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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[ALTERNATIVAS EN EL MANEJO DE LA MASTITIS EN NOVILLAS]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[ALTERNATIVE STRATEGIES IN THE MANAGEMENT OF HEIFERS' MASTITIS]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Mastitis in dairy heifers is a problem that has reached remarkable importance since the development of highly specialized dairy operations. The bovine female is susceptible to intramammary infections (IMI) from the moment at which the mammary gland is completely developed in the fetus. A number of features, from individual-based variability to environmental and managerial practices can increase or decreased the risk to acquire IMI. The bacteria most commonly associated with IMI are coagulase negative Staphylococcus (CNS), however, other pathogens including Staphylococus aureus, Mycoplasma spp, Streptococcus uberis y Streptococcus agalactiae, are also ethiological agents of IMI. Management alternatives for mastitis in dairy heifers are aimed towards the reduction of risk factors, and are complemented by the inclusion of teat sealants, disinfectants, and antibiotics, in addition to a prior evaluation of herd health programs in each dairy farm.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="right"><b>REVISI&Oacute;N DE LITERATURA</b></p>     <p align="center"><b><font size="3">ALTERNATIVAS EN EL MANEJO DE LA MASTITIS EN NOVILLAS</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="3">ALTERNATIVE STRATEGIES IN THE MANAGEMENT OF HEIFERS' MASTITIS</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>Genaro A. Contreras, M.Sc.</b></p>     <p>Michigan State University, College of Veterinary Medicine, Large Animal Clinical Sciences, VMC G385, Michigan State University, East Lansing, MI 48823 USA.    <br> </p>     <p>*Correspondencia: <a href="mailto:contrera@cvm.msu.edu">contrera@cvm.msu.edu</a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Recibido: Julio 2 de 2008; Aceptado: Diciembre 5 de 2008</p> <hr size="1" />      <p>&nbsp;</p>         <p><b>RESUMEN</b></p>     <p>La mastitis en novillas es un problema que ha alcanzado importantes dimensiones a medida que las explotaciones lecheras se han especializado. Las hembras bovinas son susceptibles a infecciones intramamarias (IIM) desde el momento en que la gl&aacute;ndula mamaria se ha desarrollado completamente en el feto. Factores relacionados al animal, al medio en que se desarrolla y al manejo incrementan o reducen el riesgo de contraer IIM. El grupo de bacterias mas usualmente asociadas con IIM en novillas gestantes son los <i>Staphylococcus coagulasa</i> negativos (SCN), pero otras bacterias como <i>Staphylococus aureus</i>, <i>Mycoplasma spp</i>, <i>Streptococcus uberis</i> y <i>Streptococcus agalactiae</i>, son tambien importantes agentes etiol&oacute;gicos de IIM.  Las alternativas al manejo de la mastitis en novillas est&aacute;n dirigidas a la reducci&oacute;n de factores de riesgo y se complementan con la administraci&oacute;n de terapias de sellamiento f&iacute;sico del pez&oacute;n, desinfectantes o antibi&oacute;ticas, previa evaluaci&oacute;n de los programas de sanidad de hato con que cuenta cada explotaci&oacute;n. </p>      <p><b>Palabras clave:</b> mastitis, novillas, infecciones intramamarias.</p> <hr size="1" />     <p>&nbsp;</p>     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>Mastitis in dairy heifers is a problem that has reached remarkable importance since the development of highly specialized dairy operations. The bovine female is susceptible to intramammary infections (IMI) from the moment at which the mammary gland is completely developed in the fetus. A number of features, from individual-based variability to environmental and managerial  practices can increase or decreased the risk to acquire IMI. The bacteria most commonly associated with IMI are coagulase negative <i>Staphylococcus</i> (CNS), however, other pathogens including <i>Staphylococus aureus</i>, <i>Mycoplasma spp</i>, <i><i>Streptococcus uberis</i></i> y <i>Streptococcus agalactiae</i>, are also ethiological agents of IMI. Management alternatives for mastitis in dairy heifers are aimed towards the reduction of risk factors, and are complemented by the inclusion of teat sealants, disinfectants, and antibiotics, in addition to a prior evaluation of herd health programs in each dairy farm.</p>      <p><b>Key words:</b> Mastitis, heifers, intramammary infections.</p>  <hr size="1" />      <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El futuro de toda ganader&iacute;a se encuentra en los animales de reemplazo. Las novillas son una inversi&oacute;n, y cualquier enfermedad que afecte el futuro desempe&ntilde;o en su funci&oacute;n zoot&eacute;cnica puede ocasionar p&eacute;rdidas econ&oacute;micas al productor. Cuando se piensa en novillas de primer parto se asume que estas est&aacute;n libres de infecciones intramamarias (IIM), pero como se ha demostrado en diferentes encuestas epidemiol&oacute;gicas, en varios pa&iacute;ses y en distintos tipos de explotaciones, la mastitis en novillas es un problema importante en la salud de los hatos productores de leche. En la presente revisi&oacute;n se describen en primer lugar aspectos generales del desarrollo de la gl&aacute;ndula mamaria, luego se enumeran los principales factores de riesgo para las IIM antes del primer parto, se discuten los principales agentes etiol&oacute;gicos y se proponen diferentes alternativas para el control de las IIM en novillas. </p>     <p><b>Desarrollo de la gl&aacute;ndula mamaria</b>. El desarrollo de la gl&aacute;ndula mamaria es un proceso activo que se inicia en el embri&oacute;n y tiene varias etapas de crecimiento. La sola existencia del tejido mamario y su comunicaci&oacute;n con el medio exterior por el conducto del pez&oacute;n lo hacen un lugar susceptible para infecciones causadas por cualquier tipo de agentes pat&oacute;genos que pueden invadir el tejido por el conducto del pez&oacute;n o por v&iacute;a sist&eacute;mica. </p>     <p><b>Etapa embrionaria y fetal.</b> Las gl&aacute;ndulas mamarias son exclusivas de animales pertenecientes a la clase <i>Mammalia</i> (1). Estas gl&aacute;ndulas exocrinas son gl&aacute;ndulas sudor&iacute;paras modificadas, que est&aacute;n localizadas en diferentes alineaciones anat&oacute;micas dependiendo de la especie. Cada gl&aacute;ndula tiene un pez&oacute;n, pero esta estructura difiere en su formaci&oacute;n dependiendo de la infraclase a la que pertenezca el animal (2). <i>Methateria</i>  (e.g. canguros) tienen pezones cubiertos que se encuentran dentro de la bolsa marsupial. <i>Eutheria</i> (e.g. bovinos) tienen los pezones descubiertos y estos se encuentran en diferentes localizaciones anat&oacute;micas a lo largo de la l&iacute;nea ventral (3).