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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[EVALUACIÓN DE ALGUNAS COMBINACIONES DE REGULADORES DE CRECIMIENTO INDUCTORAS DE CALLOS EN ACHIOTE (Bixa orellana L.), PLANTA ACTIVA CONTRA LA MORDEDURA DE SERPIENTES]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[EVALUATION OF SOME GROWTH REGULATORS COMBINATION FOR CALLUS INDUCTION IN ANNATTO (Bixa orellana L.) ACTIVE PLANT AGAINST SNAKE BITES]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Recent evidences suggest annatto can be constituted in a therapeutic alternative by its direct and indirect influences against the poison of Bothrops asper, cause of most of snake bite in our country. The ex- vitro metabolic production of this plant is not obtained in early growth stages but it is possible to obtain it by means of cell cultures. This research evaluates some inductive calli combinations of plant segments of Bixa orellana L., like leaves, roots and stems grown in vitro, in order to get high induction rates and bigger amounts of tissue precursors of cellular suspensions, potentially producers of active metabolites. These explants, located in nutritious means without growth regulators, or with supplements of some combinations of them, are stored for eight weeks (25± 1º C and darkness) and the calli formation percentage tested in second, fifth and eighth week of growing. The calli generation in explants from roots is low, whereas in those from stems and leaves is favored with the treatment and with exposition time to the growth regulators. Regardless of the kind of explant used, the calli formation percentage is increased by the treatment that uses NAA (5 µM) and kinetine (4.64 µM), and showing values of 17,0 %, 58,9 % and 77,5 % for roots, stems and leaves respectively.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <b>EVALUACI&Oacute;N DE ALGUNAS COMBINACIONES DE REGULADORES DE CRECIMIENTO INDUCTORAS  DE CALLOS EN ACHIOTE (<i>Bixa orellana L.</i>), PLANTA ACTIVA CONTRA LA MORDEDURA  DE SERPIENTES. </b>      <p>Juan C. ALARC&Oacute;N P.<sup>1</sup>*, Hader I. CASTA&Ntilde;O P.<sup>1</sup>, Ligia L. CORRALES    G.<sup>1</sup>, Silvia L. JIM&Eacute;NEZ R.<sup>1</sup> y Abel D&Iacute;AZ C.<sup>1</sup>,    <br>   <sup>1</sup> Grupo de Ofidismo y Escorpionismo. Profesores Facutlad de Qu&iacute;mica Farmac&eacute;utica.    Universidad de Antioquia. A.A. 1226. Medell&iacute;n-Colombia    <br>   * Autor a quien se debe dirigir correspondencia: <a href="mailto:jalarcon@farmacia.udea.edu.co">jalarcon@farmacia.udea.edu.co</a></p>     <p>Recibido: Diciembre 12 de 2005 Aceptado: Marzo 02 de 2006</p>     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p>Recientes evidencias sugieren que el achiote puede constituirse en una alternativa    terap&eacute;utica por sus efectos directos e indirectos contra el veneno de    <i>Bothrops asper</i>, serpiente causante de la mayor&iacute;a de mordeduras    en nuestro pa&iacute;s. Considerando que la producci&oacute;n metab&oacute;lica    <i>ex vitro</i> de esta planta no se obtiene de manera temprana y que eventualmente    puede lograrse con ayuda de cultivos celulares, el trabajo eval&uacute;a algunas    combinaciones inductoras de callos en segmentos de hojas, ra&iacute;ces y tallos    de plantas de <i>Bixa orellana L.</i> con el fin de inducir y masificar tejidos    precursores de suspensiones celulares potencialmente productores de los metabolitos    activos. Estos explantes, dispuestos en medios nutritivos sin reguladores de    crecimiento, o con suplementos de algunas combinaciones de ellos, se almacenan    por ocho semanas a 25&plusmn; 1&ordm; C y oscuridad, verificando los porcentajes    de formaci&oacute;n de callo en las semanas dos, cinco y ocho del cultivo. La    generaci&oacute;n de callo en explantes provenientes de ra&iacute;ces no resulta    masiva, mientras que en tallos y hojas se favorece con el tratamiento empleado    y con el tiempo de exposici&oacute;n a los reguladores de crecimiento. Sin importar    el explante utilizado, la inducci&oacute;n de callo se aumenta con la exposici&oacute;n    al tratamiento que involucra NAA (5 &micro;M) y kinetina (4,64 &micro;M), alcanzando    valores de 17.0 % (ra&iacute;ces), 58.9 % (tallos) y 77.5 % (hojas)    <br>   <b>Palabras clave:</b> callos, <i>Bixa orellana</i>, achiote</p>     <p><b>EVALUATION OF SOME GROWTH REGULATORS COMBINATION FOR CALLUS INDUCTION IN  ANNATTO (<i>Bixa orellana L.