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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Utilización de organismos vivos como primera alimentación de larvas de yaque (Leiarius marmoratus) bajo condiciones de laboratorio]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[To evaluate the effect of living organisms as a first feeding of yaque (Leiarius marmoratus) larvae, an evaluation of the morphological development of larval was done based on the absorption of the yolk sac and the mouth opening. To evaluate the effects of different living organisms in the diet on some productive variables, larvae were subjected to laboratory conditions at a density of 10 larvae/L for 12 days of rearing, providing them four different daily rations of live food as follows: newly hatched brine shrimp nauplii (T1), cladocerans of the genus Diaphanosome (T2), copepods of the genus Diaptomus (T3), cladocerans + copepods (T4) and newly hatched larvae cachama blanca (Piaractus brachypomus) (T5). A total of 3000 larvae of 50 hours post-hatching (HPH) with an initial weight of 0.81 ± 0.02 mg and 3.68 ± 0.04 mm total length were used. The time of mouth opening was observed at 10 HPH with a mouth opening size of 72.6 ± 5.7 µm. At the end of observation period (50 HPH), the larvae reached a maximum opening of the mouth of 532.6 ± 7.8 µm with a 95 % yolk sac resorption. The best performance were observed in T5 in terms of weight and length gain with a value of 17.4 ± 0.5 mm and 116.1 ± 3.7 mg, respectively; however, a lower survival than the other treatments was observed. The highest survival percentage was observed in T1 (55.3 ± 6.5 %) followed by T2 (18.6 ± 3.8 %). Under the conditions of the present study it is possible to conclude that larvae fed with brine shrimp nauplii or cladocerans showed the best results, the cladocerans becoming an important alternative source of food during the larviculture of this species.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="right"><b>Art&iacute;culo Original /Original Article</b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="4">Utilizaci&oacute;n de organismos vivos como primera</font></b> <font size="4"><b>alimentaci&oacute;n de larvas de yaque <i>(Leiarius marmoratus) </i>bajo condiciones de laboratorio</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="3">Utilization of living organisms as a first feeding of yaque <i>(Leiarius marmoratus) </i>larvae under laboratory conditions</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>Juan A. Ram&iacute;rez-Merlano<sup>1</sup>*, Ang&eacute;lica M. Otero-Paternina<sup>1</sup>, Wilson Corredor-Santamar&iacute;a<sup>1</sup>, V&iacute;ctor M. Medina-Robles<sup>1</sup>, Pablo E. Cruz-Casallas<sup>1</sup>, Yohana M. Velasco-Santamar&iacute;a<sup>1,</sup> <sup>2</sup></b></p>     <p><sup>1</sup> Grupo de Investigaci&oacute;n sobre Reproducci&oacute;n y Toxicolog&iacute;a de Organismos Acu&aacute;ticos - GRITOX, Instituto de Acuicultura, Universidad de los Llanos, A.A. 110, Villavicencio, Colombia.    <br> <sup>2</sup> Institute of Biology, University of Southern Denmark, Campusvej 55, DK-5230 Odense M, Dinamarca    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> * e-mail: <a href="mailto:juanantonioramirez.merlano@gmail.com">juanantonioramirez.merlano@gmail.com</a></p>  <hr size="1">      <p><b><font size="3">RESUMEN</font></b></p>     <p>Con el fin de evaluar la utilizaci&oacute;n de organismos vivos como primera alimentaci&oacute;n de larvas de yaque <i>(Leiarius marmoratus), </i>inicialmente se realiz&oacute; una evaluaci&oacute;n del desarrollo morfol&oacute;gico de las larvas, a trav&eacute;s del seguimiento de la reabsorci&oacute;n del saco vitelino y la abertura bucal. Para evaluar los efectos del suministro de diferentes organismos vivos sobre algunas variables productivas durante un periodo de larvicultura de 12 d&iacute;as, larvas de la especie fueron sometidas a condiciones de laboratorio, aloj&aacute;ndolas a una densidad de 10 larvas/L y suministr&aacute;ndoles 4 raciones diarias de diferentes tipos de alimento vivo, as&iacute;: nauplios de artemia salina reci&eacute;n eclosionados (T1), clad&oacute;ceros del genero <i>Diaphanosoma </i>(T2), cop&eacute;podos del genero <i>Diaptomus </i>(T3), clad&oacute;ceros + cop&eacute;podos (T4) y larvas reci&eacute;n eclosionadas de cachama blanca <i>(Piaractus brachypomus) </i>(T5). En total se utilizaron 3000 larvas de 50 horas post-eclosi&oacute;n (HPE), con un peso inicial de 0.81&plusmn;0.02 mg y 3.68&plusmn;0.04 mm de longitud total. El inicio de la abertura bucal fue observado a las 10 HPE, registr&aacute;ndose en este momento un tama&ntilde;o de abertura bucal de 72.6&plusmn;5.7 &micro;m. Al final del periodo de seguimiento (50 HPE) las larvas alcanzaron una abertura m&aacute;xima bucal de 532.6&plusmn;7.8 &micro;m y reabsorci&oacute;n del saco vitelino del 95 %. Los mejores desempe&ntilde;os en t&eacute;rminos de ganancia de peso y de longitud se observaron en el T5, con un valor de 17.4&plusmn;0.5 mm y 116.1&plusmn;3.7 mg, respectivamente, pero con una sobrevivencia inferior a los dem&aacute;s tratamientos evaluados. El mayor porcentaje de sobrevivencia se observ&oacute; en el T1 (55.3&plusmn; 6.5 %), seguido del T2 (18.6&plusmn;3.8 %). Bajo estas condiciones, se puede concluir que los mejores resultados fueron obtenidos con larvas alimentadas con nauplios de artemia salina o con clad&oacute;ceros, constituy&eacute;ndose &eacute;stos &uacute;ltimos en una importante alternativa como fuente de alimento durante la larvicultura de esta especie.</p>     <p><b><font size="3">Palabras clave:</font> </b>Larva, <i>Leiarius marmoratus, </i>primera alimentaci&oacute;n, yaque.</p>  <hr size="1">      <p><b><font size="3">ABSTRACT</font></b></p>     <p>To evaluate the effect of living organisms as a first feeding of yaque <i>(Leiarius marmoratus) </i>larvae, an evaluation of the morphological development of larval was done based on the absorption of the yolk sac and the mouth opening. To evaluate the effects of different living organisms in the diet on some productive variables, larvae were subjected to laboratory conditions at a density of 10 larvae/L for 12 days of rearing, providing them four different daily rations of live food as follows: newly hatched brine shrimp nauplii (T1), cladocerans of the genus <i>Diaphanosome </i>(T2), copepods of the genus <i>Diaptomus </i>(T3), cladocerans + copepods (T4) and newly hatched larvae cachama blanca <i>(Piaractus brachypomus) </i>(T5). A total of 3000 larvae of 50 hours post-hatching (HPH) with an initial weight of 0.81 &plusmn; 0.02 mg and 3.68 &plusmn; 0.04 mm total length were used. The time of mouth opening was observed at 10 HPH with a mouth opening size of 72.6 &plusmn; 5.7 &micro;m. At the end of observation period (50 HPH), the larvae reached a maximum opening of the mouth of 532.6 &plusmn; 7.8 &micro;m with a 95 % yolk sac resorption. The best performance were observed in T5 in terms of weight and length gain with a value of 17.4 &plusmn; 0.5 mm and 116.1 &plusmn; 3.7 mg, respectively; however, a lower survival than the other treatments was observed. The highest survival percentage was observed in T1 (55.3 &plusmn; 6.5 %) followed by T2 (18.6 &plusmn; 3.8 %). Under the conditions of the present study it is possible to conclude that larvae fed with brine shrimp nauplii or cladocerans showed the best results, the cladocerans becoming an important alternative source of food during the larviculture of this species.