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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[BERENJENOL AISLADO DE Oxandra cf xylopioides (ANNONACEAE) COMO INSECTICIDA]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Berenjenol (21:24-epoxy-24-methyl-cycloartane) extracted from the leaves of Oxandra cf. Xylopioides, is evaluated as a biocide on Spodoptera frugiperda. Berenjenol is used at 25, 50, 100, 200 and 400 ppm, and is applied in an artificial diet of larvae in the second instar. The mortality percentage is determined at 24, 48 and 72 hours and LD50 and DL90 are calculated; the mortality analysis shows that berenjenol has a toxic effect, being the most mortal dose at 400 ppm. The effect of berenjenol is fast and effective, finding DL50 at 319.6 ppm after 24 h and similar values at 48 and 72 hours.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana" size="4"></font>     <p align="center"><font size="4" face="Verdana"><strong>BERENJENOL AISLADO DE <em>Oxandra cf xylopioides</em> (ANNONACEAE) COMO INSECTICIDA</strong></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="4" face="Verdana">BERENJENOL ISOLATED FROM <em>Oxandra </em>cf<em> xylopioides</em> (ANNONACEAE) AS INSECTICIDE</font></p> <font face="Verdana" size="4">     <p></p> </font><font face="Verdana" size="2"> </font>    <p><font size="2" face="Verdana">Benjamin A. ROJANO<sup>1<a href="#autor2">*</a><a name="autor"></a></sup>, Carlos A. GAVIRIA M.<sup> 1</sup>, Jairo A. S&Aacute;EZ V.<sup>2</sup>, Francisco YEPES<sup>3</sup>, Felipe MU&Ntilde;OZ<sup>3</sup> y Felipe OSSA<sup>3</sup>.</font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p><font size="2" face="Verdana"><sup>1</sup>Laboratorio de Ciencia de Alimentos. Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. Facultad de Ciencias. A.A. 3840, Medell&iacute;n, Colombia.    <br>     <sup>2</sup>Universidad de Antioquia. Instituto de Qu&iacute;mica, A.A. 1226, Medell&iacute;n, Colombia.    <br>     <sup>3</sup>Universidad Nacional de Colombia, sede Medell&iacute;n. Facultad de Ciencias Agropecuaras. A.A. 1779, Medell&iacute;n, Colombia</font></p> </font> <hr size="1" noshade> <strong><font face="Verdana">RESUMEN</font></strong><font face="Verdana" size="2">     <p>El Berenjenol (21:24-epoxi-24-metil-cicloartano), obtenido del extracto de diclorometano de las hojas de <em>Oxandra </em>cf<em>. xylopioides,</em> es evaluado como biocida sobre el gusano cogollero del ma&iacute;z, <em>Spodoptera frugiperda</em>. El berenjenol es usado en concentraciones de 25, 50, 100, 200 y 400 ppm y aplicado en una dieta artificial sobre larvas del segundo instar. Se determina el porcentaje de mortalidad a las 24, 48 y 72 horas y se calcula la DL<sub>50</sub> y DL<sub>90</sub>; el an&aacute;lisis de mortalidad demuestra que el berenjenol tiene un efecto t&oacute;xico, siendo la dosis de 400 ppm la m&aacute;s mortal. El efecto del berenjenol es muy r&aacute;pido y efectivo encontr&aacute;ndose valores de DL<sub>50 </sub>de 319.6 ppm a las 24 horas y valores similares a las 48 y 72 horas.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><strong>Palabras clave:</strong> Berenjenol, <em>Spodoptera</em>, Insecticida, <em>Oxandra</em>, Cicloartano.</p> </font> <hr size="1" noshade> <strong><font face="Verdana">ABSTRACT</font></strong><font face="Verdana" size="2">     <p>Berenjenol (21:24-epoxy-24-methyl-cycloartane) extracted from the leaves of <em>Oxandra </em>cf<em>. Xylopioides, </em>is evaluated as a biocide on <em>Spodoptera frugiperda. </em>Berenjenol is used at 25, 50, 100, 200 and 400 ppm, and is applied in an artificial diet of larvae in the second instar. The mortality percentage is determined at 24, 48 and 72 hours and LD<sub>50 </sub>and DL<sub>90 </sub>are calculated; the mortality analysis shows that berenjenol has a toxic effect, being the most mortal dose at 400 ppm. The effect of berenjenol is fast and effective, finding DL<sub>50 </sub>at 319.6 ppm after 24 h and similar values at 48 and 72 hours.