<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>0121-4004</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Vitae]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[Vitae]]></abbrev-journal-title>
<issn>0121-4004</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Facultad de Química Farmacéutica, Universidad de Antioquia]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S0121-40042012000300003</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[PARÁMETROS CINÉTICOS Y PERFIL DE ÁCIDOS GRASOS DE CADENA CORTA DE BACTERIAS ÁCIDO LÁCTICAS TERMOTOLERANTES CON DIFERENTES FUENTES DE CARBONO]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[KINETICS PARAMETERS AND SHORT CHAIN FATTY ACIDS PROFILE OF THERMOTOLERANT LACTIC ACID BACTERIA WITH DIFFERENT CARBON SOURCES]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[DÍAZ-VELA]]></surname>
<given-names><![CDATA[Juan]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[MAYORGA-REYES]]></surname>
<given-names><![CDATA[Lino]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A02"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[TOTOSAUS S.]]></surname>
<given-names><![CDATA[Alfonso]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A03"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[PÉREZ-CHABELA]]></surname>
<given-names><![CDATA[María de Lourdes]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Universidad Autónoma Metropolitana Departamento de Biotecnología ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[México D. F.]]></addr-line>
</aff>
<aff id="A02">
<institution><![CDATA[,Universidad Autónoma Metropolitana Sistemas Biológicos ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Xochimilco D. F.]]></addr-line>
<country>México</country>
</aff>
<aff id="A03">
<institution><![CDATA[,Tecnológico de Estudios Superiores de Ecatepec Laboratorio de Ciencia de los Alimentos ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[ ]]></addr-line>
<country>México</country>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>12</month>
<year>2012</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>12</month>
<year>2012</year>
</pub-date>
<volume>19</volume>
<numero>3</numero>
<fpage>253</fpage>
<lpage>260</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0121-40042012000300003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0121-40042012000300003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0121-40042012000300003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Los prebióticos son sustancias obtenidas de fuentes vegetales, las cuales son digeribles en el colon donde se sitúa el mayor número de flora intestinal. Las inulinas de achicoria y agave son utilizadas como prebióticos en distintos alimentos, proporcionando beneficios al aumentar la flora microbiana benéfica. Objetivos: Determinar el efecto de diferentes fuentes de carbono como inulina de agave, achicoria, y albedo de naranja sobre los parámetros cinéticos y el perfil de ácidos grasos de cadena corta de dos bacterias ácido lácticas, a saber: P. pentosaceous y A. viridans. Métodos: Se realizó el análisis químico proximal (humedad, proteína, pH, cenizas, extracto etéreo y fibra total) del albedo de naranja (AN), inulina de agave (IA) e inulina de achicoria (ICh). Se realizó fermentaciones de 12 h con las bacterias ácido lácticas, utilizando inulina de achicoria (ICh), de agave (IA), y albedo de naranja (AN) como fuente de carbono en concentraciones de 0,5, 1,0 ó 1,5% (p/v), utilizando glucosa como testigo. La producción de ácidos grasos de cadena corta (AGCC) se realizó mediante la técnica de HPLC (ácido láctico) y cromatografía de gases (ácido acético, propiónico y butírico). Los resultados fueron analizados mediante un análisis de varianza (ANOVA) y la diferencia entre medias se llevó a cabo mediante un análisis de medias de Tukey (&alpha;= 0,05). Resultados: El AN presentó un porcentaje significativamente (P < 0,05) mayor de humedad, cenizas, extracto etéreo y fibra total; mientras que IA tuvo mayor porcentaje de proteína y un pH más alto (P < 0,05). Para ambas bacterias, el mayor crecimiento fue con ICh al 1,0% (P < 0,05), siendo el ácido láctico el metabolito de mayor producción. Con AN al 1,0%, las dos cepas mostraron un menor tiempo de duplicación, además de una mayor producción de ácido láctico, acético y butírico (P < 0,05). Conclusiones: Con la utilización de AN, a las actuales condiciones experimentales, se obtuvo menores tiempos de generación en comparación con las inulinas, y una mayor producción de ácidos orgánicos, por lo que concluimos que el AN puede ser considerado como un prebiótico potencial.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Background: Prebiotics are substances obtained from vegetable sources which are digestible in the colon where is situated most of the intestinal flora. The chicory inulin and agave are used as prebiotics in different foods, providing benefits by increasing the beneficial microbial flora. Objectives: The aim of this study was to determine the effect of different carbon sources, such as inulin from agave, chicory, or orange albedo on the kinetic parameters and the profile of short chain fatty acids of lactic acid bacteria. Methods: Proximate analysis (moisture, protein, pH, ash, ether extract and total fiber) of orange albedo, agave inulin and chicory inulin was performed. Fermentation batches (12 h) were performed with two lactic acid bacteria, P. pentosaceus and A. viridans, employing chicory (CI), agave inulin (AI), and orange albedo (OA) as carbon source at different concentrations of 0.5, 1.0 and 1.5% (w/v), against glucose as control. The production of short chain fatty acids (SCFA) was performed using the HPLC technique (lactic acid) and gas chromatography (acetic, propionic and butyric acids). The results were analyzed using analysis of variance (ANOVA) and the difference between means was performed using a Tukey means analysis (&alpha; = 0.05). Results: OA showed a significantly (P < 0.05) higher moisture, ash, ether extract and total fiber, while AI had the highest percentage of protein and a higher pH (P < 0.05). For both strains, maximum growth was observed with 1.0% CI (P < 0.05), being lactic acid the major metabolite produced. With 1.0% OA, both strains showed shorter duplication time, and a higher lactic, acetic and butyric acids production (P < 0.05). Conclusions: By using OA, in the present experimental conditions, were obtained lower generation times compared with inulins, and increased production of organic acids, from which we conclude that the OA may be regarded as a potential prebiotic.]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[Prebióticos]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[inulina]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[fermentación]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[análisis proximal]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[bacterias ácido lácticas]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Prebiotic]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[inulin]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[fermentation]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[proximate analysis]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[lactic acid bacteria]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">     <p align="right"> <b>ALIMENTOS: CIENCIA, TECNOLOG&Iacute;A E INGENIER&Iacute;A</b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="4">PAR&Aacute;METROS CIN&Eacute;TICOS Y PERFIL DE &Aacute;CIDOS GRASOS   DE CADENA CORTA DE BACTERIAS &Aacute;CIDO L&Aacute;CTICAS   TERMOTOLERANTES CON DIFERENTES FUENTES DE CARBONO</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="3"> KINETICS PARAMETERS AND SHORT CHAIN FATTY ACIDS PROFILE OF THERMOTOLERANT LACTIC ACID BACTERIA WITH DIFFERENT CARBON SOURCES</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b> Juan D&Iacute;AZ-VELA M.Sc.<sup>1</sup>, Lino MAYORGA-REYES Ph.D<sup>2</sup>, Alfonso TOTOSAUS S. Ph.D<sup>3</sup>, Mar&iacute;a de Lourdes P&Eacute;REZ-CHABELA Ph.D.<sup>1*</sup></b></p>     <p>1 Departamento de Biotecnolog&iacute;a. Universidad Aut&oacute;noma Metropolitana. Iztapalapa, M&eacute;xico D. F.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  2 Sistemas Biol&oacute;gicos. Universidad Aut&oacute;noma Metropolitana. Xochimilco, M&eacute;xico D. F.</p>     <p>  3 Laboratorio de Ciencia de los Alimentos. Tecnol&oacute;gico de Estudios Superiores de Ecatepec. M&eacute;xico.</p>     <p>* Autor a quien se debe dirigir la correspondencia: <a href="mailto:lpch@xanum.uam.mx">lpch@xanum.uam.mx</a>.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p>Recibido: Septiembre 17 de 2012 Aceptado: Diciembre 17 de 2012</p>     <p>&nbsp;</p> <hr noshade size="1">     <p><b> RESUMEN</b></p>     <p> <b>Antecedentes</b>: Los prebi&oacute;ticos son sustancias obtenidas de fuentes vegetales, las cuales son digeribles en   el colon donde se sit&uacute;a el mayor n&uacute;mero de flora intestinal. Las inulinas de achicoria y agave son utilizadas   como prebi&oacute;ticos en distintos alimentos, proporcionando beneficios al aumentar la flora microbiana ben&eacute;fica.   <b>Objetivos</b>: Determinar el efecto de diferentes fuentes de carbono como inulina de agave, achicoria,   y albedo de naranja sobre los par&aacute;metros cin&eacute;ticos y el perfil de &aacute;cidos grasos de cadena corta de dos bacterias   &aacute;cido l&aacute;cticas, a saber: <i><i>P.   pentosaceous</i></i> y <i>A. viridans</i>. <b>M&eacute;todos</b>: Se realiz&oacute; el an&aacute;lisis qu&iacute;mico proximal   (humedad, prote&iacute;na, pH, cenizas, extracto et&eacute;reo y fibra total) del albedo de naranja (AN), inulina de   agave (IA) e inulina de achicoria (ICh). Se realiz&oacute; fermentaciones de 12 h con las bacterias &aacute;cido l&aacute;cticas,   utilizando inulina de achicoria (ICh), de agave (IA), y albedo de naranja (AN) como fuente de carbono   en concentraciones de 0,5, 1,0 &oacute; 1,5% (p/v), utilizando glucosa como testigo. La producci&oacute;n de &aacute;cidos   grasos de cadena corta (AGCC) se realiz&oacute; mediante la t&eacute;cnica de HPLC (&aacute;cido l&aacute;ctico) y cromatograf&iacute;a   de gases (&aacute;cido ac&eacute;tico, propi&oacute;nico y but&iacute;rico). Los resultados fueron analizados mediante un an&aacute;lisis de   varianza (ANOVA) y la diferencia entre medias se llev&oacute; a cabo mediante un an&aacute;lisis de medias de Tukey   (&alpha;= 0,05). <b>Resultados</b>: El AN present&oacute; un porcentaje significativamente (P &lt; 0,05) mayor de humedad,   cenizas, extracto et&eacute;reo y fibra total; mientras que IA tuvo mayor porcentaje de prote&iacute;na y un pH m&aacute;s   alto (P &lt; 0,05). Para ambas bacterias, el mayor crecimiento fue con ICh al 1,0% (P &lt; 0,05), siendo el   &aacute;cido l&aacute;ctico el metabolito de mayor producci&oacute;n. Con AN al 1,0%, las dos cepas mostraron un menor   tiempo de duplicaci&oacute;n, adem&aacute;s de una mayor producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico, ac&eacute;tico y but&iacute;rico (P &lt; 0,05).   <b>Conclusiones</b>: Con la utilizaci&oacute;n de AN, a las actuales condiciones experimentales, se obtuvo menores   tiempos de generaci&oacute;n en comparaci&oacute;n con las inulinas, y una mayor producci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos,   por lo que concluimos que el AN puede ser considerado como un prebi&oacute;tico potencial.</p>     <p><b>Palabras clave:</b> Prebi&oacute;ticos, inulina, fermentaci&oacute;n, an&aacute;lisis proximal, bacterias &aacute;cido l&aacute;cticas.</p> <hr noshade size="1">     <p> <b>ABSTRACT</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <b>Background</b>: Prebiotics are substances obtained from vegetable sources which are digestible in the colon   where is situated most of the intestinal flora. The chicory inulin and agave are used as prebiotics in   different foods, providing benefits by increasing the beneficial microbial flora. <b>Objectives</b>: The aim of   this study was to determine the effect of different carbon sources, such as inulin from agave, chicory, or   orange albedo on the kinetic parameters and the profile of short chain fatty acids of lactic acid bacteria.   <b>Methods</b>: Proximate analysis (moisture, protein, pH, ash, ether extract and total fiber) of orange albedo,   agave inulin and chicory inulin was performed. Fermentation batches (12 h) were performed with two   lactic acid bacteria, <i>P. pentosaceus</i> and <i>A. viridans</i>, employing chicory (CI), agave inulin (AI), and orange   albedo (OA) as carbon source at different concentrations of 0.5, 1.0 and 1.5% (w/v), against glucose as   control. The production of short chain fatty acids (SCFA) was performed using the HPLC technique   (lactic acid) and gas chromatography (acetic, propionic and butyric acids). The results were analyzed using   analysis of variance (ANOVA) and the difference between means was performed using a Tukey means   analysis (&alpha; = 0.05). <b>Results</b>: OA showed a significantly (P &lt; 0.05) higher moisture, ash, ether extract   and total fiber, while AI had the highest percentage of protein and a higher pH (P &lt; 0.05). For both   strains, maximum growth was observed with 1.0% CI (P &lt; 0.05), being lactic acid the major metabolite   produced. With 1.0% OA, both strains showed shorter duplication time, and a higher lactic, acetic and   butyric acids production (P &lt; 0.05). <b>Conclusions</b>: By using OA, in the present experimental conditions,   were obtained lower generation times compared with inulins, and increased production of organic acids, from which we conclude that the OA may be regarded as a potential prebiotic.</p>     <p><b>Keywords</b>: Prebiotic, inulin, fermentation, proximate analysis, lactic acid bacteria.  </p> <hr noshade size="1">     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p> Los prebi&oacute;ticos han sido definidos como ingredientes   alimenticios no-digeribles que afectan ben&eacute;ficamente   al hu&eacute;sped por estimulaci&oacute;n selectiva   del crecimiento y/o actividad de una o un n&uacute;mero   limitado de bacterias en el colon, generando beneficios   a la salud (1). Recientemente han redefinido   el concepto de prebi&oacute;tico como un ingrediente fermentable   selectivo que permite cambios espec&iacute;ficos,   adem&aacute;s de conferir beneficios sobre la composici&oacute;n   y/o actividad de la microflora gastrointestinal (2).   Los ingredientes prebi&oacute;ticos se consideran adem&aacute;s   como parte de aquellos alimentos funcionales que   pueden modificar de manera positiva los procesos   fisiol&oacute;gicos y biol&oacute;gicos en la nutrici&oacute;n, o como   auxiliares en el tratamiento de enfermedades humanas   (3). Los prebi&oacute;ticos deber&aacute;n ser fermentados   &uacute;nicamente por bacterias del colon, promoviendo   algunas funciones fisiol&oacute;gicas especificas a trav&eacute;s   de la liberaci&oacute;n de metabolitos por las bacterias, en   especial los &aacute;cidos grasos de cadena corta al lumen   intestinal (4). Las bacterias del colon presentan   diferentes grados de fermentaci&oacute;n, dependiendo   de los carbohidratos que vayan a metabolizar,   donde aquellos carbohidratos con un bajo nivel de   polimerizaci&oacute;n son metabolizados de una forma   m&aacute;s efectiva, aun por encima de azucares como la   glucosa. Durante la fermentaci&oacute;n de ingredientes   los prebi&oacute;ticos por parte de los probi&oacute;ticos en el   colon mejoran la producci&oacute;n de &aacute;cidos grasos de   cadena corta como but&iacute;rico, ac&eacute;tico y propi&oacute;nico,   los cuales son r&aacute;pidamente absorbidos. El butirato   es la mayor fuente de energ&iacute;a para los colonocitos, el   propionato es mayormente absorbido por el h&iacute;gado,   y el acetato entra en perif&eacute;rica para ser metabolizado   por tejidos perif&eacute;ricos. Estos &aacute;cidos grasos de cadena   corta pueden reducir el riesgo de desarrollar desordenes   gastrointestinales, c&aacute;ncer y enfermedades cardiovasculares (5).</p>     <p> Dentro de los ingredientes prebi&oacute;ticos, la inulina   ha sido una de las m&aacute;s utilizadas por su resistencia   al proceso digestivo, adem&aacute;s de ser considerada   como fibra diet&eacute;tica y por ser un compuesto que   mediante estudios <i>in-vitro</i> e<i> in-vivo</i> resulta efectivo   sobre el crecimiento de la microflora intestinal,   disminuyendo microorganismos pat&oacute;genos como   clostridium, donde en algunos tratamientos se   increment&oacute; la relaci&oacute;n de butirato, indicando un   cambio en la actividad bacteriana (6). Por otro   lado, el albedo es un tejido alto en fibra que se   encuentra en diversas frutas c&iacute;tricas, es de color   blanco y esponjoso localizado en la c&aacute;scara. Este   material puede ser considerado como ingrediente   funcional debido al contenido de fibra, adem&aacute;s de   ser una buena fuente de oligosac&aacute;ridos p&eacute;cticos con actividad prebi&oacute;tica (7).</p>     <p> El objetivo general de este trabajo fue determinar   el efecto de diferentes fuentes de carbono como   inulina de agave, achicoria y albedo de naranja sobre   los par&aacute;metros cin&eacute;ticos y el perfil de &aacute;cidos grasos   de cadena corta de dos bacterias &aacute;cido l&aacute;cticas, <i>P.   pentosaceous</i> y <i>A. viridans</i>. Los objetivos espec&iacute;ficos   fueron: determinar el an&aacute;lisis qu&iacute;mico proximal del   AN, IA e ICh; cuantificar el crecimiento viable de   las bacterias en estudio con las diferentes fuentes y   concentraciones de carbono; y, cuantificar la producci&oacute;n de &aacute;cidos grasos de cadena corta.