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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[ACTIVIDAD ANTIOXIDANTE Y CONTENIDO FENÓLICO DE LOS EXTRACTOS PROVENIENTES DE LAS BAYAS DE DOS ESPECIES DEL GÉNERO VISMIA (GUTTIFERAE)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[ANTIOXIDANT ACTIVITY AND PHENOLIC CONTENT OF EXTRACTS FROM BERRIES OF TWO SPECIES OF VISMIA GENUS (GUTTIFERAE)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Plant material resulting from dried and pulverized berries of Vismia baccifera ssp. ferruginea and V. guianensis collected in the Parque Regional Arví (Antioquia, Col.), was extracted by successive percolation with ether of petroleum, ethyl acetate and methanol. Yield, total phenolic content and free radical scavenging activity employing the methods of decoloration of the DPPH<IMG SRC="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a21sy01.gif"> and ABTS<IMG SRC="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a21sy01.gif">+ free radicals of these extracts were determined. Ethyl acetate fraction, which was followed by petroleum ether extract, exhibited the highest ABTS and DPPH radical-scavenging activity and total phenolic content. Therefore, ethyl acetate and petroleum ether fractions were subjected to further separation by chromatographic methods. Thus, two prenylated anthranoid (ferruginin A, 1 and &gamma;-hydroxyferruginin A, 2) and one anthraquinone (vismiaquinone A, 3), had been isolated and their structures determined by spectroscopic methods and by comparison with the values reported in literature. The data obtained in the in vitro models clearly establish the antioxidant potency of Vismia baccifera ssp. ferruginea and V. guianensis extracts; this activity may possibly be due to the chemical characteristics of compounds isolated.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="2"><strong><font face="VERDANA">PRODUCTOS NATURALES</font></strong> </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><font size="4" face="Verdana">ACTIVIDAD ANTIOXIDANTE Y CONTENIDO  FEN&Oacute;LICO DE LOS EXTRACTOS PROVENIENTES DE LAS BAYAS DE DOS ESPECIES DEL  G&Eacute;NERO VISMIA (GUTTIFERAE)</font></strong></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><font size="3" face="Verdana">ANTIOXIDANT ACTIVITY AND PHENOLIC CONTENT OF EXTRACTS FROM  BERRIES OF TWO SPECIES OF VISMIA GENUS (GUTTIFERAE)</font></strong></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana">Edwin &Aacute;LVAREZ R.<sup>1</sup>; Orfa J. J&Iacute;MENEZ G.<sup>1</sup>; Cristian M. POSADA A.<sup>1</sup>; Benjam&iacute;n A. ROJANO.<sup>1</sup>;    Jes&uacute;s H. GIL G.<sup>2</sup>; Carlos M. GARC&Iacute;A P.<sup>1</sup>; Diego L. DURANGO R.<sup>1</sup><a href="#ab">*</a><a name="a"></a>    <br> </font><font size="2" face="Verdana"><sup>1</sup> Grupo de Qu&iacute;mica de los Productos Naturales y los Alimentos, Facultad de Ciencias, Escuela de Qu&iacute;mica, Universidad Nacional de Colombia, Calle 59&ordf; 63-020 Autopista Norte, AA 3840, Medell&iacute;n, Colombia.    <br> </font><font size="2" face="Verdana"><sup>2</sup> Departamento de Ingenier&iacute;a Agr&iacute;cola y de Alimentos, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Nacional de Colombia, Medell&iacute;n.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p> <hr size="1" noshade> <font size="2" face="Verdana"><strong>RESUMEN</strong></font>     <p><font size="2" face="Verdana">El  material vegetal resultante del secado y molienda de las bayas de  Vismia baccifera ssp. ferruginea y V. guianensis colectado en el Parque  Regional Arv&iacute; (Antioquia, Col.), se extrajo mediante percolaci&oacute;n  sucesiva con &eacute;ter de petr&oacute;leo, acetato de etilo y metanol. A los  extractos se les determin&oacute; el rendimiento, contenido de fenoles totales  y la capacidad captadora de radicales mediante los m&eacute;todos de  decoloraci&oacute;n del DPPH<img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a21sy01.gif"> y ABTS<img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a21sy01.gif">+. La mayor actividad captadora de  radicales y el m&aacute;s alto contenido de compuestos fen&oacute;licos  correspondieron al extracto en acetato de etilo, seguido por el de &eacute;ter  de petr&oacute;leo. Mediante sucesivos fraccionamientos cromatogr&aacute;ficos de los  extractos activos se aislaron, los antranoides prenilados ferruginina A  (1) y &#947;-hidroxiferruginina (2), y la antraquinona vismiaquinona A (3),  cuya elucidaci&oacute;n estructural fue llevada a cabo por m&eacute;todos  espectrosc&oacute;picos y por comparaci&oacute;n con los datos reportados en la  literatura. Los datos obtenidos en los modelos in vitro establecen  claramente el potencial antioxidante de los extractos de Vismia  baccifera ssp. ferruginea y V. guianensis; esta actividad posiblemente  est&aacute; asociada con las caracter&iacute;sticas qu&iacute;micas de los metabolitos  aislados.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><strong>Palabras clave:</strong> Guttiferae, fenoles totales, antranoides prenilados, vismiaquinona A, actividad antioxidante, radicales libres</font></p> <hr size="1" noshade> <font size="2" face="Verdana"><strong>ABSTRACT</strong></font>     <p><font size="2" face="Verdana">Plant  material resulting from dried and pulverized berries of Vismia  baccifera ssp. ferruginea and V. guianensis collected in the Parque  Regional Arv&iacute; (Antioquia, Col.), was extracted by successive  percolation with ether of petroleum, ethyl acetate and methanol. Yield,  total phenolic content and free radical scavenging activity employing  the methods of decoloration of the DPPH<img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a21sy01.gif"> and ABTS<img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a21sy01.gif">+ free radicals of  these extracts were determined. Ethyl acetate fraction, which was  followed by petroleum ether extract, exhibited the highest ABTS and  DPPH radical-scavenging activity and total phenolic content. Therefore,  ethyl acetate and petroleum ether fractions were subjected to further  separation by chromatographic methods. Thus, two prenylated anthranoid  (ferruginin A, 1 and &#947;-hydroxyferruginin A, 2) and one anthraquinone  (vismiaquinone A, 3), had been isolated and their structures determined  by spectroscopic methods and by comparison with the values reported in  literature. The data obtained in the in vitro models clearly establish  the antioxidant potency of Vismia baccifera ssp. ferruginea and V.  guianensis extracts; this activity may possibly be due to the chemical  characteristics of compounds isolated.