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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[EFECTO DEL ALMACENAMIENTO EN SOLUCIÓN DE HBSS SOBRE LA DIFUSIÓN TRANSDENTINARIA EN TERCEROS MOLARES EXTRAÍDOS]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[THE EFFECT OF HANK'S BALANCED SALT SOLUTION (HBSS) STORAGE TIME ON TRANSDENTINAL DIFFUSION IN EXTRACTED THIRD MOLARS]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[INTRODUCTION: the solution used to store dentin disks while being studied has proven to be vital in reproducing possible "in vivo" conditions, and it is ultimately critical in evaluating hydraulic conductance studies. The goal of this in vitro study was to determine transdentin filtration rate variation in human dentin disks after 2, 4, 6, 7, 14, 21, and 28 days stored in Hank's Balanced Salt Solution (HBSS), 10% formalin, and saline solution. METHODS: this study included 41 unerupted healthy human third molars. These teeth were disinfected in 0.1% thymol for 24 hours before being embedded in epoxy resin blocks and then cut to obtain 1 mm thick dentin disks. The disks' hydraulic conductance was later measured, and then they were separated and stored in different solutions. They were sorted out in three groups: a) 10% formalin, b) Hank solution (HBSS) and c) saline solution. Hydraulic conductance was measured after 1, 2, 4, 6, 7, 14, 21, and 28 days. Statistical analysis was performed by ANOVA and Tukey's post hoc (SPSS v.15). RESULTS: the results suggest that the average of dentine disks' hydraulic conductance increased in all the storage solutions when comparing the analysis between day 1 and day 28. CONCLUSIONS: no significant differences were found (p 0.005) in terms of hydraulic conductance among the various times the disks were stored in Hank's solution..]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font size="2" face="Verdana">      <p align="right"><b>ART&Iacute;CULOS ORIGINALES DERIVADOS DE INVESTIGACI&Oacute;N</b></p>          <p>&nbsp;</p>       <p align="center"><font size="4" face="Verdana"><b>EFECTO DEL ALMACENAMIENTO EN SOLUCI&Oacute;N DE HBSS SOBRE LA DIFUSI&Oacute;N TRANSDENTINARIA EN TERCEROS MOLARES EXTRA&Iacute;DOS<sup>1</sup> </b></font></p>          <p>&nbsp;</p>           <p>&nbsp;</p>     <b>Francisco Araya<sup>2</sup>; Claudia Sommariva<sup>3</sup>; Gustavo Moncada<SUP>4</SUP>; &Aacute;lvaro Cartagena<SUP>5</SUP>; Claudia Letelier<SUP>5</SUP>; Osmir Oliveira Junior<SUP>6</SUP>; Javier Mart&iacute;n<SUP>7</SUP>; Eduardo Fern&aacute;ndez<SUP>7</SUP></b></p>         <p>&nbsp;</p>         <p><sup>1 </sup>Estudio adscrito a PRI-ODO 0304/2012 UCHILE. Este estudio fue parcialmente financiado por un Fondo de Colgate-Palmolive-Chile, los autores expresan no tener ning&uacute;n conflicto de intereses</p>     <p>      <sup>2</sup> Cirujano Dentista, Universidad de Chile</p>     <p>        <sup>3</sup> Profesora asistente, Departamento Odontolog&iacute;a Restauradora, Universidad de Chile</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <sup>4</sup> Profesor titular, Departamento Odontolog&iacute;a Restauradora, Universidad de Chile</p>     <p>    <sup>5</sup> Instructores, Departamento Odontolog&iacute;a Restauradora, Universidad de Chile</p>     <p>    <sup>6</sup> Profesor, Departamento de Odontologia Restauradora, Disciplina de Dent&iacute;stica, Universidad Estadual Paulista, S&atilde;o Paulo, Brasil</p>     <p>    <sup>7</sup> Profesor Asistente, Departamento Odontolog&iacute;a Restauradora, Universidad de Chile. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:edofdez@yahoo.com">edofdez@yahoo.com</a></p>     <p>&nbsp;</p>      <p><b>RECIBIDO: MARZO 5/2012-ACEPTADO: OCTUBRE 15/2013</b></p>      <p>&nbsp;</p>        <p>Araya F, Sommariva C, Moncada G, Cartagena A, Letelier C, Oliveira O Jr et al. Efecto del almacenamiento en soluci&oacute;n de HBSS sobre la difusi&oacute;n transdentinaria en terceros molares extra&iacute;dos. Rev Fac Odontol Univ Antioq 2013; 25(1): 158-175.</p>      <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr noshade>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>RESUMEN</b></p>     </font>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>INTRODUCCI&Oacute;N:</b> la soluci&oacute;n en la que se almacenan los discos de dentina mientras son estudiados, ha determinado ser vital para    reproducir condiciones posibles de encontrar &ldquo;in vivo&rdquo;, y finalmente resulta cr&iacute;tica en la evaluaci&oacute;n de cualquier estudio relativo a la conductancia    hidr&aacute;ulica. El objetivo de este estudio fue determinar in vitro la variaci&oacute;n en la tasa de filtraci&oacute;n transdentinaria en discos de dentina humana,    luego de 2,4,6,7,14,21 y 28 d&iacute;as almacenados en HBSS(Hank&rsquo;s Balanced Salt Solution), formalina al 10% y suero fisiol&oacute;gico.   <b>M&Eacute;TODOS:</b>se utilizaron  41 terceros molares humanos sanos en inoclusi&oacute;n. Estos dientes fueron desinfectados en Timol al 0,1% por 24 horas, para luego ser incluidos en  bloques de resina ep&oacute;xica. Estos fueron cortados de manera que se lograran discos de dentina de 1 mm de grosor. Posterior a esto, a los discos  dentinarios se les midi&oacute; su conductancia hidr&aacute;ulica, luego fueron separados para ser almacenados en diferentes medios. Se conformaron los  siguientes grupos: 1)formalina al 10%; b) soluci&oacute;n de Hank (HBSS) y c)suero fisiol&oacute;gico. Luego se midi&oacute; su conductancia hidr&aacute;ulica luego de 1,  2, 4, 6, 7, 14, 21 y 28 d&iacute;as. El an&aacute;lisis estad&iacute;stico fue por ANOVA y post hoc de Tukey (SPSSv15).   <b>RESULTADOS: </b>: los resultados obtenidos indicaron  que las medias de los discos dentinarios, en todas las soluciones de almacenamiento, aumentaron su conductancia hidr&aacute;ulica comparando el d&iacute;a  de corte y el d&iacute;a 28 de an&aacute;lisis.  <b>CONCLUSIONES: </b>no existieron diferencias significativas (p &gt; 0,005) de conductancia hidr&aacute;ulica entre los diferentes  d&iacute;as de los discos almacenados en soluci&oacute;n de Hank.</font></p>  <font size="2" face="Verdana">    <p><b>Palabras clave:</b> dentina, conductancia, difusi&oacute;n.</p>  <hr noshade>             <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>INTRODUCCI&Oacute;N </b></font></p>     <p>La dentina forma la estructura central de los dientes. Su espesor est&aacute; atravesado por t&uacute;bulos que se extienden desde la pulpa hasta el l&iacute;mite amelodentinario. Estos t&uacute;bulos le confieren la caracter&iacute;stica f&iacute;sica de permeabilidad.<SUP>1</SUP></p>      <p>La primera descripci&oacute;n de permeabilidad de sustancias a trav&eacute;s de la dentina fue dada por Fritsch, en 1914. En la d&eacute;cada de los 40, Lefkowits observ&oacute; c&oacute;mo un colorante inyectado en la pulpa de un diente, penetr&oacute; en toda la dentina en un poco m&aacute;s de media hora. Algunos a&ntilde;os despu&eacute;s, Bodecker y Lefkowitz observaron c&oacute;mo el colorante de un material de obturaci&oacute;n, puesto en una cavidad profunda, fue capaz de pasar a zonas adyacentes del esmalte, dentina y pulpa. Se define conductancia hidr&aacute;ulica de la dentina como la habilidad del fluido de pasar a trav&eacute;s de esta,<sup>2</sup> y el t&eacute;rmino permeabilidad dentinaria involucra el pasaje de fluidos, iones, mol&eacute;culas, part&iacute;culas y bacterias en y a trav&eacute;s de la dentina, bajo diferentes condiciones.<SUP>1, 3</SUP></p>      <p>Pashley y colaboradores han estudiado la relaci&oacute;n de la permeabilidad de la dentina con su topograf&iacute;a, morfolog&iacute;a y con distintas soluciones.<sup>1, 3-14</sup> Tambi&eacute;n se ha investigado la permeabilidad de diversos componentes de los materiales dentales, y su posible efecto citot&oacute;xico en las c&eacute;lulas pulpares.<sup>15-20</sup> Otra l&iacute;nea de investigaci&oacute;n que nace de la permeabilidad dentinaria, es la prueba de sistemas adhesivos.<sup>15</sup> Producto de la hidrataci&oacute;n y naturaleza compleja de este tejido, la adhesi&oacute;n a la dentina y el sellado de las superficies dentinarias expuestas, contin&uacute;a siendo una problem&aacute;tica a pesar de los avances en la odontolog&iacute;a adhesiva. Modelos de permeabilidad han sido usados para calcular la capacidad de los sistemas adhesivos para sellar la dentina y para determinar la fuerza de adhesi&oacute;n a ella de distintos sistemas adhesivos, cementos y otros materiales dentales.</p>      <p>A pesar de ser un campo con mucha investigaci&oacute;n a la fecha, existe muy poca informaci&oacute;n acerca de la permeabilidad de la dentina en distintos estados de maduraci&oacute;n o de variables sist&eacute;micas que pudieran afectar la maduraci&oacute;n o composici&oacute;n de ella y su permeabilidad.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La informaci&oacute;n existente, acerca de c&oacute;mo funcionan los modelos experimentales para estudiar la permeabilidad de la dentina <i>in vitro</i>, es poca.</p>      <p>Dentro de las distintas variables que existen en los estudios <I>in vitro</I> de permeabilidad dentinaria, la soluci&oacute;n en la que se almacenan los discos de dentina mientras son estudiados ha determinado ser vital para reproducir condiciones posibles de encontrar<I> in vivo</I>, y que finalmente resulta cr&iacute;tica en la evaluaci&oacute;n de cualquier estudio relativo a la conductancia hidr&aacute;ulica. Es as&iacute;, ya que la soluci&oacute;n en la que se encuentren las muestras determinar&aacute; la manera en que se mantendr&aacute;n las propiedades del disco, pudiendo influenciar notoriamente su grado de permeabilidad.<SUP>21 </SUP>Por este motivo,<SUP>22</SUP> el presente estudio tiene la finalidad de analizar diferentes soluciones de almacenamiento, entregando como nueva alternativa la Soluci&oacute;n de Hank (Hank'S Balanced Salt Solution, HBSS)<sup>22</sup></p>      <p>Esta soluci&oacute;n actualmente posee uso reconocido en traumatismos dentales, dado que le otorga una mayor viabilidad a las c&eacute;lulas periodontales en casos de avulsi&oacute;n. Adem&aacute;s, posee un pH, osmolaridad y componentes i&oacute;nicos que la hacen un material ideal para el almacenamiento de tejidos dentales.<sup>21, 23-27</sup> De esta manera, resultar&aacute; necesario comprobar si esta sustancia mantiene en condiciones &oacute;ptimas a los discos para medir su conductancia hidr&aacute;ulica, pudiendo convertirse en alternativa para futuras investigaciones. El suero ha sido constatado como un medio de almacenamiento inadecuado, debido a los grandes cambios estructurales producidos en dentina, y que se traducen en un aumento excesivo de permeabilidad.