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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[DIAGNÓSTICO DE LA LEISHMANIASIS VISCERAL CANINA MEDIANTE LAS TÉCNICAS WESTERN BLOT E INMUNOFLUORESCENCIA INDIRECTA]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[CANINE VISCERAL LEISHMANIASIS DIAGNOSIS BY MEANS OF WESTERN BLOT AND INDIRECT IMMUNOFLUORESCENCE TEST]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[DIAGNÓSTICO DE LEISHMANIOSE VISCERAL CANINA ATRAVÉS DA TÉCNICA DE WESTERN BLOT E IMUNOFLUORESCENCIA]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective: a cross-sectional epidemiological study was carried out in order to establish the prevalence of canine visceral leishmaniasis in the endemic area of Tolima department by means of Indirect Immunofluorescence (IFAT) and Western Blotting (WB) tests. Materials and Methods: the study included 211 mongrel dogs from six municipalities of the endemic area of visceral leishmaniasis (VL) of the Tolima department. The Colombian Leishmania infantum MHOM/CO/CL044B strain was used as antigen for IFI and WB. Results: The seroprevalence in the group tested was 41.7% and 22.2% by IFAT and WB, respectively. The agreement between the two techniques was negative (k = -0.102; p = 0.084). 12 antigenic fractions were detected between 13 and 91 kDa, of which 14 kDa is considered valuable in early diagnosis of the infection, in order to evaluate the resolution of the disease and treatment progress. The article suggests developing a construct of direct and indirect diagnostic tests for confirming the real state of the animals’ infection to guide disease control programs in endemic areas of visceral leishmaniasis.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Objetivo: uma pesquisa epidemiológica transversal foi desenvolvida para estabelecer a soro- prevalência da Leishmaniose Visceral (LV) canina localizados na zona endêmica do Estado do Tolima por médio das provas de Imunofluorescência indireta (IFI) e Western Blot (WB). Materiais e Métodos se incluíram na pesquisa 211 canina mestiça procedente de seis prefeituras da zona endêmica de Leishmaniose visceral do Estado de Tolima. Utilizou-se como antígeno a cepa Colombiana de Leishmania infantum MHOM/COL/CL044B para IFI e WB. Resultados: Se estabeleceu uma Soroprevalência da Leishmaniose Visceral canina no grupo de animais avaliados do 41,7 e 22, 2% por meio de IFI e WB, respectivamente. A concordância entre as duas técnicas foi negativa (k = - 0,102; p = 0,084). Destacaram se 12 frações antigênicas na prova WB entre os 13 e 91 kDa, das quais a de 14 kDa considera se valiosa no diagnostico preços da infecção, para avaliar a resolução da enfermidade e a evolução do tratamento. Sugira se desenvolver um constructo de provas diagnostica direitas que permitam confirmar o estado real da infecção dos caninos, para orientar eficientemente os programas de controle da enfermidade em zonas de Leishmaniose visceral.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p>    <center><font face="verdana" size="3"><b>DIAGN&Oacute;STICO DE LA LEISHMANIASIS VISCERAL CANINA MEDIANTE LAS T&Eacute;CNICAS WESTERN BLOT E INMUNOFLUORESCENCIA INDIRECTA    <br>    <br> CANINE VISCERAL LEISHMANIASIS DIAGNOSIS BY MEANS OF WESTERN BLOT AND INDIRECT IMMUNOFLUORESCENCE TEST    <br>    <br> DIAGN&Oacute;STICO DE LEISHMANIOSE VISCERAL CANINA ATRAV&Eacute;S DA T&Eacute;CNICA DE WESTERN BLOT E IMUNOFLUORESCENCIA</b></font></center></p> <font face="verdana" size="2">     <p>     <center>Marlyn Romero Pe&ntilde;uela<a href="#not_">*</a>    <br> Jorge S&aacute;nchez Valencia<a href="#not1">**</a>    <br> Linda Carolina Hayek Pe&ntilde;uela<a href="#not2">***</a></center> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <a name="not_">*</a> M&eacute;dica Veterinaria y Zootecnista, Mag&iacute;ster en Ciencias Biol&oacute;gicas. Universidad de Caldas, Facultad de Ciencias Agropecuarias. Grupo de Investigaci&oacute;n CIENVET. Manizales, Colombia. E-mail: <a href="mailto:marlyn.romero@ucaldas.edu.co">marlyn.romero@ucaldas.edu.co</a>    <br> <a name="not1">**</a> M&eacute;dico Veterinario y Zootecnista. Mag&iacute;ster en Salud y