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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[FACTORES DE CRECIMIENTO EN EL DESARROLLO FOLICULAR, EMBRIONARIO TEMPRANO E IMPLANTACIÓN. IMPLICACIONES EN LA PRODUCCIÓN DE EMBRIONES BOVINOS]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The review describes the role the growth factors on follicular development, early embryonic, implantation and their importance in the production of bovine embryos. It describes, growth factors its important roles in key events of the reproductive activity, although some mechanisms action and their synergistic effects with other hormones are well known, their full role is far from being elucidated. Previous works in vivo and in vitro studies point out that they could improve notably, fertilization and clivage rates and implantation.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font face="verdana" size="2">     <p align="right">REVISI&Oacute;N DE LITERATURA</p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="3"><b>FACTORES DE CRECIMIENTO EN EL DESARROLLO FOLICULAR,    EMBRIONARIO TEMPRANO E IMPLANTACI&Oacute;N. IMPLICACIONES EN LA PRODUCCI&Oacute;N    DE EMBRIONES BOVINOS </b></font></p>     <p align="center">&nbsp; </p>     <p align="center"><b><font size="3">GROWTH FACTORS IN THE FOLLICULAR DEVELOPMENT,    EMBRYONIC EARLY AND IMPLANTATION. IMPLICATIONS IN THE PRODUCTION OF BOVINE EMBRYOS</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>Miguel Pe&ntilde;a J<sup>1</sup>, MVZ, Agust&iacute;n G&oacute;ngora O<sup>2</sup>*,    Ph.D, Jos&eacute; Estrada L<sup>3</sup>, Ph.D</b></p>     <p><sup>1</sup>Programa Nacional de Recursos Gen&eacute;ticos y Biotecnolog&iacute;a    Animal, C.I. Tibaitat&aacute;, CORPOICA, Colombia.     <br>   <sup>2</sup>Grupo de Investigaci&oacute;n en Reproducci&oacute;n y Gen&eacute;tica    Animal (GIRGA) Escuela de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Universidad de los    Llanos. A.A. 110 Villavicencio, Colombia. *Correspondencia: <a href="mailto:agongora60@unillanos.edu.co">agongora60@unillanos.edu.co</a>.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <sup>3</sup>Molecular Biomedical Sciences Collage of Veterinary Medicine, North    Carolina State University, Raleigh, NC 27606, USA. </p>     <p>&nbsp;</p><hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p>Se describe el papel de los factores de crecimiento en el desarrollo folicular,    embrionario temprano e implantaci&oacute;n y se destaca su importancia en la    producci&oacute;n de embriones bovinos. Los factores de crecimiento cumplen    importantes funciones en eventos claves de la actividad reproductiva. Aunque    se conocen algunos mecanismos de acci&oacute;n y el efecto sin&eacute;rgico    con otras hormonas reproductivas, se est&aacute; lejos de conocer totalmente    su papel. Estudios previos tanto <i>in vivo</i> como <i>in vitro</i> se&ntilde;alan que podr&iacute;an    mejorar notablemente las tasas de fertilizaci&oacute;n, de clivaje e implantaci&oacute;n.</p>     <p><b>Palabras clave</b>: Factores de crecimiento, embriones <i><i>in vitro</i></i>,    desarrollo folicular, implantaci&oacute;n.</p> <hr size="1"> <b>ABSTRACT</b>      <p>The review describes the role the growth factors on follicular development,    early embryonic, implantation and their importance in the production of bovine    embryos. It describes, growth factors its important roles in key events of the    reproductive activity, although some mechanisms action and their synergistic    effects with other hormones are well known, their full role is far from being    elucidated. Previous works <i><i>in vivo</i></i> and <i>in vitro</i> studies point    out that they could improve notably, fertilization and clivage rates and implantation.  </p>     <p><b>Key words</b>: Growth factors, embryos <i>in vitro</i>, Follicular development,    implantation. </p> <hr size="1">     <p>    <br>   <font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p>El desarrollo folicular (DF), el desarrollo embrionario temprano y la implantaci&oacute;n    son procesos complejos regulados por m&uacute;ltiples mecanismos celulares,    hormonales y moleculares que permiten que despu&eacute;s de la fertilizaci&oacute;n,    el oocito pueda continuar su desarrollo, superar la fase de reconocimiento materno    de la gestaci&oacute;n y aumentar las posibilidades de sobrevivencia, una vez    se forme la placenta definitiva. El estudio de estos tres importantes eventos    han recibido especial atenci&oacute;n de los investigadores, sin embargo a&uacute;n    quedan muchos interrogantes.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Un pilar fundamental para llegar al actual conocimiento en este interesante    campo de la biolog&iacute;a reproductiva, lo ha constituido el refinamiento    en las t&eacute;cnicas de separaci&oacute;n y cultivo celular, microscop&iacute;a    electr&oacute;nica, cuantificaci&oacute;n hormonal y m&aacute;s recientemente    la biolog&iacute;a molecular, que han permitido conocer las complicadas relaciones    autocrinas, paracrinas y endocrinas a nivel del ovario, oviducto y endometrio.</p>     <p>Durante mucho tiempo el papel de los Factores de Crecimiento (FC) sobre la    funci&oacute;n de importantes eventos reproductivos fue desconocido e inicialmente,    todas sus acciones fueron atribuidas a las gonadotropinas (Gns). Sin embargo,    a medida que se avanz&oacute; en su identificaci&oacute;n, estructura qu&iacute;mica,    actividad biol&oacute;gica y mecanismos de acci&oacute;n, se estableci&oacute;    que cumplen una funci&oacute;n tan importante y compleja como las Gns, al igual    que otras hormonas que intervienen en la reproducci&oacute;n.</p>     <p>En este art&iacute;culo se revisa, a la luz de la literatura cient&iacute;fica    actual, la funci&oacute;n que cumplen los factores de crecimiento, a manera    de hip&oacute;tesis y, las aplicaciones que tendr&iacute;an en el futuro desarrollo    de la producci&oacute;n de embriones bovinos.</p>     <p><b>Oog&eacute;nesis e inicio del crecimiento folicular</b></p>     <p>La oog&eacute;nesis empieza muy temprano en la vida fetal de la hembra bovina;    entre 120 y 140 d&iacute;as de gestaci&oacute;n (1) y finaliza con la formaci&oacute;n    de un determinado n&uacute;mero de fol&iacute;culos primordiales (FPr). Al momento    de la diferenciaci&oacute;n sexual, la g&oacute;nada se constituye de oogonias    (OO) y c&eacute;lulas som&aacute;ticas del mesonefro. Las OO provienen de las    c&eacute;lulas germinales primordiales (CGP) derivadas desde c&eacute;lulas    ectodermales germinales primitivas de la masa celular interna (2), que migran    por movimientos ameboideos desde la porci&oacute;n endod&eacute;rmica del saco    vitelino hasta la cresta genital.