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p><b> Obtenci&oacute;n de muestras</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> La inulina de achicoria (<i>Cichorium intybu</i>s L.) e   inulina de agave (<i>Agave</i> spp.) fueron obtenidas a   partir de Nano Nutrition S.R.L. de C.V. (Naucalpan,   M&eacute;xico). El albedo de naranja fue obtenido   de acuerdo a la metodolog&iacute;a reportada por Dur&aacute;n   <i>et al.</i>, 2008 (8). El albedo (parte blanca y esponjosa)   fue retirado manualmente de las cascaras de naranja   <i>(Citrus sinensis</i>), eliminando la limonina con   una soluci&oacute;n de NaCl al 15% a 95&deg;C por 30 min.   Posteriormente, fue secado en una estufa a 60 &deg;C   durante 24 h, despu&eacute;s fue molido en un molino   manual, fue tamizado con una malla No. 80 y fue   almacenado al vac&iacute;o a temperatura ambiente hasta su an&aacute;lisis y utilizaci&oacute;n.</p>     <p> <b>An&aacute;lisis proximal</b></p>     <p> Se determin&oacute; la humedad (M&eacute;todo Oficial   925.40), prote&iacute;na total (M&eacute;todo Oficial 960.52), pH   (M&eacute;todo Oficial 994.18), cenizas (M&eacute;todo Oficial   940.18), extracto et&eacute;reo como grasa total (920.26) y   fibra total (M&eacute;todo Oficial 991.43), de la AOAC, a   las muestras de albedo de naranja, inulina de agave e inulina de achicoria (9).</p>     <p> <b>Preparaci&oacute;n del in&oacute;culo</b></p>     <p> Las cepas utilizadas, <i>Pediococcus pentosaceus</i> y   <i>Aerococcus viridans</i>, previamente identificadas como   bacterias l&aacute;cticas termotolerantes y probi&oacute;ticas,   fueron reactivadas en caldo MRS, incubando a   37&deg;C durante 12 h (10, 11). Despu&eacute;s de este paso,   se realiz&oacute; la adaptaci&oacute;n de las bacterias en medio   de cultivo tripticasa de soya, peptona y extracto de   levadura (TPY, por las siglas en ingles de Trypticase-   Peptone-Yeast), incubando a 37&deg;C durante 12   h a pH 6,5 (12). El in&oacute;culo se prepar&oacute; al transferir   a medio TPY una al&iacute;cuota (2 mL) de los tubos de   bacterias activadas, incubando a 37&deg;C durante 12 h a 200 rpm.</p>     <p> <b>Cin&eacute;tica del crecimiento y pH</b></p>     <p> Las fermentaciones fueron realizadas de acuerdo   a la metodolog&iacute;a propuesta por Bustamante <i>et al.</i>,   2006 (13), utilizando medio TPY suplementando   con 0,5, 1,0 y 1,5 % (p/v) de albedo de naranja, inulina   de agave, inulina de achicoria y glucosa (testigo),   como fuentes de carbono. Se inocul&oacute; aproximadamente   3 log10 UFC/mL en matraces de fermentaci&oacute;n   a una temperatura de 37&deg;C y una agitaci&oacute;n   de 200 rpm. Se tom&oacute; al&iacute;cuotas (2 mL) a partir del   tiempo cero hasta completar 12 h de fermentaci&oacute;n   con intervalos de una hora para la determinaci&oacute;n   del crecimiento bacteriano (conteo en placa de agar   TPY incubadas a 37&deg;C durante 24 h, reportando   UFC/mL) y pH. Se calcul&oacute; la tasa espec&iacute;fica de   crecimiento ''<i>k</i>'' y tiempo de duplicaci&oacute;n ''<i>g</i>'' (como   el inverso de ''<i>k</i>'') como medidas de la capacidad de   adaptaci&oacute;n de las bacterias a las diferentes fuentes de carbono, de acuerdo a la ecuaci&oacute;n 1 (14):</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/vitae/v19n3/v19n3a3e1.jpg"></p>     <p> d&oacute;nde: <b>N<sub>t</sub> </b>= n&uacute;mero final de c&eacute;lulas (UFC/   mL); <b>N<sub>0</sub> </b>= n&uacute;mero inicial de c&eacute;lulas (UFC/mL); <b>t</b> = tiempo de fermentaci&oacute;n (h).</p>     <p> <b>Producci&oacute;n de &aacute;cidos grasos de cadena corta</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Para la determinaci&oacute;n de &aacute;cidos grasos de cadena   corta, se tom&oacute; al&iacute;cuotas de 2 mL a los tiempos 0, 6 y   12 h de fermentaci&oacute;n. El an&aacute;lisis se realiz&oacute; de acuerdo   a la metodolog&iacute;a propuesta por Manderson <i>et al.</i>, 2005   (15), con algunas modificaciones. Para el an&aacute;lisis   del &aacute;cido l&aacute;ctico se utiliz&oacute; cromatograf&iacute;a de l&iacute;quidos   HPLC modelo 250 (Perkin Elmer, Norwalk) en   una columna Resex Organic Acids (7.8 x 300 mm),   detector de &iacute;ndice de refracci&oacute;n, y &aacute;cido sulf&uacute;rico   (0.5 mN) como fase m&oacute;vil a un flujo isocr&aacute;tico de   0.6 mL/min y una temperatura de 50&deg;C. El an&aacute;lisis   de &aacute;cido ac&eacute;tico, propi&oacute;nico y but&iacute;rico se llev&oacute; a cabo   mediante cromatograf&iacute;a de gases HP 5890 Series II   (Perkin Elmer, Shelton) utilizando una columna AT-   1000 (10 m x 0.250 mm), detector de ionizaci&oacute;n de   flama, N<sub>2</sub> como gas de arrastre, un flujo de 1 mL/min y una rampa de temperatura (90-120&deg;C @ 5&deg;/min).</p>     <p> <b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></p>     <p> Para el an&aacute;lisis del efecto de los tratamientos   utilizados se aplic&oacute; un dise&ntilde;o factorial completo de   dos factores: fuente de carbono (albedo de naranja,   inulina de agave e inulina de achicoria) y la concentraci&oacute;n   de &eacute;stos como fuente alternativa de carbono   (0,5, 1,0 y 1,5 %). Los resultados fueron analizados   mediante un an&aacute;lisis de varianza (ANOVA), utilizando   el programa SPSS Versi&oacute;n 15 para Windows&reg;. La   diferencia entre medias en la determinaci&oacute;n de los   par&aacute;metros fisicoqu&iacute;micos se llev&oacute; a cabo mediante   un an&aacute;lisis de medias de Tukey (&alpha;= 0,05) con el mismo paquete estad&iacute;stico.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>RESULTADOS</b></font></p>     <p><b> An&aacute;lisis proximal</b></p>     <p> La <a href="#t1">Tabla 1</a> muestra los resultados del an&aacute;lisis   proximal y microbiol&oacute;gico para albedo de naranja,   inulina de agave e inulina de achicoria. El albedo de   naranja tuvo mayor contenido de humedad que las   inulinas. Las diferentes condiciones de temperatura,   de tiempo de secado, y las diferencias intr&iacute;nsecas   de la materia prima influyeron directamente sobre   la liberaci&oacute;n del agua, provocando en algunos   casos el efecto de endurecimiento de los residuos   impidiendo la liberaci&oacute;n &oacute;ptima de agua (16). Con   respecto al pH de las muestras, el valor m&aacute;s bajo   (P &lt; 0,05) se obtuvo con albedo de naranja, debido   probablemente al contenido de &aacute;cidos org&aacute;nicos   en c&iacute;tricos (17). El contenido de cenizas m&aacute;s   bajo (P &lt; 0,05) se observ&oacute; en inulina de agave   (0,15 %), mientras que el albedo de naranja tuvo   el mayor porcentaje (4,99 %). El contenido de   cenizas est&aacute; relacionado con la concentraci&oacute;n de   calcio en albedo de naranja, donde el calcio var&iacute;a   de acuerdo al estado de madurez de este tipo de   frutos c&iacute;tricos (18). Respecto al extracto et&eacute;reo,   el albedo de naranja tuvo valores mayores (P &lt;   0,05) que las inulinas, debido probablemente a la   presencia de ceras epicuticulares de la c&aacute;scara en   este tipo de frutos c&iacute;tricos (19). El contenido de   prote&iacute;na fue mayor para la inulina de agave y menor   para el albedo de naranja con valores de 1,02 y 0,58 %, respectivamente.</p>     <p align="center"><a name="t1"></a><img src="/img/revistas/vitae/v19n3/v19n3a3t1.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>  <b>Cin&eacute;tica del crecimiento</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> La capacidad de adaptaci&oacute;n al medio de cultivo   por parte de las bacterias analizadas se vio reflejada en   los par&aacute;metros de velocidad espec&iacute;fica de crecimiento   y el tiempo de duplicaci&oacute;n. La <a href="#t2">Tabla 2</a> muestra los   resultados para <i>P. pentosaceus</i> con los diferentes tipos y   concentraciones de fuentes de carbono. La velocidad   espec&iacute;fica de crecimiento fue significativamente mayor   (P &lt; 0,05) al utilizar albedo de naranja e inulina   de achicoria a concentraciones de 0,5 y 1,5%. De este   modo, los tiempos de duplicaci&oacute;n fueron significativamente   (P &lt; 0,05) menores para estos sustratos.   Al comparar con la glucosa a una concentraci&oacute;n del   1,0%, el albedo de naranja tuvo valores significativamente   (P &lt; 0,05) mayores de crecimiento (1,46 h<sup>-1</sup>),   seguido de inulina de agave (1,29 h<sup>-1</sup>), y con valores de   duplicaci&oacute;n menores (0,69 &#8211; 0,78 h) que con glucosa   o inulina de achicoria (0,91 &#8211; 0,92 h). Los valores de   la velocidad espec&iacute;fica de crecimiento y tiempo de   duplicaci&oacute;n fueron significativamente (P &lt; 0,05) mayores al 1,0% de fuente de carbono.</p>     <p align="center"><a name="t2"></a><img src="/img/revistas/vitae/v19n3/v19n3a3t2.