Producci&oacute;n Animal. Universidad de Caldas, Facultad de Ciencias Agropecuarias. Grupo de Investigaci&oacute;n CIENVET. Manizales, Colombia. E-mail: <a href="mailto:jorge.sanchez@ucaldas.edu.co">jorge.sanchez@ucaldas.edu.co</a>    <br> <a name="not2">***</a> M&eacute;dica Veterinaria y Zootecnista. Esp. Laboratorio ANIMED, Bogot&aacute;, Colombia. E-mail: <a href="mailto:linda.hayek@carval.co">linda.hayek@carval.co</a> </p>     <p>     <center>Recibido en enero 18 de 2010, aceptado en marzo 3 de 2010</center> </p> <hr>    <br>     <center><b>Resumen</b></center>     <p> <b>Objetivo</b>: un estudio epidemiol&oacute;gico transversal fue desarrollado para establecer la seroprevalencia de la Leishmaniasis Visceral (LV) en caninos localizados en la zona end&eacute;mica del departamento del Tolima por medio de las pruebas de Inmunofluorescencia Indirecta (IFI) y Western Blot (WB). <b>Materiales y m&eacute;todos</b>: se incluyeron en el estudio 211 caninos mestizos procedentes de seis municipios de la zona end&eacute;mica de leishmaniasis visceral del departamento del Tolima. Se utiliz&oacute; como ant&iacute;geno la cepa colombiana de <i>Leishmania infantum</i> MHOM/COL/CL044B para IFI y WB. <b>Resultados</b>: se estableci&oacute; una seroprevalencia de la Leishmaniasis Visceral Canina en el grupo de animales evaluados del 41,7 y 22,2% por medio de IFI y WB, respectivamente. La concordancia entre las dos t&eacute;cnicas fue negativa (k = -0,102; p = 0,084). Se detectaron 12 fracciones antig&eacute;nicas en la prueba WB entre los 13 y 91 kDa, de las cuales la de 14 kDa se considera valiosa en el diagn&oacute;stico precoz de la infecci&oacute;n, para evaluar la resoluci&oacute;n de la enfermedad y la evoluci&oacute;n del tratamiento. Se sugiere desarrollar un constructo de pruebas diagn&oacute;sticas directas e indirectas que permitan confirmar el estado real de la infecci&oacute;n de los caninos, para orientar eficientemente los programas de control de la enfermedad en zonas end&eacute;micas de leishmaniasis visceral. </p>     <center><b>Palabras clave</b></center>     <p> Leishmaniasis Visceral (LV), western blot, infecci&oacute;n natural, control. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<center><b>Abstract</b></center>     <p> <b>Objective</b>: a cross-sectional epidemiological study was carried out in order to establish the prevalence of canine visceral leishmaniasis in the endemic area of Tolima department by means of Indirect Immunofluorescence (IFAT) and Western Blotting (WB) tests. <b>Materials and Methods</b>: the study included 211 mongrel dogs from six municipalities of the endemic area of visceral leishmaniasis (VL) of the Tolima department. The Colombian <i>Leishmania infantum</i> MHOM/CO/CL044B strain was used as antigen for IFI and WB. <b>Results</b>: The seroprevalence in the group tested was 41.7% and 22.2% by IFAT and WB, respectively. The agreement between the two techniques was negative (k = -0.102; p = 0.084). 12 antigenic fractions were detected between 13 and 91 kDa, of which 14 kDa is considered valuable in early diagnosis of the infection, in order to evaluate the resolution of the disease and treatment progress. The article suggests developing a construct of direct and indirect diagnostic tests for confirming the real state of the animals’ infection to guide disease control programs in endemic areas of visceral leishmaniasis. </p>     <center><b>Key words</b></center>     <p> Visceral leishmaniasis (VL), western blot, natural infection, control. </p>     <center><b>Resumo</b></center>     <p> <b>Objetivo</b>: uma pesquisa epidemiol&oacute;gica transversal foi desenvolvida para estabelecer a soro- preval&ecirc;ncia da Leishmaniose  Visceral  (LV) canina localizados na zona end&ecirc;mica do Estado do Tolima por m&eacute;dio  das provas de Imunofluoresc&ecirc;ncia indireta (IFI) e Western Blot (WB). <b>Materiais e M&eacute;todos</b> se inclu&iacute;ram na pesquisa 211 canina mesti&ccedil;a procedente de seis prefeituras da zona end&ecirc;mica de Leishmaniose visceral do Estado de Tolima. Utilizou-se como ant&iacute;geno a cepa Colombiana de <i>Leishmania infantum</i> MHOM/COL/CL044B