</i>) ACTIVE PLANT AGAINST SNAKE BITES.</b></p>     <p><b>ABSTRACT</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Recent evidences suggest annatto can be constituted in a therapeutic alternative    by its direct and indirect influences against the poison of <i>Bothrops asper</i>,    cause of most of snake bite in our country. The <i>ex- vitro</i> metabolic production    of this plant is not obtained in early growth stages but it is possible to obtain    it by means of cell cultures. This research evaluates some inductive calli combinations    of plant segments of <i>Bixa orellana L.</i>, like leaves, roots and stems grown    <i>in vitro</i>, in order to get high induction rates and bigger amounts of    tissue precursors of cellular suspensions, potentially producers of active metabolites.    These explants, located in nutritious means without growth regulators, or with    supplements of some combinations of them, are stored for eight weeks (25&plusmn;    1&ordm; C and darkness) and the calli formation percentage tested in second,    fifth and eighth week of growing. The calli generation in explants from roots    is low, whereas in those from stems and leaves is favored with the treatment    and with exposition time to the growth regulators. Regardless of the kind of    explant used, the calli formation percentage is increased by the treatment that    uses NAA (5 &micro;M) and kinetine (4.64 &micro;M), and showing values of 17,0    %, 58,9 % and 77,5 % for roots, stems and leaves respectively.    <br>   <b>Keywords:</b> calli, <i>Bixa orellana</i>, annatto.</p>     <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     <p>La <i>Bixa orellana</i>, arbusto americano con amplia distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica    y conocido generalmente como achiote (1), es una planta de gran adaptabilidad    a diferentes sistemas agroforestales y con numerosas aplicaciones en las industrias    relacionadas con alimentos, bebidas, cosm&eacute;ticos, textiles y diversos    productos qu&iacute;micos (2). </p>     <p>A la planta completa, o a algunas de sus partes, se les atribuyen m&uacute;ltiples    efectos en la medicina tradicional (1,3,4,5), pero recientes evidencias constituyen    el achiote en una gran alternativa para nuestro medio y comunidad, pues adem&aacute;s    de las actividades farmacol&oacute;gicas referenciadas, sus componentes metab&oacute;licos    resultan &uacute;tiles como antiedematizantes, antiihemorr&aacute;gicos y neutralizantes    del veneno de <i>Bothrops asper</i> (mapan&aacute; equis), serpiente causante    del 50% al 70% de las mordeduras en nuestro pa&iacute;s (6,7,8,9). Con esta    consideraci&oacute;n y teniendo en cuenta que: 1. La producci&oacute;n metab&oacute;lica    no se obtiene de manera temprana, 2. En algunos casos se pueden presentar variaciones    en el n&uacute;mero cromos&oacute;mico de la especie (2n= 14, 16), 3. El porcentaje    de germinaci&oacute;n disminuye por p&eacute;rdida de humedad en las semillas    (10) con necesidad de escarificaci&oacute;n mec&aacute;nica para recuperarlo    (11), 4. La planta es exigente en la cantidad de manganeso en el suelo, y 5.    