</p>     <p>La oog&eacute;nesis involucra tres fases: una fase proliferativa en que las    OO se dividen activamente, una fase mei&oacute;tica que permite la formaci&oacute;n    de los oocitos primarios y una tercera fase de intensa degeneraci&oacute;n de    CGP. Los oocitos que sobreviven a &eacute;sta fase degenerativa son detenidos    en el estado de diploteno de la primera divisi&oacute;n mei&oacute;tica y est&aacute;n    rodeados por una simple capa de c&eacute;lulas de la granulosa (CG); &eacute;sta    estructura recibe el nombre de fol&iacute;culo primordial (3).</p>     <p>Desde muy temprano se establece una estrecha asociaci&oacute;n entre las CGP    y las c&eacute;lulas som&aacute;ticas, por tanto los oocitos que no terminan    rodeados por las CG generalmente degeneran (4). Como consecuencia de esta asociaci&oacute;n,    un polip&eacute;ptido producido por las CG llamado &#8220;inhibidor de la maduraci&oacute;n    del oocito&#8221; es el responsable de mantener la detenci&oacute;n mei&oacute;tica    (5), &eacute;sta inhibici&oacute;n no es espec&iacute;fica de especie ya que    el fluido folicular de la vaca inhibe la maduraci&oacute;n de los oocitos de    h&aacute;mster y rata (6, 7).</p>     <p>Las tres fases de la oog&eacute;nesis se superponen y presentan importantes    diferencias cronol&oacute;gicas entre las especies estudiadas. Adem&aacute;s,    tres caracter&iacute;sticas importantes distinguen el proceso: (i) La fase de    proliferaci&oacute;n de las CGP esta estrictamente limitado a la vida fetal    o neonatal, por lo tanto durante la vida posnatal los fol&iacute;culos se desarrollan    exclusivamente a partir del pool formado en esta fase; (ii) No se conoce el    significado biol&oacute;gico de la intensa p&eacute;rdida de CGP; y, (iii) No    existe una clara relaci&oacute;n entre el n&uacute;mero de FPr y la tasa de    ovulaci&oacute;n o la duraci&oacute;n de la vida reproductiva (3).</p>     <p>A&uacute;n no se conocen con exactitud los mecanismos responsables del crecimiento    inicial de los FPr, se ha sugerido que el crecimiento comienza luego de su formaci&oacute;n,    de acuerdo a su localizaci&oacute;n con la rete ov&aacute;rii (8), siguiendo    un gradiente de intensidad de la periferia al centro del ovario, el cual puede    estar asociado con la evoluci&oacute;n y formaci&oacute;n de la g&oacute;nada    durante la vida embrionaria (9).</p>     <p>El proceso envuelve el paso de un FPr en estado de reposo a una fase de crecimiento    caracterizada por tres eventos principales: cambio de forma de las CG de escamosa    a cuboidal, proliferaci&oacute;n y alargamiento del oocito.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En el ovario fetal la formaci&oacute;n de los fol&iacute;culos est&aacute;    probablemente controlada por interacciones locales c&eacute;lula-c&eacute;lula.    Esta consideraci&oacute;n surge de observar que cuando las CGP migran equivocadamente    a la gl&aacute;ndula adrenal, se diferencian en oocitos e inducen cambios morfol&oacute;gicos    en las c&eacute;lulas adrenales que los rodean similar a los observados en los    FPr (10). Esto lleva a sugerir que el oocito juega un papel fundamental en la    organog&eacute;nesis del fol&iacute;culo y que, adem&aacute;s, el rodearse por    las CG es esencial para su sobrevivencia (11).</p>     <p>En el humano y en la oveja, el oocito comienza su crecimiento cuando las c&eacute;lulas    cuboidales alcanzan un n&uacute;mero de 15 (12), en el bovino este punto cr&iacute;tico    est&aacute; en 40 c&eacute;lulas (13). Mhawi et al (14), reportaron que en terneras    reci&eacute;n nacidas la transici&oacute;n de las c&eacute;lulas a la forma    cuboidal es seguida por cambios estructurales del oocito. Sin embargo el momento    exacto en el cual comienza la fase de crecimiento es desconocido. Durante mucho    tiempo se intento sin &eacute;xito el cultivo <i>in vitro</i> de FPr, hasta que en    1996, Eppig y O&#8217;Brien (15) lograron el primer nacimiento de un rat&oacute;n    mediante &eacute;sta t&eacute;cnica, al cual le siguieron el nacimiento de 59    ratones m&aacute;s que sobrevivieron hasta el estado adulto (16). Estos resultados    generaron gran expectativa de utilizar una estrategia similar en animales dom&eacute;sticos,    especies amenazadas y en mujeres con fertilidad comprometida. Sin embargo no    ha sido tarea f&aacute;cil, dado las diferencias en la adquisici&oacute;n de    la detenci&oacute;n mei&oacute;tica y la capacidad de desarrollo de los oocitos    de la especies mencionadas frente al rat&oacute;n.</p>     <p>En los fol&iacute;culos preantrales o antrales peque&ntilde;os (FAP) la vascularizaci&oacute;n    es pobre, por lo que los factores paracrinos tienen mayor importancia que los    endocrinos. Por tal raz&oacute;n, los FC y otros relacionados estructuralmente    como las citoquinas tienen mayor importancia que las Gns. Las CG de FPr y FAP    de ovarios de fetos y neonatos expresan receptores para el Factor de Crecimiento    Fibrobl&aacute;stico B&aacute;sico Beta (bFGF) el Factor de Crecimiento Epidermal    (EGF) y el Factor de Crecimiento Similar a la Insulina (IGF) (1, 17). Sin embargo,    las acciones paracrinas y autocrinas son escasamente comprendidas. Se ha reportado    que los FC de origen endocrino tienen importancia s&oacute;lo durante el proceso    de vascularizaci&oacute;n folicular (3).</p>     <p><b>Desarrollo folicular bovino</b></p>     <p>Al nacimiento, el ovario de una ternera tiene en promedio 150.000 FPr en estado    de reposo, los cuales permanecen estables hasta cerca del cuarto a&ntilde;o    de vida cuando comienzan a descender. De &eacute;stos algunos crecen y &uacute;nicamente    el 0.05% alcanzan el estado preovulatorio (18). Entre los 15-20 a&ntilde;os    de edad de la vaca solo permanecen cerca de 1.000 FPr (19).</p>     <p>El DF es un proceso continuo que finaliza con la ovulaci&oacute;n y consta    de dos fases; la primera, conocida como &#8220;desarrollo folicular basal&#8221;    la cual est&aacute; principalmente bajo control paracrino de los FC. En esta    fase la FSH puede ejercer un efecto mitog&eacute;nico indirecto sobre las CG    por aumento en la expresi&oacute;n de los FC o sus receptores (20). La segunda    fase se conoce como &#8220;desarrollo folicular terminal&#8221; y depende estrictamente    de las Gns. El crecimiento es r&aacute;pido y ocurre por agrandamiento del antro    folicular debido a importantes cambios en la diferenciaci&oacute;n de las c&eacute;lulas    foliculares.</p>     <p>El fol&iacute;culo preovulatorio adquiere una alta capacidad esteroidog&eacute;nica    produciendo altas concentraciones de estradiol (E2). Sin embargo la capacidad    del fol&iacute;culo para ovular s&oacute;lo se obtiene en las &uacute;ltimas    horas del DF (3).</p>     <p>El crecimiento folicular terminal sigue un patr&oacute;n de onda &#8220;ondas    de crecimiento folicular&#8221; el cual fue descubierto con la aparici&oacute;n    del ultrasonido. En los rumiantes las ondas foliculares se presentan antes de    la pubertad (21), en la fase luteal del ciclo estral y durante la pre&ntilde;ez.    En el bovino se han identificado de dos a cuatro ondas (22, 23).