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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Presencia de anticuerpos a los Herpes Virus Equino 1 y 4 en la Orinoquia Colombiana]]></article-title>
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<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Presença de anticorpos contra Herpes Vírus Equino 1 e 4 no Orinoco Colombiano]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[This study was aimed at evaluating the presence of equineherpes virus 1 (EHV-1) and 4 (EHV-4) antibodies in equine populations from the Colombian Orinoco region. Cross-sectional serological sampling was thus used on horses (n: 260) from 6 localities in the region. An ELISA test was used for analysing the samples, using a commercial kit which discriminated antibodies regarding both viruses; 12.7% seropositivity was found for EHV-1 and 70.4% for EHV-4. All the horses found seropositive for EHV-1 were also seropositive for EHV-4. EHV-1 seropositivity by municipality was as follows: San Martin 34.6%, Arauca 10.4%, Puerto López 8.7%, Yopal 6.3%, San José del Guaviare 4.9% and Puerto Gaitán 4.0%. EHV-4 seropositivity for the same municipalities was 80.8%, 77.1%, 45.7%, 79.2%, 65.9%, 72.0%, respectively. The presence of antibodies against both viruses was identified, seropositivity being higher for EHV-4. These results showed the need for further studies aimed at a better understanding of the disease, its epidemiology and pattern in the aforementioned region.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[O objetivo deste estudo foi avaliar a presença de anticorpos aos vírus do herpes equino 1 (EHV-1) e 4 (EHV-4) em populações de equinos de Orinoco colombiano. Para este fim, uma amostragem serológica transversal foi realizado em cavalos (n = 260) a partir de 6 locais na região. As amostras foram analisadas por ELISA, utilizando um kit de anticorpos comerciais para discriminar os dois vírus. Serorreatividade foi encontrada em 12,7 % para EHV-1 e 70,4 % ao EHV-4. Todos os cavalos EHV-1 seropositivos foram também ao EHV-4. A seropositividade ao EHV-1 por município é: San Martin (34,6%), Arauca (10,4%) , Puerto López (8,7%), Yopal (6,3%), San José del Guaviare (4.9), Puerto Gaitán (4,0%); enquanto a EHV-4 foi de 80,8 % , 77,1 % , 45,7 % , 79,2 % , 65,9 % , 72,0 % para os mesmos municípios. A presença de anticorpos contra os dois vírus foram identificados, sendo maior seropositividade de EHV-4. Estes resultados demonstram a necessidade de estudos adicionais para compreender melhor a epidemiologia da doença e seu comportamento na região.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">          <p align="center"><font size="4"><b>Presencia de anticuerpos a los Herpes Virus Equino 1 y 4 en la Orinoquia Colombiana</b></font></p>     <p align="center"><font size="3"><b>The presence of antibodies against equineherpes virus 1 and 4 in the Colombian Orinoco region</b></font></p>     <p align="center"><font size="3"><b>Presen&ccedil;a de anticorpos contra Herpes V&iacute;rus Equino 1 e 4 no Orinoco Colombiano</b></font></p>     <p align="right"><b>Agust&iacute;n G&oacute;ngora-Orjuela<sup><a href="#1">1</a></sup>    <br>   Jorge L. Parra-Arango<sup><a href="#2">2</a></sup>    <br> Karl A. Ciuoderis<sup><a href="#3">3</a></sup></b></p>     <p><a href="#nr1" name="1">1</a> MV, MSc, PhD, Universidad de los Llanos, Grupo de Investigaci&oacute;n en Reproducci&oacute;n y Gen&eacute;tica Animal. Email: <a href="mailto:agongora@unillanos.edu.co">agongora@unillanos.edu.co</a>.    <br>   <a href="#nr2" name="2">2</a> MV, MSc, Corporaci&oacute;n Colombiana de Investigaci&oacute;n Agropecuaria-Corpoica. Centro de Investigaciones la Libertad-Villavicencio, Meta.    <br> <a href="#nr3" name="3">3</a> MVZ, Departamento de Ciencias Patobiol&oacute;gicas, Universidad de Wisconsin-Madison, Escuela de Medicina Veterinaria, Madison, WI 53706, USA.