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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[EVALUACIÓN DE UN SISTEMA DE FERMENTACIÓN EXTRACTIVA PARA LA PRODUCCIÓN DE ÁCIDO LÁCTICO UTILIZANDO SUERO DE LECHE COMO SUSTRATO]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In this work the technique of in situ extractive fermentation is applied for the production and separation of lactic acid, using whey as substrate and Lactobacillus delbrueckii spp. bulgaricus. The technique consists on the use of an organic phase in contact with a culture medium that allows the direct extraction of a compound as it is produced during the fermentation. The organic phase used is composed by a non polar solvent (hexane, heptane and iso-octane) and tributyl phosphate, TBP as extracting agent. Toxicity of the organic phase onto the microorganism and its extracting capacity of lactic acid are tested, and finding that the best results were obtained with hexane-TBP. Later on, the extractive fermentation was carried out with a central composite design using pH, % (v/v) of TBP in the organic phase and % (v/v) the water phase as factors. The response variable analyzed were the concentration of lactic acid in the culture medium (ALFA) and the partition coefficient Kd, displaying the mathematical models that describe their behavior. It finding that pH is the more significant factor during the process.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana" size="4"></font>     <p align="center"><font size="4" face="Verdana"><strong>EVALUACI&Oacute;N DE UN SISTEMA DE FERMENTACI&Oacute;N EXTRACTIVA PARA LA PRODUCCI&Oacute;N DE &Aacute;CIDO L&Aacute;CTICO UTILIZANDO SUERO DE LECHE COMO SUSTRATO</strong></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="4" face="Verdana">EVALUATION OF AN EXTRACTIVE FERMENTATION SYSTEM FOR THE PRODUCTION OF LACTIC ACID USING WHEY AS SUBSTRATE</font></p>     <p align="center"></p> <font face="Verdana" size="2">     <p>Nedher S&Aacute;NCHEZ R.<sup>1</sup>, Diana M. RAM&Iacute;REZ L. <sup>1</sup>, Arley D. ZAPATA Z.<sup>1<a href="#autor2">*</a><a name="autor"></a></sup></p> </font>     <p><font size="2" face="Verdana"><sup>1</sup>Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. Calle 59A N&uacute;mero 63-20. Medell&iacute;n - Colombia.</font></p> <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"></font>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>RESUMEN</strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p>En este trabajo se aplica la t&eacute;cnica de fermentaci&oacute;n extractiva <em>in situ</em> para la producci&oacute;n y separaci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico, usando suero de leche como sustrato y <em>Lactobacillus delbrueckii</em> spp. <em>bulgaricus</em>. La t&eacute;cnica consiste en el uso de una fase org&aacute;nica en contacto con el medio de cultivo, permitiendo as&iacute; la extracci&oacute;n directa de un compuesto a medida que &eacute;ste se produce durante la fermentaci&oacute;n. Se utiliza una fase org&aacute;nica compuesta por un solvente no polar (hexano, heptano e iso-octano) y tributil fosfato, TBP como agente extractante. Se realizaron pruebas iniciales de toxicidad de la fase org&aacute;nica sobre el microorganismo y de capacidad extractiva de &aacute;cido l&aacute;ctico, encontr&aacute;ndose que con hexano-TBP se obtienen los mejores resultados. Posteriormente se realiza la fermentaci&oacute;n extractiva, para la cual se utiliza un dise&ntilde;o central compuesto, cuyos factores fueron: pH, % (v/v) de TBP en la fase org&aacute;nica y % (v/v) de la fase acuosa. Se analizan como variables respuesta la concentraci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico en el medio de cultivo (ALFA) y el coeficiente de partici&oacute;n Kd, presentando los modelos matem&aacute;ticos que describen su comportamiento. Se encuentra que el pH es el factor m&aacute;s significativo durante el proceso.</p> </font>     <p><font size="2" face="Verdana">Palabras clave: &Aacute;cido l&aacute;ctico, fermentaci&oacute;n extractiva, toxicidad, <em>Lactobacillus delbrueckii </em>spp<em>. bulgaricus</em>.</font></p> <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"></font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3" face="Verdana"><strong>ABSTRACT</strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p>In this work the technique of <em>in situ</em> extractive fermentation is applied for the production and separation of lactic acid, using whey as substrate and <em>Lactobacillus delbrueckii</em> spp. <em>bulgaricus.</em> The technique consists on the use of an organic phase in contact with a culture medium that allows the direct extraction of a compound as it is produced during the fermentation. The organic phase used is composed by a non polar solvent (hexane, heptane and iso-octane) and tributyl phosphate, TBP as extracting agent. Toxicity of the organic phase onto the microorganism and its extracting capacity of lactic acid are tested, and finding that the best results were obtained with hexane-TBP. Later on, the extractive fermentation was carried out with a central composite design using pH, % (v/v) of TBP in the organic phase and % (v/v) the water phase as factors. The response variable analyzed were the concentration of lactic acid in the culture medium (ALFA) and the partition coefficient Kd, displaying the mathematical models that describe their behavior. It finding that pH is the more significant factor during the process.