<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>0122-0268</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Revista MVZ Córdoba]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[Rev.MVZ Cordoba]]></abbrev-journal-title>
<issn>0122-0268</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Universidad de Córdoba - Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia.]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S0122-02682007000200002</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[PRODUCCIÓN Y EVALUACIÓN SEROLÓGICA DE UNA BACTERINA CONTRA LA LEPTOSPIROSIS BOVINA]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[PRODUCTION AND SEROLOGIE EVALUATION OF A BACTERIN AGAINST BOVINE LEPTOSPIROSIS]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sánchez]]></surname>
<given-names><![CDATA[Edna]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Gutiérrez]]></surname>
<given-names><![CDATA[Benito]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Fernández L]]></surname>
<given-names><![CDATA[Cindy]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A02"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Arias P]]></surname>
<given-names><![CDATA[Janeth]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A02"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Pontificia Universidad Javeriana Facultad de Ciencias ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[ ]]></addr-line>
</aff>
<aff id="A02">
<institution><![CDATA[,Departamento de Microbiología Grupo de Biotecnología Ambiental e Industrial ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Bogotá ]]></addr-line>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>07</month>
<year>2007</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>07</month>
<year>2007</year>
</pub-date>
<volume>12</volume>
<numero>2</numero>
<fpage>967</fpage>
<lpage>977</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0122-02682007000200002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0122-02682007000200002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0122-02682007000200002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Objetivo. Producir una bacterina contra leptospirosis bovina. Materiales y métodos. La producción de la bacterina se realizó a partir de cultivos de L. pomona, L. grippotyphosa, L. hardjobovis, L. hardjoprajitno, L. icterohaemorrhagiae y L. canicola con concentraciones entre 1x108 y 1x1010 células/ml. Las leptospiras se inactivaron con formol y se adsorbieron en hidróxido de aluminio para formular la vacuna. La concentración final de cada serovar fue de 1x108 Leptospiras/ml. Para realizar la evaluación serológica del producto biológico, se inmunizó una población de 20 terneros sanos los cuales fueron sangrados antes y después de la vacunación para realizar titulaciones de los sueros por medio de la técnica de microaglutinación y de esta forma determinar la producción de anticuerpos generada a causa de la bacterina. Resultados. El serovar que mayor título de anticuerpos produjo fue L. icterohaemorrhagiae, seguido por L. canicola. La serología realizada 15 días después de la revacunación fueron los que presentaron mayor número de anticuerpos para todos los serovares, excepto para L. grippotyphosa que fue el único que no estímulo la producción de anticuerpos en los animales vacunados. Conclusiones. La bacterina fue capaz de inducir una respuesta inmune humoral en los bovinos, sin embargo, la cepa L. grippotyphosa no fue inmunógena comparada con los demás serovares que hicieron parte de la vacuna.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective. To produce a bacterin against bovine leptospirosis. Materials and methods. The production of bacterin was made using the serovares: L. pomona, L grippotyphosa, L. hardjobovis, L. hardjoprajitno, L. icterohaemorrhagiae and L. canicola with concentrations between 1x108 and 1x1010 cells/ml. Leptospiras were immobilized with formaldehyde and adsorption of aluminum hydroxide to formulate the vaccine. Final concentration of each serovar was of 1x108 Leptospiras/ml. A population of 20 healthy calves bleeding before and after vaccination was immunized to analyze serum evaluation of the biological product to make titrations of serums by means of micro-agglutination technique and this way to determine antibodies production generated by bacterin. Results. L. icterohaemorrhagiae was the serovar with higher titres of antibodies followed by L. canicola. Serums from bleeding made 15 days before revaccination were those with higher number of antibodies for all serovars except for L. grippotyphosa that was the only one that did not stimulate antibodies production in vaccinated animals. Conclusions. The bacterin was able to induce a humoral response in bovines, however, L. grippotyphosa was not immunogen compared with other serovars that participated in the vaccine.]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[Leptospira]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[bovinos]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[bacterina]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Leptospira]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[bovine]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[bacterin]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[vaccine]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">      <p align="right"><b>ORIGINAL</b></p>      <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="3"><b>PRODUCCI&Oacute;N Y EVALUACI&Oacute;N SEROL&Oacute;GICA    DE UNA BACTERINA CONTRA LA LEPTOSPIROSIS BOVINA</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center" ><font size="3"><b>PRODUCTION AND SEROLOGIE EVALUATION OF A    BACTERIN AGAINST BOVINE LEPTOSPIROSIS</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>Edna  S&aacute;nchez C<sup>1</sup>, Microb, Benito Guti&eacute;rrez1, MV, Cindy Fern&aacute;ndez L<sup>2</sup>, Microb, Janeth Arias P<sup>2</sup>, M.Sc</b></p>     <p><b><sup>1</sup></b>Laboratorios Limor de Colombia. Pontificia Universidad  Javeriana, Facultad de Ciencias.     <br> <b><sup>2</sup></b>Grupo de Biotecnolog&iacute;a Ambiental e Industrial,  Departamento de Microbiolog&iacute;a. Bogot&aacute;     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Correspondencia: <a href="mailto:jdcarias@javeriana.edu.co">jdcarias@javeriana.edu.co</a></p>     <p>Recibido: Abril 15 de 2007; Aceptado: Noviembre 12 de 2007</p> <hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p><b>Objetivo.</b>  Producir una bacterina contra leptospirosis bovina.     <br><b>Materiales  y m&eacute;todos.</b> La producci&oacute;n de la bacterina se realiz&oacute;  a partir de cultivos de L. pomona, L.  grippotyphosa, L. hardjobovis,  L. hardjoprajitno, L.  icterohaemorrhagiae y L. canicola con  concentraciones entre 1x108 y 1x1010  c&eacute;lulas/ml. Las leptospiras se inactivaron con formol y se  adsorbieron en hidr&oacute;xido de aluminio para formular la vacuna. La concentraci&oacute;n  final de cada serovar fue de 1x108 Leptospiras/ml.  