<sup>28</sup> De hecho, la dureza y el m&oacute;dulo de elasticidad de Young disminuyen cuando las muestras son almacenadas en suero, presumiblemente debido a la p&eacute;rdida de calcio superficial que permite la exposici&oacute;n de col&aacute;geno dentinario, lo cual puede tener un efecto en la hidr&oacute;lisis de las fibras de col&aacute;geno expuestas.</p>      <p>En el campo de la endodoncia, han utilizado diferentes soluciones con caracter&iacute;sticas fisiol&oacute;gicas, en especial para problemas derivados del traumatismo dentoalveolar, como lo es la avulsi&oacute;n dentaria. La avulsi&oacute;n dentaria es una de las formas de trauma dental m&aacute;s severas, siendo descrita como el desplazamiento completo del diente desde el alv&eacute;olo. </p>      <p>Dado lo complejo de la situaci&oacute;n, el paquete vasculonervioso resulta altamente comprometido, hecho que genera muchas veces la p&eacute;rdida de la vitalidad pulpar.<sup>29</sup> Por esta raz&oacute;n, los endodoncistas han buscado por a&ntilde;os soluciones capaces de mantener al diente estable luego de una avulsi&oacute;n, para su posterior reimplantaci&oacute;n.</p>      <p>En esta b&uacute;squeda es donde apareci&oacute; la Soluci&oacute;n de Hank o HBSS (Hank's Balanced Salt Solution). Esta soluci&oacute;n es levemente b&aacute;sica, teniendo un pH entre 7,2 y 8,0. Es altamente concentrado en iones Ca2+, Mg2+, Na+, PO34 y Cl+, y tiene una composici&oacute;n comparable con las fases minerales dentales.<sup>21</sup> Adem&aacute;s, posee un bajo potencial qu&iacute;mico de disolver las fases del calcio fosfato en el diente, por lo que la superficie de desmineralizaci&oacute;n es prevenida.<sup>23</sup>Igualmente, la osmolaridad de la soluci&oacute;n de Hank es de aproximadamente 300 mOm/l,<sup>24, 25</sup> y dado que la osmolaridad ideal para la preservaci&oacute;n de c&eacute;lulas se encuentra entre los 230 y los 400 mOm/l, la transforman en una soluci&oacute;n ideal para este tipo de tareas.<sup>26, 27</sup> De hecho, son m&uacute;ltiples los estudios que comprueban la efectividad del HBSS como medio de conservaci&oacute;n de c&eacute;lulas del ligamento periodontal en casos de traumatismo, entre ellos Ashkenazi, quien mostr&oacute; que la soluci&oacute;n de HBSS es el medio de almacenamiento m&aacute;s efectivo para la preservaci&oacute;n de la viabilidad, motilidad y capacidad clonog&eacute;nica de las c&eacute;lulas del ligamento periodontal, despu&eacute;s de ser almacenadas por 24 horas a 22&deg;C.<sup>30</sup></p>      <p>Dada las caracter&iacute;sticas conservadoras de tejido que proporciona la soluci&oacute;n de Hank, comenz&oacute; a ser estudiado en profundidad, adem&aacute;s de aumentar su aplicaci&oacute;n pr&aacute;ctica. Result&oacute; ser, por ejemplo, un excelente medio de conservaci&oacute;n de dentina y esmalte para estudios a corto plazo de resistencia mec&aacute;nica del diente. <sup>23</sup> Sin embargo, no es menor el hecho de precisar que la soluci&oacute;n de Hank resulta ser m&aacute;s cara que otras soluciones, adem&aacute;s de ser inestable cuando se expone a la luz por cortos per&iacute;odos de tiempo,<sup>24</sup> raz&oacute;n por la que el estudio de sus caracter&iacute;sticas, beneficios y contraindicaciones est&aacute; a&uacute;n en progreso. El prop&oacute;sito del estudio es determinar <i>in vitro</i> la variaci&oacute;n en la tasa de filtraci&oacute;n transdentinaria (conductancia hidr&aacute;ulica) en discos de dentina humana, luego de 2, 4, 6, 7, 14, 21 y 28 d&iacute;as almacenados en soluci&oacute;n de HBSS, en formalina al 10% y en suero fisiol&oacute;gico.</p>      <p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana"><b>M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p>En este estudio de tipo observacional, se utilizaron 41 terceros molares humanos sanos en inoclusi&oacute;n, extra&iacute;dos de personas entre 16 y 30 a&ntilde;os, cuyo di&aacute;metro coronal no fue mayor de 12mm, obtenidos previa firma de un consentimiento informado por parte del paciente, el cual fue aprobado por el comit&eacute; de &eacute;tica de la Facultad de Odontolog&iacute;a de la Universidad de Chile. Posterior a la extracci&oacute;n, se limpiaron manualmente con Cureta 13-14 Gracey (Hu- Friedy-USA), luego fueron desinfectados durante 24 horas en una soluci&oacute;n de Timol al 0,1% (SIGMA, England), y finalmente fueron dejados en una soluci&oacute;n de HBSS, a temperatura ambiente, y por dos semanas o menos.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Luego, los espec&iacute;menes en estudio fueron incluidos en bloques de resina ep&oacute;xica Bosh, de 25 mm de tama&ntilde;o. Para esto, los molares fueron limpiados con agua destilada, se les aplic&oacute; &aacute;cido ortofosf&oacute;rico (Coltene-Whaledent) al 37%, por 30 segundos. Fueron lavados, secados y pincelados con cianocrilato. Los dientes despu&eacute;s fueron fijados en el interior de un molde cilindrico de silicona envaselinada, de 25mm de di&aacute;metro, usando cera rosada en su cara oclusal para fijarlos. Finalmente, la resina ep&oacute;xica fue vertida en el molde, esperando su polimerizaci&oacute;n, al menos 48 horas.</p>      <p>Una vez polimerizada la resina ep&oacute;xica, se hicieron cortes de manera perpendicular al eje mayor del diente, a la altura de la corona, logrando de esta manera discos de 1 mm de grosor. Estos cortes se hicieron con la recortadora ISOMET BUEHLER LER LAKEBUFF IL, USA 1000, a 700 rpm, con 500 gr de presi&oacute;n, bajo abundante refrigeraci&oacute;n. Obtenidos los discos, las caras oclusales y pulpares se regularizaron con papel abrasivo (N.