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><strong>Keywords:</strong> Guttiferae, total phenolics, prenylated anthranoids, vismiaquinone A, antioxidant activity, free radicals</font></p> <hr size="1" noshade>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Diversas  reacciones bioqu&iacute;micas en nuestro cuerpo generan especies reactivas de  ox&iacute;geno, las cuales son capaces de da&ntilde;ar biomol&eacute;culas cruciales. Si  estas especies no son captadas eficientemente por constituyentes  celulares, pueden ocasionar enfermedades (1,2). Sin embargo, la acci&oacute;n  delet&eacute;rea de los radicales libres puede ser bloqueada por sustancias  antioxidantes, las cuales captan los radicales libres destoxificando el  organismo. Algunas investigaciones recientes sobre los radicales libres  han confirmado que los alimentos ricos en antioxidantes juegan un papel  esencial en la prevenci&oacute;n de enfermedades neurodegenerativas,  cardiovasculares y cancer&iacute;genas (3,4,5), males como el de Parkinson y  Alzheimer (6), as&iacute; como tambi&eacute;n inflamaciones y problemas ocasionados  por el envejecimiento celular (7). En los &uacute;ltimos a&ntilde;os, una de las  &aacute;reas que m&aacute;s ha atra&iacute;do la atenci&oacute;n es la b&uacute;squeda de nuevos  antioxidantes naturales para el control de enfermedades  neurodegenerativas, en las cuales est&aacute; implicado el da&ntilde;o oxidativo. En  este sentido, los extractos de plantas y diferentes clases de  fitoqu&iacute;micos han demostrado ser una fuente importante de compuestos con  marcada actividad antioxidante, permitiendo el crecimiento acelerado de  investigaciones en esta &aacute;rea (8 - 13).</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Las  especies del g&eacute;nero Vismia son &aacute;rboles y arbustos de amplia  distribuci&oacute;n; se encuentran principalmente en las regiones tropicales y  subtropicales de Am&eacute;rica del Sur y Central, aunque algunas pocas  especies tambi&eacute;n se hallan en &Aacute;frica y Asia (14). Estas especies han  sido empleadas abundantemente alrededor del mundo en la medicina  tradicional para el tratamiento de algunas enfermedades,  particularmente el l&aacute;tex producido por diferentes especies, tales como  V. augusta, V. confertiflora, V. dealbata, V. baccifera ssp. ferruginea  y V. guianensis entre otras, se han usado para el tratamiento de  heridas y ulceraciones infectadas, enfermedades f&uacute;ngicas de la piel,  herpes en los labios, como purgante y febr&iacute;fugo, entre otras  (15,16,17,18). </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">En este estudio se evalu&oacute; la  actividad antioxidante de los extractos provenientes de las bayas de  las especies Vismia guianensis y V. baccifera ssp. ferruginea, mediante  el empleo de dos modelos in vitro basados en la capacidad captadora del  radical libre 1,1-difenil-2-picrilhidrazilo <img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20sy01.gif"> y del cati&oacute;n  radical del &aacute;cido 2,2&acute;-azino-bis-(3-etilbenzotiazolina-6-sulf&oacute;nico) <img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20sy02.gif">. Adicionalmente se determin&oacute; el contenido de fenoles totales y  el rendimiento de la extracci&oacute;n con cada uno de los solventes. Debido a  que los extractos en acetato de etilo y &eacute;ter de petr&oacute;leo presentaron el  mayor contenido de fenoles totales y la mejor actividad captadora de  radicales, se sometieron a separaci&oacute;n mediante m&eacute;todos cromatogr&aacute;ficos  que condujeron al aislamiento de tres compuestos mayoritarios, para los  cuales se llev&oacute; a cabo la elucidaci&oacute;n estructural mediante m&eacute;todos  espectrosc&oacute;picos convencionales.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><font size="3" face="Verdana">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</font></strong></p>     <p><strong><font size="2" face="Verdana">Material vegetal</font></strong></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Las  bayas frescas de Vismia baccifera ssp. ferruginea (VB) y Vismia  guianensis (VG) se colectaron en el mes de Junio del a&ntilde;o 2005 en el  Parque Regional Arv&iacute; (Antioquia, Colombia); un esp&eacute;cimen de  comprobaci&oacute;n de las plantas (2581 para    V. guianensis y 2582 para  V. baccifera ssp. ferruginea) se deposit&oacute; en el Herbario de la  Universidad Nacional de Colombia Sede Medell&iacute;n (MEDEL). </font></p>     <p><strong><font size="2" face="Verdana">M&eacute;todos y materiales anal&iacute;ticos</font></strong></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Los  puntos de fusi&oacute;n se determinaron en un fusi&oacute;metro Buchi B-540. Los  espectros de resonancia magn&eacute;tica nuclear (RMN) se obtuvieron en un  espectr&oacute;metro Bruker AMX 300, operando a 300.12 y 75.42 MHz para los  n&uacute;cleos de 1H y 13C respectivamente, y usando como solvente cloroformo  deuterado (CDCl3). Los desplazamientos qu&iacute;micos est&aacute;n expresados en &delta;  (ppm) y las constantes de acoplamiento est&aacute;n reportadas en Hz.. La  cromatograf&iacute;a de columna (CC) se llev&oacute; a cabo usando s&iacute;lica gel 60  (0.040-0.063 mm; Merck) y Sephadex LH-20 (Amersham Bioscience, Sweden)  y la cromatograf&iacute;a de capa fina (CCF) y preparativa (CCP) en  cromatoplacas de silica gel 60, F-254 (Merck). El revelado de las  cromatoplacas se llev&oacute; a cabo por visualizaci&oacute;n bajo luz UV (254 nm,    310  nm) y por aspersi&oacute;n con FeCl3 al 5% seguido de calentamiento. El  contenido de fenoles y la capacidad captadora de radicales libres se  realiz&oacute; en un espectrofot&oacute;metro JENWAY 6405.