</p>     <p>Dentro de cada onda se suceden las fases de reclutamiento, selecci&oacute;n    y dominancia. En cada onda, un n&uacute;mero de fol&iacute;culos inicia su crecimiento,    alcanzando un crecimiento mayor y finalmente es seleccionado como fol&iacute;culo    dominante (FD) que es el responsable de la atresia del resto de fol&iacute;culos    (23).</p>     <p>La primera onda emerge el d&iacute;a de la ovulaci&oacute;n (d&iacute;a 0),    la segunda el d&iacute;a 11 &oacute; 12 (para las vacas de dos ondas). En el    caso de tres ondas, la segunda emerge el d&iacute;a 8 &oacute; 9 y la tercera    alrededor del d&iacute;a 16 del ciclo. El FD de la &uacute;ltima onda es el    fol&iacute;culo ovulatorio y la duraci&oacute;n del ciclo estral (CE) depender&aacute;    del n&uacute;mero de ondas (24). En s&iacute;ntesis, se tendr&aacute; animales    con CE cortos (18-21 d&iacute;as) y otros con CE largos (22-24 d&iacute;as).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El FD controla el desarrollo de los otros fol&iacute;culos a trav&eacute;s    de hormonas como estradiol, inhibina, activina, folistatina y el FC actuando    en forma local o sist&eacute;mica (25). Se ha sugerido que el mecanismo de atresia    folicular es mediado v&iacute;a activaci&oacute;n de la apopt&oacute;sis (muerte    celular programada) (26, 28), para lo cual ciertas prote&iacute;nas codificadas    por miembros de la familia de genes bcl-2 que incluye los reguladores positivos    (BAX, BCL-Xcorto) y negativos (BCL-2, BCL-X largo) han sido propuestas como    mediadores claves en el control de la muerte celular en el ovario de roedores,    aves y bovinos (27, 28). De igual manera la FSH act&uacute;a como una mol&eacute;cula    antiapopt&oacute;tica en el desarrollo folicular evitando la atresia (29).</p>     <p>Un FPr tarda de 60-100 d&iacute;as para llegar al estado de FD, por lo tanto    lo ocurrido en la vaca en los dos &uacute;ltimos meses es esencial para predecir    con exactitud los resultados de un programa para mejorar la eficiencia reproductiva.    Las altas producciones de leche y el balance energ&eacute;tico negativo afectan    el DF, lo cual predispone a la presentaci&oacute;n de quistes foliculares, baja    fertilidad y una pobre respuesta a los programas de sincronizaci&oacute;n (25).</p>     <p>El DF es un proceso altamente selectivo para que sea exitoso, el oocito que    se desarrolla en el fol&iacute;culo dominante necesita contar con todas las    condiciones que le permitan la maduraci&oacute;n (maduraci&oacute;n nuclear,    citoplasm&aacute;tica y de zona pel&uacute;cida) antes que la fertilizaci&oacute;n    ocurra (30). El DF no se afecta por la presencia ipsi o contralateral del cuerpo    l&uacute;teo, a pesar de conocerse que en el bovino un 70% de ovulaciones ocurren    en el ovario derecho (31).</p>     <p>Recientemente se han descubierto dos nuevos miembros de la superfamilia del    Factor de crecimiento trasformante b, el factor de crecimiento de diferenciaci&oacute;n    9 (GDF-9) y la prote&iacute;na morfogen&eacute;tica de hueso 15 (BMP-15) que    han sido involucrados en el desarrollo folicular. Ambos se producen en el oocito    y su blanco son las c&eacute;lulas de la granulosa (32). Se ha postulado igualmente,    que el DF es regulado por el proceso de angiog&eacute;nesis a nivel del ovario    en donde estar&iacute;a involucrado el Factor de Crecimiento de Endotelio Vascular    (VEGF), que actuar&iacute;a bajo condiciones de hipoxia (33); los efectos biol&oacute;gicos    del VEGF son mediados por dos receptores de tirosin cinasa (RTKs) conocidos    como VEGFR-1 y VEGFR-2, los cuales difieren en sus propias se&ntilde;ales (34).</p>     <p><b>Otros factores relacionados con el desarrollo folicular bovino</b></p>     <p>Actualmente, ha aumentado la posibilidad que el &oacute;xido n&iacute;trico    producido localmente en las CG a trav&eacute;s de la sintetasa del &oacute;xido    n&iacute;trico pueda estar involucrado en el DF actuando en forma coordinada    con las Gns. Sin embargo todav&iacute;a se conoce muy poco de los mecanismos    moleculares por los cu&aacute;les act&uacute;a (35). En igual forma, las citoquinas    entre ellas la interleucina-1 (IL-1), la cual se produce localmente por las    c&eacute;lulas blancas o por las c&eacute;lulas ov&aacute;ricas som&aacute;ticas    modulan la esteroidog&eacute;nesis y proliferaci&oacute;n de las CG (36)</p>     <p><b>Crecimiento folicular y remodelaci&oacute;n del tejido ov&aacute;rico</b></p>     <p>El ovario es un sitio permanente de remodelaci&oacute;n de tejido el cual acompa&ntilde;a    los procesos de crecimiento folicular, atresia, ovulaci&oacute;n, formaci&oacute;n    y regresi&oacute;n del cuerpo l&uacute;teo. Estos procesos involucran transiciones    entre proliferaci&oacute;n, diferenciaci&oacute;n y muerte celular, adem&aacute;s    de importantes modificaciones en la Matriz Extra Celular (MEC). Las c&eacute;lulas    foliculares sintetizan los constituyentes de la MEC (fibronectina, laminina,    col&aacute;geno, trombospondina y hepar&iacute;n sulfato proteoglicanos) y su    degradaci&oacute;n se realiza por proteinasas (metaloproteinasas matriz de MMPs).    La actividad de las MMPs a su vez es modulada por inhibidores espec&iacute;ficos    (lnhibidores de tejido de las MMPs) (ITMPs) y la a2-microglobulina (3).</p>     <p>La remoci&oacute;n de tejido ov&aacute;rico en la ovulaci&oacute;n es disparada    por la fuente preovulatoria de LH, que induce una reacci&oacute;n inflamatoria    a nivel del &aacute;pice del fol&iacute;culo preovulatorio, facilitando la ruptura    de la pared folicular y la t&uacute;nica albug&iacute;nea (37). Aqu&iacute;    intervienen varios sistemas proteol&iacute;ticos como las colagenasas tipo I    y IV que degradan el tejido intersticial fibrilar y el col&aacute;geno de la    membrana basal. La plasmina, que act&uacute;a directa o indirectamente en varios    tipos de c&eacute;lulas activando formas latentes de colagenasas como MMP-1,    MMP-2, MMP-9 y el activador del plasmin&oacute;geno (38).</p>     <p>El marcado aumento en la vascularizaci&oacute;n de la teca del fol&iacute;culo    preovulatorio, podr&iacute;a determinar un aumento en el flujo de inhidores    de proteinasas como la a2-2 microglobulina del suero lo cual contribuir&iacute;a    a modular las actividades proteol&iacute;ticas. Por lo tanto el incremento en    la MMPs e ITMMps podr&iacute;an facilitar una degradaci&oacute;n local y limitada    del tejido ov&aacute;rico lo cual ser&iacute;a suficiente para asegurar la expulsi&oacute;n    del oocito durante la ovulaci&oacute;n (3).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Poco se conoce de la remodelaci&oacute;n de la MEC durante el desarrollo folicular,    al tiempo de la diferenciaci&oacute;n de las c&eacute;lulas de la teca (CT),    el fol&iacute;culo en crecimiento adquiere la membrana basal que separa las    CG de las CT; &eacute;sta se compone de laminina, col&aacute;geno tipo IV, entactina    y fibronectina (39). A medida que el fol&iacute;culo crece, la membrana basal    tambi&eacute;n crece por una continua deposici&oacute;n de los componentes de    la MEC por las CG y CT.