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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[ADHESIÓN CONVENCIONAL EN DENTINA, DIFICULTADES Y AVANCES EN LA TÉCNICA]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[INTRODUCTION: studies on dentin bonding have reported that, contrary to the achieved stability on dental enamel, adhesive mechanisms on dentine are still sensitive, unpredictable, and unstable. The objective of this study is to review the current literature on dentin bonding in order to characterize conventional bonding, describing current modifications of the conventional protocol aimed at improving the adhesive performance of dental materials. METHODS: a literature review was conducted within 3 databases: ScienceDirect, Springer, and Medline, choosing the 52 most relevant articles published between 2004 and 2013. The following key words were used as search criteria: dentin, dentin bonding, bond strength, and acid etching. RESULTS: the review of the selected articles provided a description of the conventional adhesion protocol showing the formation of smear layer, the action of phosphoric acid, and the actual formation of adhesive interface, as well as the difficulties of the technique and possible solutions suggested to date. CONCLUSIONS: conventional dentin bonding is a precise and delicate procedure that shows disadvantages such as the hydrolytic and proteolytic degradation of collagen matrix by enzymes released at the time of demineralization, which damages the adhesive interface. Therefore, several substances have been suggested to be used as agents of collagen protection without altering adhesive strength, and even improving it.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font size="2" face="Verdana">      <p align="right"><b>ART&Iacute;CULOS ORIGINALES DERIVADOS DE INVESTIGACI&Oacute;N</b></p>          <p>&nbsp;</p>       <p align="center"><font size="4" face="Verdana"><b>ADHESI&Oacute;N CONVENCIONAL EN DENTINA, DIFICULTADES Y AVANCES EN LA T&Eacute;CNICA<SUP>1</SUP> </b></font></p>          <p>&nbsp;</p>        <p>&nbsp;</p>   <b>Gisela Ramos S&aacute;nchez<sup>2</sup>;  Norberto Calvo Ram&iacute;rez<sup>3</sup>; Ricardo Fierro Medina<sup>4</sup></b></p>       <p><sup>1 </sup> Este trabajo es requisito para optar por un t&iacute;tulo profesional, por tanto no obedece a ninguna relaci&oacute;n comercial. Universidad Nacional de Colombia. Investigaci&oacute;n financiada por el Grupo de Investigaci&oacute;n en Materiales Dentales (GRIMAD), de la Universidad Nacional de Colombia    <br>  <sup>2</sup> MSc en Odontolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia. Correo electr&oacute;nico: <a href="gisers@hotmail.com">gisers@hotmail.com</a>    <br>      <sup>3</sup> Especialista Rehabilitador Oral, Docente Universidad Nacional de Colombia    <br>  <sup>4</sup> PhD. Docente Departamento de Qu&iacute;mica. Laboratorio de Compuestos Organomet&aacute;licos. Universidad Nacional de Colombia    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   </p>      <p>&nbsp;</p>      <p><b>RECIBIDO: OCTUBRE 22/2013-ACEPTADO: JULIO 22/2014</b></p>      <p>&nbsp;</p>        <p>Ramos G, Calvo N, Fierro R. Adhesi&oacute;n convencional en dentina, dificultades y avances en la t&eacute;cnica. Rev Fac Odontol Univ Antioq 2015; 26(2): 468-486.</p>      <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr noshade>       <p><b>RESUMEN.</b></p>  <b>INTRODUCCI&Oacute;N:</b>estudios respecto a la adhesi&oacute;n en dentina han reportado que, contrario a la estabilidad lograda sobre esmalte dental, en dentina los mecanismos adhesivos todav&iacute;a son sensibles, impredecibles e inestables. El objetivo de este trabajo es revisar la literatura actual sobre la adhesi&oacute;n en dentina, con el fin de caracterizar la adhesi&oacute;n convencional describiendo las modificaciones actuales del protocolo convencional, encaminadas a mejorar el desempe&ntilde;o adhesivo de los materiales dentales.    <br>  <b>M&Eacute;TODOS:</b> se hizo una revisi&oacute;n de la literatura evaluando 3 bases de datos: ScienceDirect, Springer y Medline, de las cuales se escogieron los 52 art&iacute;culos m&aacute;s relevantes, publicados entre los a&ntilde;os 2004 y 2013. Se usaron, como criterios de b&uacute;squeda, las palabras clave: dentin, dentin bonding, bond strength y acid etching.     <br> <b>RESULTADOS:</b> al revisar los art&iacute;culos seleccionados, se logr&oacute; una descripci&oacute;n del protocolo de adhesi&oacute;n convencional que muestra la formaci&oacute;n del barrillo dentinario (smear layer), la acci&oacute;n del &aacute;cido fosf&oacute;rico y la formaci&oacute;n de la interfase adhesiva pzropiamente dicha, junto con las dificultades propias de la t&eacute;cnica y las posibles soluciones planteadas hasta la fecha.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <b>CONCLUSIONES:</b> la adhesi&oacute;n convencional sobre dentina es un procedimiento estricto y delicado, que evidencia inconvenientes como la degradaci&oacute;n hidrol&iacute;tica y proteol&iacute;tica de la matriz de col&aacute;geno por parte de enzimas liberadas en el momento de la desmineralizaci&oacute;n, lo que deteriora la interfase adhesiva. Por tanto, se han sugerido sustancias que pueden ser utilizadas como agentes de protecci&oacute;n del col&aacute;geno, sin alterar e incluso mejorando la resistencia adhesiva.    <br> </p>       <p><b>Palabras clave:</b> adhesivos, resinas compuestas, recubrimientos dentinarios, cementos dentales, &aacute;cido fosf&oacute;rico.</p>    <hr noshade>          <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>        <p><font size="3" face="Verdana"><b>INTRODUCCI&Oacute;N </b></font></p>      <p>La odontolog&iacute;a restauradora moderna ha evidenciado un r&aacute;pido progreso en la tecnolog&iacute;a de los adhesivos dentales en los &uacute;ltimos 50 a&ntilde;os,<sup>1</sup> logrando devolver forma y color de los dientes naturales, conservando la estructura dental a trav&eacute;s del concepto de la odontolog&iacute;a m&iacute;nimamente invasiva. Sin embargo, la duraci&oacute;n cl&iacute;nica de las resinas compuestas sigue siendo hoy en d&iacute;a muy corta, debido a una incompleta hibridizaci&oacute;n en la interfase adhesiva que origina una zona de col&aacute;geno expuesto y desprotegido.<sup>2</sup> Por tanto, la t&eacute;cnica de adhesi&oacute;n convencional en dentina se considera inestable, ya que la composici&oacute;n heterog&eacute;nea del tejido no permite que la uni&oacute;n adhesiva sea ideal y, por el contrario, puede afectarse con la degradaci&oacute;n hidrol&iacute;tica de los mon&oacute;meros hidrof&iacute;licos<sup>3</sup> presentes en los sistemas adhesivos, y por la acci&oacute;n de las metaloproteinasas que degradan las fibras col&aacute;genas expuestas. Como consecuencia, hay p&eacute;rdida en la retenci&oacute;n de las restauraciones adhesivas, aumento de la microfiltraci&oacute;n bacteriana, caries secundaria y alteraciones pulpares irreversibles.