&deg; 600 Silicon carbide) bajo agua circulando para estandarizar los espesores y lograr un alisado superficial. Se procedi&oacute; luego al grabado &aacute;cido de cada superficie para eliminar el barro dentinario, por medio de &aacute;cido ortofosf&oacute;rico al 37% por 15 s en cada superficie, y luego lavado profuso con agua.</p>      <p>La recortadora fue utilizada a 700 rpm, con 500 gr de presi&oacute;n en su brazo de corte y bajo abundante refrigeraci&oacute;n de agua. El modelo experimental utilizado para medir el flujo, es una modificaci&oacute;n al dispuesto por el equipo de Pashley.31, 32 El modelo experimental utilizado para medir el flujo se confeccion&oacute; con un reservorio de agua destilada, en una columna vertical de agua de 200 mm, conectada a una llave de paso. Luego, por medio de un tubo de silicona, se conect&oacute; a un tubo capilar milimetrado en posici&oacute;n horizontal, al cual se le incorpor&oacute; una gota de aire. El capilar se conect&oacute; distalmente a una c&aacute;mara en donde se fijaron los discos en estudio (discos de dentina sellados por medio de anillos de silicona) a trav&eacute;s de un tubo de silicona (<a href="#f1">figura 1</a>) .</p>     <p align="center"><a name="f1"><img src=/img/revistas/rfoua/v25n1/v25n1a10f1.jpg></a> </p>       <p>Modificada a la utilizada por Pashley, cuenta con una columna vertical con 200 mm de agua, conectada por medio de una goma a un capilar, que a su vez se conecta a la c&aacute;mara donde est&aacute; el disco dentinario.</p>      <p>El tiempo durante el cual se dispuso cada disco del estudio, fue de 20 minutos, repiti&eacute;ndose cada medici&oacute;n 3 veces al d&iacute;a, a fin de lograr un promedio diario. De esta manera, adem&aacute;s, cada disco fue medido el d&iacute;a en que fue cortado, y a los d&iacute;as 2, 4, 6, 7, 14, 21 y 28 posterior al corte.</p>     <p>De esta manera, y dado los objetivos del estudio, se conformaron 5 grupos experimentales, que fueron los siguientes: Discos almacenados en Soluci&oacute;n de Hank (SIGMA, England) (n: 15) , Discos almacenados en formalina al 10% (n: 18), Discos almacenados en suero(n: 5), Medici&oacute;n sin disco (control negativo), Disco de Resina Ep&oacute;xica (control positivo).</p>      <p>La tasa de flujo de permeabilidad fue medida registrando la posici&oacute;n inicial de la burbuja de aire dentro del capilar, para consignar su posici&oacute;n final despu&eacute;s de que transcurrieran 20 minutos (<a href="#f2">figura 2</a>).</p>     <p align="center"><a name="f2"><img src=/img/revistas/rfoua/v25n1/v25n1a10f2.jpg></a> </p>       <p>Se mide la variaci&oacute;n que tuvo la burbuja de aire dentro del capilar en 20 minutos, con lo que se puede saber la cantidad de agua que traspas&oacute; la dentina. </p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las mediciones del &aacute;rea de dentina expuesta por disco, fueron calculadas por el <i>software</i> computacional ImageJ<sup>33</sup> (<a href="#f3">figura 3</a>). Una vez obtenida el &aacute;rea y la tasa de flujo de cada disco, se procedi&oacute; a calcular la conductancia hidr&aacute;ulica mediante la siguiente f&oacute;rmula: la conductancia hidr&aacute;ulica corresponde a una f&oacute;rmula que determina la permeabilidad, en este caso, de los discos de dentina. La variable F corresponde a la tasa de flujo de cada grupo experimental; la variable A corresponde al &aacute;rea de dentina expuesta al fluido; la variable P corresponde a la presi&oacute;n intrapulpar, cuyo valor corresponde a la altura de la columna de agua destilada (200 mm); y la variable t es el tiempo en minutos.</p>     <p align="center"><a name="f3"><img src=/img/revistas/rfoua/v25n1/v25n1a10f3.jpg></a> </p>      <p>Una vez obtenida la imagen del disco de dentina, con el software Image J se selecciona el &aacute;rea requerida y se obtienen los valores solicitados.</p>      <p>An&aacute;lisis estad&iacute;stico: se hizo por medio de la prueba de ANOVA de dos variables y post hoc de Tuckey (SPSSv15). Todo este an&aacute;lisis fue hecho en el <i>software</i> G*Power 3.1, y para la muestra se determin&oacute; un valor p = 0,05, un poder estad&iacute;stico de 0,8 y un tama&ntilde;o de efecto de 0,5.</p>         <p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana"><b>RESULTADOS</b></font></p>      <p>De un total de 41 terceros molares recolectados en perfectas condiciones para el estudio, se obtuvieron 41 discos de dentina de 1 mm (&plusmn;	 0,01 mm), divididos en 3 grupos, correspondientes a las 3 soluciones de almacenamiento analizadas en este estudio. Los grupos fueron:</p>       <p>    <li>18 discos de dentina en soluci&oacute;n formalina al 10%.</li></p>     <li>15 discos de dentina en soluci&oacute;n de Hank.</li></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<li>8 discos de dentina en soluci&oacute;n suero fisiol&oacute;gico.</li></p>        <p>La <a href="#t1">tabla 1</a> corresponde a las medias con sus respectivas desviaciones tipo, de las diferentes permeabilidades obtenidas en los diferentes medios de almacenamiento. Cabe recordar que los n de cada soluci&oacute;n eran diferentes, ya que en la Formalina al 10% el n era de 18 muestras, en Soluci&oacute;n de Hank el n era de 15 muestras, y en suero fisiol&oacute;gico el n era de 8 muestras. La <a href="#f4">figura 4</a>, en tanto, corresponde a la comparaci&oacute;n de las medias diarias de los 3 grupos en estudio.