</font></p>     <p><strong><font size="2" face="Verdana">Obtenci&oacute;n de los extractos</font></strong></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Las bayas frescas (2 Kg) se lavaron con agua    (3  x 500 mL) y posteriormente se secaron a 40&deg;C en una estufa durante 24  h. Las bayas secas se trituraron y el material obtenido se extrajo  exhaustiva y sucesivamente por percolaci&oacute;n (a temperatura ambiente) con  &eacute;ter de petr&oacute;leo, acetato de etilo y metanol durante 24 h. Despu&eacute;s de  la filtraci&oacute;n, la fase org&aacute;nica se evapor&oacute; a sequedad a presi&oacute;n  reducida en un rotaevaporador a 40&deg; C, obteni&eacute;ndose los extractos  crudos que fueron posteriormente pesados.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><strong>Aislamiento</strong></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">El  extracto en AcOEt (39.0 g) concentrado proveniente de V. baccifera ssp.  ferruginea se fraccion&oacute; por CC en s&iacute;lica gel usando mezclas de  polaridad creciente de &eacute;ter de petr&oacute;leo-AcOEt para obtener once  fracciones (A-K). La fracci&oacute;n C (900 mg), eluida con &eacute;ter de  petr&oacute;leo-AcOEt (4:1),    se someti&oacute; posteriormente a CC en s&iacute;lica gel  con &eacute;ter de petr&oacute;leo-AcOEt (4:1) obteni&eacute;ndose diez subfracciones  (C1-C10). Las subfracciones    C3-C5 se agruparon y se sometieron  varias veces a cromatograf&iacute;a de columna mediante exclusi&oacute;n molecular  empleando Sephadex LH-20 y como eluente la mezcla &eacute;ter de  petr&oacute;leo-CH2Cl2-MeOH (2:1:1) para obtener el compuesto 1 (80 mg). La  fracci&oacute;n F (2.2 g) se refin&oacute; empleando Sephadex LH-20 de acuerdo con la  metodolog&iacute;a anterior, obteni&eacute;ndose siete subfracciones (F1-F7). Las  subfracciones F3 y F4 reunidas se eluyeron a trav&eacute;s de CCP (CHCl3,  acetona: 4:1) para obtener 29 mg del compuesto 2.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">El  extracto et&eacute;reo (34 g) proveniente de V. guianensis se fraccion&oacute;  mediante CC en s&iacute;lica gel usando mezclas de polaridad creciente de &eacute;ter  de petr&oacute;leo y acetato de etilo, obteni&eacute;ndose cinco fracciones (F1-F5).  La fracci&oacute;n F2 (1.2 g) se analiz&oacute; mediante cromatograf&iacute;a de exclusi&oacute;n  molecular, de donde se obtuvieron cuatro subfracciones (F2A-F2D). La  subfracci&oacute;n F2B se recristaliz&oacute; empleando EtOH de donde se obtuvo el  compuesto 3, como cristales de color rojo (15.0 mg).</font></p>     <p><strong><font size="2" face="Verdana">Fenoles totales</font></strong></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Los  compuestos antioxidantes generalmente contienen grupos fen&oacute;licos.  Debido a esto, se compar&oacute; el contenido de compuestos fen&oacute;licos en cada  uno de los extractos para obtener m&aacute;s informaci&oacute;n acerca de la posible  capacidad antioxidante de cada uno de ellos.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">La  determinaci&oacute;n del contenido de fenoles totales se realiz&oacute; de acuerdo  con el m&eacute;todo de Folin-Ciocalteu (19). A los tres extractos de cada una  de las dos especies vegetales en estudio se aplic&oacute; el siguiente  procedimiento: a 50 &mu;L de muestra se le adicion&oacute; un volumen de 250 &mu;L  de reactivo de Folin-Ciocalteu sin diluir. Despu&eacute;s de 1 min., se  a&ntilde;adieron 750 &mu;L de soluci&oacute;n acuosa de Na2CO3 al 20% (p/v), y se llev&oacute;  a un aforo de 5.0 mL con agua. Los controles, por su parte, conten&iacute;an  todos los reactivos con excepci&oacute;n del extracto. Luego de 2 h de  incubaci&oacute;n a 25&deg;C, se midieron las absorbancias a 760 nm y se  compararon con una curva de calibraci&oacute;n (r2 = 0.992) usando est&aacute;ndares  de &aacute;cido g&aacute;lico (100-600 mg/L). El contenido de fenoles totales se  determin&oacute; como los equivalentes de &aacute;cido g&aacute;lico (GAE, mg de &aacute;cido  g&aacute;lico/g de extracto), y los valores se presentan como la media de los  datos del an&aacute;lisis llevado a cabo por triplicado. La ecuaci&oacute;n obtenida  con la regresi&oacute;n fue:</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Y = 0,0019X - 0,0271; donde: Y = Absorbancia, y X = Concentraci&oacute;n de fenoles.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Actividad inhibidora del radical 1,1-Difenil-2-picrilhidrazilo <img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20sy01.gif"></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Se  midi&oacute; y compar&oacute; la actividad captadora del radical <img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20sy03.gif"> de los  diferentes extractos org&aacute;nicos provenientes de las dos especies en  estudio. Para la medici&oacute;n de la actividad inhibidora del radical libre  DPPH se emple&oacute; una soluci&oacute;n en metanol de 1,1-difenil-2-picrilhidrazilo  con una absorbancia de 0.3 a la longitud de onda de m&aacute;xima absorci&oacute;n.  