</p>     <p><strong>Keywords: </strong>Lactic acid, extractive fermentation, toxicity, <em>Lactobacillus delbrueckii </em>spp.<em> bulgaricus</em>.</p> </font> <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2">     <p>&nbsp;</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N</strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p>La obtenci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico (AL) por medios fermentativos ha sido ampliamente estudiada a nivel mundial, buscando un aumento, tanto t&eacute;cnico como econ&oacute;mico, en la productividad del proceso. Con este fin, la evaluaci&oacute;n de diferentes medios de cultivo simples o complejos, ha sido de mucho inter&eacute;s (1), (2). Entre los medios complejos, el suero de leche presenta gran importancia para la producci&oacute;n de AL, debido tanto a su alto contenido de lactosa, como al hecho de ser un subproducto industrial generado en grandes cantidades, que muchas veces ocasiona problemas de contaminaci&oacute;n ambiental (3).</p>     <p>De la misma manera, los estudios de separaci&oacute;n y purificaci&oacute;n del AL han tenido un marcado inter&eacute;s, debido a que por sus propiedades fisicoqu&iacute;micas se hace dif&iacute;cil la destilaci&oacute;n y cristalizaci&oacute;n del mismo, lo cual hace de esta etapa del proceso una de las m&aacute;s complejas y costosas (4-5). La ruta cl&aacute;sica para la recuperaci&oacute;n del AL a partir de los caldos fermentativos se basa en la precipitaci&oacute;n del lactato de calcio por medio de la adici&oacute;n de Ca(OH)<sub>2</sub>, despu&eacute;s de haber sido separada la biomasa. Posteriormente la sal es filtrada y el resto del material es tratado con &aacute;cido sulf&uacute;rico, produciendo de esta forma &aacute;cido libre y CaSO<sub>4</sub> (6). Este proceso tiene algunas desventajas: es discontinuo, se requieren largos tiempos de operaci&oacute;n, y los costos de inversi&oacute;n y operaci&oacute;n son elevados (4,6,7).</p>     <p>La inhibici&oacute;n por producto es el principal obst&aacute;culo en la fermentaci&oacute;n l&aacute;ctica, ya que limita el rendimiento que se puede lograr durante el proceso (8). Para contrarrestar este efecto se han propuesto distintas estrategias, una de ellas es el empleo de tecnolog&iacute;as de fermentaci&oacute;n que permitan retirar el producto del medio a medida que se forma (9-10). Una de las t&eacute;cnicas con la que se puede lograr este objetivo es la fermentaci&oacute;n extractiva <em>in situ</em>, en la cual una fase org&aacute;nica insoluble en el medio, extrae el metabolito de inter&eacute;s a medida que &eacute;ste se produce durante la fermentaci&oacute;n. Esta fase org&aacute;nica com&uacute;nmente se compone de un agente extractante, com&uacute;nmente derivados organofosf&oacute;ricos como el tributil fosfato, TBP, o aminas de alto peso molecular, y de un solvente que puede ser tolueno, keroseno, heptano, hexano, iso-octano, etc&eacute;tera. El papel que cumple el agente extractante es “atrapar” el producto de inter&eacute;s y complejarlo, transfiri&eacute;ndolo de esta manera a la fase org&aacute;nica. El solvente, por otra parte, ayuda a controlar la densidad, viscosidad  </p>     <p> tensi&oacute;n superficial de la fase org&aacute;nica, con lo cual se minimiza la solubilidad de la misma en la fase acuosa (11). Algunos autores, la mayor&iacute;a a partir de medios de cultivos sint&eacute;ticos, han estudiado la fermentaci&oacute;n extractiva del &aacute;cido l&aacute;ctico, usando diferentes solventes y agentes extractantes (6,12-17). De igual manera, otros autores han hecho estudios sobre la producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico a partir de medios complejos como el suero de leche (18 - 19).</p>     <p>Los aspectos t&eacute;cnicos m&aacute;s relevantes en el estudio de la fermentaci&oacute;n extractiva son: la toxicidad que la fase org&aacute;nica puede generar sobre el microorganismo y la capacidad de extracci&oacute;n que presenta esta fase sobre el metabolito de inter&eacute;s (20). Igualmente el pH del medio es un factor primordial en el estudio, ya que influye tanto en el proceso fermentativo como en el extractivo (11). El presente trabajo tiene por objetivo evaluar estos factores sobre la producci&oacute;n fermentativa y la separaci&oacute;n de AL a escala de laboratorio, utilizando como sustrato suero de leche.</p> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p><strong>Reactivos</strong></p>     <p>&Aacute;cido dinitrosalic&iacute;lico (DNS) marca Sigma. Hexano, heptano,<em> </em>iso-octano y tributil fosfato (TBP) marca J.T. Baker. &Aacute;cido sulf&uacute;rico, &aacute;cido clorh&iacute;drico, &aacute;cido l&aacute;ctico e hidr&oacute;xido de sodio marca Merck. Todos los reactivos son grado anal&iacute;tico.