</p>     <p><strong>Keywords:</strong> Berenjenol, <em>Spodoptera</em>, Insecticide, <em>Oxandra</em>, Cycloartane.</p> </font> <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2">     <p>&nbsp;</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N</strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p>Las especies pertenecientes al g&eacute;nero <em>Spodoptera</em> son pol&iacute;fagos y constituyen un serio problema en los diversos cultivos del mundo. Por ejemplo,<strong> </strong>uno de los factores limitantes en la producci&oacute;n de ma&iacute;z (<em>Zea mays)</em> en Colombia es el gusano cogollero <em>Spodoptera frugiperda, </em>el cual ataca tambi&eacute;n los cultivos de soya, algod&oacute;n, arroz, pastos, ca&ntilde;a de az&uacute;car, fr&iacute;jol y tabaco, ocasionando da&ntilde;os directos o indirectos, y act&uacute;a como trozador, comedor de follaje y de mazorcas en el primer vegetal. Este insecto est&aacute; distribuido por todo el continente americano y puede encontrarse desde el nivel del mar hasta los 2600 m de altitud (1).</p>     <p>Los insecticidas sint&eacute;ticos usados para el control de esta plaga, tales como endosulfan, carbofuran, metamidofos y clorpirifos (clorinado, carbamato y &oacute;rganofosforados, respectivamente), ocasionan efectos negativos sobre la fauna ben&eacute;fica e interfieren con el equilibrio biol&oacute;gico (2). En los &uacute;ltimos a&ntilde;os se han usado insecticidas naturales que afectan el metabolismo y los comportamientos alimentarios de las plagas. Hay un gran inter&eacute;s en la aplicaci&oacute;n de metabolitos secundarios para el manejo de artr&oacute;podos plagas, espec&iacute;ficamente compuestos nuevos biodegradables, pero biol&oacute;gicamente activos, productos naturales con baja toxicidad en mam&iacute;feros (3-7).</p>     <p>Los triterpenos, como el limonoide gedunina aislado de <em>Trichilia roka</em> (Meliaceae), es un compuesto de baja toxicidad, pero posee fuerte efecto sobre insectos (8,9). Otros triterpenoides importantes en la regulaci&oacute;n del crecimiento de los insectos son los fitoesteroides tales como &szlig;-ecdisona, ajugasterona C y ciaesterona (10). En el extracto de semillas de<em> Sandoricum koetjape</em> se aislaron los limonoides sandoricina e hirosandoricina G, que al incorporarlos en la dieta de <em>Spodoptera frugiperda</em> y <em>Ostrinia nubilalis</em>, produjeron disminuci&oacute;n en el desarrollo, y cuando se aument&oacute; la dosis se increment&oacute; la mortalidad (11).</p>     <p>Los esteroles y triterpenos tienen una importante funci&oacute;n biol&oacute;gica y son compuestos claves en la adquisici&oacute;n de colesterol por parte de los insectos, debido a que estos artr&oacute;podos no tienen capacidad para la s&iacute;ntesis de <em>novo</em> de esterol, dependen &uacute;nicamente de las fuentes ex&oacute;genas para su normal crecimiento, desarrollo y reproducci&oacute;n (12). Investigaciones sobre el mecanismo de acci&oacute;n de respuestas aleloqu&iacute;micas  </p>     <p> para el control de insectos indican que los triterpenoides est&aacute;n involucrados en actividades insecticidas y reguladoras del crecimiento (13, 14). Estas sustancias son inhibidores del metabolismo y de algunos sistemas enzim&aacute;ticos (15).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La <em>Annonaceae</em> es una familia de las Angiospermas del orden Magnoliales. Consta de 130 g&eacute;neros con unas 2300 especies que se distribuyen por los tr&oacute;picos del Nuevo y Viejo Mundo, hasta el norte de Australia y las islas del Pac&iacute;fico (16). Murillo en 2001 (17), reporta para Colombia alrededor de 240 especies pertenecientes a 30 g&eacute;neros. En el g&eacute;nero <em>Oxandra</em> se han encontrado 10 especies en la regi&oacute;n neotropical.<strong> </strong>En el g&eacute;nero <em>Oxandra</em> s&oacute;lo existe informe de 5 especies, y se han encontrado alcaloides tipo <em>bis</em>-dehidroaporfinas (18), azafluorenonas (19, 20),<sup> </sup>monoterpenos (21) y triterpenos (22). En la corteza de <em>Oxandra xylopioides Diels</em>, se han aislado solamente alcaloides del tipo azafluorenonas (20).