Por su parte las muestras a evaluar se prepararon a diferentes  concentraciones (50, 25, 12.5, 6.25, 3.12, 1.56 y 0.78 &mu;g/mL) por  adici&oacute;n de la soluci&oacute;n de DPPH previamente preparada. Adicionalmente,  la soluci&oacute;n de referencia se obtuvo a partir de DMSO disuelto con la  soluci&oacute;n de DPPH, con el primero a las mismas concentraciones empleadas  para las muestras. Igualmente se prepararon soluciones blanco de las  muestras disueltas con metanol a las mismas concentraciones  consideradas previamente, una soluci&oacute;n de referencia con DMSO y metanol  y un control positivo con butilhidroxitolueno (BHT). Todas las  soluciones resultantes fueron incubadas en la oscuridad durante 30  minutos a temperatura ambiente. Pasado este tiempo se midieron en el  espectrofot&oacute;metro las absorbancias para todas las soluciones a 517nm. A  partir de las absorbancias obtenidas se determin&oacute; el porcentaje de  inhibici&oacute;n medio para cada concentraci&oacute;n de acuerdo con la siguiente  expresi&oacute;n matem&aacute;tica:</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20eq01.gif"></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">donde <em>Am</em> es la absorbancia de las muestras, Abm es la  absorbancia del blanco de muestra, Ar es la absorbancia de las  soluciones de referencias y Abr la absorbancia del blanco de referencia.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">Luego  de haber calculado los porcentajes de inhibici&oacute;n para cada una de las  concentraciones, estos fueron ajustados a una regresi&oacute;n en el programa  estad&iacute;stico Statgraphics plus&reg;, y con base en esta curva se determin&oacute;  el &iacute;ndice de inhibici&oacute;n medio (IC50) o la concentraci&oacute;n en la cual el  porcentaje de inhibici&oacute;n es del 50% (20,21). Las determinaciones se  llevaron a cabo por triplicado.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><strong>Actividad inhibidora del cati&oacute;n radical del &aacute;cido 2,2'azinobis-(3-etilbenzotiazolina)-6-sulf&oacute;nico <img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20sy02.gif"></strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Para cada uno de los extractos se prepararon soluciones de diferente  concentraci&oacute;n en DMSO, a las cuales se adicion&oacute; la soluci&oacute;n de ABTS  (2,2'- etilbenzotiazolina-6- sulfonato de amonio), disuelta en una  soluci&oacute;n buffer acuosa citrato-fosfato de pH 7.4 y con una absorbancia  de 0.700 a la longitud de onda de m&aacute;xima absorci&oacute;n  (700 nm). Cada  concentraci&oacute;n se evalu&oacute; por triplicado. Como blancos de muestra se  utilizaron las mismas concentraciones preparadas en la soluci&oacute;n buffer  de pH 7.4. Para la referencia se prepararon tres repeticiones, que  conten&iacute;an la soluci&oacute;n buffer con la soluci&oacute;n ABTS, y por &uacute;ltimo, para  el blanco de referencia se hizo una repetici&oacute;n que conten&iacute;a DMSO con la  soluci&oacute;n buffer pH 7.4. Una vez obtenidas las mezclas se dejaron  incubar durante media hora y se midi&oacute; la absorbancia a 700 nm en el  espectrofot&oacute;metro. Seguidamente se calcul&oacute; el porcentaje de inhibici&oacute;n  medio, IC50, con la misma expresi&oacute;n matem&aacute;tica empleada para el  an&aacute;lisis de la actividad inhibitoria del radical <img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20sy03.gif">. De igual manera  se us&oacute; el BHT como control positivo.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><font size="3" face="Verdana">RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</font></strong></p>     <p><strong><font size="2" face="Verdana">Rendimiento de los extractos y contenido de fenoles totales</font></strong></p>     <p><font size="2" face="Verdana">El  rendimiento de la extracci&oacute;n y contenido de fenoles totales de los  extractos obtenidos a partir de las bayas de las especies del g&eacute;nero  Vismia, V. guianensis y V. baccifera ssp. ferruginea usando &eacute;ter de  petr&oacute;leo, acetato de etilo y metanol se presentan en la <a href="#tb01">tabla 1</a>. Los  porcentajes de material extractable con los diferentes solventes  mostraron similitudes para las dos especies analizadas; los  rendimientos m&aacute;ximos en la extracci&oacute;n se obtuvieron para los extractos  de metanol en ambas especies, siendo el porcentaje en peso con respecto  al material vegetal seco de 30.40% para VG y 31.60% para VB. Por su  parte, el porcentaje en peso extra&iacute;do con &eacute;ter de petr&oacute;leo y acetato de  etilo correspondi&oacute; respectivamente a 3.99% y 4.46% para VG y 4.56% y  5.89% para VB. El porcentaje en peso total de material extractable a  partir de las bayas secas fue de 38.95% para VG y 39.82 % para VB.  Ninguna asociaci&oacute;n significativa se encontr&oacute; entre los rendimientos de  la extracci&oacute;n y el contenido de fenoles totales o la actividad  inhibidora del radical <img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20sy03.gif"> y <img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20sy04.gif">.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><strong>Tabla 1.</strong> Porcentaje extra&iacute;do y contenido de fenoles totales de los extractos provenientes de las especies  del g&eacute;nero Vismia (<em>V. guianensis y V. baccifera ssp. ferruginea</em>).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a href="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20tb01.gif"><img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20tb01th.gif" border="2"></a><a name="tb01"></a>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Clic para ampliar</font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana">Las sustancias fen&oacute;licas se han reconocido por su aporte a la actividad  antioxidante de los materiales vegetales (22). Debido a lo anterior, se  investig&oacute; el contenido de fenoles totales en los extractos empleando el  m&eacute;todo de Folin-Ciocalteu. El contenido de fenoles totales para los  extractos provenientes de las dos especies estuvo en el rango de 78.33  &plusmn; 6.11 a 356.67 &plusmn; 27.77 mg/g extracto como equivalentes de &aacute;cido g&aacute;lico  (v&eacute;ase <a href="#tb01">tabla 1</a>). Aunque la fracci&oacute;n soluble en acetato de etilo del  material vegetal seco fue menor comparado con la fracci&oacute;n soluble en  metanol, el contenido fen&oacute;lico total (356.67 &plusmn; 27.77 mg GAE /g  extracto) fue casi dos veces mayor que en el extracto de metanol  (186.67 mg GAE/g extracto). El contenido de fenoles totales para las  dos especies, tanto en los extractos en &eacute;ter de petr&oacute;leo como en los de  metanol, fue muy similar. Por otro lado, el contenido fen&oacute;lico de los  extractos en &eacute;ter de petr&oacute;leo mostr&oacute; marcadas diferencias entre las  especies analizadas, siendo para VG (205.00 &plusmn; 1.67 mg GAE/g extracto)  de casi tres veces el encontrado en VB (78.33 &plusmn; 6.11 mg GAE/g extracto).