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>  La <a href="#t3">Tabla 3</a> muestra los resultados de par&aacute;metros   de crecimiento para <i>A. viridans</i>. A concentraciones   de 0,5 % de fuente de carbono no hay diferencia   significativa (P &gt; 0,05), y a concentraciones de 1,5%   los valores de g fueron significativamente (P &lt; 0,05)   mayores para inulina de achicoria en comparaci&oacute;n   con inulina de agave y albedo de naranja. Al utilizar   el 1,0% del albedo de naranja e inulina de achicoria   se obtuvo valores significativamente (P &lt; 0,05)   mayores de g (1,44 y 1,40 h<sup>-1</sup>, respectivamente), y   por lo tanto, valores significativamente (P &lt; 0,05)   menores de tiempo de duplicaci&oacute;n (0,70 h). Los   valores de la tasa espec&iacute;fica de crecimiento y de   tiempo de duplicaci&oacute;n fueron significativamente (P &lt; 0,05) mayores al 1,0% de fuente de carbono.</p>     <p align="center"><a name="t3"></a><img src="/img/revistas/vitae/v19n3/v19n3a3t3.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>  La <a href="#f1">Figura 1</a> muestra las curvas de crecimiento   celular y pH de las bacterias l&aacute;cticas utilizadas para   las diferentes fuentes de carbono al 1%. En general,   se observ&oacute; diferencias en las curvas de crecimiento   y disminuci&oacute;n del pH para ambos microorganismos   al cambiar la fuente de carbono. El acortamiento de   las fases de adaptaci&oacute;n al utilizar otras fuentes de   carbono diferentes a la glucosa da cuenta de la degradaci&oacute;n   de los compuestos disponibles en albedo   de naranja, inulina de agave e inulina de achicoria   por <i><i>P. pentosaceous</i></i> y <i>A. viridans</i>.</p>     <p align="center"><a name="f1"></a><img src="/img/revistas/vitae/v19n3/v19n3a3f1.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>  <b>Producci&oacute;n de &aacute;cidos grasos de cadena corta</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> En la <a href="#t4">Tabla 4</a> se observa la producci&oacute;n de &aacute;cidos   org&aacute;nicos de cadena corta para<i> P. pentosaceus</i> con las   diferentes fuentes de carbono al 1%. Al inicio de   la fermentaci&oacute;n la producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico fue   significativamente (P &lt; 0,05) mayor con glucosa   como sustrato que con el resto de los ingredientes   prebi&oacute;ticos. Este comportamiento fue similar a las   6 y 12 h de fermentaci&oacute;n. La menor cantidad de &aacute;cido l&aacute;ctico producida por las diferentes fuentes de carbono utilizadas fue con las inulinas. En los &aacute;cidos grasos de cadena corta, al inicio de la fermentaci&oacute;n el utilizar albedo de naranja result&oacute; en valores significativamente mayores (P &lt; 0,05) que con el resto de los ingredientes prebi&oacute;ticos o glucosa, comportamiento que se observ&oacute; a las 6 y 12 h de fermentaci&oacute;n. La producci&oacute;n de &aacute;cido propi&oacute;nico fue significativamente mayor (P &lt; 0,05) con glucosa que con los ingredientes  prebi&oacute;ticos durante los intervalos de muestreo de la fermentaci&oacute;n. Finalmente, para el &aacute;cido but&iacute;rico la fermentaci&oacute;n de inulina de achicoria tuvo valores significativamente mayores (P &lt; 0,05) al inicio y a las 6 y 12 h, en comparaci&oacute;n con el resto de ingredientes prebi&oacute;ticos o glucosa.</p>     <p align="center"><a name="t4"></a><img src="/img/revistas/vitae/v19n3/v19n3a3t4.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p> En la <a href="#t5">Tabla 5</a> se presenta los resultados de la producci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos de cadena corta para las fermentaciones de <i>A. viridans</i> con las diferentes fuentes de carbono al 1%. Para este microorganismo, la producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico fue significativamente mayor (P &lt; 0,05) al utilizar inulina de achicoria al inicio, 6 y 12 h de fermentaci&oacute;n. La producci&oacute;n de &aacute;cido ac&eacute;tico fue significativamente mayor (P &lt; 0,05) con glucosa durante toda la fermentaci&oacute;n que con las otras fuentes de carbono. La producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico y &aacute;cido propi&oacute;nico fue significativamente mayor (P &lt; 0,05) durante toda la fermentaci&oacute;n con inulina de achicoria. Las inulinas de achicoria y agave tuvieron un mayor efecto en la producci&oacute;n de &aacute;cido propi&oacute;nico y but&iacute;rico.</p>     <p align="center"><a name="t5"></a><img src="/img/revistas/vitae/v19n3/v19n3a3t5.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p> El contenido de prote&iacute;na pudo deberse a la naturaleza   de las muestras, su estado de maduraci&oacute;n y al   contenido de glucoprote&iacute;nas presentes en la pared   celular primaria donde &eacute;stas forman estructuras con   la celulosa (20). El mayor contenido de fibra total   (P &lt; 0,05) se present&oacute; con el albedo de naranja a   55,72%, resultado que se da probablemente por la   presencia de celulosa, hemicelulosa y lignina en la   composici&oacute;n de la naranja, siendo estos compuestos una fuente de fibra insoluble (21).</p>     <p>  La tendencia de las curvas de crecimiento   muestran una fase exponencial prolongada, sin   transiciones que indiquen un crecimiento di&aacute;xico   o poli&aacute;uxico, lo que indica la continuidad en el   consumo de sustrato para la producci&oacute;n de biomasa   (22); adem&aacute;s, una fase de inducci&oacute;n para el consumo   de estos sustratos no es necesaria, por lo que   son igual de buenos que la glucosa para soportar   el crecimiento (23). La corta duraci&oacute;n de la fase de   adaptaci&oacute;n con inulina y albedo de naranja refleja   una &oacute;ptima adaptaci&oacute;n al medio de cultivo tanto con   <i>P. pentosaceus</i> como con <i>A. viridans</i>, resaltando una   diferencia entre ambas cepas respecto a la velocidad   de crecimiento y n&uacute;mero de c&eacute;lulas viables durante   el experimento, lo cual se relaciona con lo reportado   por Kaplan <i>et al.</i>, 2000 (23), donde muestran que   existe diferencia de crecimiento bacteriano entre diferentes   cepas (<i>Bifidobacterium y Lactobacillus</i>) al utilizar   fructooligosac&aacute;ridos como fuente de carbono.   Los valores mayores para k y g al cambiar la fuente   de carbono corroboran la capacidad fermentativa   de fructooligosac&aacute;ridos y/o pectinas por estas bacterias   l&aacute;cticas. Stewart <i><i>et al.</i></i>, 2008 (28), reportaron   una r&aacute;pida fermentaci&oacute;n de fructooligosac&aacute;ridos   comparados con inulina de achicoria, siendo importante   el grado de polimerizaci&oacute;n de la fuente de   carbono durante el crecimiento de las bacterias. La   composici&oacute;n de la fuente de carbono tiene efecto   marcado sobre la acidificaci&oacute;n (disminuci&oacute;n de   pH por la producci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos vol&aacute;tiles   y &aacute;cido l&aacute;ctico) y el crecimiento de probi&oacute;ticos   (bifidobacterias o lactobacilos), donde el metabolismo   fermentativo es m&aacute;s r&aacute;pido con oligofructosac&aacute;ridos   que con inulinas, ya que &eacute;stas &uacute;ltimas al   tener una mayor grado de polimerizaci&oacute;n tienen   un prolongado efecto bifidog&eacute;nico o prebi&oacute;tico   (24). Se ha reportado efectos positivos con relaci&oacute;n   al crecimiento de bacterias l&aacute;cticas usando fuentes   alternas de carbono, mostrando tasas espec&iacute;ficas de   crecimiento similares que con glucosa (25). En este   estudio se observ&oacute; un mejor crecimiento con fuentes   alternas de carbono a la glucosa; sin embargo,   algunos estudios han reportado un crecimiento m&aacute;s   lento con componentes prebi&oacute;ticos, en relaci&oacute;n con   las hexosas, pero con una biomasa final similar; lo   cual bajo las condiciones experimentales usadas en   este estudio demuestra un &oacute;ptimo aprovechamiento   de los carbohidratos en el AN o las inulinas (26).   Las diferencias en la velocidad de crecimiento entre   las diferentes cepas utilizadas puede atribuirse a las   preferencias individuales por una fuente de carbono   monom&eacute;rica (glucosa) en lugar de carbohidratos   oligom&eacute;ricos (27). El albedo de naranja contiene   una diversidad de carbohidratos en su composici&oacute;n,   siendo los azucares reductores, fibra diet&eacute;tica   soluble (21%) y fibra diet&eacute;tica insoluble (79%) los   aprovechables por las bacterias (28). Ghoddusi <i>et al.</i>, 2007 (29), reportaron un mejor crecimiento de   bacterias l&aacute;cticas al tener una combinaci&oacute;n de carbohidratos   como fuente de carbono en el medio de   cultivo, en comparaci&oacute;n con aquellas fermentaciones   donde s&oacute;lo usaban inulina u otros carbohidratos   por separado, lo cual est&aacute; relacionado con lo que se   obtuvo en este experimento al considerar al albedo   de naranja como un compuesto no purificado con diversos carbohidratos en su composici&oacute;n.