<sup>4</sup> Por lo anterior, es necesario caracterizar y evaluar la dentina, el protocolo de adhesi&oacute;n convencional y los avances actuales de la t&eacute;cnica, de manera que este conocimiento sea usado como base de futuras investigaciones que busquen mejorar el desempe&ntilde;o de los materiales adhesivos.</p>      <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>CARACTER&Iacute;STICAS DEL TEJIDO DENTINAL</b></font></p>      <p>La dentina se compone de un mineral de fosfato de calcio identificado como dahllita,<sup>5</sup> que se dispone en peque&ntilde;os cristales de hidroxiapatita carbonatada con dimensiones de 36 nm x 25 nm x 4 nm, y por una fase org&aacute;nica cuyo principal componente es el col&aacute;geno tipo l en un 90%, que se orienta en forma de malla. Igualmente, en su estructura tiene peque&ntilde;as cantidades de otros tipos de col&aacute;geno (IV, V y VI) y otros componentes como prote&iacute;nas no col&aacute;genas fosforiladas y no fosforiladas, adem&aacute;s de proteoglicanos, mucopolisac&aacute;ridos y l&iacute;pidos.<sup>2</sup> Ivancik y colaboradores<sup>6</sup> y Shrivastava y colaboradores<sup>7</sup> describen c&oacute;mo las caracter&iacute;sticas estructurales de la dentina, como lo son los t&uacute;bulos dentinales, dependen geom&eacute;tricamente de la ubicaci&oacute;n dentro del diente y de la distancia desde el tejido pulpar hasta el esmalte dental. En general, los t&uacute;bulos presentan un di&aacute;metro que va desde 1 a 2,5 µm y una densidad de 10.000 a 60.000 por mm<sup>-2</sup> y cada t&uacute;bulo est&aacute; rodeado por dentina peritubular, con un espesor de 0,5 a 1 µm y la regi&oacute;n entre los t&uacute;bulos es considerada como dentina intertubular (<a href="#f1">figura 1</a>) , cuya constituci&oacute;n principal es una malla de col&aacute;geno fibrilar que se apoya en los cristales de apatita.<sup>6, 8</sup> Por tanto, la dentina es un tejido altamente permeable, con t&uacute;bulos que adem&aacute;s se acompa&ntilde;an de microporos y microgrietas que pueden nacer desde la superficie del esmalte.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f1"><img src=/img/revistas/rfoua/v26n2/v26n2a13f1.jpg></a> </p>      <p>La respuesta a los est&iacute;mulos mec&aacute;nicos y qu&iacute;micos del ambiente es dada por la dentina seg&uacute;n sus caracter&iacute;sticas sensoriales y mec&aacute;nicas como el m&oacute;dulo el&aacute;stico fundamentalmente. Estas caracter&iacute;sticas anat&oacute;micas son las que determinan las condiciones de permeabilidad, humedad y propiedades f&iacute;sicas como la fuerza y la elasticidad.<sup>9, 10</sup></p>      <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>IMPLICACI&Oacute;N DEL BARRILLO DENTINARIO EN EL PROCESO ADHESIVO</b></font></p>      <p>Siempre que el tejido dentinal es manipulado de manera manual o con instrumentos rotatorios, se crea sobre la superficie una capa de detritus o desechos llamada capa de barrillo dentinario (smear layer).<sup>11</sup> Esta capa es considerada como un impedimento en odontolog&iacute;a adhesiva, ya que en un adecuado protocolo de adhesi&oacute;n convencional se logra, con el &aacute;cido fosf&oacute;rico, retirar de la superficie este barrillo dentinario.</p>      <p>Como lo indican los estudios de Eldarrata y colaboradores, <sup>12</sup> el espesor aproximado de dicha capa de barrillo dentinario es de 0,5 µm, que adem&aacute;s se forma con componentes org&aacute;nicos en el diente, como hidroxiapatita, saliva, sangre y bacterias. El barrillo se compone de dos capas de car&aacute;cter amorfo, una superficial y otra profunda, esta &uacute;ltima puede extenderse hasta 110 µm dentro de los t&uacute;bulos dentinales y se denomina (smear plug).<sup>12</sup> Esta capa de barrillo sella la interfase adhesiva y no contribuye al acoplamiento entre el adhesivo y la dentina.</p>      <p>Dos grupos de autores reportan que la manipulaci&oacute;n del tejido dentinal<sup>11, 13</sup> puede realizarse con lijas, fresas y discos de corte, lo que hace que var&iacute;e el espesor, la rugosidad, la densidad y el grado de adhesi&oacute;n a la estructura dentinal de la capa de barrillo de acuerdo al tipo de instrumentaci&oacute;n.<sup>14</sup> Por lo tanto, el espesor de dicha capa oscila entre 0,5 y 2 µm.<sup>15</sup> De este modo, el barrillo dentinario formado por el papel de lija deja t&uacute;bulos dentinarios m&aacute;s abiertos que los dejados por las fresas dentales, sin olvidar que los diferentes tipos de fresas, de acuerdo con el tama&ntilde;o del grano, brindan caracter&iacute;sticas</p>      <p>cualitativas y cuantitativas diferentes (<a href="#f2">figura 2</a>). El barrillo dentinal en la literatura ha sido motivo de controversia, ya que se presentan autores como Phasley y colaboradores,<sup>2</sup> quienes promueven la eliminaci&oacute;n de dicha capa para facilitar la impregnaci&oacute;n de los adhesivos en los t&uacute;bulos dentinales y en el col&aacute;geno desmineralizado, principio b&aacute;sico de la adhesi&oacute;n convencional.<sup>2</sup> Y autores como Van Meerbeeky y colaboradores,<sup>16</sup> que, por el contrario, presentan la conservaci&oacute;n de la capa de barrillo dentinario con &aacute;nimo de disminuir el n&uacute;mero de pasos cl&iacute;nicos y la incidencia de la sensibilidad posoperatoria.</p>      <p align="center"><a name="f2"><img src=/img/revistas/rfoua/v26n2/v26n2a13f2.jpg></a> </p>        <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3" face="Verdana"><b>ACCI&Oacute;N DEL &Aacute;CIDO FOSF&Oacute;RICO SOBRE EL TEJIDO DENTINAL</b></font></p>      <p>A pesar de la complejidad en la estructura org&aacute;nica e inorg&aacute;nica de la dentina, esta puede ser modificada con el uso de agentes &aacute;cidos pre-acondicionadores,<sup>17</sup> capaces de generar porosidades variables que pueden alterar las caracter&iacute;sticas f&iacute;sicas y morfol&oacute;gicas de los t&uacute;bulos dentinales. El pretratamiento dentinal con &aacute;cido fosf&oacute;rico, est&aacute; dise&ntilde;ado para retirar la capa de barrillo dentinario y generar una rugosidad en la superficie a trav&eacute;s de la desmineralizaci&oacute;n, que permite mejorar la adhesi&oacute;n de las resinas polim&eacute;ricas al sustrato dental.<sup>17, 18</sup>      <p>As&iacute;, pues, el &aacute;cido fosf&oacute;rico tiene la capacidad de incrementar la permeabilidad dentina lintertubular e intratubular, como lo describen autores como Brajdiey colaboradores<sup>18</sup> y Shellis y colaboradores,<sup>19</sup> disolviendo la fase inorg&aacute;nica de la dentina en un rango de 3-7 µm. Esta permeabilidad, contrario al efecto deseado, se asocia con los procesos de hipersensibilidad posoperatoria generada cuando la dentina recibe est&iacute;mulos mec&aacute;nicos o t&eacute;rmicos, como consecuencia de dicho ensanchamiento de los t&uacute;bulos despu&eacute;s del grabado &aacute;cido. Es decir, la t&eacute;cnica de grabado &aacute;cido, adem&aacute;s de buscar generar rugosidad en la superficie dentinal para disminuir el &aacute;ngulo de contacto de los materiales adhesivos con la superficie dentinal obteniendo mayor humectaci&oacute;n y adherencia, <sup>20</sup> puede generar efectos secundarios no deseados.