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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación de la fitotoxicidad y la actividad antifúngica contra Colletotrichum acutatum de los aceites esenciales de tomillo (Thymus vulgaris), limoncillo (Cymbopogon citratus), y sus componentes mayoritarios]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Evaluation of phytotoxicity and antifungal activity against Colletotrichum acutatum of essential oils of thyme (Thymus vulgaris), lemongrass (Cymbopogon citratus), and its main constituents]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Anthracnose of tree tomato, caused by the fungus Colletotrichum acutatum, is the major postharvest disease of this crop in Colombia due to its widespread distribution and economic loss. In the present work, antifungal activity against C. acutatum specie with the essential oils (EO) of thyme (Thymus vulgaris), lemon grass (Cymbopogon citratus), and the main components of the EO, thymol and citral, is evaluated. Experimental result indicates that thymol at a concentration of 125 mg/L and citral at 300 mg/L, inhibits completely the mycelial growth during eleven days. Spore germination is affected 100% with lemon grass oil at 350 and 400 mg/L, thymol at 100 and 125 mg/L, and citral at 250 and 300 mg/L, during the period of evaluation of twelve hours. In addition, thymol at 125 mg/L and citral at 300 mg/L, inhibits completely the sporulation of the fungus whereas thyme oil at 350 mg/L shows a lower degree of affectation. Phytotoxicity evaluations of all materials by applying drops located at the leaf surface of Solanum betacea to concentrations between 150 and 5000 mg/L, demonstrate that treatments do not induce any apparent damage. Also, foliar spraying complete and systematically every 2 days, for the period of 2 months with constant concentration of 1500 mg/L for each evaluated materials, produces no sign of wilting, deteriorating growth or alteration of the overall development of the plants.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>PRODUCTOS NATURALES</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Evaluaci&oacute;n de la  fitotoxicidad y la actividad antif&uacute;ngica contra C<i>olletotrichum  acutatum </i>de los aceites esenciales de tomillo (T<i>hymus  vulgaris</i>), limoncillo (C<i>ymbopogon citratus</i>), y sus  componentes mayoritarios </b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><font size="3">Evaluation of phytotoxicity and  antifungal activity against C<i>olletotrichum acutatum</i> of  essential oils of thyme (T<i>hymus vulgaris</i>), lemongrass  (C<i>ymbopogon citratus</i>), and its main constituents</font></b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Diego A. ALZATE O.<sup>1</sup>; Gonzalo I. MIER M.<sup>1</sup>; Luc&iacute;a AFANADOR K.<sup>1</sup>; Diego L. DURANGO R.<sup>2</sup>; Carlos M. GARC&Iacute;A P. <sup>2<a name="ast02" id="ast02"></a><a href="#ast01">*</a></sup> </b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>1</sup>Facultad  de Ciencias Agropecuarias, Universidad Nacional de Colombia. Calle 64 x  Cra. 65 Autopista Norte. A.A. 1779. Medell&iacute;n, Colombia</font><br />   <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>2</sup>Grupo de Qu&iacute;mica de los Productos Naturales y los Alimentos, Escuela de  Qu&iacute;mica, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia. Calle  59 A n&ordm; 63-020 Autopista Norte. A.A. 3840. Medell&iacute;n, Colombia</font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p> <hr size="1" noshade="noshade"/>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>RESUMEN </b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La antracnosis del tomate de &aacute;rbol, ocasionada por el hongo <i>Colletotrichum acutatum</i>,  es la enfermedad m&aacute;s importante de este cultivo en Colombia por su  amplia distribuci&oacute;n y las p&eacute;rdidas que ocasiona. En el presente trabajo  se eval&uacute;a la actividad antif&uacute;ngica contra la especie <i>C. acutatum </i>de los aceites esenciales (AE) de tomillo (<i>Thymus vulgaris</i>), limoncillo (<i>Cymbopogon citratus</i>),  y sus componentes mayoritarios, timol y citral. Los resultados  demuestran que el timol a 125 mg/L y el citral a 300 mg/L inhiben el  crecimiento micelial completamente durante once d&iacute;as de incubaci&oacute;n. La  germinaci&oacute;n de las esporas se evita en un 100% con el AE de limoncillo  a 350 y 400 mg/L, timol a 100 y 125 mg/L, y citral a 250 y 300 mg/L,  despu&eacute;s de un per&iacute;odo de doce horas. Adicionalmente, el timol a 125  mg/L y el citral a 300 mg/L inhiben completamente la esporulaci&oacute;n y el  AE de tomillo a 350 mg/L la permite en baja extensi&oacute;n. Las evaluaciones  de fitotoxicidad revelan que la aplicaci&oacute;n de gotas localizadas sobre  la superficie foliar de <i>Solanum betacea</i>, a concentraciones  entre 150 y 5000 mg/L, no ocasionan ning&uacute;n da&ntilde;o aparente. Asimismo, la  aspersi&oacute;n foliar completa y sistem&aacute;tica cada 2 d&iacute;as, durante 2 meses  continuos con concentraciones de 1500 mg/L de los materiales, no  produce ning&uacute;n s&iacute;ntoma de marchitamiento, deterioro del crecimiento o  alteraci&oacute;n del desarrollo general de las plantas. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Palabras Clave: </b><i>Cymbopogon citratus</i>, <i>Thymus vulgaris, Cyphomandra betacea</i>, citral, timol, antracnosis, tomate de &aacute;rbol. </font></p> <hr size="1" noshade="noshade"/>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>ABSTRACT </b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Anthracnose of tree tomato, caused by the fungus <i>Colletotrichum acutatum</i>,  is the major postharvest disease of this crop in Colombia due to its  widespread distribution and economic loss. In the present work,  antifungal activity against <i>C. acutatum </i>specie with the essential oils (EO) of thyme (<i>Thymus vulgaris</i>), lemon grass (<i>Cymbopogon citratus</i>),  and the main components of the EO, thymol and citral, is evaluated.  