Gorfil C, Bernstein Y. Effect of night guard bleaching on enamel surface. Am J Dent 1995; 8: 29-32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000176&pid=S0121-246X201300020000600027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>28. Josey AL, Meyers IA, Romaniuk K, Symons AL. The effect of vital bleaching technique on enamel surface morphology and the bonding of composite resin to enamel. J Oral Rehabil 1996; 23: 244-250.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000178&pid=S0121-246X201300020000600028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>29. Baldi&oacute;n PA, Arcos LC, Mora MA. Efecto de los fluoruros en la composici&oacute;n qu&iacute;mica del esmalte dental posblanqueamiento. Univ Odontol 2011; 30(65): 41-49.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000180&pid=S0121-246X201300020000600029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>30. Manzini JL. Declaraci&oacute;n de Helsinki: Principios &eacute;ticos para la investigaci&oacute;n m&eacute;dica sobre sujetos humanos. Acta Bioethica 2000; 6(2): 321-334.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000182&pid=S0121-246X201300020000600030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>31. Colombia Ministerio de Salud. Resoluci&oacute;n N.&deg; 8430 de 1993, octubre 4, por la cual se establecen las normas cient&iacute;ficas, t&eacute;cnicas y administrativas para la investigaci&oacute;n en salud. T&iacute;tulo II. De la investigaci&oacute;n en seres humanos. Cap&iacute;tulo 1. De los aspectos &eacute;ticos de la investigaci&oacute;n en seres humanos: Art&iacute;culos 4 al 16. Bogot&aacute;: El Ministerio; 1993.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000184&pid=S0121-246X201300020000600031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>32. Comit&eacute; Materiales Odontol&oacute;gicos. NTC 4882. M&eacute;todos de ensayo para la evaluaci&oacute;n de la uni&oacute;n adhesiva entre los materiales odontol&oacute;gicos y la estructura dental. Instituto Colombiano de Normas T&eacute;cnicas y Certificaci&oacute;n, ICONTEC. Sector: 11-Tecnolog&iacute;a del cuidado de la salud. Fecha de ratificaci&oacute;n: 25/10/2000. Actualizaci&oacute;n: Ninguna.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000186&pid=S0121-246X201300020000600032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>33. Tschoppe P, Zandim DL, Martus P, Kielbassa AM. Enamel and dentine remineralization by nano-hydroxyapatite toothpastes. J Den 2011; 39(6): 430-437.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000188&pid=S0121-246X201300020000600033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>34. Tschoppe P, Meyer-Lueckel H. Effects of regular and highly fluoridated toothpastes in combination with saliva substitutes on artificial enamel caries lesions differing in mineral content. Arch Oral Biol 2012; 57(7): 931-939.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000190&pid=S0121-246X201300020000600034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>35. Tschoppe P, Kielbassa AM, Meyer-Lueckel H. Evaluation of the remineralising capacities of modified saliva substitutes in vitro. Arch Oral Biol 2009; 54(9): 810-816.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000192&pid=S0121-246X201300020000600035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>36. 3M ESPE Casa comercial. Perfil t&eacute;cnico del producto: Adpter<sup>&reg;</sup> Single Bond. Sistema adhesivo dental. [en l&iacute;nea] [fecha de acceso 15 de octubre de 2012 ]; URL disponible en:  <a href="http://multimedia.3m.com/mws/mediawebserver?UUUUUUC04ehUnx7UGx7UUUPJtEtttttS-"target="_blank">http://multimedia.3m.com/mws/mediawebserver? UUUUUUC04ehUnx7UGx7UUUPJtEtttttS-</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000194&pid=S0121-246X201300020000600036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>37. Torneck CD, Titley KC, Smith DO, Adibfar A. Effect of water leaching on the adhesion of composite resin to bleached and unbleached enamel. J Endodon 1991; 17: 156-160.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000195&pid=S0121-246X201300020000600037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>38. Gokce B, Comlekoglu ME, Ozpinar B, Turkun M, Demirbas AK. Effect of antioxidant treatment on bond strength of a luting resin to bleached enamel. J Dent 2008; 36: 780- 785.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000197&pid=S0121-246X201300020000600038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>39. Kimyai S, Oskoee SS, Rafighi A, Valizadeh H, Ajami AA, Helali ZZ. Comparison of the effect of hydrogel and solution forms of sodium ascorbate on orthodontic bracket- enamel shear bond strength immediately after bleaching: An in vitro study. Indian J Dent Res 2010; 21: 54-58.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000199&pid=S0121-246X201300020000600039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>40. Suelieman M, Addy M, Macdonald E, Ress J. The leaching depth of a 35% hydrogen peroxide based in-office product: a study <i>in vitro</i>. J Dent 2005; 33: 33-40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000201&pid=S0121-246X201300020000600040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>41. Titley KC, Torneck CD, Ruse ND. The effect of carbamide- peroxide gel on the shear bond strength of a microfilm resin to bovine enamel. J Dent Res 1992; 71: 20-24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000203&pid=S0121-246X201300020000600041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>42. Miranda AM, Bermejo GN, Bazan JE, Saravia MA. Efectos de un blanqueamiento dental con ozono y otro con per&oacute;xido de carbamida al 22% sobre la fuerza de adhesi&oacute;n al esmalte en diferentes intervalos de tiempo. Acta Odontol Venez 2009; 47(4): 69-77.