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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Reproducción inducida de Capaz (Pimelodus grosskopfii) con extracto de hipófisis de carpa: reporte preliminar]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In order to evaluate a protocol for induced breeding of Capaz Pimelodus grosskopfii, male and female in advanced stated of maturity were selected, it was evaluated in males by semen emission faced with a slight pressure in the coelomic cavity, and in females by the position of nucleus and oocyte diameter obtained through ovarian biopsy. As a final maturation inducer was used carp pituitary extract (CPE), with a single dose of 4 mg kg-1 for males and 5.75 mg.kg-1 (three doses) for females. Since the last dose of the female until ovulation, the water temperature was recorded to determine the latency time; the semen was taken 9 hours (h) after the last dose of the male. Females ovulated at 7 ± 0.2 hours on water temperature of 27.9 ± 0.2 °C. Reproductive fecundity was 14 800 ± 1000 ovocytes per female. Fertility was 90 ± 10 %, it was evaluated at 6 hours post fertilization (HPF) and the hatching rate of 80 ± 15 was observed at 12 HPF. These preliminary results permit to conclude that the CPE is effective in inducing final maturation of the species in captivity and therefore this becomes an alternative for diversification of pisciculture in Colombia.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="Verdana">     <p align="right"><strong>Art&iacute;culo Original /Original Article</strong></p> </font>     <p align="center"><font size="4" face="Verdana"><strong>Reproducci&oacute;n inducida de Capaz   (Pimelodus grosskopfii) con extracto de   hip&oacute;fisis de carpa: reporte preliminar</strong></font></p>      <p align="center"><font size="3" face="Verdana"><strong>  Induced breeding of Capaz (Pimelodus grosskopfii)   with carp pituitary extract: preliminary report</strong></font></p> <font size="2" face="Verdana">     <p align="center">&nbsp;</p>     <p>         <strong>Rub&eacute;n D. Valbuena - Villarreal<sup>1</sup>, Beatriz E. Zapata-Berruecos<sup>1</sup>    Pablo E. Cruz-Casallas<sup>2</sup></strong></p>     <p>  <sup>1</sup> Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, Universidad Surcolombiana, Neiva, Colombia.</p>     <p>  <sup>2</sup> Grupo de Investigaci&oacute;n sobre Reproducci&oacute;n y Toxicolog&iacute;a de Organismos Acu&aacute;ticos - GRITOX, Instituto de   Acuicultura, Facultad de Ciencias Agropecuarias y Recursos Naturales, Universidad de los Llanos,   Villavicencio, Colombia. Email:<a href="mailto:rubendario@usco.edu.co">rubendario@usco.edu.co</a></p>     <p><em>Recibido: Abril 22 de 2009. Aceptado: Octubre 15 de 2010</em></p> <hr /> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>  RESUMEN</strong></font></p> <font size="2" face="Verdana">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  Con el prop&oacute;sito de evaluar un protocolo para la reproducci&oacute;n inducida de capaz Pimelodus grosskopfii, fueron   seleccionados machos y hembras en estado de madurez sexual avanzada, evaluada en los machos por emisi&oacute;n   de semen ante una leve presi&oacute;n sobre la cavidad cel&oacute;mica y en las hembras por el di&aacute;metro de los ovocitos y la   posici&oacute;n del n&uacute;cleo, obtenidos por medio de biopsia ov&aacute;rica. Como inductor a la maduraci&oacute;n final de las g&oacute;nadas   se utiliz&oacute; extracto de hip&oacute;fisis de carpa (EHC), en dosis &uacute;nica de 4 mg kg<sup>-1</sup> para machos y 5.75 mg kg<sup>-1</sup> (tres   inyecciones) para hembras. A partir de la &uacute;ltima inyecci&oacute;n de la hembra y hasta la ovulaci&oacute;n, se registr&oacute; la   temperatura del agua para determinar el tiempo de latencia. El semen fue extra&iacute;do 9 h despu&eacute;s de la administraci&oacute;n   de la hormona. Las hembras ovularon a las 7 &plusmn; 0.2 h a una temperatura del agua de 27.9&plusmn;0.2&deg;C. La fecundidad   reproductiva fue de 14800&plusmn;1000 ovocitos por hembra, la fertilidad de 90&plusmn;10 %, evaluada 6 h post-fertilizaci&oacute;n   (HPF) y el porcentaje de eclosi&oacute;n de 80&plusmn;15 observada a las 12 HPF. Con estos resultados preliminares se   concluye que el EHC es efectivo para inducir la maduraci&oacute;n final de las g&oacute;nadas en esta especie bajo condiciones   de cautiverio y, en consecuencia, se convierte en una alternativa para manipular su reproducci&oacute;n en cautiverio y   contribuir a la diversificaci&oacute;n de la piscicultura colombiana.