</p>     <p> La adaptaci&oacute;n a un medio pobre en monosac&aacute;ridos   confiere un metabolismo altamente adaptable a   consumir oligo o polisac&aacute;ridos, dando una ventaja   competitiva a cierto tipo de bacterias, adem&aacute;s de   afectar fuertemente los productos de la fermentaci&oacute;n,   sobre todo en la producci&oacute;n de &aacute;cidos grasos   de cadena corta (22). La producci&oacute;n de &aacute;cidos grasos   de cadena corta var&iacute;a tanto en cantidad como en tipo   de &aacute;cido graso de cadena corta, lo cual est&aacute; en funci&oacute;n   del tipo de cepa y fuente de carbono utilizada   (30). Un incremento en la poblaci&oacute;n microbiana con   fuentes de carbono alternas a la glucosa supone un   incremento en la producci&oacute;n de metabolitos (32)   como lo son el &aacute;cido l&aacute;ctico, ac&eacute;tico propi&oacute;nico y but&iacute;rico (31, 33).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p> <font size="3"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p> Las tres fuentes de carbono utilizadas son una   buena fuente de fibra, siendo mayor el porcentaje   con albedo de naranja. Las bacterias l&aacute;cticas presentaron   un mayor crecimiento y una menor fase   de adaptaci&oacute;n cuando se utiliz&oacute; albedo de naranja   en comparaci&oacute;n con las dos inulinas, siendo estas &uacute;ltimas consideradas como prebi&oacute;ticos. Se concluye que el albedo de naranja present&oacute; mejores propiedades que las dos inulinas utilizadas, por lo que se considera su uso como prebi&oacute;tico potencial.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p> Juan D&iacute;az Vela agradece al Consejo Nacional   de Ciencia y Tecnolog&iacute;a (CONACyT), M&eacute;xico,   por el otorgamiento de la beca No. 224727 para sus   estudios de posgrado.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS </b></font></p>     <!-- ref --><p> 1.  Gibson GR, Roberfroid MB. Dietary modulation of the colonic   microbiota: Introducing the concept of prebiotics. J Nutr. 1995   Jun; 125 (6): 1401 - 1412.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0121-4004201200030000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>  2. Gibson GR, Probert HM, Van Loo JA, Rastall RA, Roberfroid   MB. Dietary modulation of the human colonic microbiota:   Updating the concept of prebiotics. Nutr Res Rev. 2004 Dec;   17 (2): 259 -275.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0121-4004201200030000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  3. Salminen S, Bouley C, Boutron-Ruault M, Cummings JH, Franck   A, Gibson GR, <i>et al.</i> Functional food science and gastrointestinal   physiology and function. Br J Nutr. 1998 Aug; 80 (1): 147 - 171.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0121-4004201200030000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  4. Cummings JI, Macfarlane GT, Englyst IN. Prebiotic digestion   and fermentation. Am J Clin Nutr. 2001 Feb; 73 (2): 415 - 420.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0121-4004201200030000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  5. Hijova E, Chmelarova A. Short chain fatty acids and colonic health.   Bratisl Lek Listy. 2007 Aug; 108 (8): 354 - 358.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0121-4004201200030000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  6. Roberfroid MB. Dietary fiber, inulin, and oligofructose. A review   comparing by their physiological effects. Crit Rev Food Sci Nutr.   1993 Feb; 33 (2): 103 - 148.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0121-4004201200030000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>  7. Hotchkiss AT, Olano-Martin E, Grace WE, Gibson GR, Rastall   RA. Pectic oligosaccharides as prebiotics. Oligosaccharides in   Food and Agriculture. Washington DC, Virginia: EUA: American   Chemical Society; 2003. 54 - 62 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0121-4004201200030000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  8. Dur&aacute;n-Mendoza T, Mendiola-Campuzano JVH, Urrieta-Saltijeral   JM, Hern&aacute;ndez-V&eacute;lez RM, Angulo-Guerrero O. Evaluaci&oacute;n de la   incorporaci&oacute;n de fibra diet&eacute;tica procedente del bagazo de naranja   en un embutido tipo longaniza. IV Simposio Internacional de   Ciencia y Tecnolog&iacute;a de <i>Alimentos</i>; 2008; Villahermosa, Tabasco:   M&eacute;xico; 351-359 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0121-4004201200030000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  9. AOAC. Official methods of analysis of the Association of Official   Analytical Chemist International. Total, soluble and insoluble   dietary fiber in foods. Method 991.43. Washington DC, Virginia:   EUA; 1999.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0121-4004201200030000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  10. Ram&iacute;rez-Chavar&iacute;n NL, Wacher-Rodarte C, P&eacute;rez-Chabela ML.   Characterization and identification of thermotolerant lactic acid   bacteria isolated from cooked sausages as bioprotective cultures.   J Muscle Foods. 2010 Jul; 21 (3): 585 - 596.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0121-4004201200030000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  11. De Man JC, Rogosa M, Sharpe ME. A medium for the cultivation   of lactobacilli. J App Bacteriol. 1960 Apr; 23 (1): 130 - 135.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0121-4004201200030000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>  12. Mu&ntilde;oa FJ. Pares R. Selective medium for isolation and enumeration   of <i>Bifidobacterium</i> spp. App Environ Microbiol. 1988 Jul;   54 (7): 1715 - 1718.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0121-4004201200030000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  13. Bustamante P, Mayorga L, Ram&iacute;rez H, Mart&iacute;nez P, Barranco E,   Azaola A. Evaluaci&oacute;n microbiol&oacute;gica de compuestos con actividad   prebi&oacute;tica. Rev Mex C Farm. 2006 Apr-Jun; 37 (2): 5 - 9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0121-4004201200030000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  14. Stanbury PF, Whitaker A, Hall SJ. Principles of Fermentation   Technology. 2<sup>th</sup> ed. Oxford, Inglaterra: Butterworth Heinemann;   1995. 13 - 31 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0121-4004201200030000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  15. Manderson K, Pinart M, Tuohy KM, Grace WE, Hotchkiss AT,   Widmer W, <i>et al.</i> <i>In vitro</i> determination of prebiotic properties   of oligosaccharides derived from an orange juice manufacturing   by-product stream. App Environ Microbiol. 2005 Dec; 71 (12):   8383 - 8389.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0121-4004201200030000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  16. Garau MC, Simal S, Rossell&oacute; C, Femenia A. Effect of air-drying   temperatura on physico-chemical properties of dietary fiber and   antioxidant capacity of orange (<i>Citrus aurantium v. Canoneta</i>) byproducts.   Food Chem. 2007 Jan; 104 (3): 1014 - 1024.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0121-4004201200030000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>  17. Clements RL. Organic acids in citrus fruits. II. Seasonal changes   in the orange. J Food Sci. 1964 May; 29 (3): 281 - 286.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0121-4004201200030000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  18. Agust&iacute; M, Mart&iacute;nez-Fuentes A, Mesejo C. Citrus fruit quality.   Physiological basis and techniques of improvement. Agrociencia.   2002 Sep; 6 (2): 1 - 16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0121-4004201200030000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  19. Storey R, Treeby MT. The morphology of epicuticular wax and   albedo cells of orange fruit in relation to albedo breakdown. J   Hort Sci Biotechnol. 1994 Feb; 69 (2): 329 - 338.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0121-4004201200030000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  20. Carpita NC. Gibeaut DM. Structural models of primary cell   walls in flowering plants: consistency of molecular structure   with the physical properties of the walls during growth. Plant J.   1993 Jan; 3 (1): 1 - 30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0121-4004201200030000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  21. Lario Y, Sendra E, Garc&iacute;a-P&eacute;rez J, Fuentes C, Sayas-Barber&aacute; E,   Fern&aacute;ndez-L&oacute;pez, J, <i>et al.</i> Preparation of high dietary fiber powder   from lemon juice by-products. Inn Food Sci Emerg Technol.   2004 Mar; 5 (1): 113 - 117.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0121-4004201200030000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>  22. Rossi M, Corradini C, Amaretti A, Nicolini M, Pompei A, Zanoni   S, <i>et al.</i> Fermentation of fructooligosaccharides and inulin by   bifidobacteria: a comparative study of pure and fecal cultures.   App Environ Microbiol. 2005 Oct; 71 (10): 6150 - 6158.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0121-4004201200030000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  23. Kaplan H, Hutkins RW. Fermentation of fructooligosaccharides   by lactic acid bacteria and bifidobacteria. App Environ Microbiol.   