</p>     <p><strong>T&eacute;cnicas de an&aacute;lisis</strong></p>     <p><em>Concentraci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico en la fase acuosa: </em>Fue determinada por HPLC, usando para ello un cromat&oacute;grafo Agilent Serie 1100 con una columna de intercambio i&oacute;nico con relleno de divinilbenceno. Los par&aacute;metros de la cromatograf&iacute;a son, volumen de inyecci&oacute;n: 5 &micro;l, flujo de la fase m&oacute;vil: 0.5 ml/min, fase m&oacute;vil: &aacute;cido sulf&uacute;rico 0.005 N, temperatura de operaci&oacute;n de la columna: 25 <sup>0</sup>C, longitud de onda del detector: 214 nm. La curva de calibraci&oacute;n se hizo usando &aacute;cido l&aacute;ctico al 99% de pureza (21).</p>     <p><em>Concentraci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico en la fase org&aacute;nica: </em>Fue determinada utilizando la t&eacute;cnica de titulaci&oacute;n por retroceso. El &aacute;cido fue desalojado de la fase org&aacute;nica usando una soluci&oacute;n de NaOH 0.1 N y luego el exceso de base se titul&oacute; con una soluci&oacute;n de HCl 0.1 N (12), (22).</p>     <p><em>Concentraci&oacute;n de biomasa: </em>Se cuantific&oacute; por densidad &oacute;ptica medida a 525 nm, la cual fue relacionada con la concentraci&oacute;n por medio de la t&eacute;cnica de peso seco.  Se utiliz&oacute; un espectrofot&oacute;metro Shimadzu UV-Visible - 160 (19).</p>     <p><em>Concentraci&oacute;n de az&uacute;cares reductores: </em>Fue determinada por el m&eacute;todo colorim&eacute;trico del &aacute;cido dini&shy;trosalic&iacute;lico (DNS). La absorbancia fue medida a 575 nm, utilizando un espectrofot&oacute;metro Shimadzu UV-Visible - 160, (23).</p>     <p><strong>Fermentaci&oacute;n control</strong></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><em>Medio de cultivo</em>: Se utiliz&oacute; el suero de leche proveniente de la planta procesadora de l&aacute;cteos de la Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. Este suero fue desproteinizado por calentamiento a reflujo durante 10 minutos, luego de haber sido ajustado su pH a un valor de 5.5, (equivalente a su punto isoel&eacute;ctrico), con lo cual precipitan las prote&iacute;nas permitiendo separarlas (24). Luego se esteriliza el medio a 20 psig y 121 <sup>0</sup>C durante 15 minutos, para su utilizaci&oacute;n.</p>     <p><em>Condiciones de inoculaci&oacute;n: </em>Se utiliz&oacute; <em>Lactobacillus delbrueckii </em>spp.<em> bulgaricus</em>, de la casa comercial CHR HANSEN'S LABORATORY INC, H&oslash;rsholm - Dinamarca. El liofilizado fue activado en suero de leche est&eacute;ril e incubado a 43 &deg;C durante 5 horas, tiempo en el que se llega a la fase exponencial. Este cultivo fue usado como in&oacute;culo para las fermentaciones.</p> </font>    <p><font size="2" face="Verdana"><em>Condiciones de fermentaci&oacute;n</em>: Se emple&oacute; un agitador rotatorio New Brunswick Scientific serie Innova 4400, con control de temperatura. Fueron usados 40 ml de medio de cultivo en erlenmeyers de 50 &shy;ml, con lo cual se conserva una cabeza de aire m&iacute;nima, manteniendo de esta forma condiciones anaer&oacute;bicas. Las condiciones de operaci&oacute;n fueron, pH inicial del medio 5.5, temperatura 43 &deg;C, velocidad de agitaci&oacute;n 125 rpm, concentraci&oacute;n inicial de az&uacute;cares reductores 60 g/L y concentraci&oacute;n inicial de in&oacute;culo 4 g/L (3), (17).</font></p> <font face="Verdana" size="2">    <p><strong>Prueba de toxicidad</strong></p>     <p>El procedimiento se hizo seg&uacute;n la t&eacute;cnica propuesta por Demirci y Choudhury (17), (14), la cual consiste en una fermentaci&oacute;n en la que el medio de cultivo est&aacute; en contacto con una peque&ntilde;a cantidad de soluci&oacute;n org&aacute;nica en relaci&oacute;n volum&eacute;trica 20:1. Para esta prueba se realiza una fermentaci&oacute;n bajo las mismas condiciones que fueron descritas en la fermentaci&oacute;n control, adicionando 2 mL de una soluci&oacute;n org&aacute;nica formada por hexano-TBP, heptano-TBP o iso-octano-TBP. Se realiz&oacute; un dise&ntilde;o experimental con arreglo factorial de dos factores;  tipo de solvente (hexano, heptano e iso-octano) y concentraci&oacute;n de TBP en la fase org&aacute;nica expresada como % (v/v), cuyos niveles fueron 15% y 30%, definidos a partir de trabajos realizados por otros autores (12,17). Los experimentos se hicieron por triplicado, usando como variable respuesta la concentraci&oacute;n de AL obtenida. La influencia de los factores y sus interacciones fueron evaluadas por medio de un an&aacute;lisis de varianza.