</p> </font>     <p>  <font size="2" face="Verdana"><strong><font size="3">Palabras claves:</font></strong> Capaz, extracto de hip&oacute;fisis de carpa, Pimelodus grosskopfii, reproducci&oacute;n inducida.</font></p> <font size="2" face="Verdana"> <hr /> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>  ABSTRACT</strong></font></p> <font size="2" face="Verdana">     <p>  In order to evaluate a protocol for induced breeding of Capaz Pimelodus grosskopfii, male and female in advanced   stated of maturity were selected, it was evaluated in males by semen emission faced with a slight   pressure in the coelomic cavity, and in females by the position of nucleus and oocyte diameter obtained through   ovarian biopsy. As a final maturation inducer was used carp pituitary extract (CPE), with a single dose of 4 mg   kg<sup>-1</sup> for males and 5.75 mg.kg<sup>-1</sup> (three doses) for females. Since the last dose of the female until ovulation, the   water temperature was recorded to determine the latency time; the semen was taken 9 hours (h) after the last   dose of the male. Females ovulated at 7 &plusmn; 0.2 hours on water temperature of 27.9 &plusmn; 0.2 &deg;C. Reproductive   fecundity was 14 800 &plusmn; 1000 ovocytes per female. Fertility was 90 &plusmn; 10 %, it was evaluated at 6 hours post fertilization (HPF) and the hatching rate of 80 &plusmn; 15 was observed at 12 HPF. These preliminary results permit to   conclude that the CPE is effective in inducing final maturation of the species in captivity and therefore this   becomes an alternative for diversification of pisciculture in Colombia.</p> </font>     <p><font size="2" face="Verdana"><strong> <font size="3">Key words:</font></strong> Capaz, carp pituitary extract, induced breeding, Pimelodus grosskopfii.</font></p> <font size="2" face="Verdana"> <hr /> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N</strong></font></p> <font size="2" face="Verdana">     <p>  El Capaz (Pimelodus grosskopfii), tambi&eacute;n conocido   como barbudo (Maldonado-Ocampo <i>et al</i>., 2005) es un   pez de la familia Pimelodidae, de h&aacute;bitos alimenticios   omn&iacute;voros (Cala, 1996), que se encuentra distribuido   en las cuencas de los r&iacute;os Magdalena, Cauca, San   Jorge, Sin&uacute;, Cesar, Atrato, Baud&oacute; y Catatumbo (Dahl,   1971; Mojica <i>et al</i>., 2002), as&iacute; como en los embalses   de Betania (Huila) y Prado (Tolima) (Villa-Navarro, 1999).   En Colombia se ha generado un creciente inter&eacute;s por   especies del orden Siluriformes, especialmente de esta   familia, debido a la buena aceptaci&oacute;n comercial de su   carne, a su alto valor en el mercado y por su importancia   en la acuariofilia. Los Siluriformes, de acuerdo con su   tama&ntilde;o, se han agrupado en grandes, medianos y de   peque&ntilde;o porte. Dentro de este &uacute;ltimo grupo, de las   especies m&aacute;s conocidas es el capaz (Pimelodus   grosskopfii), considerado en la lista de las 30 especies   de inter&eacute;s comercial para la cuenca del r&iacute;o Magdalena   (Pesca y Acuicultura, 2006); adem&aacute;s ha sido declarada   como especie en peligro de extinci&oacute;n por la disminuci&oacute;n   de sus capturas y tallas en esta cuenca, como   consecuencia de la sobrepesca y deterioro ambiental   de la misma (Mojica <i>et al</i>., 2002).