para IFI e WB. <b>Resultados</b>: Se estabeleceu uma Soropreval&ecirc;ncia da Leishmaniose Visceral canina no grupo de animais avaliados do 41,7 e 22, 2% por meio de IFI e WB, respectivamente. A concord&acirc;ncia entre as duas t&eacute;cnicas foi negativa (k = - 0,102; p = 0,084). Destacaram se 12 fra&ccedil;&otilde;es antig&ecirc;nicas na prova WB entre os 13 e 91 kDa, das quais a de 14 kDa considera se valiosa no diagnostico pre&ccedil;os da infec&ccedil;&atilde;o, para avaliar a resolu&ccedil;&atilde;o da enfermidade e a evolu&ccedil;&atilde;o do tratamento. Sugira se desenvolver um constructo de provas diagnostica direitas que permitam confirmar o estado real da infec&ccedil;&atilde;o dos caninos, para orientar eficientemente os programas de controle da enfermidade em zonas de Leishmaniose visceral. </p>     <center><b>Palavras chave</b></center>     <p> Leishmaniose Visceral (LV), western blot, infec&ccedil;&atilde;o natural, controle. </p> </font> <hr>    <br>     <center><font face="verdana" size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></center> <font face="verdana" size="2">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> La leishmaniasis visceral (LV) en Am&eacute;rica es una enfermedad sist&eacute;mica causada por protozoarios intracelulares del g&eacute;nero <i>Leishmania infantum</i> (=<i>L. chagasi</i>) y transmitida por la picadura de insectos flebotom&iacute;neos del g&eacute;nero <i>Lutzomyia (Lu.) longipalpis</i> y espor&aacute;dicamente <i>Lu. evansi</i> en Am&eacute;rica (1-3). La LVZ es end&eacute;mica en Colombia, pero el mayor n&uacute;mero de casos se presentan en los departamentos de C&oacute;rdoba, Sucre, Bol&iacute;var, Tolima y Huila (4). Los reservorios de mayor importancia son <i>Didelphis marsupialis</i> (chucha, fara, runcho) y <i>Canis familiares</i> (4-6). La enfermedad en los caninos presenta repercusiones en la Salud P&uacute;blica, por su car&aacute;cter zoon&oacute;tico, por la dificultad de realizar un diagn&oacute;stico precoz en esta especie, por el riesgo que representan en la transmisi&oacute;n de la enfermedad los caninos asintom&aacute;ticos y la relativa falta de eficiencia del tratamiento, que hacen de la enfermedad un problema importante en las zonas en donde los caninos infectados se convierten en la principal fuente de infecci&oacute;n (7, 8). </p>     <p> Tradicionalmente los m&eacute;todos de control de la LV se han basado en el tratamiento de las personas afectadas, en la disminuci&oacute;n de la densidad del vector e identificaci&oacute;n y eliminaci&oacute;n de caninos infectados (1). En los programas de Salud P&uacute;blica en el mundo se han utilizado las pruebas serol&oacute;gicas para la identificaci&oacute;n de animales infectados; teniendo en cuenta que el diagn&oacute;stico cl&iacute;nico de la leishmaniasis visceral canina (LVC) es dif&iacute;cil porque la sintomatolog&iacute;a es variable e inespec&iacute;fica (1, 7, 9); as&iacute; mismo, el diagn&oacute;stico definitivo depende del aislamiento parasitol&oacute;gico en cultivos o por detecci&oacute;n del DNA del par&aacute;sito por PCR (8). Las t&eacute;cnicas anteriores son costosas, invasivas, requieren de tiempo, personal calificado y equipos costosos (1, 9). </p>     <p> La prueba Western Blot (WB) ha sido propuesta para el estudio de LVZ en trabajos experimentales y de campo, porque se sugiere que las fracciones antig&eacute;nicas obtenidas con esta t&eacute;cnica, permiten detectar animales infectados y discriminan las fases iniciales de la infecci&oacute;n (10-12). A pesar de que con esta t&eacute;cnica se han desarrollado numerosos estudios con animales experimentalmente infectados, son escasos los realizados en zonas end&eacute;micas de Am&eacute;rica. El presente estudio se realiz&oacute; con el prop&oacute;sito de establecer la seroprevalencia de la infecci&oacute;n por LV en un grupo de caninos mestizos procedentes de la zona end&eacute;mica del sur del departamento del Tolima y comparar la concordancia de los resultados de esta t&eacute;cnica con los obtenidos mediante la prueba de Inmunofluorescencia Indirecta (IFI). </p> </font>     <center><font