Experimental result indicates that thymol at a concentration of 125  mg/L and citral at 300 mg/L, inhibits completely the mycelial growth  during eleven days. Spore germination is affected 100% with lemon grass  oil at 350 and 400 mg/L, thymol at 100 and 125 mg/L, and citral at 250  and 300 mg/L, during the period of evaluation of twelve hours. In  addition, thymol at 125 mg/L and citral at 300 mg/L, inhibits  completely the sporulation of the fungus whereas thyme oil at 350 mg/L  shows a lower degree of affectation. Phytotoxicity evaluations of all  materials by applying drops located at the leaf surface of <i>Solanum betacea </i>to  concentrations between 150 and 5000 mg/L, demonstrate that treatments  do not induce any apparent damage. Also, foliar spraying complete and  systematically every 2 days, for the period of 2 months with constant  concentration of 1500 mg/L for each evaluated materials, produces no  sign of wilting, deteriorating growth or alteration of the overall  development of the plants. </font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Key Words</b>: <i>Cymbopogon citratus</i>, <i>Thymus vulgaris</i>, <i>Cyphomandra betacea</i>, citral, timol, anthracnose, tree tomato. </font></p> <hr size="1" noshade="noshade"/>       <p>&nbsp;</p>       <p>&nbsp;</p>       <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>INTRODUCCI&Oacute;N </b></font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La antracnosis del fruto, ocasionada por el hongo filamentoso fitopat&oacute;geno <i>Colletotrichum acutatum</i>, es la enfermedad m&aacute;s importante del cultivo de tomate de &aacute;rbol &oacute; tamarillo (<i>Solanunm betacea, </i>syn: <i>Cyphomandra betacea</i>),  por su amplia distribuci&oacute;n y por las p&eacute;rdidas econ&oacute;micas que ocasiona  (1,2). El departamento de Antioquia es actualmente uno los mayores  productores de tomate de &aacute;rbol en Colombia y la antracnosis es la mayor  limitante que se presenta en los cultivos comerciales y en las peque&ntilde;as  explotaciones dom&eacute;sticas (3). La incidencia de la enfermedad ha llevado  a que se utilicen cada vez mayores cantidades de pesticidas. </font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los  productos qu&iacute;micos sint&eacute;ticos destinados a controlar esta enfermedad  han tenido un papel muy marcado en el incremento de la producci&oacute;n  agr&iacute;cola. Sin embargo, el uso continuo e indiscriminado de agroqu&iacute;micos  con baja especificidad ha generado diversos inconvenientes, tales como  el incremento en los costos de producci&oacute;n, el desarrollo de resistencia  por parte de algunos microorganismos, la presencia de residuos de  pesticidas en los alimentos y, en consecuencia, los riesgos que  acarrean para la salud humana y el medio ambiente (4,5). Por estos  motivos, desde las &uacute;ltimas d&eacute;cadas del siglo XX se ha incrementado el  inter&eacute;s en la b&uacute;squeda de alternativas m&aacute;s seguras que permitan mitigar  el impacto negativo de este tipo de productos. Una estrategia que ha  resultado satisfactoria para reducir la utilizaci&oacute;n de agroqu&iacute;micos  costosos y potencialmente da&ntilde;inos y peligrosos, ha sido el manejo  integrado de plagas &ndash;mejor conocido como MIP- y dentro de esta opci&oacute;n,  la utilizaci&oacute;n de sustancias de origen natural, consideradas m&aacute;s  seguras para la salud humana y el medio ambiente, y m&aacute;s aceptadas por  los consumidores (6,7). </font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La  aplicaci&oacute;n de aceites esenciales (AE) es un m&eacute;todo muy atractivo para  controlar enfermedades tanto en cosecha como en post-cosecha. Estos  materiales son una mezcla compleja de compuestos vol&aacute;tiles producidos  en diferentes partes de las plantas, y han sido reconocidos por poseer  diversas funciones, incluyendo conferir la resistencia a plagas y  enfermedades (8); algunos AE, as&iacute; como sus constituyentes, han  demostrado poseer propiedades antibacterianas y antif&uacute;ngicas (9,10). </font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El AE de tomillo, <i>Thymus vulgaris</i>,  presenta como componente mayoritario el timol y en algunas variedades  su composici&oacute;n puede alcanzar valores hasta del 80% (11). Tanto los AE  obtenidos de las especies de <i>Thymus, </i>como el timol, han sido  reconocidos por su actividad antibacteriana y antif&uacute;ngica, raz&oacute;n por la  cual se emplean industrialmente en la preparaci&oacute;n de desinfectantes de  uso humano, enjuagues bucales y otros agentes antimicrobianos  utilizados a nivel dom&eacute;stico (12,13). De otro lado, el AE de  limoncillo, <i>Cymbopogon citratus</i>, presenta como componente  mayoritario el citral, alcanzando valores entre el 65 y el 85% (14).  Por su aroma a lim&oacute;n, la planta ha sido muy apreciada para la  elaboraci&oacute;n de saborizantes y aromas alimenticios (15); las propiedades  antif&uacute;ngicas y antibacterianas del AE de esta planta se han asociado  con la presencia de citral y sus is&oacute;meros, geranial (<i>trans</i>-citral, llamado citral A) y neral (<i>cis</i>-citral, llamado citral B) (16,17). Tanto el AE de <i>C. citratus</i>,  como el citral y sus derivados, tienen una alta demanda industrial y  son utilizados en la preparaci&oacute;n de desinfectantes de uso dom&eacute;stico. </font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En el presente trabajo se evalu&oacute; la actividad antif&uacute;ngica tanto de los AE provenientes de las especies <i>Thymus vulgaris </i>y <i>Cymbopogon citratus</i>,  obtenidos mediante destilaci&oacute;n por arrastre con vapor, como de sus  componentes mayoritarios adquiridos de casas comerciales, contra la  especie <i>Colletotrichum acutatum. </i>Adicionalmente, debido a que la fitotoxicidad puede ser un problema para la aplicaci&oacute;n en campo de los AE de tomillo (<i>Thymus vulgaris</i>), limoncillo (<i>Cymbopogon citratus</i>), o sus constituyentes principales en el control de <i>C. acutatum</i>, se llev&oacute; a cabo la evaluaci&oacute;n de su efecto sobre plantas de tomate de &aacute;rbol, <i>Solanum betacea. </i></font></p>       <p>&nbsp;</p>       <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Materiales y m&eacute;todos generales </b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los  medios de cultivo y los nutrientes utilizados en el mantenimiento de  los hongos fueron de calidad microbiol&oacute;gica. El timol, y la mezcla de  is&oacute;meros <i>cis </i>y <i>trans </i>del citral de calidad grado  anal&iacute;tico se obtuvieron de las casas comerciales Aldrich y Merck. Los  solventes