Para realizar la evaluaci&oacute;n serol&oacute;gica del producto biol&oacute;gico, se inmuniz&oacute; una  poblaci&oacute;n de 20 terneros sanos los cuales fueron sangrados antes y despu&eacute;s de  la vacunaci&oacute;n para realizar titulaciones de los sueros por medio de la t&eacute;cnica  de microaglutinaci&oacute;n y de esta forma determinar la producci&oacute;n de anticuerpos  generada a causa de la bacterina.     <br><b>Resultados.</b>  El serovar que mayor t&iacute;tulo de anticuerpos produjo fue L.  icterohaemorrhagiae, seguido por L.  canicola. La serolog&iacute;a realizada 15 d&iacute;as despu&eacute;s de  la revacunaci&oacute;n fueron los que presentaron mayor n&uacute;mero de anticuerpos para todos  los serovares, excepto para L. grippotyphosa que  fue el &uacute;nico que no estimul&oacute; la producci&oacute;n de anticuerpos en los animales  vacunados.     <br><b>Conclusiones.</b> La  bacterina fue capaz de inducir una respuesta inmune humoral en los bovinos, sin  embargo, la cepa L. grippotyphosa no  fue inmun&oacute;gena comparada con los dem&aacute;s serovares que hicieron parte de la  vacuna. </p>     <p><b>Palabras  clave:</b> Leptospira, bovinos, bacterina, vacuna.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT</b></p>      <p><b>Objective.</b> To produce a bacterin against bovine  leptospirosis.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <b>Materials and methods.</b> The production of bacterin was made using the  serovares: L. pomona, L grippotyphosa, L. hardjobovis, L. hardjoprajitno,  L. icterohaemorrhagiae and L. canicola with concentrations between 1x108 and 1x1010  cells/ml. Leptospiras were immobilized with formaldehyde and adsorption of  aluminum hydroxide to formulate the vaccine. Final concentration of each  serovar was of 1x108 Leptospiras/ml. A population of 20 healthy calves bleeding  before and after vaccination was immunized to analyze serum evaluation of the  biological product to make titrations of serums by means of micro-agglutination  technique and this way to determine antibodies production generated by bacterin.     <br> <b>Results.</b> L. icterohaemorrhagiae was the serovar with higher titres of  antibodies followed by L. canicola. Serums  from bleeding made 15 days before revaccination were those with higher number  of antibodies for all serovars except for L. grippotyphosa that was the only one that did not stimulate  antibodies production in vaccinated animals.     <br><b>Conclusions.</b> The  bacterin was able to induce a humoral response in bovines, however, L. grippotyphosa was not immunogen compared with other serovars  that participated in the vaccine.</p>     <p><b>Key  words:</b> Leptospira, bovine , bacterin, vaccine </p>  <hr size="1">      <p><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b> </font></p>      <p>La leptospirosis es una de las zoonosis m&aacute;s difundidas en el  mundo; constituye un grupo de enfermedades bacterianas que determinan una  infecci&oacute;n aguda generalizada. De manera primaria, es una enfermedad de animales  salvajes y dom&eacute;sticos; los humanos son infectados ocasionalmente a trav&eacute;s de  contactos directos o indirectos con animales, y con aguas contaminadas, a  trav&eacute;s de las abrasiones en la piel o de las mucosas (1, 2).</p>     <p>Las leptospiras patog&eacute;nicas pertenecientes a la especie Leptospira  interrogans, a la cual se le conocen m&aacute;s de 200 serovares; son los  microorganismos causales de la enfermedad, par&aacute;sitos primarios de vertebrados  distintos del ser humano, como roedores, perros, cerdos, bovinos y mapaches, en  los cuales las bacterias, persisten en la forma de una infecci&oacute;n renal asintom&aacute;tica  permanente (2, 3). </p>     <p>Las leptospiras son bacterias Gram negativas, helicoidales,  flexibles y delgadas; la parte terminal de la c&eacute;lula puede aparecer en forma de  gancho. Su longitud oscila entre 6 - 20mm y su di&aacute;metro entre 0.1 -0.2mm (4,5).</p>     <p>Las p&eacute;rdidas por leptospirosis est&aacute;n caracterizadas  principalmente por abortos, infertilidad, baja productividad y muerte (6).  Debido al desconocimiento generalizado que se tiene sobre la Leptospirosis y a  la deficiencia en las medidas de control, &eacute;sta es una de las enfermedades  bovinas que m&aacute;s ha ganado terreno en Colombia. De acuerdo con los diagn&oacute;sticos  del Instituto Colombiano Agropecuario (ICA), L. hardjo es la serovariedad m&aacute;s  frecuente en Colombia, seguida por L. pomona. El porcentaje total de  prevalencia en el pa&iacute;s, para L. hardjo es del 27% (7). En el a&ntilde;o de 1965 se comprob&oacute;  por aislamiento la presencia de Leptospira spp., en bovinos, pero la leptospirosis  s&oacute;lo se diagnostic&oacute; hasta 1976; aunque la divulgaci&oacute;n e investigaci&oacute;n de la  leptospirosis bovina tom&oacute; importancia 4 a&ntilde;os despu&eacute;s. Inicialmente la mayor  importancia se enfatiz&oacute; en los perros debido a la relaci&oacute;n m&aacute;s frecuente con la  salud p&uacute;blica (7, 8).</p>     <p>La leptospirosis est&aacute; ampliamente distribuida en el ganado  de carne en las &aacute;reas tropicales de Colombia. La transmisi&oacute;n de Leptospirosis  es relativamente m&aacute;s importante en tr&oacute;picos h&uacute;medos que en los climas medio o  fr&iacute;o, debido a que la sobrevivencia de las leptospiras fuera del hu&eacute;sped se  prolonga bajo condiciones calientes y h&uacute;medas (9). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Evidencias serol&oacute;gicas y aislamientos realizados indican que  L. hardjo tiene importancia epidemiol&oacute;gica en los bovinos productores de carne  de los Llanos Orientales de Colombia, donde la prevalencia es del 63.5%, menor  a la que se presenta en hatos del Valle del Cauca (80.9%) y la Costa Atl&aacute;ntica  (89.1%) (9,10). La prevalencia de leptospirosis en Colombia ha presentado las  siguientes cifras para L. hardjo: el 32.8% en la regi&oacute;n del Caribe, en el  Piedemonte llanero se hall&oacute; una positividad del 24.8%, seguido por la regi&oacute;n  Andina que present&oacute; un porcentaje de 14.4. El porcentaje promedio total para el  pa&iacute;s fue de 21.7% (7, 10).