</p>     <p>  A nivel nacional el cultivo de bagres no se ha desarrollado   comercialmente debido en parte a limitaciones   tecnol&oacute;gicas para la producci&oacute;n estable y continua de   alevinos. El desarrollo de esta tecnolog&iacute;a debe superar   problemas en las diferentes etapas de este proceso   como: selecci&oacute;n y manejo de reproductores,   reproducci&oacute;n inducida, larvicultura y alevinaje. El capaz   P. grosskopfii es una especie que no se reproduce en   cautiverio de forma espont&aacute;nea, ya que esta funci&oacute;n   est&aacute; condicionada al proceso de migraci&oacute;n ascendente   o reproductiva que es dirigida hacia la parte alta del r&iacute;o   Magdalena y sus afluentes (Useche y Avil&eacute;s, 2001).   Por lo tanto es necesario el empleo de inductores   hormonales ex&oacute;genos para inducir la maduraci&oacute;n final   de sus g&oacute;nadas y lograr la obtenci&oacute;n de gametos   (Castagnolli, 1992).</p>     <p>  Por lo anterior, el objetivo del presente trabajo fue evaluar   un protocolo para la reproducci&oacute;n inducida de capaz   (P. grosskopfii) mediante la utilizaci&oacute;n de extracto de   hip&oacute;fisis de carpa (EHC).</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong> MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</strong></font></p> <font size="2" face="Verdana">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><strong> Localizaci&oacute;n</strong></p>     <p>  El ensayo fue realizado en la Estaci&oacute;n Pisc&iacute;cola &quot;Piedra-   Pintada&quot; de la Central de Cooperativas de Caficultores   del Huila (CENTRACAFE), ubicada en el municipio de   Aipe, departamento del Huila, localizada a una altura de   390 msnm, con temperatura promedio anual de 29.5 &deg;C.</p>     <p>  <strong>Adaptaci&oacute;n y manejo de reproductores</strong></p>     <p>  Los ejemplares utilizados fueron capturados en la represa   Betania, ubicada en el departamento del Huila.   Inmediatamente despu&eacute;s de capturados, los ejemplares   fueron trasladados a la granja experimental en donde se   alojaron en estanques en tierra de 500 m<sup>2</sup> preparados   previamente, conservando una densidad de 300 g m<sup>2</sup>.   Durante el periodo de adaptaci&oacute;n (dos meses) los peces   fueron acostumbrados al consumo de dieta seca   mediante el suministro de concentrado comercial para   peces, con un nivel proteico de 30 %, a una tasa de   alimentaci&oacute;n del 2 % del peso vivo (PV), suministrado   en dos raciones diarias.</p>     <p><strong> Selecci&oacute;n de reproductores</strong></p>     <p>  Despu&eacute;s de la adaptaci&oacute;n y acostumbramiento de los   reproductores se inici&oacute; la conformaci&oacute;n del lote de   reproductores utilizados en el proceso de inducci&oacute;n hormonal.   La selecci&oacute;n se hizo de la siguiente manera:</p>     <p><strong>Preselecci&oacute;n en el estanque</strong></p>     <p>  Durante el proceso de pesca se realiz&oacute; una   preselecci&oacute;n, teniendo como criterio el tama&ntilde;o, el cual   constituye una caracter&iacute;stica de dimorfismo sexual,   siendo los machos de menor talla que las hembras.   Una vez realizada la preselecci&oacute;n, los reproductores   fueron trasladados a piletas circulares de concreto   de 2000 l con recambio de agua permanente.</p>     <p><strong>Selecci&oacute;n de reproductores</strong></p>     <p>  Fueron seleccionados machos y hembras en estado   de madurez sexual avanzada. A las hembras   preseleccionadas les fue practicada una biopsia   ov&aacute;rica para obtener una muestra de 50 &plusmn; 6 oocitos,   con el fin de evaluar en ellos el estado de madurez   gonadal, con base en la posici&oacute;n de la ves&iacute;cula germinal,   observada despu&eacute;s de la aclaraci&oacute;n del cori&oacute;n   con soluci&oacute;n Serra (alcohol et&iacute;lico 85 %, formol 10 %,   acido ac&eacute;tico glacial 5 %), y el di&aacute;metro oocitario   (<a href="#(tab1)">Tabla 1</a>) utilizando una reglilla adaptada a un   estereoscopio (Vazzoler, 1996). Las hembras que   presentaron m&aacute;s del 20 % de las ves&iacute;culas germinales   migrando fueron seleccionadas para la inducci&oacute;n.