</p>      <p>Del mismo modo, el &aacute;cido fosf&oacute;rico, al aumentar el tama&ntilde;o de los t&uacute;bulos dentinales, hace que se presente una fuga del fluido dentinal gracias a la presi&oacute;n hidrost&aacute;tica, que adem&aacute;s puede debilitar la interacci&oacute;n del enlace qu&iacute;mico entre los mon&oacute;meros y la dentina.<sup>21</sup> Actualmente, se ha reportado que antes de desmineralizar la dentina con &aacute;cido fosf&oacute;rico, esta se compone de 50% de elementos minerales, 30% de col&aacute;geno y 20% de agua.<sup>2</sup> Al desmineralizar, el 50% de la interfase mineralizada se solubiliza y pasa a componerse de 70% de nuevo contenido de agua y 30% de fibras col&aacute;genas ancladas en la base mineralizada de la dentina.<sup>2</sup> Lo ideal ser&iacute;a que ese 70% fuera ocupado por mon&oacute;meros que polimericen in situ, para producir un biocompuesto reforzado con fibras col&aacute;genas. Sin embargo, de manera contradictoria, la presencia de solventes residuales y el movimiento del fluido dentro de los t&uacute;bulos dentinales hacen que la sustituci&oacute;n del 70% del porcentaje de agua por mon&oacute;meros no ocurra de manera ideal.<sup>2</sup></p>      <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>ESTABILIDAD ADHESIVA EN LA CAPA H&Iacute;BRIDA</b></font></p>      <p>Actualmente, se acepta que la base de la adhesi&oacute;n a la dentina est&aacute; constituida por una estructura llamada capa h&iacute;brida (<a href="#f3">figura 3</a>), que tiene un espesor entre 3 a 6 µm, una zona intermedia entre la dentina y la restauraci&oacute;n constituida por fibras col&aacute;genas y adhesivo, que se forma como resultado de la infiltraci&oacute;n de este &uacute;ltimo en estado fluido entre las fibras col&aacute;genas, ya que la fase mineral ha sido disuelta por el &aacute;cido fosf&oacute;rico.<sup>2, 15</sup> Con base en numerosas investigaciones morfol&oacute;gicas, los estudios manifiestan que la uni&oacute;n adhesiva depende de varios factores, dentro de los cuales tenemos: la humedad y profundidad del sustrato dentinal, la penetraci&oacute;n del adhesivo a trav&eacute;s de los t&uacute;bulos y el entrecruzamiento de los mismos con las fibras col&aacute;genas expuestas en la dentina intertubular desmineralizada y los componentes del adhesivo.<sup>22</sup></p>     <p align="center"><a name="f3"><img src=/img/revistas/rfoua/v26n2/v26n2a13f3.jpg></a> </p>       <p>Del mismo modo, gracias a las caracter&iacute;sticas anat&oacute;micas del tejido dentinal, la capa h&iacute;brida es diferente en dentina superficial y en dentina profunda. La primera se compone, en su mayor parte, por dentina intertubular desmineralizada, y en menor grado por los tag de resina que penetran con mayor dificultad en forma de embudo dentro de los t&uacute;bulos dentinales m&aacute;s estrechos.<sup>23</sup> Por el contrario, en la dentina profunda hay menor cantidad de dentina intertubular desmineralizada, pero los t&uacute;bulos son m&aacute;s grandes y m&aacute;s numerosos, por esta raz&oacute;n los tag de resina representan una fracci&oacute;n importante de uni&oacute;n de las superficies cercanas a la pulpa. Por tanto, algunos autores aseveran que la penetraci&oacute;n e imprimaci&oacute;n del adhesivo en la dentina acondicionada, crea un enlace con el col&aacute;geno, generando una retenci&oacute;n qu&iacute;mica y una retenci&oacute;n micromec&aacute;nica con la formaci&oacute;n de los tag<sup>24</sup> que contribuyen, en un 30%, a la fuerza total de la uni&oacute;n adhesiva.</p>      <p>Entre los adhesivos convencionales, se encuentran los sistemas adhesivos de tres pasos, que incluyen 3 recipientes que contienen el desmineralizante, el primer y el bonding. Y los adhesivos de dos pasos, que incluyen dos recipientes, uno con el desmineralizante y uno que contiene el primer con el bonding en una sola mezcla.<sup>25</sup> Actualmente, los adhesivos convencionales de 2 pasos son los m&aacute;s usados, porque simplifican el n&uacute;mero de pasos cl&iacute;nicos, pero la evidencia nos muestra que con el tiempo, estos muestran alteraciones en la fuerza adhesiva, probablemente debido a que en un solo frasco est&aacute;n presentes los componentes hidr&oacute;filos de la imprimaci&oacute;n y los hidr&oacute;fobos del adhesivo, es decir, que pueden contener hasta 50% de disolventes en su composici&oacute;n, aumentando el potencial para absorber agua de la dentina subyacente y de la cavidad oral, haciendo que la capa de adhesivo sea menos estable.<sup>26</sup> Conjuntamente, cuanto mayor es el contenido de disolvente dentro de la soluci&oacute;n de adhesivo antes de la fotopolimerizaci&oacute;n, menor es el grado de conversi&oacute;n y, por ende, desfavorecen las propiedades mec&aacute;nicas de dicho adhesivo.<sup>23</sup></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En esta misma l&iacute;nea, los autores describen que, contrario a la uniformidad esperada, los constituyentes del adhesivo se distribuyen en el col&aacute;geno expuesto de manera diferente. Los mon&oacute;meros hidrof&iacute;licos como el 2-hidroxietil metacrilato (HEMA), se limitan a la mitad inferior, cerca de la dentina, siendo el m&aacute;s sometido a tensi&oacute;n durante la funci&oacute;n masticatoria que puede producir fallas por fatiga de las fibras de col&aacute;geno y los mon&oacute;meros hidr&oacute;fobos como el bisfenol glicidilmetacrilato (BIS-GMA), se restringen a quedar en la mitad superior de la capa h&iacute;brida cerca a la resina. De este modo, la problem&aacute;tica m&aacute;s significativa de la interfase adhesiva se presenta en que, a&uacute;n despu&eacute;s de la polimerizaci&oacute;n,el grupo &eacute;ster del HEMA es el m&aacute;s vulnerable a la disociaci&oacute;n hidrol&iacute;tica formando &aacute;cido metacr&iacute;lico y etilen-glicol, en presencia de agua a pH b&aacute;sico y a pH &aacute;cido.<sup>2</sup> Adicionalmente, una vez desmineralizada la dentina, la difusi&oacute;n de los mon&oacute;meros adhesivos no se presenta en la totalidad del col&aacute;geno expuesto,<sup>27</sup> resultando en una zona en la parte inferior de la capa h&iacute;brida en donde las fibras col&aacute;genas est&aacute;n en riesgo de degradaci&oacute;n e hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica.<sup>28</sup></p>        <p>Autores como Hashimoto y colaboradores<sup>29</sup> y Carrilho y colaboradores,<sup>30</sup> reportaron, en sus estudios, que en esta zona se encuentran libres las enzimas de la matriz dentinal llamadas metaloproteinasas, proteasas end&oacute;genas presentes en la dentina desde el desarrollo, que quedan expuestas al desmineralizar la dentina, por lo que se puede pensar que la prevenci&oacute;n de la degradaci&oacute;n enzim&aacute;tica del col&aacute;geno es una estrategia potencial para mejorar la uni&oacute;n adhesiva.<sup>29, 30</sup> Existen varios tipos de metaloproteinasas (MMP), colagenasas (MMP-8), gelatinasas (MMP-2) y enamelinas (MMP-20), que son las responsables de la p&eacute;rdida del col&aacute;geno y, por ende, de la continuidad de la capa h&iacute;brida, lo cual genera una disminuci&oacute;n de la retenci&oacute;n del material polim&eacute;rico a la dentina.