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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[DETERMINACIÓN DE LA ACTIVIDAD ANTIOXIDANTE EN UN MODELO DE PEROXIDACIÓN LIPÍDICA DE MANTEQUILLA INHIBIDA POR EL ISOESPINTANOL]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The antioxidant activity (&Phi;) is defined as the slope of the simple linear regression of f0/f i against the concentration µM, in an inhibition model of lipid peroxidation of butter at 60&deg; C, where f i is the concentration effect of isoespintanol and f0 is the control. It is found that the formation of: hydroperoxides (peroxide value of PV) and the most oxidized species reactive to thiobarbituric acid (TBARS), were similarly delayed by isoespintanol (&Phi;TBARS = 9.46x10-5 &plusmn; 1.33x10-5 and &Phi;PV = 9.41x10-5 &plusmn; 1.62x10-5). Likewise, the butilhidroxy toluene and isoespintanol inhibit the oxidative process of butter in a 28.0 and 23.3% at concentrations of 2380.9 and 3809.5 µ M respectively.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="2" face="Verdana"><strong>INGENIER&Iacute;A Y TECNOLOG&Iacute;A DE ALIMENTOS</strong></font></p>     <p align="right">&nbsp;</p>     <p><font size="4" face="Verdana"><strong>DETERMINACI&Oacute;N DE LA ACTIVIDAD ANTIOXIDANTE EN UN MODELO DE PEROXIDACI&Oacute;N LIP&Iacute;DICA DE MANTEQUILLA INHIBIDA POR EL ISOESPINTANOL </strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>ANTIOXIDANT ACTIVITY DETERMINATION IN A LIPIDIC PEROXIDATION MODEL OF BUTTER INHIBITED BY ISOESPINTANOL </strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana">Benjam&iacute;n A. ROJANO.<sup>1</sup><a href="#ab">*</a><a name="a"></a>; Carlos A. GAVIRIA.<sup>1</sup>; Jairo A. S&Aacute;EZ.<sup>2</sup>    <br> </font><font size="2" face="Verdana"><sup>1</sup> Laboratorio de Ciencia de Alimentos. Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. Facultad de Ciencias. A.A. 3840, Medell&iacute;n, Colombia.     <br> </font><font size="2" face="Verdana"><sup>2</sup> Grupo de Qu&iacute;mica de Plantas Colombianas. Universidad de Antioquia. Instituto de Qu&iacute;mica, A.A. 1226, Medell&iacute;n, Colombia. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p> <hr size="1" noshade> <font size="2" face="Verdana"><strong>RESUMEN </strong></font>     <p><font size="2" face="Verdana">En este trabajo se eval&uacute;a la actividad antioxidante (&Phi;), definida como la pendiente de la regresi&oacute;n simple lineal de f<sub>o</sub> /f<sub>i</sub> contra la concentraci&oacute;n <em>&micro;</em>M, en un modelo de inhibici&oacute;n de la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica de mantequilla a 60&ordm;C, donde fi es el efecto de cada concentraci&oacute;n del isoespintanol y fo es el control. Se encuentra que la formaci&oacute;n de hidroper&oacute;xidos (valor de per&oacute;xido PV) y las especies mas oxidadas reactivas al &aacute;cido tiobarbiturico (TBARS) fueron retardadas de manera similar por el isoespintanol (&Phi;<sub>TBARS</sub>=9.46x10<sup>-5</sup> &plusmn; 1.33x10<sup>-5</sup> y &Phi;PV = 9.41x10<sup>-5</sup> &plusmn; 1.62x10<sup>-5</sup>). De igual manera, el butilhidroxi tolueno y el isoespintanol inhiben el proceso oxidativo de mantequilla en un 28.0 y 23.3 % a concentraciones de 2380.9 y 3809.5 <em>&micro;</em>M respectivamente. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><strong>Palabras clave:</strong> Peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica, mantequilla, isoespintanol, valor de per&oacute;xido, valor TBA</font></p> <hr size="1" noshade> <font size="2" face="Verdana"><strong>ABSTRACT </strong></font>     <p><font size="2" face="Verdana">The antioxidant activity (&Phi;) is defined as the slope of the simple linear regression of f<sub>0</sub>/f<sub>i</sub> against the concentration µM, in an inhibition model of lipid peroxidation of butter at 60&deg; C, where f<sub>i</sub> is the concentration effect of isoespintanol and f<sub>0</sub> is the control. It is found that the formation of: hydroperoxides (peroxide value of PV) and the most oxidized species reactive to thiobarbituric acid (TBARS), were similarly delayed by isoespintanol (&Phi;<sub>TBARS</sub> = 9.46x10<sup>-5</sup> &plusmn; 1.33x10<sup>-5</sup> and &Phi;PV = 9.41x10<sup>-5</sup> &plusmn; 1.62x10<sup>-5</sup>). Likewise, the butilhidroxy toluene and isoespintanol inhibit the oxidative process of butter in a 28.0 and 23.3% at concentrations of 2380.9 and 3809.5 <em>µ</em> M respectively. </font></p>     <p><strong><font size="2" face="Verdana">Keywords:</font></strong><font size="2" face="Verdana"> Lipid peroxidation, butter, isoespintanol, peroxide value, TBA value.