</p>     <p>En el embri&oacute;n bovino, la mamog&eacute;nesis sigue seis etapas como lo describe Larson (3). Se inicia a los 30 d&iacute;as con la formaci&oacute;n de las cuatro bandas mamarias, que son engrosamientos del ectodermo ventrolateral. El desarrollo continuo de estas c&eacute;lulas epiteliales forma las franjas mamarias a los 32 d&iacute;as. Las l&iacute;neas mamarias se observan a los 35 d&iacute;as, que luego toman el nombre de crestas mamarias a los 37 d&iacute;as. Para los 40 d&iacute;as de edad el embri&oacute;n posee ya los mont&iacute;culos mamarios, que a los 43 d&iacute;as son &aacute;reas localizadas de desarrollo epitelial llamadas botones mamarios a partir de la cual se desarrollar&aacute;n las cuatro gl&aacute;ndulas mamarias. </p>     <p>Despu&eacute;s que los botones mamarios se han formado, la diferenciaci&oacute;n glandular se inicia. Los pezones se forman a los 65 d&iacute;as, a partir del mesenquima que rodea los botones (4). El ducto primario se observa a los 80 d&iacute;as y para los 90 d&iacute;as aparecen los ductos secundarios. A los 100 d&iacute;as de desarrollo fetal ya se observan los ductos primarios canalizados y la cisterna de la gl&aacute;ndula (3, 4). Entre los tres y los cinco meses de gestaci&oacute;n  la gl&aacute;ndula mamaria fetal contin&uacute;a su crecimiento, el canal del pez&oacute;n es formado y su queratinizaci&oacute;n se completa. Las estructuras mamarias anexas tambi&eacute;n se desarrollan en este periodo (3). La almohadilla grasa que es la principal estructura mamaria suplementaria, se origina del mesodermo al tiempo que la banda mamaria contin&uacute;a su desarrollo a la par del tejido epitelial mamario. En ella se desarrollan los sistemas vascular y linf&aacute;tico de la ubre, adem&aacute;s provee el soporte tridimensional para el desarrollo de la membrana basal epitelial, es el sitio de almacenamiento de l&iacute;pidos, receptor de hormonas y de s&iacute;ntesis de factores de crecimiento (5). Otras estructuras mamarias anexas incluyen, los ligamentos suspensorios central y lateral que se observan ya a los 200 d&iacute;as de edad fetal.</p>     <p><b>Desarrollo prepuberal. </b>Al momento del nacimiento la ternera posee gl&aacute;ndulas mamarias diferenciadas que inician su desarrollo siguiendo dos patrones en la velocidad de crecimiento. La etapa de crecimiento isom&eacute;trico que ocurre en los tres primeros meses de vida, y el crecimiento alom&eacute;trico, que se inicia a los tres meses y alcanza su punto m&aacute;ximo a los 9 meses de edad (5).</p>     <p>Crecimiento isom&eacute;trico se refiere a que la gl&aacute;ndula crece a la misma velocidad que otros &oacute;rganos. Durante esta etapa la gl&aacute;ndula posee estructuras lobulares pero estas no son secretorias. El aumento del tama&ntilde;o en este periodo es el resultado del crecimiento de la almohadilla grasa y del tejido conectivo (6). A los 3 meses de edad el crecimiento alom&eacute;trico se inicia (crecimiento de la gl&aacute;ndula mamaria a mayor velocidad que la de otros tejidos). En la ternera, se caracteriza por un extensivo desarrollo de la red de ductos que invaden el tejido adiposo de la almohadilla que los rodea (4). Diferentes hormonas y factores de crecimiento influencian el desarrollo mamario. La hormona del crecimiento (HC) induce el desarrollo alom&eacute;trico en la gl&aacute;ndula mamaria, pero requiere de la presencia de estr&oacute;genos. Adem&aacute;s, la s&iacute;ntesis local de varios factores de crecimiento complementa la inducci&oacute;n del crecimiento alom&eacute;trico. TGF &beta;1, FGF-1, IGF-1, TGF-&aacute; y HGF incrementan la proliferaci&oacute;n celular y la expresi&oacute;n g&eacute;nica de prote&iacute;nas de la matriz extracelular (7-9). Es notorio que durante esta etapa la gl&aacute;ndula mamaria desarrolla una habilidad limitada  para responder al estimulo lactog&eacute;nico (insulina, prolactina y EGF) en presencia de compuestos esteroidales (10). El crecimiento alom&eacute;trico finaliza al a&ntilde;o de edad, cuando el desarrollo se vuelve isom&eacute;trico de nuevo (11).</p>     <p>Es importante mencionar que en terneras levantadas con dietas de alta energ&iacute;a el desarrollo de la gl&aacute;ndula mamaria se ve afectado (6, 12). Hay evidencias que la hormona leptina se eleva en animales alimentados con dietas h&iacute;percal&oacute;ricas, y que esta podr&iacute;a disminuir la s&iacute;ntesis de ADN (reflejo de divisi&oacute;n celular) en la gl&aacute;ndula mamaria (13). Pero el papel de la leptina no es claro ya que Thorn et al (14) demostraron que existen niveles muy bajos de receptores para leptina en las c&eacute;lulas mamarias epiteliales bovinas, adem&aacute;s estas no respondieron a la hormona <i>in vitro</i>. </p>     <p><b>Pubertad, concepci&oacute;n y gestaci&oacute;n.</b> Al inicio de la pubertad se inician los ciclos estrales de 21 d&iacute;as, que afectan marcadamente el desarrollo de la gl&aacute;ndula mamaria. Se empiezan a expresar los receptores para progesterona (PR) y estr&oacute;genos (ER, ER&beta;,  ERRs) en la gl&aacute;ndula que modulan la influencia de las hormonas esteriodales en la proliferaci&oacute;n del epitelio mamario (15-17). En los experimentos cl&aacute;sicos de Sinha y Tucker (18) se demostr&oacute; que  durante el estro, la s&iacute;ntesis de DNA se incrementa en 115% y que luego esta se disminuye lentamente  en el metaestro y el diestro hasta que alcanza su punto m&aacute;s bajo antes del estro. En la pubertad, la unidad fundamental de desarrollo en el tejido mamario, que es la unidad lobular del ductulo terminal (ULDT) crece a ritmo isom&eacute;trico, y solo termina su desarrollo completamente durante la pre&ntilde;ez (7). Durante el primer trimestre de gestaci&oacute;n aunque poco notorio existe desarrollo mamario como lo demuestran los incrementos mensuales en contenido de nitr&oacute;geno (33%), tejido no graso (33%), y ADN (25%) (19). El desarrollo de la gl&aacute;ndula se acelera especialmente en el &uacute;ltimo trimestre de la gestaci&oacute;n, lo cual coincide con la etapa de crecimiento fetal r&aacute;pido y muestra similitudes con el de vacas adultas en el &uacute;ltimo mes de gestaci&oacute;n, por lo cual el lector es referido a excelentes compendios de desarrollo mamario durante la gestaci&oacute;n como Larson (3)  o Akers (4).</p>     <p><b>Infecciones intramamarias.</b> La mastitis en novillas fue reportada por primera vez en 1940 por Palmer et al (20), mas tarde Schalm (21) rastreo IIM causadas por <i>Streptococcus</i> agalactiae a problemas por succionamiento de pezones entre terneras. Luego en los a&ntilde;os ochentas se empezaron a describir IIM alrededor del parto. Oliver y Mitchell (22) reportaron prevalencia del 28% en novillas al momento del parto, la mayor&iacute;a de estas causadas por <i>Staphylococcus coagulasa</i> negativo (SCN). La presencia de IIM en novillas puede perdurar durante el primer trimestre de la lactancia, observ&aacute;ndose cuartos con recuentos elevados de c&eacute;lulas som&aacute;ticas (CS) especialmente en las primeras semanas despu&eacute;s del parto. La prevalencia de IIM a nivel de cuartos puede llegar a niveles cr&iacute;ticos (mas del 10%), pasando inadvertida, si no se realizan recuentos individuales de CS debido a que las novillas presentan pocos casos de mastitis cl&iacute;nica (23). Durante los a&ntilde;os noventa reportes de prevalencia de IIM en diferentes etapas de la gestaci&oacute;n y al momento del parto provenientes de Norteam&eacute;rica (24, 25) y Europa (26, 27) demostraron que el problema de IIM es de importantes dimensiones.