de calidad grado t&eacute;cnico se bidestilaron antes de su  utilizaci&oacute;n. Los tensoactivos empleados para posibilitar la dispersi&oacute;n  en agua de los AE y compuestos puros fueron igualmente de calidad  t&eacute;cnica. Las plantas de tomate de &aacute;rbol (<i>S. betacea</i>) se  obtuvieron de semillas certificadas de la variedad com&uacute;n y se  cultivaron en un sistema hidrop&oacute;nico; el medio nutritivo utilizado fue  la soluci&oacute;n est&aacute;ndar Hoagland, preparada con sales inorg&aacute;nicas de  calidad grado t&eacute;cnico; el pH de la mezcla final se ajust&oacute; a 6.5  mediante la adici&oacute;n de NaOH al 5%; se utiliz&oacute; como sustrato de soporte  cuarzo triturado comercial de tama&ntilde;o de part&iacute;cula peque&ntilde;o y grande,  mezclado en proporci&oacute;n 1/1, y esterilizado en autoclave. </font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las  cepas del pat&oacute;geno fueron obtenidas de aislamientos monosp&oacute;ricos,  procedentes del Laboratorio de Fitopatolog&iacute;a de la Universidad Nacional  de Colombia, Sede Medell&iacute;n, caracterizados morfol&oacute;gica y  molecularmente. La cepa se aisl&oacute; de frutos maduros de tomate de &aacute;rbol  afectados con antracnosis, obtenidos en los centros de mercadeo de la  ciudad de Medell&iacute;n-Antioquia. El mantenimiento de las colonias y las  evaluaciones de actividad antif&uacute;ngica se realizaron en el medio de  cultivo PDA, bajo condiciones controladas de temperatura, a 22 y 23 &deg;C,  y humedad relativa de 70 a 75%. Los conteos de esporas se realizaron en  una c&aacute;mara de Neubauer. </font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los  aceites esenciales se obtuvieron a partir de material fresco  proveniente de la ciudad de Guarne-Antioquia. El transporte se hizo en  sacos de malla de polipropileno muy amplia para facilitar la aireaci&oacute;n.  El proceso de arrastre con vapor de agua se realiz&oacute; a 94 oC  en un equipo artesanal, en los laboratorios de la Escuela de Qu&iacute;mica de  la Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. Se procesaron 10 kg  de cada una de las plantas completas, con un m&aacute;ximo de cosechadas de 4  horas. Los AE se analizaron mediante Cromatograf&iacute;a de  Gases-Espectrometr&iacute;a de Masas (CG-EM), obteni&eacute;ndose un contenido de  citral del 65% en <i>C. citratus </i>y de timol del 84.5% en el AE de <i>T. vulgaris</i>. Las cantidades obtenidas de la extracci&oacute;n de los AE fueron respectivamente, para <i>C. citratus</i> de 35.0 mL y para <i>T. vulgaris </i>de 8.5 mL. </font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Fitotoxicidad de los AE y sus componentes mayoritarios mediante gotas localizadas </b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Para  esta evaluaci&oacute;n se desarroll&oacute; un m&eacute;todo en el cual se determin&oacute; el  posible efecto delet&eacute;reo causado por las gotas localizadas de una  dispersi&oacute;n acuosa de los AE y los compuestos timol y citral, aplicadas  sobre una &aacute;rea foliar peque&ntilde;a; el estudio se realiz&oacute; sobre plantas de <i>S. betacea </i>de  cuatro a cinco meses de edad sembradas en macetas de pl&aacute;stico de color  negro. Las plantas se ubicaron en un mes&oacute;n con fotoper&iacute;odo de doce  horas, regulado con un temporizador PET-007. La luminosidad se  suministr&oacute; mediante l&aacute;mparas fluorescentes de 75 Watt dispuestas a 40  cm de altura de las plantas. Se evaluaron 24 dispersiones fungicidas  preparadas con los AE de limoncillo, tomillo, y los compuestos timol y  citral a 150, 750, 1500, 2000, 3000, 5000 mg/L. Se adicionaron algunas  gotas de tensoactivo y solvente para mejorar la solubilidad de los AE y  los compuestos puros. La aplicaci&oacute;n de las mezclas se realiz&oacute; por  triplicado sobre las hojas n&uacute;mero cinco y seis contadas a partir del  meristemo apical; cada hoja se parcel&oacute; en seis cuadrantes hipot&eacute;ticos,  de tal manera que la nervadura central dividiera tres a lado y lado. En  cada cuadrante se aplic&oacute; un total de 10 gotas de 10.0 &mu;L de mezcla  distribuidas al azar. Los tratamientos se aplicaron aleatoriamente en  los cuadrantes de hojas diferentes, empleando cinco r&eacute;plicas por  planta, junto con un testigo negativo (agua) y un testigo de referencia  que inclu&iacute;a los solventes y tensoactivos utilizados en la preparaci&oacute;n  de las dispersiones. Las mezclas se aplicaron semanalmente durante un  mes y se examin&oacute; la aparici&oacute;n de posibles lesiones en el tejido  expuesto a las al&iacute;cuotas de la emulsi&oacute;n. La escala de da&ntilde;o utilizada  fue la siguiente: <u>0</u>: Ning&uacute;n da&ntilde;o aparente-igual al testigo absoluto; <u>1</u>: Da&ntilde;o apenas perceptible (amarillamiento zonal); <u>2</u>: Necrosamiento leve, y <u>3</u>: Necrosamiento acentuado y/o perdigoneo. </font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Fitotoxicidad de los AE y sus componentes mayoritarios mediante aspersi&oacute;n foliar </b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se  determin&oacute; el posible efecto delet&eacute;reo causado por la aplicaci&oacute;n de las  mezclas acuosas de los AE y sus componentes mayoritarios mediante  aspersi&oacute;n foliar. Las evaluaciones se realizaron sobre plantas de tres  y cuatro meses de edad, cultivadas individualmente en vasos pl&aacute;sticos  desechables de 12 onzas y color azul oscuro para limitar el desarrollo  de algas; todas fueron expuestas a condiciones ambientales id&eacute;nticas a  las empleadas en el m&eacute;todo de gota localizada. A cada vaso se le  hicieron cuatro perforaciones de un di&aacute;metro de cinco mm, a una altura  de 1.0 cm, medido desde la base y fueron colocados en cubetas de  germinaci&oacute;n pl&aacute;sticas de 5.0  cm de profundidad, con una l&aacute;mina de soluci&oacute;n nutritiva de 1.5 cm de  altura; el nivel de los nutrientes se mantuvo regulado reponiendo las  p&eacute;rdidas causadas por evaporaci&oacute;n y consumo. Las mezclas se asperjaron  con un atomizador pl&aacute;stico hasta lograr un cubrimiento total del &aacute;rea  foliar de las plantas. La concentraci&oacute;n de los AE, timol y citral  aplicada fue de 1500 mg/L. Para evitar la contaminaci&oacute;n del sustrato de  soporte durante la aplicaci&oacute;n, se