<sup>31</sup> De esta forma, las fibrillas de col&aacute;geno se degradan en la capa h&iacute;brida y, como consecuencia directa, se pierde la interfase adhesiva con la dentina, lo que lleva a pensar que por la estabilidad de la adhesi&oacute;n sobre esmalte, el sellado de la resina en la periferia de las restauraciones ser&iacute;a el que m&aacute;s contribuye a la durabilidad de la adhesi&oacute;n, lo cual no es suficiente para soportar las fuerzas de flexi&oacute;n y compresi&oacute;n que generan una tensi&oacute;n c&iacute;clica durante la funci&oacute;n masticatoria.</p>      <p>Por lo anterior, estudios recientes en el &aacute;rea de adhesi&oacute;n dentinal tienen como objetivo evidenciar la manera de inhibir el efecto de dichas metaloproteinas. De esta manera se han probado diferentes sustancias, una de ellas es la clorhexidina, de la cual los autores reportan que es un potente inhibidor de las metaloproteinasas a concentraciones muy bajas.<sup>32, 33</sup> Una concentraci&oacute;n de 0,2% de digluconato de clorhexidina es capaz de inhibir 99% de la actividad colagenol&iacute;tica de las metaloproteinasas <i>in vitro</i>. Este proceso est&aacute; en investigaci&oacute;n, ya que todav&iacute;a no se conoce el mecanismo de dicha inhibici&oacute;n.<sup>34</sup></p>      <p>De esta forma, no solo la clorhexidina ha sido una sustancia usada como pretratamiento dentinal para mejorar el desempe&ntilde;o de la interfase adhesiva, sino que tambi&eacute;n se ha usado el hipoclorito de sodio (NaOCl) como un agente de desnaturalizaci&oacute;n y desproteinizaci&oacute;n, capaz de eliminar el col&aacute;geno, obedeciendo a la idea planteada en la cual la eliminaci&oacute;n de la malla de col&aacute;geno puede aumentar la estabilidad de los sistemas adhesivos.<sup>35</sup> De esta manera, se plantea crear una capa de dentina con caracter&iacute;sticas similares a las del esmalte grabado, es decir, una mayor presencia de cristales de hidroxiapatita con alta energ&iacute;a superficial.<sup>36</sup> Los resultados obedecen a que una dentina desproteinizada tiene mayor dureza, mayor capacidad de humectaci&oacute;n y mayor permeabilidad que la dentina desmineralizada; sin embargo, a pesar de las aparentes ventajas, falta informaci&oacute;n de c&oacute;mo podr&iacute;a afectar el hipoclorito a las fibras col&aacute;genas residuales, los efectos de biocompatibilidad pulpar y los efectos de interacci&oacute;n con las resinas adhesivas.</p>      <p>De manera contradictoria, el hipoclorito, seg&uacute;n lo manifiestan Zhang y colaboradores<sup>37</sup> y Pascon y colaboradores, <sup>38</sup> crea porosidades submicrom&eacute;tricas dentro de la fase mineral, y aumenta el tama&ntilde;o de los t&uacute;bulos, debido a una p&eacute;rdida de dentina peritubular e intertubular, generando una ampliaci&oacute;n y coalescencia de los t&uacute;bulos dentinarios, al ser utilizado como irrigante en los canales radiculares. El hipoclorito elimina tanto materia org&aacute;nica como iones de magnesio y carbonato, que afectan las propiedades mec&aacute;nicas de la dentina y la capacidad de sellado de los materiales dentales. De igual manera, Kaya y colaboradores<sup>39</sup> y Prasansuttiporn y colaboradores, <sup>40</sup> reportaron que la alteraci&oacute;n que genera el hipoclorito en la dentina es proporcional a la concentraci&oacute;n. La erosi&oacute;n causada a una concentraci&oacute;n del 1,3% de NaOCl es menor a la causada a una concentraci&oacute;n de 5,25% de NaOCl.<sup>39</sup> Incluso si el hipoclorito es mezclado con soluciones como el &aacute;cido etilen diaminotetraac&eacute;tico (EDTA), dicha erosi&oacute;n en dentina se potencializa de manera proporcional a la concentraci&oacute;n y al tiempo de exposici&oacute;n, disminuyendo progresivamente la fuerza de adhesi&oacute;n y las propiedades mec&aacute;nicas.</p>      <p>Recientemente se ha evidenciado que el hipoclorito de sodio (NaOCl) reduce la resistencia de uni&oacute;n entre los compuestos de resina y la dentina, debido a que restos y subproductos generados del hipoclorito tienen un efecto negativo sobre la polimerizaci&oacute;n de los sistemas adhesivos.<sup>40</sup> Por tanto, la investigaci&oacute;n ha intentado usar agentes antioxidantes como el &aacute;cido asc&oacute;rbico, soluciones con capacidad antioxidante e inhibidora de las MMP, que mejorar&iacute;an la capacidad adhesiva de la dentina tratada.</p>      <p>Entre dichas sustancias usadas como pre-tratamientos dentinales, el &aacute;cido etilendiaminotetraac&eacute;tico (EDTA) es un ligando polivalente, que act&uacute;a como agente quelante atrapando el i&oacute;n Zn<sup>+2</sup>, que las metaloproteinasas necesitan para mantener su actividad de hidrolasa catal&iacute;tica, y de igual manera el i&oacute;n Ca<sup>+2</sup>, le permite a dichas enzimas mantener su estructura terciaria.<sup>2, 40</sup> El acondicionamiento dentinal con el EDTA 0,5 M por 1 o 2 minutos en etanol, crea una capa h&iacute;brida m&aacute;s delgada, donde los mon&oacute;meros hidr&oacute;fobos se infiltrar&iacute;an completamente sin dejar espacios libres de adhesivo, como ocurre al usar el &aacute;cido fosf&oacute;rico, lo cual mejorar&iacute;a la adherencia y la fuerza microtensil.<sup>41</sup> Adem&aacute;s, puede inactivar las metaloproteinasas igual que otros quelantes, como la 1,10-Fenantrolina y el &aacute;cido etilendiaminotetrafosf&oacute;rico, los cuales podr&iacute;an resultar en una mejor conservaci&oacute;n a largo plazo de la capa h&iacute;brida en dentina sana y dentina afectada por caries.</p>      <p>Entre las sustancias propuestas para la inhibici&oacute;n de las metaloproteinasas, encontramos los llamados agentes de entrecruzamiento de prote&iacute;nas, de modo que las metaloproteinasas end&oacute;genas se ligan a sus cadenas de p&eacute;ptidos inmediatamente despu&eacute;s del grabado &aacute;cido, perdiendo movilidad molecular esencial para la actividad enzim&aacute;tica.<sup>2</sup> Guentsch y colaboradores<sup>42</sup> e Ishihata y colaboradores,<sup>43</sup> destacan el glutaraldeh&iacute;do como un agente de entrecruzamiento muy eficaz, cuyo efecto negativo es la citotoxicidad para la pulpa dental y el potencial cancer&iacute;geno.<sup>42</sup> El glutaraldhe&iacute;do en soluci&oacute;n acuosa de 5 y 35% de 2-hidroxietil metacrilato (HEMA), ha sido utilizado en el manejo de la hipersensibilidad dentinaria,<sup>43</sup> mostrando la coagulaci&oacute;n de las prote&iacute;nas plasm&aacute;ticas y, por lo tanto, el bloqueo tubular despu&eacute;s de la aplicaci&oacute;n t&oacute;pica en dentina hipersensible.</p>      <p>Los autores describen nuevos agentes de entrecruzamiento menos t&oacute;xicos con el tejido, las llamadas proantocianidinas y las carbodiimidas.<sup>44</sup> Las proantocianidinas (PA) son compuestos vegetales flavonoides antioxidantes que se encuentran en una amplia variedad de frutas, verduras, flores, nueces, semillas y cortezas. Su gran ventaja es que promueven la salud de los tejidos y se ha demostrado que aumentan la fuerza de uni&oacute;n entre la resina y la dentina.