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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Both productivity and profitability in cattle operations are depending on the physiologic capacity of the cow to obtain one calf per year. The most important fact for achieving this goal is reducing the postpartum period, when pulses of luteinizing hormone (LH) are not enough to allow a final development and ovulation of dominant follicles. Two main factors affect this phenomenon: nutrition and suckling. Several metabolic signals act over the hypotalamus-hypophysis axis indicating the energy balance and allowing the onset of gonadotropin releasing hormone (GnRH) secretion and the onset of cycling. On the other hand, the calf generates endogenous endorphins secretion and inhibition of GnRH release. Further modulators of nutrition and suckling effects are age, parity, breed, heat stress and social factors (male and female effect). Generally, after the first ovulation, a short estrous cycle is shown, probably because of an early luteolisis in response to prostaglandin F2 alpha (PGF2&alpha;) release by the uterus; however, progesterone released by the short estrous cycle corpus luteum plays an important role on the establishment of the subsequent cyclicity.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p><font size=2 face="verdana"><b>REVISI&Oacute;N DE LITERATURA</b></font></p>      <p>    <center><font size=4 face="verdana"><b>ANESTRO POSPARTO EN GANADO BOVINO EN EL TR&Oacute;PICO</b></font></p>      <p><font size=4 face="verdana"><b>POSTPARTUM ANESTRUS IN CATTLE IN THE TROPIC</b></p>      <p><font size=2 face=verdana>Giovanni B&aacute;ez S*, M.Sc, Henry Grajales L, Ph.D.</center></p>      <p>Universidad Nacional de Colombia, Facultad de Medicina Veterinaria y de Zootecnia, Departamento de Ciencias para la Producci&oacute;n Animal, Grupo de investigaci&oacute;n en Fisiolog&iacute;a de la Reproducci&oacute;n. Bogot&aacute;, Colombia. *Correspondencia: <a href="mailto: gmbaezs@unal.edu.co">gmbaezs@unal.edu.co</a> </p>      <p><font face="verdana" size="2">Recibido: Noviembre 7 de 2008; Aceptado: Agosto 30 de 2009</font></p>  <hr>  <font size=3 face="verdana">      <p><b>RESUMEN</b></p>      <p>La productividad y rentabilidad de las empresas ganaderas depende en gran medida de la capacidad fisiol&oacute;gica de las hembras para cumplir con el objetivo de tener una cr&iacute;a por a&ntilde;o. Un factor determinante para lograrlo es reducir al m&aacute;ximo el periodo de anestro posparto, que es el tiempo luego del parto durante el cual no existen suficientes niveles puls&aacute;tiles de hormona luteinizante (LH) que permitan un desarrollo final del fol&iacute;culo y la consiguiente ovulaci&oacute;n. Dos factores intervienen principalmente en este fen&oacute;meno: la nutrici&oacute;n y el amamantamiento. Existen se&ntilde;ales metab&oacute;licas que indican al eje hipot&aacute;lamo-hip&oacute;fisis que se ha alcanzado un equilibrio en el balance energ&eacute;tico para que este inicie la secreci&oacute;n de hormona liberadora de gonadotropinas (GnRH) y se inicie el restablecimiento de la actividad reproductiva. Por su parte, el estimulo que ejerce el ternero sobre la vaca genera secreci&oacute;n de endorfinas end&oacute;genas a nivel hipotal&aacute;mico que tambi&eacute;n van a inhibir la liberaci&oacute;n de GnRH. Otros factores que modulan los efectos de la nutrici&oacute;n y el amamantamiento son la edad, numero de partos, raza, estr&eacute;s cal&oacute;rico y factores sociales (efecto macho y hembra). Generalmente, luego de la primera ovulaci&oacute;n, se presenta un ciclo estral de corta duraci&oacute;n que corresponde a una luteolisis temprana en respuesta a la prostaglandina F2 alfa (PGF2&alpha;) de origen uterino; sin embargo, los niveles de progesterona producidos durante este corto periodo ejercen un importante papel en el establecimiento de la ciclicidad subsecuente.</p>      <p><b>Palabras clave</b>: Nutrici&oacute;n, amamantamiento, crecimiento folicular, ovulaci&oacute;n, ciclicidad.</p>  <hr>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>ABSTRACT</b></p>      <p>Both productivity and profitability in cattle operations are depending on the physiologic capacity of the cow to obtain one calf per year. The most important fact for achieving this goal is reducing the postpartum period, when pulses of luteinizing hormone (LH) are not enough to allow a final development and ovulation of dominant follicles. Two main factors affect this phenomenon: nutrition and suckling. Several metabolic signals act over the hypotalamus-hypophysis axis indicating the energy balance and allowing the onset of gonadotropin releasing hormone (GnRH) secretion and the onset of cycling. On the other hand, the calf generates endogenous endorphins secretion and inhibition of GnRH release. Further modulators of nutrition and suckling effects are age, parity, breed, heat stress and social factors (male and female effect). Generally, after the first ovulation, a short estrous cycle is shown, probably because of an early luteolisis in response to prostaglandin F2 alpha (PGF2&alpha;) release by the uterus; however, progesterone released by the short estrous cycle corpus luteum plays an important role on the establishment of the subsequent cyclicity.</p>      <p><b>Key words</b>: Nutrition, suckling, folicullar growth, ovulation, ciclicity.