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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[ACCIÓN INSECTICIDA DE EXTRACTOS ETANÓLICOS DE ESPONJAS DEL GOLFO DE URABÁ SOBRE LARVAS DE Aedes aegypti y Culex quinquefasciatus]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Due to increasing resistance of the vectors mosquitoes causing diseases of importance in public health, to chemical insecticides, is necessary the searching for alternative control methods, as the use of marine sponges extracts with insecticide activity, owing to its capacity of biodegradation and generation of minor environmental damage. In this work the insecticide activity is evaluated for the ethanol extracts of the marine sponges Amphimedon compressa, Topsentia ophiraphidites, Svenzea zeai, Ircinia campana and Agelas sventres, on stadium IV larvae of Aedes aegypti and Culex quinquefasciatus, in conditions of laboratory (25ºC and 75 % Relative Humidity). The follow-up of the analysis is realized for evaluation and comparison of the percentage of mortality of each species at each extract concentration. The evaluated parameter is the response of the larvae to the effects of the ethanolic extracts of the sponges at three concentrations, 500, 200 and 100 ppm. Results demonstrates that Ircinia campana extract is most active against two insects, as long as the extract of Amphimedon compressa has a higher toxic effect on Aedes aegypti than on Culex quinquefasciatus.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana" size="4"></font>     <p align="center"><font size="4" face="Verdana"><strong>ACCI&Oacute;N INSECTICIDA DE EXTRACTOS ETAN&Oacute;LICOS  DE ESPONJAS DEL GOLFO DE URAB&Aacute; SOBRE LARVAS DE <em>Aedes aegypti y Culex quinquefasciatus</em></strong></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="4" face="Verdana">INSECTICIDE ACTION OF ETHANOL EXTRACTS OF SPONGES FROM URAB&Aacute; GULF ON <em>Aedes aegypti</em> AND <em>Culex quinquefasciatus</em> larvae</font></p> <font face="Verdana" size="4">     <p></p> </font><font face="Verdana" size="2"> </font>    <p><font size="2" face="Verdana">Alejandro MART&Iacute;NEZ M.<sup>1<a href="#autor2">*</a><a name="autor"></a></sup>, Elkin GALEANO J.<sup>1</sup>, Jorge CADAVID<sup>2</sup>, Yuly MIRANDA R.<sup>1</sup>, Juliana LLANO L.<sup>3</sup> y Karla MONTALVO M.<sup>3</sup></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><sup>1</sup>Grupo de Investigaci&oacute;n de Productos Naturales Marinos, Facultad de Qu&iacute;mica Farmac&eacute;utica, Universidad de Antioquia. Calle 67 No 53-108, Bloque 2. Medell&iacute;n, Colombia.    <br>   <sup>2</sup>Grupo de Investigaci&oacute;n de Entomolog&iacute;a M&eacute;dica, Facultad de Medicina, Universidad de Antioquia. Calle 67 No 53-108. Medell&iacute;n, Colombia.    <br> <sup>3</sup></font><font size="2" face="Verdana">Estudiantes de Qu&iacute;mica Farmac&eacute;utica, Universidad de Antioquia. Medell&iacute;n, Colombia.</font></p> <hr size="1" noshade> <font size="3" face="Verdana"><strong>RESUMEN</strong></font><font face="Verdana" size="2">     <p>Dado el incremento de la resistencia a los insecticidas qu&iacute;micos, de los mosquitos vectores de enfermedades de importancia en salud p&uacute;blica, se realiza la b&uacute;squeda de m&eacute;todos alternativos de control, como el uso de extractos de esponjas marinas con potencial actividad insecticida, debido a su capacidad de biodegradaci&oacute;n, generando menor da&ntilde;o ambiental. En este trabajo se eval&uacute;a la actividad insecticida de extractos de las esponjas <em>Amphimedon compressa, Topsentia ophiraphidites, Svenzea zeai, Ircinia campana </em>y<em> Agelas sventres </em>sobre larvas de IV estadio de <em>Aedes aegypti </em>y <em>Culex quinquefasciatus</em>, en condiciones de laboratorio (25<sup>o</sup>C y 75% de humedad relativa). El seguimiento del an&aacute;lisis