</p>     <p><strong>Prueba de capacidad extractiva</strong></p>     <p>Para esta prueba se prepar&oacute; una soluci&oacute;n de AL en suero de leche a una concentraci&oacute;n de 100 g/L. Este &aacute;cido se someti&oacute; a un proceso de calentamiento con reflujo a 60 &deg;C por 12 h, con lo cual se logra su despolimerizaci&oacute;n, llegando as&iacute; a simular las mismas condiciones que se presentan con el &aacute;cido l&aacute;ctico obtenido un proceso fermentativo (15). La metodolog&iacute;a consisti&oacute; en la combinaci&oacute;n de 25 ml de la soluci&oacute;n de AL preparada (fase acuosa), con 25 ml de una soluci&oacute;n formada por un solvente org&aacute;nico y TBP (fase org&aacute;nica), generando dos fases inmiscibles con un volumen total de 50 ml (50% de fase acuosa). El volumen de fase org&aacute;nica fue variado en otros ensayos usando solo 12.5 ml, dando as&iacute; un volumen total de 37.5 ml (67% de fase acuosa). Se realiz&oacute; un dise&ntilde;o experimental con arreglo factorial de tres factores; tipo de solvente (hexano y heptano), % de TBP (15% y 30%) y % de fase acuosa (50% y 67%). Se trabaj&oacute; bajo las mismas condiciones de agitaci&oacute;n, temperatura y tiempo de las pruebas anteriores. Los experimentos se hicieron por triplicado usando como variable respuesta el % de recuperaci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico por parte de la fase org&aacute;nica, definido por medio de la ecuaci&oacute;n que se muestra a continuaci&oacute;n. La influencia de los factores y sus interacciones fueron evaluadas por medio de un an&aacute;lisis de varianza.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a04eq01.gif"></p>     <p><strong>Fermentaci&oacute;n extractiva</strong></p>     <p>Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o de experimentos central compuesto, que consiste en un dise&ntilde;o factorial completo 2<sup>k</sup>, donde k es el n&uacute;mero de factores a analizar, adem&aacute;s de n<sub>0</sub> puntos centrales (n<sub>0</sub> &gt;1), y tambi&eacute;n de dos puntos axiales sobre cada eje de los factores, a una distancia a (a =2<sup>k/4</sup>) a partir del punto central. El n&uacute;mero total de experimentos est&aacute; dado por: N = 2<sup>k</sup> +2k + n<sub>0 </sub>(25). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los factores utilizados en este experimento fueron; % de TBP, % de fase acuosa y pH inicial del medio. Este &uacute;ltimo factor se incluye debido a que otros autores han confirmado el gran efecto que presenta sobre la fermentaci&oacute;n extractiva (11-17, 22, 26, 27). Dado que el pH &oacute;ptimo de crecimiento de<em> Lactobacillus delbrueckii </em>spp.<em> bulgaricus </em>es de 5.5, y que algunos autores encontraron que la etapa de extracci&oacute;n se favorece a pH bajo (27), se defini&oacute; un intervalo de trabajo para el factor pH que va desde 3.9 hasta 6.1.</p>     <p>Por medio de la teor&iacute;a del dise&ntilde;o experimental (25), se definieron los niveles de cada factor (v&eacute;ase <a href="#tb01">Tabla 1</a>). Para este ensayo se tiene que    <br> 			a =1.6818, k = 3 y n<sub>0 </sub>= 6, lo cual implica un total de 20 experimentos. Se utilizaron como variables respuesta la concentraci&oacute;n de AL en la fase acuosa (ALFA) y el coeficiente de partici&oacute;n de AL (Kd = ALFO/ALFA), donde ALFO es la concentraci&oacute;n de AL en la fase org&aacute;nica. La influencia de los factores y sus interacciones sobre el modelo de regresi&oacute;n obtenido del tratamiento estad&iacute;stico, fue evaluada por medio de un an&aacute;lisis de varianza y mostrada a trav&eacute;s de diagramas de Pareto.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a04tb01.gif"><a name="tb01"></a></p>     <p><strong>Tabla 1</strong>. Factores y niveles de la fermentaci&oacute;n extractiva.</p>     <p>&nbsp;</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p><strong>Fermentaci&oacute;n control</strong></p> </font>     <p><font size="2" face="Verdana">Los resultados obtenidos (v&eacute;ase <a href="#fig01">Figura 1</a>), muestran una producci&oacute;n de AL cercana a 3 g/L (y<sub>p/s</sub> = 0.218 C-mol &aacute;cido l&aacute;ctico/C-mol lactosa), la cual est&aacute; por debajo de valores reportados en trabajos anteriores (2), (18). Esto se debe principalmente a la necesidad de una etapa de optimizaci&oacute;n del medio de cultivo, la cual se aleja del objetivo del presente trabajo. Tambi&eacute;n se observa que la m&aacute;xima concentraci&oacute;n de biomasa lograda es tan s&oacute;lo de 4.5 g/L, lo que implica que no hubo un crecimiento celular significativo, debido tanto al trabajo anaer&oacute;bico, como al efecto inhibitorio del AL sobre el crecimiento celular, ampliamente reportado en la literatura (19), (28).</font></p> <font face="Verdana" size="2">    <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a04fig01.gif"><a name="fig01"></a></p> </font>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"><strong>Figura 1.</strong> Comportamiento cin&eacute;tico de la fermentaci&oacute;n control. T 43 &deg;C, pH 5.5, velocidad de agitaci&oacute;n 125 rpm.  <img src="img/revistas/vitae/v14n2/a04sb01.gif">&Aacute;cido l&aacute;ctico, </font><font size="2" face="Verdana"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a04sb02.gif">az&uacute;cares reductores, <img src="img/revistas/vitae/v14n2/a04sb03.gif"> biomasa.