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Recibido: Septiembre 2 de 2013. Aceptado: Mayo 8 de 2014</p> <hr size="1" />              <p><b>Resumen</b></p>     <p>El objetivo de este estudio fue evaluar la presencia de anticuerpos a los Herpes virus equino 1 (EHV-1) y 4   (EHV-4) en las poblaciones de equinos de la Orinoquia Colombiana. Para tal efecto, se realiz&oacute; un muestreo   serol&oacute;gico transversal en equinos (n: 260) provenientes de 6 localidades de la regi&oacute;n. Las muestras fueron   analizadas mediante la prueba de ELISA usando un kit-comercial que discrimina anticuerpos frente a los   dos virus. Se encontr&oacute; una seropositividad en la poblaci&oacute;n evaluada de 12.7% para EHV-1 y de 70.4%   para EHV-4. Todos los equinos seropositivos a EHV-1 lo fueron tambi&eacute;n a EHV-4. La seropositividad para   EHV-1 por municipio fue: San Martin (34.6%), Arauca (10.4%), Puerto L&oacute;pez (8.7%), Yopal (6.3%), San   Jos&eacute; del Guaviare (4.9), Puerto Gait&aacute;n (4.0%); mientras al EHV-4 fue 80.8%, 77.1%, 45.7%, 79.2%, 65.9%,   72.0% para los mismos municipios. Se identific&oacute; la presencia de anticuerpos contra los dos virus, siendo   mayor la seropositividad para el EHV-4. Estos resultados demuestran la necesidad de estudios adicionales para comprender mejor la enfermedad, epidemiologia y su comportamiento en la regi&oacute;n.</p>          <p><b>Palabras clave</b>: anticuerpos, equinos, EHV-1, EHV-4.</p>      <p><b>Abstract</b></p>     <p>This study was aimed at evaluating the presence of equineherpes virus 1 (EHV-1) and 4 (EHV-4) antibodies   in equine populations from the Colombian Orinoco region. Cross-sectional serological sampling was thus   used on horses (n: 260) from 6 localities in the region. An ELISA test was used for analysing the samples,   using a commercial kit which discriminated antibodies regarding both viruses; 12.7% seropositivity was   found for EHV-1 and 70.4% for EHV-4. All the horses found seropositive for EHV-1 were also seropositive   for EHV-4. EHV-1 seropositivity by municipality was as follows: San Martin 34.6%, Arauca 10.4%, Puerto   L&oacute;pez 8.7%, Yopal 6.3%, San Jos&eacute; del Guaviare 4.9% and Puerto Gait&aacute;n 4.0%. EHV-4 seropositivity for the same municipalities was 80.8%, 77.1%, 45.7%, 79.2%, 65.9%, 72.0%, respectively. The presence of   antibodies against both viruses was identified, seropositivity being higher for EHV-4. These results showed   the need for further studies aimed at a better understanding of the disease, its epidemiology and pattern in the aforementioned region.</p>     <p><b>Key words</b>: Antibody, horse, EHV-1, EHV-4.</p>     <p><b>Resumo</b></p>     <p>O objetivo deste estudo foi avaliar a presen&ccedil;a de anticorpos aos v&iacute;rus do herpes equino 1 (EHV-1) e 4 (EHV-4) em popula&ccedil;&otilde;es de equinos de Orinoco colombiano. Para este fim, uma amostragem serol&oacute;gica transversal   foi realizado em cavalos (n = 260) a partir de 6 locais na regi&atilde;o. As amostras foram analisadas por ELISA,   utilizando um kit de anticorpos comerciais para discriminar os dois v&iacute;rus. Serorreatividade foi encontrada em   12,7 % para EHV-1 e 70,4 % ao EHV-4. Todos os cavalos EHV-1 seropositivos foram tamb&eacute;m ao EHV-4. A   seropositividade ao EHV-1 por munic&iacute;pio &eacute;: San Martin (34,6%), Arauca (10,4%) , Puerto L&oacute;pez (8,7%), Yopal   (6,3%), San Jos&eacute; del Guaviare (4.9), Puerto Gait&aacute;n (4,0%); enquanto a EHV-4 foi de 80,8 % , 77,1 % , 45,7 %   , 79,2 % , 65,9 % , 72,0 % para os mesmos munic&iacute;pios. A presen&ccedil;a de anticorpos contra os dois v&iacute;rus foram   identificados, sendo maior seropositividade de EHV-4. Estes resultados demonstram a necessidade de estudos adicionais para compreender melhor a epidemiologia da doen&ccedil;a e seu comportamento na regi&atilde;o.</p>     <p><b>Palavras chave</b>: anticorpos, cavalos, EHV-1, EHV-4.</p>  <hr size="1" />           ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font size="3">Introducci&oacute;n</font></b></p>     <p>La Rinoneumonitis Equina (RE), es una enfermedad infecciosa   de amplia difusi&oacute;n, producida por dos tipos   de virus que pertenecen a la familia herpesviridae, el   herpes virus equino-1 (EHV-1) y herpes virus equino-4   (EHV-4). Estos son virus de doble cadena de DNA, con   un tama&ntilde;o entre 145-150 kb, cuyo genoma codifica   para 76 genes, y pertenecen al subgrupo &alpha;-herpesvirus   con una amplia distribuci&oacute;n mundial (Harless y Pusterla,   2006). En los pa&iacute;ses en donde la enfermedad ha   sido reportada, las p&eacute;rdidas econ&oacute;micas son considerables   y est&aacute;n representadas por la muerte de animales   j&oacute;venes a consecuencia de infecciones respiratorias y   abortos en la gestaci&oacute;n tard&iacute;a, principalmente evidenciados   en infecciones del EHV-1 (Allen <i>et al</i>., 1999;   Reed y Toribio, 2004), aunque ocasionalmente se han   descritos efectos en la gestaci&oacute;n temprana con da&ntilde;o   a nivel de la placenta y algunos abortos. En algunos   casos los signos cl&iacute;nicos m&aacute;s evidentes son los abortos   asociados con mieloencefalopat&iacute;as (Smith <i>et al</i>., 2010,   y Allen <i>et al</i>., 2008; Fritsche y Borchers, 2011). La patogenicidad   del EHV-4 se ha asociado com&uacute;nmente a   problemas respiratorios en animales j&oacute;venes, y en menor   proporci&oacute;n como causa de abortos (Ostlund 1990;   1993).