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000205&pid=S0121-246X201300020000600042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>43. Cavalli V, Reis AF, Giannini M, Ambrosano GM. The effect of elapsed time following bleaching on enamel bond strength of resin composite. Oper Dent 2001; 26: 597-602.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000207&pid=S0121-246X201300020000600043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>44. G&oacute;mez ME, Campos A. Esmalte. En: Histolog&iacute;a y embriolog&iacute;a bucodental. 2ed. Madrid: M&eacute;dica Panamericana; 2003. p. 273-316.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000209&pid=S0121-246X201300020000600044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>45. Whittaker DK. Structural variations in the surface zone of human tooth enamel observed by scanning electron microscopy. Archs Oral Biol 1982; 27(5): 383-392.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000211&pid=S0121-246X201300020000600045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>46. Shi XC, Ma H, Zhou JL, Li W. The effect of cold-light-activated bleaching treatment on enamel surfaces in vitro. Int J Oral Sci 2012; 4: 208-213.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000213&pid=S0121-246X201300020000600046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>47. Heged&uuml;s C, Bistey T, Fl&oacute;ra-Nagy E, Keszthelyi G, Jenei A. An atomic force microscopy study on the effect of bleaching agents on enamel surface. J Dent 1999; 27: 509-515.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000215&pid=S0121-246X201300020000600047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>48. P&eacute;rez LF, D&iacute;az AM, Aguirre M, Alc&aacute;ntara CM, Aguilar RE, Acedo JE et al. Efecto del per&oacute;xido de carbamida sobre el esmalte dentario a diferentes concentraciones y tiempos de exposici&oacute;n (estudio in vitro). Odontol Sanmarquina 2004; 8(1): 25-29.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000217&pid=S0121-246X201300020000600048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>49. Rodr&iacute;gues JA, Oliveira GP, Amaral CM. Effect of thickener agents on dental enamel microhardness submitted to at-home bleaching. Braz Oral Res 2007; 21(2): 170-175.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000219&pid=S0121-246X201300020000600049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>50. Chen HP, Chang CH, Liu JK, Chuang SF, Yang JY. Effect of fluoride containing bleaching agents on enamel surface properties. J Dent 2008; 36(9): 718-725.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000221&pid=S0121-246X201300020000600050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>51. Dominguez JA, Bittencourt B, Michel M, Sabino N, Gomes JC, Gomes OM. Ultrastructural evaluation of enamel after dental bleaching associated with fluoride. Microsc Res Tech 2012; 75(8): 1093-1098.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000223&pid=S0121-246X201300020000600051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>52. Adebayo OA, Burrow MF, Tyas MJ. Effects of conditioners on microshear bond strength to enamel after carbamide peroxide bleaching and/or casein phosphopeptide-amorphous calcium phosphate (CPP-ACP) treatment. J Dent 2007; 35(11): 862-870.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000225&pid=S0121-246X201300020000600052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>53. Zhao J, Liu Y, Sun WB, Zhang H. Amorphous calcium phosphate and its application in dentistry. Chem Cent J 2011; 5: 40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000227&pid=S0121-246X201300020000600053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>54. Goswami M, Saha S, Chaitra TR. Latest developments in non-fluoridated remineralizing technologies. J Indian Soc Pedod Prev Dent 2012, 30(1): 2-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000229&pid=S0121-246X201300020000600054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>55. Cvitko E, Deheny GE, Swift Jr EJ, Pires JA. Bond strength of composite resin to enamel bleached with carbamide peroxide. J Esthet Dent 1991; 3: 100-102.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000231&pid=S0121-246X201300020000600055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>56. Rotstein I, Dankner E, Goldman A, Heling I, Stabholz A, ZalkindM. Histochemical analysis of dental hard tissues following bleaching. J Endod 1996; 22: 23-26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000233&pid=S0121-246X201300020000600056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>57. Baldi&oacute;n PA, Viteri LN, Lozano E. Efecto de la peroxidasa sobre la resistencia de uni&oacute;n de una resina compuesta al esmalte dental posblanqueamiento. Rev Fac Odontol Univ Antioq 2012; 24(1): 8-21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000235&pid=S0121-246X201300020000600057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>58. Kaya AD, T&uuml;rk&uuml;n M. Reversal of dentin bonding to bleached teeth. Oper Dent 2003; 28(6): 825-829.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000237&pid=S0121-246X201300020000600058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>59. T&uuml;rk&uuml;n M, Kaya AD. Effect of 10% sodium ascorbate on the shear bond strength of composite resin to bleached bovine enamel. J Oral Rehab 2004; 31: 1184-1191.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000239&pid=S0121-246X201300020000600059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>60. Barghi N, Godwin JM. Reducing the adverse effect of bleaching on composite&#8211;enamel bond. J Esthet Dent 1994; 6: 157-161.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000241&pid=S0121-246X201300020000600060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>61. Garc&iacute;a EJ, Oldoni TL, Alencar SM, Reis A, Loguercio AD, Grande RH. Antioxidant activity by DPPH assay of potential solutions to be applied on bleached teeth. Braz Dent J 2012; 23: 22-27.