En algunos casos presenta escasa viabilidad seminal (12), se hace cada vez mas    necesaria la producci&oacute;n <i>in vitro</i> de los metabolitos con actividad    neutralizante del veneno de la serpiente o los de los otros efectos adicionales    comprobados, pues estos compuestos aislados pueden constituirse en una alternativa    de atenci&oacute;n primaria en accidentes of&iacute;dicos o en una fuente generadora    de mol&eacute;culas con importancia farmac&eacute;utica, ya que seguramente    las actividades neutralizantes est&aacute;n mediadas por el efecto que alguno(s)    de ellos tienen sobre las enzimas fosfolipasas A<sub>2</sub> (PLA<sub>2</sub>),    que son responsables de eventos farmacol&oacute;gicos adicionales tales como,    el neurot&oacute;xico, el miot&oacute;xico, el cardiot&oacute;xico y el agregante    plaquetario (13). As&iacute; pues, las alternativas de propagaci&oacute;n <i>in    vitro</i>, la desdiferenciaci&oacute;n tisular y la masificaci&oacute;n de suspensiones    celulares se constituyen en estrategias de desarrollo para aumentar la producci&oacute;n    metab&oacute;lica de esta planta con enorme potencial farmacol&oacute;gico (14).    Para lograr este objetivo, se han mencionado algunos protocolos inductores de    callos en esta especie vegetal (15,16,17), y sus resultados muestran diferencias,    tanto en las combinaciones hormonales como en los porcentajes de desdiferenciaci&oacute;n    logrados. Para ampliar las alternativas y optimizar las condiciones m&iacute;nimas    necesarias, este trabajo compara unos protocolos conocidos y ensaya la combinaci&oacute;n    entre ellos para generar desdiferenciaci&oacute;n tisular en explantes provenientes    de diferentes estructuras organog&eacute;nicas de <i>Bixa orellana L.</i>, como    requisito inicial de suspensiones celulares, potencialmente generadoras de metabolitos    secundarios con los intereses farmac&eacute;uticos mencionados.     <br>       <br>   <b>MATERIALES Y METODOS</b></p>     <p>Segmentos peque&ntilde;os (5 x 5 mm), provenientes de hojas, ra&iacute;ces    y tallos de plantas de <i>B. orellana L</i>. crecidas <i>in vitro</i>, e identificadas    por personal del Herbario de la Universidad de Antioquia (HUA No. 6485), sirven    como explantes en cajas de cultivo (55 mm &Oslash;) dispuestas con medios nutritivos    (V&eacute;ase <a href="#t1">tabla 1</a>) ajustados a pH: 5,7 antes de su esterilizaci&oacute;n    con condiciones de calor h&uacute;medo (121&ordm; C/15min/1 atm). </p>     <p><img src="/img/revistas/vitae/v13n1/1a03t01.JPG" width="573" height="153"><a name="t1"></a></p>     <p>Los medios de cultivo (control y tratamientos), incluyendo cinco explantes    por caja en cada una de las tres r&eacute;plicas (cajas independientes por cada    tratamiento para cada una de las estructuras) y con tres repeticiones de todos    los ensayos, se almacenan durante ocho semanas (con subcultivo rutinario en    la cuarta de ellas) a 25&plusmn; 1&ordm; C, en condiciones de completa oscuridad    y se verifican los porcentajes de formaci&oacute;n de callo en las semanas dos,    cinco y ocho del cultivo. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los diferentes tratamientos se comparan mediante un an&aacute;lisis de varianza    de medidas repetidas en el tiempo. Tanto las pruebas estad&iacute;sticas (error    a= 0,05) como los c&aacute;lculos de las medidas descriptivas se realizan con    el paquete STATISTICA98 (Statsoft Inc., Tulsa, OK). </p>     <p><b>RESULTADOS Y DISCUSION</b></p>     <p>La generaci&oacute;n de callos en los explantes provenientes de las ra&iacute;ces    no resulta masiva, pues los porcentajes de inducci&oacute;n son muy bajos (dif&iacute;cilmente    superiores al 15%) y sin diferencias estad&iacute;sticamente significativas    con relaci&oacute;n a los controles (v&eacute;ase <a href="#f1">figura 1</a>),    en los que incluso, en algunos se logra detectar una escasa desdiferenciaci&oacute;n    que probablemente se deba a la presencia de peque&ntilde;as zonas meristem&aacute;ticas.    