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="(tab1)"><img src="img/revistas/rori/v14n2/v14n2a03tab1.gif"></a></p>     <p>  Con relaci&oacute;n a los machos se seleccionaron aquellos   que mostraron emisi&oacute;n de semen ante leve presi&oacute;n   cr&aacute;neo caudal de las paredes de la cavidad cel&oacute;mica.   Con base en ese criterio se seleccionaron 30   individuos, los cuales fueron alojados en piletas   circulares de concreto con aireaci&oacute;n permanente y   una columna de agua de 20 cm, en proporci&oacute;n 1:1   machos y hembras.</p>     <p>Durante el proceso de selecci&oacute;n mencionado, los   reproductores fueron tranquilizados mediante inmersi&oacute;n   en una soluci&oacute;n 60 ppm de MS-222 (Tricaina   metanosulfonato) (McFarland, 1969). Bajo esa   condici&oacute;n, fueron pesados, medidos, marcados,   trasladados en camillas de lona y alojados en piletas   circulares de cemento de 2000 l, con aireaci&oacute;n permanente.</p>     <p><strong> Protocolo de inducci&oacute;n</strong></p>     <p>  Como inductor de la maduraci&oacute;n final de las g&oacute;nadas   se utiliz&oacute; extracto de hip&oacute;fisis de carpa liofilizado (EHC)   disuelto en suero fisiol&oacute;gico (0,9 %), en dosis total de   5,75 y 4 mg kg<sup>-1</sup> de peso vivo (PV), para hembras y   machos respectivamente (<a href="#(tab2)">Tabla 2</a>), administrado   intramuscularmente en la base de la aleta dorsal. Durante   el periodo de latencia, a partir de la aplicaci&oacute;n de   la &uacute;ltima inyecci&oacute;n de hormona, se midi&oacute; la temperatura del agua cada hora.</p>     <p align="center"><a name="(tab2)"><img src="img/revistas/rori/v14n2/v14n2a03tab2.gif"></a></p>     <p><strong> Desempe&ntilde;o reproductivo</strong></p>     <p>  El desempe&ntilde;o reproductivo se determin&oacute; mediante el   &iacute;ndice de ovulaci&oacute;n, fecundidad absoluta, tasa de   fertilizaci&oacute;n y tasa de eclosi&oacute;n (<a href="img/revistas/rori/v14n2/v14n2a03tab3.gif" target="_blank">Tabla 3</a>). Se consider&oacute;   como &iacute;ndice de ovulaci&oacute;n el n&uacute;mero de hembras   ovuladas sobre el n&uacute;mero total de las hembras tratadas   (&iacute;ndice de ovulaci&oacute;n = hembras ovuladas/hembras   tratadas). El momento de la ovulaci&oacute;n se determin&oacute;   cuando ocurri&oacute; liberaci&oacute;n de oocitos despu&eacute;s de suave   presi&oacute;n y masaje en sentido cr&aacute;neo-caudal sobre la   pared de la cavidad cel&oacute;mica. Inmediatamente despu&eacute;s,   se procedi&oacute; al estrujamiento de la hembra para obtener   el desove total. Los huevos fueron colectados en un   recipiente pl&aacute;stico seco y posteriormente pesados en   una balanza anal&iacute;tica 5000D-12000G (&plusmn;0.1 g). La   fertilizaci&oacute;n se realiz&oacute; en seco y la incubaci&oacute;n de los   huevos se llev&oacute; a cabo en incubadoras cil&iacute;ndrico   c&oacute;nicas de 60 l de capacidad, con un flujo de agua de 3 l.min-1 En cada una se colocaron 15 g de huevos   hidratados. Durante la incubaci&oacute;n se registr&oacute; la temperatura   (&deg;C) del agua y del ambiente y la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno disuelto (OD) (mg/l) y el pH (<a href="#(tab4)">Tabla 4</a>).</p>     <p align="center"><a name="(tab4)"><img src="img/revistas/rori/v14n2/v14n2a03tab4.gif" /> </p>     <p>A las 6 horas post-fertilizaci&oacute;n (HPF) se midi&oacute; la tasa de   fertilizaci&oacute;n, consider&aacute;ndose como huevos fertilizados   aquellos que presentaron aspecto trasl&uacute;cido y divisiones   sim&eacute;tricas en el polo animal; los no fertilizados se   identificaron por presentar coloraci&oacute;n blanquecina   (Contreras y Contreras, 1995). De la misma forma fue   estimada la tasa de eclosi&oacute;n, medida entre las 11 y 12 HPF.