</p>  <hr>      <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>      <p>La ganader&iacute;a en el tr&oacute;pico se caracteriza por presentar una baja producci&oacute;n por animal, as&iacute; como por fluctuaciones entre &eacute;pocas, ya que durante la &eacute;poca de lluvias los animales se encuentran relativamente bien alimentados, produciendo a su m&aacute;xima capacidad; pero en la &eacute;poca seca la alimentaci&oacute;n es pobre, reduciendo notablemente la producci&oacute;n (1).</p>      <p>La productividad ganadera en t&eacute;rminos de carne y leche es dependiente del desempe&ntilde;o reproductivo, y este a su vez se encuentra &iacute;ntimamente relacionado con la fertilidad. De esta manera un intervalo entre partos normal incrementa tanto el n&uacute;mero de terneros nacidos como la cantidad de leche producida por vaca durante la vida &uacute;til.</p>      <p>El objetivo general de esta revisi&oacute;n fue compilar algunos aspectos determinantes del per&iacute;odo fisiol&oacute;gico de posparto, haciendo &eacute;nfasis en los factores que lo afectan particularmente en las regiones tropicales.</p>      <p><b>FISIOLOG&Iacute;A DEL POSPARTO</b></p>      <p>El anestro postparto se puede definir como el per&iacute;odo despu&eacute;s del parto durante el cual las vacas no muestran se&ntilde;ales conductuales de estro (2). La primera ovulaci&oacute;n posparto se presenta cuando existe un fol&iacute;culo dominante y pulsos de LH (Hormona Luteinizante) cada hora (3). Durante el posparto temprano los pulsos de LH son secretados cada 3 a 6 h (4).</p>      <p>Los principales factores que afectan la duraci&oacute;n del anestro postparto son el estado nutricional (condici&oacute;n corporal) y el amamantamiento. Algunos otros factores como la raza, edad, n&uacute;mero de partos, producci&oacute;n de leche, temporada de parto, presencia del toro, involuci&oacute;n uterina, distocias y estado de salud general modulan los efectos provocados por estos dos factores principales (5).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>NUTRICI&Oacute;N</b></p>      <p><b>Balance energ&eacute;tico</b>. El balance energ&eacute;tico negativo reduce la disponibilidad de glucosa e incrementa la movilizaci&oacute;n de reservas corporales. El metabolismo basal, la actividad, el crecimiento y la lactancia tienen prioridad sobre los procesos reproductivos, como el reinicio de la ciclicidad y el establecimiento y mantenimiento de una nueva pre&ntilde;ez (6)</p>      <p>Un inadecuado consumo de nutrientes en relaci&oacute;n con las demandas metab&oacute;licas es un factor que contribuye a prolongar el anestro posparto y aunque la naturaleza de estos factores y sus interacciones es compleja y poco conocida, muchos de ellos parecen actuar por v&iacute;a de mecanismos hormonales (7). La transici&oacute;n de un balance energ&eacute;tico negativo a uno positivo durante la lactancia est&aacute; asociada al incremento en la frecuencia de pulsos de LH (8), lo cual sugiere que la secreci&oacute;n puls&aacute;til de LH puede ser inhibida hasta tanto no se alcance el nadir del balance energ&eacute;tico.</p>      <p>En vacas de leche se ha relacionado el intervalo entre partos y la primera ovulaci&oacute;n con el estatus metab&oacute;lico (9), encontrando una relaci&oacute;n inversamente proporcional entre balance energ&eacute;tico y la reanudaci&oacute;n de actividad ov&aacute;rica. Canfield y Butler (8), encontraron que la primera ovulaci&oacute;n ocurri&oacute; aproximadamente a los 14 d&iacute;as despu&eacute;s del m&aacute;ximo balance energ&eacute;tico negativo. En ganado criollo se report&oacute; el nadir entre los d&iacute;as 50-60 posparto (10). Galina y Arthur (11) reportan para vacas <i>Bos indicus</i> en condiciones normales de explotaci&oacute;n valores m&iacute;nimos entre los 90 y 120 d&iacute;as posparto y una ligera recuperaci&oacute;n hasta los 180 d&iacute;as.</p>      <p>En regiones tropicales, vacas que paren con condici&oacute;n corporal aceptable y que mantienen esta condici&oacute;n durante el posparto, tienen mayores tasas reproductivas que vacas con baja condici&oacute;n (11).</p>      <p><b>Hormonas metab&oacute;licas</b>. En los primeros estudios relacionados con la interacci&oacute;n nutrici&oacute;n-reproducci&oacute;n (6), se establec&iacute;a que las concentraciones de glucosa en sangre relacionan el estado nutricional con la funci&oacute;n reproductiva en el hipot&aacute;lamo. Vacas con concentraci&oacute;n de glucosa reducida disminuyen su cantidad de progesterona en plasma (12). Aunque las concentraciones de glucosa en bovinos son muy constantes en comparaci&oacute;n con monog&aacute;stricos, la insulina regula la utilizaci&oacute;n de glucosa por parte de las c&eacute;lulas. La insulina estimula la liberaci&oacute;n de GnRH de fragmentos hipotal&aacute;micos <i>in vitro</i>, cuando existe glucosa disponible (13). Tambi&eacute;n estimula la producci&oacute;n de esteroides en las c&eacute;lulas ov&aacute;ricas (14).</p>      <p>El sistema IGF (Factor Insul&iacute;nico de Crecimiento), compuesto por IGF-I, IGF-II, sus receptores y prote&iacute;nas ligantes, tienen un rol importante en la modulaci&oacute;n del nivel nutricional en el desarrollo folicular (15). El IGF-I es producido en el h&iacute;gado y tiene efectos reguladores en muchos tipos de c&eacute;lulas. Las concentraciones de IGF-I en sangre disminuyen durante la restricci&oacute;n alimenticia (16). Por lo menos seis prote&iacute;nas de uni&oacute;n de alta afinidad (IGFBP) pueden influenciar las funciones del IGF-I (17).