</font></p>     <p><strong><font size="2" face="Verdana">Actividad captadora del radical libre <img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20sy03.gif"> de los extractos</font></strong></p>     <p><font size="2" face="Verdana">El DPPH es usualmente empleado como sustrato para  evaluar la actividad antioxidante de compuestos que, se presume, pueden  tener capacidad captadora de radicales libres (23). El m&eacute;todo est&aacute;  basado en la reducci&oacute;n de la absorbancia de la soluci&oacute;n en metanol de <img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20sy03.gif"> en la presencia de un antioxidante donante de hidr&oacute;geno, debido a  la generaci&oacute;n de la forma no radicalaria DPPH-H. El valor IC50 para  cada extracto y el BHT se calcul&oacute; y defini&oacute; como la concentraci&oacute;n de  muestra causante del 50% de inhibici&oacute;n de la absorbancia (v&eacute;ase <a href="#tb02">tabla 2</a>). Un valor inferior del IC50 indica una mayor actividad antioxidante.  En este estudio, todos los extractos mostraron una excelente actividad  inhibidora del radical <img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20sy03.gif"> dependiente de la concentraci&oacute;n, con  valores de IC50 que estuvieron en el rango de 3.72 &plusmn; 0.13 a 7.04 &plusmn; 0.07  para VG y      4.46 &plusmn; 0.19 a 17.51 &plusmn; 0.63 &micro;g/ml para VB. Los extractos  provenientes de VG presentaron valores de IC50 comparables al obtenido  para el control positivo BHT e inferiores a los reportados para VB, lo  que demuestra una actividad superior en esta primera especie. Adem&aacute;s,  los extractos en acetato de etilo de las dos especies, que presentaron  el  mayor contenido fen&oacute;lico, resultaron ser los de mayor actividad  inhibidora del radical <img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20sy03.gif">, incluso superior a la obtenida para el  BHT. La actividad captadora del radical, encontrada en los extractos de &eacute;ter de petr&oacute;leo y metanol para cada una de las especies fue similar, a  pesar de que el rendimiento obtenido para este &uacute;ltimo fue  considerablemente superior al encontrado en el extracto et&eacute;reo. Lo  anterior puede estar asociado a que durante el tratamiento con metanol  se extrajeron algunos compuestos fen&oacute;licos de alta polaridad junto con  az&uacute;cares, sales inorg&aacute;nicas y otros compuestos no activos para captar  radicales. Adicionalmente, la actividad del extracto et&eacute;reo de VG es  aproximadamente el doble de la encontrada en el mismo extracto en VB,  lo cual puede estar asociado con el mayor contenido de fenoles totales  determinado en VG.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><strong>Tabla 2.</strong>  Valores de IC50 (&mu;g/ml) de la actividad de los diferentes extractos de  las bayas de las dos especies de Vismia (<em>V. guianensis y V. baccifera  ssp. ferruginea</em>).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20tb02.gif"><a name="tb02"></a></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><font size="2" face="Verdana">Actividad captadora del cati&oacute;n radical <img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20sy04.gif"> de los extractos</font></strong></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">Otro  de los m&eacute;todos utilizados para determinar la capacidad de un  antioxidante para captar radicales libres, y aplicable tanto a  antioxidantes lipof&iacute;licos como hidrof&iacute;licos, es el protocolo de  decoloraci&oacute;n del cati&oacute;n radical <img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20sy04.gif">. Este m&eacute;todo es uno de los m&aacute;s  aplicados porque se considera un protocolo de elevada sensibilidad,  pr&aacute;ctico, r&aacute;pido y muy estable (24). Debe se&ntilde;alarse que, a pesar de las  diferencias metodol&oacute;gicas, los resultados obtenidos con los m&eacute;todos <img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20sy04.gif"> y <img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20sy03.gif"> permiten alcanzar conclusiones pr&aacute;cticamente similares  (v&eacute;ase <a href="#tb02">tabla 2</a>). Todos los extractos procedentes de las dos especies  revelaron una buena capacidad inhibitoria del cati&oacute;n radical, con  valores de IC50 en el rango de 4.16 &plusmn; 0.07 a 11.23 &plusmn; 0.41 &mu;g/ml. Los  extractos en acetato de etilo, que presentaron el mas alto contenido  fen&oacute;lico, tambi&eacute;n fueron los de mayor actividad con valores de IC50 de  4.16 &plusmn; 0.07 y    5.86 &plusmn; 0.72 para VB y VG, respectivamente. Por su  parte, los extractos en &eacute;ter de petr&oacute;leo mostraron valores de IC50  inferiores a los obtenidos para los extractos en metanol, lo que  demuestra una capacidad antioxidante superior en los primeros.     <br>   No se observ&oacute; una correlaci&oacute;n lineal entre los valores de la actividad captadora de radicales (<img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20sy03.gif">  y <img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20sy04.gif">) y el contenido en fenoles totales (m&eacute;todo de Folin-Ciocalteau). Esto indica claramente    que  otros compuestos diferentes a los fen&oacute;licos pueden tener un papel  importante en la actividad captadora del radical cati&oacute;n <img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20sy04.gif"> en los  extractos.