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>M&aacute;s recientemente, Borm et al (28) encontr&oacute; en una investigaci&oacute;n epidemiol&oacute;gica que evalu&oacute; la prevalencia de mastitis en novillas en siete estados de USA y una provincia de Canad&aacute;, que hasta 63% de las novillas y 34% de sus cuartos podr&iacute;an tener IIM al momento del parto, y que este nivel de infecci&oacute;n causa incrementos en recuentos de las c&eacute;lulas som&aacute;ticas y un aumento en la incidencia de los casos cl&iacute;nicos de mastitis despu&eacute;s del parto. </p>     <p>Las IIM afectan a las novillas desde la pubertad, durante la gestaci&oacute;n y en el periodo alrededor del parto. Trinidad et al (29) reporto IIM en 87% de los cuartos de novillas antes del primer servicio. Los animales afectados a esta edad ya presentaban aumento en los recuentos de c&eacute;lulas som&aacute;ticas de sus secreciones cuando se compararon con aquellas de novillas no infectadas. En el mismo estudio, el grupo de investigadores recolect&oacute; tejidos mamarios de novillas infectadas y sanas antes del primer servicio. En las novillas infectadas se observ&oacute; mayor cantidad de tejido conectivo en comparaci&oacute;n con los animales sanos. Adem&aacute;s los cuartos infectados presentaban una mayor infiltraci&oacute;n leucocitaria. Se pudo concluir que las IIM afectan el crecimiento y desarrollo mamario e influencian negativamente la producci&oacute;n de leche del animal en el futuro.</p>     <p><b>Factores de riesgo.</b> Como ha sido descrito para vacas secas (30) existen factores de riesgo relacionados al sistema mamario, a las novillas, y al hato donde estas se encuentran, que pueden modificar la susceptibilidad de las novillas a presentar IIM antes, alrededor y despu&eacute;s del parto.</p>     <p>A nivel del sistema mamario, la presencia de agentes etiol&oacute;gicos en el &aacute;rea del pez&oacute;n como <i>Staphylococcus aureus</i> (SA) (31), SCN (32) o <i>Mycoplasma bovis</i> (33) es considerada como un factor determinante en la prevalencia de IIM. Otro factor importante es la estructura anat&oacute;mica de la ubre, como lo demostr&oacute; Nash et al (34) quienes en un estudio involucrando 1700 novillas encontraron que las hembras hijas de toros que transmiten mayor vida productiva, pezones cortos y una menor separaci&oacute;n de pezones delanteros, tuvieron menos IIM durante el primer parto.</p>     <p>La edad al primer parto es tambi&eacute;n un factor de riesgo para la presencia de IIM, aunque los animales puede adquirir las infecciones a edades tempranas, las novillas que paren con m&aacute;s de 30 meses de edad est&aacute;n en mayor riesgo de infectarse (35, 36). Otros factores a nivel del animal incluyen la presencia de edema mamario y sangre en la leche alrededor del parto (37).</p>     <p>A nivel del hato se incluyen factores como: la ubicaci&oacute;n geogr&aacute;fica, donde climas h&uacute;medos y c&aacute;lidos favorecen la presencia de mastitis por SA y Micoplasma (38). Tambi&eacute;n el inadecuado control de ectopar&aacute;sitos (39), la alta prevalencia de IIM en las vacas adultas (40), y el suministro de leches mastiticas a las terneras de levante (30, 41). </p>     <p><b>Implicaciones de las IIM en novillas.</b> El mayor problema asociado con la mastitis en novillas al momento del parto es el incremento en el recuento de CS (31). Durante las semanas de IIM subcl&iacute;nica las novillas afectadas contribuyen a elevar el recuento de CS del hato en general, reduciendo notoriamente la calidad de la leche. Adem&aacute;s las IIM tempranas pueden volverse cl&iacute;nicas y causar p&eacute;rdidas mayores o despajes prematuros. Es por esto que la tasa de IIM en novillas refleja en parte los problemas de sanidad de ubre del hato completo. Las IIM en estados tempranos de lactancia influyen negativamente la cantidad y calidad de leche producida. Un estudio retrospectivo (42) que us&oacute; 117.496 resultados de evaluaciones mensuales de 14.243 novillas revelaron que las hembras con un valor alto en el recuento de CS (m&aacute;s de 200.000) en los d&iacute;as 7 a 14 despu&eacute;s del parto eran m&aacute;s propensas a mantenerse con recuentos altos durante el resto de la primera lactancia. En el mismo estudio, el impacto de los recuentos de CS en la producci&oacute;n de leche fue analizado. Las novillas con recuentos de entre 500.000 y 1.000.000 produjeron 119 y 155 kilos menos de leche cuando fueron comparadas con novillas de recuentos inferiores a 50.000 (43). Corroborando estos hallazgos, Oliver et al (44) encontr&oacute; que novillas tratadas con antibi&oacute;tico intramamario antes del parto produjeron 531 kg m&aacute;s de leche y tambi&eacute;n tuvieron recuentos de CS menores que los controles no tratados.</p>     <p><b>ETIOLOG&Iacute;A</b></p>     <p><b>1. <i>Staphylococcus coagulasa</i> negativo (SCN).</b> Los SCN son considerados como la principal causa de las IIM en novillas no servidas y en novillas pre&ntilde;adas, tanto en hatos en confinamiento (23, 37, 39)  como en hatos en pastoreo continuo (45). Algunos de los SCN son parte de la flora normal de la piel de los bovinos e incluyen las especies <i>Staphylococcus simulans</i>, <i>Staphylococcus hyicus</i> y <i>Staphylococcus epidermis</i>; otros se encuentran en el ambiente como las especies resistentes a la novobiocina. Los SCN son oportunistas e infectan el canal del pez&oacute;n y la gl&aacute;ndula mamaria desde la piel, por esto se ubican entre los pat&oacute;genos asociados con la mastitis bovina en el grupo de organismos ambientales (31, 40). Aunque los SCN son frecuentemente agrupados juntos, existe considerable variaci&oacute;n en las especies de SCN, y algunas como S. Chromogenes y <i>S. simulans</i> son m&aacute;s frecuentemente asociadas con IIM que otras (39). Aarestrup y Jensen (27) realizaron seguimiento epidemiol&oacute;gico de IIM en Escandinavia encontrando que la duraci&oacute;n de las infecciones var&iacute;a entre las diferentes especies de SCN. Por ejemplo, S. Chromogenes fue encontrado infectando los cuartos desde cuatro semanas antes del parto, pero su persistencia fue corta y para las dos semanas despu&eacute;s del parto usualmente hab&iacute;a desaparecido. En contraste <i>S. simulans</i> puede encontrarse desde 2 semanas antes del parto, pero su habilidad para colonizar el canal del pez&oacute;n fue demostrada, ya que se aisl&oacute; aun  4 semanas despu&eacute;s del parto.</p>     <p><b>2. <i>Staphylococcus aureus</i> (SA).