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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[EFECTO DE LA HIDRATACIÓN Y LA COCCIÓN EN LAS PROPIEDADES FÍSICAS Y FUNCIONALES DE LA HARINA DE VITABOSA (Mucuna deeringiana)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The effect of soaking and cooking on physical characteristics and functional properties of vitabosa (Mucuna deeringiana) flour is investigated. Oil absorption capacity of vitabosa without treatment is higher than seed with soaking and cooking treatment, 2.12 mL/g and 1.89 mL/g, respectively. The best water absorption capacity is in vitabosa with soaking and cooking treatment and it decreases with the increase of ionic strength ranges of 0.1 - 1 M of NaCl. Emulsifying activity decreases as the concentration of flour in solution increased. Emulsifying activity and emulsifying stability of flours increase in the ionic strength range 0.0 - 0.4 M but reduced afterwards with further increase in NaCl concentration. Vitabosa without treatment and vitabosa with soaking and cooking treatment have low foam capacity, their best results are 10.3% vitabosa without treatment and 6.04% (vitabosa with soaking and cooking treatment) at 0.4 M of NaCl. The highest gelation capacity is at 12% concentration and without sodium chloride. At the same time the increase in ionic strength (0.1 - 1 M NaCl) has an unfavorable effect in the gelation capacity of flours.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>ALIMENTOS: CIENCIA, TECNOLOG&Iacute;A E INGENIER&Iacute;A</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="4">EFECTO DE LA HIDRATACI&Oacute;N Y LA COCCI&Oacute;N   EN LAS PROPIEDADES F&Iacute;SICAS Y FUNCIONALES DE LA HARINA DE VITABOSA (<i><i>Mucuna deeringiana</i></i>)</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"> EFFECT OF HYDRATION AND BAKING ON THE PHYSICAL AND FUNCTIONAL PROPERTIES OF VITABOSA FLOUR (<i><i>Mucuna deeringiana</i></i>)</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Sandra P. CHAPARRO A.<sup>1</sup>, Jes&uacute;s H. GIL G.<sup>2</sup>, Iv&aacute;n D. ARISTIZ&Aacute;BAL T.<sup>2</sup></font></b></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">1 Facultad de Ciencias. Universidad Pedag&oacute;gica y Tecnol&oacute;gica de Colombia. Tunja, Colombia. <a href="mailto:spchaparroa@hotmail.com">spchaparroa@hotmail.com</a>.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 2 Facultad de Ciencias Agropecuarias, Departamento de Ingenier&iacute;a Agr&iacute;cola y de Alimentos, Universidad Nacional de Colombia, sede   Medell&iacute;n, A.A.1779, Medell&iacute;n, Colombia. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Recibido: Febrero 15 de 2010;  Aceptado: Julio 18 de 2011</font></p>     <p>&nbsp;</p> <hr noshade size="1">     <p><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> RESUMEN</font></b></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En el presente trabajo se establece el efecto de la hidrataci&oacute;n y la cocci&oacute;n sobre las caracter&iacute;sticas f&iacute;sicas y   funcionales de la harina de vitabosa (<i><i>Mucuna deeringiana</i></i>). La capacidad de absorci&oacute;n de aceite es superior   en la vitabosa sin tratamiento que en la sometida a hidrataci&oacute;n y cocci&oacute;n (vitabosa sometida a hidrataci&oacute;n   y cocci&oacute;n), 2,12 mL/g y 1,89 mL/g respectivamente. La mayor capacidad de absorci&oacute;n de agua se da en la   vitabosa sometida a hidrataci&oacute;n y cocci&oacute;n y disminuye con el incremento de la fuerza i&oacute;nica en el rango   de 0,1-1 M de NaCl. La capacidad emulsificante se reduce con el aumento de la concentraci&oacute;n de las   harinas. Adem&aacute;s, la actividad y la estabilidad emulsificantes se incrementan en un rango de fuerza i&oacute;nica de   0,0 - 0,4 M, pero disminuyen con el aumento de las concentraciones de sal. Ambas harinas tienen capacidades   espumantes bajas, alcanzando valores m&aacute;ximos en concentraciones 0,4 M de NaCl de 10,3% vitabosa sin   tratar y 6,04% (vitabosa sometida a hidrataci&oacute;n y cocci&oacute;n). La mejor capacidad de gelificaci&oacute;n se observa a   una concentraci&oacute;n del 12% y en ausencia de cloruro de sodio, en tanto que el incremento de la fuerza i&oacute;nica  (0,1-1 M NaCl) tiene un efecto desfavorable en la capacidad de gelificaci&oacute;n de ambas harinas.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Palabras clave</b>: semillas, propiedades funcionales, caracter&iacute;sticas f&iacute;sicas, fuerza i&oacute;nica. </font></p> <hr noshade size="1">     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>ABSTRACT</b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> The effect of soaking and cooking on physical characteristics and functional properties of vitabosa (<i>Mucuna   deeringiana</i>) flour is investigated. Oil absorption capacity of vitabosa without treatment is higher than seed with   soaking and cooking treatment, 2.12 mL/g and 1.89 mL/g, respectively. The best water absorption capacity   is in vitabosa with soaking and cooking treatment and it decreases with the increase of ionic strength ranges   of 0.1 - 1 M of NaCl. Emulsifying activity decreases as the concentration of flour in solution increased.   Emulsifying activity and emulsifying stability of flours increase in the ionic strength range 0.0 - 0.4 M but   reduced afterwards with further increase in NaCl concentration. Vitabosa without treatment and vitabosa   with soaking and cooking treatment have low foam capacity, their best results are 10.3% vitabosa without   treatment and 6.04% (vitabosa with soaking and cooking treatment) at 0.4 M of NaCl. The highest gelation   capacity is at 12% concentration and without sodium chloride. At the same time the increase in ionic strength (0.1 - 1 M NaCl) has an unfavorable effect in the gelation capacity of flours.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Keywords</b>: Seeds, functional properties, physical characteristics, ionic strength.</font></p> <hr noshade size="1">     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Las semillas de las leguminosas (<i>Leguminosae</i>)   est&aacute;n ampliamente distribuidas por el mundo. Por   su alto contenido de prote&iacute;na (20-50%) tienen gran   importancia en la alimentaci&oacute;n humana y animal (1).   La <i>Mucuna deeringiana</i>, conocida tambi&eacute;n como vitabosa,   <i>Stizolobium deeringianum</i> o <i>Mucuna enana</i> es una   planta originaria de la India y crece abundantemente   en Asia, &Aacute;frica y algunas regiones de Centroam&eacute;rica.   Esta semilla, de la familia del fr&iacute;jol, es conocida por   su gran capacidad de producir follaje de corte o abono   verde, eliminar malezas, controlar la erosi&oacute;n y mejorar   los suelos (2) y, al igual que otras leguminosas,   es una fuente de prote&iacute;nas, grasas, carbohidratos   y minerales (3-5). Sin embargo, la digestibilidad y   la utilizaci&oacute;n de la prote&iacute;na de estas semillas est&aacute;n   limitadas por la estructura de la prote&iacute;na y por la   presencia de algunos factores antinutricionales como   L-Dopa, fenoles, taninos, inhibidores de tripsina, fitatos y lectinas, entre otros (6).