se realiza evaluando y comparando el porcentaje de mortalidad de cada especie frente a cada concentraci&oacute;n de extracto. El par&aacute;metro evaluado es la respuesta de las larvas a los efectos de los extractos etan&oacute;licos de las esponjas en tres concentraciones, 500, 200 y 100 ppm; demostr&aacute;ndose que los extractos de <em>Ircinia campana</em> son los m&aacute;s activos contra ambos insectos, y el extracto de <em>Amphimedon compressa </em>tiene mayor efecto t&oacute;xico sobre las larvas de <em>Aedes aegypti </em>que sobre las larvas de <em>Culex quinquefasciatus</em>.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p></p>     <p><strong>Palabras clave: </strong><em>Esponjas marinas, insecticida, Golfo de Urab&aacute;, Aedes aegypti,</em> <em>Culex quinquefasciatus.</em></p> </font> <hr size="1" noshade> <font size="3" face="Verdana"><strong>ABSTRACT</strong></font><font face="Verdana" size="2">     <p>Due to increasing resistance of the vectors mosquitoes causing diseases of importance in public health, to chemical insecticides, is necessary the searching for alternative control methods, as the use of marine sponges extracts with insecticide activity, owing to its capacity of biodegradation and generation of minor environmental damage. In this work the insecticide activity is evaluated for the ethanol extracts of the marine sponges<em> Amphimedon compressa, Topsentia ophiraphidites, Svenzea zeai, Ircinia campana and Agelas sventres</em>,<em> </em>on stadium IV larvae of <em>Aedes aegypti</em> and <em>Culex quinquefasciatus</em>, in conditions of laboratory (25<sup>o</sup>C and 75 % Relative Humidity). The follow-up of the analysis is realized for evaluation and comparison of the percentage of mortality of each species at each extract concentration. The evaluated parameter is the   response of the larvae to the effects of the ethanolic extracts of the sponges at three concentrations, 500, 200 and 100 ppm. Results demonstrates that <em>Ircinia campana</em> extract is most active against two insects, as long as the extract of <em>Amphimedon compressa</em> has a higher toxic effect on <em>Aedes aegypti</em> than on <em>Culex quinquefasciatus</em>.</p>     <p><strong>Keywords: </strong>Marine s<em>ponges, Urab&aacute;'s Gulf, insecticide, Aedes aegypti, Culex quinquefasciatus.</em></p> </font> <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"></font>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N</strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p>Las especies <em>Aedes aegypti y Culex quinquefasciatus, </em>son reconocidas vectoras de enfermedades de gran importancia en salud p&uacute;blica como la filariasis (1), la encefalitis equina venezolana (2), el dengue y la fiebre amarilla (3). El <em>Aedes aegypti</em> es una especie ampliamente distribuida en el mundo entre los 45&ordm; de latitud norte y los 35&ordm; de latitud sur, sus h&aacute;bitos son esencialmente urbanos y periurbanos; es una especie holomet&aacute;bola cuyas larvas se cr&iacute;an en todo tipo de recipientes artificiales que contengan agua limpia como llantas, tanques, canecas, botellas, envases pl&aacute;sticos, y canaletas de techo, (4); El <em>Culex quinquefascitus </em>(Say 1823) es una importante especie vectora de la filarisis linf&aacute;tica en Asia y &Aacute;frica. En Am&eacute;rica es importante en la transmisi&oacute;n del virus de la Encefalitis Equina Venezolana (EEVV), tanto en su fase enzo&oacute;tica como en la epizo&oacute;tica (5). Para el control de estas especies vectoras se utilizan especialmente insecticidas qu&iacute;micos tales como Malathion&reg;, Lambdacihalotrina&reg;, y Fenitroti&oacute;n&reg;, los cuales presentan problemas ambientales y generaci&oacute;n de problemas resistentes (6), es por ello que se buscan otras alternativas frente a este tipo de insecticidas qu&iacute;micos utilizados actualmente para controlar las fuentes de tales enfermedades.