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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[DETERMINACIÓN DEL CONTENIDO DE FENOLES Y EVALUACIÓN DE LA ACTIVIDAD ANTIOXIDANTE DE PROPÓLEOS RECOLECTADOS EN EL DEPARTAMENTO DE ANTIOQUIA (COLOMBIA)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[DETERMINATION OF PHENOLIC CONTENT AND EVALUATION OF ANTIOXIDANT ACTIVITY OF PROPOLIS FROM ANTIOQUIA (COLOMBIA)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Propolis, a natural product collected by honeybee from exudates of plants, is widely used in traditional medicine due to its known therapeutic properties. In this paper, the quality of ethanol extracts of propolis (EEP) from different regions of Antioquia (Colombia) is compared through the determination of flavonoids and total phenolic compounds content, and the in vitro antioxidant activity, using three assay systems: radical scavenging activity by means of the DPPH• (1-diphenyl-2-picrylhydrazyl) and ABTS•+ (2,2'-azino-bis 3-ethylbenzthiazoline-6-sulfonic acid cation) assays, and ferric reducing antioxidant power (FRAP). Determinations of total phenolic compounds content are found between 22.11 ± 0.54 and 75.22 ± 1.35 mg GAE/g of EEP and total content of flavonoids between 4.75 ± 0.01 y 34.50 ± 0.07 mg QE/g of EEP The radical scavenging activity varies from 33.9 ± 9.7 to 324.6 ± 15.0, and from 455.5 ± 7.8 to 1091 ± 17.3 µmol TE/g of EEP (TEAC) in the DPPH and ABTS system, respectively. In the FRAP method, the activity is found between 40.9 ± 13.3 and 338.4 ± 22.4 µmol AAE/g of EEP (AEAC). Results show a positive linear correlation between antioxidant activity and total phenolic content. The antioxidant activity of some propolis indicates its potential role as nutraceutical.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="Verdana">      <p align="right"><b>PRODUCTOS NATURALES</b></p>       <p align="right">&nbsp;</p> </font>     <p><font size="4" face="Verdana"><b>DETERMINACI&Oacute;N DEL CONTENIDO DE FENOLES Y EVALUACI&Oacute;N DE LA ACTIVIDAD ANTIOXIDANTE DE PROP&Oacute;LEOS RECOLECTADOS EN EL DEPARTAMENTO DE ANTIOQUIA (COLOMBIA)</b></font></p>     <p>&nbsp;</p> <font size="2" face="Verdana"></font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>DETERMINATION OF PHENOLIC CONTENT AND EVALUATION OF ANTIOXIDANT ACTIVITY OF PROPOLIS FROM ANTIOQUIA (COLOMBIA)</b></font></p> <font size="2" face="Verdana">     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> </font>      <p><font size="2" face="Verdana">Lady R. PALOMINO G.<sup>1</sup>; Carlos M. GARC&Iacute;A P. <sup>1</sup>; Jes&uacute;s H. GIL G.<sup>1,2</sup>; Benjam&iacute;n A. ROJANO<sup>1</sup>; Diego L. DURANGO R.<sup>1</sup><a href="#ab">*</a><a name="a"></a></sup>    <br>  <sup>1</sup> Grupo de Qu&iacute;mica de los Productos Naturales y los Alimentos. Escuela de Qu&iacute;mica. Facultad de Ciencias. Universidad Nacional de Colombia. Calle 59a No. 63-020 Autopista Norte. A.A. 3840. Medell&iacute;n, Colombia.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <sup>2</sup> Departamento de Ingenier&iacute;a Agr&iacute;cola y Alimentos. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Universidad Nacional de Colombia. Calle 59a No. 63-020 Autopista Norte. A.A. 3840. Medell&iacute;n, Colombia.</font></p> <font size="2" face="Verdana">    <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> </font> <hr size="1" noshade> <b><font size="2" face="verdana">RESUMEN</font></b> <font size="2" face="Verdana">     <p>El prop&oacute;leo, un producto natural colectado por las abejas a partir de los exudados de las plantas, es ampliamente utilizado en la medicina tradicional por sus reconocidas propiedades terap&eacute;uticas. En este estudio se compara la calidad del extracto etan&oacute;lico de prop&oacute;leos (EEP) provenientes de diferentes regiones de Antioquia (Colombia), mediante la determinaci&oacute;n del contenido de flavonoides y fenoles totales, y la actividad antioxidante <i>in vitro</i>, la cual es establecida empleando las t&eacute;cnicas de captura de los radicales DPPH<sup>&#8226;</sup> (1,1-difenil-2-picrilhidracilo) y ABTS<sup>&#8226;+</sup> (cati&oacute;n del &aacute;cido 2,2'-azino-bis 3-etilbenzotiazolina-6-sulf&oacute;nico), y la capacidad reductora de hierro (FRAP). Las determinaciones para el contenido total de compuestos fen&oacute;licos se encuentran entre 22,11 &#177; 0,54 y 75,22 &#177; 1,35 mg GAE/g de EEP y para el contenido total de flavonoides, entre 4,75 &#177; 0,01 y 34,50 &#177; 0,07 mg QE/g de EEP. La actividad antiradicalaria var&iacute;a entre 33,9 &#177; 9,7 y 324,6 &#177; 15,0, y entre 455,5 &#177; 7,8 y 1,091 &#177; 17,3 &#181;mol TE/g de EEP (TEAC) en los sistemas DPPH y ABTS, respectivamente. En el m&eacute;todo FRAP la actividad se encuentra entre 40,9 &#177; 13,3 y 338,4 &#177; 22,4 &#181;mol AAE/g de EEP (AEAC). Los resultados muestran una correlaci&oacute;n lineal positiva entre la capacidad antioxidante y el contenido de compuestos de naturaleza fen&oacute;lica. La actividad antioxidante de algunos prop&oacute;leos indica su potencial como producto nutrac&eacute;utico. </p>     <p><b>Palabras clave:</b>prop&oacute;leo, compuestos fen&oacute;licos, flavonoides, DPPH, FRAP.</p> </font> <hr size="1" noshade> <b><font size="2" face="verdana">ABSTRACT</font></b> <font size="2" face="Verdana">     <p>Propolis, a natural product collected by honeybee from exudates of plants, is widely used in traditional medicine due to its known therapeutic properties. In this paper, the quality of ethanol extracts of propolis (EEP) from different regions of Antioquia (Colombia) is compared through the determination of flavonoids and total phenolic compounds content, and the <i>in vitro</i> antioxidant activity, using three assay systems: radical scavenging activity by means of the DPPH<sup>&#8226;</sup> (1-diphenyl-2-picrylhydrazyl) and ABTS<sup>&#8226;+</sup> (2,2'-azino-bis 3-ethylbenzthiazoline-6-sulfonic acid cation) assays, and ferric reducing antioxidant power (FRAP). Determinations of total phenolic compounds content are found between 22.11 &#177; 0.54 and 75.22 &#177; 1.35 mg GAE/g of EEP and total content of flavonoids between 4.75 &#177; 0.01 y 34.50 &#177; 0.07 mg QE/g of EEP The radical scavenging activity varies from 33.9 &#177; 9.7 to 324.6 &#177; 15.0, and from 455.5 &#177; 7.8 to 1091 &#177; 17.3 &#181;mol TE/g of EEP (TEAC) in the DPPH and ABTS system, respectively. In the FRAP method, the activity is found between 40.9 &#177; 13.3 and 338.4 &#177; 22.4 &#181;mol AAE/g of EEP (AEAC). Results show a positive linear correlation between antioxidant activity and total phenolic content. The antioxidant activity of some propolis indicates its potential role as nutraceutical.