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000243&pid=S0121-246X201300020000600061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>62. Da Costa DB, Mazur RF. Effects of the new formulas of bleaching gel and fluoride application on enamel microhardness: An in vitro study. Oper Dent 2007; 32: 589-594.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000245&pid=S0121-246X201300020000600062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>63. Barkvoll P. Effect of sodium lauryl sulfate on the uptake of fluoride from NaF and MFP by etched enamel in vitro. J Biol Buccale 1991; 19(3): 235-239.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000247&pid=S0121-246X201300020000600063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>64. Kennedy DO, Scholey AB. The psychopharmacology of European herbs with cognition-enhancing properties. Curr Pharm Des 2006; 12(35): 4613-4623.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000249&pid=S0121-246X201300020000600064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>65. Dedio I. Value of Calendula officinalis as a tannin source. Herba Pol 1983; 29(3-4): 211-216.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000251&pid=S0121-246X201300020000600065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>66. Brasseur T, Abgenot L, Pricemail J, Debev C. Free radical formation inhibiting and antioxidant properties of flavonoids. J Exptl Biol Med 1986; 37: 533-548.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000253&pid=S0121-246X201300020000600066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>67. Groppo FC, de C&aacute;ssia BC, Cogo K, Franz-Montan M, Lopes RH, Dias AE. Use of phytotherapy in dentistry. Phytother Res 2008; 22(8): 993-1133.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000255&pid=S0121-246X201300020000600067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>68. Lu Y, Foo LY. Flavonoid and phenolic glycosides from Salvia officinalis. Phytochemistry 2000; 55(3): 263-267.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000257&pid=S0121-246X201300020000600068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>69. Halliwell B. Rafter J, Jenner A. Health promotion by flavonoids, tocopherols, tocotrienols, and other phenols: direct or indirect effects? Antioxidant or not? Am J Clin Nutr 2005. 81(suppl): 268-276.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000259&pid=S0121-246X201300020000600069&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>70. Roginsky V. Chain-breaking antioxidant activity of natural polyphenols as determined during the chain oxidation of methyl linoleate in Triton X-100 micelles. Arch Biochem Biophys 2003; 414: 261-270.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000261&pid=S0121-246X201300020000600070&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>71. Freire A, Souza E, Biazzetto D, Ribeiro E, Cynthia C, Marins R et al. Reaction kinetics of sodium ascorbate and dental bleaching gel. J Dent 2009; 37: 932-936.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000263&pid=S0121-246X201300020000600071&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>72. Lai S, Mak Y, Cheung G, Osorio R, Toledano M. Reversal of compromised bonding to oxidized etched dentin. J Dent Res 2001; 80: 1919-1924.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000265&pid=S0121-246X201300020000600072&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>73. Tezel H, Ertas OS, Ozata F, Dalgar H, Korkut ZO. Effect of bleaching agents on calcium loss from the enamel surface. Quintessence Int 2007; 38(4): 339-347.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000267&pid=S0121-246X201300020000600073&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>74. Attin T, Kielbassa AM, Schwanenberg M, Hellwig E. Effect of fluoride treatment on remineralization of bleached enamel. J Oral Rehabil 1997; 24: 282-286.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000269&pid=S0121-246X201300020000600074&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>75. Attin T, Hanning G, Wiegand A, Attin R. Effect of bleaching on restorative materials and restorations. A systematic review. Dent Mater 2004; 20: 852-861.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000271&pid=S0121-246X201300020000600075&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>76. Cochrane NJ, Cai F, Huq NL, Burrow MF, Reynolds EC. New approaches to enhanced remineralization of tooth enamel. J Dent Res 2010; 89: 1187-1197.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000273&pid=S0121-246X201300020000600076&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>77. Lewinstein I. Effect of different peroxide bleaching regimens and subsequent fluoridation on the hardness of human enamel and dentin. J Prosthet Dent 2004; 92: 337-342.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000275&pid=S0121-246X201300020000600077&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>78. Cavalli V, Rodrigues LK, Paes-Leme AF, Brancalion ML, Arruda MA, Berger SB, et al. Effects of bleaching agents containing fluoride and calcium on human enamel. Quintessence Int 2010; 41: 157-165.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000277&pid=S0121-246X201300020000600078&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>79. Tschoppe P, Neumann K, Mueller J, Kielbassa AM. Effect of fluoridate bleaching gels on the remineralization of predemineralized bovine enamel in vitro. J Dent 2009: 37(2): 156-162.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000279&pid=S0121-246X201300020000600079&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <p> </p> </font>       ]]></body><back>
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