</p> </font>    <p><font size="2" face="Verdana">Una de estas alternativas la constituyen los productos naturales marinos, ya que diversas investigaciones han demostrado que los organismos marinos son una fuente natural rica en compuestos con actividad biol&oacute;gica (7), entre las cuales se reportan compuestos anticancer&iacute;genos (8), antimicrobianos, antimic&oacute;ticos (9-10), antiinflamatorios (11), y antimal&aacute;ricos (12), algunos de ellos ya en estudios precl&iacute;nicos y cl&iacute;nicos avanzados (13). Pero estos compuestos no s&oacute;lo son de inter&eacute;s biom&eacute;dico, tambi&eacute;n hay metabolitos bioactivos que est&aacute;n comenzando a ser investigados, con el fin de encontrarles beneficios de importancia ambiental y agr&iacute;cola. En el caso particular de estudios de productos naturales marinos con actividad insecticida, hasta 1997 se hab&iacute;an reportado unos 40 compuestos insecticidas  de origen marino, los cuales incluyen fundamentalmente diez clases de n&uacute;cleos: monoterpenos, compuestos de 15 &aacute;tomos de carbono polihalogenados, diterpenos como un grupo de diterp&eacute;nlactonas denominadas briaranos, diterpenos tipo asbestitina, diterpenos alic&iacute;clicos, p&eacute;ptidos, amino&aacute;cidos, derivados fosforilados y derivados azufrados (14). En 2003, estos mismos autores evaluaron la actividad insecticida de 11 compuestos marinos, de los cuales solo 3 que corresponden a alcaloides tipo manzamina, mostraron actividad. Seg&uacute;n dichos autores el potencial de encontrar sustancias insecticidas en los organismos marinos es muy amplio, dado lo poco que se han investigado y a la hip&oacute;tesis de que los insectos presentan cada vez una mayor resistencia contra sustancias insecticidas de origen terrestre, mientras que las de origen marino no tendr&iacute;an este inconveniente (15). Para algunos de estos compuestos se han realizado estudios de relaci&oacute;n estructura-actividad, como los diterpenoides tipo neo-clerodano (16).</font></p> <font face="Verdana" size="2">    <p>Es interesante anotar como materiales marinos como la tierra de diatomeas tiene actividad insecticida, no debida a sustancias qu&iacute;micas org&aacute;nicas sino al da&ntilde;o f&iacute;sico de los materiales inorg&aacute;nicos que las constituyen (17).</p>     <p>Con este estudio se eval&uacute;a la actividad insecticida de extractos etan&oacute;licos de algunas esponjas marinas del Golfo de Urab&aacute; en concentraciones de 500, 200 y 100 ppm sobre larvas de <em>Aedes aegypti </em>y <em>Culex quinquefasciatus </em>mediante bioensayos, para desarrollar una forma eficaz de control sobre los focos de propagaci&oacute;n de enfermedades que pongan en riesgo la salud p&uacute;blica, como la fiebre amarilla y el dengue.</p> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3" face="Verdana"><strong>METODOLOG&Iacute;A</strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p><strong>Recolecci&oacute;n y tratamiento preliminar de las esponjas</strong></p> </font>    <p><font size="2" face="Verdana">Las muestras fueron colectadas y clasificadas por el Bi&oacute;logo Marino Diego Valderrama, utilizando un equipo de buceo aut&oacute;nomo a profundidades entre 9 y 21 m, abarcando 12 kil&oacute;metros de costa desde los 8&deg; 35&acute; de latitud norte cerca a la localidad de Acand&iacute; (Choc&oacute;) hasta la frontera entre Colombia y Panam&aacute; en Cabo Tibur&oacute;n (8&deg; 41&acute; N) en febrero de 2001. El material extra&ntilde;o fue removido con un cuchillo de las muestras, las cuales se lavaron varias veces con agua destilada para limpiarlas de la epibiosis. Posteriormente se congelaron a -10&deg;C para su env&iacute;o al Laboratorio de Productos Naturales Marinos de la Universidad de Antioquia. Una muestra del material animal fue depositada en el Museo de Historia Natural del INVEMAR (MHNMC), Santa Marta.