cubri&oacute; toda la base del tallo con una  tela pl&aacute;stica de polietileno colocada en forma de ruana. </font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Todas  las aplicaciones se llevaron a cabo en las horas de la ma&ntilde;ana,  inicialmente durante intervalos de siete d&iacute;as durante un mes y  posteriormente cada 3 d&iacute;as durante un per&iacute;odo de 60 d&iacute;as. La  calificaci&oacute;n de los da&ntilde;os ocasionados se realiz&oacute; de acuerdo a las  normas ICONTEC-1976 (18), con una escala entre 0 y 5, as&iacute;: <u>0</u>: Plantas iguales al testigo absoluto; <u>1</u>: Leve clorosis y presencia de pecas; <u>2</u>: Clorosis acentuada y ligera reducci&oacute;n distinguible en el crecimiento o presencia de pocas manchas; <u>3</u>: Inhibici&oacute;n del crecimiento, clorosis marcada y anormalidades morfol&oacute;gicas; <u>4</u>: Planta muy afectada, sin posibilidad de recuperaci&oacute;n, hay presencia de algunas partes de tejido aun verde, y <u>5</u>:  Necrosis y muerte de la planta. A cada una de las plantas se le  determin&oacute; la altura al inicio y al final de los ensayos. Igualmente, se  determin&oacute; la biomasa obtenida mediante la estimaci&oacute;n del peso seco &plusmn;  0.1 mg al finalizar la evaluaci&oacute;n y se realiz&oacute; la comparaci&oacute;n con los  testigos absolutos; el secado se llev&oacute; a cabo en una estufa con flujo  de aire forzado durante 72 horas a 60oC.  Las evaluaciones se efectuaron con cinco repeticiones por tratamiento  (cinco plantas por tratamiento), los correspondientes testigos  absolutos (aplicaci&oacute;n de agua solamente) y los testigos de referencia  conteniendo &uacute;nicamente los solventes y tensoactivos utilizados en la  preparaci&oacute;n de las dispersiones acuosas. </font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Inhibici&oacute;n del crecimiento micelial de <i>C. acutatum </i>con los AE y sus componentes mayoritarios </b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se  evaluaron ocho mezclas, correspondientes a dos concentraciones de cada  uno de los materiales (AE y componentes mayoritarios): los AE de <i>T. vulgaris </i>y <i>C. citratus </i>a  350 y 400 mg/L, citral a 250 y 300 mg/L, y timol a 100 y 125 mg/L; como  sistema de referencia se compar&oacute; su actividad con la de los fungicidas  comerciales Chlorotalonil<sup>&reg;</sup>, a 200 y 250 mg/L, y Manzate<sup>&reg;</sup> (Mancozeb<sup>&reg;</sup>), a 150 y 200 mg/L. Las evaluaciones se realizaron en cajas <i>petri </i>de  nueve cent&iacute;metros de di&aacute;metro. Las dispersiones de las mezclas  fungicidas en el medio de cultivo PDA se efectuaron en una c&aacute;mara de  flujo laminar vertical utilizando cristaler&iacute;a esterilizada en  autoclave. </font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La  inoculaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo colocando en el centro de la caja un disco  de PDA de seis mil&iacute;metros de di&aacute;metro colonizado por el hongo durante  dos d&iacute;as de incubaci&oacute;n. El crecimiento micelial se midi&oacute; con una regla  milimetrada cada 24 horas por un per&iacute;odo de tiempo m&aacute;ximo de 11 d&iacute;as.  El crecimiento del micelio se expres&oacute; en t&eacute;rminos de porcentaje de  inhibici&oacute;n mediante la siguiente ecuaci&oacute;n: I = (T- t) / T x 100; I = %  inhibici&oacute;n; T = crecimiento en mm de los testigos de referencia cada 24  horas; t = crecimiento en mm de los tratamientos cada 24 horas. En las  evaluaciones se emple&oacute; un dise&ntilde;o completamente al azar con an&aacute;lisis de  medidas repetidas en el tiempo; como testigo absoluto se emplearon  cajas de <i>petri </i>que conten&iacute;an el medio de cultivo inoculado con el hongo sin fungicida. Cada ensayo conten&iacute;a cinco r&eacute;plicas por tratamiento. </font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Evaluaci&oacute;n de la inhibici&oacute;n de la esporulaci&oacute;n de <i>C. acutatum </i></b></font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En  esta evaluaci&oacute;n se utilizaron los cultivos del procedimiento anterior,  11 d&iacute;as despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n. La esporulaci&oacute;n se determin&oacute; en  suspensi&oacute;n acuosa; para ello se adicionaron a cada una de las cajas de <i>petri </i>20.0 mL de agua est&eacute;ril. La  suspensi&oacute;n de conidias se obtuvo mediante raspado de la colonia y se  extrajeron al&iacute;cuotas que posteriormente se llevaron a la zona de conteo  en la c&aacute;mara de Neubauer; se realizaron cuatro conteos por caja y se  determin&oacute; el valor promedio. Los c&aacute;lculos respectivos se llevaron a  cabo empleando la expresi&oacute;n: N = n x 10000; siendo N = N&uacute;mero de  conidias, n = N&uacute;mero de conidias contadas en el &aacute;rea del hemocit&oacute;metro,  y 10000 = Factor de conversi&oacute;n a mililitros. </font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Evaluaci&oacute;n de la germinaci&oacute;n de las esporas de <i>C. acutatum </i></b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En  esta evaluaci&oacute;n se utiliz&oacute; una cepa del hongo incubada durante 10 d&iacute;as  en PDA y a la cual se le agregaron 200 mL de agua destilada para  extraer las esporas. Cada tratamiento se realiz&oacute; en una mezcla de 10 mL  de una soluci&oacute;n de agar-agua al 2%, a la cual se le adicionaron los AE  o sus componentes mayoritarios. Los resultados se confrontaron  nuevamente con los dos fungicidas comerciales Chlorotalonil&reg; y Manzate<sup>&reg;</sup>.  Se utilizaron las mismas concentraciones de ingrediente activo  empleadas en las pruebas de crecimiento radial. Para la evaluaci&oacute;n,  cada caja se dividi&oacute; en sextantes y en cada uno de ellos se adicion&oacute;  una al&iacute;cuota de la suspensi&oacute;n de esporas mediante una pipeta Pasteur.  