</p>     <p>La especie <em>Oxandra </em>cf<em> xylopioides</em> posee pocos metabolitos secundarios, pero en grandes cantidades.<strong> </strong>En el extracto et&eacute;reo de hojas se aisl&oacute; el monoterpenoide isoespintanol con un 1.5% en base seca; adem&aacute;s, se encontr&oacute; en el extracto de diclorometano el nuevo cicloartano: 21:24-epoxi-24-metil-cicloartano, de nombre trivial berenjenol (<a href="#fig01">Figura 1</a>) (23). El Berenjenol a 125 mg/kg inhibe el proceso inflamatorio agudo en pata de rat&oacute;n inducido por carragenina a las 1, 3, 5 h en un 44%, 64% y 51%, respectivamente. El berenjenol a una concentraci&oacute;n 100 µM no produce efectos citot&oacute;xicos frente a macr&oacute;fagos murinos RAW 264.7 (23). </p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a13fig01.gif"><a name="fig01"></a></p>     <p><strong>Figura <strong>1.</strong> </strong>Estructura del Berenjenol.</p>     <p>En   este trabajo, se evalu&oacute; la acci&oacute;n biocida del Berenjenol sobre <em>S</em>.<em> frugiperda</em>, debido a la similitud estructural de este compuesto con triterpenos que han presentado una alta actividad biocida contra insectos en diferentes informes (8-15).</p> </font>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p><strong>Material vegetal</strong></p>     <p>La especie <em>Oxandra </em>cf<em> xylopioides</em> fue colectada en el municipio de Monter&iacute;a (C&oacute;rdoba, Colombia) e identificada por el bot&aacute;nico Francisco Javier Rold&aacute;n Palacios. Una muestra con radicado n&uacute;mero 037852 se encuentra en el Jard&iacute;n Bot&aacute;nico Joaqu&iacute;n Antonio Uribe, de Medell&iacute;n (Colombia).</p>     <p><strong>Extracci&oacute;n y aislamiento</strong></p> </font>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">Las hojas secas y molidas (1 kg) fueron extra&iacute;das con n-hexano por percolaci&oacute;n. El residuo fue re-extra&iacute;do con diclorometano hasta agotamiento, y el solvente evaporado por evaporaci&oacute;n a baja presi&oacute;n. El extracto en CH<sub>2</sub>Cl<sub>2</sub> fue fraccionado por cromatograf&iacute;a de columna, usando s&iacute;lica gel como fase estacionaria (350 g; 8 x 80 cm). El berenjenol (3.0 g, 0.3%) fue recristalizado en metanol, despu&eacute;s de diversas cromatograf&iacute;as en columna y fue caracte&shy;rizado por RMN (<sup>1</sup>H y <sup>13</sup>C y bidimensionales COSY, NOESY, HMQC, HMBC), EM, UV e IR, junto a diversas propiedades f&iacute;sicas (23).</font></p> <font face="Verdana" size="2">    <p><strong>Material insectil</strong></p> </font>    <p><font size="2" face="Verdana">Para llevar a cabo la evaluaci&oacute;n se estableci&oacute; una cr&iacute;a de <em>S. frugiperda </em>con larvas que fueron colectadas en el municipio de Marinilla (Antioquia), en un lote que no hab&iacute;a recibido aplicaci&oacute;n de agroqu&iacute;micos. Despu&eacute;s de la recolecci&oacute;n se individualizaron en copas pl&aacute;sticas de 0.5 onzas, a las cuales previamente se les hab&iacute;a agregado 0.5 g de la dieta artificial. La dieta fue cambiada cada 4 d&iacute;as en condiciones as&eacute;pticas. Obtenidas las pupas, se llevaron en grupos de ocho a frascos de vidrio de 2.000 mL, que sirvieron como c&aacute;mara de apareamiento y de oviposici&oacute;n para los adultos. Estos &uacute;ltimos fueron alimentados con una soluci&oacute;n de miel en agua al 20%. En cada frasco se introdujo una hoja de papel blanco en forma de abanico, para as&iacute; obtener las masas de huevos puestas por los adultos. Las masas de huevos obtenidas fueron llevadas a recipientes pl&aacute;sticos, a los cuales se les  adicion&oacute; dieta para que se alimentaran las larvas de primer instar, luego de la eclosi&oacute;n.