</p>     <p>Una caracter&iacute;stica importante de los virus herpes es la   capacidad que tienen de permanecer en forma latente   en los ganglios nerviosos especialmente en el trig&eacute;mino,   lo que favorece en un alto porcentaje que los   animales permanezcan infectados de por vida. En este   estadio puede ocurrir la subsecuente reactivaci&oacute;n de la   latencia, ocasionada por condiciones de estr&eacute;s, desencadenando   la eliminaci&oacute;n del virus al medio ambiente   lo cual ocasiona nuevos brotes de la enfermedad (Hanzah,   2008).</p>     <p>En Colombia hasta el a&ntilde;o 2001 no se ten&iacute;a conocimiento   de esta enfermedad. El primer reporte provino   de una yegua importada de Argentina, que mostr&oacute; signos   de rinoneumonitis y aborto, caso del cual se aisl&oacute;   el herpes virus a partir de secreci&oacute;n nasal y de tejidos   del feto abortado (Ram&iacute;rez <i>et al</i>., 2001), posteriormente   por estudios morfol&oacute;gicos, serol&oacute;gicos, inmunocitoqu&iacute;micos   y moleculares el virus fue clasificado   como EHV-1 (Cano <i>et al</i>., 2008). Luego a este reporte,   otros estudios han demostrado la presencia de EHV-1 y EHV-4 en poblaciones de caballos procedentes   de los departamentos de Antioquia y Meta, teniendo   en cuenta que estos lugares son distantes del sitio de   donde se report&oacute; por primera vez el virus (Ruiz <i>et al</i>.,   2008).</p>     <p>Con los antecedentes descritos y sumado a la gran   movilidad y facilidad del desplazamiento de animales   para la participaci&oacute;n en ferias y eventos deportivos   y adem&aacute;s de la escasa restricci&oacute;n sanitaria, excepto   para el virus de la Anemia Infecciosa Equina (VEIA),   se plante&oacute; la hip&oacute;tesis de que la enfermedad se haya   extendido por la regi&oacute;n de la Orinoquia y a otras regiones   del pa&iacute;s, con el agravante de que esta enfermedad este siendo desconocida por la autoridades sanitarias   y profesionales M&eacute;dico Veterinarios del sector ecuestre. En la Orinoquia, hist&oacute;ricamente los equinos han   representado un recurso valioso en el desarrollo de la   ganader&iacute;a extensiva, as&iacute; mismo en la actualidad, la poblaci&oacute;n   equina ha venido creciendo favorecida por el   auge de las actividades deportivas y recreativas. Por   tanto, el objeto de este estudio fue determinar la presencia   de anticuerpos contra los herpes virus 1 y 4 en   poblaciones de equinos en seis municipios de la Orinoquia   Colombiana.</p>     <p><b><font size="3">Materiales y m&eacute;todos</font></b></p>     <p><b><i>Poblaci&oacute;n y Municipios de Muestreo</i></b></p>     <p>Se realiz&oacute; un muestreo por conveniencia donde   se obtuvieron muestras de sangre de 260 equinos   provenientes de los municipios de Arauca (n=48), San   Martin (n=52), San Jos&eacute; del Guavire (n=41), Puerto L&oacute;pez   (n=46), Puerto Gait&aacute;n (n=25), y Yopal (n=48) (ver <a href="#fig1">Figura   1</a>). Tres de los municipios incluidos correspond&iacute;an a las   capitales de los departamentos de Arauca, Casanare y   Guaviare. Las muestras se obtuvieron entre los meses de   Junio-Septiembre de 2012.</p>       <p align="center"><img src="img/revistas/rori/v18n1/v18n1a09fig1.gif"><a name="fig1"></a></p>     <p><b><i>Obtenci&oacute;n de muestras</i></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>De cada animal se obtuvieron 5 ml de sangre de   la vena yugular en tubos vacutainer<sup>&reg;</sup> est&eacute;riles sin   anticoagulante. Las muestras fueron centrifugadas a   5.000 RPM por 10 minutos y los sueros obtenidos se   fraccionaron por duplicado en crioviales eppendorf<sup>&reg;</sup>   de 1.0 ml y conservados a -20&deg;C hasta su an&aacute;lisis.