</p>     <p><b>Key words:</b> propolis, phenolic compounds, flavonoids, DPPH, FRAP.</p> </font> <hr size="1" noshade> <font size="2" face="Verdana">     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b> </font></p> <font size="2" face="Verdana">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La palabra prop&oacute;leo se deriva del griego <i>pro</i> (en defensa de) y <i>polis</i> (la ciudad); con ella se designa la sustancia que recubre la colmena o <i>polis</i> de las abejas y cumple funciones defensivas. El prop&oacute;leo es una sustancia resinosa y altamente adhesiva, recolectada, transformada y usada por las abejas para sellar los agujeros, fijar los panales de miel, pulir las paredes interiores y proteger la entrada contra los intrusos (1). Su composici&oacute;n qu&iacute;mica es compleja y depende de la flora presente en el &aacute;rea de recolecci&oacute;n; sin embargo, se han identificado como principales componentes: alcoholes, aldeh&iacute;dos, amino&aacute;cidos, &aacute;cidos alif&aacute;ticos, &aacute;cidos arom&aacute;ticos, &eacute;steres arom&aacute;ticos, flavonoides, &aacute;cidos grasos, &aacute;cidos <i>p</i>-cum&aacute;ricos prenilados, &aacute;cidos cafeoilqu&iacute;nicos, lignanos, &aacute;cidos diterp&eacute;nicos, triterpenos, esteroides y az&uacute;cares (2, 3).</p>     <p>Este producto de la colmena ha sido utilizado desde tiempos antiguos por las propiedades farmac&eacute;uticas que se le han atribuido, tales como: antibacteriano (4), antif&uacute;ngico (5), antiviral (6), antiinflamatorio (6), anti&uacute;lceroso (7), hepatoprotector (8), antitumoral (9), entre otras. Algunas de estas propiedades han sido relacionadas con el contenido de compuestos fen&oacute;licos, especialmente flavonoides, &eacute;steres del &aacute;cido caf&eacute;ico, etc (10-12). En la actualidad, el prop&oacute;leo se emplea en la medicina natural, en apiterapia, como componente de biocosm&eacute;ticos y como alimento saludable para m&uacute;ltiples prop&oacute;sitos (1, 3, 13, 14).</p>     <p>La amplia diversidad en la composici&oacute;n qu&iacute;mica de este producto ap&iacute;cola y su empleo generalizado en la industria, han tra&iacute;do como consecuencia la necesidad de control de su calidad y su normalizaci&oacute;n en general. Con este fin se han desarrollado protocolos de trabajo establecidos por diferentes normas internacionales, como la norma IRAM, del Instituto Argentino de Normalizaci&oacute;n - Subcomit&eacute; de Productos Agroalimentarios del NOA-2004 (15), la norma Ramal del Ministerio de Agricultura de Cuba-1994 (16), y el reglamento t&eacute;cnico para la fijaci&oacute;n de identidad y calidad de prop&oacute;leos del Ministerio de Agricultura de Brasil-1999 (17).</p>     <p>En Colombia, a pesar de que la informaci&oacute;n referente a su composici&oacute;n qu&iacute;mica y su actividad biol&oacute;gica es escasa (18, 19), este material es comercializado ampliamente en tiendas naturistas, como jarabe, tintura y ung&#252;ento. Un conocimiento m&aacute;s profundo de sus propiedades permitir&iacute;a la elaboraci&oacute;n de normas de calidad adecuadas, que sirvan como elementos &uacute;tiles para su control y verificaci&oacute;n por parte de las entidades farmacol&oacute;gicas y bromatol&oacute;gicas correspondientes. En este sentido, la concepci&oacute;n m&aacute;s actualizada de su control de calidad consiste en la determinaci&oacute;n de sus propiedades f&iacute;sico-qu&iacute;micas y la estimaci&oacute;n de su actividad biol&oacute;gica. Para el presente trabajo se llevaron a cabo estudios comparativos mediante la determinaci&oacute;n del contenido de fenoles totales y flavonoides, y la evaluaci&oacute;n de la actividad captadora de radicales y antioxidante de muestras de prop&oacute;leos colectadas en diferentes regiones de Antioquia.</p>  </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </b></font></p> <font size="2" face="Verdana"> <b>Recolecci&oacute;n del prop&oacute;leo y obtenci&oacute;n de los extractos</b></p>     <p>Las muestras de prop&oacute;leo provenientes de abejas <i>Apis mellifera</i> (africanizada), se obtuvieron en el Departamento de Antioquia (Colombia) en apiarios de los municipios de Caldas (Latitud: 6&#176;06' N, Longitud: 75&#176;38' O; 1.750 msnm), Betania (Latitud: 5&#176;44' N, Longitud: 76&#176;00' O; 1.550 msnm), La Uni&oacute;n (Latitud: 5&#176;59' N, Longitud: 75&#176;22' O; 2.473 msnm), y Medell&iacute;n (Laboratorio de Investigaciones Melitol&oacute;gicas y Ap&iacute;colas-LIMA de la Universidad Nacional; Latitud: 6&#176;16' N, Longitud: 75&#176;34' O; 1.479 msnm). La recolecci&oacute;n se realiz&oacute; mediante los m&eacute;todos de raspado y trampa. En el primero se utiliz&oacute; una esp&aacute;tula de acero inoxidable para remover el producto adherido en las caras laterales, tapa y entretapa de cada caj&oacute;n. Mediante este m&eacute;todo se recolectaron muestras de prop&oacute;leo en los Municipios de Caldas (CR) y Betania (BR). Para el m&eacute;todo de trampa, se emplearon mallas pl&aacute;sticas matrizadas, las cuales, una vez recubiertas del material, se retiraron y almacenaron a -10&#176;C para facilitar la remoci&oacute;n del producto. Este procedimiento se emple&oacute; para obtener los prop&oacute;leos en los Municipios de Caldas (CT), La Uni&oacute;n (UT) y el apiario LIMA (MT). Todas las muestras se recolectaron en &eacute;poca de lluvias, entre los meses de octubre y diciembre de 2007. El muestreo se efectu&oacute; en forma aleatoria de diferentes colmenas de cada apiario para formar una muestra compuesta representativa de cada municipio.