Estos resultados se encuentran en concordancia con Cuartas Chac&oacute;n (15),    pero difieren de lo reportado por Castello y colaboradores (16), quienes muestran    que los explantes provenientes de esta estructura poseen una alt&iacute;sima    capacidad productora de callos en muy poco tiempo de cultivo. En ensayos adicionales    realizados con los reguladores de crecimiento y a las concentraciones propuestas    por estos &uacute;ltimos autores (resultados no publicados), no se logran los    porcentajes de inducci&oacute;n, ni la cantidad reportada por ellos. Considerando    que la exposici&oacute;n de las ra&iacute;ces a cualquiera de los tratamientos    inductores de nuestro estudio no ha arrojado resultados significativamente superiores    a los observados en los controles (p = 0,.92), se hace necesario realizar nuevos    ensayos para verificar la utilidad de estos explantes en los protocolos encaminados    a la formaci&oacute;n de callos en esta especie vegetal.</p>     <p> <img src="/img/revistas/vitae/v13n1/1a03f01.JPG" width="468" height="443"><a name="f1"></a></p>     <p>Aunque los explantes provenientes de ra&iacute;z no parecen ser la mejor materia    prima para lograr la formaci&oacute;n de callos, en aquellos en los que se logra    (v&eacute;ase <a href="#f1">figura 1</a>), el tiempo de cultivo se constituye    en un factor estad&iacute;sticamente influyente (p &lt; 0,001), pero no porque    est&eacute; directamente relacionado con la inducci&oacute;n de los callos,    sino porque puede ser una consecuencia indirecta del efecto de los tratamientos    aplicados.</p>     <p>La formaci&oacute;n de callos en tallos y hojas se ve favorecida por el tiempo    de exposici&oacute;n a los reguladores de crecimiento (p = 0,01 y p &lt; 0,001    respectivamente), y en ning&uacute;n caso se obtienen callos en los medios de    cultivo empleados como control, pero s&iacute; resulta evidente y notoria la    incidencia del tratamiento empleado (v&eacute;ase <a href="#t2">tablas 2</a>    y <a href="#t3">3</a>; <a href="#f2">figuras 2</a> y <a href="#f3">3</a>) en    la inducci&oacute;n del tejido mencionado.</p>     <p><img src="/img/revistas/vitae/v13n1/1a03t02.JPG" width="466" height="345"><a name="t2"></a>    <br> </p>     <p><img src="/img/revistas/vitae/v13n1/1a03t03.JPG" width="465" height="364"><a name="t3"></a></p>     <p><img src="/img/revistas/vitae/v13n1/1a03f02.JPG" width="467" height="360"><a name="f2"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><img src="/img/revistas/vitae/v13n1/1a03f03.JPG" width="467" height="375"><a name="f3"></a>    <br> </p>     <p>La alta variaci&oacute;n con relaci&oacute;n a las medias en los porcentajes    de formaci&oacute;n de callos en los segmentos provenientes de tallo y hojas,    podr&iacute;an, ser consecuentes, con los tipos de reguladores de crecimiento    empleados en cada uno de los tratamientos, pues en los que se incluye la combinaci&oacute;n    de &aacute;cido 2,4-diclorofenoxiac&eacute;tico (2,4-D, 4,52&micro;M), 6-furfuril-aminopurina    (kinetina 4,64&micro;M) y adenina (100 mg/l) (Tratamiento 1) la respuesta es    baja, y consecuente con la poca asociaci&oacute;n manifiesta entre inducci&oacute;n    de callo y 2,4-D para esta especie vegetal (19), pero muy contraria a la establecida    por Cuartas Chac&oacute;n (15), quien con esta combinaci&oacute;n logra buenos    resultados utilizando hipoc&oacute;tilos como explantes. </p>     <p>Es bien conocido el efecto promotor de la 6-benzilaminopurina en la generaci&oacute;n    de callo en <i>B. orellana</i> (17,19), pero existen algunas evidencias que    muestran el enorme potencial de la 2-isopentenyladenina y la kinetina a altas    concentraciones (16,19) en la inducci&oacute;n de callos en esta especie vegetal,    y quiz&aacute; por ello, en los segmentos provenientes de tallos, la poca desdiferenciaci&oacute;n    parece revertir cuando en esta combinaci&oacute;n de reguladores se reemplaza    la kinetina por 6-benzilaminopurina (2,5 &micro;M) (v&eacute;ase <a href="#t2">tabla    2</a>, tratamiento 3), pues se alcanzan niveles significativamente equiparables    a los observados como respuesta en otros tratamientos. De hecho, los porcentajes    de inducci&oacute;n en los explantes dispuestos en &aacute;cido a-naftalenac&eacute;tico    (5 &micro;M) + 6-benzilaminopurina (2,5 &micro;M) + &aacute;cido asc&oacute;rbico    (200 mg l <sup>&#150;1</sup>) + myo-inositol (200 mg l <sup>&#150;1</sup>) (Tratamiento    2) son superiores a los encontrados en el tratamiento 1, pero un poco mas bajos    que los establecidos para semillas en completa oscuridad (17), y muy parecidos    a los observados por estos &uacute;ltimos bajo condiciones de fotoperiodicidad    de d&iacute;a largo. Sin embargo, la presencia de 6-furfurilaminopurina (4,64&micro;M)    en reemplazo de 6-benzilaminopurina (2,5 &micro;M) (Tratamiento 4), mejora considerablemente    la desdiferenciaci&oacute;n, pues genera callos amarillentos y friables (v&eacute;ase    <a href="#f4">figura 4</a>) con porcentajes de formaci&oacute;n superiores a    los observados por Sha Valli Khan et al (17), y en concordancia con quienes    destacan la incidencia de este regulador tipo citoquinina en la formaci&oacute;n    de callos en achiote (19). </p>     <p><img src="/img/revistas/vitae/v13n1/1a03f04.JPG" width="572" height="480"><a name="f4"></a></p>     <p>En hojas, la generaci&oacute;n de callos (v&eacute;ase <a href="#t3">tabla    3</a>, <a href="#f5">figura 5</a>) presenta porcentajes inductores un poco mas    bajos, pero con patrones similares a lo observado en tallos; de hecho, el mejor    inductor resulta ser el tratamiento que incluye &aacute;cido a-naftalenac&eacute;tico    (5 &micro;M) y 6-furfurilaminopurina (4,64 &micro;M) (Tratamiento 4). Este comportamiento    repetido en los diferentes explantes sugiere que el &aacute;cido a-naftalenac&eacute;tico    es un regulador aux&iacute;nico que se debe considerar en los protocolos relacionados    con inducci&oacute;n de callos en <i>B. orellana L.</i>; de hecho, ensayos preliminares    adicionales (datos no publicados) que incluyen este regulador aux&iacute;nico    en combinaci&oacute;n con una citoquinina diferente (2-isopentenyladenina),    muestran en concordancia con algunos autores (16,17), la tendencia a incrementar    los porcentajes inductores, quiz&aacute; como consecuencia de su condici&oacute;n    fisiol&oacute;gica natural o de la facilidad de esta para oxidarse a zeatina    (20). </p>     <p><img src="/img/revistas/vitae/v13n1/1a03f05.JPG" width="578" height="260"><a name="f5"></a></p>     <p>Sin importar el explante utilizado, la desdiferenciaci&oacute;n tisular se    ve muy favorecida por la exposici&oacute;n al tratamiento que involucra &aacute;cido    a-naftalenac&eacute;tico (5 &micro;M) y 6-furfurilaminopurina (4,64 &micro;M)    (Tratamiento 4) (v&eacute;ase <a href="#f6">figura 6</a> y <a href="#t4">tabla    4</a>), al punto que en las ra&iacute;ces en las que los porcentajes de inducci&oacute;n    resultan tan bajos, los sometidos a este tratamiento alcanzan cifras superiores    al 17%, mientras que en tallos y hojas se logran porcentajes de 58,88 y 77,50    respectivamente, siendo este &uacute;ltimo valor un poco mas alto que el observado    por Sha Valli Khan et al (17) con semillas expuestas al medio de cultivo denominado    en este trabajo como Tratamiento dos, aunque con diferencia poco significativa    y probablemente como consecuencia de la cantidad de myo-inositol empleado pues,    al parecer, la concentraci&oacute;n empleada tiene un efecto promotor en la    inducci&oacute;n de tejido indiferenciado en otras especies vegetales (21).  </p>     <p><img src="/img/revistas/vitae/v13n1/1a03f06.JPG" width="461" height="507"><a name="f6"></a></p>     <p><img src="/img/revistas/vitae/v13n1/1a03t04.JPG" width="467" height="359"><a name="t4"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>CONCLUSIONES</b></p>     <p>En este trabajo, la generaci&oacute;n de tejido indiferenciado en explantes    provenientes de ra&iacute;ces de<i> B. orellana L.</i>, no resulta masiva, y    los porcentajes de inducci&oacute;n son bajos, dif&iacute;cilmente superiores    al 15% y notorios a partir de la quinta semana de cultivo. Por el contrario,    la inducci&oacute;n de callos en segmentos de tallos y hojas se ve favorecida    por el tiempo de exposici&oacute;n a los reguladores de crecimiento y por el    tratamiento empleado para ella.