</p>     <p><b><font size="3">Key words:</font> </b>First feeding, larvae, <i>Leiarius marmoratus, </i>yaque.</p>  <hr size="1">      <p><b><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></b></p>     <p>La producci&oacute;n de sil&uacute;ridos es actualmente una importante actividad productiva en varios pa&iacute;ses del mundo. En algunos pa&iacute;ses de Europa se cultivan y comercializan el &quot;basa&quot; y el &quot;tra&quot; <i>(Pangasius bocourtti y P. sutckii), </i>dos bagres originarios de Vietnam. Por su parte, en los Estados Unidos es ampliamente documentado el cultivo del bagre del canal y de varias especies de Clarias, alcanzando producciones de hasta 2000 toneladas m&eacute;tricas (TM) anuales (Josupeit, 2007). La industria de la producci&oacute;n de estas especies muestra un gran potencial; por ejemplo, Estados Unidos produjo en al a&ntilde;o 2000, s&oacute;lo para su mercado interno, casi 360.000 TM de la especie <i>Ictalurus punctatus, </i>mientras que la producci&oacute;n de Vietnam alcanz&oacute; recientemente las 180.000 Tm, con una proyecci&oacute;n de 220.000 TM anuales durante los pr&oacute;ximos a&ntilde;os (Globefish, 2006). Por lo tanto, a pesar de sus h&aacute;bitos carn&iacute;voros con tendencia pisc&iacute;vora, los bagres representan un inmenso potencial para la piscicultura continental, debido principalmente a la calidad y aceptaci&oacute;n comercial de su carne (Villadiego <i>et al., </i>2004).</p>     <p>Las especies colombianas de sil&uacute;ridos presentan un alto potencial para ser utilizadas en los procesos de piscicultura; entre estas especies est&aacute;n el bagre rayado <i>(Pseudoplatystoma sp) </i>y principalmente el yaque <i>(Leiarius marmoratus) </i>que han sido recomendadas para diversificar la acuicultura nacional (Pineda, 2002). Este &uacute;ltimo se encuentra ampliamente distribuido en las cuencas de los r&iacute;os Orinoco y Amazonas (Ram&iacute;rez y Ajiaco, 1997; Castillo, 2001) presentando en ambientes naturales h&aacute;bitos alimenticios pisc&iacute;voros (Layman <i>et al., </i>2005); sin embargo, se ha reportado tendencia alimenticia omn&iacute;vora en el r&iacute;o (Ram&iacute;rez y Ajiaco, 1997; Novoa, 2002).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>A pesar de previos estudios realizados con estas especies de bagres (Padilla <i>et al., </i>2001), a&uacute;n no es posible su cultivo a escala comercial, debido principalmente a las dificultades para lograr su reproducci&oacute;n exitosa en cautiverio, a su marcada estacionalidad reproductiva, a los h&aacute;bitos alimenticios carn&iacute;voros de la mayor&iacute;a de las especies y a la dificultad para adaptarlas a consumir dietas secas o concentrados comerciales (Guerrero, 2003), siendo necesarios a&uacute;n estudios del desarrollo larvario para establecer t&eacute;cnicas de manejo m&aacute;s eficientes, especialmente durante la transici&oacute;n de la alimentaci&oacute;n end&oacute;gena a ex&oacute;gena (Zaniboni <i>et al., </i>2001), con el objetivo de disminuir la conducta can&iacute;bal durante los primeros d&iacute;as post-eclosi&oacute;n.</p>     <p>En algunas especies de sil&uacute;ridos de h&aacute;bitos pisc&iacute;voros, entre estas el yaque, se ha reportado que ofrecer alimento a saciedad, aumentar la frecuencia de alimentaci&oacute;n, utilizar apropiadas densidades de siembra, realizar selecci&oacute;n peri&oacute;dica por talla y proporcionar condiciones ambientales apropiadas, junto con un adecuado manejo de la primera alimentaci&oacute;n, ofreciendo alimento vivo durante las fases iniciales podr&iacute;an contribuir a disminuir el canibalismo (Luz <i>et al., </i>2002; Kestemont <i>et al.,</i> 2003; Mora <i>et al., </i>2006; Nu&ntilde;ez <i>et al., </i>2008). El suministro de estos organismos en la fase de larvicultura ofrece ventajas como f&aacute;cil digestibilidad, aporte de prote&iacute;na y de enzimas e inducci&oacute;n de est&iacute;mulos visuales que facilitan posteriormente la b&uacute;squeda del alimento (Legendre <i>et al., </i>1995, Garc&iacute;a-Ortega <i>et al., </i>2000).</p>     <p>En consecuencia, el objetivo del presente estudio fue evaluar el suministro de diferentes tipos de alimento vivo (artemia salina, clad&oacute;ceros, cop&eacute;podos y larvas de peces) como primera alimentaci&oacute;n en el yaque, como estrategia para la disminuci&oacute;n del canibalismo en la etapa larval.</p>     <p><font size="3"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p><b>Localizaci&oacute;n y &aacute;rea de estudio</b></p>     <p>El estudio fue realizado en los laboratorios de Reproducci&oacute;n y de Alimento Vivo del Instituto de Acuicultura de la Universidad de los Llanos (IALL), localizado en el kilometro 12 v&iacute;a Puerto L&oacute;pez, vereda Barcelona del municipio de Villavicencio (Meta-Colombia), ubicado a 418 m.s.n.m. Las condiciones clim&aacute;ticas de la regi&oacute;n son caracter&iacute;sticas de un clima h&uacute;medo tropical, con temperatura promedio de 25&deg; C, precipitaci&oacute;n anual promedio de 4.050 mm y promedio de humedad relativa de 75%.</p>     <p><b>Material biol&oacute;gico</b></p>     <p>Las larvas de yaque <i>(Leiarius marmoratus) </i>fueron obtenidas por reproducci&oacute;n artificial de ejemplares sexualmente maduros inducidos con Extracto de Hip&oacute;fisis de Carpa para hembras (Mira <i>et al., </i>2008) y Ovaprim para machos seg&uacute;n el protocolo propuesto por Medina <i>et al., </i>(2008). Posterior a la seminaci&oacute;n en seco, los embriones fueron trasladados a incubadoras cil&iacute;ndrico-c&oacute;nicas de flujo ascendente, donde fueron dejados hasta su eclosi&oacute;n, conservando una temperatura del agua promedio de 27&plusmn;1 &deg;C, pH de 6.5&plusmn;0.1 y concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno de 5.8&plusmn;0.5 mg/L.