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<publisher-name><![CDATA[Facultad de Química Farmacéutica, Universidad de Antioquia]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[ACTIVIDAD INHIBITORIA SOBRE LA ENZIMA DIHIDROFOLATO REDUCTASA DE EXTRACTOS DE ESPONJAS MARINAS DEL GOLFO DE URABÁ]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[INHIBITORY ACTIVITY OF SOME MARINE SPONGE EXTRACTS FROM URABÁ GULF ON DIHYDROFOLATE REDUCTASE ENZYME]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad de Antioquia Facultad de Química Farmacéutica Grupo de Investigación sobre Productos Naturales Marinos]]></institution>
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<country>Colombia</country>
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<self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0121-40042008000200012&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0121-40042008000200012&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0121-40042008000200012&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[La enzima dihidrofolato reductasa está implicada en la producción de la base pririmidínica timidina, componente esencial de la estructura del ADN. Por tanto, cualquier sustancia que la inhiba tiene como efecto la inhibición de la síntesis del ADN, y es potencialmente útil para el tratamiento de varios tipos de cáncer como leucemias linfoblásticas. En este trabajo se determina el grado de inhibición que los extractos etanólicos obtenidos de las esponjas marinas colombianas Svenzea zeai, Amphimedon compressa, Ircinia campana, Aplysina archeri, Xestospongia proxima y Xestospongia muta, presentan sobre la enzima purificada de origen humano dihidrofolato reductasa. Los resultados muestran que la mayoría de los extractos de estas esponjas inhiben esta enzima. Estos resultados se comparan con los del medicamento usado contra el cáncer, Metotrexate®, el cual se utiliza como control de inhibición de los ensayos y se observa que algunas de las esponjas tienen mayor inhibición que este medicamento.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Dihydrofolate reductase is an enzyme involved in the production of pyrimidinic base timidin, a structural component of DNA, therefore whatever substance that inhibit this enzyme inhibit the DNA synthesis as a consequence and it can be potentially useful as a treatment of several types of cancer like lymphoblastic leukemias. In this work we determinate the inhibition grade that the ethanol extracts from Colombian marine sponges: Svenzea zeai, Amphimedon compressa, Ircinia campana, Aplysina archeri, Xestospongia proxima y Xestospongia muta, over the human purified enzyme dihydrofolate reductase. The results shown that most of marine sponge extracts inhibite the enzyme. Results are compared with methotrexate® a medicament used against cancer which is used as a control for the bioassays. Results demonstrate that some of the analyzed extracts have more inhibition than the control metotrexate®.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana" size="2">     <p align="right"><strong>PRODUCTOS NATURALES </strong></p>     <p>&nbsp;</p> </font>     <p><font size="4" face="Verdana"><strong>ACTIVIDAD INHIBITORIA SOBRE LA ENZIMA DIHIDROFOLATO   REDUCTASA DE EXTRACTOS  DE ESPONJAS MARINAS DEL GOLFO DE URAB&Aacute;</strong></font></p>     <p>&nbsp;</p> <font face="Verdana" size="2"></font>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>INHIBITORY ACTIVITY OF SOME MARINE SPONGE   EXTRACTS FROM URAB&Aacute; GULF ON DIHYDROFOLATE REDUCTASE ENZYME</strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p>Diego A. ZABALA.<sup>1</sup>; Bibiana ECHAVARR&Iacute;A.<sup>1</sup><a href="#ab">*</a><a name="a" id="a"></a>; Alejandro   MART&Iacute;NEZ.<sup>1</sup>    <br> <sup>1</sup> Grupo de Investigaci&oacute;n sobre Productos Naturales Marinos,   Facultad de Qu&iacute;mica Farmac&eacute;utica, Universidad de Antioquia. A.A. 1226. Medell&iacute;n   - Colombia. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> </font> <hr size="1"> <strong><font size="2" face="verdana">RESUMEN</font></strong><font face="Verdana" size="2">     <p>La enzima <em>dihidrofolato reductasa</em> est&aacute; implicada en la   producci&oacute;n de la base pririmid&iacute;nica timidina, componente esencial de la   estructura del ADN. Por tanto, cualquier sustancia que la inhiba tiene como   efecto la inhibici&oacute;n de la s&iacute;ntesis del ADN, y es potencialmente &uacute;til para el   tratamiento de varios tipos de c&aacute;ncer como leucemias linfobl&aacute;sticas. En este   trabajo se determina el grado de inhibici&oacute;n que los extractos etan&oacute;licos   obtenidos de las esponjas marinas colombianas <em>Svenzea zeai</em>, <em>Amphimedon   compressa</em>, <em>Ircinia campana</em>, <em>Aplysina archeri</em>, <em>Xestospongia proxima </em>y   <em>Xestospongia muta</em>, presentan sobre la enzima purificada de origen humano   <em>dihidrofolato reductasa</em>. Los resultados muestran que la mayor&iacute;a de los extractos   de estas esponjas inhiben esta enzima. Estos resultados se comparan con los del   medicamento usado contra el c&aacute;ncer, Metotrexate<sup>&reg;</sup>, el cual se utiliza como   control de inhibici&oacute;n de los ensayos y se observa que algunas de las esponjas   tienen mayor inhibici&oacute;n que este medicamento. </p>     <p><strong>Palabras clave:</strong> <em>Dihidrofolato reductasa</em>, metotrexate<sup>&reg;</sup>,   esponjas marinas. </p> </font> <hr size="1"> <strong><font size="2" face="verdana">ABSTRACT</font></strong><font face="Verdana" size="2">     <p>Dihydrofolate reductase is an enzyme involved in the   production of pyrimidinic base timidin, a structural component of DNA, therefore   whatever substance that inhibit this enzyme inhibit the DNA synthesis as a   consequence and it can be potentially useful as a treatment of several types of   cancer like lymphoblastic leukemias. In this work we determinate the inhibition   grade that the ethanol extracts from Colombian marine sponges: <em>Svenzea zeai</em>,   <em>Amphimedon compressa</em>, <em>Ircinia campana</em>, <em>Aplysina archeri</em>, <em>Xestospongia proxima</em> y   <em>Xestospongia muta</em>, over the human purified enzyme dihydrofolate reductase. The   results shown that most of marine sponge extracts inhibite the enzyme. Results   are compared with methotrexate<sup>&reg;</sup> a medicament used against cancer which is used   as a control for the bioassays. Results demonstrate that some of the analyzed   extracts have more inhibition than the control metotrexate<sup>&reg;</sup>.</p>     <p><strong>Key words:</strong> Dihydrofolate reductase, metotrexate<sup>&reg;</sup>, marine   sponges.</p> </font> <hr size="1"> <font face="Verdana" size="2">     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N</strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p>El mar es una de las fuentes de recursos naturales m&aacute;s ricas e   inexploradas de la naturaleza. Dentro de tales recursos se incluyen organismos   invertebrados marinos, como las esponjas, que han demostrado contener una amplia   diversidad de sustancias con novedosas estructuras qu&iacute;micas y actividades   biol&oacute;gicas interesantes (1). Esto las ha convertido en objetivo para la b&uacute;squeda   y desarrollo de nuevos compuestos bioactivos capaces de ayudar en el tratamiento   de m&uacute;ltiples enfermedades humanas. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La enzima <em>dihidrofolato reductasa</em> (DHFR) est&aacute; implicada en la   producci&oacute;n de tetrahidrofolato (THF), cofactor esencial para la s&iacute;ntesis de   ciertos metabolitos indispensables para las c&eacute;lulas. La mayor&iacute;a de las bacterias   y plantas producen este cofactor por bios&iacute;ntesis de <em>novo</em> a partir del &aacute;cido   p-aminobenzoico PABA (2); en algunas bacterias y c&eacute;lulas de mam&iacute;feros como el   hombre, la producci&oacute;n de folatos depende de fuentes externas obtenidas de la   dieta y posee v&iacute;as alternas para reducir folatos, purinas y pirimidinas (3).   