</p>     <p><b><i>Serolog&iacute;a</i></b></p>     <p>Para la detecci&oacute;n de anticuerpos contra EHV1 y EHV4   se us&oacute; la t&eacute;cnica de ELISA indirecta, mediante un Kit   comercial que discrimina los anticuerpos contra EHV1 y EHV4 (Svanovir<sup>&reg;</sup>, Svanova Biotech   AB Uppsala, Suecia), siguiendo las   especificaciones del fabricante. Las   muestras de suero fueron diluidas   1:100 con el buffer de diluci&oacute;n. En   las placas de 96 pozos se adicionaron   100 &mu;l de los controles positivos   y negativos, as&iacute; como de las muestras   de suero prediluidas a cada pozo. Las   placas fueron incubadas por 2 horas   a temperatura ambiente bajo agitaci&oacute;n. Se lavaron 4 veces con el buffer   PBS-Tween mediante lavado autom&aacute;tico. Se adicion&oacute; seguidamente 100   &mu;l del conjugado con peroxidasa e   incubadas por 1 hora a temperatura   ambiente bajo agitaci&oacute;n. Nuevamente   fueron lavadas 4 veces con el buffer   PBS-Tween. Se adicion&oacute; 100 &mu;l de la   soluci&oacute;n de substrato e incubadas por   10 minutos a temperatura ambiente. Se a&ntilde;adi&oacute; finalmente la soluci&oacute;n de   frenado y se realiz&oacute; la lectura de las   placas en un lector Dynex<sup>&reg;</sup> a 450 nm,   despu&eacute;s de 15 minutos de haber adicionado   la soluci&oacute;n de frenado.</p>     <p><b><font size="3">An&aacute;lisis estad&iacute;stico</font></b></p>     <p>Se utiliz&oacute; estad&iacute;stica descriptiva como   distribuci&oacute;n de frecuencias y una   prueba de Chi cuadrado (&chi;2) para   determinar el grado de asociaci&oacute;n o   independencia entre el estado serol&oacute;gico   con las variables sexo, edad y   grupo etario.</p>     <p><b><font size="3">Resultados</font></b></p>     <p>Luego del an&aacute;lisis serol&oacute;gico la prevalencia de anticuerpos   en la poblaci&oacute;n evaluada para la Orinoquia fue de   12.7% para EHV-1 y 70.4% para EHV-4. Todos los equinos   seropositivos a EHV-1 tambi&eacute;n lo fueron para EHV-4.</p>     <p>Los resultados por localidad estuvieron asociado con   la seropositividad, la cual fue variable con valores de   prevalencia para el EHV-1 desde 4% en el municipio   de Puerto Gait&aacute;n, hasta 36.4% para el municipio de   San Martin (&chi;2 = 29,202; gl = 5; P = 0,0001). Se encontraron   diferencias significativas en la seropositividad   por municipio para ambos virus (P&le;0.05).</p>     <p>Igual situaci&oacute;n se present&oacute; para el HVE-4 (&chi;2 = 19,433;   gl = 5; P = 0,002), Con una menor variaci&oacute;n correspondiendo   el porcentaje m&aacute;s bajo para el municipio   de Puerto Gait&aacute;n (45.7%) y con porcentajes muy similares   para los otros municipios (65,9%-80,8%) (ver   <a href="#fig2">Figura 2</a>).</p>       <p align="center"><img src="img/revistas/rori/v18n1/v18n1a09fig2.gif"><a name="fig2"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La seropositividad de acuerdo con el sexo en ambos   casos tanto para el EHV-1 y EHV-4 fue mayor en las   hembras, sin embargo no se encontr&oacute; diferencia estad&iacute;stica   (P&gt;0.5) (ver <a href="#fig3">Figura 3</a>).</p>       <p align="center"><img src="img/revistas/rori/v18n1/v18n1a09fig3.gif"><a name="fig3"></a></p>     <p>La seropositividad por grupo etario para el EHV-1 present&oacute;   una tendencia descendente desde el grupo de los potros   (24%) hasta los adultos (15.7%) encontrando el menor valor   en los j&oacute;venes (6.1%). Para el EHV-4 la variaci&oacute;n fue   menor con una tendencia negativa y lineal desde j&oacute;venes   (78.6%) hasta los adultos (63.6%) (ver <a href="#fig4">figura 4</a>).</p>       <p align="center"><img src="img/revistas/rori/v18n1/v18n1a09fig4.gif"><a name="fig4"></a></p>     <p><b><font size="3">Discusi&oacute;n</font></b></p>     <p>En este estudio, se detect&oacute; la presencia de anticuerpos   contra los virus HVE-1 y 4, hecho que sugiere indirectamente   la circulaci&oacute;n activa de estos dos virus en la   regi&oacute;n. De igual forma cabe resaltar que los animales   estudiados no ten&iacute;an antecedentes de vacunaci&oacute;n   ya que en el pa&iacute;s no se ha licenciado ning&uacute;n tipo de   vacuna por parte de las autoridades sanitarias para el   control de esta enfermedad.</p>     <p>La seropositividad reportada en nuestro estudio para   ambos virus fue mucho menor que la reportada previamente   por Ruiz <i>et al</i>. (2008) mediante la misma prueba   serol&oacute;gica en un estudio en equinos del departamento   del meta (EHV-1 33.7% y EHV-4 96.6%). Este resultado   contrasta con otro estudio en equinos en varios   municipios del mismo departamento en donde no se   encontraron reactores al EHV-1, aunque la prevalencia   para el EHV-4 fue de 94.1%. Adem&aacute;s de forma interesante   ese estudio reporta una copositividad entre HVE-4 y el virus de la Anemia Infecciosa equina (EIAV) de   13.2% que sugiere que el efecto inmunosupresor del   EIAV podr&iacute;a facilitar la reactivaci&oacute;n del estado latente   del EHV-4 favoreciendo la diseminaci&oacute;n del virus   (Ruiz <i>et al</i>., 2008).