</font></p> <font face="Verdana" size="2">    <p><strong>Prueba de toxicidad</strong></p>     <p>Los resultados muestran que la fase org&aacute;nica compuesta por iso<em>-</em>octano-TBP, present&oacute; una mayor toxicidad sobre el microorganismo (v&eacute;ase <a href="#fig02">Figura 2</a>), generando una disminuci&oacute;n en la producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico respecto a la fermentaci&oacute;n control, cercana a 85%. Por el contrario, el hexano-TBP y heptano-TBP mostraron un menor efecto t&oacute;xico, evidenciado en una disminuci&oacute;n en la producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico cercana a 30%. Un trabajo realizado por Demirci usando <em>Lactobacillus lactis</em> y glucosa como sustrato, mostr&oacute; que el hexano-TBP y el heptano-TBP presentan bajos efectos t&oacute;xicos (17).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a04fig02.gif"><a name="fig02"></a></p>     <p><strong>Figura 2.</strong> Prueba de toxicidad. (A) hexano, 15% de TBP, (B) hexano, 30% de TBP, (C) heptano, 15% de TBP, (D) heptano, 30% de TBP, (E) iso-octano, 15% de TBP, (F) iso-octano, 30% de TBP.</p> </font>     <p><font size="2" face="Verdana">El an&aacute;lisis de varianza (v&eacute;ase <a href="#tb02">Tabla 2</a>) muestra que efectivamente el factor tipo de solvente es significativo sobre la concentraci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico obtenida durante la fermentaci&oacute;n, mientras que el factor % de TBP y la interacci&oacute;n entre los dos factores no lo son. Una prueba Duncan mostr&oacute; que no existe diferencia significativa entre el hexano y el heptano.</font></p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a04tb02.gif"><a name="tb02"></a></p> <font size="2" face="Verdana"></font><font face="Verdana">     <p><font size="2"><strong>Tabla 2.</strong> An&aacute;lisis de varianza para la prueba de toxicidad. (A) Tipo de solvente, (B) % de TBP.</font></p> </font> <font size="2" face="Verdana">Una explicaci&oacute;n del mayor efecto t&oacute;xico mostrado por el iso-octano puede ser la presencia de interacciones dipolo-dipolo inducidas con el agua, superior a la que ejercen los otros compuestos, lo que implica que su solubilidad en el medio de cultivo es mayor, permitiendo as&iacute; un mayor contacto entre el compuesto y el microorganismo (29).</font>     <p><font size="2" face="Verdana"><strong>Prueba de capacidad extractiva</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">En esta prueba no se incluy&oacute; el iso-octano debido al gran efecto t&oacute;xico que present&oacute;. Los resultados muestran que al usar hexano como solvente, no se observ&oacute; un efecto importante por parte del factor % de TBP (v&eacute;ase <a href="#fig03">Figura 3</a>), mientras que con el % de fase acuosa el efecto fue mucho mayor. Por el contrario, al usar heptano como solvente, el efecto del % de TBP s&iacute; fue importante, mientras que el efecto de % de fase acuosa no lo fue. Se concluye que usando hexano-TBP y 50% de fase acuosa, se presenta la mayor eficiencia en la recuperaci&oacute;n de AL, que llega a valores de 55% de recuperaci&oacute;n. La m&aacute;xima recuperaci&oacute;n lograda con el heptano-TBP se present&oacute; al usar un 30% de TBP, y correspondi&oacute; a 30%. Demirci reporta que con hexano-TBP se logra una recuperaci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico de 52%, mientras que con heptano-TBP la recuperaci&oacute;n es de 38% (17). Kahya, usando una fase org&aacute;nica compuesta por alcohol oleico-Alamina 336, reporta que con 50% de fase acuosa se logra la mayor recuperaci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico, (26). Kilic, trabajando tambi&eacute;n con una fase org&aacute;nica formada por alcohol oleico, encontr&oacute; </font><font size="2" face="Verdana">que con 45% de fase acuosa se favorece el proceso de recuperaci&oacute;n de &aacute;cido c&iacute;trico (30).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a04fig03.gif"><a name="fig03"></a></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><strong>Figura 3</strong>. Prueba de capacidad extractiva. (A) hexano, 15% de TBP, 50% de fase acuosa, (B) hexano, 30% de TBP, 50% de fase acuosa, (C) hexano, 15% de TBP, 67% de fase acuosa (D) hexano, 30% de TBP, 67% de fase acuosa, (E) heptano, 15% TBP, 50% de fase acuosa, (F) heptano, 30% de TBP, 50% de fase acuosa, (G) heptano, 15% de TBP, 67% de fase acuosa, (H) heptano, 30% de TBP, 67% de fase acuosa.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">El an&aacute;lisis de varianza (v&eacute;ase <a href="#tb03">Tabla 3</a>), muestra que el tipo de solvente y el % de fase acuosa, con su respectiva interacci&oacute;n, son significativos. Los resultados indican que la capacidad extractiva de &aacute;cido l&aacute;ctico est&aacute; directamente relacionada con la cantidad de fase org&aacute;nica utilizada.</font></p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a04tb03.gif"><a name="tb03"></a></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><strong>Tabla 3.</strong> An&aacute;lisis de varianza para la prueba de capacidad extractiva. (A) Tipo de solvente, (B) % de TBP, (C) % de fase acuosa.