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Tradicionalmente, los kanikkars, una tribu del   sur de la India, consumen semillas de <i>M. pruriens</i>  maduras luego de haberlas sometido a un tratamiento   repetido de cocci&oacute;n (7), y ciertas preparaciones   con esta semilla como ''ragout'', ''porridge'' y caf&eacute;   forman parte de la tradici&oacute;n en algunos lugares de   Sri Lanka (8). Sin embargo, el procesamiento de la   <i>Mucuna</i> para consumo humano es a&uacute;n muy lento   (9), por lo cual prosiguen los esfuerzos para encontrar   m&eacute;todos m&aacute;s sencillos y eficaces. En un estudio   previo de nuestro grupo de trabajo, se mostr&oacute; que el   proceso de hidrataci&oacute;n reduce los niveles de antinutrientes   de las leguminosas debido a su solubilidad   en el agua (10). Tambi&eacute;n los niveles de inhibidores   de tripsina, taninos, &aacute;cido f&iacute;tico y saponinas en   fr&iacute;joles rojos se ven afectados por la hidrataci&oacute;n   en agua destilada (11). La cocci&oacute;n reduce, inactiva   y/o destruye los factores antinutricionales de origen   prote&iacute;nico (inhibidores de tripsina, lectinas) y   saponinas a niveles indetectables; adem&aacute;s, mejora la   digestibilidad de las prote&iacute;nas en las leguminosas,   aunque podr&iacute;a reducir la calidad de la prote&iacute;na por   p&eacute;rdida de algunos amino&aacute;cidos esenciales (12).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Recientemente ha crecido el inter&eacute;s por encontrar   fuentes de prote&iacute;na vegetal de bajo costo para   suplementar la dieta en humanos. No obstante, para   una utilizaci&oacute;n eficiente y la aceptaci&oacute;n por parte del   consumidor de harinas proteicas se hace necesario   estudiar sus propiedades funcionales. Generalmente,   las prote&iacute;nas vegetales requieren un procesamiento   para obtener un material alimenticio con propiedades   funcionales aceptables, como la capacidad de absorci&oacute;n   de agua y de aceite, la capacidad espumante,   emulsificante y de gelificaci&oacute; n (13). Estas propiedades   se atribuyen principalmente a las caracter&iacute;sticas de las   prote&iacute;nas y la concentraci&oacute;n de algunos ingredientes   (sal, &aacute;cidos) en la formulaci&oacute;n. El desempe&ntilde;o exitoso   de las harinas de las leguminosas como ingredientes   alimentarios depende de las caracter&iacute;sticas funcionales,   que afectan las cualidades sensoriales del alimento   y el comportamiento f&iacute;sico del producto o sus   ingredientes durante su preparaci&oacute;n, procesamiento   y almacenamiento. En el presente art&iacute;culo se reporta   el efecto del proceso de la hidrataci&oacute;n y la cocci&oacute;n   sobre las propiedades funcionales de la harina de la   semilla de vitabosa (<i>Mucuna deeringiana</i>).</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"> <b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Material vegetal</b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Se utilizaron semillas de vitabosa (Mucuna   deeringiana) provenientes del Centro Agropecuario   Cotov&eacute;, de la Universidad Nacional de Colombia,   ubicado en Santa Fe de Antioquia (Colombia),   6&ordm;33'32'' de latitud norte y 1&ordm;44'43'' de longitud   oeste (bosque seco tropical, 550 msnm, 27,3&ordm;C de   temperatura promedio, 55,4% de humedad relativa   y 1919,3 mil&iacute;metros de precipitaci&oacute;n promedio,   suelo de origen aluvial proveniente de calizas y arcillas   calc&aacute;reas). La leguminosa se recolect&oacute; cuatro   meses despu&eacute;s de la floraci&oacute;n, cuando los granos se   desarrollaron por completo en la vaina, de tal modo   que se pudo desgranar f&aacute;cilmente. El contenido   promedio de prote&iacute;na y fibra cruda en los granos   fue 29,23 &plusmn; 0,46% y 7,32 &plusmn; 0,03%, respectivamente.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Propiedades f&iacute;sicas de las semillas</b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Las propiedades f&iacute;sicas se determinaron mediante   los m&eacute;todos usados por Adebowale <i>et al.</i>, 2005   (3). Peso: se tom&oacute; un grano y se registr&oacute; su peso (P)   en gramos en una balanza anal&iacute;tica. Se hicieron 100   mediciones. Densidad absoluta: se pesaron 100 g de   semilla y se transfirieron a una probeta de 200 mL,   donde se adicionaron 100 mL de agua destilada. Las   semillas fueron puestas en el agua para que se sumergieran   y se determin&oacute; el volumen desplazado. La   densidad (g/mL) se determin&oacute; a partir de la relaci&oacute;n   de la masa de las semillas y el volumen desplazado.   Capacidad de hidrataci&oacute;n: 100 g de semillas (<i>PS</i>)   fueron contadas (<i>NS</i>) y transferidas a una probeta      que conten&iacute;a 100 mL de agua destilada. Este recipiente   fue recubierto con una hoja de aluminio   y se dej&oacute; reposar durante 15 horas a temperatura   ambiente (25 &plusmn; 2&deg;C). Luego, el l&iacute;quido fue drenado,   el agua superficial se elimin&oacute; con papel filtro y las   semillas hidratadas se separaron y pesaron (<i>PSH</i>).   La capacidad de hidrataci&oacute;n (<i>CHD</i>) se calcul&oacute; con   la ecuaci&oacute;n 1:</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><img src="img/revistas/vitae/v18n2/v18n2a04e1.jpg"></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El &iacute;ndice de hidrataci&oacute;n (<i>IHD</i>), definido como   (g agua/g semilla) se calcul&oacute; con la ecuaci&oacute;n 2:</font></p>     <p><img src="img/revistas/vitae/v18n2/v18n2a04e2.jpg"></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Capacidad de hinchamiento (mL agua/semilla):   100 g de semillas fueron contadas (<i>NS</i>) y su volumen   registrado (<i>VS</i>). Se dejaron en agua destilada   durante 15 horas y luego su volumen fue medido en   una probeta (<i>VSH</i>). La capacidad de hinchamiento   por semilla se determin&oacute; usando la ecuaci&oacute;n 3.</font></p>     <p><img src="img/revistas/vitae/v18n2/v18n2a04e3.jpg"></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El &iacute;ndice de hinchamiento (<i>IHM</i>), definido como   (mL agua/mL semilla) se calcul&oacute; con la ecuaci&oacute;n 4,   en la que <i>V</i> es el volumen de una semilla (mL).</font></p>     <p><img src="img/revistas/vitae/v18n2/v18n2a04e4.jpg"></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Humedad: Para determinar la humedad de las   semillas se utiliz&oacute; el m&eacute;todo oficial 945.09 B (14).   En este an&aacute;lisis se tar&oacute; la c&aacute;psula de porcelana a   105&ordm;C durante una hora y se coloc&oacute; en el desecador   hasta peso constante. Luego se pesaron 5 g de   las semillas y se pusieron en una estufa (Dies,   Thermolab<sup>&reg;</sup> TH240) a 105&ordm;C durante dos horas.   Se retiraron de la estufa, se llevaron al desecador   hasta peso constante y se registr&oacute; el peso final. El   porcentaje de humedad se calcul&oacute; en base h&uacute;meda.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Propiedades funcionales de las harinas</b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <i>Obtenci&oacute;n de las harinas</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Para la preparaci&oacute;n de las harinas de vitabosa   sin tratamiento (VST) se tomaron 2 kg de semillas   limpias y de tama&ntilde;o similar y se secaron durante   48 horas a una temperatura media de 50&deg;C. La harina   de vitabosa sometida a tratamiento (VHYC)   se elabor&oacute; tomando semillas limpias y de tama&ntilde;o   similar e hidrat&aacute;ndolas en agua potable (1:10 g/100   mL) a 25 &plusmn; 2&deg;C durante 24 horas. Se descart&oacute; el   agua y las semillas se sometieron a cocci&oacute;n durante   60 minutos en un recipiente abierto con agua destilada   (100&deg;C), en proporci&oacute;n de 1:10 g/100 mL.   