</p>     <p>Los resultados que se presentan confirman igualmente   una mayor seroprevalencia para el EHV-4, lo que   coincide con los resultados reportados en otros pa&iacute;ses. As&iacute; en Turqu&iacute;a la prevalencia detectada fue de 3.7%   y 56.9% para el EHV-1 y EHV-4 respectivamente. En   USA, Gilkernson <i>et al</i> (1994) encontraron una seropositividad   de 26.2% a EHV-1 y 99% a EHV-4. En forma   similar Crabb y Studdet (1993) reportaron una positividad   de 9% a EHV-1 y de 100% a EHV-4. Similares   resultados se observaron en Polonia (EHV-1:13.5%   EHV-4:91.8%) (Gr&aacute;dzki y Boguta, 2009). No se conocen   con exactitud las causas por las cuales la prevalencia   del HVE-4 es mayor que la del EHV-1, aunque   podr&iacute;a estar asociado con las caracter&iacute;sticas propias   del virus y las diferentes condiciones epidemiol&oacute;gicas   en donde se realizan los estudios. Otro motivo de estas   diferencias parece estar relacionado con el inicio de   la infecci&oacute;n m&aacute;s temprana durante la vida del animal   para el caso del EHV-4 (Patel y Heldens, 2005).</p>     <p>Los resultados aqu&iacute; encontrados sugieren adem&aacute;s que   ambos virus se han venido extendiendo por la regi&oacute;n,   posiblemente favorecido por la f&aacute;cil movilizaci&oacute;n de   animales infectados o incluso a trav&eacute;s del uso de semen   infectado, ya que es una v&iacute;a importante de trasmisi&oacute;n,   a este respecto, el uso de esta biotecnolog&iacute;a se ha   venido incrementando y cada d&iacute;a es mayor la demanda   por semen proveniente de otros departamentos. Otra fuente de infecci&oacute;n puede estar relacionada con   el posible ingreso de animales infectados latentemente   provenientes de otros pa&iacute;ses especialmente Venezuela   y Brasil con los cuales la regi&oacute;n comparte una extensa   frontera terrestre. La presencia de animales seropositivos   en todos los sitios de muestreo sugiere adem&aacute;s,   que podr&iacute;an tener una presentaci&oacute;n end&eacute;mica.</p>     <p>Los hallazgos obtenidos, permiten plantear la diseminaci&oacute;n   de ambos virus a otras regiones del pa&iacute;s (por   ejemplo, Antioquia) en donde se demostr&oacute; la presencia de &aacute;cidos nucle&iacute;cos virales en c&eacute;lulas mononucleares y   en ganglios trig&eacute;minos obtenidos de un matadero local   (Ruiz, 2006), lo que requiere de nuevos estudios para   hallar su relaci&oacute;n con la presencia de casos cl&iacute;nicos.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La menor seropositividad en los animales criollos provenientes   de los municipios m&aacute;s distantes de las capitales   de departamento (Puerto Gait&aacute;n y San Jos&eacute; del   Guaviare) podr&iacute;a deberse a las condiciones geogr&aacute;ficas   de aislamiento, donde existe un menor contacto   con equinos que viajan a participar en eventos feriales   y cabalgatas. Es conocido que en estos eventos, la   aglomeraci&oacute;n de animales es alta, por lo tanto, las probabilidades   de adquirir diversas infecciones es mayor,   no solo para los virus objeto de este estudio.</p>     <p>La mayor presencia de hembras seropositivas parece no   tener importancia epidemiol&oacute;gica, al parecer, el sexo no   se considera un factor de riesgo para adquirir la infecci&oacute;n. Estudios en el Per&uacute; mostraron que no existe asociaci&oacute;n   estad&iacute;stica entre los t&iacute;tulos a EHV-1 versus las   variables sexo, actividad y procedencia de los animales   (R&iacute;os <i>et al</i>., 2002) lo cual sugiere que el sexo del animal   no es un factor de predisposici&oacute;n a la enfermedad.</p>     <p>Respecto a la mayor seropositividad encontrada en los   potros, los resultados coinciden con otros estudios realizados   en EU en donde el 85% de los animales evaluados   seroconvirtieron al EHV-1 despu&eacute;s del destete   (Doll and Bryans, 1962, 1963b). De otro lado, se ha   visto que la madres son la principal fuente de infecci&oacute;n   de estos virus para los potros, que se convierten en   importantes reservorios para las poblaciones contiguas   (Harless y Pusterla, 2006).