</p>     <p>Otros estudios realizados en ganader&iacute;as colombianas muestran  al serovar hardjo como el de mayor prevalencia (32%), seguido por L.  icterohaemorrhagiae (18.22), L. pomona (9.6%), L. canicola (8.5%) y L.  grippotyphosa. Este orden de prevalencia y sus cifras var&iacute;an considerablemente  de una zona ganadera a otra pero el serovar hardjo siempre es el de mayor  prevalencia para la ganader&iacute;a colombiana. Es as&iacute; como por ejemplo en C&oacute;rdoba y  &aacute;reas adyacentes de Sucre y Antioquia la prevalencia individual m&aacute;s alta  corresponde a hardjo     <p> (37.9%), <i>L. grippothyphosa</i> (16.3%), <i>L. icterohamorrhagiae</i> (13.2%),    L. <i>pomona</i> (9.0) y L. <i>canicola</i> (11 - 13). </p>     <p>La vacunaci&oacute;n se ha ido generalizando como medida preventiva  contra la leptospirosis y es el m&eacute;todo m&aacute;s eficaz para controlar la enfermedad  en aquellas zonas end&eacute;micas que lo ameritan. En el pa&iacute;s, las vacunas contra la  leptospirosis son importadas. El desarrollo de una bacterina antileptospirosis  permitir&iacute;a con cepas reconocidas nacionalmente, controlar el problema y poder  suministrar un producto para controlar uno de los problemas m&aacute;s importantes que  afecta el sistema reproductivo de la ganader&iacute;a nacional. Con el control de la  enfermedad se aspira a aumentar el porcentaje de pre&ntilde;ez y fertilidad en  aquellos hatos y regiones donde la leptospirosis es causa de baja productividad  y en las regiones donde a&uacute;n no se ha presentado, ayudar&iacute;a a inmunizar la  ganader&iacute;a y prevenir la aparici&oacute;n de futuras epidemias (12).</p>     <p>El objetivo de este estudio fue producir una bacterina  contra la leptospirosis bovina.</p>     <p>&nbsp;</p>      <p><font size="3"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>      <p><b>Sitio de estudio.</b> El estudio se realiz&oacute; en Laboratorios Limor Colombia, un an&aacute;lisis  de tipo bifactorial evalu&oacute;, la variable de inter&eacute;s, que para este caso especifico  fue el promedio de los t&iacute;tulos obtenidos frente al posible efecto de factores  que incidieron en esta respuesta, es decir el tipo de serovariedad y t&iacute;tulo  durante la experimentaci&oacute;n. </p> <b>Elaboraci&oacute;n de la bacterina.</b> Se probaron dos medios de cultivo diferentes, &quot;Medio  A&quot; y &quot;Medio B&quot;. El medio EMJH, fue modificado por incremento en la  concentraci&oacute;n de Tween, suplementado con suero de conejo o suero de ternera al  2% y alb&uacute;mina s&eacute;rica bovina. Los medios fueron enriquecidos con Vit.B2 y B12 para estimular el crecimiento (14). Se cultivaron  los 6 serovares en los dos medios empleando igual volumen de in&oacute;culo e iguales  condiciones de incubaci&oacute;n. Cada uno de los 6 serovares de L. interrogans (L. hardjobovis, L. hardjoprajitno, L.  pomona, L. icterohaemorrhagiae, L. grippotyphosa y L. canicola) provenientes  del Centro Panamericano de Zoonosis (Tabla 1). Se cultivaron por separado en 10  ml del medio l&iacute;quido &quot;A&quot;, a ph de 7.2 +/- 0.2 y temperatura controlada de 30oC,  durante 5 a 10 d&iacute;as en condiciones de aerobiosis y agitaci&oacute;n. Luego se escal&oacute;,  teniendo en cuenta los mismos par&aacute;metros, hasta que se obtuvo un volumen final  de 500ml.      <p>Las bacterias fueron retiradas del cultivo, una vez lograda  la concentraci&oacute;n requerida (1x108c&eacute;lulas/ ml), evaluada por dos m&eacute;todos  diferentes: turbidez, a trav&eacute;s del nefel&oacute;metro de MacFarland y mediante una  adaptaci&oacute;n de la t&eacute;cnica de Reed y Muench, para titulaciones de virus empleando  la dosis letal 50 (DL50) (15). Se realizaron diluciones de los cultivos con sus  dos r&eacute;plicas, verificando la presencia de leptospiras en estas despu&eacute;s de los  per&iacute;odos de incubaci&oacute;n. Los resultados se registraron en una tabla similar a la  utilizada por el m&eacute;todo de Reed y Muench (15) y finalmente se realiz&oacute;  titulaci&oacute;n de los cultivos. </p>     <p><b>Adsorci&oacute;n al hidr&oacute;xido de aluminio.</b> Se realizaron tres  ensayos con el hidr&oacute;xido de aluminio a concentraciones de 1.25 mg/ml para  verificar la capacidad para adsorber las leptospiras. Para esto, se tom&oacute; una  muestra de cada uno de los cultivos y se les adicion&oacute; hidr&oacute;xido de aluminio, se  realizaron titulaciones de los cultivos, utilizando el m&eacute;todo de titulaci&oacute;n de  Reed y Muench (15). Con los datos obtenidos de las titulaciones se obtuvo el  porcentaje de adsorci&oacute;n del hidr&oacute;xido para cada uno de los cultivos. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Inactivaci&oacute;n y formulaci&oacute;n.</b> A cada uno de los cultivos, se  les realiz&oacute; una prueba de pureza y esterilidad mediante siembra en caldo  tioglicolato y caldo Saboreaud, a fin de verificar la ausencia de agentes  contaminantes. Luego que las pruebas de pureza fueron satisfactorias, se  inactivaron los cultivos, utilizando formaldeh&iacute;do a la concertaci&oacute;n del 0.5%  (v/v). Para la preparaci&oacute;n final de la bacterina, los cultivos inactivados con  formaldeh&iacute;do de los diferentes serovares se distribuyeron junto con el hidr&oacute;xido  de aluminio en un volumen de 2ml, teniendo en cuenta la concentraci&oacute;n de los  cultivos para que cada dosis correspondiera con la formulaci&oacute;n y concentraci&oacute;n  de leptospiras deseada    <p>   (1x108c&eacute;lulas/ ml). </p>     <p>La esterilidad de la bacterina se verific&oacute; a trav&eacute;s de  siembras en los medios tioglicolato, agar sangre, BHI, Saboreaud, Tarozzi. La  evaluaci&oacute;n de la inocuidad del producto se realiz&oacute; tanto &quot;in vitro&quot;, por medio  de siembras en el medio de producci&oacute;n y posterior verificaci&oacute;n de la ausencia  de leptospiras por observaciones al microscopio de campo oscuro, como &quot;in vivo&quot;,  por vacunaci&oacute;n subcut&aacute;nea de la bacterina experimental en h&aacute;mster. </p>     <p><b>Evaluaci&oacute;n serol&oacute;gica de la bacterina.</b> Para la evaluaci&oacute;n de  la bacterina experimental, se emplearon 20 bovinos raza Ceb&uacute;, de 6 meses de  edad, sanos y sin vacunar. Para detectar el nivel de anticuerpos inducidos por  la inmunizaci&oacute;n de la vacuna producida, se recolectaron muestras de sangre de  los terneros antes de la vacunaci&oacute;n (sangr&iacute;a 1). Cumplidos 30 d&iacute;as de la  primera vacunaci&oacute;n, se les suministr&oacute; la segunda dosis (2ml) y se realiz&oacute; la  segunda sangr&iacute;a, 15 y 45 d&iacute;as despu&eacute;s se realiz&oacute; la tercera y cuarta. Los niveles  de anticuerpos presentes en los sueros de los bovinos inmunizados con la bacterina,  fueron medidos mediante titulaciones utilizando la t&eacute;cnica de microaglutinaci&oacute;n  MTA (16).</p> <b>An&aacute;lisis  estad&iacute;stico de los datos.</b> Para el dise&ntilde;o experimental, se utiliz&oacute; la evaluaci&oacute;n  serol&oacute;gica de la bacterina experimental mediante el An&aacute;lisis Bifactorial de efectos fijos completamente aleatorizado (17,  18). Para esto, se plantearon dos hip&oacute;tesis:     <p>H<sub>01</sub>: &mu;sangria 1 = &mu;sangria = &mu;sangria3 = &mu;sangria 3 </p>     <p>Donde: H<sub>01</sub>: Por lo menos un promedio de titulaci&oacute;n es  diferente al variar la fecha de la sangr&iacute;a (revacunaci&oacute;n).</p>     <p>Interpretaci&oacute;n. Esta hip&oacute;tesis supone que el promedio de  titulaciones son iguales al variar la fecha de la sangr&iacute;a, (revacunaci&oacute;n).</p>     <p>H<sub>02</sub>: &mu;serovar1 = &mu;serovar2= &mu;serovar3 = &mu;serovar4 = &mu;serovar5  = &mu;serovar6 </p>     <p>H<sub>12</sub>: Por lo menos un serovar es distinto al variar la fecha  de sangr&iacute;a (revacunaci&oacute;n).