2000 Jun; 66 (6): 2682 - 2684.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0121-4004201200030000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  24. Pompei A, Cordisco L, Raimondi S, Amaretti A, Pagnoni U,   Matteuzzi D, <i>et al.</i><i> In vitro</i> comparison of the prebiotic effects of   two inulin-type fructans. Anaerobe. 2008 Nov; 14 (5): 280 - 286.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0121-4004201200030000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  25. Cardelle-Cobas A, Corzo N, Olano A, Pel&aacute;ez C, Requena T, &Aacute;vila   M. Galactooligosaccharides derived from lactose and lactulose:   influence of structure on <i>Lactobacillus, Streptococcus</i> and <i>Bifidobacterium   growth</i>. Int J Food Microbiol. 2011 Sep; 149 (1): 81 - 87.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0121-4004201200030000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  26. Yeo SK, Liong MT. Effect of prebiotics on viability and growth   characteristics of probiotics in soymilk. J Sci Food Agric. 2010   Jan; 90 (2): 267 - 275.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0121-4004201200030000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>  27. Gopal P, Sullivan P, Smart J. Utilisation of galactooligosaccharides   as selective sustrates for growth by lactic acid bacteria including   <i>Bifidobacterium lactis</i> DR10 and <i>Lactobacillus rhamnosus </i>DR20 . Int   Dairy J. 2001 Jan; 11 (1-2): 19 - 25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0121-4004201200030000300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  28. Aravantinos-Zafiris G, Oreopoulou V, Thomopoulos CD. Fibre   fraction from orange peel residues after pectin extraction. Food   Sci Technol-LEB. 1994 Oct; 27 (5): 468 - 471.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0121-4004201200030000300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  29. Ghoddusi HB, Grandison MA, Grandison AS, Tuohy KM. <i>In   vitro</i> study on gas generation and prebiotic effect of some carbohydrates   and their mixtures. Anaerobe. 2007 Oct-Dec; 13   (5-6): 193 - 199.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0121-4004201200030000300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  30. Hernandez-Hernandez O, Sanz ML, Kolida S, Rastall RA, Moreno   J. In vitro fermentation by human gut bacteria of proteolytically   digested caseinomacropeptide nonenzymatically glycosylated   with prebiotic carbohydrates. J Agric Food Chem. 2011 Nov;   59 (22): 11949 - 11955.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0121-4004201200030000300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  31. Stewart ML, Timm DA, Slavin JL. Fructooligosaccharides exhibit   more rapid fermentation than long-chain inulin in an<i> in vitro</i>   fermentation system. Nutr Res. 2008 May; 28 (5): 329 - 334.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0121-4004201200030000300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>  32. Cardelle-Cobas A, Olano A, Corzo N, Villamiel M, Collins M,   Kolida S, <i>et al.</i><i> In vitro</i> fermentation of lactulose-derived oligosaccherides   by mixed fecal microbiota. J Agric Food Chem. 2012   Feb; 60 (8): 2024 - 2032.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0121-4004201200030000300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  33. Chen J, Liang R-h, Liu W, Li T, Liu Ch-m, Wu S, <i>et al.</i> Pecticoligosaccherides   prepared by dynamic high-pressure microfluidization   and their in vitro fermentation properties. Carbohydr Polym 2013 Jan; 91 (1): 175 - 182.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0121-4004201200030000300033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <p>&nbsp;</p> </font>      ]]></body><back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<label>1</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Gibson]]></surname>
<given-names><![CDATA[GR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Roberfroid]]></surname>
<given-names><![CDATA[MB.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Dietary modulation of the colonic microbiota: Introducing the concept of prebiotics]]></article-title>
<source><![CDATA[J Nutr]]></source>
<year>1995</year>
<month> J</month>
<day>un</day>
<volume>125</volume>
<numero>6</numero>
<issue>6</issue>
<page-range>1401 - 1412</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<label>2</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Gibson]]></surname>
<given-names><![CDATA[GR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Probert]]></surname>
<given-names><![CDATA[HM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Van]]></surname>
<given-names><![CDATA[Loo JA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rastall]]></surname>
<given-names><![CDATA[RA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Roberfroid]]></surname>
<given-names><![CDATA[MB.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Dietary modulation of the human colonic microbiota: Updating the concept of prebiotics]]></article-title>
<source><![CDATA[Nutr Res Rev]]></source>
<year>2004</year>
<month> D</month>
<day>ec</day>
<volume>17</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>259 -275</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<label>3</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Salminen]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bouley]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Boutron-Ruault]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cummings]]></surname>
<given-names><![CDATA[JH]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Franck]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gibson]]></surname>
<given-names><![CDATA[GR]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Functional food science and gastrointestinal physiology and function]]></article-title>
<source><![CDATA[Br J Nutr]]></source>
<year>1998</year>
<month> A</month>
<day>ug</day>
<volume>80</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>147 - 171</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<label>4</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Cummings]]></surname>
<given-names><![CDATA[JI]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Macfarlane]]></surname>
<given-names><![CDATA[GT]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Englyst]]></surname>
<given-names><![CDATA[IN.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Prebiotic digestion and fermentation]]></article-title>
<source><![CDATA[Am J Clin Nutr]]></source>
<year>2001</year>
<month> F</month>
<day>eb</day>
<volume>73</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>415 - 420</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<label>5</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hijova]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Chmelarova]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Short chain fatty acids and colonic health]]></article-title>
<source><![CDATA[Bratisl Lek Listy]]></source>
<year>2007</year>
<month> A</month>
<day>ug</day>
<volume>108</volume>
<numero>8</numero>
<issue>8</issue>
<page-range>354 - 358</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B6">
<label>6</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Roberfroid]]></surname>
<given-names><![CDATA[MB.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Dietary fiber, inulin, and oligofructose. A review comparing by their physiological effects]]></article-title>
<source><![CDATA[Crit Rev Food Sci Nutr]]></source>
<year>1993</year>
<month> F</month>
<day>eb</day>
<volume>33</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>103 - 148</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B7">
<label>7</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hotchkiss]]></surname>
<given-names><![CDATA[AT]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Olano-Martin]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Grace]]></surname>
<given-names><![CDATA[WE]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gibson]]></surname>
<given-names><![CDATA[GR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rastall]]></surname>
<given-names><![CDATA[RA]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Pectic oligosaccharides as prebiotics. Oligosaccharides in Food and Agriculture]]></source>
<year>2003</year>
<page-range>54 - 62</page-range><publisher-loc><![CDATA[Washington^eDC DC]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[American Chemical Society]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B8">
<label>8</label><nlm-citation citation-type="confpro">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Durán-Mendoza]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mendiola-Campuzano]]></surname>
<given-names><![CDATA[JVH]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Urrieta-Saltijeral]]></surname>
<given-names><![CDATA[JM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hernández-Vélez]]></surname>