</p>     <p>A pesar que los estudios tendientes a explicar las amplias   diferencias en la prevalencia entre el EHV-1 y   EHV-4 son escasos, en caballos de carreras en el Jap&oacute;n   se encontr&oacute; que las infecciones por EHV-1 ocurr&iacute;an   principalmente durante el invierno, mientras las producidas   por el EHV-4 se presentaban durante todo el   a&ntilde;o (Matsumura <i>et al</i>., 1992). Lo anterior sugiere que   aunque en Colombia no se presentan las diferentes estaciones   clim&aacute;ticas, se debe conocer en posteriores estudios   el comportamiento epidemiol&oacute;gico a trav&eacute;s del   a&ntilde;o y su asociaci&oacute;n con factores ambientales, especialmente   las condiciones que generan estr&eacute;s (heladas,   transporte, estr&eacute;s nutricional etc.).</p>     <p>La presencia de reactores a ambos virus en la regi&oacute;n,   sugiere una vigilancia permanente a esta enfermedad   dado al alto grado de latencia viral que desarrollan los   animales infectados. En la central equina de Kentucky   en USA, se detecto genoma viral de EHV-1 en n&oacute;dulos   linf&aacute;ticos submandibulares en 54% de los animales evaluados,   lo que indica infecciones latentes. A su vez 18%   se encontraron infectados por una cepa neuropatog&eacute;nica   (Allen <i>et al</i>., 2008). La presencia de animales infectados   latentemente hace que estos virus se perpet&uacute;en   en los criaderos equinos. En otros pa&iacute;ses la prevalencia   de animales infectados latentemente var&iacute;a entre 54% a   88% dependiendo de la poblaci&oacute;n y el m&eacute;todo de detecci&oacute;n   del virus (Allen <i>et al</i>., 2008; Lun <i>et al</i>., 2009).</p>     <p>Recientemente ha aumentado la asociaci&oacute;n entre los   brotes de abortos con las cepas neuropat&oacute;genas. Los reportes   actuales han surgido de pa&iacute;ses como Alemania   (Walter <i>et al</i>., 2013), Holanda (Goehring <i>et al</i>., 2006),   Francia (Pronost <i>et al</i>., 2010; Pronost <i>et al</i>., 2012), y USA   (Smith <i>et al</i>., 2010), situaci&oacute;n que debe ser verificada en   el pa&iacute;s, para esto se deber&iacute;a contar con un buen apoyo   diagnostico y un monitoreo de la actividad viral, lo cual   permita prevenir futuros brotes que serian devastadores   para la producci&oacute;n equina nacional.</p>     <p>Por lo anterior se hace necesario la identificaci&oacute;n de   casos cl&iacute;nicos y el diagnostico e identificaci&oacute;n molecular   de las cepas virales actuantes. En un reciente brote   en 61 animales infectados cl&iacute;nicamente se observ&oacute;   abortos en 6 de 7 yeguas pre&ntilde;adas y de igual forma   ocho animales desarrollaron encefalomielitis (Walter   <i>et al</i>., 2013). Otro motivo de inter&eacute;s para continuar   con posteriores estudios radica en que el EHV-1 se   considera un nuevo virus emergente que puede afectar   otras especies de animales (Wohlsein <i>et al</i>., 2011).</p>     <p>Se concluye a partir de este estudio, la existencia de anticuerpos   a los virus EHV-1 y EHV-4 en la poblaci&oacute;n muestreada,   con una mayor prevalencia al EHV-4. Adem&aacute;s,   estos anticuerpos sugieren una respuesta a una infecci&oacute;n   activa debido al no uso de vacunas en Colombia. La presencia   de reactores serol&oacute;gicos en todos los lugares de   muestreo sugiere que ambos virus se han diseminado por   toda la regi&oacute;n, lo que obliga a una mayor atenci&oacute;n por   parte de las autoridades sanitarias y un mayor conocimiento   por parte de los profesionales Veterinarios sobre   los efectos de estos virus en la poblaci&oacute;n equina, especialmente   la identificaci&oacute;n de casos cl&iacute;nicos, en donde   los abortos se acompa&ntilde;en de meningoencefalitis.</p>     <p><b><font size="3">Conflicto de intereses</font></b></p>     <p>Los autores manifiestan no tener conflicto de intereses.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font size="3">Agradecimientos</font></b></p>     <p>A la Direcci&oacute;n General de Investigaciones y el Consejo   Institucional de Investigaciones de la Universidad de   los Llanos por la financiaci&oacute;n de este proyecto. A las   profesionales Leidy Reyes y Roc&iacute;o Parra por el apoyo   en el an&aacute;lisis de las muestras.</p>     <p><b><font size="3">Referencias</font></b></p>     <!-- ref --><p>Allen GP, Kydd JH, Slater JD, Smith KC. Advances in understanding   of the pathogenesis, epidemiology and   immunological control of equine herpesvirus abortion. In: Wernery W, Mumford, Kaaden, editors. Equine infectious   diseases, vol. VIII.Newmarket, England: R and W   Publications; 1999. p. 129-146.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0121-3709201400010000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Allen GP, Bolin DC, Bryant U, Carter CN, Giles RC, Harrison   LR <i>et al</i>. Prevalence of latent, neuropathogenic equine   herpesvirus-1 in the Thoroughbred broodmare population   of central Kentucky. Equine vet J. 2008; 40(2): 105-110.