</font></p>     <p><strong><font size="2" face="Verdana">Aislamiento de los metabolitos mayoritarios presentes en el extracto en acetato de etilo</font></strong></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Basados  en los promisorios resultados de la actividad antioxidante y el  contenido de fenoles se procedi&oacute; a la obtenci&oacute;n de compuestos puros a  partir del extracto en acetato de etilo de VB y en &eacute;ter de petr&oacute;leo de  VG. Del extracto en acetato de etilo de VB, sometido a sucesivas  cromatograf&iacute;as de columna sobre s&iacute;lica gel y Sephadex LH-20, se  aislaron como metabolitos mayoritarios los antranoides prenilados  ferruginina A (1) y la &#947;-hidroxiferruginina A (2) (v&eacute;ase <a href="#fig01">figura 1)</a>. Un  an&aacute;lisis comparativo cualitativo (CCF) permiti&oacute; establecer que ambos  compuestos estaban presentes en el extracto en AcOEt de la especie VG.  Los componentes aislados presentaron las siguientes propiedades f&iacute;sicas:</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><strong>Figura 1.</strong> Estructura de los componentes mayoritarios aislados del  extracto en acetato de etilo (1, 2) y &eacute;ter de petr&oacute;leo (3) de las bayas  de las especies de Vismia.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><img src="img/revistas/vitae/v15n1/v15n01a20fig01.gif"><a name="fig01"></a></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana"><em>Ferruginina A</em> (<u>1</u>) se obtuvo como un s&oacute;lido en agujas de color amarillo (<em>n</em>-hexano); punto    de  fusi&oacute;n 168-170 &deg;C (no corregido). RMN <sup>1</sup>H (300 MHz; CDCl<sub>3</sub>): &delta; 16.49 (1H,  s, 9-OH), 10.05 (1H, s, 8-OH), 7.27 (1H, s, H-10), 7.06 (1H, s, H-5, <em>J</em>  7Hz, acoplamiento a larga distancia con C6-CH<sub>3</sub>), 5.90 (1H, s, H-2),  5.15 (1H, t, H-17), 4.72 (1H, t, H-12 y H-12', <em>J</em> 7Hz), 4.66 (1H, t,  H-12 y H-12',    <em>J</em> 7Hz), 3.50 (2H, d, H-16, <em>J</em> 7Hz), 2.90-2.50 (4H, m,  H-11 y H-11'), 2.46 (3H, s, C6-CH3, acoplamiento a larga distancia con  H-5), 1.84 (3H, s, Me),    1.71 (3H, s, Me), 1.55 (3H, s, Me), 1.51  (3H, s, Me), 1.48 (3H, s, Me). RMN 13C (75.5 MHz; CDCl<sub>3</sub>): 198.2 (C-1),  192.2 (C-3), 166.2 (C-9), 163.3 (C-8), 154.6 (C-4a), 144.5 (C-6), 142.1  (C-10a), 136.9  (C-13 y 13'), 135.9 (C-18), 124.3 (C-5), 108.9  (C-9a),  105.7 (C-8a), 122.8 (C-7), 119.1 (C-12 y 12'), 118.7 (C-17), 117.6  (C-10), 105.7 (C-2), 50.2 (C-4), 40.9 (C-11 y 11'), 25.4 (C-16), 26.3  (3xMe), 21.2 (Ar-CH<sub>3</sub>), 18.5 (3xMe). Estos datos poseen una buena  concordancia con aquellos reportados previamente en la literatura (25).</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><em>&#947;-Hidroxiferruginina A</em> (<u>2</u>) se obtuvo como cristales de color  rojo-naranja (<em>n</em>-hexano); punto de fusi&oacute;n 97-99 &deg;C (no corregido). RMN <sup>1</sup>H      (300 MHz; CDCl<sub>3</sub>): &delta; 16.52 (1H, s, 9-OH), 10.15 (1H, s, 8-OH),  7.13 (1H, s, H-10), 7.09 (1H, s, H-5, <em>J</em> 7Hz, acoplamiento a larga  distancia con C6-CH<sub>3</sub>), 5.83 (1H, s, H-2), 5.15 (1H, t, H-17), 4.72 (1H,  t, H-12 y 12', <em>J</em> 7Hz), 4.66 (1H, t, H-12 y 12', <em>J</em> 7Hz), 3.48 (2H, d,  H-16, <em>J</em> 7Hz), 3.14 y 2.50 (4H, m,  H-11 y H-11'), 2.45 (3H, s,  C6-CH<sub>3</sub>, acoplamiento a larga distancia con H-5), 2.04 (3H, s, Me), 1.83  (3H, s, Me), 1.70 (3H, s, Me), 1.57 (3H, s, Me), 1.49 (3H, s, Me). NMR <sup>13</sup>C (75.5 MHz; CDCl3): 198.2 (C-1), 192.2 (C-3), 166.2 (C-9), 163.3  (C-8), 154.6 (C-4a), 144.5 (C-6), 142.1 (C-10a), 136.9 (C-13 y 13'),  135.9 (C-18), 124.3 (C-5), 108. 9 (C-9a), 105.7 (C-8a), 122.8 (C-7),  119.1 (C-12 y 12'), 118.7 (C-17), 117.6 (C-10), 105.7 (C-2), 50.2  (C-4), 40.9 (C-11 y 11'), 25.4 (C-16), 26.3 (3xMe), 21.2 (Ar-CH3), 18.5  (3xMe). Estos datos concuerdan perfectamente con aquellos reportados en  la literatura (26).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><strong><font size="2" face="Verdana">Aislamiento del compuesto mayoritario presente en el extracto de &eacute;ter de petr&oacute;leo</font></strong></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Del  extracto en &eacute;ter de petr&oacute;leo de VG sometido a sucesivas cromatograf&iacute;as  de columna sobre s&iacute;lica gel y Sephadex LH-20, se aisl&oacute; como metabolito  mayoritario la vismiaquinona A (3) (v&eacute;ase <a href="#fig01">figura 1</a>). Un an&aacute;lisis  comparativo cualitativo (CCF) permiti&oacute; establecer que este compuesto  est&aacute; presente en el extracto de &eacute;ter de petr&oacute;leo de la especie VG. El  compuesto aislado present&oacute; las siguientes propiedades f&iacute;sicas:</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><em>Vismiaquinona  A</em> (<u><strong>3</strong></u>).Se obtuvo como cristales de color amarillo-naranja con punto de  fusi&oacute;n de 202-204 &deg;C (no corregido). RMN <sup>1</sup>H (300 MHz; CDCl3): &delta; 12.89  (1H, s, 8-OH), 12.06 (1H, s, 1-OH), 7.55 (1H, s, H-4), 7.46 (1H, s,  H-5), 7.00 (1H, s,   H-7), 6.81 (1H, dd, H-2', J 7.2; 16.3 Hz), 6.59  (1H, d, H-1', J 16.3 Hz), 3.98 (3H, s, OMe), 2.40 (1H, m, H-3'), 2.38  (3H, s, C6-CH3), 1.07 (6H, d, 2xCH3, H-4' y H-5', J 6.7 Hz). RMN 13C  (75.5 MHz; CDCl3): 191.1 (C-9), 182.6 (C-10), 163.1 (C-8), 162.9 (C-1),  162.5 (C-3), 148.9 (C-6), 147.2 (C-2'), 133.0 (C-4a), 132.3 (C-1'),  131.9 (C-4b), 124.8 (C-7), 121.5 (C-4), 116.2 (C-8a), 110.4 (C-4),  110.3 (C-8b), 56.7 (OMe), 33.8 (C-3'), 22. 8 (2xMe, C-4' y C-5'), 22.6  (Ar-CH<sub>3</sub>). Los datos espectrosc&oacute;picos se correlacionan perfectamente con  los reportados en la literatura (27).