</p>      <p>Los fol&iacute;culos sintetizan IGF-I y este influye en la funci&oacute;n ov&aacute;rica (14). Espec&iacute;ficamente, la proliferaci&oacute;n celular ov&aacute;rica y la esteroidog&eacute;nesis son estimuladas por IGF-I.</p>      <p>Los fol&iacute;culos dominantes presentan menor actividad IGFBP que los subordinados (18), esta disminuci&oacute;n puede incrementar la disponibilidad de IGF-I para las c&eacute;lulas foliculares. Adicionalmente, las concentraciones de IGFBP-4 parecen determinar cual fol&iacute;culo se vuelve dominante durante la selecci&oacute;n (19).</p>      <p>Las concentraciones plasm&aacute;ticas de estradiol est&aacute;n altamente correlacionadas con los niveles de IGF-I (20). El IGFBP-3 parece ser importante en el transporte de IGF-I hacia tejidos blanco y se ha encontrado en mayor cantidad en plasma de vacas con un fol&iacute;culo ovulatorio durante las tres primeras semanas posparto.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Desde el descubrimiento de la leptina, ha existido mucho inter&eacute;s acerca de su funci&oacute;n como se&ntilde;al de informaci&oacute;n acerca de las reservas energ&eacute;ticas (21). La restricci&oacute;n nutricional incrementa la expresi&oacute;n de receptores de leptina en el n&uacute;cleo hipotal&aacute;mico (22). El consumo de nutrientes influye sobre las cantidades de mRNA para leptina en grasa (23) y sobre las concentraciones de leptina en plasma. Las concentraciones de leptina en plasma disminuyen durante el balance energ&eacute;tico negativo.</p>      <p>Dentro del sistema nervioso central, el hipot&aacute;lamo es el sitio de mayor acci&oacute;n de la leptina con respecto al control de consumo de alimento y gasto de energ&iacute;a. Numerosos estudios han evaluado la localizaci&oacute;n del receptor de RNA mensajero (mRNA) para leptina dentro del hipot&aacute;lamo (22). El hipot&aacute;lamo convierte las se&ntilde;ales de la leptina en respuestas neuronales sobre el consumo de alimento. El Neurop&eacute;ptido Y (NPY) parece ser importante en la regulaci&oacute;n del consumo. La leptina inhibe las se&ntilde;ales del NPY inhibiendo el consumo de alimento (24).</p>      <p>La administraci&oacute;n de leptina tambi&eacute;n estimula la producci&oacute;n de gonadotropinas en la hip&oacute;fisis por medio de estimulaci&oacute;n de GnRH en el hipot&aacute;lamo. En rumiantes, la administraci&oacute;n de leptina recombinante ovina en vacas de carne maduras sometidas a ayuno estimul&oacute; la secreci&oacute;n de LH. En vacas de leche ovariectomizadas afect&oacute; la secreci&oacute;n de LH en relaci&oacute;n directa con la dosis aplicada (23).</p>      <p>En un estudio realizado por Liefers et al (25), no se encontr&oacute; relaci&oacute;n entre los niveles de leptina y la primera actividad luteal posparto, aunque la leptina tiende a incrementarse durante la primera ovulaci&oacute;n, indicando la existencia de mecanismos reguladores adicionales en el hipot&aacute;lamo, hip&oacute;fisis y ovarios.</p>      <p>Durante la pre&ntilde;ez los niveles de leptina son altos y disminuyen r&aacute;pidamente luego del parto. Esta ca&iacute;da es debida a los costos energ&eacute;ticos de la producci&oacute;n de leche (26). El estimulo de la lactancia por si mismo no parece influenciar la disminuci&oacute;n de las concentraciones de leptina (27).</p>      <p><b>AMAMANTAMIENTO</b>. El amamantamiento afecta la actividad del hipot&aacute;lamo, hip&oacute;fisis y ovarios, mediante la reducci&oacute;n de liberaci&oacute;n de GnRH, la cual conduce a insuficientes pulsos de LH (28). Debido a esto los fol&iacute;culos son incapaces de madurar y por lo tanto de ovular, ya que existe una incorrecta s&iacute;ntesis de estr&oacute;genos a nivel folicular. Adicionalmente el amamantamiento genera la secreci&oacute;n a nivel hipotal&aacute;mico de bendorfina, en respuesta al estimulo de succi&oacute;n, y los estr&oacute;genos producidos en la placenta durante el &uacute;ltimo tercio de la gestaci&oacute;n provocan la inhabilitaci&oacute;n de la secreci&oacute;n de LH a trav&eacute;s de la inhibici&oacute;n en el hipot&aacute;lamo (29).</p>      <p>En el parto, las concentraciones de LH en la hip&oacute;fisis anterior se agotan debido al efecto inhibitorio de los estr&oacute;genos placentarios. El efecto inhibitorio del estradiol acaba con el parto, y al cabo de 2-3 semanas las reservas de LH son similares a las de vacas c&iacute;clicas (4). El amamantamiento del ternero prolonga la demora en la aparici&oacute;n de la secreci&oacute;n puls&aacute;til de LH, en vacas que pierden su ternero al nacimiento com&uacute;nmente muestran estro mas temprano (5). La administraci&oacute;n de antagonistas de opioides incrementa la secreci&oacute;n de LH en vacas lactantes (28). El efecto del amamantamiento es de mayor magnitud en vacas prim&iacute;paras y en vacas en baja condici&oacute;n (6), las vacas desarrollan un v&iacute;nculo con su cr&iacute;a, y el efecto del ternero propio es mayor que el de un ternero ajeno.</p>      <p>Estudios iniciales con mastectomia (6) o destete (28), sugieren que el amamantamiento inhibe la reanudaci&oacute;n de los pulsos de LH a trav&eacute;s de la estimulaci&oacute;n t&aacute;ctil, visual y olfativa.</p>      <p>En ganado Coste&ntilde;o con Cuernos (10) se observ&oacute;, en cuanto al comportamiento de amamantamiento, que las vacas amamantaban a sus cr&iacute;as en determinadas horas del d&iacute;a, mientras que la mayor parte del tiempo permanec&iacute;an solas alimentandose y las cr&iacute;as permanec&iacute;an en grupo, con presencia de una hembra nodriza.