face="verdana" size="3"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></center> <font face="verdana" size="2">     <p> <b>Sueros</b>. El estudio se desarroll&oacute; usando 211 sueros caninos que fueron recolectados en los municipios del departamento del Tolima: Coyaima, Natagaima, Purificaci&oacute;n, Coello, Ataco y Ortega, zona localizada dentro del foco de transmisi&oacute;n de LV en Colombia. La toma de muestras de sangre se efectu&oacute; por venopunci&oacute;n de la vena cef&aacute;lica. </p>     <p> <b>Inmunofluorescencia –IFI–</b>. La t&eacute;cnica fue desarrollada siguiendo la metodolog&iacute;a descrita por Corredor et al. (4) empleando promastigotes en fase metac&iacute;clica de <i>L. infantum</i> cepa MHOM/COL/CL-044B cultivados en medio bif&aacute;sico NNN y replicados para la obtenci&oacute;n de cultivos en masa en medio Schneider&#39;s (Sigma) suplementado con 15% de suero fetal bovino. Se consideraron como t&iacute;tulos seropositivos aquellos &ge; 1:32 (4). </p>     <p> <b>Western Blot –WB–</b>. La prueba de Western blot se adapt&oacute; a partir de la metodolog&iacute;a descrita por Laemmli (13) y Towbin, Staehelin y Gordon (14) empleando como ant&iacute;geno un lisado de promastigotes de <i>L. infantum</i> cepa MHOM/COL/CL-044B en fase estacionaria, mantenidos en medio l&iacute;quido Schneider’s (Sigma, Saint Louis, Missouri, EUA) a una concentraci&oacute;n de 106 par&aacute;sitos por ml. La separaci&oacute;n por electroforesis se llev&oacute; a cabo en geles de poliacrilamida al 12% con SDS 0,1%. La diluci&oacute;n de los sueros fue de 1:200 y del conjugado de 1:20000. Se consider&oacute; WB como positivo cuando en ensayos por triplicado el suero de los caninos evaluados reaccionaba a la altura de pesos moleculares entre 14 kDa y 116 kDa, seg&uacute;n lo descrito por Vargas-Duarte et al. (12). </p>     <p> <b>Aspectos &eacute;ticos</b>. Se aplic&oacute; la Ley 84 de 1989 (15) y la Resoluci&oacute;n No. 8430 de 1993 del Ministerio de Salud (16). La toma de las muestras de los animales se realiz&oacute; contando con el consentimiento informado de los propietarios. </p>     <p> <b>An&aacute;lisis de resultados</b>. Mediante el programa Win Episcope 2.0 se calcul&oacute; la concordancia entre las t&eacute;cnicas utilizadas. </p> </font>     <center><font face="verdana" size="3"><b>RESULTADOS</b></font></center> <font face="verdana" size="2">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> La serorreactividad ante ant&iacute;genos totales de <i>L. infantum</i> en el grupo de caninos evaluados fue del 41,7% (88/221) por IFI y del 22,2% (47/211) por WB. La distribuci&oacute;n de los resultados obtenidos con las dos t&eacute;cnicas diagn&oacute;sticas se presenta en la <a href="#tab1">Tabla 1</a>, en donde se puede evidenciar que las dos t&eacute;cnicas no son concordantes en detectar los mismos animales como positivos (n = 15), teniendo en cuenta que IFI identific&oacute; como positivos 88 animales y WB 47. Con relaci&oacute;n a la prueba de WB, los sueros de los caninos reconocieron 12 fracciones antig&eacute;nicas entre los 13 y 91 kDa. Las bandas de 29, 60, 13 y 73 kDa, fueron las m&aacute;s frecuentes (23,1%, 23,1%, 12,8 y 10,3% respectivamente). La concordancia de los resultados establecidos por IFI y WB fue negativa (k = -0,102; p = 0,084). </p> </font>     <center><font face="verdana" size="3"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></center> <font face="verdana" size="2">     <p> La seroprevalencia de la LVC en el grupo de animales evaluados en el presente estudio por medio de las pruebas diagn&oacute;sticas IFI y WB (41,7 y 22,2% respectivamente) fue mayor a la establecida recientemente por otros investigadores en poblaciones caninas colombianas usando el mismo ant&iacute;geno y la t&eacute;cnica IFI en Neiva (17,2%) y en cuatro municipios del Huila por Inmunoensayo ligado a enzimas (ELISA) (28% en Villavieja, 14,9% en Villanueva, 10% en Palermo y 5,1% en Algeciras) (8, 17). Las diferencias en la seropositividad podr&iacute;an deberse a variaciones en la densidad de los vectores, factores ambientales y distribuci&oacute;n de los reservorios caninos en las dos zonas