</p>     <p align="center"><a name="t1"><img src=/img/revistas/rfoua/v25n1/v25n1a10t1.jpg></a> </p>     <p align="center"><a name="f4"><img src=/img/revistas/rfoua/v25n1/v25n1a10f4.jpg></a> </p>      <p>No hay diferencia entre los grupos en los d&iacute;as 0 (p = 0,101), 1 (p = 0,614), 4 (p = 0,155), 6 (p = 0,67) ni 28 (p = 0,621). Sin embargo, s&iacute; existe diferencia entre los grupos los d&iacute;as 2 (p = 0,020), 7 (p = 0,017), 14 (p = 0,043) y 21 (p = 0,024) (<a href="#t1">tabla 2</a>). </p>      <p align="center"><a name="t2"><img src=/img/revistas/rfoua/v25n1/v25n1a10t2.jpg></a> </p>      <p>Para determinar entre qu&eacute; grupos hay diferencia significativa, se hace el test post hoc de Tukey (<a href="#f5">figuras 5</a>, <a href="#f6">6</a> y <a href="#f7">7</a>).</p>      <p align="center"><a name="f5"><img src=/img/revistas/rfoua/v25n1/v25n1a10f5.jpg></a> </p>     <p align="center"><a name="f6"><img src=/img/revistas/rfoua/v25n1/v25n1a10f6.jpg></a> </p>     <p align="center"><a name="f7"><img src=/img/revistas/rfoua/v25n1/v25n1a10f7.jpg></a> </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En los resultados, podemos apreciar que existe diferencia significativa (p &lt; 0,05) entre las muestras de formalina y suero para el d&iacute;a 2 (p = 0,014), para el d&iacute;a 7 (p = 0,018) y tambi&eacute;n entre las muestras de formalina y soluci&oacute;n de Hank para el d&iacute;a 14 (p = 0,038). Asimismo, se hizo el test post hoc de Tukey en cada soluci&oacute;n para determinar entre qu&eacute; d&iacute;as hubo diferencias significativas. </p>       <p>Dado los resultados, es posible observar diferencias significativas (p &lt; 0,05) en las muestras almacenadas en formalina entre los d&iacute;as 0 y 28 (p = 0,027), y para las muestras almacenadas en suero fisiol&oacute;gico, entre los d&iacute;as 0 y 6 (p = 0,045) y 0 y 7 (p = 0,007).</p>       <p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>      <p>&nbsp;</p>      <p>Este estudio se origina por la necesidad de contar con materiales que permitan desarrollar estudios, tanto a corto como a largo plazo, en permeabilidad dentinaria, sin que se altere el medio por reacciones entre los tejidos dentarios, los materiales utilizados y la soluci&oacute;n de almacenamiento. Las actuales alternativas probadas, no han demostrado tener todas estas condiciones, ya que, por una parte, las soluciones salinas y otras soluciones similares no han podido demostrar su utilidad como medios de almacenamiento a mediano plazo, y otras, como la formalina, si bien han demostrado mejores resultados como soluciones almacenadoras, alteran caracter&iacute;sticas propias de los tejidos que finalmente terminan por afectar los resultados obtenidos.<sup>21, 25, 29</sup></p>      <p>El modelo utilizado para este estudio, est&aacute; basado en el modelo utilizado por el grupo de investigaci&oacute;n a cargo del grupo de Pashley<sup>31</sup> y posteriormente utilizado por otros investigadores. Este modelo otorga una herramienta simple y confiable, como lo es la c&aacute;mara de difusi&oacute;n, para medir la conductancia hidr&aacute;ulica de discos de dentina de manera visual, lo que nos permite tener un reflejo de la permeabilidad dentinaria. El dise&ntilde;o de este estudio var&iacute;a b&aacute;sicamente en la presi&oacute;n hidrost&aacute;tica utilizada, correspondiente a 20 cm de H<sub>2</sub>O a 20&deg;C. Dentro de la t&eacute;cnica utilizada, cabe comparar con Sekimoto, el cual utiliz&oacute; el mismo modelo pero con una presi&oacute;n de 15 psi de N2 sobre una soluci&oacute;n salina fosfatada al 0,2%, equivalente a 1054,8 cm de H<sub>2</sub>O a 4&deg;C.34 En muchas investigaciones tienden a aumentar significativamente la presi&oacute;n, debido a lo lento que es el proceso en s&iacute;, a fin de obtener medidas mayores. En este caso, y debido a futuros usos del estudio mismo, se decidi&oacute; utilizar una presi&oacute;n cercana a la fisiol&oacute;gica pulpar, presi&oacute;n que para muchos autores ronda entre los 12 y 18 cm H<sub>2</sub>O.<sup>35</sup></p>      <p>El hecho de que el flujo dentinario tienda a ir de pulpar hacia afuera del diente, est&aacute; dado por la diferencia entre la presi&oacute;n ambiental y la pulpar, por lo que &eacute;sta &uacute;ltima, al ser mayor, genera un flujo expulsivo de fluidos desde la pulpa.<sup>12</sup> Sin embargo, el presente estudio fue hecho generando un flujo desde oclusal hacia pulpar, teniendo en cuenta los resultados de Pashley, quien se&ntilde;al&oacute; que el flujo tiende a disminuirse en direcci&oacute;n pulpar-oclusal, debido al mayor riesgo de obliteraci&oacute;n de los t&uacute;bulos por productos pulpares. Pese a esto, la variaci&oacute;n encontrada por este autor entre ambos sentidos de flujo no fue estad&iacute;sticamente significativa.<sup>36</sup></p>      <p>En este estudio, se utiliz&oacute; &aacute;cido ortofosf&oacute;rico para tratar la dentina superficial, dado que este tiende a permear las superficies obliteradas, aumentando la permeabilidad en rangos que van desde 87 a 146%.<sup>37</sup> Asimismo, se intent&oacute; hacer el tratamiento de &aacute;cido bajo condiciones y tiempos similares a las usadas en el trabajo cl&iacute;nico, adem&aacute;s de desechar la idea de usar otro tipo de grabadores &aacute;cidos de poca aplicaci&oacute;n cl&iacute;nica, como lo es el &aacute;cido c&iacute;trico.