</font></p> <font face="Verdana" size="2">    <p><strong>Extracci&oacute;n</strong></p>     <p>Las esponjas se secaron a 40&deg;C por 12 horas en una estufa convencional, y posteriormente se molieron. La esponja molida fue sometida a extracci&oacute;n exhaustiva con etanol destilado. Cada extracto fue filtrado y concentrado a presi&oacute;n reducida y baja temperatura por medio de un rota evaporador. Los extractos obtenidos, se envasaron en recipientes de vidrio adecuados y protegidos de la luz.</p>     <p><strong>Mantenimiento de las colonias en el laboratorio</strong></p>     <p>Para los bioensayos se utilizaron individuos en estado larval de <em>Aedes aegypti </em>y <em>Culex quinquefasciatus</em>. Las colonias fueron mantenidas en el Insectario del Laboratorio de Entomolog&iacute;a M&eacute;dica (GEM) de la Universidad de Antioquia bajo condiciones de temperatura promedio 25<sup>o</sup>C, humedad relativa de 75% y alimentaci&oacute;n para las larvas con 0.5 g<em> </em>de alimento para roedores (<em>Conejina</em><sup>&reg;</sup>) /1.5 Lt de agua libre de cloro; los adultos fueron mantenidos en jaulas entomol&oacute;gicas donde se ingresaba tres veces por semana un rat&oacute;n como fuente de sangre para la ovipostura, tambi&eacute;n se alimentaban con agua azucarada. La colonia de <em>Culex quinquefasciatus </em>se aliment&oacute; en la noche. Diariamente el medio que contiene las larvas (agua libre de cloro) fue aseado, igualmente se retiraron las pupas de dicho medio y estas fueron transferidas a recipientes tapados a las cajas enmalladas, de estos recipientes se liberaron los adultos cada 24 horas.</p>     <p><strong>Preparaci&oacute;n de las concentraciones requeridas de los extractos</strong></p> </font>    <p><font size="2" face="Verdana">Para preparar la soluci&oacute;n de extracto etan&oacute;lico de esponja a 500 ppm, se pes&oacute; en un vial 250 mg de extracto, el cual fue disuelto con 0.5 mL de dimetilsulf&oacute;xido (DMSO) y agitado en un agitador Vortex<sup>&reg;</sup> para la completa disoluci&oacute;n. Posteriormente se lleva a un volumen de 500.0 mL con agua destilada. La concentraci&oacute;n final de DMSO en esta soluci&oacute;n es de 0.01%.</font></p> <font face="Verdana" size="2">    <p>De la soluci&oacute;n de 500 ppm se preparan las soluciones con concentraci&oacute;n de 200 ppm y 100 ppm, con una concentraci&oacute;n final de DMSO de 0.004% y 0.002%, respectivamente.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><strong>Ensayo biol&oacute;gico</strong></p>     <p>Para cada una de las especies de mosquitos (<em>Aedes aegypti y Culex quinquefasciatus)</em> se realizaron tres repeticiones con cada una de las concentraciones (500, 200 y 100 ppm) de cada extracto (<em>Topsentia ophiraphidites</em>, <em>Amphimedon compressa, Svenzea zeai, Ircinia campana </em>y<em> Agelas sventres</em>). Cada repetici&oacute;n estuvo conformada por dos r&eacute;plicas problema, una r&eacute;plica control negativo y una r&eacute;plica control positivo. La r&eacute;plica problema se realiz&oacute; en un vaso de precipitados con 100 mL de soluci&oacute;n muestra a la concentraci&oacute;n determinada, para evaluar 20 larvas de la especie establecida; la r&eacute;plica control negativo se realiz&oacute; con 100 mL de agua destilada, evalu&aacute;ndose 20 larvas del mosquito designado; la r&eacute;plica control positivo se realiz&oacute; con 100 mL de una soluci&oacute;n al 0.05% de ABATE<sup>&reg;</sup> (insecticida comercial) al cual se le adicionan 20 larvas.</p>     <p>De igual manera se realiz&oacute; un bioensayo con DMSO en agua destilada a concentraciones de 0.8%, 0.5% y 0.2%, para determinar si este solvente es letal con las larvas de <em>Aedes aegypti y Culex quinquefasciatus.