Luego se lavaron y secaron a 55&deg;C durante 48 horas.   Finalmente, se redujo el tama&ntilde;o de part&iacute;cula de   ambas harinas hasta 0,5 mm mediante un molino de   martillos; las harinas obtenidas se almacenaron en   bolsas pl&aacute;sticas con cierre herm&eacute;tico a temperatura   ambiente (25&deg;C) para su posterior an&aacute;lisis.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <i>Capacidad de absorci&oacute;n de agua y aceite</i></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Se emple&oacute; el m&eacute;todo de Beuchat, 1977 (15) para   la determinaci&oacute;n de la capacidad de absorci&oacute;n de   agua y aceite. Se tom&oacute; 1 g de harina y se mezcl&oacute;   con 10 mL de agua destilada durante 30 segundos.   Las muestras se dejaron en reposo durante 30 minutos   a temperatura ambiente (25 &plusmn; 2&deg;C). Luego,   se centrifugaron (MRC, LCEN-101) a 3000 rpm   durante 30 minutos y se midi&oacute; el volumen del   sobrenadante obtenido en una probeta de 10 mL.   Los resultados se obtuvieron restando los 10 mL   iniciales de agua el volumen despu&eacute;s de la centrifugaci&oacute;n   y se report&oacute; la capacidad de absorci&oacute;n de   agua en mL/g de muestra. Con el mismo procedimiento   se determin&oacute; la capacidad de absorci&oacute;n   de aceite. Tambi&eacute;n se evalu&oacute; el efecto de la fuerza   i&oacute;nica sobre la capacidad de absorci&oacute;n de agua de   las harinas, variando la concentraci&oacute;n de los iones   existentes en el medio mediante soluciones de NaCl   en siete concentraciones diferentes (0 a 1,0 M). Las   mediciones se practicaron por triplicado.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <i>Propiedades emulsificantes</i></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La actividad y la estabilidad emulsificantes se determinaron   por el m&eacute;todo de Neto <i>et al.</i>, 2001 (16). Se   tomaron 5 mL de una dispersi&oacute;n de harina en agua   destilada (10 mg/mL) y se homogenizaron con 5 mL   de aceite durante 1 minuto. Las emulsiones fueron   centrifugadas a 1100 rpm durante 5 minutos. Se midi&oacute;   la altura (cm) de la capa emulsificada (ACE) y del   contenido total del tubo (<i>ACT</i>). La capacidad emulsificante   (<i>CEM</i>) se calcul&oacute; mediante la ecuaci&oacute;n 5.</font></p>     <p><img src="img/revistas/vitae/v18n2/v18n2a04e5.jpg"></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">  La estabilidad de la emulsi&oacute;n (<i>EEM</i>) fue determinada   con base en el calentamiento a 80&deg;C durante   30 minutos antes de centrifugar a 1100 rpm por 5   minutos, para obtener los resultados. Donde <i>ACEC</i>  = altura de la capa emulsificada luego del calentamiento   (cm), y <i>ACTC</i> = altura del contenido total   del tubo luego del calentamiento (cm) se utiliz&oacute; la   ecuaci&oacute;n 6.</font></p>     <p><img src="img/revistas/vitae/v18n2/v18n2a04e6.jpg"></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Para los dos tratamientos, ambas propiedades   (<i>CEM</i> y <i>EEM</i>) fueron evaluadas en diferentes   concentraciones (2 - 10% p/v) de la harina. Adicionalmente,   se evalu&oacute; el efecto de la fuerza i&oacute;nica   sobre la capacidad y la estabilidad emulsificantes   de las harinas, variando la concentraci&oacute;n del medio   con soluciones de NaCl entre 0,1 - 1,0 M. Las   mediciones se practicaron por triplicado.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <i>Propiedades espumantes</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El m&eacute;todo de Coffman y Garc&iacute;a, 1977 (17) fue   el escogido para la determinaci&oacute;n de la capacidad y   la estabilidad espumante de las harinas analizadas.   Una cantidad de 10 g de harina se dispers&oacute; en 100   mL de agua destilada y esta suspensi&oacute;n se bati&oacute;   fuertemente durante 2 minutos en una licuadora   (Black &amp; Decker<sup>&reg;</sup>, modelo BI M6350P<sup>&reg;</sup>) a velocidad   constante. Se registraron los vol&uacute;menes (mL)   antes (<i>V</i><sub>1</sub>) y despu&eacute;s (<i>V</i><sub>2</sub>) del mezclado. La capacidad   espumante (CES) fue calculada de acuerdo con la   ecuaci&oacute;n 7.</font></p>     <p><img src="img/revistas/vitae/v18n2/v18n2a04e7.jpg"></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La estabilidad espumante (EES) fue determinada   como el volumen de la espuma que permaneci&oacute;   luego de 8 horas de reposo y se expres&oacute; como un   porcentaje del volumen inicial de espuma. Asimismo,   se evalu&oacute; el efecto de la concentraci&oacute;n de   harina sobre las propiedades espumantes (CES y   EES), utilizando concentraciones del 2 al 10 p/v en   la dispersi&oacute;n. Tambi&eacute;n se estim&oacute; la influencia de la   fuerza i&oacute;nica sobre la CES y EES dispersando 2 g   de harina en 100 mL de soluciones de NaCl entre   0,1 y 1,0 M y mezclando fuertemente. Todas las   mediciones se practicaron por triplicado.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <i>Capacidad gelificante</i></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La capacidad gelificante (CG) se determin&oacute;   con el m&eacute;todo de Coffman y Garc&iacute;a, 1977 (17).   Se prepararon suspensiones de las harinas del 2 al   20% p/v en agua destilada. Se tomaron 10 mL de   cada dispersi&oacute;n en tubos de ensayo y se sometieron   a calentamiento durante 1 hora en un ba&ntilde;o de agua   en ebullici&oacute;n. Posteriormente, los tubos fueron   templados con agua fr&iacute;a y enfriados a 4&deg;C durante 2   horas. La capacidad gelificante corresponde a la m&iacute;nima   concentraci&oacute;n donde se present&oacute; gelificaci&oacute;n   de la mezcla, es decir, cuando el tubo se invirti&oacute; y su   contenido no se verti&oacute;. Tambi&eacute;n se evalu&oacute; el efecto   de la fuerza i&oacute;nica de harina sobre la capacidad gelificante   utilizando concentraciones del 12 al 20% p/v   de la dispersi&oacute;n y soluciones de NaCl entre 0,1 y 1,0   M. Para el control (fuerza i&oacute;nica cero) se utilizaron   las mismas concentraciones de harina pero usando   agua destilada en lugar de las soluciones de cloruro   de sodio. La m&iacute;nima concentraci&oacute;n de gelificaci&oacute;n   se determin&oacute; como ya se explic&oacute;.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Todas las determinaciones de las caracter&iacute;sticas   fisicoqu&iacute;micas y las propiedades funcionales se   obtuvieron por triplicado. Las diferencias significativas   entre las medias de las propiedades f&iacute;sicas se   calcularon mediante el an&aacute;lisis de varianza de una   v&iacute;a; las diferencias entre las medias de las propiedades   funcionales se definieron mediante an&aacute;lisis   de varianza de dos v&iacute;as, y la prueba de comparaci&oacute;n   m&uacute;ltiple (diferencia m&iacute;nima significativa de Fisher),   con un nivel de significancia del 5%. Se utiliz&oacute; el   programa estad&iacute;stico Statgraphics<sup>&reg;</sup> Plus 5.1.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"> <b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Propiedades f&iacute;sicas</font></b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En la <a href="#t1">tabla 1</a> se presentan las propiedades f&iacute;sicas   y la humedad de las semillas de vitabosa sin tratamiento   (VST) y procesadas mediante hidrataci&oacute;n   y cocci&oacute;n (VHYC).