</font></p>     <p><strong><font size="2" face="Verdana">Fermentaci&oacute;n extractiva</font></strong></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Basados en los resultados de las pruebas anteriores, se seleccion&oacute; el hexano como solvente, por presentar un bajo efecto t&oacute;xico sobre el microorganismo y permitir una mejor extracci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico. Los factores % de TBP y % de fase acuosa se siguieron usando, con lo cual se busc&oacute; evaluar si existe alg&uacute;n tipo de interacci&oacute;n de &eacute;stos con el pH inicial del medio.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Con ayuda del programa estad&iacute;stico Statgra&shy;phics, se obtuvieron los modelos de regresi&oacute;n para </font><font size="2" face="Verdana">ALFA  			 </font> <font size="2" face="Verdana">y Kd, que se muestran a continuaci&oacute;n:</font></p> <font face="Verdana"></font>                 <p><font size="2" face="Verdana">22763.2 - 9351.22 * X<sub>1</sub> - 19.8674X<sub>2</sub> - 59.593 * X<sub>3</sub> + 1063.53 * X<sub>1</sub><sup>2</sup> - 5.76517 * X<sub>1</sub> * X<sub>2</sub> + 1.58125 * X<sub>1</sub> * X<sub>3</sub> + 1.31936 * X<sub>2</sub><sup>2</sup> - 0.284597 * X<sub>2</sub> * X<sub>3</sub> + 0.540844 * X<sub>3</sub><sup>2</sup> (R<sup>2</sup> = 94.7520)</font></p>                 <p><font size="2" face="Verdana">Kd = -4.38382 + 2.00094*X<sub>1</sub> + 0.0684015*X<sub>2</sub> + 0.000399212*X<sub>3</sub> - 0.242869*X<sub>1</sub><sup>2</sup> - 0.00141791*X<sub>1</sub>*X<sub>2</sub> + 0.00230559*X<sub>1</sub>*X<sub>3</sub> -0.00141818*X<sub>2</sub><sup>2</sup> + 0.0000582631*X<sub>2</sub>*X<sub>3</sub> - 0.000144769*X<sub>3</sub><sup>2</sup> (R<sup>2</sup> = 98.8611)</font></p>                 ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">Donde:</font></p>                 <p><font size="2" face="Verdana"> X<sub>1</sub>: pH inicial del medio de cultivo</font></p>                 <p><font size="2" face="Verdana">X<sub>2</sub>: % de TBP</font></p>                 <p><font size="2" face="Verdana">X<sub>3</sub>: % de fase acuosa</font></p>                 <p><font size="2" face="Verdana">El diagrama de Pareto para la variable respuesta ALFA (v&eacute;ase <a href="#fig04">Figura 4</a>), muestra que &uacute;nicamente el factor pH es significativo sobre el modelo (P = 0.0000 &lt; 0.05), lo cual puede ser evidenciado tambi&eacute;n por medio de las superficie de respuesta, donde se observa, adem&aacute;s, que a valores de pH altos se favorece la producci&oacute;n de AL (v&eacute;ase <a href="#fig05">Figura 5</a>).</font></p>                 <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a04fig04.gif"><a name="fig04"></a></p>                 <p><font size="2" face="Verdana"><strong>Figura 4.</strong> Diagrama de Pareto para la variable respuesta ALFA. (A) % de TBP, (B) % de fase acuosa.</font></p>                 <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a04fig05.gif"><a name="fig05"></a></p>                 <p><font size="2" face="Verdana"><strong>Figura 5.</strong> Superficies de respuesta para la variable respuesta ALFA.</font></p>                 <p><font size="2" face="Verdana">El diagrama de Pareto para la variable respuesta Kd (v&eacute;ase <a href="#fig06">Figura 6</a>), muestra que tanto el pH (P = 0.0000 &lt; 0.05), como el % fase acuosa (P=0.0038 &lt; 0.05), son significativos sobre el modelo, aunque su interacci&oacute;n no lo es. Por otra parte el efecto lineal del factor % de TBP, no es significativo, pero su efecto cuadr&aacute;tico s&iacute; lo es (P = 0.0001 &lt; 0.05), por lo que se deduce que este &uacute;ltimo factor tambi&eacute;n es significativo, lo </font><font size="2" face="Verdana">cual  			             </font>             <font face="Verdana" size="2">se justifica con ayuda del principio estad&iacute;stico denominado parsimonia. Observando las superficies de respuesta (v&eacute;ase <a href="#fig07">Figura 7</a>), se observa que a valores de pH menores de 4.5, concentraci&oacute;n de TBP cercana a 25% y relaci&oacute;n volum&eacute;trica de fase acuosa menor de 55%, se favorece la recuperaci&oacute;n de AL, llegando a ser del orden de 40%.</font><font face="Verdana">                 ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a04fig06.gif"><a name="fig06"></a></p>                 <p><font size="2"><strong>Figura 6.</strong> Diagrama de Pareto para la variable respuesta Kd. (A) % de TBP, (B) % de fase acuosa.</font></p>                 <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a04fig07.gif"><a name="fig07"></a></p>             </font>                 <p><font size="2" face="Verdana"><strong>Figura 7.</strong> Superficies de respuesta para la variable Kd.</font></p>                 <p><font size="2" face="Verdana">Comparando los resultados experimentales para ALFA y Kd con los obtenidos a trav&eacute;s de los modelos matem&aacute;ticos (v&eacute;ase <a href="#tb04">Tabla 4</a>), se concluye que dichos modelos son adecuados para explicar el comportamiento de las variables. Adem&aacute;s, al analizar los resultados obtenidos con respecto al efecto del factor pH, se concluye que el proceso de fermentaci&oacute;n extractiva para la producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico, debe ser realizado a valores de pH cercanos a 5, buscando de esta manera un equilibrio entre las mejores condiciones de producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico y de extracci&oacute;n del mismo.