</font></p> <font face="Verdana" size="2">    <p><strong>Elaboraci&oacute;n de la dieta artificial</strong></p>     <p>La dieta fue elaborada siguiendo la metodolog&iacute;a descrita por Cuadros y Vergara 1993 (24), la cual tiene los siguientes componentes: Fr&iacute;jol (114.0 g, remojados en agua por 24 horas), germen de trigo (50.0 g), levadura (32.0 g), &aacute;cido asc&oacute;rbico (3.3 g), &aacute;cido salic&iacute;lico (2.0 g), &aacute;cido s&oacute;rbico (1.0 g), ben&shy;zoato de sodio (0.025 g) y 2 mL de formaldeh&iacute;do; toda esta mezcla s&oacute;lida fue licuada durante 10 minutos. Todo el s&oacute;lido fue mezclado con una soluci&oacute;n de 6.5 g de agar en 325 mL de agua, previamente calentada hasta ebullici&oacute;n. Al final se obtuvo un alimento endurecido, compacto y homog&eacute;neo.</p>     <p><strong>Bioensayo</strong></p>     <p>Las larvas de segundo instar fueron individualizadas en las copas pl&aacute;sticas de 0.5 onzas, con dieta. Antes de instalar el bioensayo, se les retir&oacute; el alimento por espacio de cinco horas, asegurando que al establecer la evaluaci&oacute;n, se alimentaran de la dieta respectiva para cada tratamiento.<strong> </strong>Despu&eacute;s del montaje se realizaron lecturas a las 24, 48 y 72 horas, registrando el porcentaje de mortalidad para cada tratamiento.</p>     <p><strong>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</strong></p> </font>     <p><font size="2" face="Verdana">Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o completamente al azar con medidas repetidas en el tiempo. Se realizaron siete tratamientos, con tres repeticiones, y cada repetici&oacute;n conformada por 10 larvas. Los tratamiento para el Berenjenol fueron dosis de 25, 50, 100, 200 y 400 ppm, incluyendo, adem&aacute;s, el testigo absoluto (dieta artificial) y el blanco (dieta artificial + tween 20, etanol y agua destilada). En general, los tratamientos tienen una estructura factorial, que es la forma en que se asignan a las unidades experimentales, en este caso multifactorial, porque involucra los factores dosis del compuesto y el tiempo de evaluaci&oacute;n de los experimentos con tres eventos de ob&shy;servaci&oacute;n. El an&aacute;lisis estad&iacute;stico cont&oacute; con un nivel de significancia &alpha;=0,05. Obtenidos los resultados, se emple&oacute; el Software de Asistencia Estad&iacute;stica SAS &reg; versi&oacute;n 8.2 para el an&aacute;lisis del dise&ntilde;o, y para la determinaci&oacute;n de las dosis letal 50 (DL<sub>50</sub>) y de la dosis letal 90 (DL<sub>90</sub>), a partir del an&aacute;lisis Probit descrito por G&oacute;mez (1999) (25), se utiliz&oacute; el software Statgraphics versi&oacute;n 5.0.</font></p> <font face="Verdana" size="2"></font>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3" face="Verdana"><strong>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p>Despu&eacute;s de efectuados los tratamientos con Berenjenol en las diferentes dosis se calcularon los porcentajes de mortalidad a las 24, 48 y 72 h. En la <a href="#tb01">tabla 1</a> se presentan los porcentajes de mortalidad para los diferentes tratamientos. B&aacute;sicamente se observa un aumento gradual de la mortalidad a medida que se incrementa la dosis, diferenci&aacute;ndose a las 24 horas, donde se alcanzaron los mayores porcentajes de mortalidad, valores que no cambiaron mucho en las dem&aacute;s lecturas. Se podr&iacute;a considerar como un indicio del potencial biocida del extracto, por su demostrada eficacia desde el primer tiempo de evaluaci&oacute;n (24 horas). Este producto vegetal es capaz de producir la muerte del 50% de la poblaci&oacute;n de <em>S. frugiperda</em> expuesta, a las 24 horas, con la dosis m&aacute;xima (400 ppm). El testigo absoluto y el blanco presentaron los porcentajes de mortalidad m&aacute;s bajos.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a13tb01.gif"><a name="tb01"></a></p>     <p><strong>Tabla 1.</strong> Porcentajes de mortalidad de larvas   de <em>S. frugiperda</em> seg&uacute;n los diferentes tratamientos con berenjenol.