</p>      <p><b>OTROS FACTORES</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Efecto del estr&eacute;s cal&oacute;rico en el eje hipot&aacute;lamo - hip&oacute;fisis</b>. Con respecto al patr&oacute;n de secreci&oacute;n de LH en vacas bajo estr&eacute;s de calor se han reportado disminuciones en la amplitud (30) y frecuencia (31) de los pulsos. La disminuci&oacute;n de los niveles de LH durante el pico preovulatorio ha sido controversial y se ha relacionado con los niveles preovulatorios de estradiol.</p>      <p>La poca informaci&oacute;n que existe disponible acerca de el efecto del estr&eacute;s cal&oacute;rico sobre las concentraciones sangu&iacute;neas de FSH e inhibina sugieren que la FSH se incrementa y que esto puede ser debido a la disminuci&oacute;n en la producci&oacute;n de inhibina (32).</p>      <p>Wilson et al (33) encontraron que el estr&eacute;s cal&oacute;rico no tuvo efectos sobre la producci&oacute;n de progesterona pero s&iacute; retras&oacute; la luteolisis. Otros reportes han sido controversiales (33); estas diferencias probablemente se deban a otros factores no controlados como el tipo de estr&eacute;s cal&oacute;rico (agudo o cr&oacute;nico) y las diferencias en el consumo de materia seca (32).</p>      <p>Los mecanismos mediante los cuales el estr&eacute;s cal&oacute;rico afecta las concentraciones de hormonas reproductivas son desconocidos. Se ha sugerido como causa el incremento en la secreci&oacute;n de corticosteroides porque estos pueden inhibir la secreci&oacute;n de GnRH y por lo tanto de LH. La secreci&oacute;n de gonadotropinas es inhibida en mayor grado en vacas con bajas concentraciones plasm&aacute;ticas de estradiol, sugiriendo que las altas concentraciones de estradiol pueden neutralizar el efecto del estr&eacute;s cal&oacute;rico (30).</p>      <p><b>Involuci&oacute;n uterina</b>. La involuci&oacute;n uterina no est&aacute; relacionada con la duraci&oacute;n del anestro posparto (34), sin embargo, la involuci&oacute;n es una barrera f&iacute;sica en el posparto temprano tanto para el transporte del esperma como para la implantaci&oacute;n (6), muy pocas vacas pueden presentar estro tan temprano como para que la involuci&oacute;n uterina interfiera con la concepci&oacute;n, a menos que condiciones patol&oacute;gicas prolonguen la involuci&oacute;n normal.</p>      <p>La involuci&oacute;n uterina se completa dentro de las 4 a 6 semanas posparto y ocurre m&aacute;s r&aacute;pidamente en el cuerno no gr&aacute;vido de la pre&ntilde;ez anterior (35)</p>      <p><b>Edad (n&uacute;mero de partos)</b>. Debido a que las vacas de primer parto contin&uacute;an en crecimiento, la frecuencia de pulsos de LH en el posparto es menor, y el anestro posparto se prolonga de 1 a 4 semanas m&aacute;s que en vacas mult&iacute;paras (36).</p>      <p><b>Raza</b>. En vacas de lecher&iacute;a especializada, los fol&iacute;culos medianos (5-10 mm) son detectables a partir del d&iacute;a 5 posparto. El primer fol&iacute;culo dominante que se desarrolla logra la ovulaci&oacute;n entre los d&iacute;as 15 a 27 posparto en la mayor&iacute;a de vacas de leche (20).</p>      <p>En vacas de carne lactantes, fol&iacute;culos medianos se encuentran desde los d&iacute;as 5-7 posparto, y su n&uacute;mero y tama&ntilde;o se incrementa a medida que transcurre el posparto. Los fol&iacute;culos dominantes son detectables en los d&iacute;as 10-21 posparto, sin embargo, la mayor&iacute;a de estos fol&iacute;culos no llegan a ovular, debido a que sufren atresia antes de obtener el tama&ntilde;o &oacute;ptimo de ovulaci&oacute;n, posiblemente debido a la sensibilidad del eje hipot&aacute;lamo-hipofisiario al efecto de <i>feedback</i> negativo del 17 &alpha; estradiol ov&aacute;rico que retrasa el restablecimiento de los pulsos de LH (36).</p>      <p>En vacas <i>Bos indicus</i> en el tr&oacute;pico, bajo sistema de manejo extensivo con amamantamiento, la actividad ov&aacute;rica se ha caracterizado por el crecimiento y regresi&oacute;n de fol&iacute;culos de 4-6 mm con dominancia espor&aacute;dica a partir de los 26 d&iacute;as posparto, restableciendo la ciclicidad a los 217-278 d&iacute;as (37).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En ganado criollo Coste&ntilde;o con Cuernos, manejado en pastoreo continuo con amamantamiento en el valle del Sin&uacute;, se ha observado estro con ovulaci&oacute;n y reanudaci&oacute;n de la ciclicidad ov&aacute;rica a partir del d&iacute;a 51 posparto (10).</p>      <p><b>Factores sociales</b>. La presencia del macho (6), as&iacute; como las interacciones entre hembras, la presencia de otras hembras en celo y el encadenamiento de conductas sexuales en grupos de hembras, afectan la duraci&oacute;n del intervalo posparto (11).</p>      <p><b>DIN&Aacute;MICA FOLICULAR DURANTE EL POSPARTO</b></p>      <p>Aunque los papeles de las gonadotropinas y otros reguladores endocrinos de la funci&oacute;n folicular durante el postparto temprano no est&aacute;n claros, la ultrasonograf&iacute;a hace posible comparar los cambios en el desarrollo folicular ov&aacute;rico con variables endocrinas y metab&oacute;licas para encontrar el origen endocrino del anestro prolongado (38).