</p>     <p><b>Toma de muestras, descripci&oacute;n y mediciones</b></p>     <p>Durante la etapa larvaria, cada dos horas a partir de la 0 hora post-eclosi&oacute;n (HPE) y hasta las 50 HPE, se tomaron muestras de 25 larvas las cuales se fijaron con formol buferado, para su posterior registro con la ayuda de una c&aacute;mara de microfotograf&iacute;a (NIKON Digital, SIGHT DS-U1, Jap&oacute;n), acoplada a un microscopio de contraste de fase (NIKON, Jap&oacute;n, ECLIPSE E400) o a un estereoscopio (NIKON SMZ800, Jap&oacute;n). Todas las fotograf&iacute;as fueron almacenadas usando el software ACT-2U (NIKON, ACT-2U Imaging Software, Jap&oacute;n) y utilizadas para determinar la longitud total (mm), altura (mm) y longitud del saco vitelino (mm). De igual forma, las larvas fueron pesadas individualmente (peso h&uacute;medo) en una balanza anal&iacute;tica (Explorer Pro OHAUS, Modelo EP214C) y su peso expresado en mg.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Evaluaci&oacute;n de las caracter&iacute;sticas de crecimiento en la fase larvaria</b></p>     <p>Volumen del saco vitelino (VV): Durante la fase larvaria de yaque se calcul&oacute; el volumen del saco vitelino cada 2 HPE hasta su reabsorci&oacute;n. Para este prop&oacute;sito se utiliz&oacute; la f&oacute;rmula descrita por Junqueira (1999), as&iacute;:</p>     <p>VV= [(&pi;/6)*L*H<sup>2</sup>], donde: V: volumen del saco vitelino, expresado en mm<sup>3 </sup>L: Longitud total del saco vitelino expresado en mm H: Altura del saco vitelino expresado en mm</p>     <p><b>Reabsorci&oacute;n del saco vitelino: </b>Para este caso, el porcentaje de reabsorci&oacute;n del saco vitelino (RV), se determin&oacute; de acuerdo con la siguiente f&oacute;rmula:</p>     <p>RV= Vm*100/Vi, donde:</p>     <p>RV: Porcentaje de reabsorci&oacute;n del saco vitelino</p>     <p>Vm: Volumen del saco vitelino (mm<sup>3</sup>) de la larva a la hora de muestreo</p>     <p>Vi: Volumen del saco vitelino (mm<sup>3</sup>) de la larva reci&eacute;n eclosionada</p>     <p><b>Abertura m&aacute;xima bucal (Amb): </b>Para este prop&oacute;sito, se realiz&oacute; un seguimiento de la abertura de la boca, desde su inicio hasta que alcanz&oacute; la abertura m&aacute;xima (Amb), considerando un &aacute;ngulo de 90&deg;, empleando la ecuaci&oacute;n de Shirota (1970), as&iacute;:</p>     <p>Amb: LMS x &radic;2, donde:</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Amb: Abertura m&aacute;xima de la boca</p>     <p>LMS: Longitud (&micro;m) m&aacute;xima del maxilar superior</p>     <p><b>Desarrollo corporal y sobrevivencia de larvas de yaque alimentadas con diferentes tipos de organismos vivos</b></p>     <p>Para la evaluaci&oacute;n del desarrollo corporal y la sobrevivencia de las larvas fueron utilizados individuos que ya hab&iacute;an iniciado alimentaci&oacute;n ex&oacute;gena, que fueron trasladados a unidades experimentales, consistentes en recipientes con un volumen efectivo de agua de 3 L y densidad de 30 larvas por recipiente (10 larvas.L<sup>-1</sup>). Cinco diferentes tratamientos fueron evaluados, as&iacute;: larvas alimentadas con nauplios de artemia salina (T1) reci&eacute;n eclosionados (artemia High 5, Marca INVE), clad&oacute;ceros del genero <i>Diaphanosoma </i>(T2), cop&eacute;podos del genero <i>Diaptomus </i>(T3), combinaci&oacute;n de clad&oacute;ceros m&aacute;s cop&eacute;podos (T4) o larvas de cachama blanca <i>(Piaractus brachypomus) </i>reci&eacute;n eclosionadas (T5). Cada tratamiento cont&oacute; con 6 unidades experimentales.</p>     <p>El zooplancton fue suministrado por el Laboratorio de Alimento Vivo del Instituto de Acuicultura de la Universidad de los Llanos. Por medio de volumetr&iacute;a se determin&oacute; la cantidad exacta de organismos a suministrar a cada tratamiento. Dos horas despu&eacute;s de la alimentaci&oacute;n, cada unidad experimental fue sifoneada para retirar los organismos no consumidos y renovar diariamente el 30 % del volumen de agua. Las larvas fueron alimentadas a una frecuencia de cuatro raciones diarias, suministradas a las 07:00, 11:00, 15:00 y 19:00 horas; adicionalmente se ajusto la raci&oacute;n cada cuatro d&iacute;as a una raz&oacute;n de 50, 100, 150 organismos por larva. El ensayo fue conducido bajo condiciones controladas de laboratorio, bajo un ambiente de oscuridad total para minimizar el estr&eacute;s lum&iacute;nico, y tuvo una duraci&oacute;n de 12 d.</p>     <p>Para evaluar el crecimiento, al inicio y final de la fase experimental (d&iacute;a 12), las post-larvas de cada tratamiento fueron pesadas en una balanza anal&iacute;tica (Explorer Pro OHAUS, Modelo EP214C) y medidas con un calibrador (0.01&plusmn;SD) con el fin de determinar los siguientes par&aacute;metros productivos:</p>     <p><b>Ganancia en peso (mg): GP= </b>Pf - Pi, donde: Pf= Peso final; Pi:=Peso inicial.</p>     <p><b>Ganancia en longitud (mm): </b>GL= Lf - Li, donde: Lf= Longitud total final; Li= Longitud total inicial.</p>     <p><b>Tasa de Crecimiento Espec&iacute;fico: TCE </b>(%/d&iacute;a)= ((Ln Pmf - Ln Pmi)/t) * 100, donde: Pmi= peso promedio inicial de las post-larvas (mg); Pmf= peso promedio final de las post-larvas (mg); t= tiempo de cultivo (d&iacute;as); Ln= logaritmo neperiano.</p>     <p><b>Ganancia diaria en peso (mg/dia): GD </b>Ganancia de acuerdo al tiempo de duraci&oacute;n del ensayo.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Factor de condici&oacute;n: </b>Definido como el grado de bienestar o condici&oacute;n som&aacute;tica de las larvas, con relaci&oacute;n al medio en que fueron sometidos.</p>     <p><b>FC= </b>(P/L<sup>3</sup>) X 100, donde P= Peso total de la post-larva (mg); L = Longitud total de la post-larva (mm)</p>     <p><b>Sobrevivencia final (S): </b>De cada unidad experimen-tal, fue calculada contando manualmerte las post-larvas vivas, al finalizar el ensayo.</p>     <p>Los par&aacute;metros fisico-quimicos en cada recipierte fueron determinados cada dos d&iacute;as: temperatura (&deg;C), oxigeno disuelto (mg/L), % de saturaci&oacute;n del oxigeno, pH, salinidad (%) y conductividad (&micro;s/cm-1), utilizando una sonda multiparam&eacute;trica YSI (MPS YSI 556); de igual forma se determir&oacute; la concentraci&oacute;n de nitratos y nitritos con la ayuda de un Kit colorim&eacute;trico (mg/L, rango de 5 a 80 ppm NO<sub>3</sub> y 0.1 a 2 ppm NO<sub>2 </sub>respectivamerte, Mol Labs reactivos).</p>     <p><b>An&aacute;lisis Estad&iacute;stico</b></p>     <p>Los resultados fueron expresados como media &plusmn; error est&aacute;ndar de la media (SEM). La evaluaci&oacute;n del crecimiento se realiz&oacute; mediante un an&aacute;lisis de regresi&oacute;n (P<0.05) de tipo potencial entre las relaciones peso/tiempo y lorgitud total/tiempo por tratamiento. La evaluaci&oacute;n del desarrollo corporal y la sobrevivencia de las larvas fueron analizadas a trav&eacute;s de estadistica no param&eacute;trica (datos no normales) mediante el test de Kruskal-Wallis, seguido de la prueba de Dunn. En todos los casos, P<0,05 fue utilizado como criterio estadistico para considerar diferercias significantes. Los procedimientos estadisticos fueron realizados empleando el software GraphPad InStat versi&oacute;n 3.06 para Windows.