</b> SA son estafilococos coagulasa positivos agrupados en el grupo de organismos contagiosos causantes de la mastitis bovina (40, 41). SA es encontrado transitoriamente en la piel y peque&ntilde;as heridas en las novillas desde donde puede llegar a tener acceso al pez&oacute;n e infectar la gl&aacute;ndula mamaria (30). La persistencia en la colonizaci&oacute;n de la piel o heridas puede incrementar la incidencia de IIM al momento del parto (46), aunque en general la prevalencia de IIM por SA en novillas es menor que aquella por SCN. Fox et al (37) enumer&oacute; ciertos factores que pueden aumentar las prevalencia de IIM por SA. En primer lugar la localizaci&oacute;n geogr&aacute;fica de los hatos puede modificar la susceptibilidad de los animales a IIM por SA. Por ejemplo, predios en regiones con altas temperaturas y humedades relativas altas en el sur de los EE.UU. presentan mayor prevalencia de SA en comparaci&oacute;n con hatos en el noroeste del mismo pa&iacute;s que poseen marcados cambios estacionales. Adem&aacute;s, ciertos aspectos en el manejo de los hatos pueden influir en la prevalencia de IIM por SA, como la presencia de IIM en vacas adultas causadas por SA, adem&aacute;s de fallas en el control de ectopar&aacute;sitos principalmente moscas de los cuernos, que han sido vinculadas con la transmisi&oacute;n de IIM por SA (38, 47).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>3. <i>Streptococcus agalactiae</i>.</b> Durante la gestaci&oacute;n, aunque no documentadas en bovinos, la gl&aacute;ndula mamaria del feto puede verse infectada por estreptococos del grupo B (que incluye <i>Streptococcus agalactiae</i>)(48). Se ha demostrado que el succionamiento de pezones entre terneras est&aacute; directamente relacionado con IIM al momento del parto en novillas (49). <i>Streptococcus agalactiae</i> es muy susceptible a los antibi&oacute;ticos betalact&aacute;micos por lo cual este pat&oacute;geno contagioso es relativamente f&aacute;cil de erradicar de los hatos si se siguen buenas pr&aacute;cticas que incluyan el uso de selladores de pez&oacute;n con microbicidas y terapia antibi&oacute;tica del periodo seco (40).    <br>         <br>     <b>4. Otros estreptococos.</b> Las IIM causadas por <i>Streptococcus uberis</i> son especialmente comunes en novillas en pastoreo (50). La prevalencia de infecciones por este agente se incrementa especialmente en la &uacute;ltima semana antes del parto y en los primeros cinco d&iacute;as despu&eacute;s de este, donde puede llegar a representar hasta el 90% de las IIM causadas por pat&oacute;genos no contagiosos (44, 51). <i>S. uberis</i> es considerado como un pat&oacute;geno ambiental, aunque se ha reportado como posiblemente contagioso en una epidemia en un hato de Holanda (52). Otros estreptococos que se han reportado como causantes de IIM son <i>Streptococcus dysgalactiae</i>, <i>Enterococcus faecalis</i>, y Enterococcus faecium (26).</p>     <p><b>5. Gram negativos.</b> La presencia de pat&oacute;genos ambientales Gram negativos como <i>Escherichia coli</i> y <i>Klebsiella spp</i>., est&aacute; directamente asociada a su prevalencia en el hato (53).  En estudios epidemiol&oacute;gicos en diferentes lecher&iacute;as usualmente se reportan pocos cuartos infectados con Gram negativos. Por ejemplo en hatos confinados Pankey et al (25) reportaron 2.2% de los cuartos con IIM y Compton et al (45) reportaron menos del 1 % de los cuartos en hatos en pastoreo. Las IIM causadas por este tipo de pat&oacute;genos usualmente se observan desde 2 semanas antes del parto y no son perdurables (27).</p>     <p><b>6. Otros pat&oacute;genos. </b><i>Corynebacterium bovis</i> es prevalente en condiciones medioambientales de humedad y calor (54) y su presencia en novillas preparto es muy baja tanto en hatos confinados (22, 55) como en hatos en pastoreo (45). <i>A. pyogenes</i> se ha reportado afectando a las novillas desde dos semanas antes del parto (27), pero su prevalencia es baja tanto en hatos confinados como en pastoreo.     <br>     <p><b>7. <i>Mycoplasma</i></b>. Los micoplasmas son los organismos con capacidad replicativa mas peque&ntilde;os que se conocen. Estos pat&oacute;genos clasificados como contagiosos, son causantes de mastitis subcl&iacute;nicas, cl&iacute;nicas y cr&oacute;nicas (40, 41). <i>Mycoplasma bovis</i> es la especie m&aacute;s com&uacute;nmente aislada en los brotes de mastitis en hatos lecheros aunque otras especies de <i>Mycoplasma</i> y de <i>Acholeplasma</i> se han aislado (32). Las introducci&oacute;n de novillas provenientes de distintos hatos ha sido relacionada con brotes de la enfermedad, y existen indicios de que las novillas pueden ser infectadas desde el momento de la crianza cuando son alimentadas con leche proveniente de vacas portadoras (56) ya que el pat&oacute;geno puede diseminarse por v&iacute;a sangu&iacute;nea y establecerse en la gl&aacute;ndula mamaria (57). El papel de las novillas en la transmisi&oacute;n de micoplasma es importante, y la inclusi&oacute;n de pruebas para el diagnostico de este pat&oacute;geno es necesaria en los programas de sanidad de ubre y calidad de leche.</p>     <p><b>MANEJO DE IIM EN NOVILLAS</b></p>     <p><b>Tratamiento antibi&oacute;tico antes del parto.</b> La terapia antibi&oacute;tica antes del parto ha sido evaluada en novillas. Trinidad et al (58) utiliz&oacute; infusiones intramamarias de antibi&oacute;ticos en novillas en edad de servicio y en novillas en gestaci&oacute;n durante diferentes trimestres de la pre&ntilde;ez. Los investigadores observaron que esta pr&aacute;ctica fue efectiva en reducir la prevalencia de IIM al momento del parto. Sin embargo se presentaron problemas con relaci&oacute;n a residuos de antibi&oacute;ticos en leche debido probablemente a la utilizaci&oacute;n de f&oacute;rmulas antibi&oacute;ticas para vacas en per&iacute;odo seco.</p>     <p>En un estudio similar, Oliver et al (59) administraron v&iacute;a intramamaria, cloxacilina (200 mg) o cefapirina (200 mg) 7 d&iacute;as antes de la fecha esperada de parto. Ambos formulaciones antibi&oacute;ticas redujeron las IIM especialmente aquellas causadas por SCN, pero al igual que en el estudio de Trinidad et al (58), residuos de antibi&oacute;ticos se encontraron de 3 a 5 d&iacute;as despu&eacute;s del parto. M&aacute;s recientemente se han utilizado antibi&oacute;ticos intramamarios formulados para vacas lactantes 7 a 14 d&iacute;as antes de la fecha esperado del parto, reduciendo la prevalencia de cuartos con IIM del 60% al 70% (28, 44). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La utilizaci&oacute;n de infusiones antibi&oacute;ticas en la gl&aacute;ndula mamaria de novillas pre&ntilde;adas podr&iacute;a incrementar la producci&oacute;n de leche y disminuir los recuentos de CS como lo demostr&oacute; Oliver et al (44). Sin embargo, Borm et al (28) en un estudio que analiz&oacute; producciones en 9 hatos en 7 sitios diferentes no encontraron diferencias en producci&oacute;n de leche entre los animales tratados y los controles. Pero en este estudio se observaron diferencias dependiendo de la prevalencia de IIM en cada hato.