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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[SÍNTESIS, COMPOSICIÓN Y MODIFICACIÓN DE LA GRASA DE LA LECHE BOVINA: Un nutriente valioso para la salud humana]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Grupo de Investigación en Ciencias Agrarias GRICA  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[It presents a review about the composition, structure and mechanism of milk fat synthesis in the bovine mammary gland, and about the effect of unsaturated fatty acid (UFA) supplementation on the amount and quality of milk fat. It is enhanced the importance of the supplementation with vegetable plus fish oils; it is suggested that the effect of UFA should not be remarked as negative on the amount of milk fat; It is showed the necessity of relating different UFA with the SREBP's regulatory way, and with different lipid enzymes; and it is promoted research about the effect of UFA on the milk fatty acid composition and their positional distribution into the lipid structure.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p><font size=2 face="verdana"><b>REVISI&Oacute;N DE LITERATURA</b></font></p>      <p>    <center><font size=4 face="verdana"><b>S&Iacute;NTESIS, COMPOSICI&Oacute;N Y MODIFICACI&Oacute;N DE LA GRASA DE LA LECHE BOVINA: Un nutriente valioso para la salud humana</b></font></p>      <p><font size=4 face="verdana"><b>SYNTHESIS, COMPOSITION AND MODIFICATION OF THE BOVINE MILK FAT: A valuable nutrient for the human health</b></p>      <p><font size=2 face=verdana>Joaqu&iacute;n Angulo A<sup>1,2</sup>*, M.Sc, Liliana Mahecha L<sup>2</sup>, M.Sc, Martha Olivera A<sup>1</sup>, Dr.Sci.Agr.</center></p>      <p><sup>1</sup>Universidad de Antioquia, Facultad de Ciencias Agrarias. Grupo de investigaci&oacute;n Biog&eacute;nesis. <sup>2</sup>Grupo de Investigaci&oacute;n en Ciencias Agrarias GRICA. AA 1226, Medell&iacute;n, Colombia. *Correspondencia: <a href="mailto: joaquinangulo@gmail.com">joaquinangulo@gmail.com</a></p>      <p><font face="verdana" size="2">Recibido: Septiembre 10 de 2008; Aceptado: Agosto 10 de 2009</font></p>  <hr>  <font size=3 face="verdana">      <p><b>RESUMEN</b></p>      <p>Se presenta una revisi&oacute;n sobre la composici&oacute;n, estructura y mecanismo de s&iacute;ntesis de la grasa de la leche en la gl&aacute;ndula mamaria bovina y del efecto de la suplementaci&oacute;n con &aacute;cidos grasos insaturados (AGI) sobre la cantidad y calidad de la grasa. Se resalta la importancia de la suplementaci&oacute;n con aceites vegetales m&aacute;s aceite de pescado; se sugiere no generalizar el efecto de AGI como negativo sobre la cantidad de grasa de la leche; se muestra la necesidad de relacionar diferentes AGI con la v&iacute;a regulatoria SREBP y con diferentes enzimas lipog&eacute;nicas; y se incentiva la investigaci&oacute;n del efecto de AGI sobre la composici&oacute;n de &aacute;cidos grasos de la leche y su distribuci&oacute;n posicional dentro de la estructura lip&iacute;dica.</p>      <p><b>Palabras clave</b>: &Aacute;cidos grasos, gl&aacute;ndula mamaria, l&iacute;pidos, vacas.</p>  <hr>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>ABSTRACT</b></p>      <p>It presents a review about the composition, structure and mechanism of milk fat synthesis in the bovine mammary gland, and about the effect of unsaturated fatty acid (UFA) supplementation on the amount and quality of milk fat. It is enhanced the importance of the supplementation with vegetable plus fish oils; it is suggested that the effect of UFA should not be remarked as negative on the amount of milk fat; It is showed the necessity of relating different UFA with the SREBP's regulatory way, and with different lipid enzymes; and it is promoted research about the effect of UFA on the milk fatty acid composition and their positional distribution into the lipid structure.</p>      <p><b>Key words</b>: Fatty acids, mammary gland, lipids, cows.</p>  <hr>      <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>      <p>La preferencia de los consumidores ha marcado el camino a seguir en la producci&oacute;n de alimentos de origen animal a trav&eacute;s de los a&ntilde;os. El inter&eacute;s por productos saludables se ha convertido en un aspecto prioritario para la competitividad de la ganader&iacute;a en el mundo. Especial inter&eacute;s se ha puesto en la composici&oacute;n de la grasa de los rumiantes toda vez que algunos de sus componentes o la mejor&iacute;a en la relaci&oacute;n entre algunos de ellos han sido asociados con efectos positivos para la salud humana. El &aacute;cido rum&eacute;nico &oacute; &aacute;cido linoleico conjugado (CLA, C18:2, <i>cis</i>-9 <i>trans</i>-11) y el &aacute;cido trans vacc&eacute;nico (TVA, C18:1 <i>trans</i>-11) han sido reportados con efectos ben&eacute;ficos para el c&aacute;ncer humano mientras que una apropiada relaci&oacute;n de &aacute;cidos grasos (AG) <i>n</i>-6/<i>n</i>-3 ha sido asociada con reducci&oacute;n en enfermedades cardiovasculares, con reducci&oacute;n de c&eacute;lulas cancerosas, y con disminuci&oacute;n de la inflamaci&oacute;n en pacientes con artritis (1-5).