</font></p>       <p align="center"><a name="t1"></a><img src="img/revistas/vitae/v18n2/v18n2a04t1.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">  El an&aacute;lisis estad&iacute;stico indic&oacute; una diferencia significativa   entre el peso de las semillas control y el de   las sometidas a tratamiento. La VST registr&oacute; un peso   promedio del grano mayor que la VHYC debido,   posiblemente, a la p&eacute;rdida de algunos componentes   durante el tratamiento. Seg&uacute;n Adebowaleb <i>et al.</i>,   2005 (3), los pesos promedio de algunas especies de   <i>Mucuna</i> son: <i>M. pruriens</i>, 0,92 g, <i>M. conchinchinensis</i>,   0,98 g, y<i> M. veracruz</i>, 0,86 g, similares a los obtenidos   en este estudio.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En cuanto a la densidad, el an&aacute;lisis de varianza   identific&oacute; diferencias significativas en esta caracter&iacute;stica   entre las semillas con y sin tratamiento. Los   valores obtenidos son m&aacute;s bajos que los obtenidos   en <i>M. rajada</i> (0,65 g/mL), <i>M. pruriens</i> (0,89 g/mL), <i>M.   cochinchnensis</i> (0,95 g/mL), y <i>M. veracruz</i> (0,82 g/mL)   (3), pero superiores a los encontrados en <i>Pisum</i> <i>sativum</i>  (0,55 g/mL), <i>Cajanus cajan</i> (0,46 g/mL) (18), <i>Cicer   arietinum</i> (0,53 - 0,57g/mL) (19) y en otras leguminosas   (20).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> No se registraron diferencias significativas en la   capacidad de hidrataci&oacute;n de las semillas con y sin   tratamiento. Los valores obtenidos son m&aacute;s altos   que los hallados para otras especies, como el guisante   verde (0,24 g/semilla), el guisante de campo   (0,15 g/semilla) y el guisante de mar (0,005 g/semilla)   (20). La <i>M. deeringiana</i> sometida a tratamiento marc&oacute;   un &iacute;ndice de hidrataci&oacute;n y una capacidad de hinchamiento   mayores que la VST. Estos resultados son   superiores a los reportados para <i>Canavalia cathartica</i>  (0,15 mL/semilla) y <i>C. mar&iacute;tima</i> (0,05 mL/semilla)   (21). Por el contrario, el &iacute;ndice de hinchamiento fue   mayor en la vitabosa sin tratamiento. Estas caracter&iacute;sticas   nos dan un indicio de la dureza relativa y la   impermeabilidad de la semilla.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La VST present&oacute; un porcentaje de humedad   alto (12,87%), superior a los reportados para otras   leguminosas como <i>Cassia floribunda</i>, 6,0% (22);   <i>Lathyrus martimus</i>, 9,7% (20); lupino, 6,6% (23) y   <i>Vigna unguiculata</i>, 8,9% (24). Esto indica que la <i>M.   deeringiana</i> sin tratamiento requerir&aacute; un menor   tiempo de germinaci&oacute;n, hidrataci&oacute;n o cocci&oacute;n, lo   que puede constituir un factor favorable para su   procesamiento (25), o desfavorable, por la reducci&oacute;n   de su vida &uacute;til. La semilla sometida a hidrataci&oacute;n,   cocci&oacute;n y posterior secado controlado a 50&deg;C por   48 horas registr&oacute; un porcentaje de humedad bajo   (5,3%), que representa una ventaja en relaci&oacute;n con   la estabilidad de la semilla. En s&iacute;ntesis, la hidrataci&oacute;n   y la cocci&oacute;n influyeron positivamente en las   caracter&iacute;sticas f&iacute;sicas de la vitabosa.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Propiedades funcionales</b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <i>Capacidad de absorci&oacute;n de agua y aceite</i></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En la <a href="#t2">tabla 2</a> se puede observar que la mayor   absorci&oacute;n de aceite se dio en VST (2,12 mL/g). Estos   resultados sugieren que el tratamiento de hidrataci&oacute;n   y cocci&oacute;n disminuy&oacute; la capacidad de absorci&oacute;n   de aceite de la harina debido, posiblemente, a una   reducci&oacute;n de las interacciones hidrof&oacute;bicas superficiales   de las prote&iacute;nas ocasionada por el proceso   t&eacute;rmico. Los valores obtenidos son m&aacute;s altos que los   reportados por Adebowale y Lawal, 2004 (13) para   harina de <i>M. pruriens</i> (1,70 mL/g). En comparaci&oacute;n   con otras leguminosas, estos resultados son mayores   que los obtenidos por harinas de <i>Cicer arietinum</i>  (1,33 - 1,47 mL/g) (19), y <i>Glycine max</i> (1,24 mL/g)   (26). Kaur <i>et al.</i>, 2007 (18) informan sobre una capacidad   de absorci&oacute;n de aceite de 1,06 - 1,17 g/g para   <i>Pisum sativum</i> y de 0,96 - 0,98 g/g para <i>Cajanus cajan.</i></font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="t2"></a><img src="img/revistas/vitae/v18n2/v18n2a04t2.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">  Algunos factores intr&iacute;nsecos afectan la capacidad   de retenci&oacute;n de aceite incluyendo la composici&oacute;n   de amino&aacute;cidos, la conformaci&oacute;n de la prote&iacute;na y   la relaci&oacute;n polaridad/hidrofobicidad de la superficie   proteica (27). Las diferencias en la capacidad   de retenci&oacute;n de aceite por parte de las prote&iacute;nas   hidratadas dependen del n&uacute;mero de regiones hidrof&oacute;bicas   disponibles en la superficie proteica, y &eacute;stas   podr&iacute;an variar por efecto del proceso t&eacute;rmico, por   cambios conformacionales o por una desnaturalizaci&oacute;n   irreversible de la prote&iacute;na. Las harinas son   potencialmente &uacute;tiles en la interacci&oacute;n estructural   de los alimentos, especialmente en la retenci&oacute;n   del sabor, el mejoramiento de la palatibilidad y el   aumento de la vida &uacute;til en productos de panader&iacute;a   o derivados c&aacute;rnicos, donde la absorci&oacute;n de grasa   es deseable (28, 29).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La capacidad de absorci&oacute;n de agua fue mayor   en la vitabosa con tratamiento (VHYC) que en la   VST, como se puede observar en la <a href="#f1">figura 1</a>. Estos   valores son m&aacute;s bajos que los reportados para <i>Gevuina   avellana</i> (4,50 mL agua/g muestra) (30). Esta   capacidad depende principalmente de la prote&iacute;na y   de algunos de sus par&aacute;metros, como tama&ntilde;o, forma,   factores est&eacute;ricos y balance hidrof&iacute;lico-hidrof&oacute;bico   de los amino&aacute;cidos en las mol&eacute;culas, como tambi&eacute;n   de los l&iacute;pidos y carbohidratos.</font></p>       <p align="center"><a name="f1"></a><img src="img/revistas/vitae/v18n2/v18n2a04f1.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">  La cocci&oacute;n de la vitabosa pudo ocasionar una   desnaturalizaci&oacute;n parcial de la prote&iacute;na, afectando   sus propiedades fisicoqu&iacute;micas y funcionales. Los   cambios conformacionales pueden incrementar   aproximadamente un 10% la capacidad de absorci&oacute;n   de agua de la prote&iacute;na desnaturalizada, en comparaci&oacute;n   con la prote&iacute;na nativa, debido al aumento   del cociente &aacute;rea superficial/masa, producto de la   exposici&oacute;n de algunos grupos hidr&oacute;fobos previamente   enterrados (28). Este hecho se evidenci&oacute; en   los resultados obtenidos para la absorci&oacute;n de agua   y de aceite en la vitabosa sometida a hidrataci&oacute;n y   cocci&oacute;n. De manera similar, Yusuf <i>et al.</i>, 2008 (31)   observaron que el tratamiento t&eacute;rmico aplicado a   semillas de s&eacute;samo y man&iacute; increment&oacute; su capacidad   de retenci&oacute;n de agua.