</p>     <p></p>     <p><strong>An&aacute;lisis de varianza</strong></p>     <p>Con     el objetivo de buscar explicaciones concretas a los resultados de mortalidad hallados con los diferentes tratamientos, los datos fueron estudiados con modelos mixtos, lo que permite trabajar con la varianza de cada uno de los tratamientos bajo la transformaci&oacute;n <strong>Arcsen ((porcentaje/100)+0.01)<sup>1/2</sup></strong>. Usando la prueba de normalidad de Shapiro Wilk, se encontr&oacute; un valor W de 0.896545 y un valor p (Pr &lt; W) de 0.07, se cumple el supuesto de normalidad para los datos analizados. En la <a href="#tb02">tabla 2</a> se presenta el an&aacute;lisis de varianza.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a13tb02.gif"><a name="tb02"></a></p>     <p>L: grados de libertad; F: Coeficiente de Fischer; Pr.</p>     <p><strong>Tabla 2.</strong> An&aacute;lisis de varianza para la variable porcentaje de mortalidad corregida</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La <a href="#tb02">tabla 2</a> muestra que la interacci&oacute;n Tratamiento*Hora no resulta estad&iacute;sticamente significativa, y por tanto, se analizan los efectos principales de los tratamientos y las horas que representan los eventos de observaci&oacute;n. Respecto a los tratamientos, el Berenjenol a una concentraci&oacute;n de 400 ppm (B400) fue el que caus&oacute; mayor mortalidad y no se diferencia estad&iacute;sticamente del tratamiento B200. Sin embargo, en relaci&oacute;n a las dosis media y baja, B400 s&iacute; presenta diferencias significativas, mostrando ser la concentraci&oacute;n m&aacute;s eficiente en la evaluaci&oacute;n.</p>     <p>Con respecto a los testigos, se encontr&oacute; que se presentaron mortalidades que no superaron el 10% y que se diferenciaron estad&iacute;sticamente del resto de los tratamientos. De esto se puede inferir que el Berenjenol, en sus diferentes dosificaciones, ejerce una acci&oacute;n biocida altamente significativa contra las larvas de <em>S. frugiperda.</em> La <a href="#fig02">Figura 2</a> ilustra los efectos de los tratamientos a las 72 horas, con lo cual se corrobora lo afirmado anteriormente.</p>     <p><strong>An&aacute;lisis Probit para el establecimiento de la DL<sub>50</sub> y DL<sub>90</sub> para el berenjenol</strong></p>     <p>El an&aacute;lisis Probit se model&oacute; en cada momento de lectura, es decir, a las 24, 48 y 72 horas. Para el berenjenol se obtuvieron valores de 18.0167, 13.0236 y 15.2321 y valores Pr &gt; Chi - Cuadrado de 0.0000, 0.0003 y 0.0001 para cada uno de los tiempos de lectura respectivamente, lo que permite definir que las pruebas de bondad de ajuste para cada tiempo de lectura de la mortalidad por el m&eacute;todo de Chi-Cuadrado, son estad&iacute;sticamente significativas, permitiendo establecer que los datos se ajustan bien al modelo, y por tanto, las DL<sub>50</sub> y DL<sub>90</sub> obtenidas son satisfactorias.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a13fig02.gif"><a name="fig02"></a></p>     <p><strong>Figura 2.</strong> Efectos de los tratamientos con Berenjenol a las 72 horas, con la variable sin transformar.</p>     <p>En la <a href="#tb03">Tabla 3</a> se muestran los valores de las dosis letales 50 y 90 a las 24, 48 y 72 horas, respectivamente, con sus correspondientes intervalos de confianza. Como se puede observar, las dosis letales no variaron considerablemente de una lectura a otra, ratificando que la acci&oacute;n biocida del berenjenol se manifest&oacute; pr&aacute;cticamente a las 24 horas, mostr&aacute;ndose poca diferencia entre las 48 y 72 horas de evaluaci&oacute;n. En cuanto a la DL<sub>50</sub> se puede observar que los valores se encuentran entre las dos dosis m&aacute;s altas, es decir, alrededor de las 300 ppm. Con la m&aacute;xima dosis evaluada (400 ppm) no se obtuvo una mortalidad mayor del 60%, por lo que la DL<sub>90</sub> es una predicci&oacute;n, haciendo necesario evaluaciones con unas dosis altas para determinaciones m&aacute;s certeras.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v14n2/a13tb03.gif"><a name="tb03"></a></p>     <p><strong>Tabla 3.</strong> DL<sub>50</sub> y DL<sub>90 </sub>a las 24, 48 y 72 horas para el Berenjenol.