</p>      <p>Considerando el efecto ben&eacute;fico que la composici&oacute;n de la grasa de la leche puede representar para la salud humana, la investigaci&oacute;n sobre su manipulaci&oacute;n a trav&eacute;s de la dieta ha estado enfocada en los &uacute;ltimos a&ntilde;os hacia el incremento en el contenido de CLA y TVA, as&iacute; como a la b&uacute;squeda de una relaci&oacute;n apropiada de <i>n</i>-6/<i>n</i>-3 a trav&eacute;s de la adici&oacute;n de &aacute;cidos grasos insaturados (AGI). Grandes avances se han encontrado hasta el momento. Sin embargo, la investigaci&oacute;n contin&uacute;a en la obtenci&oacute;n de mejores valores as&iacute; como de una mayor estabilidad en los resultados, raz&oacute;n por la cual se le ha dado un gran &eacute;nfasis al entendimiento de los efectos de la suplementaci&oacute;n con AGI sobre el mecanismo de s&iacute;ntesis de la grasa de la leche y su regulaci&oacute;n. No obstante, a pesar de los resultados encontrados, la utilizaci&oacute;n de AGI a nivel de finca no ha tenido una respuesta proporcional, posiblemente por los efectos colaterales que reportan disminuci&oacute;n de la grasa de la leche. Por lo tanto, para incrementar el uso de estos AG en la suplementaci&oacute;n de rumiantes con miras al mejoramiento de la calidad de la grasa para la salud humana, es necesario entender mejor por qu&eacute; baja la grasa de la leche y encontrar alternativas para mejorar la composici&oacute;n de la grasa de la leche sin detrimento en la cantidad de grasa producida. Diversos investigadores han trabajado y continu&aacute;n trabajando en este t&oacute;pico enfocados en la fisiolog&iacute;a de s&iacute;ntesis de la grasa de la leche. Este documento presenta una revisi&oacute;n sobre la composici&oacute;n, estructura y mecanismo de s&iacute;ntesis de la grasa de la leche en la gl&aacute;ndula mamaria bovina y sobre el efecto de la suplementaci&oacute;n con AGI en la cantidad y calidad de la grasa.</p>      <p><b>COMPOSICI&Oacute;N LIP&Iacute;DICA DE LA LECHE BOVINA Y ESTRUCTURA DEL GL&Oacute;BULO DE GRASA</b></p>      <p>La leche bovina se encuentra conformada aproximadamente por 98% de triglic&eacute;ridos, menos del 2% por l&iacute;pidos polares (fosfoglic&eacute;ridos, esfingol&iacute;pidos y colesterol), y por peque&ntilde;as cantidades de &aacute;cidos grasos libres (AGL), mono, di y triglic&eacute;ridos (6). Los triglic&eacute;ridos est&aacute;n constituidos por una unidad de glicerol al que est&aacute;n esterificados tres AG en las posiciones <i>sn</i>-1, <i>sn</i>-2 y <i>sn</i>-3 mientras que los l&iacute;pidos polares var&iacute;an su estructura de acuerdo al grupo al que se refiera, pudi&eacute;ndose encontrar al menos tres grupos en la grasa de la leche bovina.</p>      <p>El primer grupo son los fosfoglic&eacute;ridos, entre los que se encuentran fosfoglic&eacute;ridos y plasmal&oacute;genos. Los fosfoglic&eacute;ridos son los m&aacute;s abundantes y conocidos, e incluyen en su estructura &aacute;cido fosfat&iacute;dico. La diferencia principal entre plasmal&oacute;genos y fosfoglic&eacute;ridos es que el AG en el C-1 (<i>sn</i>-1) del glicerol contiene una especie alquil (-O-CH<sub>2</sub>-) o Oalquenil &eacute;ter (-O-CH=CH-).</p>      <p>El segundo grupo son los esfingol&iacute;pidos, que a su vez se dividen en fosfoesfingol&iacute;pidos y glucol&iacute;pidos. Los fosfoesfingol&iacute;pidos incluyen en su estructura una ceramida, un grupo fosfato y un aminoalcohol; el m&aacute;s abundante esfingol&iacute;pido es la esfingomielina. Los glucol&iacute;pidos tambi&eacute;n poseen en su estructura una ceramida, pero no tienen fosfato ni alcohol; entre los principales glucol&iacute;pidos se encuentran los cerebr&oacute;sidos y gangli&oacute;sidos.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El tercer grupo hace referencia al colesterol, un l&iacute;pido esteroide formado por una mol&eacute;cula de ciclopentanoperhidrofenantreno constituida por cuatro carbociclos condensados, una cadena alif&aacute;tica y un grupo hidroxilo (6, 7).</p>      <p>La composici&oacute;n de AG var&iacute;a entre los tipos de l&iacute;pidos. Los AGI predominan en los fosfoglic&eacute;ridos (70% insaturados, 30% saturados), mientras que los saturados predominan en los triglic&eacute;ridos (30% insaturados, 70% saturados), esfingol&iacute;pidos (20% insaturados, 80% saturados) y glucol&iacute;pidos (20% insaturados, 80% saturados) (8). En t&eacute;rminos generales podr&iacute;a decirse que la grasa de la leche bovina est&aacute; compuesta por 70% AGS, 25% monoinsaturados y 5% poliinsaturados (PUFA). Sin embargo, esta composici&oacute;n puede ser mejorada, al disminuir la relaci&oacute;n entre AGS y AGI a trav&eacute;s de la dieta.</p>      <p>La distribuci&oacute;n posicional de los AG tambi&eacute;n var&iacute;a entre los tipos de l&iacute;pidos y no es aleatoria. En los triglic&eacute;ridos, los AG de cadena corta (AGCC) but&iacute;rico (4:0) y caproico (6:0) son esterificados casi en su totalidad en la posici&oacute;n sn-3; los &aacute;cidos grasos de cadena media AGCM entre 8 y 14 carbonos as&iacute; como el palm&iacute;tico (C16:0) son preferencialmente esterificados en las posiciones sn-1 y sn-2; el &aacute;cido este&aacute;rico (C18:0) es selectivamente esterificado en la posici&oacute;n sn-1, mientras que el &aacute;cido oleico (C18:1) muestra preferencia por las posiciones sn-1 y sn-3 (9). La posici&oacute;n de los AG tambi&eacute;n muestra ciertas preferencias en los fosfoglic&eacute;ridos. Es frecuente que el de posici&oacute;n sn-2 suela ser AGI, mientras que el que ocupa la posici&oacute;n sn-1 suele ser AGS (10).</p>      <p>Referente a la estructura, se conoce que los l&iacute;pidos de la leche bovina se encuentran empaquetados dentro de gl&oacute;bulos grasos, ver <a href="#fig1">figura 1</a>. Su origen inicia con la s&iacute;ntesis de triglic&eacute;ridos en el ret&iacute;culo endoplasm&aacute;tico liso seguida por su agregaci&oacute;n en el ret&iacute;culo endoplasm&aacute;tico rugoso (RER), conformando lo que se conoce como n&uacute;cleo del gl&oacute;bulo de grasa (NGG) que se encuentran casi exclusivamente compuesto por triglic&eacute;ridos (99.8%) (11), con peque&ntilde;as cantidades de colesterol, vitaminas y otros componentes (<a href="#tab1">Tabla 1</a>) (6).