end&eacute;micas (3,17). </p>     <center><a name="tab1"><img src="img/revistas/hpsal/v15n1/v15n1a04t1.JPG"></a></center>     <p> Sin embargo, existe una marcada discordancia entre los resultados obtenidos con las dos t&eacute;cnicas diagn&oacute;sticas usadas, porque identificaron un n&uacute;mero diferente de animales seropositivos (<a href="#tab1">Tabla 1</a>) y por lo tanto no se estableci&oacute; correlaci&oacute;n entre ellas, al presentar un &iacute;ndice de Kappa negativo (k = -0,102), aspecto que difiere con lo reportado en Colombia por Vargas-Duarte et al. (12), quienes encontraron alta concordancia entre las dos t&eacute;cnicas, proponiendo que en condiciones de campo se empleen concomitantemente. En el presente estudio aunque se emple&oacute; el mismo ant&iacute;geno colombiano, los m&eacute;todos de obtenci&oacute;n fueron diferentes, porque se utilizaron ant&iacute;genos de superficie y solubles respectivamente, siendo posible que se est&eacute; identificando un grupo distinto de ep&iacute;topes (2,18), porque los promastigotes cultivados <i>in vitro</i> consisten en una amplia variedad de ant&iacute;genos som&aacute;ticos y componentes de superficie (2), siendo posible identificar un tipo distinto de ep&iacute;topes (18); o se puede deber a sus diferentes valores de sensibilidad y especificidad. Este &uacute;ltimo aspecto ha sido demostrado en el estudio reciente realizado en Colombia en animales experimentalmente infectados con <i>L. infantum</i>, en donde la t&eacute;cnica IFI demostr&oacute; una sensibilidad del 69,7% y una especificidad del 67,5%; a su vez WB present&oacute; valores del 57,6 y 100% de sensibilidad y especificidad, respectivamente (12); sin embargo, la prueba WB no increment&oacute; significativamente los niveles de detecci&oacute;n obtenidos por las pruebas IFI y ELISA en los animales infectados, pero s&iacute; logr&oacute; disminuir la detecci&oacute;n de animales falsos positivos (12). As&iacute; mismo, la baja especificidad de la prueba IFI se podr&iacute;a deber a la presencia de reacciones cruzadas con enfermedades causadas por otros tripanosom&aacute;tidos como la enfermedad de Chagas y la Leishmaniasis tegumentaria (1). </p>     <p> Con relaci&oacute;n a la t&eacute;cnica WB se ha descrito que no hay consenso con relaci&oacute;n al patr&oacute;n de reconocimiento propuesto por los diferentes investigadores para determinar la infecci&oacute;n en muestras caninas, porque la prueba es muy sensible y los resultados se pueden afectar por varios factores como: el tipo de ant&iacute;geno, los grados de reducci&oacute;n dependiendo de la concentraci&oacute;n de SDS y B-mercaptoetanol, la concentraci&oacute;n de poliacrilamida en los geles y el tipo de marcadores de peso molecular, as&iacute; como las diferentes particularidades epidemiol&oacute;gicas de cada una de las zonas end&eacute;micas (10, 19, 20), aspectos que podr&iacute;an explicar la diferencia de los resultados presentados en los dos estudios colombianos que han utilizado como prueba diagn&oacute;stica WB. </p>     <p> En el presente estudio se visualizaron 12 fracciones antig&eacute;nicas entre los 13 y 91 kDa, identificadas tambi&eacute;n por otros investigadores en Espa&ntilde;a y Colombia (10-12, 20). Se detectaron bandas de bajo peso molecular en los animales infectados (13 kDa), aspecto que concuerda con el patr&oacute;n antig&eacute;nico descrito por Vargas-Duarte et al. (12) en Colombia. Se ha sugerido que estas fracciones son muy sensibles en el diagn&oacute;stico de los casos asintom&aacute;ticos de LVC, report&aacute;ndose que aparecen mucho antes que los t&iacute;tulos de seropositividad establecidos por las pruebas de IFI y ELISA, siendo definidas como potencialmente diagn&oacute;sticas en fases tempranas de la enfermedad, cuando los animales son negativos o presentan bajos niveles de anticuerpos por medio de otras t&eacute;cnicas (11, 12, 19, 20). Esta prote&iacute;na de 14 kDa ha sido identificada como una prote&iacute;na nuclear denominada p 14 que persiste por muchos a&ntilde;os, siendo posible usarla para evaluar la resoluci&oacute;n de la enfermedad y la evoluci&oacute;n del tratamiento, porque