</em></p>     <p>A cada r&eacute;plica se le adicion&oacute; una pizca de alimento. La actividad insecticida se determin&oacute; haciendo lecturas de mortalidad a las 24 horas tiempo durante el cual fueron mantenidas en la oscuridad, para evitar degradaci&oacute;n de los compuestos en cada soluci&oacute;n muestra. Para evaluar la mortalidad se toma como criterio la no respuesta de las larvas a un estimulo punzante.</p>     <p><strong>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</strong></p>     <p>El an&aacute;lisis de los resultados se realiz&oacute; bajo un paquete estad&iacute;stico de SPSS Versi&oacute;n 11.0 para Windows&reg;, tomando como unidad de c&aacute;lculo o referencia la r&eacute;plica, los datos se concluyeron con un intervalo de confianza del 95% para la extrapolaci&oacute;n a las poblaciones. Las repeticiones con las que se trabaj&oacute; presentaron un porcentaje de mortalidad en el blanco menor al 5% y un porcentaje de mortalidad en el control positivo del 100%.</p>     <p>En los ensayos realizados con DMSO, se observa que este solvente a las concentraciones de 0.8%, 0.5% y 0.2% no es letal para las larvas, present&aacute;ndose una mortalidad del 0% en las concentraciones mencionadas.</p>     <p>Las gr&aacute;ficas 1 y 2, muestran los resultados de los ensayos de mortalidad contra <em>Aedes aegypti y Culex quinquefasciatus</em>, para las 5 especies de esponjas estudiadas.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a12fig01.gif"></p>     <p><strong>Gr&aacute;fica 1.</strong> Porcentaje de mortalidad de las 5 especies de esponjas estudiadas contra larvas de <em>C. quinquefasciatus</em>.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a12fig01.gif"></p>     <p><strong>Gr&aacute;fica 2.</strong> Porcentaje de mortalidad de las 5 especies de esponjas estudiadas contra larvas de <em>A. aegypti</em>.</p>     <p>De acuerdo con estos resultados, el extracto m&aacute;s activo contra <em>C. quinquefasciatus</em>, es el de 500 ppm de <em>I. campana</em>, el cual produce una mortalidad promedio del 70%. Mientras tanto, los extractos de las otras esponjas estudiadas no sobrepasan el promedio del 45% de mortalidad a esta misma concentraci&oacute;n.</p> </font>    <p><font size="2" face="Verdana">En el caso de las larvas de <em>A. aegypti</em>, los extractos m&aacute;s activos fueron a 500 ppm de las esponjas <em>I. campana </em>y <em>A. compressa</em>, con un promedio de mortalidad del 72,5% de mortalidad; mientras los extractos de las otras tres especies de esponjas analizadas no superan el 49% de mortalidad.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">El extracto de la esponja <em>A. sventres</em> tuvo resultados muy similares contra las larvas de <em>A. aegypti</em> como para <em>C. quinquefasciatus</em> a 500 ppm, con mortalidades del 43.3% y del 45%, respectivamente. Igual sucede con el extracto de <em>S. zeai</em> a 500 ppm, pues los resultados entre las especies de insectos muestran ser parecidos.</font></p> <font face="Verdana" size="2">    <p>La esponja que menos porcentaje de mortalidad mostr&oacute; para <em>A. aegypti</em> como para <em>C. quinquefasciatus</em>, fue <em>T. ophiraphidites. </em>Los resultados muestran una mortalidad del 10.8% y el 16.6% para estas dos especies a una concentraci&oacute;n de 500 ppm. De acuerdo a los resultados presentados, se puede observar una tendencia a que los extractos aumentan su actividad insecticida a medida que aumenta su concentraci&oacute;n. Sin embargo, la &uacute;nica esponja que a las concentraciones de 100 ppm y 200 ppm tiene la misma mortalidad es <em>T. ophiraphidites</em>, tanto en <em>Aedes aegypti</em> como en <em>Culex quinquefasciatus.