</p>      <p>El crecimiento folicular y la habilidad de los fol&iacute;culos para producir cantidades considerables de estradiol dependen de un adecuado aporte de FSH y LH (39). La FSH controla el crecimiento folicular, mientras que la LH est&aacute; asociada con el mantenimiento de los fol&iacute;culos dominantes y la producci&oacute;n de estradiol necesaria para la inducci&oacute;n del estro, el pico preovulatorio de LH y la ovulaci&oacute;n (40). La s&iacute;ntesis de estradiol por las c&eacute;lulas de la granulosa dependen del suministro de substrato aromatizable (predominantemente androstenediona) de las c&eacute;lulas de la teca interna adyacentes y gobernadas por LH (41).</p>      <p>La reanudaci&oacute;n del crecimiento folicular luego del parto se debe al incremento de la secreci&oacute;n de FSH a los 3-4 d&iacute;as posparto en vacas bien alimentadas (42), pero la habilidad de los fol&iacute;culos para desarrollarse y ser dominantes depende de la secreci&oacute;n puls&aacute;til de LH, que a su vez refleja la secreci&oacute;n de GnRH hipotal&aacute;mico (7). La falla de los mecanismos que controlan la maduraci&oacute;n folicular incluye la inhibici&oacute;n de la liberaci&oacute;n puls&aacute;til de mayor frecuencia de LH necesaria para estimular la mayor secreci&oacute;n de estradiol, o la inhibici&oacute;n central de liberaci&oacute;n de GnRH en respuesta al estradiol (7).</p>      <p>Los patrones de crecimiento y desarrollo folicular son inconsistentes luego del parto. Algunas vacas presentan ovarios relativamente inactivos (sin crecimiento folicular mayor a 10 mm), mientras otras muestran fol&iacute;culos de di&aacute;metro mayor a 10 mm dentro de los 10 a 15 d&iacute;as despu&eacute;s del parto (43). La inactividad ov&aacute;rica puede deberse a insuficiente secreci&oacute;n de LH asociada con un inadecuado consumo de energ&iacute;a. Este tipo de anestro es com&uacute;n en vacas prim&iacute;paras en las cuales el balance energ&eacute;tico negativo es m&aacute;s evidente (43).</p>      <p>El desarrollo de ondas foliculares ocurre temprano en el posparto tanto en ganado de carne como de leche. Posteriormente al parto existe un incremento dram&aacute;tico en la FSH que es seguido por la emergencia de la primera onda folicular (2-7 d&iacute;as posparto) (44). Sin embargo, la ovulaci&oacute;n del fol&iacute;culo dominante solamente ocurre cuando este es expuesto a una adecuada frecuencia de pulsos de LH (aproximadamente 1 pulso/h), que permita el incremento en el tama&ntilde;o del fol&iacute;culo y la producci&oacute;n de estradiol, la cual eventualmente puede conllevar a un pico de LH y una ovulaci&oacute;n (45). Se ha determinado que el fol&iacute;culo dominante de la primera onda folicular ovula en el 42% de vacas holstein de alta producci&oacute;n (20) y solamente en el 11% de vacas de carne lactantes (46).</p>      <p>Los patrones de secreci&oacute;n de gonadotropinas en el periodo posparto tambi&eacute;n difieren entre <i>B. taurus</i> y <i>B. indicus</i>. Bajo las mismas condiciones, vacas <i>B. taurus</i> presentaron mayores concentraciones plasm&aacute;ticas de LH que vacas brahman, adicionalmente, una alta proporci&oacute;n de vacas <i>B. taurus</i> tienen una secreci&oacute;n puls&aacute;til de LH mayor que vacas <i>B. indicus</i> (47).</p>      <p>Periodos posparto prolongados (mas de 150 d&iacute;as) son caracter&iacute;sticos de ganado <i>Bos indicus</i> y cruces <i>B. taurus/B. indicus</i> en regiones tropicales, originando p&eacute;rdidas econ&oacute;micas debido al fracaso en alcanzar el intervalo entre partos deseable de 12 meses. Ruiz-Cortes y Olivera-Angel (37) reportan reanudaci&oacute;n de la ciclicidad estral de los 217 a los 278 d&iacute;as posparto en vacas <i>B. indicus</i> lactantes mantenidas en praderas naturales en Colombia, resultando en un intervalo entre partos de 17-19 meses; en este mismo estudio se observ&oacute; que durante los primeros seis meses despu&eacute;s del parto muchas de las vacas tuvieron periodos en los cuales los fol&iacute;culos crec&iacute;an hasta menos de 6 mm de di&aacute;metro. En ganado criollo Coste&ntilde;o con Cuernos se reporta estro con ovulaci&oacute;n a partir de los 51 d&iacute;as posparto (10).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>CICLOS ESTRALES DE CORTA DURACI&Oacute;N</b></p>      <p>Los ciclos de corta duraci&oacute;n ocurren normalmente tras la primera ovulaci&oacute;n espont&aacute;nea posparto en la mayor&iacute;a de vacas (48); la liberaci&oacute;n prematura de PGF2&alpha; por el &uacute;tero, como resultado de los efectos de la baja progesterona (49) y estradiol (50) antes de la ovulaci&oacute;n en los receptores de oxitocina y progesterona endometriales parecen ser la causa de la temprana regresi&oacute;n del cuerpo l&uacute;teo. La progesterona producida durante la fase luteal corta puede ser necesaria para el establecimiento de una funci&oacute;n luteal normal en el siguiente ciclo estral (6,19).</p>      <p>Con base en los reportes revisados en este trabajo, en conclusi&oacute;n, es evidente que el periodo de anestro posparto influye notablemente en la productividad de los sistemas ganaderos. Los principales factores que afectan este periodo son la nutrici&oacute;n y el amamantamiento, y otros factores modulan a estos primeros en mayor o menor grado. En el tr&oacute;pico, las altas temperaturas y la humedad ejercen un efecto sobre la fertilidad de dos maneras: actuando directamente sobre el eje hipot&aacute;lamo-hip&oacute;fisis, y afectando el apetito y consumo de materia seca, lo cual incide sobre el balance energ&eacute;tico del animal. Existen m&eacute;todos para controlar la baja fertilidad durante el posparto en el tr&oacute;pico, como el manejo de las condiciones ambientales, la suplementaci&oacute;n estrat&eacute;gica, el amamantamiento restringido y el uso de biotecnolog&iacute;as. Se sugiere que aunado a esto se debe considerar el uso de especies adaptadas a las condiciones particulares del tr&oacute;pico y que han demostrado una alta fertilidad en el mismo.