Desde hace varios a&ntilde;os se ha emprendido una b&uacute;squeda de compuestos llamados   antifolatos, que interfieran con estas v&iacute;as, para poderlos as&iacute; usar cl&iacute;nicamente   como agentes antibacteriales (Trimethoprim<sup>&reg;</sup>), antimal&aacute;ricos (Pyrimethamine<sup>&reg;</sup>) y   antitumorales (Methotrexate<sup>&reg;</sup>) (4). </p>     <p>De las esponjas marinas se han aislado sustancias con actividad   inhibidora de enzimas, y especialmente sobre la fosfolipasa A2 (5), y la   Na/K-ATPasa (6) Mas recientemente se han aislado sustancias inhibidoras de   enzimas como la manzamina-Y inhibidora de la enzima GSK3 implicada en el mal de   Alzheimer (7), las aeruginosinas que inhiben la trombina (8) y el (+)-curcufenol   que inhibe la Tie2-quinasa la cual es esencial para el crecimiento de tumores   (9). Sin embargo, en la revisi&oacute;n hecha para este trabajo no se encontraron   reportes de estudios sobre la <em>dihidrofolato reductasa</em>.</p>     <p>En este estudio se presentan los resultados obtenidos al medir la   actividad inhibitoria sobre la enzima <em>dihidrofolato reductasa</em>, de los extractos   etan&oacute;licos de seis esponjas marinas recolectadas en el Golfo de Urab&aacute;   (Colombia), como una primera aproximaci&oacute;n en la b&uacute;squeda de sustancias   inhibidoras de enzimas en las esponjas marinas colombianas, y como una   contribuci&oacute;n al inventario del potencial biol&oacute;gico y qu&iacute;mico de los recursos   marinos colombianos.</p>     <p>&nbsp;</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p><strong>Recolecci&oacute;n de las muestras</strong></p>     <p>Las muestras se recolectan en el Golfo de Urab&aacute;, a profundidades   entre 9 y 21 metros en diversas localidades de la zona, junto a la frontera con   Panam&aacute;. Los materiales extra&ntilde;os y otros organismos son removidos de las muestras   con un cuchillo. Las muestras son congeladas (-10 &deg;C) y llevadas al laboratorio   donde son cortadas en trozos peque&ntilde;os y secadas (40 &deg;C). La identificaci&oacute;n se   lleva a cabo por el bi&oacute;logo marino D. Valderrama. Las muestras son depositadas   en la colecci&oacute;n Por&iacute;fera del Museo de Historia Natural Marina de Colombia   (MHNMC), en Invemar, Santa Marta (Colombia) (4).</p>     <p><strong>Preparaci&oacute;n de los extractos</strong></p>     <p>Las muestras secas son sometidas a extracci&oacute;n con etanol de la   siguiente manera: la muestra molida y pesada se extrae exhaustivamente con   etanol y se filtra; el filtrado se concentra a sequedad bajo presi&oacute;n reducida y   a 40 &deg;C de temperatura. El residuo que se obtiene constituye el extracto   etan&oacute;lico crudo. Los extractos se conservan bajo refrigeraci&oacute;n, protegidos de la   luz, el aire, el calor y la humedad, hasta la preparaci&oacute;n de las concentraciones   de extracto (inhibidor) requeridas para el ensayo con la enzima.</p>     <p><strong>Procedimiento del ensayo de inhibici&oacute;n</strong></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se utiliza un espectrofot&oacute;metro ultravioleta con termostato Cary   50 (VARIAN<sup>&reg;</sup>). La longitud de onda se fija en 340 nm y a una temperatura de 22   &deg;C, (programa cin&eacute;tico de lectura cada 15 segundos en un tiempo total de 2.5   minutos). Se adiciona la cantidad de <em>buffer</em> de ensayo para dihidrofolato   reductasa (diluido 1X) requerida en cada uno de los tubos. Se adiciona luego la   enzima <em>dihidrofolato reductasa</em> (1.5x10-3 unidades) a cada tubo y se homogeniza.   Se adiciona la cantidad requerida de inhibidor &oacute; extracto (1 &micro;M para el   Metotrexate<sup>&reg;</sup> y 1 ppm para los extractos) y se homogeniza (en la determinaci&oacute;n de   la actividad de la enzima, este paso se omite). Se transfiere el contenido del   tubo que va a ser probado a una cubeta de cuarzo de 1 mL. Se agregan 6 &mu;L de la   soluci&oacute;n de NADPH 10 mM (cofactor de la reacci&oacute;n), se cubre la cubeta con papel   parafinado y se homogeniza. Se agregan 5 &mu;L de &aacute;cido dihidrof&oacute;lico   (concentraciones de 1, 2, 4, 6, 8 y 10 mM) justo antes de empezar la reacci&oacute;n   (sustrato de la reacci&oacute;n). Se cubre la cubeta con papel parafinado, se mezcla   por inversi&oacute;n y se introduce de inmediato al espectrofot&oacute;metro. Se leen las   absorbancias a 340 nm cada 15 segundos en un tiempo total de 2.5 minutos.   (10,11)</p>     <p><strong>C&aacute;lculo de la constante de inhibici&oacute;n</strong></p>     <p>La cin&eacute;tica de actividad de la DHFR se calcula usando la ecuaci&oacute;n   de Michaelis-Menten, y la cin&eacute;tica de inhibici&oacute;n se determina mediante la   ecuaci&oacute;n de Lineweaver-Burk. (12)</p>     <p>&nbsp;</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p>A partir de los ensayos de inhibici&oacute;n enzim&aacute;tica que se realizan   a los seis extractos etan&oacute;licos de las esponjas marinas obtenidas en el Golfo de   Urab&aacute; y al inhibidor patr&oacute;n Metotrexate se elaboran las gr&aacute;ficas de inhibici&oacute;n   enzim&aacute;tica. </p>     <p>En el gr&aacute;fico de actividad enzim&aacute;tica (<a href="#fig01">figura 1</a>) se puede   observar que hay inhibici&oacute;n por el Metotrexate<sup>&reg;</sup> y que &eacute;sta es de tipo   competitivo. A su vez, los extractos que presentan el mismo tipo de inhibici&oacute;n   son los de las esponjas, <em>Ircinia campana</em> (<a href="#fig02">figura 2</a>), <em>Svenzea zeai</em> (<a href="#fig03">figura 3</a>) y   <em>Xestospongia proxima</em> (<a href="#fig04">figura 4</a>). La gr&aacute;fica de la cin&eacute;tica de inhibici&oacute;n para   los extractos de <em>Amphimedon compressa</em> y <em>Aplysina archeri</em> (<a href="#fig05">figura 5</a>) muestra   inhibici&oacute;n no competitiva. Para el caso del extracto de <em>Xestospongia muta</em>   (<a href="#fig06">figura 6</a>) se observa que el tipo de gr&aacute;fica no corresponde a lo esperado para   una cin&eacute;tica de inhibici&oacute;n enzim&aacute;tica normal.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center">Figura 1: Comparaci&oacute;n de la cin&eacute;tica de   actividad enzim&aacute;tica de la <em>dihidrofolato reductasa</em> con la cin&eacute;tica de inhibici&oacute;n   del Metotrexate<sup>&reg;</sup></p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a12fig01.gif"><a name="fig01" id="fig01"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p align="center">Figura 2: Comparaci&oacute;n de la inhibici&oacute;n del   Metotrexate<sup>&reg;</sup> contra la inhibici&oacute;n del extracto etan&oacute;lico la esponja Ircinia   campana, sobre la actividad enzim&aacute;tica de la <em>dihidrofolato reductasa</em></p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a12fig02.gif"><a name="fig02" id="fig02"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center">Figura 3: Comparaci&oacute;n de la inhibici&oacute;n del   Metotrexate<sup>&reg;</sup> contra la inhibici&oacute;n del extracto etan&oacute;lico de la esponja Svenzea   zeai, sobre la actividad enzim&aacute;tica de la <em>dihidrofolato reductasa</em></p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a12fig03.gif"><a name="fig03" id="fig03"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center">Figura 4: Comparaci&oacute;n de la inhibici&oacute;n del   Metotrexate<sup>&reg;</sup> contra la inhibici&oacute;n del extracto etan&oacute;lico de la esponja   <em>Xestospongia proxima</em>, sobre la actividad enzim&aacute;tica de la dihidrofolato   reductasa</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a12fig04.gif"><a name="fig04" id="fig04"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">Figura 5: Comparaci&oacute;n de la inhibici&oacute;n de los   extractos etan&oacute;licos de las esponjas <em>Amphimedon compressa</em> y <em>Aplysina archeri</em></p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a12fig05.gif"><a name="fig05" id="fig05"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center">Figura 6: Comparaci&oacute;n de la inhibici&oacute;n del   Metotrexate<sup>&reg;</sup> contra la inhibici&oacute;n del extracto etan&oacute;lico de la esponja   <em>Xestospongia muta</em>, sobre la actividad enzim&aacute;tica de la dihidrofolato   reductasa</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a12fig06.gif"><a name="fig06" id="fig06"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>De acuerdo con la ecuaci&oacute;n de Lineweaver-Burk, se obtienen los   valores de K<sub>m</sub> y de velocidad m&aacute;xima de reacci&oacute;n (V<sub>m&aacute;x</sub>) de los extractos de las   esponjas (<a href="#tb01">tabla 1</a>). La actividad enzim&aacute;tica de la <em>dihidrofolato reductasa</em>   presenta una K<sub>m</sub>= 1.001 mM y una V<sub>m&aacute;x</sub>: 0.002 UA/min (<a href="#tb02">tabla 2</a>).