</p>     <p><b><font size="3">RESULTADOS</font></b></p>     <p><b>An&aacute;lisis de crecimiento</b></p>     <p>Las larvas reci&eacute;n eclosionadas (0 HPE) mostraron un peso inicial de 0.37&plusmn;0.01mg y una longitud de 1.3&plusmn;0.03 mm, alcanzando el doble de su peso y talla a las 42 y 30 HPE, respectivamente, con carencia de pigmentaci&oacute;n y nado.</p>     <p>La <a href="#f1">Figura 1</a> ilustra el modelo de crecimiento basado en una regresi&oacute;n potencial de la longitud total de las larvas con relaci&oacute;n al tiempo (HPE), desde las 2 HPE hasta las 50 HPE, mostrando un coeficiente de determinaci&oacute;n mayor a 95 % y alcanzando a las 50 HPE una longitud de 3.6&plusmn;0.04 mm. De igual forma, el modelo de crecimiento en peso con relaci&oacute;n al tiempo lo ilustra la <a href="#f2">Figura 2</a>; donde se observ&oacute; que a las 50 HPE las larvas mostraron ur peso de 0.81&plusmn;0.02 ma, con un coeficiente de determinaci&oacute;n de 0.918.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="f1"><img src="img/revistas/rori/v14n1/v14n1a06f1.gif"></a></center></p>     <p>    <center><a name="f2"><img src="img/revistas/rori/v14n1/v14n1a06f2.gif"></a></center></p>      <p><b>Volumen y reabsorci&oacute;n del saco vitelino</b></p>     <p>Larvas reci&eacute;n eclosionadas presentaron un VV de 0.15 mm<sup>3</sup> y a partir de las 10 HPE el saco vitelino se redujo considerablemente (<a href="#f4">Figura 4</a>), de tal manera que hacia las 35 HPE el volumen del saco vitelino fue inferior al 10 % de su volumen inicial. El consumo de las reservas del saco vitelino ocurri&oacute; a las 50 HPE aproximadamente.</p>      <p>    <center>   <font face="verdana" size="2"><img src="img/revistas/rori/v14n1/v14n1a06f3.gif"></font> </center></p>     <p>    <center><a name="f4"><img src="img/revistas/rori/v14n1/v14n1a06f4.gif"></a></center></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Abertura m&aacute;xima bucal (Amb)</b></p>     <p>La presencia de abertura bucal fue observada a las 10 HPE (72.5&plusmn;5.6 &micro;m) y al cabo de las 32 HPE se observ&oacute; un incremento del 25 % (308.8&plusmn;4.5 &micro;m). Al final del seguimiento (50 HPE) laAmb fue de 532.7&plusmn;7.8 &micro;m, con una presencia de saco vitelino inferior a 5 %.</p>     <p><b>Desarrollo corporal y sobrevivencia de larvas de yaque alimentadas con diferentes tipos de organismos vivos.</b></p>     <p>Los par&aacute;metros de calidad de agua no presentaron variaciones significativas entre los tratamientos a lo largo del ensayo, excepto la concentraci&oacute;n de Nitratos (P>0.05). La temperatura present&oacute; valores m&iacute;nimos y m&aacute;ximos de 25 y 27 &deg;C, respectivamente, con un promedio durante el ensayo de 26 &deg;C&plusmn;1; de igual modo, variables como saturaci&oacute;n de ox&iacute;geno y pH, presentaron valores similares entre los tratamientos evaluados (P>0.05) (<a href="img/revistas/rori/v14n1/v14n1a06t1.gif" target="_blank">Tabla 1</a>).</p>     <p>La alimentaci&oacute;n ex&oacute;gena de las larvas se inici&oacute; cuando &eacute;stas presentaron un volumen de saco vitelino inferior al 10 % del volumen inicial y una abertura bucal de 367.3 &micro;m, lo cual ocurri&oacute; a las 35 HPE. La <a href="#f5">Figura 5</a> ilustra la ganancia en longitud de larvas de yaque alimentadas con diferentes tipos de organismos vivos: la mayor ganancia fue observada en aquellas larvas alimentadas con larvas reci&eacute;n eclosionadas de cachama (T5) (17.4&plusmn;0.5 mm), siendo muy superior cuando comparadas con las larvas alimentadas con la mezcla de clad&oacute;ceros m&aacute;s cop&eacute;podos (T4 2.5&plusmn;0.8 mm) (P<0.05). En contraste, las larvas que fueron alimentadas &uacute;nicamente con cop&eacute;podos no sobrevivieron (inanici&oacute;n), por lo que no fue posible evaluar par&aacute;metros productivos en este tratamiento.</p>      <p>    <center><a name="f5"><img src="img/revistas/rori/v14n1/v14n1a06f5.gif"></a></center></p>      <p>La ganancia en peso mostr&oacute; un comportamiento similar al de la ganancia en longitud, siendo tambi&eacute;n mayor en las larvas alimentadas con larvas reci&eacute;n eclosionadas de cachama blanca (116.17&plusmn;3.75 mg), seguido por el tratamiento donde las larvas fueron alimentadas con nauplios de artemia salina (29.2&plusmn;2.6 mg), con diferencias significativas entre estos (P<0.05); los tratamientos T2 (clad&oacute;ceros) y T3 (cop&eacute;podos) presentaron las menores ganancias en peso sin presentar diferencias significativas entre ellos (P>0.05) (<a href="#f6">Figura 6</a>).</p>      <p>    <center><a name="f6"><img src="img/revistas/rori/v14n1/v14n1a06f6.gif"></a></center></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La mayor ganancia en porcentaje de acuerdo al peso se obtuvo con el tratamiento T5 (larvas de cachama) ganando un 47.9&plusmn;0.2 % al final del ensayo, seguido del tratamiento T1 (nauplios de artemia) con un valor de 35.8&plusmn;0.7 % sin presentar diferencias significativas al ser comparados entre estos (P>0.05), mientras que los tratamientos T2 y T4 (P>0.05) mostraron los menores porcentajes en ganancia en peso (<a href="#f7">Figura 7</a>).</p>      <p>    <center><a name="f7"><img src="img/revistas/rori/v14n1/v14n1a06f7.gif"></a></center></p>      <p>La <a href="#f8">Figura 8</a> ilustra la ganancia diaria en peso (mg) de larvas de yaque, donde la menor ganancia se observ&oacute; para los tratamientos T2 y T4 (0.4&plusmn;0.0 y 0.45&plusmn;0.1 mg, respectivamente) sin presentar diferencias significativas entre estos dos tratamientos (P>0.05). De igual forma, la mayor ganancia diaria fue observada en el tratamiento 5 (larvas alimentadas con larvas de cachama).</p>      <p>    <center><a name="f8"><img src="img/revistas/rori/v14n1/v14n1a06f8.gif"></a></center></p>      <p>El factor de condici&oacute;n fue mayor para larvas alimentadas con la combinaci&oacute;n de clad&oacute;ceros y cop&eacute;podos siendo de 1.1&plusmn;0.1 (<a href="#f9">Figura 9</a>), seguido por las larvas alimentadas con nauplios reci&eacute;n eclosionados de artemia salina 0.9&plusmn;0.01, sin diferencias significativas al compararse entre estos y los dem&aacute;s tratamientos (p>0.05). Obs&eacute;rvese que para el T5 (larvas de cachama) se present&oacute; una de las mejores condiciones corporales, sin embargo, cabe anotar que este tratamiento mostr&oacute; la menor sobrevivencia (3.3&plusmn;0.0 %), atribuida posiblemente a que las pocas larvas mostraron una longitud y un peso mayor que las de los otros tratamientos, lo cual contrasta con lo observado en el T1 donde la sobrevivencia fue mayor, con un valor mayor al 50 % (<a href="img/revistas/rori/v14n1/v14n1a06t2.gif" target="_blank">Tabla 2</a>).