</em></p>     <p>Para <em>A. compressa</em>, se puede observar la poca diferencia que hay entre los resultados obtenidos en las concentraciones de 200 ppm y 500 ppm, lo que indica una diferencia muy peque&ntilde;a o nula de la actividad insecticida con el aumento de la concentraci&oacute;n del extracto. <em>I. campana</em>, result&oacute; ser la esponja que tiene mayor actividad insecticida de las esponjas en estudio, pues aunque tiene la misma mortalidad que <em>A. compressa</em> contra <em>A. aegyti</em>, es la que mayor actividad presenta contra <em>C. quinquefasciatus</em>.</p>     <p>Dada la relevancia de los porcentajes de mortalidad en el extracto de <em>I. campana </em>sobre larvas de <em>A. aegypti </em>y <em>C. quinquefasciatus </em>en IV estad&iacute;o en concentraciones de 500 ppm y 200 ppm, es recomendable continuar con el an&aacute;lisis, reconocimiento, aislamiento y caracterizaci&oacute;n de la(s) sustancia(s) presentes en dicha esponja responsables de tal efecto con el fin de desarrollar un m&eacute;todo alternativo a los insecticidas qu&iacute;micos utilizados actualmente. Adem&aacute;s existen trabajos reportados que demuestran que esta esponja contiene sustancias biol&oacute;gicamente activas (18). Lo mismo sucede con la esponja <em>A. compressa</em> que mostr&oacute; una alta acci&oacute;n insecticida, es importante seguir desarrollando m&eacute;todos que permitan determinar cu&aacute;les son las sustancias encargadas de ejercer esta acci&oacute;n insecticida, pues se conoce que esta esponja contiene una serie de metabolitos altamente citot&oacute;xicos los cuales han sido estudiados para fines terap&eacute;uticos (19-21), y que quiz&aacute;s sean alguno de estos compuestos los responsables de la muerte de los mosquitos en estudio.</p> </font>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>CONCLUSIONES</strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La especie <em>Culex quinquefasciatus</em> en comparaci&oacute;n a <em>Aedes aegypti </em>mostr&oacute; menos sensibilidad a los extractos evaluados de las cinco esponjas del Golfo de Urab&aacute;.  Los mayores porcentajes de inhibici&oacute;n contra esta esponja se presentaron con el extracto de <em>I. campana</em> a una concentraci&oacute;n de 500 ppm (70%), siendo importante recordar, que el control positiv&oacute; mostr&oacute; 100% de inhibici&oacute;n en todas las r&eacute;plicas contra estas larvas a una concentraci&oacute;n de 0,5 ppm.</p>     <p>Los mayores porcentajes de mortalidad de larvas de <em>Aedes aegypti</em> se obtuvieron con los extractos de <em>A. compressa e I. campana</em> a 500 ppm, con un valor de 72.5%. Mientras que la esponja <em>T. ophiraphidites </em>mostr&oacute; los menores valores promedios de inhibici&oacute;n contra ambas cepas de larvas, sin superar el 16% de mortalidad contra ninguna de las dos especies evaluadas. Esto hace poco atractiva a esta especie para ser utilizado su extracto crudo etan&oacute;lico como insecticida, aunque esta especie ya haya demostrado tener otras actividades biol&oacute;gicas como: inhibidora del VIH y antimicrobiana (10).</p>     <p>Es importante resaltar, que la esponja con los resultados m&aacute;s representativos fue <em>I. campana, </em>pues la actividad insecticida que tuvo para las dos especies de insectos fue mayor a los dem&aacute;s resultados a 500 ppm, 70% de mortalidad contra las larvas de<em> Culex quinquefasciatus</em> y un 72,5% de mortalidad contra las larvas de <em>Aedes aegypti</em>. En pr&oacute;ximas investigaciones, se realizar&aacute; una caracterizaci&oacute;n qu&iacute;mica biodirigida de los metabolitos secundarios presentes en el extracto etan&oacute;lico de <em>I. campana</em> y <em>A. compressa</em> con el fin de determinar los compuestos implicados en la acci&oacute;n insecticida para evaluarlos individualmente y poder tener un valor objetivo de la dosis letal de cada uno de los componentes del extracto.