<sup>45</sup> La desventaja que presentan es que su tiempo de acci&oacute;n est&aacute; entre 10 y 30 min y, por tanto, no ser&iacute;a relevante a nivel cl&iacute;nico.</p>      <p>Hasta el momento, se est&aacute; probando la acci&oacute;n de estas sustancias en funci&oacute;n del tiempo, logrando intervalos m&aacute;s cortos con el uso de la carbodiimida. Las proantocianidinas pueden extraerse de la semilla de la uva. Este extracto puede promover la formaci&oacute;n de hueso en los c&oacute;ndilos mandibulares de las ratas, aumenta la rigidez de la dentina desmineralizada, inhibe la progresi&oacute;n de la caries en ra&iacute;ces artificiales e inhibe la producci&oacute;n de metaloproteinasas.<sup>46</sup> Sus efectos son similares a los extractos de ar&aacute;ndano y de la corteza del &aacute;rbol del olmo. Las investigaciones con las proantocianidinas son muy recientes, pero se ha logrado una inhibici&oacute;n de la degradaci&oacute;n del col&aacute;geno en la interfase adhesiva y una mejora en la resistencia a la tracci&oacute;n y la rigidez.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Recientes estudios reportan un tratamiento previo en dentina desmineralizada con proantocianidinas durante 1 hora, antes de aplicar el protocolo adhesivo, con excelentes resultados, incluso en dentina afectada por caries. <sup>47</sup> Debido a los tiempos tan prolongados para su uso, se ha propuesto manejar las proantocianidinas directamente en los sistemas adhesivos, donde han mostrado buenos resultados en la disminuci&oacute;n de la nanofiltraci&oacute;n sin afectar la fuerza de adhesi&oacute;n.<sup>48, 49</sup> De esta manera se plantea un concepto nuevo para las investigaciones, la biomodificaci&oacute;n de la dentina que busca mejorar las propiedades biomec&aacute;nicas y bioqu&iacute;micas de la matriz org&aacute;nica, a trav&eacute;s de enlaces covalentes y no covalentes dentro del col&aacute;geno, capaces de formar enlaces cruzados intra- e inter moleculares, gracias a la hidroxilaci&oacute;n de la lisina y al &iacute;ndice de rotaci&oacute;n molecular, que brindar&aacute;n finalmente mayor estabilidad al col&aacute;geno.<sup>45</sup></p>      <p>Tezvergily y colaboradores<sup>50</sup> y Kimay y colaboradores,<sup>51</sup> destacaron el uso del &aacute;cido polivinilfosf&oacute;rico (PVPA), una sustancia con actividad anticolagenol&iacute;tica que se une electrost&aacute;ticamente al col&aacute;geno de la dentina, y puede ser atrapado en matrices por agentes de enlace cruzado a trav&eacute;s de la 1-etil-3-(3-dimetilaminopropil) carbodiimida y en un tiempo de 1-5 minutos, lo cual minimiza la p&eacute;rdida del col&aacute;geno por competencia i&oacute;nica. El PVPA tambi&eacute;n se ha utilizado en modelos de mineralizaci&oacute;n biomim&eacute;tica, de manera que, unido a las fibras de col&aacute;geno, puede guiar la distribuci&oacute;n de los cristales de apatita, gracias a que imita las cargas negativas de las fosfoprote&iacute;nas como la sialoprote&iacute;na &oacute;sea y la fosfoserina.</p>      <p>Recientemente se presenta la riboflavina como un agente de entrecruzamiento de col&aacute;geno tipo I, capaz de aumentar la estabilidad de las fibras col&aacute;genas, e incrementar las propiedades mec&aacute;nicas y disminuir la degradaci&oacute;n enzim&aacute;tica, proporcionando mayor eficiencia a la dentina desmineralizada.<sup>52</sup> La riboflavina ha demostrado el aumento en la resistencia biomec&aacute;nica de la c&oacute;rnea humana en el tratamiento del queratocono, es por esto que se evidencia la acci&oacute;n de la riboflavina como agente de entrecruzamiento en la dentina humana desmineralizada. La riboflavina produce radicales libres al ser foto activada con longitudes de onda de 270, 366 y 445 nm,<sup>53</sup> de manera que se liberan especies reactivas de ox&iacute;geno y la luz es absorbida, formando enlaces cruzados covalentes entre mol&eacute;culas adyacentes de col&aacute;geno. De esta forma, el efecto de la activaci&oacute;n por rayos UVA (Radiaci&oacute;n ultravioleta de onda larga) de la riboflavina aumenta la resistencia de la uni&oacute;n inmediata a la dentina, estabilizando la interface adhesiva e inhibiendo las metaloproteinasas.<sup>47</sup></p>      <p>De esta manera, las investigaciones actuales buscan unir los mon&oacute;meros constituyentes de las resinas adhesivas con sustancias capaces de formar enlaces cruzados anti- metaloproteinasas, que se unan directamente con el col&aacute;geno de la dentina y formen una capa h&iacute;brida con mayor potencial de duraci&oacute;n.<sup>50</sup></p>      <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>      <p>Esta revisi&oacute;n de la literatura coloca de manifiesto que el protocolo convencional actual empleado en el proceso de adhesi&oacute;n sobre el tejido dentinal, presenta fallas relacionadas con la duraci&oacute;n y la estabilidad de dicha uni&oacute;n, que hasta el momento sigue siendo sensible e impredecible adhesiva seg&uacute;n lo publicado por Pashley en 2011.<sup>2, 50</sup> A trav&eacute;s dela experiencia, se ha evidenciado que las restauraciones en resina necesitan ser reemplazadas, en promedio, cada 5,7 a&ntilde;os, debido a la p&eacute;rdida de la interfase adhesiva, lo que lleva a que se presenten fracturas y caries secundaria por microfiltraci&oacute;n bacteriana.<sup>4</sup> Es decir, existe una necesidad de buscar m&eacute;todos que permitan aumentar la longevidad de las restauraciones resinosas.</p>      <p>Adem&aacute;s, los autores muestran las dificultades relacionadas con las caracter&iacute;sticas propias del sustrato dentinal, debido a su constituci&oacute;n de tipo heterog&eacute;nea y a su comportamiento fisiol&oacute;gicamente din&aacute;mico, que puede tener variaciones bajo distintas situaciones cl&iacute;nicas normales y patol&oacute;gicas.<sup>2</sup></p>      <p>El fluido dentinal y la formaci&oacute;n de la capa de barrillo (smearlayers) en la superficie del sustrato dentinal, que adem&aacute;s puede proyectarse a nivel intratubular al ser instrumentado, son variables determinantes en el momento de realizar un protocolo adhesivo. En la adhesi&oacute;n convencional dicho sustrato es acondicionado con el uso de &aacute;cido fosf&oacute;rico al 37%, generando una desmineralizaci&oacute;n que hace una ampliaci&oacute;n de los t&uacute;bulos dentinales y expone la matriz col&aacute;gena de la dentina, creando una superficie dispuesta y disponible para la humectaci&oacute;n del adhesivo.<sup>17, 18</sup> El uso del acondicionador &aacute;cido y la subsecuente exposici&oacute;n de la trama de col&aacute;geno al eliminar el calcio, son considerados como el punto m&aacute;s &aacute;lgido de la adhesi&oacute;n al sustrato dentinal, ya que a partir de este proceso se presentan la mayor parte de los errores cl&iacute;nicos y problemas de la t&eacute;cnica propiamente dicha.