</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>CONCLUSIONES</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Los  resultados obtenidos en este estudio muestran claramente que las bayas  de <em>V. baccifera ssp. ferruginea </em>y <em>V. guianensis </em>pueden ser una fuente  natural de antioxidantes con potencial aplicaci&oacute;n en alimentos o la  industria farmac&eacute;utica, dada la alta actividad encontrada en los  diferentes extractos bajo los dos modelos in vitro (DPPH, ABTS)  evaluados. En particular, el extracto de acetato de etilo present&oacute; el  mayor contenido de fenoles y la m&aacute;s alta actividad captadora de  radicales, superando inclusive al BHT, lo que constituye a esta  fracci&oacute;n en una fuente potencial de sustancias antioxidantes de  polaridad media. Los metabolitos identificados poseen caracter&iacute;sticas  qu&iacute;micas que pueden estar asociadas con la capacidad captadora de  radicales encontrada en los diferentes extractos. Sin embargo, son  necesarias futuras investigaciones respecto al mecanismo y la  evaluaci&oacute;n de la capacidad antioxidante de los compuestos individuales  presentes en los extractos.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><font size="3" face="Verdana">REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</font></strong></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">1.  Halliwell B. Reactive oxygen species in living systems: source,  biochemistry, and role in human disease. Am J Med 1991; (91):14-22.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0121-4004200800010002000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">2. Halliwell B. Antioxidants and human disease: a general introduction. Nut Res 1997; (55): 544-552.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0121-4004200800010002000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">3.  Gerber M, Boutron-Ruault MC, Hercberg S, Riboli E, Scalbert A, Siess  MH. Food and cancer: state of the art about the protective effect of  fruits and vegetables. Bull Cancer 2002; (89): 293-312.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0121-4004200800010002000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">4.  Kris-Etherton PM, Hecker KD, Bonanome A, Coval SM, Binkoski AE, Hilpert  KF. Bioactive compounds in foods: their role in the prevention of  cardiovascular disease and cancer. Am J Med 2002; 113 (Suppl. 9B):  71S-88S.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0121-4004200800010002000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">5. Serafini M, Belloco R,  Wolk A, Ekstrom AM. Total antioxidant potential of fruit and vegetables  and risk of gastric cancer. Gastroenterology 2002; (123): 985-991.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0121-4004200800010002000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">6.  Di Matteo V, Esp&oacute;sito E. Biochemical and therapeutic effects of  antioxidants in the treatment of Alzheimer's disease, Parkinson's  disease, and amyotrophic lateral sclerosis. Current Drug Targets CNS  &amp; Neurological Disorders 2003; (2): 95-107.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0121-4004200800010002000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">7.  Ames SN, Shigrenaga MK, Hagen TM. Oxidants, antioxidants and  degenerative diseases of aging. Proc Natl Sci USA 1993; (90): 7915-7922.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0121-4004200800010002000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">8.  Bergman M, Varshavsky L, Gottlieb HE, Grossman S. The antioxidant  activity of aqueous spinach extract: chemical identification of active  fractions. Phytochemistry 2001; (58): 143-152.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0121-4004200800010002000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">9.  Gul&ccedil;in I, Berashvili D, Gepdiremen A. Antiradical and antioxidant  activity of total anthocyanins from Perilla pankinensis decne. J  Ethnopharmacol 2005 Oct 3; 101(1-3): 287-93.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0121-4004200800010002000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">10. Cao GH, Sofic E, Prior RL. 1996. Antioxidant capacity of tea and vegetables. J Agric Food Chem 2005; (44): 3426-3431.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0121-4004200800010002000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">11.  Al Saikhan MS, Howard LR, Miller LC. Antioxidant activity and total  phenolics in different gonotypes of potato (Solanum tuberosum, L.). J  Food Science 1995; (60): 341-343.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0121-4004200800010002000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">12.  Baydar NG, &Ouml;zkan G, Yasar S. Evaluation of the antiradical and  antioxidant potential of grape extracts. Food Control 2007; 18 (9):  1131-1136.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0121-4004200800010002000012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">13. Tepe B, Sokmen A.  Screening of the antioxidative properties and total phenolic contents  of three endemic Tanacetum subspecies from Turkish flora. Bioresource  Technol 2007; (98): 3076-3079.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0121-4004200800010002000013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">14.  Botta B, delle Monache G, delle Monache F, Marini-Bettolo GB, Menichini  F. Vismione H and prenylated xanthones from Vismia guianeensis.  Phytochemistry 1986; (25): 1217-1219.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0121-4004200800010002000014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">15. Nagem TJ, Oliveira FF. Xanthones and other constituents of Vismia parviflora. J Braz Chem Soc 1997; 8(5): 505-508.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0121-4004200800010002000015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">16.  C&aacute;rdenas D, L&oacute;pez R. Plantas &uacute;tiles de la Amazonia colombiana -  Departamento del Amazonas: perspectivas de los productos forestales no  maderables. Instituto Amaz&oacute;nico de Investigaciones Cient&iacute;ficas SINCHI.  Ministerio del Medio Ambiente. Colombia. 