</p>     <p>La alta variaci&oacute;n con relaci&oacute;n a las medias, en los porcentajes    de formaci&oacute;n de callos en los segmentos provenientes de tallo y hojas,    podr&iacute;a ser consecuente con los tipos de reguladores de crecimiento empleados    en cada uno de los tratamientos, pues en este trabajo, y dependiendo de su combinaci&oacute;n    y explante, se ve disminuida o revertida la aparici&oacute;n de estos tejidos    poco diferenciados.</p>     <p>En este trabajo, y sin importar el explante utilizado (incluso ra&iacute;ces),    la formaci&oacute;n de callos se ve favorecida por la exposici&oacute;n al tratamiento    que involucra &aacute;cido a-naftalenac&eacute;tico (5 &micro;M) y 6-furfurilaminopurina    (4,64 &micro;M), aunque en hojas, los porcentajes de generaci&oacute;n de este    tejido indiferenciado son un poco m&aacute;s bajos. En consecuencia, la utilizaci&oacute;n    de esa combinaci&oacute;n hormonal, y de explantes provenientes de tallos y    hojas, se constituye en una alternativa adicional para la inducci&oacute;n de    callos en <i>B. orellana L.</i> y en posteriores suspensiones celulares potencialmente    productoras de los metabolitos de inter&eacute;s.</p>     <p><b>AGRADECIMIENTOS</b> </p>     <p>Al Comit&eacute; para el Desarrollo de la Investigaci&oacute;n (CODI) y a la    Universidad de Antioquia por la financiaci&oacute;n del proyecto CIQF-066.</p>     <p><b>REFERENCIAS</b></p>     <!-- ref --><p>1. Fonnegra, R., Jim&eacute;nez, S. L. (1999) Plantas medicinales aprobadas    en Colombia. Ed. Universidad de Antioquia, serie Yuluka, 1.Ed, pp. 15-17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000050&pid=S0121-4004200600010000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   2. Mercadante, A.Z., Pfander, H. (1998) Carotenoids from annato: a review. Recent    Research Developments in Agriculture and Food Chemistry, 2(1): 79-91[    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000051&pid=S0121-4004200600010000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->STANDARDIZEDENDPARAG]<br>   3. Rodr&iacute;guez, P.M. (1983) Plantas de la medicina popular Venezolana de    venta en herbolarios. Sociedad Venezolana de Ciencias Naturales. Editorial Sucre,    Caracas. pp. 25-27[    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000052&pid=S0121-4004200600010000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->STANDARDIZEDENDPARAG]<br>   4. Bernal, H., Bernal, Y., Correa, J.E. (1989) Especies vegetales promisorias    de los pa&iacute;ses del convenio Andr&eacute;s Bello, Tomo II. Ed. Secretar&iacute;a    ejecutiva del convenio Andr&eacute;s Bello, Ministerio de Educaci&oacute;n y    Ciencia de Espa&ntilde;a y la Junta del Acuerdo de Cartagena. pp. 260-289[    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000053&pid=S0121-4004200600010000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->STANDARDIZEDENDPARAG]<br>   5. Parrotta, J.A. (2001) Healing plants of peninsular India. CAB International,    Wallingford, U.K. 944 p[    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000054&pid=S0121-4004200600010000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->STANDARDIZEDENDPARAG]<br>   6. Otero, R., Fonnegra, R., Jim&eacute;nez, S. (2000) Plantas utilizadas contra    mordedura de serpientes en Antioquia y Choco, Colombia. Otero, Fonnegra y Jim&eacute;nez    Editores, 1 Ed. Medell&iacute;n, Colombia. 402 p     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000055&pid=S0121-4004200600010000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   7. Otero, R., N&uacute;&ntilde;ez, V., Jim&eacute;nez, S., Fonnegra, R., Osorio,    R., Garc&iacute;a, M., et al. (2000b). Snakebites and ethnobotany in the northwest    region of Colombia. Part II: Neutralization of letal and enzymatic effects of    <i>Bothrops atrox</i> venom. J. Ethnopharmacology, 71: 505-511[    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S0121-4004200600010000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->STANDARDIZEDENDPARAG]<br>   