</p>     <p>La interpretaci&oacute;n de H<sub>02</sub> es que todos los t&iacute;tulos de los  serovares son iguales a&uacute;n variando las dosis de vacunaci&oacute;n.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Estas hip&oacute;tesis se probaron mediante el an&aacute;lisis de  varianza, los datos obtenidos del an&aacute;lisis de varianza se insertaron en el  paquete estad&iacute;stico de Scheff&eacute;, para calcular el valor P. Las hip&oacute;tesis H<sub>01</sub> y H<sub>02</sub>,  fueron rechazadas cuando p &lt;0.5. </p>     <p>&nbsp;</p>      <p><font size="3"><b>RESULTADOS</b></font></p>      <p>Elaboraci&oacute;n de la bacterina. Todos los cultivos de los  serovares alcanzaron la concentraci&oacute;n de 1x 108 c&eacute;lulas/ ml y algunos  sobrepasaron este n&uacute;mero de leptospiras (<a href="#tab1">Tabla 1</a>). Las concentraciones obtenidas  seg&uacute;n el nefel&oacute;metro de MacFarland fueron de 3x108 c&eacute;lulas/ml para cada uno de  los serovares cultivados. Los resultados de los ensayos con el hidr&oacute;xido de  aluminio Al(OH)3, se muestran en la <a href="#tab2">tabla 2.</a> </p>      <p>&nbsp;</p>     <center>    <p><a name="tab1"><img src="img/revistas/mvz/v12n2/2a01t1.gif"></a></p>        <p><a name="tab2"><img src="img/revistas/mvz/v12n2/2a01t1.gif"></a></p> </center>      <p>Evaluaci&oacute;n  serol&oacute;gica de la bacterina. El an&aacute;lisis de varianza y el estad&iacute;stico de Scheff&eacute;  condujeron al rechazo de las hip&oacute;tesis nulas y al mismo tiempo a la aceptaci&oacute;n  de las hip&oacute;tesis alternas. Los promedios de t&iacute;tulos de anticuerpos en los bovinos,  variaron con la fecha de sangrado al igual que con el tipo de serovar     <p>Los t&iacute;tulos de las sangr&iacute;as 1, 2 y 4 fueron estad&iacute;sticamente  iguales, por el contrario la sangr&iacute;a 3 fue la &uacute;nica diferente estad&iacute;sticamente  respecto a las otras sangr&iacute;as, es decir, a los 15 d&iacute;as despu&eacute;s de la  revacunaci&oacute;n el promedio de reactores aument&oacute; considerablemente (<a href="#tab3">Tabla 3</a>).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="tab3"><img src="img/revistas/mvz/v12n2/2a01t3.gif"></a></center></p>       <p>&nbsp;</p>     <p>Por otro lado, los t&iacute;tulos fueron diferentes para cada serovar. Como    se observa en la <a href="#fig1">figura 1</a>, el serovar que present&oacute;    mayor t&iacute;tulo de anticuerpos fue L. icterohaemorrhagiae. En esta figura    tambi&eacute;n se puede observar que no hubo diferencia estad&iacute;stica entre    los t&iacute;tulos de anticuerpos de este serovar y L. canicola pues sus intervalos    se solapan.</p>          <p>&nbsp;</p>     <p>    <center><a name="fig1"><img src="img/revistas/mvz/v12n2/2a01g1.gif"></a></center></p>      <p>El  serovar 2 L. hardjoprajitno  (<a href="#fig1">Figura 1</a>) produjo menos t&iacute;tulos que  L. canicola,  aunque, fueron estad&iacute;sticamente iguales. L. hardjobovis (serovar  1) y L. pomona (serovar 3) presentaron t&iacute;tulos muy parecidos y aunque el  serovar 2 tuvo niveles de titulaci&oacute;n m&aacute;s altos, la diferencia no fue  significativa. </p>        <p>El serovar 6 (L. grippotyphosa) fue el que menos t&iacute;tulos de  anticuerpos desarroll&oacute; en los bovinos; los serovares 1 y 3 fueron iguales  estad&iacute;sticamente (<a href="#fig1">Figura 1</a>). </p>        <p>L. canicola y L. icterohaemorrhagiae arrojaron resultados de  titulaci&oacute;n parecidos en los que se observ&oacute; inicialmente ausencia de t&iacute;tulos,  pero Â estos progresaron con el tiempo  (n&uacute;mero de sangr&iacute;a) y descendieron r&aacute;pidamente en la cuarta sangr&iacute;a (<a href="#tab3">Tabla 3</a>).  Por el contrario la titulaci&oacute;n para L. hardjoprajitno en los bovinos vacunados no  present&oacute; variaci&oacute;n sino hasta la tercera sangr&iacute;a, y en la cuarta se observ&oacute; un  aumento notorio de anticuerpos, es decir, que no se alcanz&oacute; a registrar el  descenso de los t&iacute;tulos (<a href="#tab3">Tabla 3</a>). Para el caso de L. hardjobovis en los  bovinos vacunados, no se evidenciaron variaciones antes de la vacunaci&oacute;n y un  mes despu&eacute;s de esta. Los t&iacute;tulos aumentaron en la sangr&iacute;a 3, 45 d&iacute;as despu&eacute;s de la vacunaci&oacute;n y 15 d&iacute;as despu&eacute;s de la  revacunaci&oacute;n; pero en la cuarta sangr&iacute;a este nivel se mantuvo sin cambio en el  promedio de anticuerpos. El t&iacute;tulo de anticuerpos para L. pomona a lo largo de  las sangr&iacute;as fue similar al de L. hardjobovis, s&oacute;lo vari&oacute; en los valores de los  promedios de los t&iacute;tulos. Adem&aacute;s, hubo aumento de anticuerpos despu&eacute;s de 30  d&iacute;as de la vacunaci&oacute;n y disminuci&oacute;n del nivel de inmunoglobulinas entre la  tercera y cuarta sangr&iacute;a, es decir, 45 d&iacute;as despu&eacute;s de la revacunaci&oacute;n. L.  grippotyphosa evidenci&oacute; t&iacute;tulos &uacute;nicamente hasta la sangr&iacute;a n&uacute;mero 4; este  serovar, no increment&oacute; t&iacute;tulos durante las sangr&iacute;as, 1, 2 y 3; los promedios de  los t&iacute;tulos detectados en la cuarta sangr&iacute;a, d&iacute;a 90 post vacunaci&oacute;n fueron  t&iacute;tulos de 3.75 muy inferiores dentro del grupo (<a href="#tab3">Tabla 3</a>).</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los t&iacute;tulos para los serovares evaluados estuvieron entre  1:25 y 1:800. Los t&iacute;tulos de 1:25 estuvieron presentes para todos los serovares  y en todas las sangr&iacute;as. Mientras que el t&iacute;tulo de 1:800 solamente se obtuvo en  la sangr&iacute;a 3 y para un solo animal, frente a L. icterohaemorrhagiae. Los  t&iacute;tulos de 1:50 y 1:100 se presentaron a partir de la sangr&iacute;a n&uacute;mero 2, es  decir despu&eacute;s de empezar el plan de vacunaci&oacute;n. En la sangr&iacute;a n&uacute;mero 3, 15 d&iacute;as  despu&eacute;s de la revacunaci&oacute;n, es donde se detect&oacute; el mayor n&uacute;mero de bovinos  reactores, asimismo se registraron t&iacute;tulos desde 1:25 hasta 1:800 (<a href="#fig2">Figura 2</a>).</p>       <p>&nbsp;</p>       <p>    <center><a name="fig2"><img src="img/revistas/mvz/v12n2/2a01g2.gif"></a></center></p>          <p><font size="3"><b>DISCUSI&oacute;N</b></font></p>       <p>La producci&oacute;n de la bacterina se realiz&oacute; a partir de los  cultivos en el medio A; medio en el que se presentaron concentraciones  celulares altas, en menor tiempo. Esto se atribuye a que las leptospiras  inicialmente vienen adaptadas y provienen de pases en medios de composici&oacute;n  semejante al medio A; lo cual facilita y acorta la etapa de adaptaci&oacute;n y  permite obtener en forma m&aacute;s r&aacute;pida la biomasa celular requerida (19).