</p>      <p>    <center><a name="f9"><img src="img/revistas/rori/v14n1/v14n1a06f9.gif"></a></center></p>      <p><b><font size="3">DISCUSI&Oacute;N</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El control de las fases de larvicultura y alevinaje de peces tienen como prop&oacute;sito incrementar las tasas de sobrevivencia y de crecimiento, para lo cual es necesario ofrecer las condiciones ambientales adecuadas y proporcionar una alimentaci&oacute;n que garantice mayor cantidad y mejor calidad de las larvas y alevinos obtenidos, lo cual constituye para la industria pisc&iacute;cola un evento de suma importancia (Atencio-Garc&iacute;a <i>et al., </i>2003b). Al momento de la eclosi&oacute;n, las larvas <i>L. marmoratus </i>mostraron una longitud total menor a la reportada para otras especies de sil&uacute;ridos. Por ejemplo, en blanquillo <i>(Sorubim cuspicaudus), </i>Novoa y Cata&ntilde;o (2005) reportan una longitud total al inicio de la eclosi&oacute;n de 3.32&plusmn;0.01 mm. Resultados similares han sido reportados en otros pimel&oacute;didos reof&iacute;licos como <i>Pseudoplatystoma corruscans </i>(3.3&plusmn;0.07 mm, Santos y Godinho, 1994), <i>Pseudoplatystoma fasciatum</i>(3.02&plusmn;0.12 mm, Padilla <i>et al., </i>2001), <i>Pimelodus maculatus </i>(2.56&plusmn;0.13 mm, Luz <i>et al., </i>2001), <i>Rhamdia hilarii </i>(4.0 mm, Godinho <i>et al., </i>1978) y <i>Parauchenipterus galeatus </i>(4.9&plusmn;0.7 mm, S&aacute;nches <i>et al., </i>1999).</p>     <p>El comportamiento de las variables f&iacute;sicas y qu&iacute;micas del agua mostraron valores cercanos a los reportados para otras especies de sil&uacute;ridos, como es el caso de la temperatura y el pH (27,3 &plusmn; 0,7 &deg;C y 6,9 &plusmn; 0,5, respectivamente) reportado por Smerman <i>et al. </i>(2002) para pintado <i>(Pseudoplatystoma sp); </i>de igual forma, para <i>Pseudoplatystoma sp, </i>D&iacute;az-Olarte <i>et al. </i>(2009) observaron una temperatura cercana a la reportada en este estudio. Seg&uacute;n Atencio-Garc&iacute;a <i>et al. </i>(2003c) el pH debe mantenerse entre 6 y 9.</p>     <p>La abertura bucal m&aacute;xima de yaque al inicio de la alimentaci&oacute;n ex&oacute;gena fue menor a la reportada en otras especies como blanquillo <i>(Sorubin cuspicaudus) </i>entre las 46 y 48 HPEC (590&plusmn;0.03 &micro;m, Novoa y Cata&ntilde;o, 2005) y yam&uacute; <i>(Brycon amazonicus) </i>con una Amb de 1.470&plusmn;90 &micro;m (Atencio-Garc&iacute;a <i>et al., </i>2003c); sin embargo, al compararse con otras especies como carpa plateada <i>(Hypophthalmichthys molitrix) </i>(89 &micro;m), carpa china <i>(Ctenopharyngodon idella) </i>(148 &micro;m) y Arischthys nobilis (271 &micro;m) (Dabrowsky y Bardega, 1984), la Amb del yaque fue superior. Las larvas de yaque mostraron un r&aacute;pido crecimiento, debido probablemente a su h&aacute;bito alimenticio carn&iacute;voro; sin embargo, en esta especie, este tipo de h&aacute;bito no es tan notorio cuando el r&eacute;gimen alimenticio es adecuado. Shirota (1970) consider&oacute; al tama&ntilde;o de la boca como una caracter&iacute;stica de los peces con r&aacute;pido desarrollo larval. La abertura de la boca se increment&oacute; con la edad, similar a lo reportado por Camacho <i>et al., </i>(2008) en <i>Rivulus marmoratus, </i>atribuy&eacute;ndole la capacidad fisiol&oacute;gica de digerir y absorber una presa m&aacute;s grande, lo cual es indispensable para su crecimiento corporal. Moyano <i>et al. </i>(1996) asocia esta caracter&iacute;stica con el aumento significativo en las actividades enzim&aacute;ticas digestivas tales como fosfatasa alcalina y esterasa y con el aumento de los pliegues de la mucosa y de las c&eacute;lulas del tracto digestivo, como se observa en el desarrollo de las larvas de dorada <i>Sparus aurata.</i></p>     <p>El inicio de la alimentaci&oacute;n ex&oacute;gena en yaque, determinada en este estudio, fue observada entre los 35 y 40 HPE con una reserva vitelina menor del 10 %, lo cual es inferior a lo reportado para <i>Sorubim cuspicaudus </i>(Novoa y Cata&ntilde;o, 2005) y bocachico <i>(Prochilodus magdalena) </i>(Atencio-Garc&iacute;a <i>et al., </i>2003a), la cual se report&oacute; entre las 46 a 48 (52.8 % RV) y 44 a 48 HPE (34 % RV), respectivamente, demostrando una tendencia de alta voracidad de alimentaci&oacute;n en ciertas especies de peces. Esto confirma, lo reportado por Gisbert y Williot (1997) quienes siguieren que en algunos peces, el inicio de la alimentaci&oacute;n ex&oacute;gena coincide con el consumo total del saco vitelino.</p>     <p>El zooplancton es el alimento natural para la mayor&iacute;a de los peces en sus primeras etapas de vida (Kibria <i>et al., </i>1997), con grandes ventajas como alimento vivo (Thanh <i>et al.</i>, 2002; Atencio-Garc&iacute;a <i>et al.</i>, 2003a; Camacho <i>et al., </i>2008). En el presente estudio, las post-larvas alimentadas con larvas de cachama presentaron mayor ganancia en peso y longitud, con una baja sobrevivencia en las unidades experimentales, probablemente relacionada con el gran tama&ntilde;o y el tipo de movilidad de las larvas de cachama, lo cual dificultar&iacute;a su captura, generando inanici&oacute;n en las larvas de yaque. Esto permite suponer, que ante la ausencia de alimento las postlarvas regulan el gasto de sus reservas vitelinas por medio de una menor actividad y permanencia generalmente en el fondo, lo que facilita ser presa f&aacute;cil por sus co-espec&iacute;ficos (Atencio-Garc&iacute;a <i>et al</i>., 2003a). Por otro lado, Piennar (1990), reporta que la presencia de luz y un aumento de esta, durante la larvicultura para especies de siluriformes puede ser un factor de estr&eacute;s, promoviendo una agresi&oacute;n y elevada tasa de canibalismo, disminuci&oacute;n de movimientos de los individuos y menor crecimiento, como es reportado en <i>Clarias gariepinus</i>. De igual forma Nu&ntilde;ez <i>et al</i>., (2008) menciona que uno de los factores que incide en la sobrevivencia en larvas de peces de Pseudoplatystoma fasciatum es la regulaci&oacute;n del fotoperiodo (aumentando los periodos de oscuridad) junto con las frecuencias alimenticias. Sumado a esto, Kamler (1992) reporta que la nataci&oacute;n es una actividad de energ&iacute;a costosa, la cual implica el consumo de alta cantidades de ox&iacute;geno, desde 2 hasta 15 veces por encima del nivel de reposo en algunas especies de larvas de peces, como la trucha marr&oacute;n, la sardina del Pac&iacute;fico y algunos cipr&iacute;nidos.