</font></p> <hr size="1" noshade>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N </strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">La autoxidaci&oacute;n de los l&iacute;pidos ocurre fundamentalmente debido a los &aacute;cidos grasos insaturados a trav&eacute;s de una serie de reacciones en cadena de radicales libres, que tiene las fases de iniciaci&oacute;n, propagaci&oacute;n y terminaci&oacute;n [1]. En la etapa de iniciaci&oacute;n (1) el radical lip&iacute;dico, R<img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a02sy02.gif"> se forma a partir del l&iacute;pido (RH), usualmente por el ataque de radicales, luz, calor, irradiaciones o por trazas de metales. El radical lip&iacute;dico (R<img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a02sy02.gif">) formado reacciona r&aacute;pidamente con ox&iacute;geno (2) para dar un radical peroxilo (ROO<img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a02sy02.gif">), el cual ataca otra mol&eacute;cula de l&iacute;pido (RH) y sustrae un &aacute;tomo de hidr&oacute;geno para formar un hidroper&oacute;xido lip&iacute;dico (ROOH), y un nuevo radical lip&iacute;dico, que inicia de nuevo la secuencia de propagaci&oacute;n (3). De esta manera, muchas mol&eacute;culas de l&iacute;pidos pueden ser oxidadas hasta hidroper&oacute;xidos por muchas formas de iniciaci&oacute;n. El ciclo de propagaci&oacute;n es interrumpido por las reacciones de terminaci&oacute;n (4-6), en las cuales hay consumo de los radicales. Las interacciones bimoleculares de radicales libres originan productos no-radicales muy estables. El proceso de autoxidaci&oacute;n sin antioxidantes se resume a continuaci&oacute;n. </font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a02fig01.gif"></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">En los alimentos con alto contenido de l&iacute;pidos, la etapa m&aacute;s importante es la formaci&oacute;n y descomposici&oacute;n de los hidroper&oacute;xidos, que generan una serie de compuestos oxidados como cetonas, aldeh&iacute;dos, alcanos y alquenos de bajo peso molecular y de alta volatilidad, que determinan el valor sensorial del alimento. Este fen&oacute;meno se denomina rancidez. Los antioxidantes pueden retardar la rancidez, pero nunca la detienen, porque la oxidaci&oacute;n ocurre a bajas presiones de ox&iacute;geno y se hace inevitable, a pesar del uso de todas las metodolog&iacute;as de conservaci&oacute;n, como fr&iacute;o, escaldado y empaque [1, 3]. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Los antioxidantes de mayor uso en la industria de alimentos y farmac&eacute;utica, son los compuestos sint&eacute;ticos butilhidroxianisol (BHA) y butilhidroxitolueno (BHT), los cuales presentan efectos secundarios como el aumento del colesterol, hepatomegalia e inducci&oacute;n de c&aacute;ncer en c&eacute;lulas de ratas [4-6]. Estos hallazgos, junto al gran inter&eacute;s del consumidor en el uso de aditivos inocuos para la salud, ha potenciado el uso de compuestos naturales de baja toxicidad en la industria de alimentos. Adem&aacute;s, muchos compuestos naturales como mono y polifenoles con actividad antioxidante, tienen la capacidad de proteger c&eacute;lulas, membranas y organismos sometidos al estr&eacute;s oxidativo que pueden causar envejecimiento, enfermedades degenerativas y c&aacute;ncer, entre otras [7, 8]. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Son muchos los informes sobre la aplicaci&oacute;n de compuestos naturales antioxidantes en la conservaci&oacute;n de grasas o aceites; los isopropilmetil fenoles, como timol y carvacrol, han sido objeto de muchos estudios [9, 10, 11]. Los informes de peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica con timol y carvacrol se han desarrollado en diferentes sistemas, por ejemplo, Aeschbach et al 1994 [12], encontraron que el timol y el carvacrol inhibieron la peroxidaci&oacute;n de lipososomas fosfol&iacute;pidicos; de igual manera Lagouri et al 1993 [13], reportaron la efectividad de ambos is&oacute;meros en la autoxidaci&oacute;n de cebo de vacuno a 35&deg; C a una concentraci&oacute;n del 0.1%. Adem&aacute;s, Lagouri y Boskou, en 1993, Castillo et al, 2007, y Loziene et al, 2007 [13, 14, 15], encontraron que la oxidaci&oacute;n de aceites esenciales de or&eacute;gano, era altamente dependiente del contenido de timol y carvacrol. El grupo de Yanishlieva y Marinova, 1999 [16] informa el mecanismo y la cin&eacute;tica de oxidaci&oacute;n de diferentes sistemas l&iacute;pidicos inhibidos por el timol y carvacrol, hallando mayor efectividad del timol, debido a la mayor estabilidad del radical timoil, causada por un efecto electr&oacute;nico del grupo isopropil en posici&oacute;n orto al O-H. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">El isoespintanol (2-isopropil-3,6-dimetoxi-5-metilfenol), un derivado biosint&eacute;tico del timol, es un antioxidante natural aislado de los extractos hex&aacute;nicos de <em>Oxandra cf xylopioides</em> (Annonaceae), que act&uacute;a como un buen reductor y con una alta capacidad para atrapar radicales libres en diferentes medios; que, adem&aacute;s, posee baja cito y genotoxicidad a 1000 ppm; siendo un buen candidato para ser utilizado en medios alimenticios [17, 18, 19]. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">En este trabajo se propone una nueva estrategia para calcular la actividad antioxidante (&Phi;) de compuestos y extractos como inhibidores de per&oacute;xidos y de especies reactivas al acido tiobarbit&uacute;rico. Adem&aacute;s, estudiamos la capacidad inhibitoria del isoespintanol sobre la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica de mantequilla, comparando contra BHT (<a href="#fig01">Figura 1</a>); haciendo el seguimiento del deterioro oxidativo, monitoreando la velocidad de aparici&oacute;n de per&oacute;xidos usando el m&eacute;todo FOX (valor de per&oacute;xidos) y la capacidad de los compuestos oxidados para reaccionar con el &aacute;cido tiobarbiturico (valor TBARS). </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"> Figura 1. Compuestos inhibidores de la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica de mantequilla </font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a02fig01b.gif"><a name="fig01"></a></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </strong></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"><strong>Reactivos:</strong> Butilhidroxitolueno (BHT), 1,1,3,3 tetraetoxipropano (TEP) y &aacute;cido tiobarbit&uacute;rico (TBA) fueron obtenido de Sigma Chemical Co. (St.Louis, MO). Naranja de xilenol (XO), &aacute;cido ac&eacute;tico, cloruro de hierro II (FeCl<sub>2</sub>), cloruro de hierro III (FeCl<sub>3</sub>) fueron obtenidos de Merck. El isoespintanol (2-Isopropil-3,6-dimetoxi-5-metilfenol) fue aislado de las hojas de <em>Oxandra cf xylopioides</em> (Annonaceae). La mantequilla sin ning&uacute;n aditivo, fue obtenida de la planta de l&aacute;cteos de la Universidad Nacional de Colombia, sede Medell&iacute;n, Colombia. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><strong>Obtenci&oacute;n de la grasa clarificada de mantequilla.</strong> La mantequilla se clarific&oacute; de la siguiente forma:en un vaso de precipitados la mantequilla se fundi&oacute; a 70&deg; C., con baja agitaci&oacute;n por un per&iacute;odo de tres horas para separar el suero y precipitar las prote&iacute;nas presentes. La fase lip&iacute;dica se separ&oacute; y se clarific&oacute; pas&aacute;ndola a trav&eacute;s de algunas capas de tela filtrante para queso, posteriormente se filtr&oacute; en papel Watman numero 2 [20]. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><strong>An&aacute;lisis de la mantequilla clarificada.</strong> La mantequilla clarificada es la matriz alimenticia oxidable a la cual se le adicionan cantidades de isoespintanol hasta obtener concentraciones de 952.4, 1666.7, 2381.0, 3095.2, 3809.5 <em>&micro;</em>M (equivalentes a 200, 350, 500, 650 y 800 ppm respectivamente). Como patr&oacute;n se utiliz&oacute; BHT a una concentraci&oacute;n de 2381.0 <em>&micro;</em>M (500 ppm), y como control se utiliz&oacute; una muestra de mantequilla clarificada sin antioxidante. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><strong>Determinaci&oacute;n del contenido de sustancias reactivas con el &aacute;cido 2-tiobarbit&uacute;rico (TBARS).</strong> La determinaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo teniendo en cuenta el procedimiento de Guzm&aacute;n-Chozas et al 1999 [21] con ligeras modificaciones: En un frasco de vidrio &aacute;mbar se colocan 5 ml del reactivo de TBA reci&eacute;n preparado (&aacute;cido 2- tiobarbit&uacute;rico 0.02 M en &aacute;cido ac&eacute;tico glacial al 90 %), y 0.5 g de mantequilla clarificada El tubo se sumerge en un ba&ntilde;o de agua a 90&deg; C durante 45 minutos. Tambi&eacute;n se prepara un blanco con el mismo procedimiento anterior. Luego los tubos son enfriados en agua durante 10 minutos. Una porci&oacute;n de la muestra se llev&oacute; a una cubeta y la absorbancia de la muestra fue le&iacute;da a 532 nm en un espectrofot&oacute;metro (Jenway 6405 UV/ Vis). Las lecturas fueron convertidas a mg de malonaldeh&iacute;do por kilogramo de muestra usando una curva est&aacute;ndar. La curva est&aacute;ndar fue construida realizando diluciones apropiadas de una soluci&oacute;n acuosa de 1,1,3,3 tetraetoxipropano 1.0x10<sup>-3</sup> M, para obtener concentraciones de 1*10<sup>-8</sup> a 7*10<sup>-8</sup> moles de malonaldeh&iacute;do en 1 ml de soluci&oacute;n. Estas soluciones fueron tratadas con el reactivo de TBA, como se indic&oacute; anteriormente, y la absorbancia fue medida a 532 nm. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><strong>Determinaci&oacute;n del valor de per&oacute;xidos (PV).</strong> El valor de per&oacute;xidos se determin&oacute; por el m&eacute;todo de oxidaci&oacute;n ferrosa/ naranja de xilenol (FOX) [22], que se fundamenta en la capacidad que presentan los per&oacute;xidos l&iacute;pidicos de oxidar el Fe<sup>2+</sup> hasta Fe<sup>3+</sup>, a bajos pH. A 0.01 gramos de muestra, se adicionan 9.9 ml de cloroformo-metanol (7:3) y se agita por 10 segundos, luego se adiciona 50 µl de una soluci&oacute;n acuosa de naranja de xilenol 10 mM mas 50 µl de soluci&oacute;n de FeCl<sub>2</sub>, se agita por 10 segundos y se incuba por un per&iacute;odo de 5 minutos, y se lee a 560 nm. Las lecturas fueron convertidas a meq. de ox&iacute;geno activo/ Kg. de muestra usando una curva est&aacute;ndar de Fe<sup>3+</sup>. La curva est&aacute;ndar fue construida mediante la adici&oacute;n de diferentes cantidades de cloruro de hierro III al medio formado por la mezcla cloroformo - metanol (7:3) y la soluci&oacute;n de naranja de xilenol; finalmente se monitorea la absorbancia a 560 nm. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><strong>An&aacute;lisis estad&iacute;stico.</strong> Las muestras fueron preparadas por cuadriplicado para cada una de las concentraciones y los datos son reportados como la media &plusmn; la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar. Las diversas regresiones se calcularon con el programa Statgraphics Plus versi&oacute;n 5.0 (Statistical Graphics Corp., Rockville, MD), con un nivel de significancia de p&lt;0.05 de exactitud. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N </strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">En este trabajo se evalu&oacute; la oxidaci&oacute;n de mantequilla clarificada de vacuno, libre de aditivos, acelerada a 60&deg; C, durante un periodo de tiempo de 15 d&iacute;as. Los cambios ocurridos en el proceso oxidativo se siguieron monitoreando la cin&eacute;tica de aparici&oacute;n de hidroper&oacute;xidos, midiendo el valor de per&oacute;xido (PV), expresado como meq de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno por Kg. de muestra (meq Oact/Kg.); y midiendo la formaci&oacute;n de productos oxidados reactivos al &aacute;cido tiobarbit&uacute;rico (TBARS) y expresados como miligramos de malonaldeh&iacute;do por Kg de mantequilla (mg MA/ Kg. de Muestra). </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">En la <a href="#fig02">Figura 2</a> se observan los cambios en la concentraci&oacute;n de especies producto del proceso de oxidaci&oacute;n lip&iacute;dica, evaluadas mediante el seguimiento de la formaci&oacute;n de especies reactivas al &aacute;cido tiobarbiturico (TBARS). En todo el experimento hay una buena relaci&oacute;n dosis-respuesta; es decir, con el aumento de concentraci&oacute;n del isoespintanol hay una disminuci&oacute;n de las TBARS, respecto al control (todo el sistema, sin antioxidante). Adem&aacute;s, se observa un aumento en el periodo de inducci&oacute;n al aumentar la concentraci&oacute;n del antioxidante, tiempo en el cual el valor TBARS se mantiene bajo. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <div align="center"><font size="2" face="Verdana">Figura 2. Cambios en TBARS en mantequilla clarificada conteniendo isoespintanol    a diferentes concentraciones, BHT y sin ning&uacute;n aditivo. </font></div>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a02fig02.gif"><a name="fig02"></a></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los hidroper&oacute;xidos, son los primeros productos del proceso de oxidaci&oacute;n de l&iacute;pidos que posteriormente originan una gran variedad de compuestos secundarios vol&aacute;tiles y no-vol&aacute;tiles [23]. En el m&eacute;todo FOX, el Fe II en medio &aacute;cido con el naranja de xilenol forma un crom&oacute;foro azul p&uacute;rpura el cual presenta su m&aacute;ximo de absorci&oacute;n a 560 nm [23]. El m&eacute;todo FOX ha sido reportado en la evaluaci&oacute;n de conservaci&oacute;n de aceites con una gran sensibilidad y precisi&oacute;n [24-28]. En la <a href="#fig03">Figura 3</a> se observan los cambios en los periodos de inducci&oacute;n que provoca el isoespintanol a las diversas concentraciones de isoespintanol y BHT en el proceso de oxidaci&oacute;n de la matriz. Puede observase que existe una buena relaci&oacute;n dosis - inhibici&oacute;n en el rango de experimentaci&oacute;n para el isoespintanol. </font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"> Figura 3. Cambios en PV en mantequilla clarificada conteniendo isoespintanol  a diferentes concentraciones, BHT y sin ning&uacute;n aditivo. </font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a02fig03.gif"><a name="fig03"></a></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>C&Aacute;LCULO DE LA ACTIVIDAD ANTIOXIDANTE (&Phi;) </strong></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"><strong>Ensayo TBARS:</strong> las curvas de valor de per&oacute;xido y especies reactivas al TBA contra el tiempo, son regresiones simples exponenciales, cuyas pendientes dependen de la concentraci&oacute;n y de la naturaleza del antioxidante. Por esto, se hace necesario obtener un par&aacute;metro (&Phi;) que determine la acci&oacute;n antioxidante de cualquier compuesto en un proceso oxidativo. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Para calcular la actividad antioxidante (&Phi;) del compuesto en los ensayos TBARS, realizamos el siguiente procedimiento: a partir de los datos con los cuales se construy&oacute; la <a href="#fig02">figura 2</a>, determinamos el par&aacute;metro f<sub>i</sub>, que es la pendiente de la regresi&oacute;n simple exponencial de los mg de malonaldehido/ Kg de mantequilla producidos contra el tiempo en d&iacute;as; el valor de f<sub>i</sub>, mide el efecto inhibitorio de la concentraci&oacute;n i del isoespintanol sobre el proceso oxidativo de la mantequilla. En la <a href="#tb01">Tabla 1</a> se observan los diferentes valores de fi para cada concentraci&oacute;n, con una alta significancia estad&iacute;stica. Con los valores de fi, calculamos la relaci&oacute;n f<sub>o</sub>/f<sub>i</sub>; donde f<sub>o</sub> es la pendiente del control. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Tabla 1. C&aacute;lculo de la actividad f<sub>i</sub> para cada concentraci&oacute;n del isoespintanol en el ensayo TBARS. </font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a02tb01.gif"><a name="tb01"></a></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana"> La pendiente de la regresi&oacute;n simple lineal de f<sub>o</sub>/f<sub>i</sub> contra la concentraci&oacute;n <em>&micro;</em>M, es el valor &Phi;, que refleja el efecto integral del isoespintanol como inhibidor del proceso oxidativo de la mantequilla de vacuno, en la producci&oacute;n de compuestos oxidados reactivos al TBA, bajo las condiciones de nuestra experimentaci&oacute;n (<a href="#fig04">Figura 4</a>). Luego la actividad antioxidante global del isoespintanol en la inhibici&oacute;n de la formaci&oacute;n de compuestos reactivos con el TBA es: &Phi;<sub>TBARS</sub> = 9.46x10-5 &plusmn; 1.33x10<sup>-5</sup>, con una r<sup>2</sup> = 94.42, r = 0.972, F = 50.7 y p = 0.0057. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"> Figura 4. C&aacute;lculo de la actividad antioxidante (&Phi;<sub>TBARS</sub>) para el isoespintanol, a partir de la regresi&oacute;n de f<sub>o</sub>/f<sub>i</sub> vs concentraci&oacute;n (<em>&micro;</em>M). </font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a02fig04.gif"><a name="fig04"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana"><strong>Valor de per&oacute;xido:</strong> A partir de los datos con los cuales se construy&oacute; la <a href="#fig03">Figura 3</a>, se calculan los valores fo, fi y las relaciones de fo/fi para el m&eacute;todo FOX (<a href="#tb02">Tabla 2</a>). De igual manera que en el caso anterior, se obtiene el valor de la actividad antioxidante global &Phi;<sub>PV</sub> = 9.41x10<sup>-5</sup> &plusmn; 1.62x10<sup>-5</sup> para inhibir la formaci&oacute;n de hidroper&oacute;xidos en el proceso de oxidaci&oacute;n de mantequilla acelerada a 60&deg;C. Rosas Romero, Rojano et al 1999, realizaron c&aacute;lculos quimiom&eacute;tricos de una forma similar para determinar la actividad antioxidante (?) para compuestos fen&oacute;licos en la decoloraci&oacute;n de beta caroteno en un medio emulsificado [29]. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Tabla 2. C&aacute;lculo de la actividad f<sub>i</sub> para cada concentraci&oacute;n del isoespintanol en la determinaci&oacute;n de per&oacute;xidos. </font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a02tb02.gif"><a name="tb02"></a></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana">De acuerdo a los datos obtenidos encontramos que el isoespintanol en ambos procesos inhibe de igual manera la formaci&oacute;n de hidroper&oacute;xidos y la formaci&oacute;n de productos oxidados, debido a que los valores de las &Phi; no tienen diferencias significativas entre s&iacute;, explicando la eficiencia del isoespintanol en ambos procesos. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">De otro lado, a partir de los valores de f<sub>i</sub>/f<sub>0</sub> se puede calcular el porcentaje de inhibici&oacute;n para cada concentraci&oacute;n de antioxidante [17], expres&aacute;ndolo como: </font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a02eq01.gif"></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Aunque se estudi&oacute; a una sola concentraci&oacute;n se nota que el BHT tiene mayor capacidad para inhibir los procesos oxidativos acelerados a 60&deg;C en mantequilla, comparado con el isoespintanol, porque a la concentraci&oacute;n de 2381.0 <em>&micro;</em>M inhibe un 28.0 %, mientras que el isoespintanol a 3809.5 <em>&micro;</em>M, inhibe solamente el 23.3 %. Estos resultados de inhibici&oacute;n est&aacute;n acordes con diversos reportes bibliogr&aacute;ficos de sustancias consideradas buenos antioxidantes del proceso de peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica [30]. El isoespintanol y el BHT son antioxidantes primarios interruptores de la cadena de oxidaci&oacute;n atrapando los radicales libres ROO<img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a02sy02.gif"> interrumpiendo las etapas de propagaci&oacute;n de acuerdo a las reacciones (8) y (9), formando un radical ArO<img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a02sy02.gif"> de una reactividad muy baja, de tal manera que las otras reacciones de los l&iacute;pidos no ocurren o lo hacen con muy baja velocidad. El isoespintanol y el BHT poseen una muy baja energ&iacute;a de disociaci&oacute;n del enlace O-H (&Delta;BDE), que los caracteriza como buenos antioxidantes primarios que reaccionan con radicales libres, inhibiendo la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica a trav&eacute;s de un mecanismo de simple transferencia de un prot&oacute;n (HAT) [18, 31]. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a02fig05.gif"></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>CONCLUSIONES </strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Los c&aacute;lculos de la actividad antioxidante expresada como &Phi;, es la respuesta del antioxidante para inhibir integralmente el proceso oxidativo. Esta forma de c&aacute;lculo para determinar la actividad antioxidante en procesos oxidativos, no ha sido reportada en la literatura y es una buena alternativa para hacer comparaciones entre compuestos, e incluso con extractos, de una manera m&aacute;s razonable, porque en casi todos los casos se hacen relaciones comparativas a un solo valor de concentraci&oacute;n [32, 33]. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">La efectividad del isoespintanol y el BHT para inhibir la autoxidaci&oacute;n de la mantequilla a 60&deg; C, se observa en las figuras <a href="#fig02">2</a> y <a href="#fig03">3</a>, por el aumento del periodo de inducci&oacute;n comparado con el control; este efecto es una funci&oacute;n directa de las concentraciones de cada antioxidante, en este tiempo la peroxidaci&oacute;n de l&iacute;pidos ocurre a una velocidad muy lenta. El periodo de inducci&oacute;n comienza a aumentar hasta cuando queda remanente m&aacute;s o menos el 10% del antioxidante [21]. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">El isoespintanol es un compuesto natural que puede ser una buena alternativa como inhibidor de la oxidaci&oacute;n de alimentos con alto contenido de grasas; su modo de acci&oacute;n, de acuerdo a los resultados (&Phi;<sub>TBARS</sub> = &Phi;<sub>PV</sub>), es la capacidad que tiene para interactuar con los radicales peroxilos (ROO<img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a02sy02.gif">) y controlar la formaci&oacute;n de hidroper&oacute;xidos a igual velocidad que la descomposici&oacute;n de los mismos para formar productos altamente oxidados, como aldeh&iacute;dos, cetonas y &aacute;cidos de cadenas cortas. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>AGRADECIMIENTOS </strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Este trabajo fue financiado por la Direcci&oacute;n de Investigaciones de la Universidad Nacional de Colombia, sede Medell&iacute;n (DIME) – c&oacute;digo 20101006745 y agradece a los profesores Uriel Sep&uacute;lveda y V&iacute;ctor Higuera por aportar la mantequilla libre de aditivos, y a los profesores Alfredo Rosas Romero, de la Universidad Sim&oacute;n Bol&iacute;var (Venezuela), y Guillermo Schinella, de la Universidad Nacional de la Plata (Argentina), por su apoyo permanente en la tem&aacute;tica de antioxidantes. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3" face="Verdana"><strong>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS </strong></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">1. Rodr&iacute;guez A, Lozada V, Larra&iacute;n MA, Quitral V, Vinagre J, Aubourg, SP. Development of lipid changes related to quality loss during the frozen storage of farmed coho salmon. JAOCS. 2007; 84: 727-734. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0121-4004200800020000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">2. Nedyalka VY, Emma MM. Stabilisation of edible oils with natural antioxidants. Eur J Lipid Sci. Technol. 2001; 103(11): 752–767. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0121-4004200800020000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">3. Aubourg, SP, Pi&ntilde;eiro C, Gonz&aacute;lez MJ. Quality loss related to rancidity development during frozen storage of horse (Trachurus trachurus). JAOCS. 2004; 81(7): 671-678. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0121-4004200800020000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">4. Lindenschmidt RC, Trika AF, Guard ME, Witschi HP. The effect of butylated hydroxytoluene on liver and colon tumor development in mice. Toxicology. 1986; 38(2): 151-160. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0121-4004200800020000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">5. Bush RK, Taylor SL. Adverse reactions to food and drug additives, in allergy: principles and practice. 5&ordf; ed. St. Louis: Mosby; 1998; p.1183. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0121-4004200800020000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">6. Kahl R, Kappus H. Antioxidantien BHA and BHT im Vergleich mit dem </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0121-4004200800020000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">7. natuerlichen Antioxidans Vitamin E. Z. Lebens-mitt. Unters. Forsch. 1993; 196(4): 329-338. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0121-4004200800020000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">8. Fabris S, Momo F, Ravagna G, Stevanato R. Antioxidant properties of resveratrol and piceid on lipid peroxidation in micelles and monolamellar liposomes. Biophys. Chem. 2008, 135: 76–83. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0121-4004200800020000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">9. Din&ccedil;er Y, Ak&ccedil;ay T, Ilkova H, Alademir Z, &Ouml;zbay G. DNA damage and antioxidant defense in peripheral leukocytes of patients with Type I diabetes mellitus. Mutat. Res. 2003; 527(1): 49–55. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0121-4004200800020000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">10. &Aacute;lvarez MJ, Guar&aacute;n CY, Bel&eacute;n DR, Garc&iacute;a-Pantale&oacute;n D, Medina CA. Efecto de los extractos de flavonoides de harinas de c&aacute;scaras y semillas de pomelos sobre la estabilidad de aceite de soja. Grasas y aceites. 2007; 58 (4): 351-358. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0121-4004200800020000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">11. Carelli A, Franco I, Crapiste G. Effectiveness of added natural antioxidants in sunflower oil. Grasas y aceites. 2005; 56(4): 303-310. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0121-4004200800020000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">12. Aeschbach R, Lo&egrave;liger J, Scott BC, Murcia A, Butler J, Halliwell B, et al. Antioxidant action of thymol, carvacrol, 6-gingerol, zingerone and hydroxytyrosol. Food Chem .Toxicol. 1994; 32(1): 31-36. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0121-4004200800020000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">13. Lagouri V, Blekas G, Tsimidou M, Kokkini S, Boskou D. Composition and antioxidant activity of essential oils from oregano plants grown in Greece. Z Lebensmitt. Unters. Forsch. 1993; 197(1): 20-23. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0121-4004200800020000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">14. Castillo-Herrera G, Garc&iacute;a-Fajardo J, Estarr&oacute;n-Espinosa M. Extraction method that enriches phenolic content in oregano (Llippia graveolens H.B.K.) Essential oil. Journal of Food Process Engineering. 2007; 30: 661–669. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0121-4004200800020000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">15. Loziene K, Venskutonis PR, Sipailiene A, Labokas J. Radical scavenging and antibacterial properties of the extracts from different Thymus pulegioides L. Food Chem. 2007; 103: 546–559. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0121-4004200800020000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">16. Yanishlieva NV, Marinova EM, Gordon MH, Raneva V. Antioxidant activity and mechanism of action of thymol and carvacrol in two lipid systems. Food Chem. 1999; 64(1): 59-66. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0121-4004200800020000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">17. Rojano, B, S&aacute;ez, J, Schinella G, Tournier H, Gaviria C, Gil AM. Comportamiento antioxidante del isoespintanol en diferentes medios. Vitae. 2008; 15(1): 169-177. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0121-4004200800020000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">18. Rojano B, S&aacute;ez J, Schinella G, Quijano J, V&eacute;lez E, Gil A, et al. Experimental and theoretical determination of the antioxidant properties of isoespintanol (2-Isopropyl-3,6-dimethoxy-5-methylphenol). J. Mol. Struct. 2008; 877 (1/3): 1-6. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0121-4004200800020000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">19. Lopez JB, Rojano B, Lasso C, S&aacute;nchez I. Evaluaci&oacute;n genot&oacute;xica y citot&oacute;xica del isoespintanol en cultivos de linfocitos humanos. Tercer Congreso Colombiano De Biotecnolog&iacute;a - Segundo Seminario Internacional de Bionegocios. 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Spectrophotometric profiles of off-flavor aldehydes by using their reactions with 2-thiobarbituric acid. J. Agric. Food Chem. 1997; 45(7): 2452-2457. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0121-4004200800020000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">22. Gay C, Collins J, Gebicki J. Hydroperoxide assay with the ferric xylenol orange Complex. Anal. Biochem. 1999; 273(2): 149-155. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0121-4004200800020000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">23. Mortensen G, S&oslash;rensen, J, Stapelfeldt H. Comparison of peroxide value methods used for semi hard cheeses. J. Agric. Food Chem. 2002; 50(18): 5007-5011. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0121-4004200800020000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">24. Guill&eacute;n-Sans R, Guzm&aacute;n-Chozas M. The thiobarbituric acid (TBA) reaction in foods: a review. Crit. Rev. Food Sci. 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Measurement of hydroperoxides in edible oils using the ferrous oxidation-xylenol orange assay in conjunction with triphenylphosphine. Anal. Biochem. 1994; 220: 403–409. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0121-4004200800020000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">27. Nourooz-Zadeh J, Tajaddini-Sadani J, Birlouez-Arag&oacute;n I, Wolff SP. Measurement of hydroperoxides in edible oils using the ferrous oxidation-xylenol orange assay. J. Agric. Food Chem. 1995; 43: 17–21. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0121-4004200800020000200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">28. Burat KM, Borzkurt O. Improvement of calibration curve for determining peroxide values in food lipids by the modified ferrous oxidation- xylenol orange method. J. AOAC Int. 1996; 79(4): 995–997. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0121-4004200800020000200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">29. Rosas-Romero AJ, Rojano B, Hern&aacute;ndez CA, Mart&iacute;nez Manchado C, Silva J, Herrera JC. A novel approach to quantitative structure-activity relationships in antioxidants. CIENCIA. 1999; 7(1): 78-87. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0121-4004200800020000200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">30. Wanasundara U, Shahidi F. Stabilization of canola oil with flavonoids. Food Chem. 1994; 50 (4); 393-396. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0121-4004200800020000200030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">31. Wright JS, Johnson ER, di Labio GA. Predicting the activity of phenolic antioxidants: theoretical method, analysis of substituent effects, and application to major families of antioxidants. J. Am. Chem. Soc. 2001; 123(6): 1173-1183. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0121-4004200800020000200031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">32. Pekkarrinen SS, Heinonen M, Hopia AI. Flavonoids quercetin, myricetin, kaemferol and (+) catechin as antioxidants in methyl linoleate. J. Sci. Food Agric. 1999; 79(4): 499-506. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0121-4004200800020000200032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">33. Siriwardhana N, Jeon YJ. Antioxidative effect of cactus pear fruit (Opuntia ficus-indica) extract on lipid peroxidation inhibition in oils and emulsion model systems. Eur. Food Res. Technol. 2004; 219(4): 369–376. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0121-4004200800020000200033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana">Recibido: Junio 3 de 2008; Aceptado: Agosto 19 de 2008 </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana"><a href="#a">*</a><a name="ab"></a> Autor a quien debe dirigir la correspondencia: <a href="mailto:brojano@unal.edu.co">brojano@unal.edu.co</a></font></p>     ]]></body>
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