</p>       <p>Todas los serovares crecieron hasta llegar y sobrepasar la  concentraci&oacute;n esperada 1x108 c&eacute;lulas/ml. El serovar que obtuvo mayor  concentraci&oacute;n fue L. pomona con 1x1010 leptospiras/ml. Aunque todos los  cultivos se manejaron bajo las mismas condiciones, el rendimiento en biomasa,  no fue igual para todos. Esto se debe a que cada microorganismo act&uacute;a en forma  diferente frente a las condiciones ambientales y algunos como L. pomona y L. grippotyphosa  aprovechan m&aacute;s eficientemente los &aacute;cidos grasos disponibles en el medio como  fuente de energ&iacute;a y carbono, o son capaces de superar la toxicidad que estos  &aacute;cidos a su vez confieren al medio. </p>       <p>Los resultados de las concentraciones tambi&eacute;n evidencian,  que serovares como L. icterohaemorrhagiae, L. hardjobovis y L. hardjoprajitno  son m&aacute;s exigentes a nivel nutricional o que son m&aacute;s sensibles a las condiciones  ambientales (19, 20). </p>       <p>Las divergencias obtenidas entre las concentraciones de las  Leptospiras demuestran nuevamente que a pesar de que estos microorganismos  pertenecen a la misma especie, L. interrogans, present&oacute; diferencias a nivel  serol&oacute;gico y a nivel nutricional (1, 21).</p>       <p>Las concentraciones obtenidas no fueron un impedimento para  la realizaci&oacute;n de la bacterina porque, aunque estas no presentan similitud,  todos los serovares superaron la biomasa esperada, 1x108c&eacute;lulas/ml; sin  embargo, la b&oacute;squeda de un medio de cultivo en el que cada uno de los serovares  obtenga crecimientos cercanos al de L. pomona (1x1010 c&eacute;lulas/ ml) es una  alternativa de trabajo para la optimizaci&oacute;n del proceso de elaboraci&oacute;n de la  vacuna, ya que de esta forma se producir&iacute;an cultivos de leptospira m&aacute;s concentrados,  disminuyendo as&iacute; losÂ  vol&uacute;menes de  cultivo requeridos para la formulaci&oacute;n de las dosis de la bacterina vacuna.  Esto har&iacute;a el proceso m&aacute;s efectivo y econ&oacute;mico.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El m&eacute;todo de Reed y Muench (15), que se utiliz&oacute; para titular  los cultivos de leptospira, es una alternativa para determinar el recuento de  las leptospiras debido a que m&eacute;todos como recuento en placa y  espectrofotometr&iacute;a no son manejables en el caso de Leptospira, pues el  crecimiento en medio s&oacute;lido se logra con dificultad y en mucho tiempo (15 d&iacute;as  o m&aacute;s) y por otro lado, estos microorganismos son m&aacute;s peque&ntilde;os que las  bacterias convencionales (1,7). De tal forma, los datos obtenidos por medio de  espectrofotometr&iacute;a o por el nefel&oacute;metro de MacFarland, no confieren resultados  precisos. Al comparar los dos m&eacute;todos de recuento empleados, el uso de la  nefelometr&iacute;a es menos acertado, pues seg&uacute;n este todos los cultivos presentaron  igual concentraci&oacute;n, mientras que por Reed y Muench (15), se observaron  diferencias en el crecimiento de cada serovar. </p>       <p>El tratamiento con formaldeh&iacute;do garantiz&oacute; la inactivaci&oacute;n de  Leptospira, ya que las pruebas de inocuidad practicadas despu&eacute;s de este proceso  fueron satisfactorias. </p>       <p>Generalmente los serovares, inducen la formaci&oacute;n de  anticuerpos as&iacute; como tambi&eacute;n de t&iacute;pos celulares de reacciones inmunes, aunque  hay casos en que se estimula preferentemente uno u otro tipo (22). En el caso  de la leptospirosis la respuesta inmune que se prefiere es la humoral (23), la  cual se traduce en la producci&oacute;n de anticuerpos que pueden ser detectados unos  5 d&iacute;as despu&eacute;s de la infecci&oacute;n inicial y luego de la bacteremia. De tal forma  la evaluaci&oacute;n serol&oacute;gica de la vacuna por medio de la MTA es un gran indicio de  la efectividad de la misma, es decir, de su capacidad para inducir una  respuesta espec&iacute;fica, pues la aplicaci&oacute;n de las leptospiras muertas o atenuadas  condicionan la respuesta inmune de tipo humoral y celular, proporcionando una  memoria sin necesidad que se manifieste la enfermedad (18, 20).</p>       <p>La bacterina polivalente probada en los 20 terneros fue  efectiva ya que al tener en cuenta los resultados, se observ&oacute; un desarrollo del  t&iacute;tulo de anticuerpos despu&eacute;s de las sangr&iacute;as postvacunales, lo que indica que  la vacuna es capaz de estimular la producci&oacute;n de anticuerpos. </p>       <p>Los bovinos que se vacunaron, presentaron respuestas  serol&oacute;gicas diferentes a cada uno de los serovares contenidos en la vacuna  polivalente; lo que hace conveniente analizar el por qu&eacute; de las divergencias en  el comportamiento de los t&iacute;tulos de anticuerpos desarrollados para los serovares  durante las diferentes sangr&iacute;as.</p>       <p>Seg&uacute;n los datos obtenidos del an&aacute;lisis estad&iacute;stico, L.  icterohaemorrhagiae fue la que present&oacute; un mayor promedio de t&iacute;tulos de  anticuerpos en todas las sangr&iacute;as postvacunales, haci&eacute;ndola diferente  estad&iacute;sticamente respecto a las dem&aacute;s (<a href="#fig1">Figura 1</a>).</p>       <p>Al observar los resultados de las concentraciones de los  cultivos, L. icterohaemorrhagiae es uno de los serovares que menor concentraci&oacute;n  present&oacute;, as&iacute; es que este hecho descarta la posibilidad de que la diferencia de  t&iacute;tulos se deba a la ventaja de concentraci&oacute;n celular del serovar; adem&aacute;s, la  formulaci&oacute;n de la vacuna se realiz&oacute; de tal forma que todos los serovares  quedaron con igual concentraci&oacute;n en el volumen final de la dosis. </p>       <p>La notable titulaci&oacute;n de anticuerpos de L.  icterohaemorrhagiae se debi&oacute; a la estimulaci&oacute;n del sistema inmune por la revacunaci&oacute;n.  Al realizar los an&aacute;lisis de los t&iacute;tulos de los anticuerpos, se pudo determinar  que los t&iacute;tulos de 1:400 y 1:800, fueron los que en el diagn&oacute;stico de  leptospirosis indicaron infecci&oacute;n por una cepa pat&oacute;gena ambiental y se presentaron  en menor proporci&oacute;n que los de 1:25, 1:50 y 1:100, t&iacute;tulos que habitualmente se  registran para animales vacunados. La similitud que los &aacute;cidos nucleicos de L.  icterohaemorrhagiae, presenta con los de los serovares hardjobovis y  hardjoprajitno, hace que se presenten reacciones cruzadas, es decir, que el  serovar icterohaemorrhagiae, aglutine y/o lise en presencia de anticuerpos  generados para las dos genoespecies de L. hardjo (16,22). </p>       <p>Los resultados de la evaluaci&oacute;n serol&oacute;gica demuestraron que  el serovar incluido en la vacuna aplicada fue capaz de inducir una respuesta humoral  ya que en las sangr&iacute;as 2 y 3 se observ&oacute; que la vacunaci&oacute;n estimul&oacute; la  producci&oacute;n de anticuerpos, y que la revacunaci&oacute;n hizo que este est&ioacute;mulo se  elevera y que como es normal, estos cayeron r&aacute;pidamente despu&eacute;s de un tiempo  (<a href="#fig2">Figura 