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El an&aacute;lisis estad&iacute;stico se&ntilde;al&oacute; una diferencia   significativa entre las harinas, la fuerza i&oacute;nica y   sus interacciones. En la <a href="#f1">figura 1</a> se observa una   disminuci&oacute;n de la capacidad de absorci&oacute;n de agua   en ambas harinas, con el incremento de la fuerza   i&oacute;nica. De acuerdo con Moure <i>et al.</i>, 2002 (30) la   adici&oacute;n de sales afecta las propiedades nutricionales   y funcionales de los productos que contienen gran   cantidad de prote&iacute;na (30). Los resultados sugieren   que la harina VHYC podr&iacute;a ser utilizada con buenos   resultados en la preparaci&oacute;n de embutidos como   salchichas, natillas y masas, ya que estas propiedades   permitir&iacute;an adicionar m&aacute;s agua a las masas,   as&iacute; como mejorar las caracter&iacute;sticas de manejo y   mantenimiento de la frescura del pan. Tambi&eacute;n se   podr&iacute;a usar en formulaciones alimenticias como   productos infantiles, mezclas en polvo y aderezos.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <i>Propiedades emulsificantes</i></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En las <a href="#f2">figuras 2</a> y <a href="#f3">3</a> se puede observar que la capacidad   CEM y la estabilidad emulsificante EEM de   las harinas dependen de la concentraci&oacute;n de harina.</font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f2"></a><img src="img/revistas/vitae/v18n2/v18n2a04f2.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><a name="f3"></a><img src="img/revistas/vitae/v18n2/v18n2a04f3.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El an&aacute;lisis de varianza mostr&oacute; diferencias significativas   de la CEM entre harinas. Tanto la VST   como la VHYC registraron la mejor capacidad   emulsificante a una concentraci&oacute;n del 4%; estos   valores son m&aacute;s bajos que los reportados para <i>Brassica   carinata</i> (75,6%) (32), <i>Sesamum indicum</i> (83,0%) y<i> Vigna subterranean</i> (78,5%) (31), pero similares a los   encontrados en sorgo (49%) (33). Se observ&oacute; que la   capacidad emulsificante disminuye a medida que   la concentraci&oacute;n aumenta por encima del 4%. Este   hecho concuerda con el informe de Adebowale y   Lawal, 2004 (13) sobre semillas de cacahuete, fr&iacute;jol com&uacute;n y fr&iacute;jol terciopelo.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La semilla sometida a hidrataci&oacute;n y cocci&oacute;n   demostr&oacute;, para las concentraciones de 6, 8 y 10%,   la menor capacidad emulsificante debido, posiblemente,   a los cambios que sufren la estructura y la   composici&oacute;n de la prote&iacute;na luego de ser tratada la   semilla. El papel de la concentraci&oacute;n en la actividad   emulsificante se ha explicado con base en la cin&eacute;tica   de absorci&oacute;n. Cuando el nivel de prote&iacute;na es bajo,   la tasa de absorci&oacute;n est&aacute; controlada por la difusi&oacute;n,   pero a concentraciones altas de prote&iacute;na, hay una   activaci&oacute;n de la barrera de absorci&oacute;n. En estas condiciones,   la habilidad de la prote&iacute;na para crear un   espacio en la pel&iacute;cula existente, penetrar y reordenar   la superficie est&aacute; determinada por esta tasa (34).   El despliegue de las prote&iacute;nas en la interfase agua/   aceite juega un papel importante en la capacidad y   estabilidad emulsificante debido al aumento de la   hidrofobicidad (35).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El an&aacute;lisis estad&iacute;stico revel&oacute; diferencias significativas   de la <i>EEM</i> entre harinas. La <i>EEM</i> de las   harinas aumenta progresivamente a medida que   se incrementa la concentraci&oacute;n hasta un 6%, valor   a partir del cual se observa una declinaci&oacute;n. Las   harinas sin tratamiento presentaron la mejor <i>EEM</i>  (44%) a una concentraci&oacute;n de 6%. Estos datos son similares   a los obtenidos para <i>Brassica carinata</i> (49,4%)   (32), y m&aacute;s bajos que los reportados para <i>Macadamia</i>  (53 - 54%) (36) y sorgo (47,2 - 52,1%) (33). La menor   <i>EEM</i> (30%) se dio en la vitabosa sometida a hidrataci&oacute;n   y cocci&oacute;n a una concentraci&oacute;n del 10%. La   <i>EEM</i> aumenta hasta 6% y luego disminuye debido,   posiblemente, a que la prote&iacute;na absorbe agua, se   despliega y se reordena en la interfase, pero hasta   cierto nivel de saturaci&oacute;n (37).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En las <a href="#f4">figuras 4</a> y <a href="#f5">5</a> se puede observar que la presencia   de sal es un factor importante en la actividad   y estabilidad de las emulsiones.</font></p>       <p align="center"><a name="f4"></a><img src="img/revistas/vitae/v18n2/v18n2a04f4.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f5"></a><img src="img/revistas/vitae/v18n2/v18n2a04f5.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El an&aacute;lisis estad&iacute;stico demostr&oacute; un efecto significativo   entre las harinas y los niveles de fuerza   i&oacute;nica, pero no en sus interacciones (p &lt; 0,05). La   capacidad emulsificante var&iacute;a progresivamente,   alcanzando un valor m&aacute;ximo (VHYV &gt; VST)   a concentraciones i&oacute;nicas de 0,4 M; incrementos   adicionales de sal provocaron un descenso en esta   propiedad. La consecuencia del NaCl en la <i>CEM</i>  puede obedecer a los efectos causados por la absorci&oacute;n   de la prote&iacute;na en la interfase aceite/agua.   Algunos autores han reportado la influencia de la   fuerza i&oacute;nica en las propiedades emulsificantes en prote&iacute;na de fr&iacute;jol caup&iacute; (38) y fr&iacute;jol de playa (20).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La <i>EEM</i>, al igual que la <i>CEM</i>, es afectada por   la fuerza i&oacute;nica del medio, alcanzando valores   m&aacute;ximos a concentraciones de 0,2 (VST) y 0,4 M   (VHYC) de NaCl. La sal puede afectar las propiedades   emulsificantes por dos mecanismos: a) el   NaCl puede reducir la repulsi&oacute;n electrost&aacute;tica entre   las gotas de la emulsi&oacute;n y b) los electrolitos, en altas   concentraciones, pueden alterar la organizaci&oacute;n estructural   de las mol&eacute;culas de agua, lo que perturba   la resistencia de las interacciones hidrof&oacute;bicas entre   los grupos no polares (39). Con el incremento inicial   de la fuerza i&oacute;nica hasta 0,4 M se realza la formaci&oacute;n   de pel&iacute;culas cargadas alrededor de los gl&oacute;bulos de   grasa, lo que ocasiona repulsi&oacute;n mutua. Adem&aacute;s, a   bajos niveles de fuerza i&oacute;nica se podr&iacute;a formar una   capa hidratada alrededor del material interfacial,   que ocasiona disminuci&oacute;n de la energ&iacute;a interfacial   y retarda la coalescencia. A fuerzas i&oacute;nicas altas   (0,6 - 1,0 M) disminuye el despliegue de la prote&iacute;na   lo que limita, probablemente, la absorci&oacute;n de la   prote&iacute;na en la interfase aceite/agua. Por sus buenas   propiedades emulsificantes, estas harinas podr&iacute;an   ser &uacute;tiles en formulaciones alimenticias tipo leche   y an&aacute;logos de la carne.