</p>     <p><b>Caracter&iacute;sticas generales de los factores de crecimiento</b></p>     <p>Los FC son polip&eacute;ptidos de peso molecular &lt; 30.000 Kd producidos    por diversos tipos de c&eacute;lulas, que act&uacute;an localmente dentro del    mismo tejido en forma autocrina o paracrina, no se almacenan intracelularmente    y su liberaci&oacute;n depende de la &#8220;s&iacute;ntesis de novo&#8221;.    Su efecto biol&oacute;gico es ejercido por la interacci&oacute;n con los receptores    de membrana, que usualmente son glicoprote&iacute;nas, las cuales se comunican    por cambios conformacionales con el llamado Sistema de Segundo Mensajero. La    respuesta a los FC es una estimulaci&oacute;n r&aacute;pida al transporte de    amino&aacute;cidos, utilizaci&oacute;n y consumo de glucosa, ARN y s&iacute;ntesis    de prote&iacute;nas, algunos inducen s&iacute;ntesis de ADN y replicaci&oacute;n    celular (40).</p>     <p>Los FC se clasifican con base en su estructura y actividad biol&oacute;gica    dentro de familias: Familia del Factor de Crecimiento Epid&eacute;rmico (EGF),    compuesta por EGF, amfiregulina, EGF-ligador de la heparina y TGF-b. Otros factores    de crecimiento como el Factor de Crecimiento Fibrobl&aacute;stico (FGF), Factor    de Crecimiento Derivado de Plaquetas (PDGF), Factor de Crecimiento Insul&iacute;nico    1 y 2 (IGF-I, IGF-II) (41). El estudio de los FC es dif&iacute;cil ya que pertenecen    a un complejo sistema que permite que algunos sirvan como sus propios receptores    (42).</p>     <p>Los FC se originan intrafolicularmente o provienen de la circulaci&oacute;n;    y su expresi&oacute;n en las CF var&iacute;a entre las diferentes especies siendo    espec&iacute;ficos de especie (3). Cada receptor media la acci&oacute;n de m&aacute;s    de un FC. Se conoce por ejemplo que el receptor tipo I del IGF activa la uni&oacute;n    de dos ligandos, el receptor del EGF a cuatro y el receptor del FGF a nueve    ligandos respectivamente.</p>     <p><b>Acci&oacute;n de los FC sobre las c&eacute;lulas foliculares</b></p>     <p>La presencia de receptores en las CT y las CG para los EGF, bFGF, IGF-I fue    demostrada inicialmente en fol&iacute;culos antrales de rumiantes. En el bovino    los niveles para el receptor tipo I de IGF media la acci&oacute;n de IGF-I,    IGF-II como tambi&eacute;n los niveles del receptor de EGF media la acci&oacute;n    de EGF y TGF-a2 y se incrementan en los fol&iacute;culos preantrales mayores    de 3 mm de di&aacute;metro (31). Estudios <i>in vitro</i> demuestran que los FC modulan    la sobrevivencia, proliferaci&oacute;n y diferenciaci&oacute;n de las c&eacute;lulas    foliculares actuando en conjunto con las Gns. Las diferentes propiedades biol&oacute;gicas    de los FC se resumen en la <a hrer="#tab1">tabla 1</a>.</p>      <p>    <center><a name="tab1"><img src="img/revistas/mvz/v12n1/v12n1a10tab1.gif"></a></center></p>      <p><i>in vitro</i> los EGF, TGF-a2 y bFGF estimulan fuertemente la proliferaci&oacute;n    de las CG pero inhiben la esteroidog&eacute;nesis y producci&oacute;n de inhibina    (43), lo cual sugiere que puedan actuar <i>in vivo</i> aumentando el crecimiento, pero    retardando la maduraci&oacute;n terminal de los fol&iacute;culos. Adem&aacute;s    los estudios <i>in vivo</i> sugieren una posible importancia de EGF en la inducci&oacute;n    de la atresia folicular. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El IGF-I estimula la proliferaci&oacute;n o diferenciaci&oacute;n de las CG    dependiendo del estado de desarrollo del fol&iacute;culo. Las acciones de TGF-b    no se han esclarecido totalmente. Se conoce que inhibe la proliferaci&oacute;n    celular, pero aumenta la esteroidog&eacute;nesis lo cual sugiere que puede mantener    la maduraci&oacute;n folicular terminal. Sin embargo, la controversia generada    entre los diferentes sistemas de cultivo celular, se&ntilde;alan que su actividad    es m&aacute;s compleja (3).</p>     <p>Adicionalmente un grupo de prote&iacute;nas ligadoras regulan la acci&oacute;n    de los FC actuando como transportadoras en los fluidos biol&oacute;gicos y como    reservorios de los FC en la MEC y superficie celular modulando la biodisponibilidad    de sus ligandos. El DF se acompa&ntilde;a por una significativa disminuci&oacute;n    en las concentraciones de prote&iacute;nas ligadoras IGFBP-2, 4 y 5 en el l&iacute;quido    folicular por acci&oacute;n de proteinasas espec&iacute;ficas, al contrario    la atresia se acompa&ntilde;a por un incremento en la expresi&oacute;n de ARNm    y disminuci&oacute;n en la actividad proteol&iacute;tica.</p>     <p>La selecci&oacute;n de los FD depende de la LH, FSH y IGF-I que act&uacute;an    en forma sin&eacute;rgica incrementando la producci&oacute;n AMPc y actividad    enzim&aacute;tica para los esteroides, inhibiendo a su vez el proceso de apopt&oacute;sis    (44, 28). Los efectos celulares de los IGFs son modificados por 7 prote&iacute;nas    ligadoras (IGFBPs 1-7) presentes en la sangre y fluido extracelular.</p>     <p>Es de inter&eacute;s considerar que la comunicaci&oacute;n intercelular es    mediada por las uniones GAP, las cuales son de vital importancia en la coordinaci&oacute;n    del metabolismo celular durante el crecimiento y diferenciaci&oacute;n de los    &oacute;rganos y tejidos. Las uniones GAP est&aacute;n compuestas de dos estructuras    sim&eacute;tricas que conforman un canal intracelular el cual permite el paso    de iones y peque&ntilde;as mol&eacute;culas de c&eacute;lula a c&eacute;lula.    Adem&aacute;s, facilitan el transporte de se&ntilde;ales de transducci&oacute;n    y nutrientes a tejidos pobremente vascularizados como la capa de CG (45, 46).</p>     <p>Existen evidencias que tanto la insulina como el IGF a nivel ov&aacute;rico,    difieren entre el ganado Bos indicus y Bos taurus. Buratini et al (47) en novillas    Nelore tratadas con BST obtuvo un incremento de las concentraciones plasm&aacute;ticas    de IGF-I y un aumento en el n&uacute;mero de fol&iacute;culos peque&ntilde;os    (menores de 5 mm). Igualmente en vacas Brahman se encontraron mayores concentraciones    de IGF-I (48, 49) y menores de FSH que las Angus (48 Alvarez et al.,2000). Las    diferencias entre FSH y IGF-I podr&iacute;an explicar la mayor sensibilidad    del Bos indicus a las dosis de FSH utilizadas en la actualidad en los programas    de superovulaci&oacute;n (50).