</p>      <p>    <center><a name="fig1"></a><img src="img/revistas/mvz/v14n3/v14n3a10f1.jpg"></center></p>      <p>    <center><a name="tab1"></a><img src="img/revistas/mvz/v14n3/v14n3a10t1.jpg"></center></p>      <p>El lugar exacto dentro del RER donde se lleva a cabo la conformaci&oacute;n del NGG no es muy claro (12), pero se sabe que son liberados en el citosol de la c&eacute;lula epitelial mamaria (MEC, por su sigla en ingl&eacute;s) cuando tienen menos de 0.5 &micro;m de di&aacute;metro, de forma directa y no a trav&eacute;s del aparato de golgi como sucede con la case&iacute;na &oacute; las lipoprote&iacute;nas en el h&iacute;gado (13). Al salir al citosol, los NGG quedan revestidos con prote&iacute;nas y l&iacute;pidos de la membrana reticular, formando a su alrededor una monocapa en la que predominan fosfatidil y lisofosfatidil colina, y constituyendo lo que se conoce como microdroplet (<a href="#fig2">Figura 2</a> #1) (11). En el citosol, los microdroplets se unen entre s&iacute; y dan origen a macrodroplets &oacute; droplets lip&iacute;dicos citoplasm&aacute;ticos (<a href="#fig2">Figura 2</a> # 2) que avanzan hacia la parte apical de la MEC por mecanismos que involucran elementos del citoesqueleto (11) y prote&iacute;nas de la membrana del gl&oacute;bulo de grasa de la leche (MFGM, por su sigla en ingl&eacute;s) (14).</p>      <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="fig2"></a><img src="img/revistas/mvz/v14n3/v14n3a10f2.jpg"></center></p>      <p>Existen dos teor&iacute;as sobre su mecanismo de secreci&oacute;n. La primera considera que los macrodroplets son secretados envolviendo parte de la membrana plasm&aacute;tica de la MEC, lo que pasa a conformar la MFGM, quedando finalmente constituido lo que se conoce como gl&oacute;bulo graso de la leche (11) (<a href="#fig2">Figura 2</a> #3). La segunda teor&iacute;a hace referencia a la secreci&oacute;n en ves&iacute;culas (15). De acuerdo con la primera teor&iacute;a, diversas prote&iacute;nas de membrana, componentes tanto de la membrana plasm&aacute;tica apical de la MEC como de MFGM, ayudan a la secreci&oacute;n del gl&oacute;bulo de grasa, entre las que se encuentran las mucinas MUC1 y MUC15, la enzima redox xantina oxidoreductasa, las prote&iacute;nas integrales CD36 y butirofilin, y la prote&iacute;na de uni&oacute;n a l&iacute;pidos adipofil&iacute;n (12).</p>      <p>Adem&aacute;s de prote&iacute;nas, tambi&eacute;n se ha encontrado que la MFGM est&aacute; compuesta por triglic&eacute;ridos, colesterol, fosfoglic&eacute;ridos y esfingol&iacute;pidos (<a href="#tab1">Tabla 1</a>) (incluyendo los dos &uacute;ltimos aproximadamente un 31.1% de fosfatidiletalonamina, 27.7% de esfingol&iacute;pidos, 26.4% de fosfatidilcolina, 5.5% de fosfatidilserina, y 5.2% de fosfatidil inositol, 3% de plasmal&oacute;genos y 1.1% de gangli&oacute;sidos) (6). Gracias a su composici&oacute;n, especialmente en lo referente a fosfoglic&eacute;ridos y prote&iacute;nas, la MFGM ha sido relacionada con propiedades anticolesterol&eacute;micas y anticancer&iacute;genas (5).</p>      <p><b>MECANISMO DE S&Iacute;NTESIS DE LA GRASA DE LA LECHE.</b></p>      <p><b>S&iacute;ntesis de &aacute;cidos grasos</b>. No todos los AG de la leche bovina se sintetizan en la gl&aacute;ndula mamaria. En general, ellos provienen de tres fuentes: AG esterificados en los triglic&eacute;ridos de las lipoprote&iacute;nas que circulan en la sangre (procedentes de la dieta y el metabolismo ruminal) (<a href="#fig2">Figura 2</a> #4), AG no esterificados que circulan en la sangre provenientes de la movilizaci&oacute;n de reservas corporales (AGAlb&uacute;mina) (<a href="#fig2">Figura 2</a> #5), y la s&iacute;ntesis de novo en la MEC (<a href="#fig2">Figura 2</a> #6) (16).</p>      <p>Los AGCC y el 50% de los AGCM saturados con un n&uacute;mero par hasta de 16 Carbonos, son sintetizados de <i>novo</i> en el citoplasma de la MEC a partir del acetato y 3-hidroxi butirato que llegan en la sangre proveniente de la fermentaci&oacute;n en el rumen, en reacciones catalizadas por las enzimas acetil CoA carboxilasa (ACC) y &aacute;cido graso sintetasa (FAS). El otro 50% de los AGCM saturados con un n&uacute;mero par hasta de 16 Carbonos procede de l&iacute;pidos circulantes en sangre que tienen su origen en la dieta, el rumen y la grasa movilizada de las reservas corporales (17, 18).</p>      <p>El origen del rum&eacute;nico puede ser el rumen (7%) o la s&iacute;ntesis de <i>novo</i> (93%) en el ret&iacute;culo endoplasm&aacute;tico de la MEC, a partir del TVA que proviene del rumen. Este proceso es conocido como desaturaci&oacute;n (<a href="#fig2">Figura 2</a> #7) y es llevado a cabo por medio del complejo enzim&aacute;tico &Delta;9 desaturasa conocido tambi&eacute;n como Stearoil CoA Desaturasa o SCD que lleva a cabo la formaci&oacute;n de los &aacute;cidos miristoleico (C14:1), palmitoleico (C16:1), y oleico (C 18:1 <i>cis</i>- 9), utilizando como sustratos el &aacute;cido mir&iacute;stico (C14:0), palm&iacute;tico (C16:0), y este&aacute;rico (C18:0), respectivamente (17, 18). En la gl&aacute;ndula mamaria bovina es posible la desaturaci&oacute;n pero no la elongaci&oacute;n de cadenas de m&aacute;s de 16 carbonos debido a que no existen las enzimas necesarias (19), por lo tanto, los AG de 18 &oacute; m&aacute;s carbonos (excepto los que se originan como producto de la desaturaci&oacute;n tales como el oleico y el rum&eacute;nico), proceden de l&iacute;pidos circulantes en sangre. Gran importancia se le ha concedido a la enzima lipoprote&iacute;na lipasa (LPL) por ser la encargada de hacer el corte de los AG que vienen en la sangre y suministrarlos a la MEC para su utilizaci&oacute;n (<a href="#fig2">Figura 2</a> #8). A partir de estudios inmunohistoqu&iacute;micos y bioqu&iacute;micos, se ha encontrado que la LPL est&aacute; localizada tanto en la superficie y dentro de la c&eacute;lula principal de los principales tejidos como en la superficie luminal de las c&eacute;lulas endoteliales vasculares. Sin embargo, a&uacute;n no hay claridad del lugar exacto en la gl&aacute;ndula mamaria. Algunos