<given-names><![CDATA[RM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Angulo-Guerrero]]></surname>
<given-names><![CDATA[O]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Evaluación de la incorporación de fibra dietética procedente del bagazo de naranja en un embutido tipo longaniza]]></source>
<year>2008</year>
<conf-name><![CDATA[IV Simposio Internacional de Ciencia y Tecnología de Alimentos]]></conf-name>
<conf-loc> </conf-loc>
<page-range>351-359</page-range><publisher-loc><![CDATA[Villahermosa^eTabasco Tabasco]]></publisher-loc>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B9">
<label>9</label><nlm-citation citation-type="">
<collab>AOAC</collab>
<source><![CDATA[Official methods of analysis of the Association of Official Analytical Chemist International. Total, soluble and insoluble dietary fiber in foods. Method 991.43]]></source>
<year>1999</year>
<publisher-loc><![CDATA[Washington^eDC DC]]></publisher-loc>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B10">
<label>10</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ramírez-Chavarín]]></surname>
<given-names><![CDATA[NL]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wacher-Rodarte]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pérez-Chabela]]></surname>
<given-names><![CDATA[ML.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Characterization and identification of thermotolerant lactic acid bacteria isolated from cooked sausages as bioprotective cultures]]></article-title>
<source><![CDATA[J Muscle Foods]]></source>
<year>2010</year>
<month> J</month>
<day>ul</day>
<volume>21</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>585 - 596</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B11">
<label>11</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[De Man]]></surname>
<given-names><![CDATA[JC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rogosa]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sharpe]]></surname>
<given-names><![CDATA[ME.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[A medium for the cultivation of lactobacilli]]></article-title>
<source><![CDATA[J App Bacteriol]]></source>
<year>1960</year>
<month> A</month>
<day>pr</day>
<volume>23</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>130 - 135</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B12">
<label>12</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Muñoa]]></surname>
<given-names><![CDATA[FJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pares]]></surname>
<given-names><![CDATA[R.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Selective medium for isolation and enumeration of Bifidobacterium spp]]></article-title>
<source><![CDATA[App Environ Microbiol]]></source>
<year>1988</year>
<month> J</month>
<day>ul</day>
<volume>54</volume>
<numero>7</numero>
<issue>7</issue>
<page-range>1715 - 1718</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B13">
<label>13</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Bustamante]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mayorga]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ramírez]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Martínez]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Barranco]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Azaola]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación microbiológica de compuestos con actividad prebiótica]]></article-title>
<source><![CDATA[Rev Mex C Farm.]]></source>
<year>2006</year>
<month> A</month>
<day>pr</day>
<volume>37</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>5 - 9</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B14">
<label>14</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Stanbury]]></surname>
<given-names><![CDATA[PF]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Whitaker]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hall]]></surname>
<given-names><![CDATA[SJ]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Principles of Fermentation Technology]]></source>
<year>1995</year>
<edition>2</edition>
<page-range>13 - 31</page-range><publisher-loc><![CDATA[Oxford ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Butterworth Heinemann]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B15">
<label>15</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Manderson]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pinart]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Tuohy]]></surname>
<given-names><![CDATA[KM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Grace]]></surname>
<given-names><![CDATA[WE]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hotchkiss]]></surname>
<given-names><![CDATA[AT]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Widmer]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[In vitro determination of prebiotic properties of oligosaccharides derived from an orange juice manufacturing by-product stream]]></article-title>
<source><![CDATA[App Environ Microbiol]]></source>
<year>2005</year>
<month> D</month>
<day>ec</day>
<volume>71</volume>
<numero>12</numero>
<issue>12</issue>
<page-range>8383 - 8389</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B16">
<label>16</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Garau]]></surname>
<given-names><![CDATA[MC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Simal]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rosselló]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Femenia]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of air-drying temperatura on physico-chemical properties of dietary fiber and antioxidant capacity of orange (Citrus aurantium v. Canoneta) byproducts]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Chem]]></source>
<year>2007</year>
<month> J</month>
<day>an</day>
<volume>104</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>1014 - 1024</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B17">
<label>17</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Clements]]></surname>
<given-names><![CDATA[RL]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Organic acids in citrus fruits. II. Seasonal changes in the orange]]></article-title>
<source><![CDATA[J Food Sci.]]></source>
<year>1964</year>
<month> M</month>
<day>ay</day>
<volume>29</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>281 - 286</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B18">
<label>18</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Agustí]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Martínez-Fuentes]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mesejo]]></surname>
<given-names><![CDATA[C.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Citrus fruit quality. Physiological basis and techniques of improvement]]></article-title>
<source><![CDATA[Agrociencia]]></source>
<year>2002</year>
<month> S</month>
<day>ep</day>
<volume>6</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>1 - 16</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B19">
<label>19</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Storey]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Treeby]]></surname>
<given-names><![CDATA[MT.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The morphology of epicuticular wax and albedo cells of orange fruit in relation to albedo breakdown]]></article-title>
<source><![CDATA[J Hort Sci Biotechnol]]></source>
<year>1994</year>
<month> F</month>
<day>eb</day>
<volume>69</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>329 - 338</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B20">
<label>20</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Carpita]]></surname>
<given-names><![CDATA[NC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gibeaut]]></surname>
<given-names><![CDATA[DM.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Structural models of primary cell walls in flowering plants: consistency of molecular structure with the physical properties of the walls during growth]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant J]]></source>
<year>1993</year>
<month> J</month>
<day>an</day>
<volume>3</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>1 - 30</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B21">
<label>21</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Lario]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sendra]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[García-Pérez]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fuentes]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sayas-Barberá]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fernández-López,]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Preparation of high dietary fiber powder from lemon juice by-products]]></article-title>
<source><![CDATA[Inn Food Sci Emerg Technol]]></source>
<year>2004</year>
<month> M</month>
<day>ar</day>
<volume>5</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>113 - 117</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B22">