</p> </font>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>AGRADECIMIENTOS</strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p>Agradecemos al Bi&oacute;logo marino Diego Valderrama por la recolecci&oacute;n y clasificaci&oacute;n taxon&oacute;mica de las muestras de esponjas. Al Comit&eacute; para el Desarrollo de la Investigaci&oacute;n CODI, por la financiaci&oacute;n del proyecto de menor cuant&iacute;a “Evaluaci&oacute;n de la actividad insecticida de extractos polares de las esponjas marinas del Golfo de Urab&aacute; sobre larvas de <em>Aedes aegypti </em>y<em> Culex quinquefasciatus </em>(D&iacute;ptera : Culicidae)”, c&oacute;digo CIQF-079.</p> </font>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><font size="3" face="Verdana">REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</font></strong></p> <font face="Verdana" size="2">     <!-- ref --><p>1. Rawlins S, Lammie P. Lymphatic filariasis in the Caribbean region: the apportunity for its elimination and certification. Rev Panam Sal Pub. 2000; 07 (5), 319-324.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0121-4004200700020001200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">2. G&oacute;mez G. La encefalitis equina venezolana. Rev Acovez. 1995; 20 (4), 38-39.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0121-4004200700020001200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Funda&ccedil;&atilde;o Nacional de Sa&uacute;de (FUNASA). Programa Nacional de Controle da Dengue - PNCD. 2002; p 51.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0121-4004200700020001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Mart&iacute;nez E. (1998). Dengue y dengue hemorr&aacute;gico. (Ed.), Centro de Impresiones, Universidad Nacional de Quilmes. 1&ordf; ed, pp 48-54. Buenos Aires (Argentina).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0121-4004200700020001200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Campos RE, Garcia JJ. Variaci&oacute;n estacional de tres especies de <em>Culex</em> (Diptera:Culicidae) y sus par&aacute;sitos pat&oacute;genos en Punta Lara, provincia de Buenos Aires, Argentina. Rev Biol Tropical (San Jos&eacute;). 1997; 45 (1), 267-275.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0121-4004200700020001200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Fonseca I, Qui&ntilde;ones M. Resistencia a insecticidas en mosquitos (Diptera: Culicidae): mecanismos, detecci&oacute;n y vigilancia en salud p&uacute;blica. Rev Col Entomol. 2005; 31 (2), 107-115.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0121-4004200700020001200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Haefner B. Drugs from the deep: Marine natural products as drug candidates. Drug Discovery Today. 2003; 8 (12), 536-544.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0121-4004200700020001200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Amador ML, Jimeno J, Paz-Ares L, Cortes-Funes H, Hidalgo M. Progress in the development and acquisition of anticancer agents from marine sources. Ann Oncol. 2003; 14, 1607-1615.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0121-4004200700020001200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. M&aacute;rquez D, Mart&iacute;nez A, Galeano E. Productos naturales marinos con actividad biol&oacute;gica Parte I. Vitae. 2003; 10 (2), 61-71.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0121-4004200700020001200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Galeano E, Mart&iacute;nez A. Antimicrobial activity of marine sponges from Urab&aacute; Gulf, Colombian Caribbean region. J Mycol. M&eacute;d. 2007; 17, 21-24.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0121-4004200700020001200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Alcaraz MJ, Paya M. Marine sponge metabolites for the control of inflammatory diseases. Curr Opin Investig Drugs. 2006; 7 (11), 974-979.