han encontrado que se origina en la MEC mientras que otros la han encontrado en los adipocitos mamarios localizados en las c&eacute;lulas intersticiales. Por lo tanto, se cree que posiblemente esta enzima es producida en los adipocitos, secretada y transportada a trav&eacute;s de la MEC tanto hacia los capilares endoteliales como hacia el sitio de secreci&oacute;n de leche en la MEC (2). Una vez la LPL realiza el corte de AG en los capilares mamarios, estos deben atravesar lateralmente la bicapa lip&iacute;dica de la membrana del capilar, luego cruzar c&eacute;lulas adyacentes que se encuentran entre el capilar y la MEC, para finalmente alcanzar la MEC, sin embargo, no existe claridad de c&oacute;mo se logra este paso. Clegg et al (16) referencian la necesidad de un gradiente de concentraci&oacute;n de AG, lo cual es posiblemente creado por traslocadores de AG o prote&iacute;nas de enlace. Entre los m&aacute;s conocidos y estudiados hasta el momento se encuentran el FABP y la CD36 (<a href="#fig2">Figura 2</a> #9).</p>      <p><b>S&iacute;ntesis de triglic&eacute;ridos</b>. Previo a la s&iacute;ntesis de triglic&eacute;ridos, los AG son activados por la combinaci&oacute;n con Coenzima A, formando los Acil- CoA (<a href="#fig2">Figura 2</a> #10). El primer paso en la bios&iacute;ntesis de triglic&eacute;ridos es la esterificaci&oacute;n de un Acil-CoA con el glicerol 3 fosfato en la posici&oacute;n <i>sn</i>-1, en reacci&oacute;n catalizada por una glicerofosfatoaciltransferasa (GPAT) localizada en el ret&iacute;culo endoplasm&aacute;tico, dando como resultado un monoacilgricerol 3 fosfato (<a href="#fig2">Figura 2</a> #11) (2). El glicerol utilizado para la formaci&oacute;n del glicerol 3-fosfato procede de la transformaci&oacute;n de la glucosa que viene en la sangre &oacute; del fraccionamiento de los triglic&eacute;ridos incluidos en las lipoprote&iacute;nas transportadas en la sangre (<a href="#fig2">Figura 2</a> #12). El segundo paso es la esterificaci&oacute;n de otro Acil-CoA con el monoacilglicerol 3 fosfato en la posici&oacute;n <i>sn</i>-2, en reacci&oacute;n catalizada por la enzima Acilglicerolfosfato aciltranferasa &oacute; Lisofosfatidil aciltransferasa (AGPAT &oacute; LPAAT) (2) (<a href="#fig2">Figura 2</a> #13), la cual tiene una mayor afinidad por los AGS en el orden C16 &gt; C14 &gt;C12 &gt; C10 &gt; C8 (20); el producto final de esta reacci&oacute;n es el diacilglicerol-3-fosfato, llamado tambi&eacute;n &aacute;cido fosfat&iacute;dico. El tercer paso es la eliminaci&oacute;n hidrol&iacute;tica del fosfato en la posici&oacute;n <i>sn</i>-3 del diacilglicerol 3 fosfato, seguida de una transferencia de otro grupo acilo procedente de un acil CoA, en reacci&oacute;n catalizada por la enzima diacilglicerol aciltranferasa (DGAT) (<a href="#fig2">Figura 2</a> #14) (2).</p>      <p><b>S&iacute;ntesis de fosfoglic&eacute;ridos</b>. La mayor parte de los l&iacute;pidos polares que se encuentran en la leche bovina, provienen de la membrana plasm&aacute;tica apical de la MEC y de la membrana reticular. En forma general, se conoce que los fosfoglic&eacute;ridos, principales constituyentes en n&uacute;mero de los l&iacute;pidos de membrana presentes en la leche bovina, se sintetizan en la b&iacute;capa citos&oacute;lica de la membrana del RE permitiendo que las cadenas de AG hidrof&oacute;bicas permanezcan clavadas en la membrana mientras se une a enzimas que catalizan sus reacciones con precursores del citosol. Para mantener estable la membrana, alguno de estos nuevos l&iacute;pidos sintetizados son transferidos a la otra mitad de la b&iacute;capa (Lumen); esta transferencia ocurre gracias a una prote&iacute;na de membrana llamada FLIPASA, resultando en un crecimiento de ambas mitades de la b&iacute;capa. En el proceso de s&iacute;ntesis, dos AG son unidos a la coenzima A, luego los acylcoA son unidos al glicerol 3 fosfato, produciendo &aacute;cido fosfat&iacute;dico, el cual es simult&aacute;neamente insertado en la membrana. Posteriormente una fosfatasa convierte el &aacute;cido fosfat&iacute;dico en diacilglicerol. Finalmente, diferentes grupos polares se unen al diacilglicerol dando lugar a la formaci&oacute;n de fosfatidilcolina, fosfatidiletalonamina, &oacute; fosfatidilserina. El fosfatidilinositol es formado a partir de &aacute;cido fosfat&iacute;dico, y no a partir del diacilglicerol. (21).</p>      <p><b>EFECTO DE LOS &Aacute;CIDOS GRASOS INSATURADOS SOBRE LA CANTIDAD DE GRASA DE LA LECHE</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Existen dos enfoques del efecto de los AGI sobre la cantidad de grasa de la leche: uno general y otro diferencial. El enfoque general se basa en resultados obtenidos en h&iacute;gado de humanos y ratas, en donde se encontr&oacute; que los AGI y en especial los PUFA indujeron la expresi&oacute;n g&eacute;nica de enzimas responsables de la oxidaci&oacute;n de AG y reprimieron enzimas relacionadas con la lipog&eacute;nesis (22). El enfoque diferencial considera que en la gl&aacute;ndula mamaria bovina no siempre los AGI causan reducci&oacute;n de la s&iacute;ntesis de la grasa de la leche. Las razones podr&iacute;an ser resumidas en tres aspectos principales:</p>      <p>Primero, porque no todos los AGI que llegan directamente a la gl&aacute;ndula mamaria, procedentes de la dieta, tienen el mismo efecto regulatorio sobre las enzimas lipog&eacute;nicas mamarias y/o sobre la s&iacute;ntesis de la grasa de la leche. La adici&oacute;n de &aacute;cido rum&eacute;nico en MEC bovinas, no afect&oacute; el metabolismo lip&iacute;dico mientras que el <i>trans</i>- 10 <i>cis</i>-12 CLA disminuy&oacute; la s&iacute;ntesis de triglic&eacute;ridos (23); la adici&oacute;n <i>in vitro</i> de TVA y de rum&eacute;nico mejor&oacute; la actividad de la enzima SCD en MEC bovinas, mientras que el oleico y el linoleico la disminuyeron (24); asimismo, la adici&oacute;n <i>in vitro</i> de TVA y de este&aacute;rico no afect&oacute; la transcripci&oacute;n del gen promotor de la SCD en MEC bovinas mientras que el linoleico y el oleico la disminuyeron (25).