</p>      <p>En la actualidad, alrededor del mundo se realizan numerosos trabajos relacionados con aspectos espec&iacute;ficos de la nutrici&oacute;n y el amamantamiento en el posparto, y la tendencia es profundizar en el conocimiento de aspectos celulares y moleculares cada vez m&aacute;s espec&iacute;ficos. El aumento en el conocimiento de este tema permitir&aacute; disminuir el intervalo entre partos incrementando as&iacute; la productividad en regiones tropicales.</p>  <hr>      <p><b>REFERENCIAS</b></p>      <!-- ref --><p>1. Kanuya NL, Matiko MK, Nkya R, Bittegeko SBP, Mgasa MN, Reksen O et al. Seasonal changes in nutritional status and reproductive performance of Zebu cows kept under a traditional agro-pastoral system in Tanzania. Trop Anim Health Prod 2006; 38:511-519.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0122-0268200900030001100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Montiel F, Ahuja C, Body condition and suckling as factors influencing the duration of postpartum anestrous in cattle: a review. Anim Reprod Sci 2005; 85: 1-26.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0122-0268200900030001100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Duffy P, Crowe MA, Boland MP, Roche JF. Effect of exogenous LH pulses on the fate of the first dominant follicle in postpartum beef cows nursing calves. J Reprod Fertil 2000; 118:9-17.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0122-0268200900030001100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Nett TM, Cermak D, Braden T, Manns J, Niswender G. Pituitary receptors for GnRH and estradiol and pituitary content of gonadotropins in beef cows. II. Changes during the postpartum period. Domest Anim Endocrinol 1988; 5:81-89.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0122-0268200900030001100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Wettemann RP, Lents CA, Ciccioli NH, White, FJ, Rubio I. Nutritionaland suckling-mediated anovulation in beef cows. J Anim Sci 2003; 81(Sup 2):E48-E59.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0122-0268200900030001100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Short RE, Bellow RA, Staigmiller RB, Berardinelli JG, Custer EE. Physiological mechanisms controlling anestrous and fertility in postpartum beef cattle. J Anim Sci 1990; 68: 799-816.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0122-0268200900030001100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Jolly PD, McDougall S, Fitzpatrick LA, Macmillan KL, Entwistle KW. Physiological effects of undernutrition on postpartum anoestrus in cows. J Reprod Fert 1995; 49 (Suppl.): 477-492.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0122-0268200900030001100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Canfield RW, Butler WR. Energy balance, first ovulation and the effects of naloxone on LH secretion in early postpartum dairy cows. J Anim Sci 1991; 69: 740-746.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0122-0268200900030001100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Zurek E, Foxcroft OR, Kennelly JJ. Metabolic status and interval to first ovulation in postpartum dairy cows. J Dairy Sci 1995; 78: 1909-1920.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0122-0268200900030001100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. B&aacute;ez GM, Grajales HA, P&eacute;rez JE. Caracterizaci&oacute;n del ciclo estral mediante perfiles de esteroides (progesterona, 17 &acirc;-estradiol) en la raza <i>Coste&ntilde;o con cuernos</i> (<i>Bos taurus</i>) en el tr&oacute;pico Colombiano. <i>Livestock Research for Rural Development 2007; Volume 19, Article #132</i>. Acceso marzo 31, 2009, <i>disponible en</i> <a href="http://www.cipav.org.co/ lrrd/lrrd19/9/baez19132.htm"target="_blank">http://www.cipav.org.co/ lrrd/lrrd19/9/baez19132.htm</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0122-0268200900030001100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Galina CS, Arthur GH. Review of cattle reproduction in the tropics. 3. Puerperium. Anim Breed Abstr 1989; 57: 889-910.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0122-0268200900030001100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Villa-Godoy A, Hughes, TL, Emery RS, Chapin LT, Fogwell RL. Association between energy balance and luteal function in lactating dairy cows. J Dairy Sci 1988; 71: 1063-1072.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0122-0268200900030001100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Arias P, Rodriguez M, Szwarcfarb B, Sinay IR, Moguilevsky JA. Effect of insulin on LHRH release by perifused hypothalamic fragments. Neuroendocrinology 1992; 56:415-418.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0122-0268200900030001100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Spicer LJ, Echternkamp SE. The ovarian insulin and insulin-like growth factor system with an emphasis on domestic animals. Domest Anim Endocrinol 1995; 12: 223-245.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0122-0268200900030001100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Constant F, Ponter AA, Ponsart C, Fontaine JJ, Mialot JP, Grimard B. et al.. Effect of underfeeding on plasmatic and intrafollicular IGFBPs in postpartum anoestrus beef cows. J Reprod Fertil Abstr Ser 2000; 26:15.