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  Para calcular la fecundidad absoluta, de cada hembra se   pes&oacute; la cantidad (g) de oocitos desovados; luego se tom&oacute;   una muestra de c.a. 1.0 g y se fij&oacute; en formol al 10 % para   su posterior conteo. La fecundidad absoluta fue estimada   mediante la siguiente f&oacute;rmula (Laevastu, 1980):</p>     <p align="center"><a name="#(for1)"><img src="img/revistas/rori/v14n2/v14n2a03for1.gif"></a></p>     <p>  Donde</p>     <p>  F = Fecundidad (n&uacute;mero de huevos desovados por hembra)</p>     <p>  n = N&uacute;mero de ovocitos en la muestra</p>     <p>  G= Peso (g) de los ovocitos desovados por hembra</p>     <p>  g = Peso (g) de la sub muestra</p>     <p>  El semen tambi&eacute;n se obtuvo mediante masaje en sentido   cr&aacute;neo-caudal con la diferencia que este se recogi&oacute; con   ayuda de una sonda, debido a la poca cantidad producida   (15 &plusmn; 5 &mu;l).</p>     <p><strong>  Analisis estadistico</strong></p>     <p>  Todas las variables evaluadas fueron procesadas a trav&eacute;s   de estad&iacute;stica descriptiva y expresada como media &plusmn;   desviaci&oacute;n est&aacute;ndar de la media (DE). El efecto de la   inducci&oacute;n hormonal sobre el di&aacute;metro oocitario fue   realizado a trav&eacute;s de an&aacute;lisis de varianza (ANOVA), donde   p&lt;0,05 fue utilizado como criterio estad&iacute;stico para revelar   diferencias significativas. Los datos fueron analizados   con el software SAS para Windows (Statistic Analysis   System) versi&oacute;n 8.02 (1999-2001 por SAS Institute Inc.,   Cary, NC, USA).</p> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3" face="Verdana"><strong>  RESULTADOS</strong></font></p> <font size="2" face="Verdana">     <p>  El peso promedio de las hembras inducidas fue de 400 &plusmn;   53 g y longitud total de 39&plusmn;3 cm, mientras que en los   machos el peso total fue de 189&plusmn;15 g y la longitud total   de 29&plusmn;4 cm; evidenci&aacute;ndose que las hembras presentan   tallas y pesos superiores a los machos.</p>     <p>  La biopsia ov&aacute;rica mostr&oacute; que las hembras seleccionadas   para el tratamiento hormonal presentaron un alto   porcentaje de ovocitos con n&uacute;cleos centrales (<a href="#(tab1)">Tabla 1</a>).   Para el caso del di&aacute;metro promedio de los ovocitos pre   inducci&oacute;n y post inducci&oacute;n (904&plusmn;54.4 y 1240&plusmn;44.5   respectivamente), hubo diferencia significativa (p&lt;0.05).   Los par&aacute;metros de calidad de agua, determinados a lo   largo del ensayo se presentan en la <a href="img/revistas/rori/v14n2/v14n2a03tab4.gif" target="_blank">Tabla 4</a>. La   temperatura, el OD y el pH se mantuvieron   relativamente constantes durante los ensayos, tanto   en las piletas de alojamiento de los reproductores,   como en el sistema de incubaci&oacute;n.</p>     <p>  La <a href="img/revistas/rori/v14n2/v14n2a03tab3.gif" target="_blank">Tabla 3</a> muestra los valores del &iacute;ndice de ovulaci&oacute;n,   la tasa de fertilizaci&oacute;n, la tasa de eclosi&oacute;n y el tiempo   de latencia a la ovulaci&oacute;n. El &iacute;ndice de ovulaci&oacute;n de   las hembras tratadas fue de 93.3 % y la fecundidad   absoluta, expresada en gramos de ovocitos/hembra,   fue de 10&plusmn;5.</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>DISCUSI&Oacute;N</strong></font></p> <font size="2" face="Verdana">     <p>  En este estudio, las hembras presentaron tallas y pesos   corporales superiores que los machos, similar a lo   reportado por Leonardo <i>et al</i>. (2004) y Resende <i>et al</i>.   (1995) en otra especie del mismo orden de Siluriformes   (Pseudoplatystoma fasciatum). Este dimorfismo tambi&eacute;n   fue encontrado en Rhamdia hilarii por Narahara <i>et al</i>.   (1985) y en Pseudoplatystoma corruscans (Resende <i>et al</i>., 1995). Seg&uacute;n Cala <i>et al</i>. (1996), Cala (1997) y   Rodr&iacute;guez y P&eacute;rez (1992), en P. grosskopfii no se observa   dimorfismo sexual externo definido; sin embargo, las   hembras son generalmente m&aacute;s grandes que el macho.