</p>     <p>Los diferentes prop&oacute;leos crudos se maceraron manualmente y se les retiraron trozos de madera, piedras peque&ntilde;as y partes de insectos. Luego, 30 g de muestra se sometieron a extracci&oacute;n sucesiva con 100 mL de etanol al 96% v/v (3x100 mL) en un agitador magn&eacute;tico, durante 48 horas, a temperatura ambiente y en ausencia de luz. Posteriormente, el material se filtr&oacute; en un embudo con placa sinterizada. A los filtrados combinados, se les eliminaron las ceras mediante precipitaci&oacute;n y filtraci&oacute;n con adici&oacute;n de agua destilada (50 mL) y refrigeraci&oacute;n del extracto a -18&#176;C. Finalmente, se evapor&oacute; el solvente de los filtrados por destilaci&oacute;n al vac&iacute;o en un evaporador rotatorio a presi&oacute;n reducida a una temperatura de 40&#176;C. Los extractos etan&oacute;licos obtenidos (EEP) se almacenaron en viales &aacute;mbar y se refrigeraron a -18&#176;C hasta su posterior evaluaci&oacute;n.</p >    <p><b>Absorbancia espec&iacute;fica del espectro UV</b></p>     <p>La absorbancia espec&iacute;fica del espectro UV de cada muestra de EEP se obtuvo por el m&eacute;todo de Miyataka <i>et al</i> (20). A partir de la absorbancia espec&iacute;fica a la longitud de onda de m&aacute;xima absorci&oacute;n (&#955;max), determinada en un espectrofot&oacute;metro UVvisible Shimadzu UV 1800, se calcul&oacute; el valor del coeficiente de extinci&oacute;n E<sub>1 cm</sub><sup>1%</sup>.</p>     <p><b>Contenido de fenoles y flavonoides totales</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El contenido de fenoles totales se determin&oacute; por el m&eacute;todo colorim&eacute;trico de Singleton y Rossi (21) con algunas modificaciones. En un tubo de reacci&oacute;n se adicionaron 50 &#181;L de soluci&oacute;n etan&oacute;lica de prop&oacute;leo, 800 &#181;L de agua y 100 &#181;L de reactivo Folin-Ciocalteu (grado anal&iacute;tico, Merck). Se agit&oacute; y luego se dej&oacute; en reposo por 8 minutos. Posteriormente se adicionaron 50 &#181;L de Na<sub>2</sub>CO<sub>3</sub> al 20%. Despu&eacute;s de 1 hora en la oscuridad se ley&oacute; la absorbancia a 760 nm. Se usaron soluciones de &aacute;cido g&aacute;lico (Sigma-Aldrich®) entre 50 - 500 &#181;g/mL para construir la curva de calibraci&oacute;n (<i>r</i><sup>2</sup>=0,995). Los resultados se expresaron como mg equivalentes de &aacute;cido g&aacute;lico (GAE)/g de EEP; los valores se presentan como la media de los an&aacute;lisis realizados por triplicado &#177; desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (DE).</p>     <p>El contenido de flavonoides totales en los extractos etan&oacute;licos fue determinado por el m&eacute;todo de Kumazawa <i>et al</i> (22). A una al&iacute;cuota de 0,5 mL de soluci&oacute;n de prop&oacute;leo, se le adicionaron 0,5 mL de soluci&oacute;n etan&oacute;lica de AlCl<sub>3</sub> al 2%. Despu&eacute;s de una hora de incubaci&oacute;n a temperatura ambiente, la absorbancia fue medida a 420 nm. Se usaron soluciones de quercetina (Sigma-Aldrich®) entre 5 - 25 &#181;g/mL, para construir la curva de calibraci&oacute;n (<i>r</i><sup>2</sup> = 0,994). El contenido de flavonoides totales fue calculado como mg equivalentes de quercetina (QE)/g de EEP. Este procedimiento se efectu&oacute; con cada uno de los prop&oacute;leos objeto de estudio por triplicado. Los valores presentados corresponden a la media &#177; desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (DE).</p>     <p><b>Actividad antioxidante</b></p>     <p><i>Actividad inhibidora del radical libre 1,1-difenil-2-picril hidracilo (DPPH<sup>&#8226;</sup>).</i></p>     <p>La actividad antioxidante de los extractos sek evalu&oacute; mediante la capacidad captadora del radical DPPH<sup>&#8226;</sup> utilizando la metodolog&iacute;a de Rojano <i>et al</i> (23). Un volumen de 990 &#181;L de una soluci&oacute;n metan&oacute;lica de DPPH se mezcl&oacute; con 10 &#181;L de las soluciones etan&oacute;licas de prop&oacute;leos en varias concentraciones; las mezclas se dejaron en reposo y en ausencia de luz durante 30 minutos. Transcurrido este tiempo se ley&oacute; la absorbancia a 517 nm en un espectrofot&oacute;metro. Los resultados fueron convertidos a porcentaje de inhibici&oacute;n y expresados como capacidad antioxidante en &#181;mol de equivalentes Trolox (&aacute;cido 6-hidroxi-2,5,7,8-tetrametilcromo-2carbox&iacute;lico; TE)/g de EEP (TEAC). Los experimentos se llevaron a cabo usando un bloque de dise&ntilde;o al azar. Dentro de cada bloque cada tratamiento se aplic&oacute; 3 veces. El antioxidante sint&eacute;tico butil hidroxitolueno (BHT), se us&oacute; como control positivo.</p>     <p><i>Actividad inhibidora del radical 2,2'-azino-bis (3-etilbenzotiazolina)-6 sulfonato de amonio (ABTS<sup>&#8226;+</sup>).</i></p>     <p>Se emple&oacute; el m&eacute;todo propuesto por Aubad <i>et al</i> (24). El radical se gener&oacute; por una reacci&oacute;n de oxidaci&oacute;n del ABTS con persulfato de potasio. Se prepararon soluciones etan&oacute;licas de diferentes concentraciones de cada una de las muestras de prop&oacute;leo, de las cuales se tomaron 20 &#181;L y se mezclaron con 980 &#181;L de la soluci&oacute;n de ABTS previamente preparada en una soluci&oacute;n buffer fosfato a un pH de 7,4. Las soluciones obtenidas se incubaron en la oscuridad a temperatura ambiente durante 30 minutos y posteriormente se midieron sus absorbancias a 734 nm. Se utiliz&oacute; una curva de calibraci&oacute;n de Trolox como est&aacute;ndar y los resultados se expresaron como capacidad antioxidante en &#181;mol de equivalentes Trolox (TE)/g de EEP (TEAC). Los valores se expresan como la media de tres r&eacute;plicas. Se us&oacute; como referencia el BHT.</p>     <p><i>Actividad antioxidante reductora de Fe<sup>3+</sup>: Ensayo FRAP</i></p>     <p>La evaluaci&oacute;n de la actividad reductora se llev&oacute; a cabo seg&uacute;n el m&eacute;todo de Benzie <i>et al</i> (25). Un volumen de 10 &#181;L de las muestras de prop&oacute;leo en diferentes concentraciones, se mezcl&oacute; con 90 &#181;L de agua destilada y 900 &#181;L del reactivo FRAP (2,5 mL de la soluci&oacute;n 2,4,6-tripiridil-s-triazina a una concentraci&oacute;n de 10 &#181;M en HCl 40 mM; 2,5 mL de FeCl<sub>3</sub> 20 &#181;M y 25 mL de buffer acetato 0,3 &#181;M a un pH de 3.6). La absorbancia fue le&iacute;da a 593 nm despu&eacute;s de 7 minutos. Se utiliz&oacute; una curva de calibraci&oacute;n de &aacute;cido asc&oacute;rbico (AA) y las actividades de los extractos de prop&oacute;leo se expresaron como &#181;mol de equivalentes de &aacute;cido asc&oacute;rbico (AAE)/g de EEP (AEAC). Los valores se expresan como la media de tres r&eacute;plicas. Como control positivo se emple&oacute; el antioxidante BHT.