</p>     <p>Probablemente las pocas larvas de yaque sobrevivientes alimentadas con larvas de cachama se alimentaron de sus co-espec&iacute;ficos, incentivando el canibalismo en las larvas mantenidas con este r&eacute;gimen alimenticio. De igual forma, el tama&ntilde;o de la boca para esta especie define el tipo de alimento, lo que fue posiblemente una limitante en los tratamientos donde se alimentaron las larvas con la mezcla de clad&oacute;ceros m&aacute;s cop&eacute;podos y las larvas alimentadas con larvas de cachama. Seg&uacute;n Faria et al. (2001), la depredaci&oacute;n es la principal causa de mortalidad en larvas de peces, donde la disponibilidad de alimentos en un ecosistema acu&aacute;tico es considerado uno de los factores m&aacute;s importantes en la tasa de sobrevivencia de larvas de peces. De hecho, el principio del canibalismo es que no requieren una diferencia de tama&ntilde;o y generalmente es proporcional a la probabilidad de encuentro con los hermanos, y por lo tanto a la densidad de peces (Hecht y Appelbaum, 1988; Baras, 1999; Baras y d&#39;Almeida, 2001). El canibalismo no s&oacute;lo tiene impacto temprano directo sobre la sobrevivencia, tambi&eacute;n aumenta la heterogeneidad de tama&ntilde;o, lo que favorece la transici&oacute;n hacia el canibalismo y el impacto sobre la sobrevivencia en un modelo en cascada que pueden no ser mitigados, entre los peces que son demasiado peque&ntilde;os y delicados, que son ordenados mec&aacute;nicamente (Hecht y Pienaar, 1993; Baras y Jobling, 2002).</p>     <p>Bajo las condiciones del ensayo, los tratamientos que mostraron respuestas aceptables, a diferencia del T5 en t&eacute;rminos de ganancia de longitud y peso, fueron T1 y T2, correspondientes a las larvas alimentadas con nauplios de artemia y clad&oacute;ceros respectivamente; adem&aacute;s, estos tratamientos presentaron las mejores sobrevivencias y un alto factor de condici&oacute;n. Al comparar estos resultados con otras especies, se encontr&oacute; que la ganancia diaria fue menor a la reportada para <i>Sorubim cuspicaudus</i> (Hern&aacute;ndez-Bedoya <i>et al</i>., 2008) en larvas alimentadas con una fuente de alimento mesocosmos compuesto de clad&oacute;ceros y cop&eacute;podos (50.5&plusmn;1.1 %), mientras que para bocachico (Atencio-Garc&iacute;a et al., 2003a) las variables productivas fueron inferiores a lo reportado para este estudio. En otras especies como <i>Pangasius bocourti</i>, larvas alimentadas con moina presentaron un menor crecimiento que los alimentados con nauplios de artemia salina y tubifex (Thanh et al., 2002). Sin embargo, Adeyemo et al. (1994) demostraron lo contrario para algunos bagres como <i>H. bidorsalis</i> y <i>Clarias gariepinus</i> encontrando que peces alimentados con <i>Moina dubia</i> presentaron un mayor crecimiento y tasas de sobrevivencia que aquellos alimentados con nauplios de artemia salina.</p>     <p>Esta informaci&oacute;n constituye un aporte hacia la consecuci&oacute;n de mecanismos o estrategias que garanticen una mayor eficiencia en la primera alimentaci&oacute;n de larvas de yaque (<i>L. marmoratus</i>), conjugado con altas tasas de sobrevivencia, de acuerdo a las estrategias y caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas y de crecimiento determinadas en el presente estudio, siendo una alternativa la utilizaci&oacute;n de nauplios de artemia y clad&oacute;ceros durante la larvicultura de esta especie.</p>     <p><b><font size="3">AGRADECIMIENTOS</font></b></p>     <p>Los autores agradecen al Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural y a la Universidad de los Llanos (convenio 015-2/06) por el apoyo financiero, as&iacute; como al Instituto de Acuicultura de la Universidad de los Llanos por el apoyo log&iacute;stico y a los estudiantes de Zootecnia Erika Ortiz y Daniel Cubillos, por su colaboraci&oacute;n en la conducci&oacute;n del ensayo.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font size="3">REFERENCIAS</font></b></p>     <!-- ref --><p>Adeyemo AA, Oladosu GA, Ayinla AO. Growth and survival of African catfish species, Clarias gariepinus Burchell, Heterobranchus bidorsalis Geoffroy reared on Moina dubia in comparison with other first feed sources. Aquaculture 1994; 119: 41-45.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0121-3709201000010000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Atencio-Garc&iacute;a VJ, Kerguel&eacute;n E, Wadnipar L, Narv&aacute;ez A. Manejo de la primera alimentaci&oacute;n del bocachico (Prochilodus magdalenae). Revista MVZ de C&oacute;rdoba 2003; 8(1):256-260.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0121-3709201000010000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Atencio-Garc&iacute;a VJ. Producci&oacute;n de alevinos de peces migratorios continentales en Colombia. En Memorias I congreso iberoamericano virtual de Acuicultura (CIVA).2003b. pp 263-270.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0121-3709201000010000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Atencio-Garc&iacute;a VJ, Zaniboni-Filho E, Pardo-Carrasco S, Arias-Castellanos A. Influência da primeira alimentação na larvicultura e alevinagem do yam&uacute; Brycon siebenthalae (Characidae). Acta Scientiarum. Animal Sciences 2003c; 25: 61-72.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0121-3709201000010000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Baras E. Sibling cannibalism among juvenile vundu under controlled conditions. I. Cannibalistic behaviour, prey selection and prey size selectivity. J. Fish Biol 1999; 54: 82-10.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0121-3709201000010000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Baras E, d&#39;Almeida AF. Size heterogeneity prevails over kinship in shaping cannibalism among larvae of sharptooth catfish Clarias gariepinus. Aquat. Living Resour 2001; 14: 251-256.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0121-3709201000010000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Baras E, Jobling M. Dynamics of intracohort cannibalism in cultured fish. Aquac. Res 2002; 33: 461-479.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0121-3709201000010000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Camacho - Grageda VM, Kotani T, Sakakura Y, Hagiwara A. Effects of feeding copepod and artemia on early growth and behaviour of the self-fertilizing fish, Rivulus marmoratus, under laboratory conditions. Aquaculture 2008; 281: 100-105.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0121-3709201000010000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Castillo O. Ecolog&iacute;a de la reproducci&oacute;n de los bagres comerciales del r&iacute;o Portuguesa. Trabajo de Ascenso a la categor&iacute;a Asociado. Univ. Nac. Exp. Llanos Occidentales &quot;Ezequiel Zamora&quot; Guanare, Venezuela. 