</p>     <p>  Se observ&oacute; un aumento significativo del di&aacute;metro oocitario   despu&eacute;s de la inducci&oacute;n hormonal, lo cual corrobora los   hallazgos de Kunkel y Flores (1996) y Romagosa <i>et al</i>.   (2000) en P. corruscans y P. fasciatum, encontrando que   este aumento de di&aacute;metro es indicaci&oacute;n de maduraci&oacute;n final de los oocitos.</p>     <p>  Estudios en P. fasciatum se&ntilde;alan un di&aacute;metro oocitario   pre inducci&oacute;n de 939.2&plusmn;83.4 &mu;m y post inducci&oacute;n de   1625&plusmn;153 &mu;m (Mira <i>et al</i>., 2007). Por su parte, Leonardo   <i>et al</i>. (2004) reportaron di&aacute;metro oocitario pre-inducci&oacute;n   de 937.5 &mu;m para la misma especie e indicaron que todas   las hembras en su primera maduraci&oacute;n gonadal cuyos   oocitos presentaron esta medida, respondieron   satisfactoriamente a la inducci&oacute;n con EHC y hGG (gonadotropina cori&oacute;nica humana).</p>     <p>  El per&iacute;odo de latencia en este estudio fue 7 &plusmn;0.2 h a   27.9&plusmn;0.2&deg;C, similar a lo encontrado por S&aacute;nchez (2002)   para la misma especie (8.3 h a 26&ordm;C). El momento de   extracci&oacute;n de los oocitos en peces inducidos con   hormonas ex&oacute;genas influye de manera importante sobre   la fertilidad, la supervivencia del embri&oacute;n, tasas de eclosi&oacute;n   y el &eacute;xito del desarrollo larval (Mylonas <i>et al</i>. 1992).</p>     <p>  La fecundidad encontrada en este estudio fue de   14800&plusmn;1000 ovocitos desovados, similar a lo encontrado   para la misma especie por Useche (2001), lo cual confirma   que por la cantidad de oocitos producidos no existe   cuidado parental (S&aacute;nchez, 2002; Rodr&iacute;guez y P&eacute;rez, 1992).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  En cuanto a los machos, la producci&oacute;n de esperma fue   baja como en muchas especies de sil&uacute;ridos, en virtud   que la respuesta a los inductores es baja o a   caracter&iacute;sticas anat&oacute;micas de las g&oacute;nadas que dificultan   su liberaci&oacute;n, haciendo necesario muchas veces la   obtenci&oacute;n del semen directamente de los test&iacute;culos por   medio de cirug&iacute;a o sacrificio del animal (Nguenga <i>et al</i>.,   1996; Viveiros <i>et al</i>., 2002; Castillo <i>et al</i>., 2003).</p>     <p>Los ejemplares tratados respondieron favorablemente a   la inducci&oacute;n hormonal con EHC, observ&aacute;ndose para   hembras un &iacute;ndice de ovulaci&oacute;n 93.3 %. En conclusi&oacute;n,   el protocolo utilizado es efectivo para P. grosskopfii   obteniendo oocitos de buena calidad, aptos para ser fecundados y con un buen porcentaje de fertilidad.</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>REFERENCIAS</strong></font></p> <font size="2" face="Verdana">     <!-- ref --><p>  Cala P, Perez C, Rodr&iacute;guez I. Aspectos bioecol&oacute;gicos   de la poblaci&oacute;n de capaz, Pimelodus grosskopffi   (pices:pimelodidae), en el embalse de Betania y parte   alta del r&iacute;o Magdalena, Colombia. Revista de la   academia colombiana de ciencias 1996; Vol. XX   Numero 77.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0121-3709201000020000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  Cala P. Espermatog&eacute;nesis y ciclo anual reproductivo   del capaz, Pimelodus grosskopfii (pices:pimelodidae)   en el alto r&iacute;o Magdalena, Colombia. Caldasia 1997;   Vol. 19, n&uacute;meros 1-2.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0121-3709201000020000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  Castagnolli N. Cria&ccedil;&atilde;o de peixes de &aacute;gua doce. Campus   de Jaboticabal, Faculdade de Ci&ecirc;ncias Agr&aacute;rias e   Veterin&aacute;rias. Trabajo de grado.FUNEP 1992.