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0121-4004200700020001200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Mayer AM, Hammann MT. Marine pharmacology in 1999: Compounds with antibacterial, anticoagulant, antifungal, anthelmintic, anti-inflammatory, antiplatelet, antiprotozoal and antiviral activities affecting the cardiovascular, endocrine, immune and nervous systems, and other miscellaneous mechanisms of action. Comp Biochem Physiol. C. 2002; 132, 315-339.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0121-4004200700020001200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Newman DJ, Cragg GM. Marine natural products and related compounds in clinical and advanced preclinical trials. J Nat Prod. 2004; 67,1216-1238.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0121-4004200700020001200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. El Sayed, K, Dunbar D, Perry T, Wilkins S, Hamann M. Marine Natural Products as Prototype Insecticidal Agents J Agric Food Chem. 1997; 45, 2735-2739.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0121-4004200700020001200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Peng J, Shen X, El Sayed K, Dunbar D, Perry T, Wilkins S, Hamann M. Marine Natural Products as Prototype Agrochemical Agents J Agric Food Chem. 2003; 51, 2246-2252.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0121-4004200700020001200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Gonzalez-Coloma A, Guti&eacute;rrez C, Miguel del Corral J, Gordaliza M, De La Puente M, San Feliciano A, Structure -and Species-Dependent Insecticidal Effects of neo-Clerodane Diterpenes, J Agric Food Chem. 2000; 48, 3677-3681.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0121-4004200700020001200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Korunic Z. Diatomaceous Earths, a Group of Natural Insecticides. J Stor Prod Res. 1998; 34, 87-97.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0121-4004200700020001200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Mart&iacute;nez A, Robledo S, Mu&ntilde;oz D, Blair S, V&eacute;lez I, Higuita E, Echeverri E, Bedoya J, Zea S. Antiparasitic Activity of Methanol Extracts and Isolated Fractions from Caribbean Sponges. Vitae 2001; 1/2 71-77.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0121-4004200700020001200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Albrizi S, Ciminiello P, Fattorusso E, Magno S. Amphitoxin, a new high molecular weight antifeedant pyridinium salt from the Caribbean sponge <em>Amphimedon compressa. </em>J Nat Prod. 1995; 58 (5), 647-652.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0121-4004200700020001200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Rangel M, de Sanctus B, de Freitas JC, Polatto JM, Granato AC, Berlinck R, Hajdu E. Cytotoxic and neurotoxic activities in extracts of marine sponges Porifera from southeastern Brazilian coast. J Exper Marine Biol Ecol. 2001; 262, 31-40.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0121-4004200700020001200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Matsunaga S, Miyata Y, van Soest RWM, Fusetani N. Tetradehydrohalicyclamine A and 22-Hydroxyhalicyclamine A, New Cytotoxic Bis-piperidine Alkaloids from a Marine Sponge <em>Amphimedon </em>sp. J Nat Prod. 2004, 67, 1758-1760.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0121-4004200700020001200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->			     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2">Recibido: Junio 4 de 2007 Aceptado: Noviembre 6 de 2007</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2"><a href="#autor">*</a><a name="autor2"></a>Autor a quien se debe dirigir la correspondencia: <a href="mailto:amart@farmacia.udea.edu.co">amart@farmacia.udea.edu.co</a></font></p>      ]]></body><back>
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<collab>Fundação Nacional de Saúde (FUNASA)</collab>
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