</p>      <p>Segundo, porque existen otros aspectos en la gl&aacute;ndula mamaria que afectan la regulaci&oacute;n que puedan causar ciertos AG que vienen directamente de la dieta, lo cual no ha sido clarificado hasta el momento, pero que podr&iacute;a en cierto modo estar asociado con las relaciones de disponibilidad de ciertos AG en la gl&aacute;ndula mamaria. Posiblemente, a esto se deba el que hayan resultados contrastantes sobre el efecto de algunos AGI cuando se han trabajado <i>in vitro</i> directamente sobre la MEC bovina, en infusiones abomasales o intestinales, &oacute; a trav&eacute;s de l&iacute;pidos protegidos. Se ha encontrado que la adici&oacute;n de &aacute;cido oleico &oacute; linoleico en MEC bovinas disminuye la actividad de las enzimas lipog&eacute;nicas ACC y FAS (24,26). Sin embargo, Yonezawa et al (27) y Enjalbert et al (28) encontraron que la grasa de la leche aumentaba &oacute; no hab&iacute;a diferencia. As&iacute; mismo, Mahecha et al (1) no encontraron efecto sobre la grasa de la leche al suplementar con l&iacute;pidos protegidos mientras que Ahnadi et al (29) encontraron reducci&oacute;n.</p>      <p>Tercero, porque en los rumiantes el rumen impide que la mayor parte de AGI que se ingieren en la dieta, lleguen en forma intacta a la gl&aacute;ndula mamaria, ya que son biohidrogenados parcial o totalmente por los microorganismos ruminales. Por lo tanto, en dietas en que los AGI no est&eacute;n protegidos a la degradaci&oacute;n ruminal, el efecto sobre la regulaci&oacute;n de las enzimas lipog&eacute;nicas depende no tanto del AG de la dieta sino de sus metabolitos ruminales, y estos metabolitos no siempre son los mismos ya que dependen de las interacciones generadas a nivel ruminal con otros nutrientes. Por ejemplo, se reporta que la suplementaci&oacute;n de aceites vegetales en dietas bajas en fibra causan depresi&oacute;n de la grasa de la leche, mientras que con dietas altas en forraje no (3). Asimismo, se ha encontrado que la suplementaci&oacute;n de aceite de pescado solo, causa depresi&oacute;n en la grasa de la leche (30), mientras que la combinaci&oacute;n de aceite de pescado con aceite de girasol la incrementa (4). Algunos estudios en los que se ha obtenido incremento en <i>trans</i>-10 <i>cis</i>-12 CLA; <i>trans</i>-7 <i>cis</i>-9 CLA, <i>trans</i>-9 <i>cis</i>- 11 CLA, &oacute; <i>trans</i>-10 18:1, se ha reportado disminuci&oacute;n en la expresi&oacute;n de algunas enzimas lipog&eacute;nicas y caida de la grasa de la leche (31, 32). Por el contrario, trabajos en los que no ha habido un cambio significativo en alguno de estos metabolitos, no se ha obtenido alteraci&oacute;n en la grasa de la leche &oacute; el cambio ha sido m&iacute;nimo (3,4,33). No obstante, a&uacute;n falta por relacionar el efecto de una gran parte de metabolitos ruminales con diferentes enzimas que intervienen en la s&iacute;ntesis de la grasa de la leche. Tambi&eacute;n es necesario profundizar en la v&iacute;a de regulaci&oacute;n de estos AG.</p>      <p>Hasta el momento, los pocos estudios realizados sobre regulaci&oacute;n de AG en gl&aacute;ndula mamaria bovina, han encontrado asociaci&oacute;n entre la suplementaci&oacute;n de algunos AGI y el cambio en la prote&iacute;na de uni&oacute;n al elemento de respuesta a los esteroles (SREBP-1) (23, 25,31), raz&oacute;n por la cual se ha planteado como v&iacute;a principal de regulaci&oacute;n en la gl&aacute;ndula mamaria bovina. SREBP-1 es una familia de prote&iacute;nas sintetizadas como formas precursoras inactivas, las cuales se encuentran ancladas a la membrana del RE y a la membrana nuclear en una disposici&oacute;n de horquilla, como se observa en la <a href="#fig2">figura 2</a> #15. El gen de las enzimas lipog&eacute;nicas que act&uacute;an en la gl&aacute;ndula mamaria contiene un extremo SRE (<a href="#fig2">Figura 2</a> #16) al que se unen las SREBP. Ante la ausencia de un est&iacute;mulo desencadenante, la SREBP se encuentra conformando un complejo con la prote&iacute;na SCAP (SREBP cleavage activating protein; prote&iacute;na activante del rompimiento de las SREBP) en el RE. Sin embargo, ante un est&iacute;mulo desencadenante, la SCAP sufre un cambio conformacional y se desprende de su uni&oacute;n al RE, de forma que SCAP y SREBP migran al complejo de golgi (<a href="#fig2">Figura 2</a> #17) a trav&eacute;s de ves&iacute;culas (recubiertas de prote&iacute;nas COP-II).</p>      <p>Estas ves&iacute;culas tambi&eacute;n contienen una serina-proteasa inactiva de la familia subtilisina (Sitio-1 protease; SP1). En la membrana de golgi, la proteasa SP1 se activa y corta SREBP en el medio de su bucle hidr&oacute;filo lumenal. Tras este corte, SP2, una metaloproteasa transmembrana dependiente de zinc, que posiblemente reside en golgi de forma constitutiva, vuelve a cortar a SREBP en la regi&oacute;n intramembrana del lado citoplasm&aacute;tico. Este proceso denominado "RIP" (regulated intermembrane proteolysis &oacute; prote&oacute;lisis de intermembrana regulada) libera la regi&oacute;n aminoterminal (68 kDa) denominada forma madura &oacute; activa (<a href="#fig2">Figura 2</a> #18), que contiene una se&ntilde;al de localizaci&oacute;n nuclear que interacciona directamente con el receptor citos&oacute;lico llamado importina, permitiendo su transporte al n&uacute;cleo. Una vez en el n&uacute;cleo, SREBP puede unirse a las regiones SRE presentes en regiones promotoras de genes involucrados en la s&iacute;ntesis de l&iacute;pidos y regular su expresi&oacute;n (<a href="#fig2">Figura 2</a> #19). (2,34).