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0121-3709201400010000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Cano A, Galosi CM, Martin Ocampos GP, Ramirez GC, Vera   VJ. Villamil LC, <i>et al</i>. Equine herpesvirus 1: characterization   of the first strain isolated in Colombia. Rev Sci   Tech Off Int Epiz. 2008; 27 (3): 893-897.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0121-3709201400010000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Crabb BS, Studdert MJ. Epitopes of glycoprotein G of equine   herpesviruses 4 and 1 located near the c-termini elicit   type-specific antibody responses in the natural host. J   Virol, 1993; 67: 6332-6338.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0121-3709201400010000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Crabb BS, Studdert MJ. Equine herpesviruses 4 (equine rhinopneumonitis   virus) and 1 (equine abortion virus). Adv Virus Res, 1995; 45: 153-190.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0121-3709201400010000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Doll ER, Bryans JT. Incubation periods for abortion in equine   viral rhinopneumonitis. JAVMA, 1962; 1413: 351-354.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0121-3709201400010000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Doll ER, Bryans JT. Epizootiology of equine viral rhinopneumonitis. JAVMA, 1963b; 142: 31-37.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0121-3709201400010000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Fritsche AK, Borchers K. Detection of neuropathogenic strains   of Equid Herpesvirus 1 (EHV-1) associated with abortions   in Germany. Vet Microbiol, 2011; 147: 176-180.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0121-3709201400010000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Goehring LS, van Winden SC, Van Maanen C, Sloet MM,   Van Oldruitenborgh-Oosterbaan MM. Equine Herpesvirus   Type 1 Associated Myeloencephalopathy in The   Netherlands: A Four-Year Retrospective Study (1999-2003). J Vet Intern Med, 2006; 20: 601-607.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0121-3709201400010000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Gilkerson JR, Jorm LR, Love DN, Lawrence GL, Whalley JM. Epidemiologic investigation of equid herpesvirus 4   (EHV 4) excretion assessed by nasal swabs taken from   Thoroughbred foals. Vet Microbiol, 1994; 39: 275-283.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0121-3709201400010000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Gr&aacute;dzki Z, Boguta L. Seroprevalence of EHV1 and EHV4 in   the horse population of the southeastern part of Poland. Medycyna Wet, 2009; 65 (3): 188-193.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0121-3709201400010000900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>G&uuml;r S, Yapici O. Equine Herpesvirus type 1 and 4 in Individually   Reared Horses in Central and Western Turkey. Acta Vet Brno, 2008; 77: 609-613.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0121-3709201400010000900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Hanzah H. Latent equine herpesvirus infections in horses. Tesis PhD. Murdoch University, 2008.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0121-3709201400010000900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Harless W, Pusterla N. Equine Herpesvirus 1 and 4 Respiratory   Disease in the Horse. Clin Tech Equine Pract,   2006; 5: 197-202.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0121-3709201400010000900014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Lunn DP, Davis-Poynter N, Flaminio MJ, Horohov DW, Osterrieder   K, Pusterla <i>et al</i>. Equine herpesvirus-1 consensus   statement. J Vet Intern Med, 2009; 23: 450-461.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0121-3709201400010000900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Matsumura T, Sugiura T, Imagawa H, Fukunaga Y, Kamada   M. Epizootiological aspects of type 1 and type 4 equine   herpesvirus infections among horse populations. J Vet   Med Sci, 1992; 54: 207-211.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0121-3709201400010000900016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Ostlund EN, Powell DG, Bryans JT. Equine herpesvirus-1: a   review. Proc Am Assoc Equine Pract, 1990; 36: 387-95.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0121-3709201400010000900017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Ostlund E. The equine herpesviruses. Vet Clin N Am Equine   Pract, 1993; 9: 283-94.