</p>     <p><b>Efecto de los FC sobre el Desarrollo Embrionario Temprano e Implantaci&oacute;n    en el Bovino</b></p>     <p>La implantaci&oacute;n embrionaria es un proceso complejo, que comprende una    serie de etapas que comienzan con la fijaci&oacute;n del blastocisto al &uacute;tero    y termina con la formaci&oacute;n de la placenta definitiva. Para que la implantaci&oacute;n    tenga &eacute;xito, se requiere de una comunicaci&oacute;n entre el embri&oacute;n    y el endometrio a trav&eacute;s de una serie de se&ntilde;ales moleculares y    celulares que conllevan finalmente a una sincron&iacute;a entre el desarrollo    del embri&oacute;n y una compleja serie de eventos inducidos en el &uacute;tero    por los estr&oacute;genos y la progesterona (P4) (51).</p>     <p>Existe evidencia que los FC se expresan antes de la implantaci&oacute;n, en    oocitos de rat&oacute;n y bovino, los factores de TGF-a, TGF-b y PDGF se expresaron    antes de la fertilizaci&oacute;n (52). El efecto estimulatorio de los FC sobre    el desarrollo embrionario fue reconocido cuando fueron adicionados <i>in vitro</i>,    lo que sugiere la existencia de un mecanismo autocrino para estas mol&eacute;culas    (53).</p>     <p>En el oviducto del bovino, se han identificado ARNm para TGF-a, TGF-b, PDGF    y bFGF (51), mientras que el PDGF y las subunidades de inhibina-a y b s&oacute;lo    fueron localizadas en ciertas regiones espec&iacute;ficas del oviducto (54).</p>     <p>Los estados tempranos de preimplantaci&oacute;n embrionaria <i>in vivo</i>, pueden    ser regulados por los FC tanto de origen materno c&oacute;mo embrionario. Algunos    como la insulina y el IGF-I pueden operar a trav&eacute;s del metabolismo intermediario    (55, 56). El ARNm de IGF-I se ha encontrado en el oviducto bovino durante el    descenso del embri&oacute;n al &uacute;tero (57).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se han encontrado productos de expresi&oacute;n de genes que codifican FC,    en embriones de bovino en estado preimplantatorio. Dentro de ellos est&aacute;n    los ARNm de TGF-a, TGF-b1, PDGF-a, IGF-I, IGF-II, TGF-b2, TGF-b3, IL-3 e IL-6,    adem&aacute;s citoquinas como el factor inhibidor de la leucemia (LIF). Igualmente    los genes que codifican los receptores para IGF, PDGF-a y el factor estimulante    de colonias (CSF-I) (58).</p>     <p>En el embri&oacute;n bovino la transcripci&oacute;n para TGF-a y PDGF-a es    detectable en todos los estados, desde una c&eacute;lula hasta blastocisto como    en el rat&oacute;n; igualmente, la transcripci&oacute;n para TGF-a e IGF-II    y receptores para PDGF-a, insulina, IGF-I e IGF-II tambi&eacute;n fueron detectados    durante este mismo per&iacute;odo (59).</p>     <p>En el bovino el producto del genoma materno (FGF, bTP-1) s&oacute;lo fue detectado    a partir del estado de 8 c&eacute;lulas y los transcriptos para EGF y NGF no    fueron detectados en ning&uacute;n estado (59).</p>     <p>La activaci&oacute;n de genes para los FC y sus receptores es selectiva. Los    transcriptos para IGF-I, IGF-II, TGF-a, para los receptores de IGF-I y de la    insulina fueron detectados en ovinos, mientras que, en embriones bovinos de    8-16 c&eacute;lulas no fueron detectados transcriptos de EGF, Factor Neuronal    del Crecimiento (NGF) o insulina, aunque si fueron detectados FGF-b en este    mismo estado (60).</p>     <p>La suplementaci&oacute;n de medios de cultivo con EGF solo o con IGF-1 <i>in vitro</i>    mejor&oacute; la expansi&oacute;n de las c&eacute;lulas del c&uacute;mulus,    la maduraci&oacute;n nuclear y las tasas de fecundaci&oacute;n en oocitos bovinos    (61) y de b&uacute;falo (62).</p>     <p>Grazul-Bilska et al (63) duplicaron el numero de blastocitos <i>in vitro</i> de ovejas    al adicionar EGF al medio de maduraci&oacute;n, aunque Guler et al (64) obtuvieron    similares resultados a partir de oocitos obtenidos en matadero sin tratamiento    previo con FSH. Estas divergencias ampl&iacute;an la discusi&oacute;n sobre    la importancia de esta hormona asociada con el EGF en los procesos <i>in vitro</i>.</p>     <p>El crecimiento del conceptus tambi&eacute;n es regulado por citoquinas provenientes    de linfocitos, entre ellas el TGF-b en uni&oacute;n con el FGF-b y el LIF (65).    En un reciente estudio la expresi&oacute;n de LIF y el factor estimulante de    colonias de macr&oacute;fagos (M-CSF) fue investigada usando un RT-PCR cuantitativo    los d&iacute;as 13-14 del ciclo estral, pre&ntilde;ez temprana (16-17, 20-21,    30-36, 48-49 d&iacute;as) y pre&ntilde;ez media (74-140 d&iacute;as): La expresi&oacute;n    gen&eacute;tica fue observada durante todos los d&iacute;as de muestreo, encontrando    diferentes patrones de expresi&oacute;n entre LIF y M-CSF. La expresi&oacute;n    de LIF en el endometrio intercaruncular fue mayor los d&iacute;as 48-49 y 74-140    que en los d&iacute;as 13-14 del ciclo estral y los otros d&iacute;as de pre&ntilde;ez.    No se observaron cambios en la expresi&oacute;n del M-CSF a nivel del endometrio    caruncular. Los resultados anteriores sugieren que estas dos citoquinas son    producidas en el endometrio en la gestaci&oacute;n temprana y media y son importantes    en el mantenimiento de la pre&ntilde;ez (66).</p>     <p>Se ha reconocido que las membranas embrionarias de ovinos y bovinos en fases    iniciales de la implantaci&oacute;n poseen grandes zonas avasculares (67), las    cuales podr&iacute;an estar relacionadas con un ambiente hip&oacute;xico, el    que a su vez estimular&iacute;a la angiog&eacute;nesis. Se ha reportado que    la hipoxia podr&iacute;a &#8220;regular en alta&#8221; la producci&oacute;n    de ARNm para el factor de crecimiento de endotelio vascular (VEGF) el cual podr&iacute;a    jugar un papel importante en la angiog&eacute;nesis y estimulaci&oacute;n de    la proliferaci&oacute;n e invasi&oacute;n de las c&eacute;lulas del trofoblasto    (68). Recientemente, se ha encontrado el sistema completo del VEGF en el complejo    cumulus-oocito lo que indica que este FC controla el proceso de angiog&eacute;nesis    (69).</p>     <p>Se concluye, que el papel de los FC empieza a ser dilucidado gracias al avance    en todos los aspectos de la fisiolog&iacute;a reproductiva y el desarrollo de    nuevas t&eacute;cnicas para su estudio. Los resultados de su aplicaci&oacute;n    arrojan resultados positivos con la mejora de las tasas de clivaje y desarrollo    embrionario. Sin embargo, se est&aacute; lejos de conocer en menor detalle los    complicados mecanismos reguladores, hecho que plantea nuevas investigaciones.</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font size="3">BIBLIOGRAF&Iacute;A</font></b></p>     <!-- ref --><p> 1. Wandji SA, Fortier MA, Sirard M. Differential response to gonadotropins    and prostaglandin E2 in ovarian tissue during prenatal and postnatal development    in cattle. Biol Reprod 1992; 46: 1034-1041.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0122-0268200700010001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. George FD, Wilson JD. Sex Determination and Differentiation. In: The physiology    of Reproduction. Second edition. New York. E. Knobil and J D Neill Raven Press    Ltd 1994; p.3-28.