</font></p>                 <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a04tb04.gif"><a name="tb04"></a></p>                 <p><font size="2" face="Verdana"><strong>Tabla 4.</strong> Descripci&oacute;n </font><font size="2" face="Verdana">de experimentos y resultados de la fermentaci&oacute;n extractiva. </font> </p>             <font face="Verdana"></font>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>AGRADECIMIENTOS</strong></font></p> <font face="Verdana">                 <p><font size="2">Para la realizaci&oacute;n del presente trabajo se cont&oacute; con el apoyo del laboratorio de Bioconversiones de la Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. De la misma forma se agradece a lso doctores Sebasti&aacute;n Cavalitto y Roque Hours, del Centro de Investigaciones y Desarrollo en fermentaciones Industriales (CINDEFI), La Plata, Buenos Aires, Argentina.</font></p> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</strong></font></p> <font face="Verdana">     <!-- ref --><p><font size="2">1. Zhan YZ, Bon J, Joan MK. Production of lactic acid from renewable materials by <em>Rhizopus</em> fungi. Chem Eng Process. 2006; (46): 361.-374.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0121-4004200700020000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">2. Hofuendahl K, Hahn-Hagerdal B. Factors affecting the fermentative lactic acid production from renewable resources. Enz Microb Tech. 2000, (26): 87-107.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0121-4004200700020000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">3. Gonz&aacute;lez MI, &Aacute;lvarez S, Riera F, &Aacute;lvarez R. Economic evaluation of an integrated process for lactic acid production from ultrafiltred whey. J Food Eng. 2006; (80): 553-561.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0121-4004200700020000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">4. Planas J, Varelas V, Tjerneld F, Hahn-H&auml;gerdal B. Amine-based aqueous polymers for the simultaneous titration and extraction of lactic acid in aqueous two-phase systems. J Chrom B. 1998; (711): 265-275.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0121-4004200700020000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">5. Joglekar HG, Imran R, Sureh B, Kulkarni BD, Ajit J. Comparative assesment of downstream procesing options for lactic acid. Separ Techn. 2006; (52): 1-17.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0121-4004200700020000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">6. Frieling              </font><font size="2">P, Sch&uuml;gerl K. Recovery of lactic acid from aqueous model solutions and fermentation broths. Process Biochem. 1999; (34): 685-696.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0121-4004200700020000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">7. Pai R, Doherty M, Malon M. Design of reactive extraction systems for bioproduct recovery. AIChe Journal.2002; 48 (3): 514-526.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0121-4004200700020000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">8. Ye K, Jin S, Shimizu K. Performance improvement of lactic acid fermentation by multistage extractive fermentation. J Ferm Bioeng. 1996; 81 (3): 240-246.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0121-4004200700020000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">9. Cascaval D, Oniscu C, Dumitru I., Galaction A. New extraction techniques in biotechnology. Roum Biotechnol Lett. 2001; 6 (3): 207-232.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0121-4004200700020000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">10. 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Massachusetts: Blackwell Science; 1999. p. 233-236.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0121-4004200700020000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">12. Yabannavar V, Wang D. Extractive fermentation for lactic acid production. Biotech Bioeng. 1991; 37: 1095-1100.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0121-4004200700020000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">13. San Mart&iacute;n M, Pazos C, Coca J. Liquid-liquid extraction of lactic acid with alamine 336. J Chem Tech Biotechnol. 1996; (65): 281-285.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0121-4004200700020000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">14. Choudhury B, Basha A, Swaminathan T. Study of lactic acid extraction with higher molecular weight aliphatic amines. J. Chem. Technol. Biotechnol. 1998; (72): 111-116.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0121-4004200700020000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">15. Matsumoto M, Takahashi T, Fukushima K. Synergistic extraction of lactic acid with alkylamine and tri-n-butylphosphate: effects of amines, diluents and temperature. Separ Purif Technol. 2003; (33): 89-93.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0121-4004200700020000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">16. Matsumoto M, Otono T, Kondo K. Synergistic extraction of organic acids with tri-n-octylamine and tri-n-butylphosphate. Separation and Purificati&oacute;n Technology. 