</p> </font>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><strong><font size="3" face="Verdana">CONCLUSIONES</font></strong></p> <font face="Verdana" size="2">     <p>El berenjenol tiene una acci&oacute;n   temprana y potente. A las 24 horas postratamiento, el 50% de larvas de <em>Spodoptera</em> se mueren cuando son alimentadas con una dieta que contiene 319.6 mg de Berenjenol/kg de dieta, si se compara con blancos sin el compuesto. Estos resultados se corresponden con valores encontrados por C&eacute;spedes <em>et al</em>, 2005 (50-300 ppm), para los esteroles como peniocerol, macdougalina y chichipegenina, encontrados en <em>Myrtillocactus geometrizans</em> L (Cactaceae). Los compuestos fueron suministrados en una dieta espec&iacute;fica, de una manera similar ala usada en nuestro trabajo (26).</p>     <p>Los cicloartanos como el Berenjenol, son inhibidores de tirosinasa, enzima que est&aacute; involucrada en el proceso de muda de los insectos (27, 28). Adem&aacute;s, son inhibidores de acetilcolinesterasa, actuando como neurot&oacute;xicos, provocando el atontamiento del insecto, falta de apetencia y muerte (29). De igual manera, los triterpenos est&aacute;n asociados a procesos antialimentarios de insectos, debido a problemas de toxicidad en el proceso de ingesti&oacute;n de los mismos (30, 31). El berenjenol es un compuesto natural alternativo en el uso como antialimentario, espec&iacute;ficamente sobre <em>S. frugiperda;</em> es importante avanzar en el estudio metab&oacute;lico del berenjenol y su acci&oacute;n biocida en este insecto.</p>     <p>Se origina la necesidad de evaluar dosis m&aacute;s altas para el berenjenol; adem&aacute;s, ser&iacute;a adecuado realizar futuras investigaciones, dise&ntilde;ando tratamientos con dosificaciones mas diferenciadas, para as&iacute; observar datos de mortalidad con marcadas diferencias estad&iacute;sticas y que consuzcan a mortalidades cercanas al 100%.</p> </font>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>AGRADECIMIENTOS</strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p>Los autores agradecen a la   Divisi&oacute;n de Investigaciones de la Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n (DIME, proyecto: 20201006167), a la Vicerrector&iacute;a de Investigaci&oacute;n, Universidad Nacional de Colombia (Convocatoria Nacional de Investigaci&oacute;n) y al programa ECOS-NORD, ICFES, COLCIENCIAS por la financiaci&oacute;n del proyecto.</p> </font>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <!-- ref --><p>1. Garc&iacute;a F, Mosquera M, Vargas C, Rojas L. Control biol&oacute;gico, microbiol&oacute;gico y f&iacute;sico de <em>Spodoptera frugiperda</em> (Lepidoptera Noctuidae), plaga del ma&iacute;z y otros cultivos de Colombia. Rev Col Entomol. 2002; 28(1): 53-60.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0121-4004200700020001300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. P&eacute;rez R, Rodr&iacute;guez C, Lara J, Montes R, Ram&iacute;rez G. Toxicidad de aceites, esencias y extractos vegetales en larvas de mosquito <em>Culex quinquefasciatus S</em>ay (Diptera: Culicidae). Acta Zool Mex. 2004; 20(1): 141-152.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0121-4004200700020001300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Burt S. Essential oils: their antibacterial properties and potential applications in foods-a review. Int J Food Microbial. 2004: 94, 223-253.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0121-4004200700020001300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Isman M, Wan A, Passreiter C. Insecticidal activity of essential oils to the tobacco cutworm, <em>Spodoptera litura.</em> Fitoterapia. 2001; 72: 65-68.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0121-4004200700020001300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Passreiter C, Wilson J, Andersen R, Isman M. Metabolism of Thymol and trans-Anethole in Larvae of <em>Spodoptera litura</em> and <em>Trichoplusia ni</em>. (Lepidoptera: Noctuidae). J Agric Food Chem. 2004; 52: 2549-2551.