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0122-0268200700010001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Monniaux D, Monget P, Besnard N, Huet C, Pisselet C. Growth factors and    antral follicular development in domestic ruminants. Theriogenology 1997; 47:    3-12.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0122-0268200700010001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Ohno S and Smith JB. Role of fetal follicular cells in meiosis of mammalian    oocytes. Cytogenetics 1964; 3: 324-333.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0122-0268200700010001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Tsafriri A, Dekel N, Bar-Ami S. The role of oocyte maturation inhibition    in follicular regulation of oocyte maturation. J Reprod Fertil 1982; 64: 541-551.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0122-0268200700010001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Gwatkin R BL, Andersen OF. Hamster oocyte maturation <i>in vitro</i> inhibition    by follicular components. Life Sci 1976; 19: 527-536.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0122-0268200700010001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Tsafriri A, Channing CP, Pomerantz SH, Lindner H. Inhibition of maturation    of isolated rat oocytes by porcine follicular fluid. J Endocrinol 1977; 75:    285-291.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0122-0268200700010001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Findlay J, Drummond A, Fry R. Intragonadal regulation of follicular development    and ovulation. Anim Reprod Sci 1996; 42: 321-331.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0122-0268200700010001000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Mariana JC, Monniaux D, Driancourt MA, Mauleon P. Foliculogenesis In: Reproduction    in Domestic Animals. Fourth Edition Cupps, P.T (ed). Academic Press, Inc. 1991.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0122-0268200700010001000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>       <!-- ref --><br>   10. Fortune JE. The early stages of follicular development: activation of primordial    follicles and growth of preantral follicles. 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J Reprod Fertil 1987; 81: 433-442.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0122-0268200700010001000012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Braw-Tal R, Yossefi S. Studies <i>in vivo</i> and <i>in vitro</i> on the initiation of    follicle growth in the bovine ovary. J Reprod Fertil 1997; 109: 165-171.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0122-0268200700010001000013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Mhawi AJ, Kanka J and Motlik J. Follicle and oocyte growth in early postnatal    calves: cytochemical, autoradiographical and electron microscopical studies.    Reprod Nutr Dev 1991; 31: 115-126.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0122-0268200700010001000014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Eppig JJ, O&#8217;Brien MJ. Development <i>in vitro</i> of mouse oocytes from    primordial follicles. Biol Reprod 1996; 54: 197&#8211;207.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0122-0268200700010001000015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. O&#8217;Brien MJO, Pendola JK, Eppig JJ. A revised protocol for <i>in vitro</i>    development of mouse oocytes from primordial follicles dramatically improves    their developmental competence. Biol Reprod 2003; 68: 1682&#8211;1686.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0122-0268200700010001000016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Wandji SA. Ontogeny and cellular localization of 125 I-labeled basic fibroblast    growth factor and 125I-labeled epidermal growth binding sites in ovaries from    bovine fetuses and neonatal calves. Biol Reprod 1992; 47: 807-813.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0122-0268200700010001000017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Nuttinck F, Mermillod P, Massip A, Dessy F. Characterization of <i>in vitro</i>    growth of bovine preantral ovarian follicles: A preliminar study. Theriogenology    1993; 39: 811-821.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0122-0268200700010001000018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Pineda MH. Female reproductive system. In: McDonald, L.E. Pineda, M.H.    (eds): Veterinary Endocrinology and Reproduction. ed 4. Phildelphia, Lea &amp;    febiger, 1989; p,303-354.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0122-0268200700010001000019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Ginther OJ, Wiltbank M, Fricke P, Gibbons J, Kot K. Selection of the dominant    follicle in cattle. Biol Reprod 1996; 55: 1187-1194.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0122-0268200700010001000020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Hopper HW, Silcox RW, Byerley DJ and Kiser TE. Follicular development in    prepubertal heifers. Anim Reprod Sci 1993; 31: 7-12.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0122-0268200700010001000021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Ginther OJ, Kastelic JP and Knopf L. Ovarian follicular dynamics in heifers    during early pregnancy. Biol Reprod 1989; 41: 247-254.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0122-0268200700010001000022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Aseey R J, Hyttel P, Purwantara B. Oocyte morphology in dominant and subordinate    follicles during the first follicular wave in cattle. Theriogenology 1993; 39:    183     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0122-0268200700010001000023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->(Abstr).</p>     <!-- ref --><p>24. Ginther OJ, Kot K, Kulick LJ, Martin S, Wiltbank C. Relationship between    FSH and ovarian follicular waves during the last six months of pregnancy in    cattle. J Reprod Fertil 1996; 108: 271-279.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0122-0268200700010001000024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. Lucy MC, Savio JD, Badinga L, De la Sota RL, Thatcher WW. Factors that    affect ovarian follicular dynamics in cattle. J Anim Sci 1992; 70: 3615-3626.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0122-0268200700010001000025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. Yoshimura Y. The ovarian renin-angiotensin system in reproductive physiology.    Front neuroendocrinol 1997; 18: 247-291.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0122-0268200700010001000026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. Nassauw LV, Tao L, Harrisson F. Distribution of apoptosis-related proteins    in the quail ovary during folliculogenesis: BCL-2, BAX and CPP32. Acta Histochem    1999; 101: 103-112.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0122-0268200700010001000027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. Johson A. Intracellular mechanisms regulating cell survival in ovarian    follicles. Anim Reprod Sci 2003; 78: 185-201.