8. Otero, R., N&uacute;&ntilde;ez, V., Barona, J., Fonnegra, R., Jim&eacute;nez,    S., Osorio, R. G., et al. (2000c) Snakebites and ethnobotany in the northwest    region of Colombia. Part III: Neutralization of the haemorrhagic effect of <i>Bothrops    atrox</i> venom. J. Ethnopharmacology, 73: 233-241[    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0121-4004200600010000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->STANDARDIZEDENDPARAG]<br>   9. Otero, R., N&uacute;&ntilde;ez, V., Barona, J., Saldarriaga, M., Fonnegra,    R., Osorio, R., et al. (2000d) Neutralization of edema-forming and defibrinating    effects of Bothrops atrox asper venom by extracts of plants used by healers    in Antioquia and Choc&oacute;, Colombia. In: Cordovez J.M., Abstracts XV International    Congress for Tropical Medicine and Malaria. Corcas editores Ltda, Bogot&aacute;.    pp. 186[    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0121-4004200600010000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->STANDARDIZEDENDPARAG]<br>   10. Belfort, A.J.L., Kato, O.R., Kato, M. do S.A. (1992) Practical method of    drying annatto seeds for seedling production. Circular T&eacute;cnica 67, Centro    de Pesquisa Agropecuaria do Tropico Umido, EMBRAPA-CPATU, Belem, Brazil, 14    pp[    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0121-4004200600010000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->STANDARDIZEDENDPARAG]<br>   11. Amaral, L.I.V., Pereira de, F.A., Cortelazzo, A.L. (1995) Dormancy breaking    in seeds of <i>Bixa orellana</i>. Revista Brasiliera de Fisiolog&iacute;a Vegetal.    7(2): 151-157[    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0121-4004200600010000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->STANDARDIZEDENDPARAG]<br>   12. Eira, M.T.S., Mello, C.M.C. (1997) <i>Bixa orellana L.</i>, Seed germination    and conservation. Seed Sci., Tech. 25: 373-380.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0121-4004200600010000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   13. Gowda, T.V. (1997) Interaction of snake venom phospholipases A2 with plant    isolates. In: Kini R.M., (Ed.), Venom phospholipase A2 enzymes, John Wiley&amp;Sons,    Chichester. Pp. 124-127[    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0121-4004200600010000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->STANDARDIZEDENDPARAG]<br>   14. Liogier, H.A. (1990) Plantas medicinales de Puerto Rico y del Caribe. Iberoamericana    de Ediciones, Inc. San Juan. P.R. 563[    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0121-4004200600010000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->STANDARDIZEDENDPARAG]<br>   15. Cuartas, Ch., S. (2003) Estudio preliminar para la obtenci&oacute;n in vitro    de c&eacute;lulas de <i>Bixa orellana L.</i> (achiote). Trabajo de grado para    optar al t&iacute;tulo de mag&iacute;ster en Microbiolog&iacute;a, Instituto    de Biotecnolog&iacute;a, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia.    Bogot&aacute; Colombia. 106 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0121-4004200600010000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   16. Castello, M.C., Phatak, A., Chandra, N., Sharon, M. (2002) Antimicrobial    activity of crude extracts from plant parts and corresponding calli of <i>Bixa    orellana L.</i> Indian Journal of Experimental Biology. 40: 1378-1381.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0121-4004200600010000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   17. Sha Valli Khan, P., Prakash, E., Rao, K. (2002) Callus induction and plantlet    regeneration in <i>Bixa orellana L</i>. an annatto-yielding tree. In Vitro Cell    Dev. Biol. 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Journal Plant Physiology. 116: 161-166&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0121-4004200600010000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p></p>     <p></p>     ]]></body>
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