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0121-4004200700020001300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Anderson P, Hilker M, Hansson B, Bombosch S, Klein B, Schildknecht H. Oviposition deterring components in larval frass of <em>Spodoptera littoralis</em> (Boisd.) (Lepidoptera: Noctuidae): A behavioural and electrophysiological evaluation. J Insect Physiol. 1993; 2: 129-137.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0121-4004200700020001300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Regnault R, Hamraoui A. Fumigant toxic activity and reproductive inhibition induced by monoterpenes on <em>Acanthoscelides obtectus</em> (Say) (Coleoptera), a bruchid of kidney bean (<em>Phaseolus vulgaris</em> L<em>.). </em>J Stored Prod Res. 1995; 31(4), 291-299.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0121-4004200700020001300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Arnason JT, Philog&eacute;ne BJR, Donskov N, Kubo I, Limonoids from the Meliaceae and Rutaceae reduce feeding, growth and development of <em>Ostrinia nubilali.</em> Entomol Exp Appl. 1987; 43 (3): 221-226.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0121-4004200700020001300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Calder&oacute;n JS, C&eacute;spedes CL, Rosas R, G&oacute;mez-Garibay F, Salazar JR, Lina L, Aranda E, Kubo I. (2001) Acetylcholinesterase and insect growth inhibitory activities of Gutierrezia microcephala on fall armyworm Spodoptera frugiperda J. E. Smith. Z. Naturforschung. 56: 382-394.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0121-4004200700020001300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Kubo I, Klocke JA, Asano S. Insect ecdysis inhibitors from the East African medicinal plant, <em>Ajuga remota</em> (Labiatae). Agric Biol Chem. 1981; 45: 1925-1927.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0121-4004200700020001300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Powell R, Mikolajczak KL, Zilkowski BW, Mantus EK, Cherry D. Clardy J. Limonoid antifeedants from seed of <em>Sandoricum koetjape</em>. Nat Prod<em>.</em> 1991; 54(1): 241-246.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0121-4004200700020001300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Ikekawa N, Morisaki M, Fujimoto Y, Sterol metabolism in insects: dealkylation of phytosterol to cholesterol. Acc Chem Res. 1993; 26: 139-146.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0121-4004200700020001300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">13. C&eacute;spedes CL, Calder&oacute;n JS, Lina L, Aranda E. Growth inhibitory effects on fall armyworm <em>Spodoptera frugiperda</em> of some limonoids isolated from <em>Cedrela spp</em>. (Meliaceae). J. Agric. Food Chem. 2000; 48: 1903-1908.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0121-4004200700020001300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. C&eacute;spedes CL, Torres P, Mar&iacute;n JC, Arciniegas A, P&eacute;rez-Castorena AL, Romo de Vivar A, <em>et al</em>. Insect growth inhibition by tocotrienols and hydroquinones from <em>Roldana barba-johannis</em> (Asteraceae). Phytochemistry<em>. </em>2004; 65 (13): 1963-1975.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0121-4004200700020001300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Panzuto M, Mauffette Y, Albert PJ. Developmental, gustatory, and behavioral responses of leaf roller larvae, <em>Choristoneura rosaceana</em>, to tannic acid and glucose. J Chem Ecol. 2002; 28: 145-160.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0121-4004200700020001300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Maas PJ, Menega L, Westra TH. Studies in Annonaceae. XXI. <em>I</em>ndex to species and infrageneric taxa of neotropical <em>Annonaceae</em>. Candollea. 1994; 49: 389-481.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0121-4004200700020001300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Murillo J. Las Annonaceae de Colombia. Biota Colombiana. 2001; 2 (1): 49-58.