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0121-3709201400010000900018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Patel JR, Heldens J. Equine herpesviruses 1 (EHV-1) and   4 (EHV-4) epidemiology, disease and immunoprophylaxis:   A brief review. Vet J, 2005; 170: 14-23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0121-3709201400010000900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Pronost S, Le&oacute;n A, Legrand L, Fortier C, Miszczak F, Freymuth   F, Fortie G. Neuropathogenic and non-neuropathogenic   variants of equine herpesvirus 1 in France. Vet   Microbiol, 2010; 145: 329-333.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0121-3709201400010000900020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Pronost S, Legrand L, Pitel PH, Wegge B, Lissens J, Freymuth   F <i>et al</i>. Outbreak of Equine Herpesvirus Myeloencephalopathy   in France: A Clinical and Molecular Investigation. Transboundary and Emerging Diseases. 2012;   59: 256-263.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0121-3709201400010000900021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Ram&iacute;rez GC, Chaparro JJ, Vera VJ, Villamil LC, Romero JR. Primer aislamiento de herpesvirus equino en Colombia. Rev Col Cienc Pec. 2001; 14: 73.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0121-3709201400010000900022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Reed SM, Toribio RE. Equine herpesvirus 1 and 4. Vet Clin   Equine. 2004; 20: 631-642.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0121-3709201400010000900023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>R&iacute;os P, Benito A, Rivera H. Rinoneumonitis equina en caballos   del valle de lima. Rev Inv Vet Per&uacute;. 2002; 13(2):   66-71.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0121-3709201400010000900024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Ruiz J, Goez Y, Urcuqui-Inchima S, L&oacute;pez-Herrera A. Infecci&oacute;n   por herpesvirus equino tipos 1 y 4 en c&eacute;lulas   mononucleares de sangre perif&eacute;rica y ganglios   trig&eacute;minos de equinos. Acta Biol Colomb, 2006;   11(2): 187.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0121-3709201400010000900025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Ru&iacute;z J, G&oacute;ez Y, Urcuqui Inchima S, G&oacute;ngora A, L&oacute;pez A. Evidencia serol&oacute;gica de la infecci&oacute;n por herpesvirus   equino tipos 1 y 4 en dos regiones de Colombia. Rev   Colomb Cienc Pecu, 2008; 21: 251-258.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0121-3709201400010000900026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Ruiz J, Cruz A, Reyes E, L&oacute;pez-Herrera A, G&oacute;ngora A. Asociaci&oacute;n   serol&oacute;gica de la rinoneumonitis viral equina y   la anemia infecciosa equina. Rev MVZ C&oacute;rdoba, 2008;   13(1): 1128-1137.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0121-3709201400010000900027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Smith KC, Whitwell KE, Blunden AS, Bestbier ME, Scase   TJ, Geraghty RJ, <i>et al</i>. Equine herpesvirus-1 abortion:   atypical cases with lesions largely or wholly   restricted to the placenta. Equine Vet J, 2004; 36(1): 79-82.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0121-3709201400010000900028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Smith KL, Allen GP, Branscum AJ, Cook RF, Vickers ML, Timoney   PJ, Balasuriya UBR. The increased prevalence of   neuropathogenic strains of EHV-1 in equine abortions. Vet Microbiol, 2010, 141: 5-11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0121-3709201400010000900029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Walter J, Seeh C, Fey K, Bleul U, Osterrieder N. Clinical   observations and management of a severe equine herpesvirus   type 1 outbreak with abortion and encephalomyelitis. Acta Vet Scand, 2013; 55: 19.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0121-3709201400010000900030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Wohlsein P, Lehmbecke A, Spitzbarth I, Algermissen D,   Baumg&auml;rtner W, Bo M, <i>et al</i>. Fatal epizootic equine   herpesvirus 1 infections in new and unnatural hosts. Vet Microbiol, 2011; 149: 456-460.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0121-3709201400010000900031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p> </font>      ]]></body><back>
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