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0122-0268200900030001100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Richards MW, Wettemann RP, Spicer LJ, Morgan GL. Nutritional anestrus in beef cows: Effects of body condition and ovariectomy on serum luteinizing hormone and insulin-like growth factor- I. Biol Reprod 1991; 44:961-966.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0122-0268200900030001100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Jones JI, Clemmons DR. Insulin-like growth factors and their binding proteins: Biological actions. Endocr Rev 1995; 16:3-34.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0122-0268200900030001100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Yuan W, Bao B, Garverick HA, Youngquist RS, Lucy MC. Follicular dominance in cattle is associated with divergent patterns of ovarian gene expression for insulin-like growth factor (IGF)-I, IGFII, and IGF binding protein-2 in dominant and subordinate follicles. Domest Anim Endocrinol 1998; 15: 55-63.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0122-0268200900030001100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Mihm. M. Delayed resumption of cyclicity in postpartum dairy and beef cows. Reprod Domest Anim 1999: 34:276-284.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0122-0268200900030001100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Butler WR. Energy balance relationships with follicular development, ovulation and fertility in postpartum dairy cows. Livest Prod Sci 2003; 83: 211-218.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0122-0268200900030001100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Spicer LJ. Leptin: A possible metabolic signal affecting reproduction. Domest Anim Endocrinol 2001; 21: 251-270.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0122-0268200900030001100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Dyer CJ, Simmons JM, Matteri RL, Keisler DH. Leptin receptor mRNA is expressed in ewe anterior pituitary and adipose tissues and is differentially expressed in hypothalamic regions of well-fed and feed-restricted ewes. Domest Anim Endocrinol 1997; 14:119-128.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0122-0268200900030001100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Amstalden M, Garcia MR, Williams SW, Stanko RL, Nizielski SE, Morrison SD. et al. Leptin gene expression, circulating leptin, and luteinizing hormone pulsatility are acutely responsive to short-term fasting in prepubertal heifers: Relationships to circulating insulin and insulin-like growth factor-I. Biol Reprod 2000; 63:127-133.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0122-0268200900030001100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Jang M, Mistry A, Swick AG, Romsos DR. Leptin rapidly inhibits hypothalamic neuropeptide Y secretion and stimulates corticotropin-releasing hormone secretion in adrenalectomized mice. J Nutr 2000; 130(11): 2813-20.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0122-0268200900030001100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. Liefers SC, Veerkamp RF, Te Pas MFW, Chilliard Y, Van der Lende T. Genetics and physiology of leptin in periparturient dairy cows. Domest Anim Endocrinol 2005; 29(1):227-238.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0122-0268200900030001100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. Block SS, Butler WR, Ehrhardt RA, Bell AW, Van Amburgh ME, Boisclair YR. Decreased concentration of plasma leptin in periparturient dairy cows is caused by negative energy balance. J Endocrinol 2001; 171(2):339-48.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0122-0268200900030001100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. Brogan RS, Mitchell SE, Trayhurn P, Smith MS. Suppression of leptin during lactation: contribution of the suckling stimulus versus milk production. Endocrinology 1999; 140(6):2621-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0122-0268200900030001100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. Williams GL, Gazal, OS, Guzman Vega GA, Stanko RL. Mechanisms regulatin suckling-mediated anovulation in the cow. Anim Reprod Sci 1996; 42: 289-297.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0122-0268200900030001100028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29. Day ML. Hormonal induction of estrous cycles in anestrous bos taurus beef cows. Anim Reprod Sci 2004; 82-83:487-494.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0122-0268200900030001100029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30. Gilad E, Meidan R, Berman A, Graber Y, Wolfenson D. Effect of heat stress on tonic and GnRH-induced gonadotrophin secretion in relation to concentration of oestradiol in plasma of cyclic cows. J Reprod Fertil 1993; 99:315-21.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0122-0268200900030001100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31. Wise ME, Armstrong DV, Huber JT, Hunter R, Wiersma F. Hormonal alterations in the lactating dairy cow in response to thermal stress. J Dairy Sci 1988; 71:2480-2485.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0122-0268200900030001100031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32. De Rensis F, Scaramuzzi RJ. Heat stress and seasonal effects on reproduction in the dairy cow - a review. Theriogenology 2003; 60:1139-1151.