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0121-4004200700020001300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Arango GJ, Cort&eacute;s D, Cav&eacute; A, Kasels B, M&eacute;rienne C. Three Bis-Dehydroaporphines from <em>Oxandra </em>cf. <em>Major. </em>Phytochemistry<em>. </em>1987; 26: 1227-1229.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0121-4004200700020001300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Arango GJ, Cort&eacute;s D, Cav&eacute; A. Azafluorenones from <em>Oxandra cf. major</em> and biogenetic considerations. Phytochemistry<em>. </em>1987; 26: 2093-2098&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0121-4004200700020001300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Zhan J, Abdel-Rahman O, El-Shabradwy A, El-Shanawany MA, Schiff PL, Slatkin D. New Azafluorene alkaloids from <em>Oxandra xylopioides</em>. J Nat Prod<em>.</em> 1987; 50: 800-806.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0121-4004200700020001300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Hocquemiller R, Cort&eacute;s D, Arango GJ, Myint S, Cav&eacute; A, Angelo A, <em>et al.</em> Isolement et synthese de l'espintanol, nouveau monoterpene antiparasitaire. J Nat Prod. 1991; 54: 445-452.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0121-4004200700020001300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Winston FT, Lynn CB. Terpenoid constituents cf <em>Oxandra asbeckii. </em>J Nat Prod. 1992; 55: 701-706.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0121-4004200700020001300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Rojano B, P&eacute;rez E, Figad&egrave;re B, Mart&iacute;n MT, Recio MC, Giner R, <em>et al</em>. Constituents of<em> Oxandra </em>cf<em>. xylopioides </em>with antiinflammatory activity. J Nat Prod. 2007; 70(5): 835-838&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0121-4004200700020001300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Cuadros M, Vergara R. Estudios b&aacute;sicos sobre la efectividad insecticida de extractos florales de <em>Calliandra</em> spp. (Mimosaceae) sobre larvas de <em>Spodoptera frugiperda</em> J. E. Smith. [Tesis Doctoral] Universidad del Tolima, Ibagu&eacute;. 1993. p. 92.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0121-4004200700020001300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. G&oacute;mez, H. Algunos m&eacute;todos estad&iacute;sticos para el estudio de poblaciones de organismos. Medell&iacute;n: Unviersidad Nacional de Colombia: Centro de Publicaciones. 1999. p. 216.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0121-4004200700020001300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. C&eacute;spedes CL, Aranda E, Salazar R, Mart&iacute;nez M. Insect growth regulatory effects of some extracts and sterolsfrom <em>Myrtillocactus geometrizans</em> (Cactaceae) against <em>Spodoptera frugiperda</em> and <em>Tenebrio molitor</em>. 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Tyrosinase inhibitory cycloartane type triterpenoids from the methanol extract of the whole plant of <em>Amberboa ramosa</em> Jafri and their structure-activity relationship. Bioorg Med Chem. 2006;14: 938-943&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0121-4004200700020001300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29. Eldeen IMS, Van Heerden FR, Van Staden J. (2007) Biological activities of cycloart-23-ene-3,25-diol isolated from the leaves of <em>Trichilia dregeana.</em> S Afr J. 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Limonoid antifeedants from seed of S<em>andoricum koetjape. </em>J Nat Prod. 1991: 54(1); 241-246.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0121-4004200700020001300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2">Recibido: Agosto 31 de 2007 Aceptado: Octubre 22 de 2007</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2"><a href="#autor">*</a><a name="autor2"></a>Autor a quien se debe dirigir la correspondencia: <a href="mailto:brojano@unal.edu.co">brojano@unal.edu.co</a></font></p>      ]]></body><back>
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