2</a>). Las inmunoglobulinas generadas como respuesta a una infecci&oacute;n o a  la vacunaci&oacute;n, alcanzaron un nivel m&aacute;ximo a los 14-15 d&iacute;as y luego decayeron gradualmente  (7); raz&oacute;n por la cual el nivel de anticuerpos encontrados despu&eacute;s de un mes de  la vacunaci&oacute;n mostr&oacute; promedios bajos para todos los serovares. As&iacute; pues, si se  hubieran realizado sangr&iacute;as antes del mes (15 d&iacute;as despu&eacute;s de la vacunaci&oacute;n) el  t&iacute;tulo de anticuerpos detectados pudo haber sido mayor que el encontrado al  mes, &eacute;poca en la que los niveles de anticuerpos ya hab&iacute;an disminuido, lo que  condujo a una pobre identificaci&oacute;n de anticuerpos en la sangr&iacute;a 2. La raz&oacute;n  anterior se sustenta tambi&eacute;n con los datos obtenidos en la sangr&iacute;a 3, que  registraron promedios de t&iacute;tulos de anticuerpos m&aacute;s altos que para las dem&aacute;s  sangr&iacute;as. </p>       <p>Los anticuerpos desarrollados frente a la vacunaci&oacute;n  alcanzaron un nivel m&aacute;ximo a los 14 d&iacute;as y luego descendieron gradualmente.  Los primeros anticuerpos que se elevaron son los de tipo IgM, seguidos por los  de tipo IgG, cuando ocurre una respuesta secundaria por vacunaci&oacute;n el tipo de  anticuerpos que se producen en mayor proporci&oacute;n son los IgG, por lo tanto alcanzan  niveles m&aacute;s altos y permanecen durante casi 12 meses. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los t&iacute;tulos de anticuerpos despu&eacute;s de la primera vacunaci&oacute;n  no fueron muy altos porque la toma de muestras de sangre se realiz&oacute; un mes  despu&eacute;s de la vacunaci&oacute;n, &eacute;poca en la cual los IgM se encontraban en los  niveles m&aacute;s bajos, lo que condujo a una pobre detecci&oacute;n de anticuerpos. De tal  forma la ausencia de t&iacute;tulos para algunos serovares y en algunos bovinos no  significa que la bacterina sea incapaz de estimular el sistema inmune humoral y  celular, y producir en consecuencia anticuerpos que garanticen la protecci&oacute;n del  animal vacunado (16).</p>     <p>La  t&eacute;cnica de microaglutinaci&oacute;n se utiliz&oacute; para evaluar la capacidad inmunog&eacute;nica de  la vacuna porque es uno de los m&eacute;todos aceptados por la Organizaci&oacute;n Mundial de  la Salud y m&aacute;s seguros para el diagn&oacute;stico de la leptospirosis. Con este m&eacute;todo  se han identificado varios serotipos de leptospira en el pa&iacute;s. Adem&aacute;s, es una  prueba sencilla, econ&oacute;mica, r&aacute;pida y estandarizada. En conclusi&oacute;n, la bacterina  fue capaz de inducir una respuesta inmune humoral en los bovinos, sin embargo,  la cepa L. grippotyphosa no fue inmun&oacute;gena comparada con los dem&aacute;s serovares que hicieron  parte de la vacuna. </p>        <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>REFERENCIAS</b></font></p>        <!-- ref --><p>1. Guidugli  F, Castro A, Atallah A. Systematic reviews on leptospirosis. Rev Inst Med Trop Sao Paulo 2000; 42(1):47-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0122-0268200700020000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Biberstein E. Tratado de Microbiolog&iacute;a Veterinaria.  Zaragoza: Acribia; 1990.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0122-0268200700020000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Dhaliwal  G, Murray R, Dobson H,Montgomery J, Ellis W. Reduced conception rates in dairy  cattle associated with serological evidence of Leptospira interrogans serovar hardjo  infection. Vet Rec  1996; 139 (5): 110-114.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0122-0268200700020000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Carter G, Claus G, Rikihisia Y. Fundamentos de  Bacteriologia y Micologia Veterinaria. Zaragoza:  Acribia; 1989.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0122-0268200700020000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Krieg R,  Murray E, Bergey Manual of Sistematic Bacteriology. Baltimore;  1989.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0122-0268200700020000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Whyte P,  Ratclifft R, Cargil C. Dobson K. Protection of pregnant swine by vaccination  againts Leptospira infection. Aus Vet J 1982; 59: 41-45.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0122-0268200700020000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Gallego M, Gallego J. Leptospirosis bovina diagnostico  serologico y control. Revista del CEISA. 1994; 1 (1-2): 48-68.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0122-0268200700020000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Manrique G. Leptospirosis bovina en Colombia. Acovez  1978; 1 (6): 21-24.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0122-0268200700020000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Dhaliwal  G, Murray R, Dobson H, Montgomery J, Ellis W. Effect of Leptospira interrogans  serovar hardjo infection on milk yield endemically infected dairy herds. Vet Rec 1996; 139; (13): 319-320.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0122-0268200700020000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Rivera B, Aycardi E, Torres B. Estudio serologico de  leptospirosis bovina en los llanos orientales de Colombia. Acovez 1981; 5 (15):  11-14.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0122-0268200700020000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Giraldo G, Orrego A, Betancourt A. Los roedores como  reservorios de Leptospiras en planteles porcinos de la zona central cafetera de  Colombia. Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad de Caldas. Arch Med  Vet 2002; 34 (1): 25-32. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0122-0268200700020000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Najera S, Babilonia D, Alvarez L, Mattar S.  Leptospirosis ocupacional en una regi&oacute;n del caribe colombiano. Salud Publica  Mex 2005; 47: 240-244.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0122-0268200700020000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Ossa J. Principios de virolog&iacute;a m&eacute;dica. Medell&iacute;n  (Colombia): ed. Universidad de Antioqu&iacute;a; 1990.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0122-0268200700020000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Gonz&aacute;lez R, Batista S, Valdes A. et al. Crecimiento,  virulencia y antigenicidad de Leptospira interrogans serovar mozdok en medio EMJH  modificado. Rev Cubana Med Trop 2002; 54(1): 32-36.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0122-0268200700020000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Duclaux  E, Calculation of Reed and Muench&#39;s 50 percent point in survival time measured  in a recording cage. Ann Inst Pasteur 1952; 83(3):372-80.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0122-0268200700020000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Sulzer  C, Jones W. Leptospirosis. Methods in laboratory diagnosis. Department of  Health, Education and Welfare Publication (CDC); 1976.