Los conteos de las esporas germinadas se llevaron a cabo con la ayuda  de un microscopio cada dos horas despu&eacute;s de la siembra y durante un  per&iacute;odo total de 12 horas; en cada sextante de la caja <i>petri </i>se analizaron 50 esporas, teniendo en cuenta los siguientes par&aacute;metros: </font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><i>Esporas germinadas</i>: </b>El tubo germinativo alcanza el doble del di&aacute;metro mayor de la conidia. <b><i>Esporas no germinadas</i>: </b>No  hay desarrollo del tubo germinativo. En el tratamiento estad&iacute;stico se  emple&oacute; un dise&ntilde;o completamente al azar con an&aacute;lisis de medidas  repetidas en el tiempo. Se realizaron cinco repeticiones por  tratamiento, evaluando dos concentraciones por material y un testigo  absoluto como sistema de referencia. </font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Tratamiento estad&iacute;stico </b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza (ANOVA) y la prueba de comparaci&oacute;n de medias de Tukey para un nivel de significancia <i>P&le; </i>0.05, usando el programa estad&iacute;stico SAS (SAS/IML software; Version 6; SAS Institute). </font></p>       <p>&nbsp;</p>       <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>RESULTADOS </b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Fitotoxicidad de los AE y sus componentes mayoritarios </b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En  la evaluaci&oacute;n mediante la aplicaci&oacute;n de gotas localizadas sobre el &aacute;rea  foliar no se observ&oacute; ninguno de los efectos descritos en la escala de  da&ntilde;o; por lo tanto, se puede afirmar que los materiales estudiados no  causan ning&uacute;n tipo de lesi&oacute;n local en los sitios de aplicaci&oacute;n de las  gotas. Al utilizar esta metodolog&iacute;a se observ&oacute; la presencia de material  aceitoso depositado en los puntos de aplicaci&oacute;n y su permanencia super&oacute;  en muchos casos los tres d&iacute;as; este hecho permiti&oacute; la ubicaci&oacute;n de los  sitios de aplicaci&oacute;n original y sobre ellos se colocaron reiteradamente  las gotas correspondientes a tratamientos posteriores. En forma  id&eacute;ntica, en la evaluaci&oacute;n realizada mediante la utilizaci&oacute;n del m&eacute;todo  de aspersi&oacute;n foliar, no se observ&oacute; ninguno de los efectos nocivos  contemplados en la escala de da&ntilde;o establecida como criterio de  fitotoxicidad, ICONTEC (18). El an&aacute;lisis estad&iacute;stico realizado con la  variable peso de biomasa vegetal, no present&oacute; diferencias  significativas entre todos los tratamientos, con relaci&oacute;n a los  testigos (V&eacute;anse tablas <a href="#t01">1</a> y <a href="#t02">2</a>); tampoco se observaron diferencias  estad&iacute;sticas significativas en la variable altura de las plantas (<a href="#g01">V&eacute;ase  figura 1</a>). Considerando la informaci&oacute;n obtenida en las evaluaciones  descritas en este apartado se puede afirmar que los materiales  evaluados no ocasionan da&ntilde;os aparentes en las plantas de <i>S. betacea</i>. </font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>       <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t01" id="t01"></a><a href="/img/revistas/vitae/v16n1/a14t01.gif"><img src="/img/revistas/vitae/v16n1/a14t01th.gif" border="2" /></a></font></p>       <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Tabla 1.</b> An&aacute;lisis de varianza de la evaluaci&oacute;n de fitotoxicidad de las  soluciones antif&uacute;ngicas con relaci&oacute;n a la variable peso de biomasa (<i>P&le;</i> 0.05).          </font></p>       <p>&nbsp;</p>       <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t02" id="t02"></a><img src="/img/revistas/vitae/v16n1/a14t02.gif" /></font></p>       <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Tabla 2. </b>Comparaciones m&uacute;ltiples de promedios para la variable peso de biomasa mediante la prueba de Tukey (<i>P&le;</i>0.05). </font></p>       <p>&nbsp;</p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Alteraci&oacute;n del ciclo biol&oacute;gico de <i>C. acutatum </i></b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La  inhibici&oacute;n del crecimiento micelial del hongo a las 48 horas de  evaluaci&oacute;n con todos los tratamientos es total (100% de inhibici&oacute;n), y  los testigos presentan un desarrollo notorio en este lapso de tiempo.  Debido a este comportamiento las comparaciones de medias se realizaron  considerando valores de tiempo superiores a 48 horas; la informaci&oacute;n  obtenida se compila en la <a href="#t03">tabla 3</a>, y se incluyen los diferentes niveles  de interacci&oacute;n de los tratamientos con el tiempo. El citral a 300 mg/L  y el timol a 125 mg/L mantuvieron un porcentaje de inhibici&oacute;n del 100%  durante el tiempo que dur&oacute; la evaluaci&oacute;n. Por este motivo se excluyeron  en las comparaciones de medias. Con base en el criterio de informaci&oacute;n  bayesiano &ndash;BIC- se seleccion&oacute; el modelo con estructura sim&eacute;trica de los  datos, es decir, las lecturas en todos los tiempos tienen igual  varianza y todos los pares de medidas en la misma unidad experimental  tienen la misma correlaci&oacute;n (datos no mostrados). En el an&aacute;lisis  realizado se evidenci&oacute; la importancia tanto del tiempo como de los  tratamientos (<a href="#t03">V&eacute;ase tabla 3</a>). </font></p>       <p>&nbsp;</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="g01" id="g01"></a><a href="/img/revistas/vitae/v16n1/a14g01.gif"><img src="/img/revistas/vitae/v16n1/a14g01th.gif" border="2" /></a></font></p>       <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Figura 1.</b> Comparaci&oacute;n de promedios para la variable altura de las plantas en la prueba de fitotoxicidad. Ci: citral; Li: limoncillo; TA: testigo absoluto; TS: testigo solvente tensoactivos; Ti: timol; To: Tomillo. </font></p>       <p>&nbsp;</p>       <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t03" id="t03"></a><img src="/img/revistas/vitae/v16n1/a14t03.gif" /></font></p>       <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Tabla 3.