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0122-0268200700010001000028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29. Yu Y, Li W, Han Z, Luo M, Chang Z, Tan J. The effect of FSH hormone on    follicular develpment, granulosa cell apoptosis and steroidogenesis and its    mediation by IGF-I in the goat ovary. Theriogenology 2003; 60: 1691-1704.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0122-0268200700010001000029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30. Driancourt M, Thuel, B. Relationships between oocyte quality and follicle    function. Reprod Dom Anim 1998; 33: 113-117.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0122-0268200700010001000030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31. Punwantara B, Assey RJ, Schmidt M, Hytel P, Greve T. Dynamics of the first    follicular wave in cattle following cloprostenol-induced luteolysis. Int Cong    Anim Reprod and AI 1992; 260-262.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0122-0268200700010001000031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32. Fortune J. The early stages of follicular development: activation of primordial    follicles and growth of preantral follicles. Anim Reprod Sci 2003; 78: 135-163.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0122-0268200700010001000032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>33. Hunter MG, Robinson RS, Mann GE, Webb R. Endocrine and paracrine control    of follicular development and ovulation rate in farm species. Anim Reprod Sci    2004; 82&#8211;83: 461&#8211;477. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0122-0268200700010001000033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>34. Ferrara N, Gerber HP, Lecouter J. The biology of VEGF and its receptors.    Nat Med 2003; 9:6: 669-676. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0122-0268200700010001000034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>35. Matsumi H, Yano T, Koji T, Ogura T, Tsutsumi O, Taketani Y, et al. Expression    and localization of inducible nitric oxide synthase in the rat ovary: A Possible    involvement of nitric oxide in the follicular development. Bioch Biophy Res    Comm 1998; 243: 67-72.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0122-0268200700010001000035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>36. Basini G, Baratta M, Bussolati S, Tamanini C. Interleukin-1b? fragment    (163-171) modulates bovine granulosa cell proliferation <i>in vitro</i>: dependence    on size of follicle. J Reprod Immunol 1998; 37: 139-153.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0122-0268200700010001000036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>37. Espey LL. Current status of the hypothesis that mammalian ovulation is    comparable to an inflammatory reaction. Biol Reprod 1994; 50: 233-238.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0122-0268200700010001000037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>38. Hornebeck W. Metalloproteinases matricielles (MPM) et cancer. Role et controle.    Bull Cancer 1992; 79: 221-225.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0122-0268200700010001000038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>39. Huet C, Monget P, Pisselet C and Monniaux D. Changes in extracellular matrix    components and steroidogenic enzymes during growth and atresia of antral ovarian    follicles in the sheep. Biol Reprod 1997; 56: 1025-1034.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0122-0268200700010001000039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>40. Hill DJ. Growth factors and their cellular actions. J Reprod Fertil 1989;    85: 723-734.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0122-0268200700010001000040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>41. Jans D, Hassan G. Nuclear targeting by growth factors, cytokines and their    receptors: a role insignaling?. Bioessays 1998; 20: 400-411.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0122-0268200700010001000041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>42. Monget P, Monniaux D. Growth factors and the control of folliculogenesis.    J Reprod Fertil 1995; 49: 321-333.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0122-0268200700010001000042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> Suppl.</p>     <!-- ref --><p>43. Franchimont P, Hazee-Hagelstein M, Charlet-Renard C, Jaspar JM. Effect    of mouse epidermal growth factor on DNA and protein synthesis, progesterone,    and inhibin production by bovine granulosa cells in culture. Acta Endocr Copenh    1986; 111: 122-127. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0122-0268200700010001000043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>44. Chum SY, Billig H, Tilly JL, Furuta I, Tsafriri A and Hsueh A. Gonadotropin    supression of apoptosis in cultured preovulatory follicles: Mediatory role of    endogenous insuline-like growth factor. J. Endocrinol 1994; 135: 1845-1853.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0122-0268200700010001000044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>45. Grazul-Bilska AT. Gap junctions in the ovaries. Biol Reprod 1997; 57: 947-957.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0122-0268200700010001000045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>46. Grazul-Bilska AT, Redmer DA, Bilski JJ. Gap junction proteins, connexin    26, 32, and 43 in sheep ovaries throughout the estrous cycle. Endocrinology    1998; 8 (3): 269-279.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0122-0268200700010001000046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>47. Buratini JrJ, Price CA, Visintin JA, B&oacute; GA. Effects of dominant    follicle aspiration and treatment with recombinant bovine somatotropin (bst)    on ovarian follicular development in nelore (Bos indicus) heifers. Theriogenology    2000; 54: 421&#8211;431.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0122-0268200700010001000047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>48. Simpson RB, Chase Jr.CC, Spicer LJ, Vernon RK, Hammond AC, Rae DO. Effect    of exogenous insulin on plasma and follicular insulin-like growth factor I,    insulin-like growth factor binding protein activity, follicular estradiol and    progesterone, and follicular growth in superovulated Angus and Brahman cows.    J Reprod Fertil 1994; 102: 483&#8211;492.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0122-0268200700010001000048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>49. Alvarez P, Spicer LJ, Chase Jr.CC, Payton ME, Hamilton TD, Stewart RE,    et al. Ovarian and endocrine characteristics during the estrous cycle in Angus,    Brahman and Senepol cows in a subtropical environment. J Anim Sci 2000; 78:    1291&#8211;1302. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0122-0268200700010001000049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>50. B&oacute; GA, Baruselli PS, Mart&iacute;nez MF. Pattern and manipulation    of follicular development in Bos indicus cattle. Anim Reprod Sci 2003; 78: 307&#8211;326.