desaparece cuando el tratamiento es efectivo o cuando se presenta mejora del estado cl&iacute;nico del canino (20, 21). </p>     <p> La t&eacute;cnica de WB ha sido catalogada como una t&eacute;cnica con alta especificidad con valores cercanos al 100%, cuando se consideran bandas espec&iacute;ficas, siendo muy &uacute;til en muestras con bajas concentraciones de anticuerpos (11, 18, 21). Sin embargo, al desarrollar la t&eacute;cnica en el presente estudio se pudo evidenciar como desventaja de WB, la dificultad de identificar las bandas, teniendo en cuenta que muchos fracciones antig&eacute;nicas tienen similares pesos moleculares y la complejidad de discriminarlas cuando son detectadas bandas superpuestas o muy seguidas, debido a la subjetividad de su lectura (11). </p> </font>     <center><font face="verdana" size="3"><b>CONCLUSIONES</b></font></center> <font face="verdana" size="2">     <p> Teniendo en cuenta la utilidad de las pruebas serol&oacute;gicas en el diagn&oacute;stico precoz de la LVC como una medida preventiva para la leishmaniasis visceral humana, se requiere el uso de pruebas precisas y confiables. Las dos t&eacute;cnicas evaluadas en el presente estudio: WB e IFI usando el ant&iacute;geno colombiano de <i>L. infantum</i> cepa MHOM/COL/CL-044B, demostraron baja concordancia en los resultados obtenidos, identificando como positivos a un grupo diferente de animales, lo cual puede conllevar a la eliminaci&oacute;n de animales no infectados y al mantenimiento de reservorios dom&eacute;sticos infectados en las zonas end&eacute;micas. De acuerdo a los resultados encontrados en el presente estudio, se sugiere desarrollar un algoritmo de pruebas diagn&oacute;sticas para confirmar el estado real de la infecci&oacute;n en animales susceptibles en las zonas end&eacute;micas de la enfermedad, aspecto fundamental para orientar las pol&iacute;ticas y recursos de Salud P&uacute;blica tendientes al control de esta importante zoonosis. </p> </font> <hr>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     <center><font face="verdana" size="3"><b>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</b></font></center> <font face="verdana" size="2">     <!-- ref --><p> 1. 	Alves WA, Bevilacqua PD. Quality of diagnosis of canine visceral Leishmaniasis in epidemiological surveys: an epidemic in Belo Horizonte, Minas Gerais, Brazil, 1993-1997. Cad. Saude P&uacute;blica 2004; 20(1):259-265.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000055&pid=S0121-7577201000010000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 2. 	Ferroglio, F, Centaro E, Mignone W, Trisciuoglio A. Evaluation o fan ELISA rapid device for the serological diagnosis of <i>Leishmania infantum</i> infection in dog as compared with immunofluorescence assay and Western blot. Vet. 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Corredor A, &Aacute;lvarez CA, Agudelo CA, Bueno M, L&oacute;pez MC, C&aacute;ceres E, et al. Prevalence of <i>Trypanosoma cruzi</i> and <i>Leishmania chagasi</i> infection and risk factors in a Colombian indigenous population. Rev. Inst. Med. Trop. Sao Paulo 1999; 41(4):229-234.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0121-7577201000010000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 5. 	Travi B. Un enfoque integral al estudio de animales reservorios, con &eacute;nfasis en las Leishmaniosis del Nuevo mundo. Med UIS 1998; 12:311-315.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0121-7577201000010000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 6. 	Ministerio de la Protecci&oacute;n Social de Colombia. Gu&iacute;a de Atenci&oacute;n de la Leishmaniasis 21; 2006.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0121-7577201000010000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 7. 	Travi B, Tabares C, Cadena H, Ferro C, Osorio Y. Canine Visceral Leishmaniasis in Colombia: relationship between clinical and parasitologic status and infectivity for sand flies. Am. J. Trop. Med. 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Evaluation of Enzyme-Linked Immunosorbent assays, an Immunofluorescent-antibody test, and two rapid tests (Immunochromatographic-Dipstick and gel tests) for serological diagnosis of symptomatic and asymptomatic <i>Leishmania</i> infections in dogs. J Clin Microbiol 2005; 43(11):5515-157.