</p>      <p>Aunque se conoce que esta es la principal v&iacute;a de regulaci&oacute;n de enzimas lipog&eacute;nicas por algunos AGI que han sido estudiados, a&uacute;n no se conoce con claridad si los AGI que ingresan en la MEC desencadenan directamente la v&iacute;a de la SREBP (<a href="#fig2">Figura 2</a> # 20) o si lo hacen de forma indirecta a trav&eacute;s del est&iacute;mulo de hormonas como la leptina y la prolactina (<a href="#fig2">Figura 2</a> #21) o ambos. Estudios realizados por Feuermann et al (35) y Yonezawa et al (27), han encontrado asociaci&oacute;n entre la adici&oacute;n <i>in vitro</i> de AGI, el cambio en la expresi&oacute;n de mRNA de prolactina y leptina, y la s&iacute;ntesis de triglic&eacute;ridos. Sin embargo, estos estudios no evaluaron la v&iacute;a por la cual los AG actuaron para que la leptina &oacute; ellos directamente, incidieran en la s&iacute;ntesis lip&iacute;dica, tampoco se evalu&oacute; el efecto sobre la composici&oacute;n de los triglic&eacute;ridos.</p>      <p><b>EFECTO DE LA SUPLEMENTACI&Oacute;N CON &Aacute;CIDOS GRASOS INSATURADOS SOBRE LA CALIDAD DE LA GRASA DE LA LECHE</b></p>      <p>Este efecto puede ser valorado de acuerdo al cambio en la composici&oacute;n de AG y de acuerdo al cambio en la estructura del triglic&eacute;rido.</p>      <p>Aunque el incremento en AGI y reducci&oacute;n en AGS ha sido reportado ben&eacute;fico para la disminuci&oacute;n del riesgo a enfermedades cardiovasculares (36), y la disminuci&oacute;n de la relaci&oacute;n <i>n</i>-6/<i>n</i>-3 ha sido asociada con reducci&oacute;n de problemas inflamatorios (1-5), el aumento de los &aacute;cidos rum&eacute;nico y TVA en la grasa de la leche bovina han captado la mayor atenci&oacute;n en la investigaci&oacute;n. Diversos estudios han demostrado que la suplementaci&oacute;n con aceites vegetales, aceite de pescado &oacute; algas, ricos en AGI, tiene efectos positivos sobre el &aacute;cido rum&eacute;nico y TVA, sobresaliendo los aceites de girasol y linaza por los niveles alcanzados (3,4,12). Sin embargo, considerando que estos aceites pueden influenciar negativamente la cantidad de grasa de la leche, los estudios se han reorientado a la b&uacute;squeda de alternativas que puedan mejorar los niveles de rum&eacute;nico y TVA sin perjudicar los niveles de grasa de la leche.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Hasta el momento se ha encontrado que la combinaci&oacute;n de aceites vegetales con aceite de pescado puede tener el efecto buscado. No obstante, los resultados siguen siendo contrastantes. La inclusi&oacute;n de diferentes niveles de aceite de girasol y pescado en la dieta bovina ha resultado en mayor concentraci&oacute;n de rum&eacute;nico y TVA en la grasa de la leche sin alteraci&oacute;n de la cantidad de grasa cuando se utilizaron niveles de 3% de aceite de girasol y 0.5% de aceite de pescado (3). Similares resultados fueron encontrados en niveles de TVA y rum&eacute;nico, pero controversialmente, la proporci&oacute;n de grasa de la leche increment&oacute; linealmente a medida que increment&oacute; el aceite de pescado (4). M&aacute;s investigaci&oacute;n es necesaria a nivel del metabolismo de s&iacute;ntesis de la grasa de la leche en la gl&aacute;ndula mamaria y de su relaci&oacute;n con los metabolitos ruminales, as&iacute; como de los niveles a utilizar en la combinaci&oacute;n de estos aceites en la suplementaci&oacute;n.</p>      <p>En contraste a los cambios en la composici&oacute;n de AG de la leche, la influencia de la suplementaci&oacute;n sobre la estructura del triglic&eacute;rido no ha sido muy evaluada. Estudios reportados por Valenzuela et al (37), en el humano, indican que los AG de cadena larga se absorben mejor en la posici&oacute;n <i>sn</i>-2, excepto el rum&eacute;nico que se encuentra principalmente en posici&oacute;n <i>sn</i>-1 y <i>sn</i>-3 del triglic&eacute;rido de la leche bovina y ha mostrado una mejor absorci&oacute;n y oxidaci&oacute;n en ratas cuando est&aacute; presente en estas posiciones que en <i>sn</i>-2 (38). Por lo tanto, ser&iacute;a preferible que la posici&oacute;n <i>sn</i>-2 de los triglic&eacute;ridos de la leche est&eacute; ocupada por AGI (excepto en el caso del rum&eacute;nico). No obstante, los AGS son los que predominan en esta posici&oacute;n (39) y han sido asociados con problemas cardiovasculares (36). As&iacute;, cuando se suplementan bovinos con AGI con el objetivo de incrementar sus niveles en la leche y disminuir el de saturados, es tambi&eacute;n importante considerar la modificaci&oacute;n que se ocasione en la posici&oacute;n de los AG. Algunos trabajos indican que es posible modificar la distribuci&oacute;n estequiom&eacute;trica de los AG en la grasa de la leche bovina (20, 40).</p>      <p><b>CONSIDERACIONES FINALES</b></p>      <p>D&iacute;a a d&iacute;a la investigaci&oacute;n encuentra nuevos componentes tanto del n&uacute;cleo como de la membrana del gl&oacute;bulo de grasa de la leche bovina, relacionados con la salud humana. Por lo tanto, el potencial ben&eacute;fico de la grasa de la leche contin&uacute;a siendo atractivo para su exploraci&oacute;n.</p>      <p>La suplementaci&oacute;n con AGI provenientes de la mezcla de aceites vegetales y de pescado o algas) se considera una buena alternativa para el mejoramiento de la calidad de la grasa. No obstante, se necesita m&aacute;s investigaci&oacute;n para evitar efectos negativos sobre la cantidad de la grasa.</p>      <p>No se debe generalizar el efecto de los AGI como negativo sobre la SREBP1, sobre la actividad de las enzimas lipog&eacute;nicas, ni sobre la producci&oacute;n de grasa de la leche. Se podr&iacute;a hipotetizar que existe un efecto individual. Algunos is&oacute;meros del CLA as&iacute; como algunos is&oacute;meros <i>trans</i> C18:1, se han encontrado como inhibidores de enzimas relacionadas con la s&iacute;ntesis de <i>novo</i> y por lo tanto con la depresi&oacute;n de la grasa de la leche mientras que el &aacute;cido vacc&eacute;nico se vislumbra como posible activador de la SREBP1 y de algunas enzimas lipog&eacute;nicas o por lo menos con un efecto neutro sobre algunas de ellas. El efecto de los dem&aacute;s insaturados no es claro y posiblemente se vea alterado por la relaci&oacute;n en la disponibilidad entre algunos de ellos.