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0121-3709201000020000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  Castillo JAM, Ram&iacute;rez LR, Rodr&iacute;guez PJA. Ensayos de   reproducci&oacute;n y alevinaje en Yaque Leiarius marmoratus   (Gill, 1870) (Pises:Siluriformes:Pimelodidae) en la   Orinoquia Colombiana. Memorias IV Seminario   Internacional de Acuicultura I Congreso Nacional de   Investigaciones Acu&iacute;colas, Bogot&aacute;, Colombia 2003.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0121-3709201000020000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  Contreras PJ, Contreras J. Reproducci&oacute;n inducida de   peces tropicales. En: Rodr&iacute;guez H., Polo G., Salazar   G (Eds). Fundamentos de Acuicultura Continental.   INPA. Santaf&eacute; de Bogot&aacute;, Colombia 1995; 127-138.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0121-3709201000020000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  Dahl G. Los peces del norte de Colombia. Bogot&aacute;,   INDERENA. 1971; 391.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0121-3709201000020000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  Kunkel H, Flores S. Estructura histol&oacute;gica de los   ovarios de Pseudoplatystoma corruscans (AGASSIZ,   1829) Pimelodidae, Siluriformes. Bol. Inst. Pesca 1996;   23: 203-212.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0121-3709201000020000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  Laevastu T. Manual de m&eacute;todos de biolog&iacute;a pesquera.   Zaragoza, Espa&ntilde;a 1980; 243.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0121-3709201000020000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  Leonardo GAF, Romagosa E, Borella MI, Batlouni   SR. Induced spawning of hatchery-raised Brazilian   catfish, cachara Pseudoplatystoma fasciatum (Linnaeus, 1766). Aquaculture 2004; 240:451-61.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0121-3709201000020000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  Mira T, Castro SR, Medina-Robles VM, Murillo RP,   Otero-Paternina AM, Ramirez-Merlano JA, Zapata-   Berruecos BE, Velasco-Santamaria YM, Cruz-   Casallas PE. Ensayos preliminares de reproduccion   inducida de bagre rayado Pseudoplatystoma fasciatum   com extracto de hipofisis de carpa. En memorias de   XIII Jornada de Acuicultura, Universidad de los llanos. 2007; 67-69.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0121-3709201000020000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  Maldonado-Ocampo P. Peces de los Andes de Colombia.   Instituto de Investigaci&oacute;n de Recursos   Biol&oacute;gicos Alexander von Humboldt. Editorial Ramos L&oacute;pez, Bogot&aacute;. 2005.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0121-3709201000020000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  Mojica JI, Castellanos C, Usma JS, &Aacute;lvarez-Le&oacute;n R.   Libro rojo de peces dulceacu&iacute;colas de Colombia.   Instituto de Ciencias Naturales, Universidad de Colombia.   Ministerio del Medio Ambiente. Editorial Panamericana, Bogot&aacute; 2002.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0121-3709201000020000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  McFarland WN, Klontz GW. Anesthesia in fishes.   Federal Proceedings 1969; 1535-1540.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0121-3709201000020000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  Mylonas CC, Hinshaw JM, Sullivan CV. GnRHa-induced   ovulation of brown trout (Salmo trutta) and its   effects on egg quality. Aquaculture 1992; 106: 379- 392.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0121-3709201000020000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  Narahara MY, Godinho HM, Romagosa E. Estrutura   da popula&ccedil;&atilde;o de Rhamdia hilarii (Val. 1840)   (Osteichthyes, Siluriformes, Pimelodidae). Bol. Inst. Pesca 1985; 12:123-137.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0121-3709201000020000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  Nguenga D, Breine JJ, Teugels GG, Ollevier F. Artificial   propagation of the African catfish Heterobranchus longifilis   (Siluridei; Clariidae): Description of a simple technique   to avoid sacrificing male broodfish for the obtention of milt. Aquaculture 1996; 143:215-217.