</p>      <p>Bajo el mismo par&aacute;metro, se utiliz&oacute; agua destilada, en vez de suero, para medir la tasa de permeabilidad, a fin de evitar cualquier precipitaci&oacute;n de sales que pudiesen obliterar los t&uacute;bulos dentinarios.<sup>1, 28, 38</sup></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El motivo de utilizar la soluci&oacute;n de Hank en este estudio, es el de introducir en estudios de permeabilidad dentinaria una soluci&oacute;n que ha demostrado mantener tejidos dentinarios en el tiempo, conservando gran parte de sus caracter&iacute;sticas mec&aacute;nicas, qu&iacute;micas e incluso fisiol&oacute;gicas. Todo lo anterior es en gran parte debido a sus similitudes, tanto en pH como en osmolaridad, aparte de poseer iones similares a las de las fases minerales del diente.</p>      <p>Obtenidos los resultados de este estudio, es posible inferir algunos hechos. Una vez que las muestras comenzaron a ser analizadas, esto es, que fueron puestas en soluci&oacute;n de almacenamiento y se midi&oacute; su permeabilidad en el tiempo, la conductancia hidr&aacute;ulica de las mismas aument&oacute; conforme al paso de los d&iacute;as, situaci&oacute;n similar a lo recopilado bibliogr&aacute;ficamente. Igualmente, y teniendo en cuenta la figura 4, el grupo que present&oacute; un aumento comparativamente mayor al resto, en especial en los primeros d&iacute;as de estudio, fue el de las muestras almacenadas en suero fisiol&oacute;gico. La contrapartida a esta situaci&oacute;n fueron las muestras almacenadas en formalina al 10%, las cuales, si bien tuvieron un incremento de su permeabilidad con respecto al tiempo, fueron las muestras que presentaron menor variaci&oacute;n en comparaci&oacute;n a su condici&oacute;n basal. Para Goodis y colaboradores,28 esto muy probablemente se debe a la propiedad fijadora de la formalina, hecho que conservar&iacute;a estructuralmente los t&uacute;bulos dentinarios, determinando un cambio menor de la conductancia hidr&aacute;ulica.</p>     <p>En los resultados, podemos ver que existe diferencia significativa (p &lt; 0,05) entre las muestras de formalina y suero para el d&iacute;a 2 (p = 0,014) y para el d&iacute;a 7 (p = 0,018), y tambi&eacute;n entre las muestras de formalina y soluci&oacute;n de Hank para el d&iacute;a (p = 0,038). Esto se suma al an&aacute;lisis del test post hoc de Tukey en cada soluci&oacute;n, donde se aprecian diferencias significativas en las muestras almacenadas en formalina entre los d&iacute;as 0 y 28 (p = 0,027), y para las muestras almacenadas en suero fisiol&oacute;gico entre los d&iacute;as 0 y 6 (p = 0,045) y 0 y 7 (p = 0,007).</p>      <p>Podemos concluir que los medios estudiados entre s&iacute;, poseen diferencias significativas en algunos tramos de an&aacute;lisis, no pudiendo hacerse homologable, al menos en lo que a conductancia hidr&aacute;ulica se refiere, el hecho de almacenar muestras en cualquier soluci&oacute;n de almacenamiento. Por otra parte, las variaciones en las muestras, tanto en suero fisiol&oacute;gico como en formalina al 10%, mostraron algunos tramos en que presentaron diferencias significativas, hecho que concuerda con la literatura, respecto a lo dif&iacute;cil que resulta predecir el comportamiento de la permeabilidad dentinaria, incluso en soluciones estimadas como buenas preservantes, como la formalina. Con respecto a la Soluci&oacute;n de Hank, no existe diferencia significativa entre los diferentes d&iacute;as de estudio de las muestras, comprob&aacute;ndose por tanto la hip&oacute;tesis nula de este estudio.</p>      <p>Sin embargo, se sugiere hacer estudios sobre la permeabilidad dentinaria y el comportamiento de la soluci&oacute;n de Hank, como medio de almacenamiento, en estudios a&uacute;n m&aacute;s prolongados en el tiempo que el actual. Se recomienda tambi&eacute;n, previo a analizar cualquier material en esta soluci&oacute;n, comprobar cualquier tipo de reacci&oacute;n del material con la soluci&oacute;n de Hank.</p>      <p>&nbsp;</p>      <p><font size="3" face="Verdana"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>      <p>&nbsp;</p>  <ul>     <p>    <li>Hay diferencia estad&iacute;sticamente significativa en los distintos tipos de almacenamiento de muestras dentarias, para 4 de los 9 d&iacute;as en que se estudi&oacute; la conductancia hidr&aacute;ulica de las muestras (d&iacute;as 2, 7, 14 y 21).</li></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<li>Las muestras almacenadas en formalina al 10%, fueron las que mostraron mayores variaciones de su conductancia hidr&aacute;ulica durante el estudio.</li></p>      <li>Las muestras almacenadas en Soluci&oacute;n de Hank, no mostraron diferencia significativa en su conductancia hidr&aacute;ulica entre los d&iacute;as de estudio.</li></p>      <li>La c&aacute;mara de difusi&oacute;n utilizada en el trabajo, derivada del modelo de Pashley, es un instrumento simple y confiable para el estudio de la difusi&oacute;n en dentina.</p>     </ul>     <p>&nbsp;</p>       <p><font size="3" face="Verdana"><b>REFERENCIAS</b></font></p>      <p>&nbsp;</p>      <p>    <!-- ref --><p>1. Reeder OW Jr, Walton RE, Livingston MJ, Pashley DH. Dentin permeability: determinants of hydraulic conductance. J Dent Res 1978; 57(2): 187-193.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0121-246X201300020001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Maita E, Simpson MD, Tao L, Pashley DH. Fluid and protein flux across the pulpodentine complex of the dog in vivo. Arch Oral Biol 1991; 36(2): 103-110.