</p>     <p>A un valor mayor de K<sub>m</sub> aparente se tiene un mayor grado de   inhibici&oacute;n (12). Los resultados muestran que el Metotrexate<sup>&reg;</sup> presenta una menor   inhibici&oacute;n en comparaci&oacute;n con los extractos de <em>Ircinia campana</em>, <em>Svenzea zeai</em> y   <em>Xestospongia proxima</em>, respectivamente. </p>     <p>Para el caso de la inhibici&oacute;n no competitiva, el an&aacute;lisis se basa   en el valor de la velocidad m&aacute;xima de reacci&oacute;n (a menor V<sub>m&aacute;x</sub>, mayor inhibici&oacute;n)   (12), con lo cual se observa que el extracto de <em>Amphimedon compressa</em> presenta   mayor inhibici&oacute;n que el de <em>Aplysina archeri</em>.</p>     <p>La relaci&oacute;n entre los datos obtenidos de velocidad de reacci&oacute;n y   K<sub>m</sub> aparente, se confirman con los coeficientes de correlaci&oacute;n dados por las   gr&aacute;ficas; sin embargo, el extracto de <em>Xestospongia muta</em> no presenta una buena   concordancia entre sus datos y no se puede determinar ni el tipo ni el grado de   inhibici&oacute;n.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p align="center">Tabla 1. Resultados de los ensayos de   inhibici&oacute;n de los extractos y el Metotrexate<sup>&reg;</sup>    sobre la enzima dihidrofolato   reductasa.</p>     <p align="center"><a href="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a12tb01.gif"><img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a12tb01th.gif" border="2"></a><a name="tb01" id="tb01"></a></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center">Tabla 2. Par&aacute;metros cin&eacute;ticos de la actividad   enzim&aacute;tica para la <em>dihidrofolato reductasa</em></p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v15n2/v15n2a12tb02.gif"><a name="tb02" id="tb02"></a></p>     <p align="center">&nbsp;</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>CONCLUSIONES</strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p>De las seis especies de esponjas analizadas, tres presentan   inhibici&oacute;n mayor que el control Metotrexate<sup>&reg;</sup> sobre la enzima dihidrofolato   reductasa: <em>Ircinia campana</em>, <em>Svenzea zeai</em> y <em>Xestospongia proxima</em>. Lo anterior   indica que estas esponjas son promisorias para investigarlas m&aacute;s a fondo, con el   fin de aislar y caracterizar las mol&eacute;culas activas capaces de inhibir la enzima,   pues pueden servir para el desarrollo de nuevos medicamentos antitumorales. </p>     <p>La inhibici&oacute;n de los extractos sobre la enzima se debe   posiblemente a la ocupaci&oacute;n de todos los sitios activos de la enzima por el   complejo grupo de compuestos moleculares presentes en las esponjas marinas,   present&aacute;ndose as&iacute; un bloqueo de la actividad enzim&aacute;tica. Por esto, es necesario,   en el futuro, realizar aislamientos de las mol&eacute;culas responsables de esta   inhibici&oacute;n para evaluar su actividad frente a la enzima.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Para realizar la comparaci&oacute;n de una serie de compuestos   inhibidores, es necesario tener en cuenta si se habla de inhibici&oacute;n competitiva   o no competitiva. Tanto en las gr&aacute;ficas como en los datos de velocidad, se ve   claramente que con los extractos de las esponjas <em>Aplysina archeri</em> y Amphimedon   compressa, no se da una inhibici&oacute;n competitiva, debido a que hay variaci&oacute;n en la   velocidad, m&aacute;s no en el valor de K<sub>m</sub>. Debido a esto, no pueden ser comparadas   contra el Metotrexate<sup>&reg;</sup>, que es un inhibidor competitivo. Los extractos de   <em>Xestospongia proxima</em>, <em>Svenzea zeai</em> e <em>Ircinia campana</em> muestran a su vez, al no   presentar cambios significativos en la velocidad de reacci&oacute;n, que el tipo de   inhibici&oacute;n es competitiva. </p>     <p>Se recomienda evaluar otras especies de esponjas del Golfo de   Urab&aacute;, ya que en este estudio s&oacute;lo se analizaron seis de las muchas existentes   en esta inexplorada regi&oacute;n del Caribe Colombiano. </p>     <p>&nbsp;</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</strong></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <!-- ref --><p>1. Blunt JW, Copp BR, Hu WP, Munro MHG, Northcote PT,   Prinsep MR. Marine natural products. Cheminform 2004; 35 (20): 1 - 49.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0121-4004200800020001200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Kompis IM, Islam K, Then RL. DNA and RNA synthesis:   antifolates. Chem Rev. 2005; 105(2): 593-620.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0121-4004200800020001200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Gilbert IH. Inhibitors of dihydrofolate reductase in   Leishmania and Trypanosomes. BBA Molecular Basis of Disease 2002; 1587: 249-   257.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0121-4004200800020001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Galeano E, Mart&iacute;nez A. Antimicrobial activity of marine   sponges from Urab&aacute; Gulf, Colombian Caribbean region. Journal de Mycologie   M&eacute;dicale 007; 17: 21-24.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0121-4004200800020001200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Cheung AK, Murelli R, Snapper ML. Total Syntheses of   (+)- and (-)-Cacospongionolide-B, Cacospongionolide- E, and related analogues.   Preliminary study of structural features required for phospholipase A2   inhibition. J. Org. Chem. 2004; 69: 5712-5719.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0121-4004200800020001200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Gorshkova IA, Gorshkov BA, Fedoreev SA, Stonik V.   Halenaquinol, a natural cardioactive pentacyclic hydroquinone, interacts with   sulfhydryls on rat brain Na+,K+-ATPase. Comparative Biochemistry and Physiology   Part C. Toxicology &amp; Pharmacology 2001; 128 (4): 531-540.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0121-4004200800020001200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Rao KV, Donia MS, Peng J, Garc&iacute;a-Palomero E, Alonso D,   Mart&iacute;nez A, et al. Manzamine B and E and Ircinal a related alkaloids from an   Indonesian Acanthostrongylophora sponge and their activity against Infectious,   tropical parasitic, and Alzheimer's diseases. J. Nat. Prod. 2006; 69   (7): 1034-1040.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0121-4004200800020001200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Hanessian S, Del Valle J. Total synthesis and   structural confirmation of Chlorodysinosin-A. J. Am. Chem. Soc. 2007; 8:   2733-2738.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0121-4004200800020001200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Cichewicz RH, Clifford LJ, Lassen PR, Xiaolin C,   Freedman TB, Nafie LA, et al. Stereochemical determination and bioactivity   assessment of (S)-(+)-curcuphenol dimers isolated from the marine sponge   Didiscus aceratus and synthesized through laccase biocatalysis. Bioorganic &amp;   Medicinal Chemistry 2005; 13 (19): 5600-5612.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0121-4004200800020001200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Pez D, Leal I. 2,4-Diaminopyrimidines as inhibitors of   leishmanial and trypanosomal dihydrofolate reductase. Bioorganic &amp; Medicinal   Chemistry 2003; 11: 4693 -4711.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0121-4004200800020001200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. SIGMA-ALDRICH. Dihydrofolate Reductase Assay Kit.   TECHNICAL BULLETIN. p 1-4.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0121-4004200800020001200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Murray R. et al. (1994) Bioqu&iacute;mica de Harper. En:   Rodwell W. Cap&iacute;tulo 9. Enzimas: Cin&eacute;tica. 13 ed. M&eacute;xico: El Manual Moderno. p   98-99.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0121-4004200800020001200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p>Recibido: Noviembre 11 de 2007; Aceptado: Julio 8 de 2008</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
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