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <i>Propiedades espumantes</i></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En la <a href="img/revistas/vitae/v18n2/v18n2a04t3.jpg" target="_blank">tabla 3</a> se presenta el efecto de la concentraci&oacute;n   sobre la capacidad espumante (<i>CES</i>) de las   harinas. El an&aacute;lisis estad&iacute;stico mostr&oacute; diferencias   significativas entre las concentraciones y la interacci&oacute;n   concentraci&oacute;n-harina. Para la VST, la CES   acrecent&oacute; paulatinamente con el incremento de la   concentraci&oacute;n hasta un m&aacute;ximo del 15% en una   soluci&oacute;n al 8% (p/v). A su vez, la muestra sometida   a hidrataci&oacute;n y cocci&oacute;n, obtuvo el valor m&aacute;s alto   (10%) a una concentraci&oacute;n del 6% (p/v); posteriormente,   disminuy&oacute; a un valor m&iacute;nimo de 5,6% en   una soluci&oacute;n al 10% (p/v).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Este resultado contradice los de Rahma y   Mustafa, 1988 (40) en cernido de man&iacute; sometido   a tratamiento t&eacute;rmico, donde la disminuci&oacute;n de la   capacidad espumante es ocasionada, seg&uacute;n afirman   estos autores, por la desnaturalizaci&oacute;n de la prote&iacute;na.   Los valores obtenidos en este estudio son menores   que los reportados para <i>Sesamum indicum</i> (82%),   <i>Vigna subterranean</i> (70%) (31), concentrados proteicos   de man&iacute; (20 - 40%) (40), <i>Pisum sativum</i> (39 - 42%)   y <i>Cajanus cajan</i> (34 - 37%) (18), pero semejantes al establecido en harinas de man&iacute; (10 - 13%) (41).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La buena capacidad espumante se ha relacionado   con la flexibilidad de las mol&eacute;culas de prote&iacute;na, con   la reducci&oacute;n de la tensi&oacute;n superficial y con una cantidad   alta de prote&iacute;na globular ordenada, lo cual dificulta   relativamente la desnaturalizaci&oacute;n superficial,   que es la que lleva a una baja formaci&oacute;n de espuma   (42). La raz&oacute;n por la cual las harinas son capaces   de producir espuma es que las prote&iacute;nas presentes   tienen una superficie activa. Las prote&iacute;nas solubles   pueden reducir la tensi&oacute;n superficial en la interfase   entre las burbujas de aire y el l&iacute;quido que las rodea.   De esta forma se obstruye la coalescencia. Adem&aacute;s,   las mol&eacute;culas de las prote&iacute;nas pueden desplegarse   e interactuar entre ellas para formar una pel&iacute;cula   o multicapa de prote&iacute;na con un incremento de la   flexibilidad de la interfase aire/l&iacute;quido. En consecuencia,   es m&aacute;s dif&iacute;cil para las burbujas romperse   y la espuma es m&aacute;s estable (43).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En la <a href="#f6">figura 6</a> se puede notar que la estabilidad   espumante (<i>EES</i>) de la harina sin tratamiento logr&oacute;   un valor m&aacute;ximo en una soluci&oacute;n al 8%. Este   valor es sumamente bajo en comparaci&oacute;n con los   reportados para Sesamum indicum (80%), Vigna subterranean   (83%) (31), y Macadamia (56 - 75%) (36).   A otras concentraciones la espuma no alcanz&oacute; a   durar las 8 horas.</font></p>       <p align="center"><a name="f6"></a><img src="img/revistas/vitae/v18n2/v18n2a04f6.jpg"></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">  Al incrementar la concentraci&oacute;n de prote&iacute;na se   facilitan las interacciones prote&iacute;na-prote&iacute;na en la   interfase agua/aire promoviendo la formaci&oacute;n de   una pel&iacute;cula multicapa altamente viscoel&aacute;stica, que   ofrece resistencia a la coalescencia de las burbujas.   Esto aumenta la estabilidad espumante. Un   aumento en la capacidad y la estabilidad espumantes   con el incremento de la concentraci&oacute;n ha sido   reportado anteriormente (13, 43). La capacidad y   la estabilidad espumante son adecuadas para los   sistemas alimentarios que requieren una matriz   de espuma, como las tortas y el helado (44). As&iacute;   pues, las harinas analizadas no son &uacute;tiles para   estos fines. Se observ&oacute;, adem&aacute;s, que el tratamiento   de hidrataci&oacute;n y cocci&oacute;n reduce las propiedades   espumantes de la vitabosa.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En la <a href="img/revistas/vitae/v18n2/v18n2a04t4.jpg" target="_blank">tabla 4</a> se puede observar que la <i>CES</i> fue   afectada por la concentraci&oacute;n de sal. Un incremento   inicial en la fuerza i&oacute;nica, de 0,0 hasta 0,4 M, mejor&oacute;   la CES de VST y VHYC en un 45 y 29%, respectivamente.   Sin embargo, incrementos adicionales en   la fuerza i&oacute;nica (0,6 - 1,0 M) declinan la <i>CES</i> a un   valor m&iacute;nimo de 5,69% (VST) y 3,01% (VHYC)   en soluciones 1,0 M de NaCl. El an&aacute;lisis estad&iacute;stico   indic&oacute; diferencias significativas entre harinas,   fuerza i&oacute;nica y la interacci&oacute;n de estas dos.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">  De otro lado, experimentalmente se observ&oacute;   ausencia de espuma despu&eacute;s de 8 horas de evaluaci&oacute;n,   en todo el rango de fuerza i&oacute;nica evaluado   (0,1 - 1,0 M de NaCl); esto indica que en ambas   harinas la concentraci&oacute;n de sal desfavoreci&oacute; la estabilidad   de la espuma.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <i>Capacidad gelificante</i></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El an&aacute;lisis estad&iacute;stico mostr&oacute; diferencias significativas   entre las dos harinas en la estimaci&oacute;n de la   capacidad gelificante (CG), como se puede ver en la   <a href="img/revistas/vitae/v18n2/v18n2a04t5.jpg" target="_blank">tabla 5</a>. El incremento de la fuerza i&oacute;nica en la soluci&oacute;n   redujo la <i>CG</i> de VST y VHYC, en comparaci&oacute;n   con el control. Un aumento inicial en la concentraci&oacute;n   de sal, de 0,0 hasta 0,8 M, disminuy&oacute; la CG   de VST en un 67%. Un valor similar fue obtenido   en VHYC con un cambio de fuerza i&oacute;nica de 0,0 a   0,4 M. Adebowale y Lawal, 2004 (13) reportaron   capacidades gelificantes entre 16 y 18% p/v para   <i>Canavalia ensiformis, Voandzeia subterranean</i> y <i>Mucuna   pruriens</i>. La m&iacute;nima concentraci&oacute;n de gelificaci&oacute;n   para <i>Pisum sativum</i> y <i>Cajanus cajan</i> fue de 12% (18).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">  La variaci&oacute;n de las propiedades gelificantes   puede atribuirse a los tama&ntilde;os de los diferentes   constituyentes, como prote&iacute;nas, carbohidratos y   l&iacute;pidos, lo que sugiere que la interacci&oacute;n entre estos   componentes tambi&eacute;n juega un papel importante   en las propiedades funcionales (18). La gelificaci&oacute;n   de las prote&iacute;nas es de gran importancia en la preparaci&oacute;n   y aceptabilidad de muchos alimentos, incluyendo   vegetales y otros productos (45). Akintayo   <i>et al.</i>, 1999 (43) mostraron que las propiedades de   gelificaci&oacute;n dependen de la fuerza i&oacute;nica en la prote&iacute;na   de <i>Cajanus cajan</i>; en su informe, la capacidad   gelificante de la harina se mejora a concentraciones   bajas de sal (0,5 M), mientras que se reduce con una   fuerza i&oacute;nica alta (1,0M). Los autores atribuyeron   el mejoramiento de la capacidad gelificante a baja   fuerza i&oacute;nica y al aumento de la solubilizaci&oacute;n de   la prote&iacute;na en la soluci&oacute;n salina, la cual cre&oacute; un   solapamiento de los grupos funcionales entre las   mol&eacute;culas de prote&iacute;nas adyacentes, condici&oacute;n necesaria   para la formaci&oacute;n de la red de un gel. Adebowale   y Adebowale, 2008 (46) encontraron que las   caracter&iacute;sticas de gelificaci&oacute;n mejoran a medida que   aumenta la fuerza i&oacute;nica hasta 0,4 M; por encima de   este valor se afectan adversamente las propiedades   de gelificaci&oacute;n en harina y concentrados proteicos   de <i>Mucuna</i>. Asimismo, Otte <i>et al.