</p> </font>       <p><font size="3" face="Verdana"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p> <font size="2" face="Verdana">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Contenido de fenoles y flavonoides totales</b></p>     <p>El valor E<sub>1 cm</sub><sup>1%</sup> de la absorci&oacute;n UV es uno de los par&aacute;metros fisicoqu&iacute;micos usados para evaluar el prop&oacute;leo (20, 26), porque varias de las actividades biol&oacute;gicas de este producto ap&iacute;cola se atribuyen a la presencia de compuestos fen&oacute;licos, flavonoides y &aacute;cidos caf&eacute;icos, los cuales presentan absorciones m&aacute;ximas entre las longitudes de onda de 240 y 350 nm. Los valores de E<sub>1 cm</sub><sup>1%</sup> de las muestras de EEP se encontraron entre 72 y 390 (V&eacute;ase tabla <a href="#tb01">1</a>). Una &#955;<sub>max</sub> cercana a 290 nm, se hall&oacute; en los prop&oacute;leos CT, CR, UT, y MT. El mayor valor E<sub>1 cm</sub><sup>1%</sup> lo present&oacute; el prop&oacute;leo del municipio de Betania, superando incluso los valores reportados por Kumazawa, Hamasaka y Nakayama (22) para prop&oacute;leos de diferentes regiones del mundo. En este prop&oacute;leo la longitud de m&aacute;xima absorci&oacute;n se detect&oacute; a 242 nm. Es posible inferir que las diferencias en la &#955;<sub>max</sub> corresponden a diversas composiciones de fenoles y flavonoides presentes en los prop&oacute;leos como consecuencia de sus diferentes or&iacute;genes bot&aacute;nicos y geogr&aacute;ficos. Por su parte, el menor valor E<sub>1 cm</sub><sup>1%</sup> se hall&oacute; en el prop&oacute;leo MT.</p>     <p align="center">Tabla 1. Contenido de fenoles totales y flavonoides totales en las muestras de prop&oacute;leo.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v16n3/v16n3a13tb01.gif"><a name="tb01"></a></p>     <p>El contenido de fenoles y flavonoides en prop&oacute;leos es un par&aacute;metro importante que establece tanto la calidad del material como su potencial biol&oacute;gico, en especial para la actividad antioxidante. Se ha reportado que estos compuestos pueden actuar interrumpiendo la reacci&oacute;n de oxidaci&oacute;n de l&iacute;pidos (27), inhibiendo las reacciones de quimioluminiscencia (28), capturando varias especies reactivas de ox&iacute;geno (29). Los m&eacute;todos de Folin-Ciocalteau y de formaci&oacute;n del complejo con AlCl<sub>3</sub> para determinar el contenido total de compuestos fen&oacute;licos y flavonoides, respectivamente, son com&uacute;nmente usados para analizar plantas y alimentos (30). En el presente estudio, estos m&eacute;todos se aplicaron para determinar el contenido de fenoles y flavonoides totales en muestras de prop&oacute;leo de diferentes municipios de Antioquia. Los m&eacute;todos fisicoqu&iacute;micos son &uacute;tiles para evaluar estos materiales porque el prop&oacute;leo contiene muchas clases de compuestos fen&oacute;licos (30). Se observa que el contenido de fenoles y flavonoides en los extractos var&iacute;a ampliamente, en un intervalo desde 22,11 &#177; 0,54 a 75,22 &#177; 1,35 mg GAE/g de EEP y desde 4,75 &#177; 0,01 a 42,37 &#177; 0,18 mg QE/g de EEP, respectivamente (V&eacute;ase tabla <a href="#tb01">1</a>). Los extractos etan&oacute;licos de los prop&oacute;leos BR, UT y CT presentan valores altos de contenido de compuestos fen&oacute;licos, comparados con las dem&aacute;s muestras.</p>      <p>Normativas como la de Argentina (15) y Brasil (17), han establecido requisitos m&iacute;nimos de concentraci&oacute;n que deben cumplir el prop&oacute;leo y sus extractos para ser utilizados como materia prima en el desarrollo de productos; para los compuestos fen&oacute;licos, el valor m&iacute;nimo es de 50 mg GAE/g de EEP, y para flavonoides, de 5 mg QE/g de EEP (15). De acuerdo con lo anterior, los prop&oacute;leos BR, UT, y CT satisfacen los requisitos de calidad establecidos por estas normativas.</p>     <p>El prop&oacute;leo MT es el que posee los menores niveles de fenoles y flavonoides, siendo de 22,11 &#177; 0,54 y 4,75 &#177; 0,01 mg/g de EPP, respectivamente. En este prop&oacute;leo, Meneses (31) ha reportado la presencia principalmente de diterpenos de tipo labdano. Por otra parte, el prop&oacute;leo de Betania es el que posee los mayores niveles de contenido de fenoles (75,22 &#177; 1,35 mg GAE/g) y flavonoides (42,37 &#177; 0,18 mg QE/g), superando los valores encontrados en los prop&oacute;leos de otras regiones de Colombia, seg&uacute;n lo reportado por Salamanca, Correa y Principal (32). Adicionalmente, todas las muestras presentaron contenidos de compuestos fen&oacute;licos y flavonoides inferiores a los reportados para prop&oacute;leos de origen europeo, asi&aacute;tico y norteamericano (33), lo cual sugiere que la composici&oacute;n de los prop&oacute;leos analizados difiere de la encontrada en regiones templadas, debido a la influencia y diversidad del origen bot&aacute;nico a partir de la cual las abejas los elaboran en cada una de las zonas biogeogr&aacute;ficas (2, 3). Los prop&oacute;leos de zonas templadas poseen como principales constituyentes compuestos fen&oacute;licos (flavonoides, &aacute;cidos cin&aacute;micos, y derivados), cuya fuente principal son los exudados de &aacute;lamos (<i>Populus</i> spp.), abedules (<i>Betula alba</i>), entre otros (34). En regiones tropicales, carentes de este tipo de vegetaci&oacute;n, las abejas deben usar otras plantas como fuente para su producci&oacute;n (35).