</p>     <p>La administraci&oacute;n sist&eacute;mica de antibi&oacute;ticos antes del parto tambi&eacute;n ha sido evaluada recientemente. Parker et al (60) comparo la administraci&oacute;n de tylosina (5 g intramuscular) cada 24 horas por 3 d&iacute;as con la infusi&oacute;n de un sellador intramamario, encontrando que  la utilizaci&oacute;n del macr&oacute;lido no disminuy&oacute; la prevalencia de IIM en novillas al momento del parto. Es de notar que la dosis utilizada por los investigadores fue relativamente baja comparada con la dosis com&uacute;nmente utilizada (15-20 mg/kg) en evaluaciones farmacocin&eacute;ticas de la tylosina (61). </p>     <p><b>Tratamiento antibi&oacute;tico inmediatamente despu&eacute;s del parto.</b> Algunos grupos de investigadores han analizado el uso de tratamientos antibi&oacute;ticos inmediatamente despu&eacute;s del parto. Kreiger et al (62) utilizaron hydriodido de penethamate (un antibi&oacute;tico b-lact&aacute;mico) intramuscularmente en novillas provenientes de hatos con alta prevalencia de IIM causadas por SA. Las novillas tratadas con antibi&oacute;tico tuvieron menor prevalencia de IIM y una mayor producci&oacute;n de leche. No obstante, es importante aclarar que este estudio inclu&iacute;a un reducido grupo de animales y adem&aacute;s se requiri&oacute; de un tiempo de retiro de 5 d&iacute;as para la leche de los animales tratados, por esta raz&oacute;n, este protocolo puede tener impedimentos econ&oacute;micos que lo har&iacute;an poco atractivo. </p>     <p>En un enfoque diferente Oliver et al (63) utilizaron infusiones intramamarias de pirlimicina o penicilina-novobiocina inmediatamente despu&eacute;s del primer orde&ntilde;o post-parto. En este estudio no se observaron diferencias significativas entre los animales tratados con penicilina-novobiocina y los controles no tratados. Un significativo n&uacute;mero menor de infecciones fue observado en el grupo tratado con pirlimicina cuando se compararon con el grupo control. A pesar de los resultados la administraci&oacute;n post-parto de antibi&oacute;ticos intramamamarios fue menos efectiva que el uso de infusiones intramamarias pre-parto. </p>     <p><b>Vacunaci&oacute;n.</b> Otra manera de reducir la prevalencia de IIM en novillas al momento del parto es el uso de bacterinas. Se han desarrollados vacunas para el control de IIM producidas por SA (64, 65) pero sus resultados han sido inconsistentes y su efectividad es disminuida por factores como el numero de cuartos infectados y la prevalencia en el hato. De otra parte, existen algunas "preparaciones" para el control de IIM por <i>M. Bovis</i> (33), pero sus resultados son solo anecd&oacute;ticos y sin documentaci&oacute;n seria de su eficacia. </p>     <p><b>Selladores internos de pezones.</b> Parker et al (66) evaluaron el subnitrato de bismuto como sellador del canal del pez&oacute;n aplicado 30 d&iacute;as antes de la fecha esperada del parto. En este estudio se encontr&oacute; que el uso del sellador interno mejor&oacute; la sanidad de ubre en los hatos utilizados con una reducci&oacute;n del riesgo de adquirir IIM causadas por <i>Streptococcus uberis</i> del 84% y una disminuci&oacute;n del 68% de los casos de mastitis cl&iacute;nicas. A pesar de estos excelentes resultados se han reportado problemas con la utilizaci&oacute;n de leche proveniente de animales tratados con subnitrato de bismuto que consisten en la aparici&oacute;n de "defectos de puntos negros" en el queso Cheddar (67).</p>     <p><b>Selladores externos de pezones.</b> Los selladores externos de barrera con germicidas han sido usados en novillas y en vacas para prevenir IIM durante el periodo no lactante. La duraci&oacute;n de la adherencia del sellador de pezones a la punta del pez&oacute;n debe ser considerada cuando se eval&uacute;a el impacto del uso de este tipo de selladores. Aun no se han demostrado beneficios en la utilizaci&oacute;n de este tipo de selladores sobre los valores de prevalencia de IIM al momento del parto (68-72). Con la aparici&oacute;n de nuevos compuestos que poseen mayor adherencia, y si se implementa la aplicaci&oacute;n repetida de los selladores externos es posible que se reduzcan los niveles de IIM al momento del parto, especialmente si una lamina de sellador se forma y se mantiene adherida a la superficie del pez&oacute;n (71).</p>     <p>En conclusion, el problema de la mastitis en novillas no es nuevo, pero con el mejoramiento gen&eacute;tico constante y la especializaci&oacute;n de las explotaciones lecheras,  las implicaciones en la salud de hato de las IIM en estos animales han empezado a ser notorias. Es necesario concientizar a los ganaderos acerca de la posibilidad de que IIM afecten a la ternera durante la crianza y a la novilla durante su desarrollo desde la pubertad hasta el momento del paro. Como se ha descrito, existen diferentes opciones para el manejo de la mastitis en novillas antes del parto, pero antes de implementar cualquier programa de sanidad de ubre es necesario realizar un diagnostico preciso, ya que cada explotaci&oacute;n posee caracter&iacute;sticas que la hacen &uacute;nica y precisan modificaciones en las terapias preventivas o antibi&oacute;ticas. Es importante adem&aacute;s, la realizaci&oacute;n de encuestas epidemiol&oacute;gicas regionales para evaluar la situaci&oacute;n real de la mastitis de novillas en Colombia. En lecher&iacute;as especializadas de tr&oacute;pico alto la situaci&oacute;n puede ser preocupante ya que estudios recientes (72) reportaron alta prevalencia de IIM por <i>Streptococcus agalactiae</i> y SA en hatos de la regi&oacute;n antioque&ntilde;a de San Pedro de los Milagros. En regiones de tr&oacute;pico bajo, con lecher&iacute;as especializadas y de doble prop&oacute;sito, la situaci&oacute;n necesita de un diagn&oacute;stico efectivo para poder iniciar programas de asistencia t&eacute;cnica especializada. La implementaci&oacute;n de un programa de salud de ubre y calidad de leche en toda explotaci&oacute;n especializada siempre debe incluir una evaluaci&oacute;n de la prevalencia de IIM en las novillas durante el levante y al momento del parto. </p>  <hr>     <p><b>REFERENCIAS</b></p>     <!-- ref --><p>1.	Fox  P, McSweeney P. Dairy chemistry and biochemistry. London: Blackie Academic &amp; Professional; 1998. p. 3-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0122-0268200900010001300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2.	Aspinall V, O&acute;Reilly M.  Introduction to veterinary anatomy and physiology. 1 ed. New York: Butterworth-Heinemann; 2004. p. 142-3.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0122-0268200900010001300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3.	Larson B.  Lactation a comprehensive treatise. 2 ed. New York: Academic Press; 1978. p. 5-18.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0122-0268200900010001300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4.	Akers R.  Lactation and the mammary gland. 1 ed. Iowa: Iowa State University Press; 2002. p. 1-30.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0122-0268200900010001300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5.	Hovey RC, McFadden TB, Akers RM. Regulation of Mammary Gland Growth and Morphogenesis by the Mammary Fat Pad: A Species Comparison. Journal of Mammary Gland Biology and Neoplasia 1999;4(1):53-68.