</i>, 1999 (45) dieron   cuenta de una reducci&oacute;n en la firmeza del gel a   medida que se incrementa la concentraci&oacute;n de sal   en prote&iacute;nas de trigo.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"> <b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El tratamiento de hidrataci&oacute;n y cocci&oacute;n afecta   las caracter&iacute;sticas f&iacute;sicas y las propiedades funcionales   de la harina de vitabosa. La harina procesada   (VHYC) ofrece mejores propiedades f&iacute;sicas como   humedad (5,3% base h&uacute;meda), capacidad de hidrataci&oacute;n   (0,77 g agua/g semilla) e hinchamiento   (0,79 mL agua/semilla) que las semillas sin ning&uacute;n   tratamiento. En general, se observ&oacute; un efecto de la   concentraci&oacute;n de harina y de la fuerza i&oacute;nica sobre la   capacidad y estabilidad emulsificantes, encontrando   valores bajos para estas propiedades funcionales, y   aceptables para la capacidad gelificante en ambas   harinas.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Los autores agradecen a la Direcci&oacute;n de Investigaci&oacute;n   de la Universidad Nacional de Colombia,   sede Medell&iacute;n, el apoyo financiero del proyecto.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"> <b>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</b></font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 1. Singh N, Kaur M, Sandhu KS, y Guraya HS. Physicochemical,   thermal, morphological and pasting properties of starches from   some Indian black gram (<i>Phaseolus mungo</i> L.) varieties. Starch.   2004 Nov 4; 56 (11): 535-544.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0121-4004201100020000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 2. Echeverri C, Rodr&iacute;guez H. La Vitabosa (<i>Mucuna deeringiana</i>).   Antioquia, Colombia: Servicio Nacional de Aprendizaje SENA.   Centro Multisectorial de Oriente. 1999, 108 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0121-4004201100020000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 3. Adebowale Y, Adeyemi A, Oshodi A. Variability in the physicochemical,   nutritional and antinutritional attributes of six <i>Mucuna</i>  species. Food Chem. 2005 Jan; 89 (1): 37-48.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0121-4004201100020000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 4. Valdivel V. Nutritional and anti-nutritional composition of velvet   bean: an under-utilized food legume in South India. Int J Food   Sci Nutr. 2000 Jul; 51 (4): 279-287.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0121-4004201100020000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 5. Agdebe J, Aletor V. Studies of the chemical composition and   protein quality evaluation of differently processed <i>Canavalia   ensiformis</i> and <i>Mucuna pruriens</i> seed flours. J Food Comp Anal.   2005 Feb; 18 (1): 89-103.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0121-4004201100020000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 6. Nielsen S. Digestibility of legume proteins. Food Technol. 1991;   45 (99): 112.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0121-4004201100020000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 7. Gurumoorthi P, Janardhanan K, Myhrman R. Effect of differencial   processing methods on L-Dopa and protein quality in velvet   bean, an underutilized pulse. LWT. 2008 May; 41 (4): 588-596.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0121-4004201100020000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 8. Janardhanan K, Gurumoorthi P, Pugalenthi M. Nutritional   potential of five accessions of a South Indian tribal pulse, <i>Mucuna   pruriens</i> var. <i>utilis</i> I. The effect of processing methods on the   content of L-Dopa, phytic acid and oligosaccharides. Tropical   and subtropical agroecosystems. 2003 Apr; 1 (2): 141-152.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0121-4004201100020000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 9. Diallo O, Berhe T. Processing of <i>mucuna</i> for human food in   the Republic of Guinea. Journal of Tropical and Subtropical   Agroecosystems. 2003 Apr; 1 (2): 193-196.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0121-4004201100020000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 10. Chaparro P. Efecto de diferentes procesos fisicoqu&iacute;micos en la   reducci&oacute;n de factores antinutricionales de la semilla de vitabosa   (<i>Mucuna deeringiana</i>) [Tesis de grado]. [Medell&iacute;n]: Universidad   Nacional de Colombia; 2009.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0121-4004201100020000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 11. Admassu E, Kumar S. Effect of processing on antinutrients and   in vitro protein digestibility of kidney bean (<i>Phaseolus vulgaris</i>  L.) varieties grown in East Africa. Food Chem. 2007; 103 (1):   161-172.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0121-4004201100020000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 12. Khokar S, Chanhan BM. Effect of domestic processing and   cooking on<i> in vitro</i> protein digestibility of the north bean. J Food   Sci. 1986; 51 (1): 1083-1085.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0121-4004201100020000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 13. Adebowale K, Lawal O. Comparative study of the functional   properties of bambarra groundnut (<i>Voandzeia subterranean</i>) jack   bean (<i>Canavalia ensiformis</i>) and Mucuna bean (<i>Mucuna pruriens</i>)   f lours. Food Res Int. 2004 May; 37 (4): 355-365.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0121-4004201100020000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 14. AOAC. Official methods of analysis. 15 ed. Washington, United   States: Association of Official Analytical Chemists; 1990. 230 p.   15. Beuchat LR. Functional and electrophoretic characteristics of   succinylated peanut flour protein. 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Nahrung. 2001 Aug; 45 (4): 258-262.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0121-4004201100020000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 17. Coffman CW, Garc&iacute;a VV. Functional properties and amino acid   content of protein isolate from mung bean f lour. Food Technol.   1977 (2); 12: 473-484.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0121-4004201100020000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 18. Kaur M, Singh K, Singh N. Comparative study of the functional,   thermal and pasting properties of f lours from different field pea   (<i>Pisum sativum</i> L.) and pigeon pea (<i>Cajanus cajan</i> L.) cultivars. Food   Chem. 2007 Jan 5; 104 (1): 259-267.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0121-4004201100020000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 19. Kaur M, Singh N. Studies on functional, thermal and pasting   properties of f lours from different Chickpea (<i>Cicer arietinum</i> L.)   cultivars. Food Chem. 2005; 91 (3): 403-411.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0121-4004201100020000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 20. Chavan U, McKenzie D, Shhidi F. Functional properties of   protein isolates from beach pea (<i>Lathyrus maritimus</i> L.). Food   Chem. 2001 Aug 1; 74 (2): 177-187.   