</p>     <p><b>Capacidad antioxidante</b></p>     <p> La actividad antioxidante de los extractos fue evaluada por tres m&eacute;todos diferentes, pues se sabe que los antioxidantes pueden actuar por m&uacute;ltiples mecanismos, dependiendo del sistema de reacci&oacute;n o la fuente radicalaria u oxidante (36). Los resultados fueron expresados en equivalentes Trolox (TEAC) y equivalentes de &aacute;cido asc&oacute;rbico (AEAC). El valor TEAC compara la capacidad captadora de radicales ABTS<sup>&#8226;+</sup> o DPPH<sup>&#8226;</sup> del extracto bajo investigaci&oacute;n con respecto al antioxidante sint&eacute;tico Trolox; un an&aacute;logo soluble en agua de la vitamina E (37). Por su parte, el valor AEAC confronta la habilidad del prop&oacute;leos evaluado para reducir Fe<sup>3+</sup> a Fe<sup>2+</sup>, con respecto a la del &aacute;cido asc&oacute;rbico. De esta manera, altos valores TEAC y/o AEAC representan una actividad antioxidante superior; indicando respectivamente, mayor capacidad para captar radicales libres mediante transferencia de hidr&oacute;geno, y/o para reducir Fe<sup>3+</sup> a Fe<sup>2+</sup>.</p>     <p><i>Actividad captadora de radicales</i></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Los resultados de la actividad captadora de radicales DPPH<sup>&#8226;</sup> y ABTS<sup>&#8226;+</sup> para los diferentes prop&oacute;leos, variaron entre 33,9 &#177; 9,7 y 324,6 &#177; 15,0; y entre 455,5 &#177; 7,8 y 1091 &#177; 17,3 &#181;mol de TE/g de EEP (TEAC), respectivamente (V&eacute;ase tabla <a href="#tb02">2</a>). De los cinco extractos, los m&aacute;s promisorios, los que demostraron actividad significativa en las dos t&eacute;cnicas evaluadas, son CT y BR. Teniendo en cuenta que cada t&eacute;cnica tiene diferentes condiciones de reacci&oacute;n y solubilidad, es posible inferir que los extractos contienen diversos compuestos con potencial antioxidante.</p>     <p align="center">Tabla 2. Actividad antioxidante de los extractos etan&oacute;licos de los prop&oacute;leos.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v16n3/v16n3a13tb02.gif"><a name="tb02"></a></p>      <p> Los resultados muestran que para todos los extractos, los valores de ABTS expresados como TEAC son mayores que en la t&eacute;cnica con DPPH, debido a la baja selectividad del ABTS <sup>&#8226;+</sup>, que reacciona con cualquier compuesto arom&aacute;tico hidroxilado, independientemente de su potencial antioxidante real (38). Por otro lado, si la capacidad antioxidante de los extractos EEP se debe a la presencia de &aacute;cidos fen&oacute;licos, flavonoides y otro tipo de polifenoles, como se reporta generalmente en la literatura (33, 39-41), se debe tener en cuenta que el DPPH es m&aacute;s selectivo que el ABTS<sup>&#8226;+</sup> y, a diferencia de este &uacute;ltimo, no reacciona con los flavonoides carentes de grupos hidroxilo en el anillo B, ni con &aacute;cidos arom&aacute;ticos que contengan un solo grupo hidroxilo (38). Este hecho explica los valores TEAC inferiores en el m&eacute;todo DPPH con respecto al ABTS.</p>     <p> La mayor actividad captadora del radical DPPH<sup>&#8226;</sup> se registr&oacute; en el extracto etan&oacute;lico CT seguido de BR, mientras que para el radical ABTS<sup>&#8226;+</sup> el orden se invierte. Para el ensayo ABTS, ambos prop&oacute;leos presentan una actividad superior a la observada para el antioxidante sint&eacute;tico BHT. Por otro lado, el extracto MT exhibi&oacute; una d&eacute;bil actividad captadora de radicales. En los prop&oacute;leos provenientes de Caldas se encontraron diferencias en la capacidad captadora de radicales, dependiendo del m&eacute;todo de recolecci&oacute;n.</p>     <p><i>Actividad antioxidante reductora de Fe<sup>3+</sup> (FRAP)</i></p>     <p> El ensayo FRAP est&aacute; basado en la habilidad de los compuestos fen&oacute;licos para reducir Fe<sup>3+</sup> a Fe<sup>2+</sup> (42). En presencia de 2,4,6-tripiridil-s-triazina, la reducci&oacute;n se encuentra acompa&ntilde;ada de la formaci&oacute;n de un complejo coloreado de Fe<sup>2+</sup>. Los valores de la actividad antioxidante FRAP se encontraron entre 40,9 &#177; 13,3 y 338,4 &#177; 22,4 &#181;mol de AAE/g de EEP (AEAC) (V&eacute;ase tabla <a href="#tb02">2</a>). Los extractos CT y BR, que presentaron la mayor actividad captadora de los radicales DPPH<sup>&#8226;</sup> y ABTS<sup>&#8226;+</sup>, tambi&eacute;n exhibieron la mayor capacidad antioxidante, con valores AEAC de 338,4 &#177; 22,4 y 227,6 &#177; 12,5, respectivamente. Estos valores estuvieron por debajo del encontrado para el antioxidante BHT. El extracto EEP, proveniente del apiario LIMA, MT, que present&oacute; una d&eacute;bil actividad captadora de radicales, tambi&eacute;n demostr&oacute; ser el menos activo en el ensayo FRAP.</p>     <p><i>Correlaci&oacute;n entre la capacidad antioxidante y el contenido de fenoles y flavonoides totales</i></p>     <p> El prop&oacute;leo contiene una amplia variedad de compuestos fen&oacute;licos, principalmente flavonoides. La variaci&oacute;n en el contenido de flavonoides del prop&oacute;leo se puede atribuir principalmente a la diferencia en la vegetaci&oacute;n circundante a la colmena. Se ha sugerido que el contenido de flavonoides y otras sustancias fen&oacute;licas juega un papel preventivo en el desarrollo del c&aacute;ncer y las enfermedades del coraz&oacute;n (43). Estudios concernientes a la composici&oacute;n del prop&oacute;leo han reportado &aacute;cidos carbox&iacute;licos arom&aacute;ticos, tales como cafeico, p-cum&aacute;rico, 3,4-dimetoxicin&aacute;mico, y sus &eacute;steres, y los flavonoides quercetina, pinobanksina-5-metileter, apigenina, kaempferol, crisina, pinocembrina, galangina, sakuranetina, entre otros (2,3).</p>     <p>Se observ&oacute; que los extractos CT y BR, que presentaron los mayores contenidos de fenoles y flavonoides, a su vez exhibieron altos valores de TEAC y AEAC (V&eacute;anse tablas <a href="#tb01">1</a> y <a href="#tb02">2</a>). Estos extractos, a su vez, poseen valores de E<sub>1 cm</sub><sup>1%</sup> superiores a los encontrados en los otros prop&oacute;leos. Por otro lado, el extracto MT, cuyo valor E<sub>1 cm</sub><sup>1%</sup>, contenido de fenoles y flavonoides totales es peque&ntilde;o, exhibi&oacute; una d&eacute;bil actividad captadora de radicales y antioxidante, lo que sugiere que posiblemente los principales componentes de este prop&oacute;leo son diferentes a los de los otros municipios.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El an&aacute;lisis de la relaci&oacute;n entre la actividad captadora de radicales, DPPH y ABTS, y antioxidante de los extractos de los prop&oacute;leos, y el contenido de fenoles, muestra una correlaci&oacute;n positiva media (V&eacute;ase tabla <a href="#tb03">3</a>).