</p>      <p>Por tanto, la literatura describe que la desmineralizaci&oacute;n que genera el &aacute;cido fosf&oacute;rico es capaz de alterar los minerales de f&oacute;sforo y calcio de la dentina, m&aacute;s profundamente de lo que es capaz de penetrar el sistema adhesivo, formando una zona de col&aacute;geno expuesto susceptible al da&ntilde;o mec&aacute;nico y a la degradaci&oacute;n hidrol&iacute;tica. <sup>29, 30</sup> De esta forma, una de las bases de la investigaci&oacute;n actual se enfoca en inhibir la actividad de las endopeptidasas dependientes de zinc, tambi&eacute;n llamadas metaloproteinasas, con ayuda de sustancias usadas como pretratamientos dentinales, antes de aplicar el adhesivo en el protocolo convencional.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Hasta el momento, han sido probadas sustancias como el hipoclorito de sodio, el EDTA y el glutaraldeh&iacute;do, sustancias que no han mostrado avances como pretratamiento dentinal por sus efectos bioqu&iacute;micos secundarios o colaterales, que finalmente disminuyen la biocompatibilidad. <sup>37, 41, 43</sup> Por el contrario, algunos autores refieren que actualmente sustancias como la clorhexidina y sustancias antioxidantes m&aacute;s compatibles con el tejido pulpar como las proantocianidinas y las carbodiimidas, tejidos vegetales flavonoides de origen natural derivados de verduras y frutas, son capaces de inhibir la degradaci&oacute;n del col&aacute;geno y mejorar la resistencia a la tracci&oacute;n y la rigidez.<sup>44, 47</sup></p>      <p>Igualmente, se exalta el efecto del &aacute;cido polivinilfosf&oacute;rico usado en modelos de mineralizaci&oacute;n biomim&eacute;tica, y de la riboflavina, capaz de aumentar la resistencia de la uni&oacute;n inmediata a la dentina.<sup>50</sup> Los resultados del uso de estas &uacute;ltimas sustancias, hasta el momento, han sido positivos y satisfactorios, pero a&uacute;n faltan estudios a nivel de biocompatibilidad que aclaren el mecanismo de acci&oacute;n de estos tipos de pretratamiento dentinal sobre el tejido pulpar, y estudios mec&aacute;nicos de termociclado o envejecimiento de la interfase adhesiva que permitan ver el comportamiento de dichas sustancias a largo plazo.</p>      <p>Del mismo modo, los esfuerzos a los que la dentina es sometida durante la masticaci&oacute;n, la degluci&oacute;n y dem&aacute;s h&aacute;bitos parafuncionales, tambi&eacute;n desaf&iacute;an la durabilidad de la interfase adhesiva, ya que un col&aacute;geno da&ntilde;ado mec&aacute;nicamente es m&aacute;s susceptible a la prote&oacute;lisis. Es por esto que la durabilidad de esta debe ser evaluada tambi&eacute;n a trav&eacute;s de una carga mec&aacute;nica, de manera que sea posible hacer un paralelo entre los cambios bioqu&iacute;micos y biomec&aacute;nicos.</p>      <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>      <p>La dentina es un compuesto biol&oacute;gico poroso, formado por apatita sostenida sobre una matriz de col&aacute;geno, que por sus caracter&iacute;sticas estructurales tiene propiedades que dependen de la situaci&oacute;n anat&oacute;mica de los t&uacute;bulos dentinales, el fluido pulpar y la profundidad del tejido. Por tanto, el protocolo de adhesi&oacute;n convencional sobre dentina es un procedimiento estricto y delicado, que ha evidenciado inconvenientes relacionados con la degradaci&oacute;n hidrol&iacute;tica y proteol&iacute;tica del col&aacute;geno por parte de enzimas presentes en la dentina, que son liberadas en el momento de la desmineralizaci&oacute;n y que deterioran la interfase adhesiva. De esta manera, las investigaciones actuales buscan sustancias que puedan ser utilizadas como agentes de protecci&oacute;n del col&aacute;geno, logrando mayor durabilidad de las restauraciones adhesivas en dentina, sin alterar e incluso mejorando las propiedades mec&aacute;nicas, objetivo que ha tenido hasta el momento resultados prometedores.</p>      <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>      <p>Este estudio fue apoyado por la Universidad Nacional de Colombia, Facultad de Odontolog&iacute;a, Sede Bogot&aacute;; hecho durante el periodo de estudios para optar por el t&iacute;tulo de Magister en Odontolog&iacute;a l&iacute;nea de Materiales Dentales. Dirigido por el doctor Ricardo Fierro Medina y el doctor Norberto Calvo Ram&iacute;rez, apoyado por la doctora Clementina Infante Contreras, Coordinadora del programa de Maestr&iacute;a.</p>      <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3" face="Verdana"><b>CONFLICTO DE INTERESES</b></font></p>      <p>Ninguno de los autores ha declarado conflicto de inter&eacute;s alguno.</p>        <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>REFERENCIAS</b></font></p>      <!-- ref --><p>1. Van Meerbeek B, Peumans M, Poitevin A, Mine A, Van Ende A, Neves A et al. Review relationship between bondstrength tests and clinical outcomes. Dent Mater 2010; 26: e100-121.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0121-246X201500010001300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>2. Pashley DH, Tayb FR, Breschic L, Tj&auml;derhanee L, Carvalhof RM, Carrilhog M et al. State of the art etch-andrinse adhesives. Dent Mater 2011; 27: 1-16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0121-246X201500010001300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>3. Van Landuyt KL, Snauwaert J, De Munck J, Peumans M, Yoshida Y, Poitevin A et al. Systematic review of the chemical composition of contemporary dental adhesives. Biomaterials 2007; 28: 3757-3785.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0121-246X201500010001300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>4. Sulkala M, Tervahartiala T, Sorsa T, Larmas M, Salo T, Tj&auml;derhane L. Matrix metalloproteinase-8 (MMP-8) is the major collagenase in human dentin. Arch Oral Biol 2007; 52: 121-127.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0121-246X201500010001300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>5. Zaslansky P, Zabler S, Fratzl P. 3D variations in human crown dentin tubule orientation: A phase-contrast microtomography study. Dent Mater 2010; 26: e1-10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0121-246X201500010001300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>6. Ivancik J, Majd H, Bajaj D, Romberg E, Arola D. Contributions of aging to the fatigue crack growth resistance of human dentin. Acta Biomater 2012; 8: 2737- 2746.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0121-246X201500010001300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>7. Shrivastava S, Aifantis Katerina E. Effects of cola drinks on the morphology and elastic modulus of dentin. Mater Lett 2011; 65: 2254-2256.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0121-246X201500010001300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p> </font>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">8. Elbaum R, Tal E, Perets AI, Oron D, Ziskind D, Silberberg Y et al. Dentin micro-architecture using harmonic generation microscopy. J Dent 2007; 35: 150-155.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0121-246X201500010001300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> <font size="2" face="Verdana">    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>9. Arola D, Reprogel RK. Tubule orientation and the fatigue strength of human dentin. Biomaterials 2006; 27: 2131- 2140.