2001; (24): 337-342.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0121-4004200700020000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">17. Demirci Pometto A, Harkins K. Rapid screening of solvents and carrier compounds for lactic acid recovery by emulsion liquid extraction and toxicity on <em>Lactobacillus casei</em> (ATCC 11443). Bioseparation. 1999; (7): 297-308.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0121-4004200700020000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">18. Pe&ntilde;uela M, Vargas G, Torres AM, R&iacute;os R. Evaluaci&oacute;n de medios de cultivo preparados a partir de suero de leche enriquecido para la producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico, con <em>Lactobacillus</em> <em>plantarum</em> y <em>Lactobacillus casei</em>. Revista Facultad de Ingenier&iacute;a. 2001; (24): 35-39.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0121-4004200700020000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">19. Trujillo M, Su&aacute;rez F, Gallego D. Fermentaci&oacute;n l&aacute;ctica en continuo a partir de suero dulce de leche desproteinizado. Rev Col Biotecnol. 1998; 1 (1): 45-50.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0121-4004200700020000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">20. Cen P, Tsao G. Recent advances in the simultaneous bioreaction and product separation processes. Sept. Technol. 1993; (3): 58-75.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0121-4004200700020000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">21. Staniforth M, Hanlon M, Khong T. Comparative study of lactic acid and polylactides using static headspace, gas chromatography and high-performance liquid chromatography. J Chrom. 1999; (833): 195-208.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0121-4004200700020000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">22. Tik N, Bayraktar E, Mehmetoglu &Uuml;. In situ reactive extraction of lactic acid from fermentation media. J Chem Tech Biotech. 2001; (76): 764-768.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0121-4004200700020000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">23. Miller GL. Use the dinitrosalicylic acid reagent for determination of reducing sugar. Ana Chem<em>.</em> 1959; 31 (3): 426-430.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0121-4004200700020000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">24. Gallego Cuenca J. An&aacute;lisis de tres alternativas para la separaci&oacute;n de las prote&iacute;nas del suero l&aacute;cteo proveniente de queser&iacute;as. Medell&iacute;n: Universidad Nacional de Colombia; 1988.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0121-4004200700020000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">25. Ghosh S, Swaminathan T. Optimization of process variables for the extractive fermentation of 2,3-butadineol by <em>Klebsiella oxytoca</em> in aqueous two phase system using response surface methodology. Chem Biochem Eng. 2003; 17 (49): 319-325.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0121-4004200700020000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">26. Kahya E, Bayraktar E, Mehmetogl&ucirc;. Optimization of process parameters for reactive lactic acid extraction. Turk J Chem. 2001; (25): 223-230.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0121-4004200700020000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">27. Yankov D, Moliner J, Albert J, Malmary G, Kyuchoukov G. Lactic acid extraction from aqueous solutions with tri-n-octylamine dissolved in decanol and dodecano. Biochem Eng J. 2004; (21): 63-71.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0121-4004200700020000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">28. Balannec B, Bouguettoucha A, Amrane A. Unstructured model for batch cultures without pH control of <em>Lactobacillus helveticus - </em>inhibitory effect of the undissociated lactic acid. Biochem Engin J. 2007; 35(3): 289-294.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0121-4004200700020000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">29. Kotz J, Treichel P. Qu&iacute;mica y reactividad qu&iacute;mica. 5 Ed. M&eacute;xico DF: Thomson Internacional; 2003. p. 514-515.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0121-4004200700020000400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2">30. Kilic M, Bayraxtar E, Ates S, Mehmetoglu U. Investigation of extractive citric acid fermentation using response-surface methodology. Process Biochem. 2002; (37): 759-767.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0121-4004200700020000400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana">Recibido: Junio 12 de 2007 Aceptado: Septiembre 20 de 2007</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2"><a href="#autor">*</a><a name="autor2"></a>Autor a quien se debe dirigir la correspondencia: <a href="mailto:adzapata@unal.edu.co">adzapata@unal.edu.co</a></font></p>      ]]></body><back>
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