</p>     <p align="center">Tabla 3. An&aacute;lisis de la correlaci&oacute;n entre los par&aacute;metros de actividad captadora de radicales y antioxidante, y el contenido de fenoles y flavonoides.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/vitae/v16n3/v16n3a13tb03.gif"><a name="tb03"></a></p>     <p>Las correlaciones no son completamente lineales porque el m&eacute;todo de Folin-Ciocalteu es espec&iacute;fico para compuestos fen&oacute;licos, y la actividad antioxidante tambi&eacute;n puede ser exhibida por compuestos no fen&oacute;licos (44, 45). Adem&aacute;s es posible que se presenten interacciones antagonistas o sinergistas entre los compuestos fen&oacute;licos y otros metabolitos que pueden afectar la actividad (46). La relaci&oacute;n entre el contenido de fenoles y la capacidad cap­tadora de radicales DPPH (<i>r</i><sup>2</sup> = 0,60), ABTS (<i>r</i><sup>2</sup> = 0,69) y antioxidante FRAP (<i>r</i><sup>2</sup> = 0,68), sugiere que entre 60 y 69% de la actividad evaluada para los prop&oacute;leos de Antioquia resulta de la contribuci&oacute;n de los compuestos fen&oacute;licos.</p>     <p>Adicionalmente se aprecia una relaci&oacute;n positiva d&eacute;bil entre la actividad y el contenido de flavonoides. Nieva Moreno <i>et al</i> (47), han reportado que la correlaci&oacute;n entre el contenido de flavonoides y la actividad antioxidante es significativa, pero otros factores est&aacute;n involucrados. Asimismo, Yamauchi (48) describi&oacute; que otros constituyentes diferentes a los flavonoides tambi&eacute;n toman parte en la actividad antioxidante del prop&oacute;leo.</p>     <p> Una mayor correlaci&oacute;n se encontr&oacute; entre la actividad y el contenido de fenoles que cuando se correlacionaron esta actividad y los niveles de flavonoides, lo que sugiere que otros compuestos fen&oacute;licos diferentes a los flavonoides, por ejemplo derivados del &aacute;cido caf&eacute;ico, juegan un papel importante en la actividad antioxidante del prop&oacute;leo recolectado en Antioquia. Sin embargo, es necesario un an&aacute;lisis cualitativo y cuantitativo m&aacute;s detallado de los compuestos con actividad antioxidante para elucidar la actividad antioxidante del prop&oacute;leo.</p>  </font>     <p><b><font size="3" face="Verdana">CONCLUSIONES</font></b></p> <font size="2" face="Verdana">     <p>En el presente trabajo se determin&oacute; el contenido de fenoles y flavonoides totales mediante m&eacute;todos espectrofotom&eacute;tricos, y la actividad antioxidante de prop&oacute;leos provenientes de diversas regiones de Antioquia-Colombia. Se estableci&oacute; que los extractos etan&oacute;licos de los prop&oacute;leos (EEP) provenientes de los municipios de Betania BR, y Caldas CT, exhibieron un mayor contenido de compuestos fen&oacute;licos, los cuales podr&iacute;an estar relacionados con la capacidad antioxidante de los mismos. En BR tambi&eacute;n se detect&oacute; el mayor contenido de flavonoides. Los valores encontrados cumplen con aquellos establecidos por diferentes normatividades t&eacute;cnicas para la fijaci&oacute;n de identidad y calidad de prop&oacute;leos. En general, los prop&oacute;leos con actividad antioxidante FRAP tambi&eacute;n exhibieron la mayor actividad captadora de los radicales DPPH y ABTS; se encontr&oacute; una buena correlaci&oacute;n entre estas actividades y el contenido de fenoles de los extractos. La alta actividad antioxidante de los prop&oacute;leos de Betania y Caldas, su alto contenido de fenoles y su origen natural, los hacen promisorios como aditivos nutricionales para la dieta humana</p> </font>     <p><b><font size="3" face="Verdana">AGRADECIMIENTOS </font></b></p> <font size="2" face="Verdana">     <p>Los autores agradecen el apoyo de la Universidad Nacional de Colombia y de la Direcci&oacute;n Nacional de Investigaci&oacute;n para llevar a cabo esta investigaci&oacute;n.</p> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font size="3" face="Verdana">REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS </font></b></p> <font size="2" face="Verdana">     <!-- ref --><p>1. Burdock GA. Review of the biological properties and toxicity of bee propolis (propolis). Food Chem Toxicol. 1998; 36 (4): 347-363.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0121-4004200900030001300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Marcucci MC. Propolis: chemical composition, biological properties and therapeutic activity. Apidologie. 1995; 26 (2): 83-99.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0121-4004200900030001300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Bankova VS, de Castro SL, Marcucci MC. Propolis: recent advances in chemistry and plant origin. Apidologie. 2000; 31 (1): 3-15.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0121-4004200900030001300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Marcucci MC, Ferreres F, Garc&iacute;a-Viguera C, Bankova VS, de Castro SL, Dantas AP, <i>et al</i>. Phenolic compounds from Brazilian propolis with pharmacological activities. J Ethnopharmacol. 2001; 74 (2): 105-112.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0121-4004200900030001300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Garedew A, Schmolz E, Lamprecht, I. Microbiological and calorimetric investigations on the antimicrobial actions of different propolis extracts: an in vitro approach. Thermochim Acta. 2004; 422 (1-2): 115-124.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0121-4004200900030001300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Kujumgiev A, Tsvetkova I, Serkedjieva Y, Bankova V, Christov R, Popova S. Antibacterial, antifungal and antiviral activity of propolis of different geographic origin. J Ethnopharmacol. 1999; 64 (3): 235-240.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0121-4004200900030001300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Hu F, Hepburn H, Yinghua L, Chen M, Radloff S, Daya S. Effects of ethanol and water extracts of propolis (bee glue) on acute inflammatory animal models. J Ethnopharmacol. 2005; 100 (3): 276-283.