143</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0121-4004201100020000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 21. Seena S, Sridhar K. Physicochemical, functional and cooking   properties of under explored legumes, <i>Canavalia</i> of the southwest   coast of India. Food Res Int. 2005 Aug; 38 (7): 803-814.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0121-4004201100020000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 22. Vidivel V, Janardhanen K. Nutritional and antinutrient attributes   of the underutilized legume <i>Cassia floribunda</i> car. Food Chem.   2001; 73 (2): 209-215.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0121-4004201100020000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 23. Ruiz-L&oacute;pez MA, Garc&iacute;a-L&oacute;pez PM, Casta&ntilde;eda-V&aacute;zquez H,   Zamora NJF, Garz&oacute;n-de la M ora P, Ba&ntilde;uelos Pineda J, <i>et al.</i>   Chemical composition and antinutrient content of three lupin   species from Jalisco, Mexico. J Food Comp Anal. 2000 Jun; 13   (3): 193-199.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0121-4004201100020000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 24. Aletor V, Aladetimi O. Compositional evaluation of some cowpea   varieties and some underutilised legumes in Nigeria. Nahrung.   1989; 33 (10): 999-1007.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0121-4004201100020000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 25. Bishnoi S, Khetarpaul N. Variability in physicochemical properties   and nutrient composition of different pea cultivars. Food   Chem. 1993; 47 (4): 371-373.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0121-4004201100020000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 26. Redondo-Cuenca A, Villanueva-Su&aacute;rez M, Rodr&iacute;guez-Sevilla   M, Mateos-Aparicio I. Chemical composition and dietary fibre   of yellow and green commercial soybeans (<i>Glycine max</i>). Food   Chem. 2007; 101 (3): 1216-1222.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0121-4004201100020000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 27. Yu J, Ahmedna M, Goktepe I. Peanut protein concentrate:   Production and functional properties as affected by processing.   Food Chem. 2007; 103 (1): 121-129.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0121-4004201100020000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 28. Fennema O. Qu&iacute;mica de los alimentos. Espa&ntilde;a: Acribia; 2000.   p. 434-444.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0121-4004201100020000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 29. McWatters KH, Heaton K. Quality characteristics of ground beef   patties extended with moist-heated and unheated seed meals.   JAOCS. 1979; 56 (1): 86-90.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0121-4004201100020000400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 30. Moure A, Rua M, Sineiro J, Dom&iacute;nguez H. Aqueous extraction   and membrane isolation of protein from defatted <i>Gevuina avellana</i>.   J Food Sci. 2002 Mar; 67 (2): 688-696.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0121-4004201100020000400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 31. Yusuf A, Ayedun H, Sanni L. Chemical composition and   functional properties of raw and roasted Nigerian benniseed   (<i>Sesamum indicum</i>) and bambara groundnut (<i>Vigna subterranean</i>).   Food Chem. 2008 Nov 15; 111 (2): 277-282.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0121-4004201100020000400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 32. Pedroche J, Yust MM, Lqari H, Gir&oacute;n-Calle J, Alaiz M, Vioque J,   <i>et al.</i> <i>Brassica carinata</i> protein isolates: chemical composition, protein   character ization and improvement of functional properties   by protein hydrolysis. Food Chem. 2004 Dec; 88 (3): 337-346.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0121-4004201100020000400032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 33. Elkhalifa AEO, Schiff ler B, Bernhardt R. Effect of fermentation   on the functional properties of sorghum flour. Food Chem. 2005   Aug; 92 (1): 1-5.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0121-4004201100020000400033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 34. Phillips M. Protein conformation at liquid interfaces and its role   in stabilizing emulsions and foams. Food Technol. 1981; 35 (2):   50.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0121-4004201100020000400034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 35. Jayaprakasha H, Brueckner H. Whey protein concentrate: A   potential functional ingredient for food industry. Int J Food Sci   Technol. 1999. 36 (3): 189-204.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S0121-4004201100020000400035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 36. Jitngarmkusol S, Hongsuwankul J, Tananuwong K. Chemical   compositions, functional properties, and microstructure of   defatted macadamia flours. Food Chem. 2008 Sep 1; 110 (1):   23-30.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0121-4004201100020000400036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 37. Oshodi A, Ojokan E. Effect of salts on some of the functional   properties of bovine plasma protein concentrate. Food Chem.   1997; 59 (3): 333-338.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000154&pid=S0121-4004201100020000400037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 38. Aluko R, Yada R. Structure, function relationships of cowpea   (<i>Vigna unguiculata</i>) globulin isolate: Influence of pH and NaCl   concentration on physicochemical and functional properties.   Food Chem. 1995; 53 (3): 259-265.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0121-4004201100020000400038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 39. McClements DJ. Food emulsions: Principles, practice, and   techniques. Boca Raton (Fl): CRC Press; 1999. McClements   DJ. Emulsion stability.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000156&pid=S0121-4004201100020000400039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 40. Rahma FH, Mustafa MM. Functional properties of peanut flour   as affected by different heat treatments. Int J Food Sci Tech. 1988;   25 (1): 11-15.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0121-4004201100020000400040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 41. Wu H, Wang Q, Ma T, Ren J. Comparative studies on the   functional properties of various protein concentrate preparations   of peanut protein. Food Res Int. 2009 Apr; 42 (1): 343-348.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000158&pid=S0121-4004201100020000400041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 42. Mizubuti IY, Biondo J&uacute;nior O, Souza LW, da Silva RS, Ida EI.   Functional properties of pigeon pea (<i>Cajanus cajan</i> (L.) Millsp)   f lour and protein concentrate. Arch Latinoam Nutr. 2000 Sept;   50 (3): 274-280.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0121-4004201100020000400042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 43. Akintayo E, Oshodi A, Esuoso K. Effects of NaCl, ionic strength   and pH on the foaming and gelation of pigeon pea (<i>Cajanus cajan</i>)   protein concentrates. 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