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0121-246X201300020001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Pashley DH, Andringa HJ, Derkson GD, Derkson ME, Kalathoor SR. Regional variability in the permeability of human dentine. Arch Oral Biol 1987; 32(7): 519-523.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0121-246X201300020001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Pashley DH, Nelson R, Williams EC. Dentin hydraulic conductance: changes produced by red blood cells. J Dent Res 1981; 60(10): 1797-1802.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0121-246X201300020001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Pashley DH, Michelich V, Kehl T. Dentin permeability: effects of smear layer removal. J Prosthet Dent 1981; 46(5): 531-537.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0121-246X201300020001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Pashley DH, Thompson SM, Stewart FP. Dentin permeability: effects of temperature on hydraulic conductance. J Dent Res 1983; 62(9): 956-959.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0121-246X201300020001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>7. Derkson GD, Pashley DH, Derkson ME. Microleakage measurement of selected restorative materials: a new in vitro method. J Prosthet Dent 1986; 56(4): 435-440.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0121-246X201300020001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Pashley DH. Dentin permeability, dentin sensitivity, and treatment through tubule occlusion. J Endod 1986; 12(10): 465-474.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0121-246X201300020001000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Pashley DH Depew DD. Effects of the smear layer, Copalite, and oxalate on microleakage. Oper Dent 1986; 11(3): 95-102.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0121-246X201300020001000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Pashley EL, Tao L, Derkson G, Pashley DH. Dentin permeability and bond strengths after various surface treatments. Dent Mater 1989; 5(6): 375-378.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0121-246X201300020001000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Pashley DH. Mechanisms of dentin sensitivity. Dent Clin North Am 1990; 34(3): 449-473.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0121-246X201300020001000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Pashley DH. Dentine permeability and its role in the pathobiology of dentine sensitivity. Arch Oral Biol 1994; 39 Supl: 73S-80S.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0121-246X201300020001000012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>13. Gillam DG, Mordan NJ, Newman HN. The Dentin Disc surface: a plausible model for dentin physiology and dentin sensitivity evaluation. Adv Dent Res 1997; 11(4): 487- 501.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0121-246X201300020001000013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Pashley DH, Livingston MJ, Reeder OW, Horner J. Effects of the degree of tubule occlusion on the permeability of human dentine in vitro. Arch Oral Biol 1978; 23(12): 1127-1133.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0121-246X201300020001000014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Lanza CR, de Souza Costa CA, Furlan M, Al&eacute;cio A, Hebling J. Transdentinal diffusion and cytotoxicity of self-etching adhesive systems. Cell Biol Toxicol 2009; 25(6): 533-543.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0121-246X201300020001000015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Lessa FC, Nogueira I, Huck C, Hebling J, Costa CA. Transdentinal cytotoxic effects of different concentrations of chlorhexidine gel applied on acid-conditioned dentin substrate. J Biomed Mater Res B Appl Biomater 2010; 92(1): 40-47.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0121-246X201300020001000016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Lessa FC, Nogueira I, Vargas Fda S, Spolidorio DM, Hebling J, Garcia-Godoy F, Costa CA. Direct and transdentinal antibacterial activity of chlorhexidine. Am J Dent 2010; 23(5): 255-259.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0121-246X201300020001000017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>18. Soares DG, Ribeiro AP, Sacono NT, Coldebella CR, Hebling J, Costa CA. Transenamel and transdentinal cytotoxicity of carbamide peroxide bleaching gels on odontoblast- like MDPC-23 cells. Int Endod J 2011; 44(2): 116-125.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0121-246X201300020001000018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Turrioni AP, de Oliveira CF, Basso FG, Moriyama LT, Kurachi C, Hebling J et al. Correlation between light transmission and permeability of human dentin. Lasers Med Sci 2012; 27(1): 191-196.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0121-246X201300020001000019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Lima AF, Lessa FC, Mancini MN, Hebling J, Costa CA, Marchi GM. Transdentinal protective role of sodium ascorbate against the cytopathic effects of H2O2 released from bleaching agents. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod 2010; 109(4): e70-76.