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0121-4004200900030001300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Primon de Barros M, Lemos M, Maistro EL, Freire Leitec M, Barreto Sousac JP, Bastos KJ, <i>et al</i>.Evaluation of antiulcer activity of the main phenolic acids found in Brazilian Green Propolis. J Ethnopharmacol. 2008; 120 (3): 372-377.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0121-4004200900030001300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Shimizu K, Ashida H, Matsuura Y, Kanazawa K. Antioxidative bioavailability of artepillin C in Brazilian propolis. Arch Biochem Biophys. 2004; 424 (2): 181-188.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0121-4004200900030001300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. El-Khawaga OA, Salem TA, Elshal MF. Protective role of Egyptian propolis against tumor in mice. Clin Chim Acta. 2003; 338 (1-2): 11-16.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0121-4004200900030001300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Russo A, Longo R, Vanella A. Antioxidant activity of propolis: role of caffeic acid phenethyl ester and galangin. Fitoterapia. 2002; 73 (S1): S1-S29.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0121-4004200900030001300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Banskota AH, Tezuka Y, Kadota S. Recent progress in pharmacological research of propolis. Phytother Res. 2001; 15 (7): 561-571.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0121-4004200900030001300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Matsuda S. Propolis-health care food. Foods and Food Ingredients Journal of Japan. 1994; 160: 64-73.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0121-4004200900030001300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Wollenweber E, Buchmann S. Feral honey bee in the Sonoran Desert: propolis sources other than Poplar (<i>Populus</i> spp.). Z Naturforsch. 1997; 52c (7-8): 530-535.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0121-4004200900030001300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Argentina. Norma IRAM 15935-1 Scheme 1. Buenos Aires: Instituto Argentino de Normalizaci&oacute;n - Subcomit&eacute; de productos agroalimentarios del NOA; 2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0121-4004200900030001300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Cuba. Ministerio de Agricultura. Norma Ramal Cubana: Apicultura NRAG-1135-94 (Prop&oacute;leos Materia Prima), Especificaciones. La Habana: El Ministerio; 1994.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0121-4004200900030001300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Ministerio de Agricultura de Brasil. Regulamentos T&eacute;cnicos Para a Fixação de Identidade e Qualidade de Extrato de Pr&oacute;polis. Revista Mensagem Doce. &#91;Serial en linea&#93; 1999 &#91;citado 2009 agosto 20&#93;; 52 (1). Disponible en: <a href="http://www.apacame.org.br/mensagemdoce/52/msg52.htm" target="_blank">http://www.apacame.org.br/mensagemdoce/52/msg52.htm</a>.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0121-4004200900030001300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Salamanca GG, Ram&iacute;rez C, Rubiano L. Contenido mineral de los prop&oacute;leos colectados en algunas zonas biogeogr&aacute;ficas colombianas. Rev Inst Univ Tecn del Choc&oacute;. 2004; 20 (1): 79-85.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0121-4004200900030001300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Moreno Z, Mart&iacute;nez P, Figueroa J. Efecto antimicrobiano <i>in vitro</i> de prop&oacute;leos argentinos, colombianos y cubano sobre <i>Streptococcus mutans</i> ATCC 25175. Nova. 2007; 5 (7): 70-75.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0121-4004200900030001300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Miyataka H, Nishiki M, Matsumoto H, Fujimoto T, Matsuka M, Satoh T. Evaluation of propolis I. Evaluation of Brazilian and Chinese propolis by enzymatic and physico-chemical methods. Biol Pharm Bull. 1997; 20 (5): 496-501.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0121-4004200900030001300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Singleton VL, Rossi JA. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. Am J Enol Vitic. 1965; 16: 144-158.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0121-4004200900030001300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Kumazawa S, Hamasaka T, Nakayama T. Antioxidant activity of propolis of various geographic origins. Food Chem. 2004; 84 (3): 329-339.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0121-4004200900030001300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Rojano B, Saez J, Schinella G, Quijano J, V&eacute;lez E, Gil A, <i>et al</i>. Experimental and theoretical determination of the antioxidant properties of isoespintanol (2-isopropyl-3,6-dimethoxy-5methylphenol). J Mol Struct. 2008; 877 (1-3): 1-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0121-4004200900030001300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Aubad P, Rojano B, Lobo T. Actividad antioxidante en musgos. Scientia Et Technica. 2007; 13 (033): 23-26.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0121-4004200900030001300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. Benzie IF, Strain JJ. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of "antioxidant power": The FRAP assay. Anal Biochem. 1996; 239 (1): 70-76.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0121-4004200900030001300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. Miyataka H, Nishiki M, Matsumoto H, Fujimoto T, Matsuka M, Isobe T, <i>et al</i>. Evaluation of propolis II: Effects of Brazilian and Chinese propolis on histamine release from rat peritoneal mast cells induced by compound 48/80 and concanavalin A. Biol Pharm Bull. 1998; 21 (7): 723-729.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0121-4004200900030001300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. Torel J, Cillard J, Cillard P. Antioxidant activity of flavonoids and reactivity with peroxy radical. Phytochemistry. 1986; 25 (2): 383-385.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0121-4004200900030001300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. Krol W, Sheller S, Czuba Z, Matsumo T, Zydowicz G, Shani J, <i>et al</i>. Inhibition of neutrophils' chemiluminescence by ethanol extract of propolis (EEP) and its phenolic components. J Ethnopharmacol. 