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0122-0268200900010001300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6.	Meyer MJ, Capuco AV, Ross DA, Lintault LM, Van Amburgh ME. Developmental and Nutritional Regulation of the Prepubertal Heifer Mammary Gland: I. Parenchyma and Fat Pad Mass and Composition. J Dairy Sci  2006;89(11):4289-97.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0122-0268200900010001300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7.	Hovey RC, Trott JF, Vonderhaar BK. Establishing a Framework for the Functional Mammary Gland: From Endocrinology to Morphology. Journal of Mammary Gland Biology and Neoplasia 2002;7(1):17-38.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0122-0268200900010001300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8.	Musters S, Coughlan K, McFadden T, Maple R, Mulvey T, Plaut K. Exogenous TGF-{beta}1 Promotes Stromal Development in the Heifer Mammary Gland. J Dairy Sci 2004;87(4):896-904.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0122-0268200900010001300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9.	F. Sinowatz DSFHBBMV. Localization of Fibroblast Growth Factor I (Acid Fibroblast Growth Factor) and Its mRNA in the Bovine Mammary Gland During Mammogenesis, Lactation and Involution. Anatomia, Histologia, Embryologia 2006;35(3):202-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0122-0268200900010001300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10.	Maple RL, Akers RM, Plaut K. Effects of steroid hormone treatment on mammary development in prepubertal heifers. Domestic Animal Endocrinology 1998;15(6):489-98.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0122-0268200900010001300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11.	Sheffield LG. Organization and Growth of Mammary Epithelia in the Mammary Gland Fat Pad. J Dairy Sci 1988; 71(10):2855-74.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0122-0268200900010001300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12.	Davis Rincker LE, Weber Nielsen MS, Chapin LT, Liesman JS, Daniels KM, Akers RM, et al. Effects of Feeding Prepubertal Heifers a High-Energy Diet for Three, Six, or Twelve Weeks on Mammary Growth and Composition. J Dairy Sci 2008;91(5):1926-35.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0122-0268200900010001300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13.	Silva LFP, VandeHaar MJ, Weber Nielsen MS, Smith GW. Evidence for a Local Effect of Leptin in Bovine Mammary Gland. J Dairy Sci 2002;85(12):3277-86.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0122-0268200900010001300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14.	Thorn SR, Purup S, Cohick WS, Vestergaard M, Sejrsen K, Boisclair YR. Leptin Does Not Act Directly on Mammary Epithelial Cells in Prepubertal Dairy Heifers. J Dairy Sci   2006;89(5):1467-77.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0122-0268200900010001300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15.	Meyer MJ, Rhoads RP, Capuco AV, Connor EE, Hummel A, Boisclair YR, et al. Ontogenic and nutritional regulation of steroid receptor and IGF-I transcript abundance in the prepubertal heifer mammary gland. J Endocrinol 2007;195(1):59-66.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0122-0268200900010001300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16.	Connor EE, Wood DL, Sonstegard TS, da Mota AF, Bennett GL, Williams JL, et al. Chromosomal mapping and quantitative analysis of estrogen-related receptor alpha-1, estrogen receptors alpha and beta and progesterone receptor in the bovine mammary gland. J Endocrinol 2005;185(3):593-603.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0122-0268200900010001300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17.	Schams D, Kohlenberg S, Amselgruber W, Berisha B, Pfaffl MW, Sinowatz F. Expression and localisation of oestrogen and progesterone receptors in the bovine mammary gland during development, function and involution. J Endocrinol 2003;177(2):305-17.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0122-0268200900010001300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18.	Sinha YN, Tucker HA. Mammary Development and Pituitary Prolactin Level of Heifers from Birth through Puberty and during the Estrous Cycle. J Dairy Sci 1969;52(4):507-12.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0122-0268200900010001300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19.	Swanson EW, Poffenbarger JI. Mammary Gland Development of Dairy Heifers during Their First Gestation. J Dairy Sci 1979;62(5):702-14.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0122-0268200900010001300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20.	Palmer C, Kanavos J, Kay J. Studies on bovine mastitis in heifers Am J Vet Res 1941;74:1550-52.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0122-0268200900010001300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21.	Schalm O. <i>Streptococcus agalactiae</i>in the udder of heifers at parturition traced to suckling among calves. Cornell Vet 1942;34:49.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0122-0268200900010001300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22.	Oliver SP, Mitchell BA. Intramammary Infections in Primigravid Heifers Near Parturition. J Dairy Sci 1983;66(5):1180-3.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0122-0268200900010001300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23.	Daniel R, Barnum A, Leslie K. Observations on intramammary infections in first calf heifers in early lactation. Can Vet J 1986;27(3):112-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0122-0268200900010001300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24.	Trinidad P, Nickerson SC, Alley TK. Prevalence of Intramammary Infection and Teat Canal Colonization In Unbred and Primigravid Dairy Heifers. J Dairy Sci1990 January 1, 1990;73(1):107-14.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0122-0268200900010001300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25.	Pankey JW, Drechsler PA, Wildman EE. Mastitis Prevalence in Primigravid Heifers at Parturition. J Dairy Sci1991 May 1, 1991;74(5):1550-2.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0122-0268200900010001300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26.	van der Meer C, Tigchelaar J, Zalsman C, Meyers P, Peterse D. Udder infections with coagulase-negative staphylococci in freshly calved heifers. Tijdschr Diergenseeskd1993;118(10):332-4.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0122-0268200900010001300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27.	Aarestrup FM, Jensen NE. Prevalence and Duration of Intramammary Infection in Danish Heifers During the Peripartum Period. J Dairy Sci1997 February 1, 1997;80(2):307-12.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0122-0268200900010001300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28.	