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0122-0268200700010001000050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>51. Harvey MB, Leco KJ, Arcellana-Panlilio MY, Zhang X, Edwards DR, Schultz    GA. Roles of growth factors during peri-implantation. Mol Hum Reprod 1995; 10:    712-718.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0122-0268200700010001000051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>52. Watson AJ, Hogan A, Hahnel A, Wiemer KE and Schultz GS. Expression of growth    factor ligand and receptor genes in the preimplantation bovine embryo. Mol Reprod    Dev 1992; 31: 87-95.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0122-0268200700010001000052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>53. Gandolfi F, Brevini T AL, Modina S, Bianchi R and Passoni L. Role of the    oviduct during early embryogenesis. In: Regulation of embryonic growth mechanisms    in mammals. Reprod Dom Anim 1993; 28(4): 145-216.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0122-0268200700010001000053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>54. Gandolfi F, Brevini TAL, Modina, S, Passoni L, Lauria A. Maternal control    of early embryonic development. In: &#8220;Embryonic development and manipulation    in animal production&#8221; A. Lauria &amp; F. Gandolfi (eds.) Portland Press.    London 1992; 93-102 &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0122-0268200700010001000054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>55. Barnet DK, Bavister B D. What is the relationship between the metabolism    of preimplantation embryos and their developmental competence? Mol Reprod Dev    1996; 43: 105-133.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0122-0268200700010001000055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>56. Simmen R, Ko Y, Simmen F. Insulin like growth factors and blastocyst development.    Theriogenology 1993; 39: 163-175.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0122-0268200700010001000056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>57. Matsui M, Takahashi Y, Hishinuma M, Kanagawa H. Stimulation of the development    of bovine embryos by insulin and IGF-I is mediated through the IGF-I receptor.    Theriogenology 1997; 48: 605-616.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0122-0268200700010001000057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>58. O&acute;neill C. Autocrine mediators are required to act on the embryo    by the 2-cell stage to promote normal development and survival of mouse preimplantation    embryos <i>in vitro</i>. Molec Reprod Dev 1998; 58: 1303&#8211;1309.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0122-0268200700010001000058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>59. Harper, MJK. Gamete and zygote transport. In: The physiology of reproduction.    Second edition. Knobil E. and Neill, J. (Eds). Raven Press. 1994; p.123&#8211;187.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0122-0268200700010001000059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>60. De Sousa P, Watson A, Schultz G, Bilodeau-Goeseels S. Oogenetic and zygotic    gene expression directing early bovine embryogenesis: A review. Mol Reprod Dev    1998; 51: 112&#8211;121.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0122-0268200700010001000060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>61. Palomares-Naveda R, Hern&aacute;ndez-Fonseca H, Soto-Belloso E, Gonz&aacute;lez-Fern&aacute;ndez    R, De Ondiz-S&aacute;nchez A, Perea-Ganchou F, Sirisanthian S, Brackett, B.    Efecto del factor de crecimiento epidermal (EGF) durante la maduraci&oacute;n    de oocitos sobre la producci&oacute;n <i>in vitro</i> de embriones bovinos. Rev Cient&iacute;fica    2004; 14, 2: 162-167.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0122-0268200700010001000061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>62. Kumar D and Narayan G. Effect of epidermal and insulin-like growth factor-1    on cumulus expansion, nuclear maturation and fertilization of buffalo cumulus    oocyte complexes in simple serum free media DMEM and Ham&#8217;s F-10. Veterinarski    Archiv. 2004; 74(1): 13-25.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0122-0268200700010001000062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>63. Grazul-Bilska AT. Choi JT, Bilski JJ, Weigl RM, Kirsch JD, Kraft KC, Reynolds    LP, Redmer DA. Effects of epidermal growth factor on early embryonic development    after <i>in vitro</i> fertilization of oocytes collected from ewes treated with follicle    stimulating hormone. Theriogenology 2003; 59: 1449-1457.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0122-0268200700010001000063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>64. Guler A, Poulin N, Nermillod P, Terqui M, Cognie Y. Effects of growth factors    EGF - IGF-1 and estradiol on <i>in vitro</i> maturation of sheep oocytes. Theriogenology    2000; 54: 209-218.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0122-0268200700010001000064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>65. Hansen PJ. Interactions between the immune system and the bovine conceptus.    Theriogenology 1997; 47: 121-130.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0122-0268200700010001000065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>66. Oshima K, Watanabe H, Yoshihara K, Kojima T, Dochi O, Takenouchi N, Fukushima    M, Komatsu M. Gene expression of leukemia inhibitory factor (LIF) and macrophage    colony stimulating factor (M-CSF) in bovine endometrium during early pregnancy.    Theriogenology 2003; 60: 1217&#8211;1226. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S0122-0268200700010001000066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>67. Hern&aacute;ndez A, Rodr&iacute;guez JM. Lecturas sobre Reproducci&oacute;n    Bovina (III). Aspectos Morfofisiol&oacute;gicos de la Implantaci&oacute;n. Universidad    Nacional de Colombia, Facultad de Medicina Veterinaria y de Zootecnia, sede    Bogot&aacute;, 2000; p.5-72&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0122-0268200700010001000067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>68. Taylor CM, Stevens H, Anthony FW, Wheeler T. Influence of hypoxia on vascular    endothelial growth factor and chorionic gonadotrophin production in the trophoblast-derived    cell lines. Placenta 1997; 18: 451-458.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000154&pid=S0122-0268200700010001000068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>69. Acosta TJ, Miyamoto A. Vascular control of ovarian function: ovulation,    corpus luteum formation and regression. Anim Reprod Sci 2004; 82&#8211;83: 127&#8211;140.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0122-0268200700010001000069&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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