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0121-246X201500010001300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>10. Zaslansky P. Dentin. En: Fratzl P. Collagen: structure and mechanics. New York: Springer; 2008.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0121-246X201500010001300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>11. Sattabanasuk V, Vachiramon V, Qian F, Armstrong SR. Resin-dentin bond strength as related to different surface preparation methods. J Dent 2007; 35: 467-475.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0121-246X201500010001300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>12. Eldarrata AH, High AS, Kale GM. In vitro analysis of 'smear layer' on human dentine using ac-impedance spectroscopy. J Dent 2004; 32: 547-554.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0121-246X201500010001300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>13. Nakajima M, Kunawarote S, Prasansuttiporn T, Tagami J. Bonding to caries-affected dentin. Jpn Dent Sci Rev 2011; 47: 102-114.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0121-246X201500010001300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>14. Oliveiraa SS, Pugach MK, Hiltonb JF, Watanabe LG, Marshall SJ, Marshall GW Jr. The in?uence of the dentin smear layer on adhesion: a self-etching primer vs. a totaletch system. Dent Mater 2003; 19: 758-767.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0121-246X201500010001300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>15. Spencer P, Ye Q, Park J, Topp EM, Misra A, Marangos O et al. Adhesive/Dentin Interface: The Weak Link in the composite restoration. Ann Biomed Eng 2010; 38: 1989- 2003.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0121-246X201500010001300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>16. Van Meerbeek B, Yoshihara K, Yoshida Y, Mine A, De Munck J, Van Landuyt KL. State of the art of self-etch adhesives. Dent Mater 2011; 27: 17-28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0121-246X201500010001300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>17. Farge P, Alderete L, Ramos SM. Dentin wetting by three adhesive systems: Influence of etching time, temperature and relative humidity. J Dent 2010; 38: 698-706.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0121-246X201500010001300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>18. Brajdic D, Krznaric O M, Azinovic Z, Macan D, Baranovic M. Influence of different etching times on dentin surface morphology. Coll Antropol 2008; 32: 893-900.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0121-246X201500010001300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>19. Shellis RP, Curtis AR. A minimally destructive technique for removing the smear layer from dentine surfaces. J Dent 2010; 38: 941-944.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0121-246X201500010001300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>20. Ramos SM, Alderete L, Farge P. Dentinal tubules driven wetting of dentin: Cassie-Baxter modelling. Eur Phys J E 2009; 30: 187-195.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0121-246X201500010001300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>21. Miyazaki M, Tsubota K, Takamizawa T, Kurokawa H, Rikuta A, Ando S. Factors affecting the in vitro performance of dentin-bonding systems. Jpn Dent Sci Rev 2012; 48: 53-60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0121-246X201500010001300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>22. Wang Y, Yao X. Morphological/chemical imaging of demineralized dentin layer in its natural, wet state. Dent Mater 2010; 26: 433-442.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0121-246X201500010001300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>23. Fawzy AS. Variations in collagen fibrils network structure and surface dehydration of acid demineralized intertubular dentin: effect of dentin depth and air-exposure time. Dent Mater 2010; 26: 35-43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0121-246X201500010001300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>24. Langer A, Llie N. Dentin infiltration ability of different classes of adhesive systems. Clin Oral Invest 2012; 17: 205-216.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0121-246X201500010001300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>25. Reis A, de Carvalho Cardoso P, Vieira LC, Baratieri LN, Grand RH, Loguercio AD. Effect of prolonged application times on the durability of resin-dentin bonds. Dent Mater 2008; 24: 639-644.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0121-246X201500010001300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>26. Proen&ccedil;a JP, Polido M, Osorio E, Erhardt MC, Aguilera FS, Garc&iacute;a-Godoy F et al. Dentin regional bond strength of self-etch and total-etch adhesive systems. Dent Mater 2007; 23: 1542-1548.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0121-246X201500010001300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>27. Erhardt MC, Osorio R, Toledano M. Dentin treatment with MMPs inhibitors does not alter bond strengths to cariesaffected dentin. J Dent 2008; 36: 1068-1073.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0121-246X201500010001300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>28. Fang M, Liu R, Xiao Y, Li F, Wang D, Hou R et al. Biomodification to dentin by a natural crosslinker improved the resin-dentin bonds. J Dent 2012; 40: 458- 466.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0121-246X201500010001300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>29. Hashimoto M, Nagano F, Endo K, Ohno H. A review: biodegradation of resin-dentin bonds. Jpn Dent Sci Rev 2011; 47: 5-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0121-246X201500010001300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>30. Carrilho MR, Carvalho RM, Sousae EN, Nicolau J, Breschi L, Mazzoni A et al. Substantivity of chlorhexidine to human dentin. Dent Mater 2010; 26: 779-785.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0121-246X201500010001300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>31. Wang DY, Zhang L, Fan J, Li F, Ma KQ, Wang P et al. Matrix metalloproteinases in human sclerotic dentine of attrited molars. Arch Oral Biol 2012; 57: 1307-1312.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0121-246X201500010001300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>32. Kim J, Uchiyama T, Carrilho M, Agee KA, Mazzoni A, Breschi L et al. Chlorhexidine binding to mineralized versus demineralized dentin powder. Dent Mater 2010; 26: 771-778.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0121-246X201500010001300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p> </font>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">33. Perdig&atilde;o J. Dentin bonding -variables related to the clinical situation and the substrate treatment. Dent Mater 2010; 26: e24-37.