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0121-246X201300020001000020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Thomas T, Gopikrishna V, Kandaswamy D. Comparative evaluation of maintenance of cell viability of an experimental transport media "coconut water" with Hank's balanced salt solution and milk, for transportation of an avulsed tooth: An in vitro cell culture study. J Conserv Dent 2008; 11(1): 22-29.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0121-246X201300020001000021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>22. Cummins D. Dentin hypersensitivity: from diagnosis to a breakthrough therapy for everyday sensitivity relief. J Clin Dent 2009; 20(1): 1-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0121-246X201300020001000022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>23. Habelitz S, Marshall GW Jr, Balooch M, Marshall SJ. Nanoindentation and storage of teeth. J Biomech 2002; 35(7): 995-998.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0121-246X201300020001000023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Anjum A, Otsuki M, Matin K, Tagami J. Preservation in the liquid media produces alterations in enamel surface properties. J Dent 2009; 37(11): 884-890.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0121-246X201300020001000024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. de Souza BD, Bortoluzzi EA, da Silveira Teixeira C, Felippe WT, Sim&otilde;es CM, Felippe MC. Effect of HBSS storage time on human periodontal ligament fibroblast viability. Dent Traumatol 2010; 26(6): 481-483.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0121-246X201300020001000025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. Bloml&ouml;f L. Milk and saliva as possible storage media for traumatically exarticulated teeth. Swed Dent J Supl 1981; 8: 1-26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0121-246X201300020001000026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. Lindskog S, Bloml&ouml;f L, Hammarstr&ouml;m L. Mitoses and microorganisms in the periodontal membrane after storage in milk or saliva. Scand J Dent Res 1983; 91(6): 465-472.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0121-246X201300020001000027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. Goodis HE, Marshall GW Jr, White JM. The effects of storage after extraction of the teeth on human dentine permeability in vitro. Arch Oral Biol 1991; 36(8): 561-566.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0121-246X201300020001000028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>29. Gopikrishna V, Baweja PS, Venkateshbabu N, Thomas T, Kandaswamy D. Comparison of coconut water, propolis, HBSS, and milk on PDL cell survival. J Endod 2008; 34(5): 587-589.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0121-246X201300020001000029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30. Ashkenazi M, Marouni M, Sarnat H. In vitro viability, mitogenicity and clonogenic capacity of periodontal ligament cells after storage in four at room temperature. Endod Dent Traumatol 2000; 16(2): 63-70.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0121-246X201300020001000030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31. Outhwaite WC, McKenzie DM, Pashley DH. A versatile split-chamber device for studying dentin permeability. J Dent Res 1974; 53(6): 1503.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0121-246X201300020001000031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32. Ozok AR, Wu MK, Wesselink PR. Comparison of the in vitro permeability of human dentine according to the dentinal region and the composition of the simulated dentinal fluid. J Dent 2002; 30(2-3): 107-111.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0121-246X201300020001000032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>33. Schneider CA, Rasband WS, Eliceiri KW. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nat Methods 2012; 9(7): 671-675.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0121-246X201300020001000033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>34. Sekimoto T, Derkson GD, Richardson AS. Effect of cutting instruments on permeability and morphology of the dentin surface. Oper Dent 1999; 24(3): 130-136.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0121-246X201300020001000034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>35. Ciucchi B, Bouillaguet S, Holz J, Pashley D. Dentinal fluid dynamics in human teeth, in vivo. J Endod 1995; 21(4): 191-194.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0121-246X201300020001000035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>36. Greenhill JD, Pashley DH. The effects of desensitizing agents on the hydraulic conductance of human dentin in vitro. J Dent Res 1981; 60(3): 686-698.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0121-246X201300020001000036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>37. Tagami J, Tao L, Pashley DH, Hosoda H, Sano H. Effects of high-speed cutting on dentin permeability and bonding. Dent Mater 1991; 7(4): 234-239.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0121-246X201300020001000037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>38. Camps J, Martin P, Ladeque P, Rieu R, Fuseri J. Influence of tooth cryopreservation on human dentin permeability, in vitro. Dent Mater 1994; 10(3): 210-214.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0121-246X201300020001000038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p></p>   </font>       ]]></body><back>
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