</p>      <p>En un futuro cercano, la investigaci&oacute;n deber&aacute; enfocarse no solo al efecto de la suplementaci&oacute;n sobre la composici&oacute;n de AG de la leche sino tambi&eacute;n sobre su distribuci&oacute;n posicional dentro de la estructura lip&iacute;dica.</p>      <p><b>Agradecimientos</b></p>      <p>Los autores agradecen a Colciencias, a la Universidad de Antioquia, al Instituto para la Investigaci&oacute;n en Animales Dom&eacute;sticos (FBN) (Alemania), y al Instituto Nacional de la Investigaci&oacute;n Agron&oacute;mica (INRA) (Francia), la financiaci&oacute;n del proyecto de investigaci&oacute;n No. 111545221319, que dio origen a este art&iacute;culo de revisi&oacute;n.</p>  <hr>      <p><b>REFERENCIAS</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>1. Mahecha L, Angulo J, Salazar B, Cer&oacute;n M, Gallo J, Molina CH, et al. Supplementation with bypass fat in silvopastoral systems diminishes the ratio of milk saturated/unsaturated fatty acids. Trop Anim Health Prod 2008; 40:209-216.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0122-0268200900030001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Bernard L, Leroux C, Chilliard Y. Expression and Nutritional Regulation of Lipogenic Genes in the Ruminant Lactating Mammary Gland. Adv Exp Med Biol 2008; 606:67-108.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0122-0268200900030001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>3. Cruz-Hernandez C, Kramer JKG,&dagger; Kennelly JJ, Glimm DR, Sorensen BM, Okine EK, et al. Evaluating the Conjugated Linoleic Acid and <i>trans</i> 18:1 Isomers in Milk Fat of Dairy Cows Fed Increasing Amounts of Sunflower Oil and a Constant Level of Fish Oil. J Dairy Sci 2007;90: 3786-3801.</p>      <!-- ref --><p>4. Palmquist DL, Griinari JM. Milk fatty acid composition in response to reciprocal combinations of sunflower and fish oils in the diet. 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J Lipid Research 1963; 4(3):255-259.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0122-0268200900030001000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Heid HW, Keenan TW. Intracellular origin and secretion of milk fat globules. Eur J Cell Biol 2005; 84(2-3):245-58.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0122-0268200900030001000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Bauman DE, Perfield JW, Harvatine KJ, Baumgard LH. Regulation of Fat Synthesis by Conjugated Linoleic Acid: Lactation and the Ruminant model. 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Livest Prod Sci 2001; 70:3-14.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0122-0268200900030001000016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Angulo J, Mahecha L, Giraldo CA, Olivera M. Prostaglandinas y grasa de la leche. S&iacute;ntesis a partir de &aacute;cidos grasos poliinsaturados, en bovinos. En: Bioqu&iacute;mica, nutrici&oacute;n y alimentaci&oacute;n de la vaca. Medell&iacute;n-Colombia: Editorial Biog&eacute;nesis; 2005.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0122-0268200900030001000017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Angulo J, Olivera M. Fisiolog&iacute;a de la producci&oacute;n l&aacute;ctea en bovinos: Involuci&oacute;n de la gl&aacute;ndula mamaria, l&aacute;ctogenesis, galactopoyesis y eyecci&oacute;n de la leche. En: Buenas Pr&aacute;cticas de producci&oacute;n de leche: contexto socioecon&oacute;mico, morfofisiol&oacute;gico, sanitario y normativo. Medell&iacute;n- Colombia: Editorial Biog&eacute;nesis; 2008.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0122-0268200900030001000018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Chilliard Y, Ferlay A, Mansbridge RM, Doreau M. Ruminant milk fat plasticity: nutritional control of saturated, polyunsaturated, trans and conjugated fatty acids. Ann Zoot 2000; 49:181-205.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0122-0268200900030001000019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. DePeters EJ, German JB, Taylor SJ, Essex ST, Perez-Monti H. Fatty Acid and Triglyceride Composition of Milk Fat from Lactating Holstein Cows in Response to Supplemental Canola Oil. J Dairy Sci 2001; 84:929-936.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0122-0268200900030001000020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Cooper G.M. The Cell: A Molecular Approach 2d ed. Amer. Soc. Microbiol., Washington: and Sinauer Assoc., Sunderland, MA. Cap III: Cell Structure and function; 2000.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0122-0268200900030001000021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Moon YS, Latasa MJ, Griffin MJ, Sul HS. Suppression of fatty acid synthase promoter by polyunsaturated fatty acids. J Lipid Res 2002; 43(5):691-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0122-0268200900030001000022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Peterson D, Matitashvilli E, Bauman D.The inhibitory effect of <i>trans</i>-10 <i>cis</i>-12 CLA on lipid synthesis in bovine mammary epithelial cells involves reduced proteolytic activation of the transcription factor SREBP-1. J nutr 2004; 134 (10):2523-2527.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0122-0268200900030001000023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Jayan G, and Herbein J. "Healthier" dairy fat using <i>trans</i>-vaccenic acid. Nutr Food Sci 30 (6):304-309, 2000.