Borm AA, Fox LK, Leslie KE, Hogan JS, Andrew SM, Moyes KM, et al. Effects of Prepartum Intramammary Antibiotic Therapy on Udder Health, Milk Production, and Reproductive Performance in Dairy Heifers. J Dairy Sci2006 June 1, 2006;89(6):2090-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0122-0268200900010001300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29.	Trinidad P, Nickerson SC, Adkinson RW. Histopathology of Staphylococcal Mastitis in Unbred Dairy Heifers. J Dairy Sci1990 March 1, 1990;73(3):639-47.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0122-0268200900010001300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30.	Dingwell RT, Kelton DF, Leslie KE. Management of the dry cow in control of peripartum disease and mastitis. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice2003;19(1):235-65.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0122-0268200900010001300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31.	Roberson JR, Fox LK, Hancock DD, Gay JM, Besser TE. Sources of Intramammary Infections from <i>Staphylococcus aureus</i> in Dairy Heifers at First Parturition. J Dairy Sci1998 March 1, 1998;81(3):687-93.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0122-0268200900010001300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32.	Waage S, Mork T, Roros A, Aasland D, Hunshamar A, Odegaard SA. Bacteria Associated with Clinical Mastitis in Dairy Heifers. J Dairy Sci1999 April 1, 1999;82(4):712-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0122-0268200900010001300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>33.	Gonz&aacute;lez RN, Wilson DJ. Mycoplasmal mastitis in dairy herds. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice2003;19(1):199-221.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0122-0268200900010001300033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>34.	Nash DL, Rogers GW, Cooper JB, Hargrove GL, Keown JF. Heritability of Intramammary Infections at First Parturition and Relationships with Sire Transmitting Abilities for Somatic Cell Score, Udder Type Traits, Productive Life, and Protein Yield. J Dairy Sci2003 August 1, 2003;86(8):2684-95.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0122-0268200900010001300034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>35.	Nickerson SC, Owens WE, Boddie RL. Mastitis in Dairy Heifers: Initial Studies on Prevalence and Control. J Dairy Sci1995 July 1, 1995;78(7):1607-18.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0122-0268200900010001300035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>36.	Waage S, Sviland S, Odegaard SA. Identification of Risk Factors for Clinical Mastitis in Dairy Heifers. J Dairy Sci1998 May 1, 1998;81(5):1275-84.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0122-0268200900010001300036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>37.	Waage S, Odegaard SA, Lund A, Brattgjerd S, Rothe T. Case-Control Study of Risk Factors for Clinical Mastitis in Postpartum Dairy Heifers. J Dairy Sci2001 February 1, 2001;84(2):392-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0122-0268200900010001300037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>38.	Fox LK, Chester ST, Hallberg JW, Nickerson SC, Pankey JW, Weaver LD. Survey of Intramammary Infections in Dairy Heifers at Breeding Age and First Parturition. J Dairy Sci1995 July 1, 1995;78(7):1619-28.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0122-0268200900010001300038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>39.	Gillespie BE, Owens WE, Nickerson SC, Oliver SP. Deoxyribonucleic Acid Fingerprinting of <i>Staphylococcus aureus</i> from Heifer Mammary Secretions and from Horn Flies. J Dairy Sci1999 July 1, 1999;82(7):1581-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0122-0268200900010001300039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>40.	Oliver S, Gillespie BE, Headrick S, Lewis M, Dowlen H, editors. Heifer Mastitis: Prevalence, risk factors and control strategies. National Mastitis Council; 2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0122-0268200900010001300040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>41.	Hogan J, Gonzalez R, Harmon R, Nickerson SC, Oliver SP. Laboratory Handbook of Bovine Mastitis. 1 ed. Madison: The National Mastitis Council 1999.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0122-0268200900010001300041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>42.	De Vliegher S, Barkema HW, Stryhn H, Opsomer G, de Kruif A. Impact of Early Lactation Somatic Cell Count in Heifers on Somatic Cell Counts Over the First Lactation. J Dairy Sci 2004;87(11):3672-82.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0122-0268200900010001300042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>43.	De Vliegher S, Barkema HW, Stryhn H, Opsomer G, de Kruif A. Impact of Early Lactation Somatic Cell Count in Heifers on Milk Yield Over the First Lactation. J Dairy Sci 2005;88(3):938-47.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0122-0268200900010001300043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>44.	Oliver SP, Lewis MJ, Gillespie BE, Dowlen HH, Jaenicke EC, Roberts RK. Prepartum Antibiotic Treatment of Heifers: Milk Production, Milk Quality and Economic Benefit. J Dairy Sci 2003;86(4):1187-93.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0122-0268200900010001300044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>45.	Compton CWR, Heuer C, Parker K, McDougall S. Epidemiology of Mastitis in Pasture-Grazed Peripartum Dairy Heifers and Its Effects on Productivity. J Dairy Sci 2007;90(9):4157-70.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0122-0268200900010001300045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>46.	Roberson JR, Fox LK, Hancock DD, Gay JM, Besser TE. Ecology of <i>Staphylococcus aureus</i> Isolated from Various Sites on Dairy Farms. J Dairy Sci 1994;77(11):3354-64.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0122-0268200900010001300046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>47.	Owens WE, Oliver SP, Gillespie BE, Ray C. Role of horn flies (Haematobia irritans) in <i>Staphylococcus aureus</i> induced mastitis in dairy heifers. Am J Vet Res 1998 59(9):1122-4.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0122-0268200900010001300047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>48.	Molinari G, Chhatwal GS. Streptococcal invasion. Current Opinion in Microbiology 1999;2(1):56-61.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0122-0268200900010001300048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>49.	Natzke RP. Elements of Mastitis Control. J Dairy Sci 1981; 64(6):1431-42.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0122-0268200900010001300049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>50.	Calvinho L, Canavesio V, Iguzquiza I. Infecciones intramamarias durante el periparto en vaquillonas en Argentina. Rev Argent Microbiol 2007 39(2):84-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0122-0268200900010001300050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>51.	