</b> Resultado del an&aacute;lisis de varianza para el modelo de covarianza seleccionado. </font></p>       <p>&nbsp;</p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El  efecto inhibitorio de los tratamientos con respecto al tiempo se resume  en la <a href="#g02">figura 2</a>; las evaluaciones se suspendieron a las 264 horas,  debido a que el crecimiento radial de los testigos alcanz&oacute; a llenar  completamente el &aacute;rea de las cajas <i>petri </i>con lo cual se  imposibilit&oacute;, a partir de este tiempo, la cuantificaci&oacute;n de los  porcentajes de inhibici&oacute;n. Se observa que todos los materiales  presentan como tendencia general la disminuci&oacute;n de la capacidad de  inhibici&oacute;n del crecimiento micelial de <i>C. acutatum </i>al avanzar el tiempo de exposici&oacute;n. El timol a 100 mg/L, Manzate<sup>&reg;</sup> a 150 y 200 mg/L y el AE de <i>T. vulgaris </i>a  350 mg/L muestran la tendencia descendente mas pronunciada, indicando  que el efecto inhibitorio que puede ser alcanzado con estos compuestos  disminuye ostensiblemente y es muy significativo despu&eacute;s de 72 horas. A  264 horas de evaluaci&oacute;n, casi todos los tratamientos mostraron un  porcentaje de inhibici&oacute;n inferior al 60%, excepto la agrupaci&oacute;n  conformada por Chlorotalonil&reg; a 200 y 250 mg/L, el AE de <i>C. citratus </i>a 400 mg/L, citral a 250 mg/L y el AE de <i>T. vulgaris </i>a  400 mg/L, que mantienen su poder de inhibici&oacute;n por encima del 80% hasta  las 144 horas (6 d&iacute;as posteriores a la aplicaci&oacute;n). En esta agrupaci&oacute;n,  el mas destacable es el Chlorotalonil<sup>&reg;</sup> a 200 y 250 mg/L, que conserva  una capacidad inhibitoria muy alta aun a las 264 horas (11 d&iacute;as de  aplicaci&oacute;n); los porcentajes observados en este tiempo para el  Chlorotalonil<sup>&reg;</sup> a 200 y 250 mg/L fueron del 81% y 78%, respectivamente. Asimismo, el AE de <i>C. citratus </i>a 400 mg/L, el citral a 250 mg/L y el AE de <i>T. vulgaris </i>a  400 mg/L, poseen una buena capacidad de control del pat&oacute;geno, lo cual  le confiere potencialidad pr&aacute;ctica a las aplicaciones de los AE y sus  componentes mayoritarios en el control racional de la antracnosis del  tomate de &aacute;rbol. La tendencia decreciente de la capacidad inhibitoria  observada en todos los materiales puede ser asociada con una  disminuci&oacute;n de la efectividad de los tratamientos, ocasionada por una  asimilaci&oacute;n favorable de los componentes activos por parte del hongo  cuando estos son suministrados en concentraciones bajas, o al hecho de  que el pat&oacute;geno posee una capacidad de detoxificaci&oacute;n significativa  hacia esos compuestos. </font></p>       <p>&nbsp;</p>       <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="g02" id="g02"></a><a href="/img/revistas/vitae/v16n1/a14g02.gif"><img src="/img/revistas/vitae/v16n1/a14g02th.gif" border="2" /></a></font></p>       <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Figura 2.</b> Porcentajes de inhibici&oacute;n del crecimiento micelial de <i>C. acutatum</i> en el tiempo.</font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La evaluaci&oacute;n del efecto de los tratamientos <i>vulgaris </i>a 350 mg/L, citral a 250 mg/L y timol a sobre la esporulaci&oacute;n de <i>C. acutatum </i>revel&oacute;  que el 100 mg/L; sin embargo, permiten la esporulaci&oacute;n en timol a 125  mg/L y el citral a 300 mg/L la inhiben forma significativa. Los  resultados se consignan en totalmente, mientras que el Chlorotalonil<sup>&reg;</sup> a 200 la <a href="#t04">tabla 4</a>. Una correlaci&oacute;n positiva entre el n&uacute;mero y 250 mg/L, y el Manzate<sup>&reg;</sup> a 150 y 200 mg/L la de esporas y el di&aacute;metro de crecimiento micelial de permiten en una baja proporci&oacute;n. Los AE de <i>T. C. acutatum</i>, se representa en la <a href="#g03">figura 3</a>. </font></p>       <p>&nbsp;</p>       <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t04" id="t04"></a><a href="/img/revistas/vitae/v16n1/a14t04.gif"><img src="/img/revistas/vitae/v16n1/a14t04th.gif" border="2" /></a></font></p>       <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Tabla 4. </b>Crecimiento radial y esporulaci&oacute;n de <i>C. acutatatum </i>para los diferentes tratamientos.</font></p>       <p>&nbsp;</p>       <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="g03" id="g03"></a><a href="/img/revistas/vitae/v16n1/a14g03.gif"><img src="/img/revistas/vitae/v16n1/a14g03th.gif" border="2" /></a></font></p>       <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Figura 3. </b>Correlaci&oacute;n entre el crecimiento radial de <i>C. acutatum </i>a 264 horas de evaluaci&oacute;n y el n&uacute;mero de esporas. </font></p>       <p>&nbsp;</p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Con respecto a la inhibici&oacute;n de la germinaci&oacute;n            de las esporas de <i>C. acutatum</i>, se observ&oacute; que el &uacute;nico            material que no fue activo en un 100% es el AE de <i>T. vulgaris</i> a 350 y 400 mg/L; para este tratamiento          se observ&oacute; que el proceso de germinaci&oacute;n se inici&oacute; seis horas  despu&eacute;s  del montaje  del  ensayo  y  los          porcentajes de germinaci&oacute;n obtenidos con relaci&oacute;n          al  testigo  absoluto  al  finalizar  las  observaciones          (doce horas de evaluaci&oacute;n), fueron del 28 y 21.2%          respectivamente. El valor alcanzado por el testigo fue de 42 esporas germinadas con relaci&oacute;n a 50 esporas evaluadas (84% de germinaci&oacute;n). Los dem&aacute;s          materiales no permitieron la germinaci&oacute;n durante          el tiempo en que se realiz&oacute; el seguimiento.</font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>       <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>DISCUSI&Oacute;N DE RESULTADOS </b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Con  base en los resultados obtenidos en las evaluaciones de fitotoxicidad  se puede afirmar que ninguno de los tratamientos afecta el desarrollo  foliar de las plantas de tomate de &aacute;rbol (<i>S. betacea.