2001.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0121-3709201000010000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Dabrowsky K, Bardega R. Mouth size and predicted food size preferences of larvae of three cyprinid fish species. Aquaculture, Amsterdam 1984; 40: 41-46.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0121-3709201000010000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>D&iacute;az-Olarte JJ, Cruz-Casallas NE, Marciales-Caro LJ, Medina-Robles VM, Cruz-Casallas PE. Efectos de la densidad de siembra y disponibilidad de alimento sobre el desarrollo y sobrevivencia de larvas de Pseudoplatystoma fasciatum. Orinoquia 2009; 13(1): 20-29.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0121-3709201000010000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Faria ACEA, Hayashi C, Soares CM. Predação de larvas de pacu (Piaractus mesopotamicus, Holmberg) por cop&eacute;podos ciclop&oacute;ides (Mesocyclops longisetus, Thi&eacute;baud) em diferentes densidades e ambientes com diferentes contrastes visuais. Acta Scientiarum, Maring&aacute; 2001; 23: 497-502.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0121-3709201000010000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Garc&iacute;a-Ortega A, Koussoulaki A, Boer H, Verreth J. In vitro protein digestibility of Artemia cysts and nauplii, andamicrobound diets for larval fish. Aquac Res 2000; 31:475-478.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0121-3709201000010000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Geiger G. Pond fertilization and zooplankton management. In: HARVEY, B. e CAROLSFELD, J. (Ed.). Workshop on larval rearing of finfish. Pirassununga, 1989. CIDA/CASAFA/ICSU, 1990; pp. 93-110.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0121-3709201000010000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Gisbert E, Williot P. Larval behaviour and effect of the timing of initial feeding on growth and survival of Siberian sturgeon ( Ancinpenser baeri ) larvae under small scale hatchery production. Aquaculture 1997; 156: 63-76.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0121-3709201000010000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Globefish. 2006. Catfish Market Report-November 2004. <a href="http://www.globefish.org" target="_blank">http://www.globefish.org</a>.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0121-3709201000010000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Godinho H, Fenerich N, Narahara M. Desenvolvimento embrion&aacute;rio e larval de Rhamdia hilarii (Valenciennes, 1840) (Siluriformes, Pimelodidae). Rev. Bras. Bio 1978; 38(1): 151-156.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0121-3709201000010000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Guerrero ACE. Treinamento alimentar de pintado Pseudoplatystoma coruscans (Agassiz, 1829): Sobrevivência, crescimento e aspectos econômicos. Dissertação (mestrado) - Centro de Aqüicultura, Universidade Estadual Paulista, Jaboticabal, Brasil, 2003; pp. 72.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0121-3709201000010000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Hart PT, Purser GJ. Weaning of hatchery-reared greenback flounder (Rhombosolea tapirina Gunther) from live to artificial diets: Effects of age and duration of the changeover period. Aquaculture 1996; 145:171-181.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0121-3709201000010000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Hecht T, Appelbaum S. Observations on intraspecific aggression and coeval sibling cannibalism by larval and juvenile Clarias gariepinus (Clariidae: Pisces) under controlled conditions. J. Zool. Lond 1988; 214: 21-44.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0121-3709201000010000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Hecht T, Pienaar AG. A review of cannibalism and its implications in fish larviculture. J. World Aquac. Soc 1993; 24: 246-261.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0121-3709201000010000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Hern&aacute;ndez-Bedoya JP, G&oacute;mez-Romero C, Prieto-Guevara MJ, Atencio -Grac&iacute;a VJ, Pardo Carrasco SC. Larvicultura del blanquillo (Sorubim cuspicaudus) alimentado con tres tipos de presas vivas. En: memorias IV Congreso Colombiano de Acuicultura. Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias. 2008; 21:455-452.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0121-3709201000010000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Josupeit H. 2007. Catfish Market Report, Diciembre 2007. FAO Globefish. <a href="http://www.globefish.org/index.php?id=4365" target="_blank">http://www.globefish.org/index.php?id=4365</a>.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0121-3709201000010000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Junqueira CAP. Efeito da temperatura no desenvolvimento inicial de larvas de &quot;Curimbat&aacute;&quot; Prochilodus scrofa STEINDACHNER, 1882 (CHARACIFORMES, PROCHILODONTIDAE). Tesis de Maestr&iacute;a em Acuicultura. Universidade Federal de Santa Catarina. Brasil. 1999; pp. 83.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0121-3709201000010000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Kamler E. Early Life History of Fish: An Energetic Approach. Chapman and Hall, London. 1992; pp. 288.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0121-3709201000010000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Kestemont P, Jourdan S, Houbart C, Paspatis M, Fontaine P, Cuvier A., Kentouri M., Baras E. Size heterogeneity, cannibalism and competition in cultured predatory fish larvae: biotic and abiotic influences. Aquaculture 2003; 227: 333-356.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0121-3709201000010000600026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Kibria G, Nugegoda D, Fairclough R, Lam P, Bradly A. Zooplankton: Its biochemistry and significance in aquaculture. NAGA, The Iclarm Quarterly 1997; 20(2): 8-14.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0121-3709201000010000600027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Layman CA, Winemiller K, Arlington AA, Jepsen DB. Body size and trophic position in a diverse tropical food web. Ecology 2005; 86(9): 2530-2535.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0121-3709201000010000600028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Legendre M, Kerdchuen N, Corraze G, Bergot P. Larval rearing of an African catfish Heterobranchus longiflis (Teleostei, Clariidae): effect of dietary lipids on growth, survival and fatty acid composition of fry. Aquat Living Resour 1995; 8: 355-363.