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0121-246X201500010001300033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> <font size="2" face="Verdana">    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>34. Zhou J, Tan J, Chen L, Li D, Tan Y. The incorporation of chlorhexidine in a two-step self-etching adhesive preserves dentin bond in vitro. J Dent 2009; 37: 807-812.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0121-246X201500010001300034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p> </font>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">35. Hegde M, Bhide S. Nanoleakage phenomenon on deproteinized human dentin -an in vitro study. Indian J Dent 2012; 3(1): 5-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0121-246X201500010001300035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> <font size="2" face="Verdana"></font>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">36. Correr GM, Alonso RC, Grando MF, Borges AF, Puppin- Rontani RM. Effect of sodium hypochlorite on primary dentin -A scanning electron microscopy (SEM) evaluation. J Dent 2006; 34: 454-459.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0121-246X201500010001300036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> <font size="2" face="Verdana">    <!-- ref --><p>37. Zhang K, Tay FR, Kim YK, Mitchell JK, Kim JR, Carrilho M et al. The effect of initial irrigation with two different sodium hypochlorite concentrations on the erosion of instrumented radicular dentin. Dent Mater 2010; 26: 514-523.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0121-246X201500010001300037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>38. Pascon FM, Kantovitz KR, Sacramento PA, Nobre-dos-Santos M, Puppin-Rontani RM. Effect of sodium hypochlorite on dentine mechanical properties. A review. J Dent 2009; 37: 903-908.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0121-246X201500010001300038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>39. Kaya S, Yigit-&Ouml;zer S, Adig&uuml;zel &Ouml;. Evaluation of radicular dentin erosion and smear layer removal capacity of selfadjusting file using different concentrations of sodium hypochlorite as an initial irrigant. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod 2011; 112(4): 524-530.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S0121-246X201500010001300039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>40. Prasansuttiporn T, Nakajima M, Kunawarote S, Foxton RM, Tagami J. Effect of reducing agents on bond strength to NaOCl-treated dentin. Dent Mater 2011; 27: 229-234.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S0121-246X201500010001300040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>41. Sauro S, Toledano M, Aguilera FS, Mannocci F, Pashley DH, Tay FR et al. Resin-dentin bonds to EDTAtreated vs. acid-etched dentin using ethanol wet-bonding. Dent Mater 2010; 26: 368-379.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S0121-246X201500010001300041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>42. Guentsch A, Seidler K, Nietzsche S, Hefti AF, Preshaw PM, Watts DC et al. Biomimetic mineralization: Long-term observations in patients with dentin sensitivity. Dent Mater 2012; 28: 457-464.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S0121-246X201500010001300042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>43. Ishihata H, Kanehira M, Finger Werner J, Shimauchi H, Komatsu M. Effects of applying glutaraldehyde-containing desensitizer formulations on reducing dentin permeability. J Dent Sci 2012; 7: 105-110.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000171&pid=S0121-246X201500010001300043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>44. Green B, Yao X, Ganguly A, Xu C, Dusevich V, Walker MP et al. Grape seed proanthocyanidins increase collagen biodegradation resistance in the dentin/adhesive interface when included in an adhesive. J Dent 2010; 38: 908-915.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000173&pid=S0121-246X201500010001300044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>45. Xie Q, Bedran-Russo AK, Wu CD. In vitro remineralization effects of grape seed extract on artificial root caries. J Dent 2008; 36: 900-906.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000175&pid=S0121-246X201500010001300045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>46. Bedran-Russo AK, Castellan CS, Shinohara MS, Hassan L, Antunes A. Characterization of biomodi?ed dentin matrices for potential preventive and reparative therapies. ActaBiomater 2011; 7: 1735-1741.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000177&pid=S0121-246X201500010001300046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>47. Epasinghe DJ, Yiu CK, Burrow MF, Tay FR, King NM. Effect of proanthocyanidin incorporation into dental adhesive resin on resin-dentine bond strength. J Dent 2012; 40: 173-180.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000179&pid=S0121-246X201500010001300047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>48. Liu Y, Wang Y. Effect of proanthocyanidins and photoinitiators on photo-polymerization of a dental adhesive. J Dent 2013; 41: 71-79.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000181&pid=S0121-246X201500010001300048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>49. Castellan CS, Pereira PN, Grande RH, Bedran-Russo AK. Mechanical characterization of proanthocyanidin-dentin matrix interaction. Dent Mater 2010; 26: 968-973.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000183&pid=S0121-246X201500010001300049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>50. Tezvergil-Mutluay A, Agee KA, Hoshika T, Tay FR, Pashley DH. The inhibitory effect of polyvinylphosphonic acid on functional matrix metalloproteinase activities in human demineralized dentin. Acta Biomater 2010; 6: 4136-4142.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000185&pid=S0121-246X201500010001300050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>51. Kim YK, Gu LS, Bryan TE, Kim JR, Chen L, Liu Y et al. Mineralisation of reconstituted collagen using polyvinylphosphonic acid/polyacrylic acid templating matrix protein analogues in the presence of calcium, phosphate and hydroxyl ions. Biomaterials 2010; 31: 6618-6627.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000187&pid=S0121-246X201500010001300051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>52. Fawzy AS, Nitisusanta LI, Iqbal K, Daood U, Beng LT, Neo J. Chitosan/Riboflavin-modified demineralized dentin as a potential substrate for bonding. J Mech Behav Biomed Mater 2013; 17: 278-289.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000189&pid=S0121-246X201500010001300052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>53. Fawzya AS, Nitisusanta LI, Iqbal K, Daood U, Neo J. Riboflavin as a dentin crosslinking agent: Ultraviolet A versus blue light. Dent Mater 2012; 28: 1284-1291.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000191&pid=S0121-246X201500010001300053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>           ]]></body>
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