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0122-0268200700020000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Scheff&eacute;  H. A method for judging all contrasts in analysis of variance. Biometrika 1953;  40: 87-104.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0122-0268200700020000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Scheff&eacute;  H. Practical Solutions of the Behrens-Fisher Problem. J Amer Stat Asc 1970; 65  (332): 1501-1508.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0122-0268200700020000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Garc&iacute;a S. Leptospirosis. En: Zoonosis. Manual de  procedimientos para el diagn&oacute;stico de laboratorio. ed. Instituto Nacional de  Higiene. M&eacute;xico, D.F., M&eacute;xico. 2000; p.64.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0122-0268200700020000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Woodward  M, Swallow C, Kitching A, Dalley A, Sayers A. Leptospira hardjo serodiagnosis:  a comparison of MAT, ELISA; immunocomb. Vet Rec 1997; 141 (23): 603-604.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0122-0268200700020000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Lottersberger J, Pauli R, Vanasco N. Desarrollo y  validaci&oacute;n de un enzimoinmunoensayo para el diagn&oacute;stico de Leptospirosis  bovina. Arch Med Vet 2002; 34(1): 35-42.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0122-0268200700020000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. D&iacute;az L, Zapata N, G&oacute;ngora A, Parra J, G&oacute;mez L.  Determinaci&oacute;n de anticuerpos a Leptospira por la t&eacute;cnica de Elisa en siete  grupos de humanos de alto riesgo ocupacional en el municipio de Villavicencio. Rev Col Cienc Pec 2005;  18: 4. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0122-0268200700020000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Gonz&aacute;lez R, Rodr&iacute;guez J, Batista S. et al.  Caracterizaci&oacute;n microbiol&oacute;gica de cepas candidatas vacunales de Leptospira  interrogans serogrupo Ballum. Rev Cubana Med Trop 2003; 55(3): 146-152.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0122-0268200700020000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>&nbsp;</p>  </font>      ]]></body><back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<label>1</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Guidugli]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Castro]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Atallah]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Systematic reviews on leptospirosis]]></article-title>
<source><![CDATA[Rev Inst Med Trop Sao Paulo]]></source>
<year>2000</year>
<volume>42</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>47-9</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<label>2</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Biberstein]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Tratado de Microbiología Veterinaria]]></source>
<year>1990</year>
<publisher-loc><![CDATA[Zaragoza ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Acribia]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<label>3</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Dhaliwal]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Murray]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dobson]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Montgomery]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ellis]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Reduced conception rates in dairy cattle associated with serological evidence of Leptospira interrogans serovar hardjo infection]]></article-title>
<source><![CDATA[Vet Rec]]></source>
<year>1996</year>
<volume>139</volume>
<numero>5</numero>
<issue>5</issue>
<page-range>110-114</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<label>4</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Carter]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Claus]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rikihisia]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Fundamentos de Bacteriologia y Micologia Veterinaria]]></source>
<year>1989</year>
<publisher-loc><![CDATA[Zaragoza ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Acribia]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<label>5</label><nlm-citation citation-type="">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Krieg]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Murray]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Bergey Manual of Sistematic Bacteriology]]></source>
<year>1989</year>
<publisher-loc><![CDATA[Baltimore ]]></publisher-loc>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B6">
<label>6</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Whyte]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ratclifft]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cargil]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dobson]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Protection of pregnant swine by vaccination againts Leptospira infection]]></article-title>
<source><![CDATA[Aus Vet J]]></source>
<year>1982</year>
<volume>59</volume>
<page-range>41-45</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B7">
<label>7</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Gallego]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gallego]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Leptospirosis bovina diagnostico serologico y control]]></article-title>
<source><![CDATA[Revista del CEISA.]]></source>
<year>1994</year>
<volume>1</volume>
<numero>1-2</numero>
<issue>1-2</issue>
<page-range>48-68</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B8">
<label>8</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Manrique]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Leptospirosis bovina en Colombia]]></article-title>
<source><![CDATA[Acovez]]></source>
<year>1978</year>
<volume>1</volume>
<numero>6</numero>
<issue>6</issue>
<page-range>21-24</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B9">
<label>9</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Dhaliwal]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Murray]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dobson]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Montgomery]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ellis]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of Leptospira interrogans serovar hardjo infection on milk yield endemically infected dairy herds]]></article-title>
<source><![CDATA[Vet Rec]]></source>
<year>1996</year>
<volume>139;</volume>
<numero>13</numero>
<issue>13</issue>
<page-range>319-320</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B10">