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0122-0268200900030001000024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. Keating A, Kennelly J, Zhao F. Characterization and regulation of the bovine stearoyl-CoA desaturase gene promoter. Biochem Biophys Res Commun 2006; 344:233-240.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0122-0268200900030001000025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. Hansen HO, Knudsen J. Effect of exogenous long-chain fatty acids on lipid biosynthesis in dispersed ruminant mammary gland epithelial cells: Esterification of long-chain exogenous fatty acids. J Dairy Sci 1987; 70: 1344- 1349.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0122-0268200900030001000026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. Yonezawa T, Yonekura S, Kobayashi Y, Hagino A, Katoh A, Obara Y. Effects of Long-Chain Fatty Acids on Cytosolic Triacylglycerol Accumulation and Lipid Droplet Formation in Primary Cultured Bovine Mammary Epithelial Cells. J Dairy Sci 2004; 87:2527-2534.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0122-0268200900030001000027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. Enjalbert F, Nicot MC, Bayourthe C, Moncoulon R. Odenal Infusions of Palmitic, Stearic or Oleic Acids Differently Affect Mammary Gland Metabolism of Fatty Acids in Lactating Dairy Cows. J Nutr 1998; 128(9):1525-32.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0122-0268200900030001000028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29. Ahnadi CE, Beswick N, Delbecchi L, Kennelly JJ, Lacasse P. Addition of fish oil to diets for dairy cows. II. Effects on milk fat and gene expression of mammary lipogenic enzymes. J Dairy Res 2002; 69(4):521-31.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0122-0268200900030001000029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30. Rego OA, Rosaa HJD, Portugalb P, Cordeiroa R, Borbaa AES, Vouzelaa CM et al. Influence of dietary fish oil on conjugated linoleic acid, omega-3 and other fatty acids in milk fat from grazing dairy cows. Livest Prod Sci 2005; 95:27- 33.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0122-0268200900030001000030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31. Harvatine K, Bauman DE. SREBP1 and Thyroid Hormone Responsive Spot 14 (S14) Are Involved in the Regulation of Bovine Mammary Lipid Synthesis during Diet-Induced Milk Fat Depression and Treatment with CLA. J Nutr 2006; 136:2468-2474.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0122-0268200900030001000031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32. Perfield JW, Lock AL, Griinari JM, Saeb&oslash; A, Delmonte P, Dwyer DA et al. trans- 9, cis-11 conjugated linoleic acid reduces milk fat synthesis in lactating dairy cows. J Dairy Sci 2007; 90(5):2211-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0122-0268200900030001000032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>33. Murrieta CM, Hess BW, Scholljegerdes EJ, Engle TE, Hossner KL, Moss GE et al. Evaluation of milk somatic cells as a source of mRNA for study of lipogenesis in the mammary gland of lactating beef cows supplemented with dietary highlinoleate safflower seeds. J Anim Sci 2006; 84:2399-2405.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0122-0268200900030001000033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>34. Vernia S. Estudio del factor de transcripci&oacute;n SREBP1 en estados de resistencia a insulina. &#91;Tesis Doctoral&#93;. Valencia: Departamento de Bioqu&iacute;mica y Biolog&iacute;a Molecular. Consejo Superior de Investigaciones Cient&iacute;ficas Instituto de Biomedicina de Valencia. Universidad de Valencia; 2007.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0122-0268200900030001000034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>35. Feuermann Y, Mabjeesh SJ, Niv-Spector L, Levin D, Shamay A. Prolactin affects leptin action in the bovine mammary gland via the mammary fat pad. J Endocrinol 2006; 191(2):407-13.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0122-0268200900030001000035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>36. Castro-Bola&ntilde;os M, Herrera-Ram&iacute;rez C, Lutz-Cruz G. Composici&oacute;n, caracterizaci&oacute;n y potencial aterog&eacute;nico de aceites, grasas y otros derivados producidos o comercializados en Costa Rica. Acta Med Costarric 2005; 47(1).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0122-0268200900030001000036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>37. Valenzuela A, Sanhueza J, Nieto S. El uso de l&iacute;pidos estructurados en la nutrici&oacute;n: una tecnolog&iacute;a que abre nuevas perspectivas en el desarrollo de productos innovadores. Rev chil nutr 2002; 29(2):106-115.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0122-0268200900030001000037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>38. Chardigny JM, Masson E, Sergiel JP, Darbois M, Loreau O, No&euml;l JP et al. The position of rumenic acid on triacylglycerols alters its bioavailability in rats. J Nutr 2003; 133(12):4212-4.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0122-0268200900030001000038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>39. Karupaiah T, Sundram K. Effects of stereospecific positioning of fatty acids in triacylglycerol structures in native and randomized fats: a review of their nutritional implications. Nutr Metab 2007; 4:16:1-17.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0122-0268200900030001000039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>40. Christie WW, Clapperton JL. Structures of the triglycerides of cows' milk, fortified milks (including infant formulae), and human milk. Int J Dairy Tech 1982; 35:22-24.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0122-0268200900030001000040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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