Pankey JW, Pankey PB, Barker RM, Williamson JH, Woolford MW. The prevalence of mastitis in primiparous heifers in eleven Waikato dairy herds. New Zealand Veterinary Journal 1996;44:41-4.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0122-0268200900010001300051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>52.	Zadoks RN, Allore HG, Barkema HW, Sampimon OC, Grohn YT, Schukken YH. Analysis of an Outbreak of <i>Streptococcus uberis</i> Mastitis. J Dairy Sci  2001; 84(3):590-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0122-0268200900010001300052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>53.	Oliver SP, editor. Heifer mastitis, strategies for control, and economic implications. British Mastitis Conference; 2000.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0122-0268200900010001300053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>54.	Rodriguez-Zas SL, Gianola D, Shook GE. Factors Affecting Susceptibility to Intramammary Infection and Mastitis: An Approximate Bayesian Analysis. J Dairy Sci 1997;80(1):75-85.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0122-0268200900010001300054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>55.	Nagahata H, Maruta H, Okuhira T, Higuchi H, Anri A. Bacteriological Survey of Mammary Secretions from Prepartum Heifers in a Dairy Herd with a High Prevalence of <i>Staphylococcus aureus</i> Infection. The Journal of Veterinary Medical Science 2006;68(12):1359-61.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0122-0268200900010001300055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>56.	L. K. Fox JHKAB. Mycoplasma Mastitis: A Review of Transmission and Control. Journal of Veterinary Medicine Series B 2005;52(4):153-60.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0122-0268200900010001300056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>57.	Jasper D. The role of Mycoplasma in bovine mastitis. J Am Vet Med Assoc 1982;181:158-62.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0122-0268200900010001300057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>58.	Trinidad P, Nickerson SC, Alley TK, Adkinson RW. Efficacy of intramammary treatment in unbred and primigravid dairy heifers. J Am Vet Med Assoc 1990;197(4):465-70.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0122-0268200900010001300058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>59.	Oliver SP, Lewis MJ, Gillespie BE, Dowlen HH. Influence of Prepartum Antibiotic Therapy on Intramammary Infections in Primigravid Heifers During Early Lactation. J Dairy Sci 1992;75(2):406-14.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0122-0268200900010001300059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>60.	Parker KI, Compton CWR, Anniss FM, Heuer C, McDougall S. Quarter-Level Analysis of Subclinical and Clinical Mastitis in Primiparous Heifers Following the Use of a Teat Sealant or an Injectable Antibiotic, or Both, Precalving. J Dairy Sci 2008;91(1):169-81.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0122-0268200900010001300060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>61.	Lewicki J. Tylosin, a review of pharmacokinetics, residues in food animals and analytical methods.  2006; Available from: <a href="ftp://ftp.fao.org/ag/agn/food/tylosin_2006.pdf">ftp://ftp.fao.org/ag/agn/food/tylosin_2006.pdf</a>.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0122-0268200900010001300061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>62.	Kreiger M, Friton GM, Hofer J, Fuchs K, Winter P. Effects of periparturient systemic treatment with penethamate hydriodide on udder health and milk yield of dairy heifers. Journal of Dairy Research 2007;74(04):392-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0122-0268200900010001300062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>63.	Oliver SP, Headrick SI, Gillespie BE, Lewis MJ, Johnson DL, Lamar KC, et al. Intramammary infections in heifers during early lactation following intramammary infusion of pirlimycin hydrochloride or penicillin-novobiocin at the first milking after parturition. Journal of Dairy Research 2007;74(02):211-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0122-0268200900010001300063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>64.	Leitner G, Yadlin N, Lubashevsy E, Ezra E, Glickman A, Chaffer M, et al. Development of a <i>Staphylococcus aureus</i> vaccine against mastitis in dairy cows. II. Field trial. Veterinary Immunology and Immunopathology 2003;93(3-4):153-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0122-0268200900010001300064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>65.	Sears P, editor. Staphylococcal vaccines: What are the new strategies? National Mastitis Council; 2002; Orlando.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0122-0268200900010001300065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>66.	Parker KI, Compton C, Anniss FM, Weir A, Heuer C, McDougall S. Subclinical and Clinical Mastitis in Heifers Following the Use of a Teat Sealant Precalving. J Dairy Sci2007 January 1, 2007;90(1):207-18.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0122-0268200900010001300066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>67.	Lay AM, Kolpin KM, Sommer DA, Rankin SA. Hot Topic: Black Spot Defect in Cheddar Cheese Linked to Intramammary Teat Sealant. J Dairy Sci  2007; 90(11):4938-41.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0122-0268200900010001300067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>68.	Edinger D, Tenhagen B, Kalbe P, Klunder K, Baumgartner B. Effect of teat dipping with a germicide barrier teat dip in late gestation on intramammary infection and clinical mastitis during the first 5 days post-partum in primiparous cows. J Vet Med Assoc 2000;47:463-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0122-0268200900010001300068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>69.	McArthur BJ, Fairchild TP, Moore JJ. Efficacy of a Latex Teat Sealer. J Dairy Sci 1984 1984;67(6):1331-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0122-0268200900010001300069&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>70.	Matthews KR, Harmon RJ, Langlois BE, Crist WL, Hemken RW. Use of Latex Teat Dip with Germicide During the Prepartum Period. J Dairy Sci 1988;71(7):1940-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0122-0268200900010001300070&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>71.	Lim GH, Leslie KE, Kelton DF, Duffield TF, Timms LL, Dingwell RT. Adherence and Efficacy of an External Teat Sealant to Prevent New Intramammary Infections in the Dry Period. J Dairy Sci 2007;90(3):1289-300.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0122-0268200900010001300071&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>72.	Ram&iacute;rez N, Gaviria G, Arroyave O. Prevalencia de mastitis en vacas lecheras lactantes en el municipio de San Pedro de los Milagros, Antioquia. Rev Col Cie Pec 2001;14:76-87.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0122-0268200900010001300072&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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