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0121-7577201000010000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 10. 	De Paula A, Da Silva A, Fernandes O, Jansen A. The use of immunoblot analysis in the diagnosis of canine visceral leishmaniasis in an endemic area of Rio de Janeiro. J Parasitol 2009; 89:832-836.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0121-7577201000010000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 11. 	Riera C, Valladares JE, Gallego M, Aisa M, Castillejo S, Fisa R, et al. Serological and parasitological follow-up in dogs experimentally infected with <i>Leishmania infantum</i> and treated with meglumine antimoniate. Vet. Parasitol. 1999; 84:33-47.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0121-7577201000010000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 12. 	Vargas-Duarte JJ, L&oacute;pez-P&aacute;ez MC, Escovar-Castro JE, Fern&aacute;ndez-Manrique J. Evaluaci&oacute;n por western blot, inmunofluorescencia indirecta y ELISA de perros infectados con <i>Leishmania (Leishmania) infantum</i>. Rev. Salud P&uacute;blica 2009; 11(4):641-652.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0121-7577201000010000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 13. 	Laemmli UK. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature 1970; 227:680-685.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0121-7577201000010000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 14. 	Towbin H, Staehelin T, Gordon J. Electrophoretic transfer of proteins from polyacrilamide gels to nitrocellulose sheets: procedures and some applications. Proc Natl Acad Sci USA 1979; 76:4350-4354.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0121-7577201000010000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 15. 	Congreso de la Rep&uacute;blica de Colombia. Ley 084 de 1989. Estatuto Nacional de Protecci&oacute;n de los animales. Diario Oficial, A&ntilde;o CXXVI. N.3912027; 1989. p. 1-14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0121-7577201000010000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 16. 	Ministerio de Salud, Rep&uacute;blica de Colombia. Resoluci&oacute;n No. 008430 de 1993. Investigaci&oacute;n en Salud; 1993. p. 1-20.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0121-7577201000010000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 17. 	Fern&aacute;ndez J, Bello F, L&oacute;pez MC, Moncada LI, Vargas JJ, Ayala MS, et al. Seroprevalencia de leishmaniosis visceral canina en la comuna 8 de Neiva y en cuatro municipios de Huila, Colombia. Biom&eacute;dica 2006; 26(Supl.1):121-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0121-7577201000010000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 18. 	Iniesta L, Fern&aacute;ndez-Barredo S, Bulle B, G&oacute;mez M, Piarrous R, Gallego M, et al. Diagnostic techiniques to detect cryptic leishmaniasis in dogs. Clin Diagn Lab Immnunol 2002; 9:1137-1141.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0121-7577201000010000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 19. 	Lasri S, Sahibi H, Natami A, Rhalem A. Western blot analysis of <i>Leishmania infantum</i> antigens using sera from pentamidine-treated dogs. Vet Immunol Immunopathol 2003; 91:13-18.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0121-7577201000010000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 20. 	Aisa M, Castillejo S, Gallego M, Fisa R, Riera M, Colmenares M, et al. Diagnostic potential of western blot analysis of sera from dogs with leihsmaniasis in endemic areas and significance of the pattern. Am J Trop Med Hug 1998; 58:154-159.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0121-7577201000010000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 21. 	Mary C, Lamouroux D, Dunan S, Quillci M. Western blot analysis of antibodies to <i>Leishmania infantum</i> antigens: potential of the 14-Kd and 16-Kd antigens for diagnosis and epidemiological purposes. 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