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0121-3709201000010000600029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Luz R, Zaniboni E. Larvicultura do Mandi-amarelo Pimelodus maculatus Lac&eacute;p&eacute;de, 1803 (Siluriformes:Pimelodidae) em diferentes densidades de estocagem nos primeros d&iacute;as de Vida. R Bras Zootec 2002; 31(2): 560-565.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0121-3709201000010000600030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Medina V, Mira T, Ram&iacute;rez J, Otero A, Berruecos B, Cruz P. Efectos de diferentes inductores hormonales sobra la movilidad y velocidad esperm&aacute;tica del yaque (Leiarius marmoratus). En Memorias del IV congreso colombiano de acuicultura, Carmen de V&iacute;boral, Antioquia. Rev Colomb Cienc Pecu 2008; 21: 515.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0121-3709201000010000600031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Mira T, Murillo R, Ram&iacute;rez J, Otero A, Zapata B, Medina V, Cruz P. Ensayos preliminares de reproducci&oacute;n inducida de yaque Leiarius marmoratus con extracto de hip&oacute;fisis de carpa. En memorias del IV congreso colombiano de acuicultura, Carmen de V&iacute;boral, Antioquia. Rev Colomb Cienc Pecu 2008; 21: 517.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0121-3709201000010000600032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Mora JA, Kossowski C. Reproducci&oacute;n inducida del bagre yaque, Leiarius marmoratus (Gil 1870) con aplicaci&oacute;n de LHRHa. Memorias 13er Congreso Venezolano de Producci&oacute;n e Industria Animal. Asoc. Venezolana de Producci&oacute;n e Industria Animal y Universidad R&oacute;mulo Gallegos, San Juan de Los Morros, Venezuela. 2006.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0121-3709201000010000600033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Moyano FJ, D&iacute;az M, Alarc&oacute;n FJ, Sarasquete MC. Characterization of digestive enzymes activity during larval development of gilthead seabream (Sparus aurata). Fish Physiol. Biochem 1996; 15: 121-130.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0121-3709201000010000600034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>NASS (National Agricultural Statistics Service). Catfish Processing Report: catfish production 2005. Agricultural Statistics Board, Department of Agriculture. Washington D.C., USA. 2005.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0121-3709201000010000600035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Novoa D. Los recursos pesqueros del eje fluvial Orinoco-Apure: presente y futuro. Instituto Nacional de Pesca y Acuicultura. Ed. 3XLIBRIS. Caracas, Venezuela. 2002.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0121-3709201000010000600036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Novoa JD, Cata&ntilde;o YM. Descripci&oacute;n del desarrollo embrionario y larvario del blanquillo Sorubim cuspicaudus (Littmann, Burr & Nass, 2000). Trabajo de grado en Medicina Veterinaria [2005]. Se localiza en la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad de C&oacute;rdoba.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0121-3709201000010000600037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Nu&ntilde;ez J, Duqu&eacute; R, Corcuy Arana N, Duponchelle F, Renno J, Raynaud T et al. Induced breeding and larval rearing of Surub&iacute;, Pseudoplatystoma fasciatum (Linnaeus, 1766), from the Bolivian Amazon. Aquac Res 2008; 39: 764-776.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0121-3709201000010000600038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Padilla PP, Alc&aacute;ntara BF, Ismi&ntilde;o OR. Reproducci&oacute;n inducida de la doncella Pseudoplatystoma fasciatum y desarrollo embrionario - larval. Folia Amaz&oacute;nica 2001; 12(1-2): 142 - 154.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0121-3709201000010000600039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Pienaar AG. A study of coeval sibling cannibalism in larval and juvenile fishes and its control under culture conditions. Dissertação (Mestrado). Rhades University, Grahamstown 1990.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0121-3709201000010000600040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Pineda SH. Recursos gen&eacute;ticos promisorios en peces colombianos de agua dulce. Rev Colomb Cienc Pecu 2002; 15(3): 368-372.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0121-3709201000010000600041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Ram&iacute;rez G, Ajiaco MR. Aspectos preliminares de la biolog&iacute;a pesquera del yaque, Leiarius marmoratus (Gill, 1870) (Pisces:Siluriformes: Pimelodiade) en la parte alta del r&iacute;o Meta (Orinoqu&iacute;a colombiana). Bol. Cien. INPA 1997; 5: 9-26.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0121-3709201000010000600042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>S&aacute;nches PV, Nakatani y Bialetzki A. Morphological description of the developmental stages of Parauchenipterus galeatus (Linnaeus, 1766) (Siluriformes, Auchenipteridae) on the floodplain of the upper Paran&aacute; river. Rev. Brasil. 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Fish., Tokyo. 1970; 36: 353-368.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0121-3709201000010000600045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Smerman W, Diaz- Castro JG, De Toledo JJ, Santos de Rosa CA, Suelde de Godoi D. Larvicultura de Pintado (pseudoplatystoma SP) em Alta Floresta -Mato Grosso. Revista de Biologia e Ciencias da Terra. 2002; 2(1): 1-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0121-3709201000010000600046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Villadiego P, Ortiz-Villafa&ntilde;e E, Atencio-Garcia. Evaluaci&oacute;n del r&eacute;gimen alimentario del bagre blanco, Sorubim cuspicaudus. (Pisces: Siluriformes) En el Bajo Ri&oacute; Sin&uacute;. Dahlia- Rev. Asoc. Col. Ictiol 2004; 7:1321.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0121-3709201000010000600047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Thanh L, Tuan AN, Cacot P, Lazard J. Larval rearing of the asian catfish, Pangasius bocourti (Siluroidei, Pangasiidae): alternative feeds and weaning time. Aquaculture 2002; 212: 115-127.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0121-3709201000010000600048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Zaniboni-Filho E, Kennedy J, Reynalte-Tataje A. Desenvolvimiento embrionario e est&aacute;gios larvais do mandi-amarello Pimelodus maculatus. B Inst Pesca, S&aacute;o Paulo 2001; 27(1):49-55.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S0121-3709201000010000600049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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