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0121-3709201000020000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  Pesca y Acuicultura. Corporaci&oacute;n Colombia Internacional- INCODER. Colombia 2006.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0121-3709201000020000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">Resende EK, Catela AC, Nascimento F L , Palmeira SS, Pereira RAC, Lima MS, Almeida VLL. Biologia do curimbat&aacute; (Prochilodus lineatus), pintado (Pseudoplatystoma coruscans) e cachara (Pseudoplatystoma fasciatum) na bacia hidrogr&aacute;fica do r&iacute;o Miranda, Pantanal do Mato Grossodo Sul, Brasil, Corumb&aacute;, MS EMBRAPA CPAP. Boletin de pesquisa 1995; 2:75.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0121-3709201000020000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Rodr&iacute;guez RI, Perez M. Contribuci&oacute;n al conocimiento de   la biolog&iacute;a del capaz Pimelodus grosskopfii en el embalse   de Betania r&iacute;o Magdalena. Trabajo pregrado. Universidad Nacional de Colombia. Bogot&aacute; 1992.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0121-3709201000020000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  Romagosa E, Andrade-Talmelli EF, Paiva P, Godinho   HM, Batlouni SR. Observa&ccedil;&otilde;es preliminares sobre o   comportamento reprodutivo das f&ecirc;meas de cachara,   Pseudoplatystoma fasciatum, na regi&atilde;o do Vale do Ribeira,   SP, em condi&ccedil;&otilde;es de confinamento. Braz. J. Morphol. Sci.   2000; 17:224 (Suplemento).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0121-3709201000020000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  S&aacute;nchez -argas A. Ensayos preliminares de inducci&oacute;n a   la ovulaci&oacute;n y desove con dos agentes hormonales EPC y   LH-RHa y seguimiento del desarrollo embrionario del capaz   Pimelodus grosskopfii. Tesis pregrado. Universidad   Nacional de Colombia. Santa f&eacute; de Bogot&aacute; 2002.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0121-3709201000020000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">  Useche-Lopez CA, Aviles Bernal M. Validaci&oacute;n del   protocolo de reproducci&oacute;n inducida y caracterizaci&oacute;n del   desarrollo de los sistemas digestivo y gonadal del capaz   P. grosskopfii, especie promisoria para la acuicultura en   el alto Magdalena. Instituto Nacional de Pesca y   Acuicultura. Centro de investigaciones de acuicultura Alto   Magdalena. Gigante-Huila 2001. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0121-3709201000020000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">Vazzoler AEA. Biolog&iacute;a da reprodu&ccedil;&atilde;o artificial de peixes   tele&oacute;steos: teoria e practica. Maring&aacute;-PR, Brasil. Editora   da Universidade Estatal de Maring&aacute;1996.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0121-3709201000020000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> Villa-Navarro F. A. Estudio biol&oacute;gico pesquero de la represa   de Prado para la determinaci&oacute;n de especies promisorias   en acuicultura. Presentado a Universidad del Tolima,   Cortolima, INPA, Gobernaci&oacute;n del Tolima y Comit&eacute;   Departamental de Cafeteros del Tolima. Universidad del   Tolima. Ibagu&eacute;, Colombia 1999.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0121-3709201000020000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Viveiros ATM, Fessehaye Y, ter Veld M, Schulz RW, Komen   J. Handstripping of semen and semen quality after maturational   hormone treatments, in African catfish Clarias   gariepinus. Aquaculture 2002; 213:373-386.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0121-3709201000020000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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