2000.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0121-4004200800010002000016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">17.  Van Andel T. Non-timber forest products of the North-West District of  Guyana. Part II. Tropenbos-Guyana Series. Tropenbos-Guyana  Programme-Georgetown, Guyana. 2000.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0121-4004200800010002000017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">18.  Fuller RW, Westergaard CK, Collins JW, Cardelin JH, Boyd MR.  Vismiaphenones D-G, new prenylated benzophenones from Vismia  cayennensis. J Nat Prod 1999; (62): 67-69.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0121-4004200800010002000018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">19.  Singleton VL, Orthofer R, Lamuela-Raventos RM. Analysis of total  phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of  Folin Ciocalteu Reagent. Methods Enzymol 1999; (299): 152-178.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0121-4004200800010002000019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">20.  Brand-Williams W, Cuvelier ME, Berset C. Use of a free radical method  to evaluate antioxidant activity. Lebensmittel-Wissenschaft und  Technologie 1995; (28): 25-30.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0121-4004200800010002000020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">21.  Choi HS, Song HS, Ukeda H, Sawamura M. Radical-scavenging activities of  citrus essential oils and their components: Detection using  1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl. J Agric Food Chem. 2001; (48): 4156-4161.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0121-4004200800010002000021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">22.  Cakir A, Mavi A, Y&yacute;ld&yacute;r&yacute;m A, Duru ME, Harmandar M, Kazaz C. Isolation  and characterization of antioxidant phenolic compounds from the aerial  parts of Hypericum hyssopifolium L. by activity-guided fractionation. J  Ethnopharmacol 2003; (87): 73-83.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0121-4004200800010002000022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">23.  Yildirim A, Mavi A, Kara AA. Determination of antioxidant and  antimicrobial activities of Rumex crispus L. extracts. J Agric Food  Chem 2001; (49): 4083-4089.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0121-4004200800010002000023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">24. P&eacute;rez  RM, Vargas R, Mart&iacute;nez FJ, Garc&iacute;a EV, Hern&aacute;ndez B. Actividad  antioxidante de los alcaloides de Bocconia arborea. Estudio sobre seis  m&eacute;todos de an&aacute;lisis. Ars Pharmaceutica 2003; 44 (1): 5-21.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0121-4004200800010002000024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">25.  Delle Monache F, Mc Quhae MM, Ferrari F, Marini-Bettolo GB. Ferruginin  A and B and ferruanthrone, new triprenylated anthranoids from Vismia  baccifera var. ferruginea. Tetrahedron 1979; (35): 2143-2149.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0121-4004200800010002000025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>26</FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>. </FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>Delle Monache </FONT></FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>F</FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>, </FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>Torres</FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2> </FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>FF</FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>, </FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>Marini-Bettolo</FONT></FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2> GB</FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>, </FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>Alves de Lima</FONT></FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2> RA</FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>. </FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>Chemistry of Vismia genus</FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>. </FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>Note V: &#947;-hydroxy and &#947;, &#947;'-dihydroxy-feruginin A</FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>.</FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2> </FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>J Nat Prod</FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2> </FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>1980</FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>; (</FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>43</FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>): </FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>487-494</FONT></FONT><FONT FACE="Verdana, Arial" SIZE=2>.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0121-4004200800010002000026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">27. Nagem TJ, de Oliveira FF. Xanthones and other constituents of Vismia parviflora. J Braz Chem Soc 1997; 8 (5): 505-508.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0121-4004200800010002000027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>AGRADECIMIENTO</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Este trabajo fue financiado por la Direcci&oacute;n de Investigaciones de la Universidad Nacional de Colombia-Sede Medell&iacute;n (DIME) - C&oacute;digo DIME No. 30802946.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">Recibido: Enero 24 de 2008; Aceptado: Abril 22 de 2008</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana"><a href="#a">*</a><a name="ab"></a> Autor a quien se debe dirigir la correspondencia: <a href="mailto:dldurango@unalmed.edu.co">dldurango@unalmed.edu.co</a></font></p>      ]]></body><back>
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