<label>22</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Rossi]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Corradini]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Amaretti]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Nicolini]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pompei]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zanoni]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Fermentation of fructooligosaccharides and inulin by bifidobacteria: a comparative study of pure and fecal cultures]]></article-title>
<source><![CDATA[App Environ Microbiol]]></source>
<year>2005</year>
<month> O</month>
<day>ct</day>
<volume>71</volume>
<numero>10</numero>
<issue>10</issue>
<page-range>6150 - 6158</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B23">
<label>23</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Kaplan]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hutkins]]></surname>
<given-names><![CDATA[RW.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Fermentation of fructooligosaccharides by lactic acid bacteria and bifidobacteria]]></article-title>
<source><![CDATA[App Environ Microbiol]]></source>
<year>2000</year>
<month> J</month>
<day>un</day>
<volume>66</volume>
<numero>6</numero>
<issue>6</issue>
<page-range>2682 - 2684</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B24">
<label>24</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Pompei]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cordisco]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Raimondi]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Amaretti]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pagnoni]]></surname>
<given-names><![CDATA[U]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Matteuzzi]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[In vitro comparison of the prebiotic effects of two inulin-type fructans]]></article-title>
<source><![CDATA[Anaerobe]]></source>
<year>2008</year>
<month> N</month>
<day>ov</day>
<volume>14</volume>
<numero>5</numero>
<issue>5</issue>
<page-range>280 - 286</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B25">
<label>25</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Cardelle-Cobas]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Corzo]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Olano]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Peláez]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Requena]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ávila]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Galactooligosaccharides derived from lactose and lactulose: influence of structure on Lactobacillus, Streptococcus and Bifidobacterium growth]]></article-title>
<source><![CDATA[Int J Food Microbiol]]></source>
<year>2011</year>
<month> S</month>
<day>ep</day>
<volume>149</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>81 - 87</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B26">
<label>26</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Yeo]]></surname>
<given-names><![CDATA[SK]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Liong]]></surname>
<given-names><![CDATA[MT.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of prebiotics on viability and growth characteristics of probiotics in soymilk]]></article-title>
<source><![CDATA[J Sci Food Agric]]></source>
<year>2010</year>
<month> J</month>
<day>an</day>
<volume>90</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>267 - 275</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B27">
<label>27</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Gopal]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sullivan]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Smart]]></surname>
<given-names><![CDATA[J.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Utilisation of galactooligosaccharides as selective sustrates for growth by lactic acid bacteria including Bifidobacterium lactis DR10 and Lactobacillus rhamnosus DR20]]></article-title>
<source><![CDATA[Int Dairy J]]></source>
<year>2001</year>
<month> J</month>
<day>an</day>
<volume>11</volume>
<numero>1-2</numero>
<issue>1-2</issue>
<page-range>19 - 25</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B28">
<label>28</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Aravantinos-Zafiris]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Oreopoulou]]></surname>
<given-names><![CDATA[V]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Thomopoulos]]></surname>
<given-names><![CDATA[CD.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Fibre fraction from orange peel residues after pectin extraction]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Sci Technol-LEB]]></source>
<year>1994</year>
<month> O</month>
<day>ct</day>
<volume>27</volume>
<numero>5</numero>
<issue>5</issue>
<page-range>468 - 471</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B29">
<label>29</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ghoddusi]]></surname>
<given-names><![CDATA[HB]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Grandison]]></surname>
<given-names><![CDATA[MA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Grandison]]></surname>
<given-names><![CDATA[AS]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Tuohy]]></surname>
<given-names><![CDATA[KM.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[In vitro study on gas generation and prebiotic effect of some carbohydrates and their mixtures]]></article-title>
<source><![CDATA[Anaerobe]]></source>
<year>2007</year>
<month> O</month>
<day>ct</day>
<volume>13</volume>
<numero>5-6</numero>
<issue>5-6</issue>
<page-range>193 - 199</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B30">
<label>30</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hernandez-Hernandez]]></surname>
<given-names><![CDATA[O]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sanz]]></surname>
<given-names><![CDATA[ML]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kolida]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rastall]]></surname>
<given-names><![CDATA[RA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Moreno]]></surname>
<given-names><![CDATA[J.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[In vitro fermentation by human gut bacteria of proteolytically digested caseinomacropeptide nonenzymatically glycosylated with prebiotic carbohydrates]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>2011</year>
<month> N</month>
<day>ov</day>
<volume>59</volume>
<numero>22</numero>
<issue>22</issue>
<page-range>11949 - 11955</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B31">
<label>31</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Stewart]]></surname>
<given-names><![CDATA[ML]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Timm]]></surname>
<given-names><![CDATA[DA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Slavin]]></surname>
<given-names><![CDATA[JL.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Fructooligosaccharides exhibit more rapid fermentation than long-chain inulin in an in vitro fermentation system]]></article-title>
<source><![CDATA[Nutr Res]]></source>
<year>2008</year>
<month> M</month>
<day>ay</day>
<volume>28</volume>
<numero>5</numero>
<issue>5</issue>
<page-range>329 - 334</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B32">
<label>32</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Cardelle-Cobas]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Olano]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Corzo]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Villamiel]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Collins]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kolida]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[In vitro fermentation of lactulose-derived oligosaccherides by mixed fecal microbiota]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>2012</year>
<month> F</month>
<day>eb</day>
<volume>60</volume>
<numero>8</numero>
<issue>8</issue>
<page-range>2024 - 2032</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B33">
<label>33</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Chen]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Liang]]></surname>
<given-names><![CDATA[R-h]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Liu]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Li]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Liu]]></surname>
<given-names><![CDATA[Ch-m]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wu]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Pecticoligosaccherides prepared by dynamic high-pressure microfluidization and their in vitro fermentation properties]]></article-title>
<source><![CDATA[Carbohydr Polym]]></source>
<year>2013</year>
<month> J</month>
<day>an</day>
<volume>91</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>175 - 182</page-range></nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