<label>10</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Rivera]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Aycardi]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Torres]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Estudio serologico de leptospirosis bovina en los llanos orientales de Colombia]]></article-title>
<source><![CDATA[Acovez]]></source>
<year>1981</year>
<volume>5</volume>
<numero>15</numero>
<issue>15</issue>
<page-range>11-14</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B11">
<label>11</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Giraldo]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Orrego]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Betancourt]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Los roedores como reservorios de Leptospiras en planteles porcinos de la zona central cafetera de Colombia]]></article-title>
<source><![CDATA[Arch Med Vet]]></source>
<year>2002</year>
<volume>34</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>25-32</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B12">
<label>12</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Najera]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Babilonia]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Alvarez]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mattar]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Leptospirosis ocupacional en una región del caribe colombiano]]></article-title>
<source><![CDATA[Salud Publica Mex]]></source>
<year>2005</year>
<volume>47</volume>
<page-range>240-244</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B13">
<label>13</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ossa]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Principios de virología médica]]></source>
<year>1990</year>
<publisher-loc><![CDATA[Medellín ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Universidad de Antioquía]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B14">
<label>14</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[González]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Batista]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Valdes]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Crecimiento, virulencia y antigenicidad de Leptospira interrogans serovar mozdok en medio EMJH modificado]]></article-title>
<source><![CDATA[Rev Cubana Med Trop]]></source>
<year>2002</year>
<volume>54</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>32-36</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B15">
<label>15</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Duclaux]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Calculation of Reed and Muench&#39;s 50 percent point in survival time measured in a recording cage]]></article-title>
<source><![CDATA[Ann Inst Pasteur]]></source>
<year>1952</year>
<volume>83</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>372-80</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B16">
<label>16</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sulzer]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Jones]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Leptospirosis: Methods in laboratory diagnosis]]></source>
<year>1976</year>
<publisher-name><![CDATA[Department of Health, Education and Welfare Publication]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B17">
<label>17</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Scheffé]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[A method for judging all contrasts in analysis of variance]]></article-title>
<source><![CDATA[Biometrika]]></source>
<year>1953</year>
<volume>40</volume>
<page-range>87-104</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B18">
<label>18</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Scheffé]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Practical Solutions of the Behrens-Fisher Problem]]></article-title>
<source><![CDATA[J Amer Stat Asc]]></source>
<year>1970</year>
<volume>65</volume>
<numero>332</numero>
<issue>332</issue>
<page-range>1501-1508</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B19">
<label>19</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[García]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Leptospirosis]]></article-title>
<source><![CDATA[Zoonosis: Manual de procedimientos para el diagnóstico de laboratorio]]></source>
<year>2000</year>
<page-range>64</page-range><publisher-loc><![CDATA[México^eD.F. D.F.]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Instituto Nacional de Higiene]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B20">
<label>20</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Woodward]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Swallow]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kitching]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dalley]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sayers]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Leptospira hardjo serodiagnosis: a comparison of MAT, ELISA; immunocomb]]></article-title>
<source><![CDATA[Vet Rec]]></source>
<year>1997</year>
<volume>141</volume>
<numero>23</numero>
<issue>23</issue>
<page-range>603-604</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B21">
<label>21</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Lottersberger]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pauli]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vanasco]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Desarrollo y validación de un enzimoinmunoensayo para el diagnóstico de Leptospirosis bovina]]></article-title>
<source><![CDATA[Arch Med Vet]]></source>
<year>2002</year>
<volume>34</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>35-42</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B22">
<label>22</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Díaz]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zapata]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Góngora]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Parra]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gómez]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Determinación de anticuerpos a Leptospira por la técnica de Elisa en siete grupos de humanos de alto riesgo ocupacional en el municipio de Villavicencio]]></article-title>
<source><![CDATA[Rev Col Cienc Pec]]></source>
<year>2005</year>
<volume>18</volume>
<page-range>4</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B23">
<label>23</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[González]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rodríguez]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Batista]]></surname>
<given-names><![CDATA[S.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización microbiológica de cepas candidatas vacunales de Leptospira interrogans serogrupo Ballum]]></article-title>
<source><![CDATA[Rev Cubana Med Trop]]></source>
<year>2003</year>
<volume>55</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>146-152</page-range></nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