1996; 55 (1): 19-25.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0121-4004200900030001300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29. Bors W, S&eacute;ller W, Michel C, Saran M. Flavonoids as antioxidants: Determination of radical-scavenging efficiencies. Method Enzymol. 1990; 186: 343-355.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0121-4004200900030001300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30. Marquele FD, di Mambro VM, Georgetti SR, Casagrande R, Valim YM, Fonseca MJ. Assessment of the antioxidant activities of Brazilian extracts of propolis alone and in topical pharmaceutical formulations. J Pharmaceut Biomed. 2005; 39 (3-4): 455-462.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0121-4004200900030001300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31. Meneses EA. Caracterizaci&oacute;n qu&iacute;mica y evaluaci&oacute;n de la actividad antif&uacute;ngica del prop&oacute;leos recolectado en el apiario de la Universidad Nacional de Colombia Sede Medell&iacute;n. &#91;Tesis de Maestr&iacute;a&#93;. Colombia: Universidad Nacional de Colombia-Sede Medell&iacute;n; 2006.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0121-4004200900030001300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32. Salamanca G, Correa IL, Principal J. Perfil de flavonoides e &iacute;ndices de oxidaci&oacute;n de algunos prop&oacute;leos colombianos. Zootecnia Tropical. 2007; 25 (2): 95-102.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0121-4004200900030001300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>33. Kumazawa S, Hamasaka T, Nakayama T. Antioxidant activity of propolis of various geographic origins. Food Chem. 2004; 84 (3): 329-339.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0121-4004200900030001300033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>34. Park YK, Alencar SM, Aguiar CL. Botanical origin and chemical composition of Brazilian propolis. J Agric Food Chem. 2002; 50 (9): 2502-2506.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0121-4004200900030001300034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>35. Bankova V, Dyulgerov A, Popov S, Evstatieva L, Kuleva L, Pureb O, <i>et al</i>. Propolis produced in Bulgaria and Mongolia: phenolic compounds and plant origin. Apidologie. 1992; 23 (1): 79-85.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0121-4004200900030001300035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>36. Prior RL, Wu X, Schaich K. Standardized methods for the determination of antioxidant capacity and phenolics in foods and dietary supplements. J Agric Food Chem. 2005; 53 (10): 4290-4302.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0121-4004200900030001300036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>37. Morales G, Sierra P, Paredes A, Loyola L, Borquez J. Constituents of <i>Helenium atacamense</i> Cabr. J Chil Chem Soc. 2006; 51 (1): 769772.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0121-4004200900030001300037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>38. Roginsky V, Lissi EA. Review of methods to determine chainbreaking antioxidant activity in food. Food Chem. 2005; 92 (2): 235-254.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0121-4004200900030001300038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>39. Russo A, Cardile V, S&aacute;nchez F, Troncoso N, Vanella A, Garbarino JA. Chilean propolis: antioxidant activity and antiproliferative action in human tumor cell lines. Life Sci. 2004; 76 (5): 545-558.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0121-4004200900030001300039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>40. Choi YM, Noh DO, Cho SY, Suh HJ, Kim KM, Kim JM. Antioxidant and antimicrobial activities of propolis from several regions of Korea. LWT Food Sci Technol. 2006; 39 (7): 756-761.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0121-4004200900030001300040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>41. Ahn MR, Kumazawa SA, Usui YA, Nakamura J, Matsuka MB, Zhu FC, <i>et al</i>. Antioxidant activity and constituents of propolis collected in various areas of China. Food Chem. 2007; 101(4): 1383-1392.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0121-4004200900030001300041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>42. Pulido R, Bravo L, Saura-Calixto F. Antioxidant activity of dietary polyphenols as determined by a modified ferric reducing/antioxidant power assay. J Agric Food Chem. 2000; 48 (8): 3396-3402.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0121-4004200900030001300042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>43. Kahkonen MP, Hopia AI, Vuorela HJ, Rauha JP, Pihlaja K, Kujala TS, <i>et al</i>. Antioxidant activity of plant extracts containing phenolic compounds. J Agric Food Chem. 1999; 47(10): 3954-3962.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0121-4004200900030001300043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>44. MacDonald-Wicks LK, Wood LG, Garg ML. Methodology for the determination of biological antioxidant capacity in vitro: a review. J Sci Food Agric. 2006; 86(13): 2046-2056.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0121-4004200900030001300044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>45. Asami DK, Hong YJ, Barrett DM, Mitchell AE. Comparison of the total phenolic and ascorbic acid content of freeze-dried and air-dried marion-berry, strawberry, and corn grown using conven-tional, organic, and sustainable agricultural practices. J Agric Food Chem. 2003; 51 (5): 1237-1241.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0121-4004200900030001300045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>46. Odabasoglu F, Aslan A, Cakir A, Suleyman H, Karagoz Y, Bayir Y, <i>et al</i>. Antioxidant activity, reducing power and total phenolic content of some lichen species. Fitoterapia. 2005; 76 (2): 216-219.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0121-4004200900030001300046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>47. Nieva Moreno MI, Isla MI, Sampietro AR, Vattuone MA. 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