</i>). Los riesgos de fitotoxicidad inherentes a su aplicaci&oacute;n bajo las condiciones evaluadas son muy bajos o  nulos, incluso manejando dosis y frecuencias de aplicaci&oacute;n altas. No  obstante, es aventurado asegurar de manera contundente que estos  productos sean totalmente inocuos para las estructuras vegetativas y  reproductivas de las plantas; es necesario practicar evaluaciones que  permitan verificar los efectos sobre la floraci&oacute;n, el crecimiento y el  desarrollo de frutos, entre otros. </font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los estudios de actividad antif&uacute;ngica del AE de <i>T. vulgaris </i>y <i>C. citratus</i>, y sus componentes mayoritarios, timol y citral, muestran que todos son activos contra <i>C. acutatum </i>bajo condiciones <i>in vitro. </i>La  actividad observada puede ser atribuida a da&ntilde;os letales sobre la c&eacute;lula  f&uacute;ngica, ya que se alteran la capacidad reproductiva y germinativa; sin  embargo, no se cuenta con la informaci&oacute;n adecuada que posibilite  determinar el sitio o sistemas biol&oacute;gicos afectados por estos  materiales. El timol a 125 mg/ L y citral a 300 mg/L presentaron el  efecto m&aacute;s significativo, ya que no permitieron el desarrollo micelial  del hongo e inhibieron completamente la esporulaci&oacute;n y la germinaci&oacute;n  de las esporas. Los resultados obtenidos con timol coinciden con la  publicaci&oacute;n de Hern&aacute;ndez <i>et al. </i>(19); quienes reportan que este compuesto inhibi&oacute; totalmente el crecimiento micelial de los hongos <i>Microsporum canis </i>y <i>Trichophytum mentagrophytes </i>a 100 mg/L y de <i>T</i>. <i>rubrum </i>a 50 mg/L. Bravo <i>et al. </i>(20) encontraron que el timol inhibe en un 100% el desarrollo micelial del hongo fitopat&oacute;geno <i>Fusarium moniliforme</i>, e igualmente Muller-Rieabau <i>et al. </i>(21) registran que el timol y su is&oacute;mero estructural, carvacrol (componente mayoritario de los AE de <i>Satureja thymbra </i>y <i>Thymbra spicata</i>), inhiben completamente el crecimiento micelial de los hongos <i>Rhizoctonia solani, Fusarium moniliforme, Sclerotinia sclerotiorum </i>y <i>Phytopthora capsici </i>a 100 mg/L. Asimismo, el citral tambi&eacute;n ha sido reconocido por su actividad antif&uacute;ngica; Garc&iacute;a <i>et al. </i>(22) informan que el citral y el citronelal inhiben la germinaci&oacute;n de las conidias y el crecimiento micelial de <i>Colletotrichum musae. </i></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los aceites esenciales de tomillo (<i>Thymus vulgaris</i>) y limoncillo (<i>C. citratus</i>) ocasionaron una inhibici&oacute;n total del crecimiento micelial <i>in vitro </i>de <i>C. acutatum </i>durante las primeras 72 horas de an&aacute;lisis, superando incluso la actividad mostrada por el Manzate<sup>&reg;</sup> en  las concentraciones evaluadas. Adicionalmente, el AE de limoncillo a  350 y 400 mg/L inhibe la germinaci&oacute;n de esporas en un 100%, mientras  que el AE de tomillo a 350 y 400 mg/L la permite en baja extensi&oacute;n,  21.2 y 28.0% respectivamente. Los AE de <i>T. vulgaris </i>y <i>C. citratus </i>a  400 mg/L mantienen un porcentaje de inhibici&oacute;n que oscila entre el 80 y  90 % al cabo de 96 y 168 horas de evaluaci&oacute;n, comparable con aquellos  obtenidos con el fungicida comercial Chlorotalonil<sup>&reg;</sup> a  200 y 250 mg/L, y el citral a 250 mg/L. Los resultados obtenidos con  los tratamientos realizados con los aceites esenciales de tomillo y  limoncillo presentan correspondencia con los rese&ntilde;ados en la  literatura. En las evaluaciones realizadas por Maruzzuella y Balter  (23), utilizando los aceites esenciales de estas plantas sobre  diferentes hongos, encontraron que los porcentajes de inhibici&oacute;n del  crecimiento del fitop&aacute;togeno <i>Fusarium oxysporum</i>, oscilan entre 32 y 38 %. Asimismo, Bravo <i>et al. </i>(20) encontraron que el aceite esencial de <i>T. vulgaris </i>inhibe el desarrollo del hongo <i>Fusarium moniliforme </i>en  un 55%. La actividad de los AE de tomillo y limoncillo guarda una  relaci&oacute;n muy estrecha con los constituyentes mayoritarios presentes en  ellos, timol y citral, respectivamente. Sin embargo, para determinar el  potencial real de este tipo de materiales como sustancias para el  control del hongo fitopat&oacute;geno, se requiere de evaluaciones de  actividad m&aacute;s profundas y a nivel de campo. </font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De otro lado, el fungicida comercial Manzate<sup>&reg;</sup> present&oacute;  una baja capacidad inhibitoria del crecimiento micelial al ser  comparado con los dem&aacute;s materiales evaluados; sin embargo, es  ampliamente utilizado en el control de la antracnosis en los cultivos  de tomate de &aacute;rbol; Osorio (24) plantea que la baja efectividad  observada en las evaluaciones <i>in vitro </i>de este fungicida puede  estar ocasionada por su baja solubilidad en agua y limitada difusi&oacute;n de  los iones met&aacute;licos cobre y manganeso de este carbamato, en los medios  de cultivo. </font></p>       <p>&nbsp;</p>       <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>AGRADECIMIENTOS </b></font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los  autores agradecen a la Divisi&oacute;n de Investigaciones de la Universidad  Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n (DIME), por la financiaci&oacute;n del  proyecto c&oacute;digo 030802662. </font></p>       <p>&nbsp;</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS </b></font></p>       <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1. Freeman S, Katan T, Shabi E. Characterization of <i>Colletotrichum </i>species responsible for anthracnose diseases of various fruits. Plant Dis. 1998; 82 (6): 596-605. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0121-4004200900010001400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2. Jeffries P, Dodd JC, Jeger MJ, Plumbey RA. The biology and control of <i>Colletotrichum </i>species on tropical fruit crops. 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Ecology and Populations Biology. 2003; 93  (5): 579-587. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0121-4004200900010001400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">4. Capdeville G, Beer SV,  Watkins CB, Wilson CL, Tedeschi LO, AistJR.Pre-and post-harvest  harpintreatmentsofapples induce resistance to blue mold. Plant Dis.  2003; 87 (1): 39-44. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0121-4004200900010001400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">5. Wilson CL,  Wisniewiski ME, editores. Biological control of postharvest diseases of  fruits and vegetables. Theory and practice. Florida: CRC Press; 1995. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0121-4004200900010001400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">6. Tripathi  P, Dubey NK. Exploitation of natural products as an alternative  strategy to control postharvest fungal rotting of fruit and vegetables.  Postharvest Biol Tec. 2004; 32 (3): 235-245. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0121-4004200900010001400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">7. Addor RW. Insecticides. En: Godfrey CRA, editor. Agrochemicals from Natural Products. New York: Marcel Dekker; 1995. p. 1-63. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0121-4004200900010001400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">8. Oxenham SK. Classification of an <i>Ocimum basilicum </i>germplasm  collection and examination of the antifungal effects of the essential  oil of basil [Tesis doctoral]. Glasgow: University of Glasgow; 2003. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0121-4004200900010001400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">9. Ahmet  C, Saban K, Hamdullah K, Ercan K. Antifungal properties of essential  oil and crude extracts of Hypericum linarioides Bosse. Biochem Syst  Ecol.2005; 33 (3): 245-256. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0121-4004200900010001400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">10. Karmen V,  Bojana B, Margareta V, Pohleven F. Effect of the antifungal activity of  oxygenated aromatic essential oil compounds on the white-rot <i>Trametes versicolor </i>and the brown-rot <i>Coniophora puteana</i>. Int Biodeter and Biodegr. 2003; 51 (1): 51-59. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0121-4004200900010001400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">11. Dawidowicz  A, Rado E, Wianowska D, Mardarowicz M, Gawdzik J. Application of PLE  for the determination of essential oil components from <i>Thymus vulgaris </i>L. Talanta. 2006; 76 (4): 878-884. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0121-4004200900010001400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">12. Winward  GP, Avery LM, Stephenson T, Jefferson B. Essential oils for the  disinfection of grey water. Water Res. 2008; 42 (8-9): 2260-2268. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0121-4004200900010001400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">13. Rota MC, Herrera A, Mart&iacute;nez RM, Sotomayor JA, Jord&aacute;n MJ. Antimicrobial activity and chemical composition of <i>Thymus vulgaris</i>, <i>Thymus zygis </i>and <i>Thymus hyemalis </i>essential oils. Food Control. 2008; 19 (7): 681-687. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0121-4004200900010001400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">14. Wilson  ND, Ivanova MS, Watt RA, Moffat AC. The quantification of citral in  lemongrass and lemon oils by near-infrared spectroscopy. J Pharm  Pharmacol. 2002; 54 (9): 1257-1267. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0121-4004200900010001400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">15. Carlini EA, Contar J, Silva-Filho AR, Silveira-Filho N, FrochtengartenML, BuenoO. Pharmacology of lemongrass (<i>Cymbopogon citratus </i>Stapf). I. Effects of teas prepared from the leaves on laboratory animals. J Ethnopharmacol. 1986; 17 (1): 37-64. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0121-4004200900010001400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">16. Mishra  AK, Dubey NK. Evaluation of some essential oils for their toxicity  against fungi causing deterioration of stored food commodities. Appl  Environ Microbiol. 1994; 60 (4): 1101-1105. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0121-4004200900010001400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">17. Wannisorn  B, Jarikasem S, Soontorntanasart T. Antifungal activity of lemon grass  oil and lemon grass oil cream. Phytother Res. 1996; 10 (7): 551-554. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0121-4004200900010001400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">18. Norma  T&eacute;cnica Colombiana NTC 736 - Plaguicidas. Ensayos para determinar la  fitotoxicidad simulando aplicaciones convencionales. Bogot&aacute;: Instituto  Colombiano de Normas T&eacute;cnicas y Certificaci&oacute;n, ICONTEC; 1976. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0121-4004200900010001400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">19. Hern&aacute;ndez  L, Rodr&iacute;guez JM, Garc&iacute;a D, Pino AJ. Actividad antidermatof&iacute;tica in  vitro de aceites esenciales. Rev Cubana Plant Med. 2003. 8 (2).[ Sitio  en internet]. Disponible en: <a href="http://bvs. sld.cu/revistas/pla/vol8_2_03/pla04203.htm" target="_blank">http://bvs.  sld.cu/revistas/pla/vol8_2_03/pla04203.htm</a>. Consultado: 20 de octubre  de 2008. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0121-4004200900010001400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">20. Bravo LL, Berm&uacute;dez TK, Montes-Belmont R. Inhibici&oacute;n del <i>Fusarium moniliforme </i>Sheld mediante polvos vegetales y algunos de sus componentes qu&iacute;micos. Manejo Integrado de Plagas. 2000; 57: 29-34. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0121-4004200900010001400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">21. Muller-Riebau  MF, Berger B, Yegen O. Chemical composition and fungitoxic properties  of phytopathogenic fungi of essential oils selected aromatic plants  growing wild in Turkey. J. Agric Food Chem. 1995; 43 (8): 2262-2266. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0121-4004200900010001400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">22. Garc&iacute;a  R, Alves ESS, Santos MP, Vi&eacute;gas GMF, Fern&aacute;ndes AA, Santos R, Ventura  JA, Fern&aacute;ndes PMB. Antimicrobial activity andpotentialuseof  monoterpenes astropicalfruits preservatives. 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Control qu&iacute;mico de la antracnosis del &ntilde;ame <i>Diascorea alata</i>, L. causada por <i>Colletotrichum gloesporiodes </i>Penz. Fitopatolog&iacute;a Colombiana. 1989; 13 (2): 72-77. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0121-4004200900010001400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>&nbsp;</p>       <p>&nbsp;</p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Recibido: Julio 31 de 2008.<br />   Aceptado: Noviembre 18 de 2008.</font></p>       <p>&nbsp;</p>       <p>&nbsp;</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a href="#ast02">*</a><a name="ast01" id="ast01"></a> Autor a quien debe dirigirse la correspondencia: <a href="mailto:cmgarcia@unalmed.edu.co">cmgarcia@unalmed.edu.co</a>; <a href="mailto:cmgarcia@unal.edu.co">cmgarcia@unal.edu.co</a></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"></font></p>      ]]></body><back>
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