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0122-0268200900030001100032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>33. Wilson SJ, Marion RS, Spain JN, Spiers DE, Keisler DH, Lucy MC. Effect of controlled heat stress on ovarian function in dairy cattle: I. Lactating cows. J Dairy Sci 1998; 1:2124-2131.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0122-0268200900030001100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>34. Kiracofe GH. Uterine involution: Its role in regulating postpartum intervals. J Anim Sci 1980; 51(Supp 2):16-28.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0122-0268200900030001100034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>35. Spicer LJ, Leung K, Convey EM, Gunther J, Short RE, Tucker HA. Anovulation in postpartum suckled beef cows. I. Associations among size and numbers of ovarian follicles, uterine involution, and hormones in serum and follicular fluid. J Anim Sci 1986; 62:734-741.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0122-0268200900030001100035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>36. Yavas Y, Walton JS. Postpartum aciclicity in suckled beef cows: a review. Theriogenology 2000; 54: 25-55.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0122-0268200900030001100036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>37. Ruiz-Cortez ZT, Olivera-Angel M,. Ovarian follicular dynamics in suckled zebu (<i>Bos indicus</i>) cows monitored by real time ultrasonography. Anim Reprod Sci 1999; 54:211-220.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0122-0268200900030001100037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>38. Stagg K, Diskin MG, Sreenan JM, Roche JF. Follicular development in long-term anoestrus suckler beef cows fed two levels of energy postpartum. Anim Reprod Sci 1995; 38:49-61.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0122-0268200900030001100038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>39. Driancourt, MA. Follicular dynamics in sheep and cattle. Theriogenology 1991; 35:55-79.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0122-0268200900030001100039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>40. Fortune JE. Ovarian follicular growth and development in mammals. Biol Reprod 1994; 50:225-232.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0122-0268200900030001100040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>41. McNatty, KP, Heath DA, Henderson KM, Lun S, Hurst PR, Ellis LM. et al. Some aspects of thecal and granulosa cell function during follicular development in the bovine ovary. J Reprod Fertil 1984; 72:39-53.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0122-0268200900030001100041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>42. Lamming GE, Wathes DC, Peters AR. Endocrine patterns in the post-partum cow. J Reprod Fert 1981; 30(Supp): 155-170.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0122-0268200900030001100042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>43. Lucy MC, Savio JD, Badinga L, De La Sota RL, Thatcher WW. Factors That Affect Ovarian Follicular Dynamics in Cattle. J Anim Sci 1992; 70:3615-3626.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0122-0268200900030001100043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>44. Wiltbank MC, Gumen A, Sartori R, Physiological classification of anovulatory conditions in cattle. Theriogenology 2002; 57:21-52.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0122-0268200900030001100044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>45. Roche JF, Crowe MA, Boland MP. Postpartum anestrus in dairy and beef cows. Anim Reprod Sci 1992; 28:371- 378.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0122-0268200900030001100045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>46. Murphy MG, Boland MP, Roche JF. Pattern of follicular growth and resumption of ovarian activity in postpartum beef suckler cows. J Reprod Fertil 1990; 90(2):523-533.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0122-0268200900030001100046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>47. D'Occhio MJ, Neish A, Broadhurst L. Differences in gonadotrophin secretion post partum between Zebu and European breed cattle. Anim Reprod Sci 1990; 22:311-317.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0122-0268200900030001100047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>48. Day ML, Dyer RM, Wilson GW, Pope WF. Influence of estradiol on duration of anestrus and incidence of short estrous cycles in postpartum cows. Domest Anim Endocrinol 1990; 7:19-25.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0122-0268200900030001100048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>49. Zollers WG, Garverick HA, Smith MF, Moffatt RJ, Salfen BE, Youngquist RS. Concentrations of progesterone and oxytocin receptors in endometrium of post partum cows expected to have a short or normal oestrous cycle. J Reprod Fertil 1993; 97:329-337.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0122-0268200900030001100049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>50. Mann GE, Lamming GE. The role of suboptimal preovulatory oestradiol secretion in the aetiology of premature luteolysis during the short oestrous cycle in the cow. Anim Reprod Sci 2000; 64(3-4):171-80.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0122-0268200900030001100050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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