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<journal-title><![CDATA[Revista MVZ Córdoba]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Universidad de Córdoba - Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia.]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de gonadotropinas sobre la maduración y desarrollo embrionario de oocitos bovinos cultivados in vitro]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of gonadotropins on the maturation and embryo development of bovine oocytes cultured in vitro]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad de Córdoba Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia Departamento de Ciencias Pecuarias]]></institution>
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<institution><![CDATA[,Ejercicio particular  ]]></institution>
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<fpage>1954</fpage>
<lpage>1960</lpage>
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<self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0122-02682010000100008&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0122-02682010000100008&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0122-02682010000100008&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Objetivo. Evaluar el efecto de las hormonas FSH y LH sobre las tasas de maduración, fertilización y desarrollo embrionario in vitro. Materiales y métodos. Se utilizaron 1309 oocitos de ovarios de matadero, donde el medio base fue TCM-199 suplementado (FSH y LH) y se conformaron cuatro tratamientos al azar: T1: sin hormonas, T2: 50 µg/ml FSH + 150 µg/ml LH; T3: 100 µg/ml FSH + 100 µg/ml LH y T4: 150 µg/ml FSH + 50 µg/ml LH. Resultados. No se presentó efecto (p>0.05) de los tratamientos suplementados con FSH y LH sobre la tasa de maduración; por el contrario, T1 fue diferente (p<0.05) a los demás tratamientos. Se presentó efecto (p<0.05) entre los tratamientos suplementados con FSH y LH sobre las tasas de fertilización. La tasa de divisiones tempranas, no presentaron efecto (p>0.05) cuando el medio de maduración fue suplementado con FSH y LH. Conclusiones. La adición de LH en mayor proporción con respecto a la FSH en el medio de maduración induce una mayor tasa de maduración, fecundación y desarrollo embrionario in vitro a partir de oocitos bovinos recuperados postmortem.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective. To evaluate the effect of FSH and LH on the maturation rates, fertilization and embryo development in vitro. Materials and methods. 1309 oocytes were used slaughterhouse ovaries, where the basal medium was TCM-199 plus (FSH and LH) and four treatments were randomized: T1: no hormones, T2: 50 g / ml FSH + 150 g / ml LH; T3: 100 ng / ml FSH + 100 ng / ml LH and T4: 150 g / ml FSH + 50 g / ml LH. Results. No effect was found (p>0.05) from treatments supplemented with FSH and LH on the rate of maturation, by contrast, T1 was different (p<0.05) than the other treatments. Effect was presented (p<0.05) among treatments supplemented with FSH and LH on the rates of fertilization. The rate of early divisions, had no effect (p> 0.05) when maturation medium was supplemented with FSH and LH. Conclusions. The addition of LH to a greater extent with respect to FSH in maturation medium induces a higher rate of maturation, fertilization and embryo development in vitro from bovine oocytes recovered postmortem.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Oocito]]></kwd>
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<kwd lng="es"><![CDATA[maduración in vitro]]></kwd>
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<kwd lng="en"><![CDATA[in vitro maturation]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[    <font face="verdana" size="2">      <p align="right"><b>ORIGINAL</b></p>      <p align="center"><b><font size="3">Efecto de gonadotropinas sobre la maduraci&oacute;n y desarrollo embrionario de oocitos bovinos cultivados <i>in vitro</i></font></b></p>      <p align="center"><b><font size="3">Effect of gonadotropins on the maturation and embryo development of bovine oocytes cultured <i>in vitro</i></font></b></p>      <br>      <p><b>Roger Salgado O</b>,<sup>1</sup>* <b>M.Sc, Oscar Vergara G</b>,<sup>1</sup> <b>Ph.D, Leonardo Ramirez P</b>,<sup>2</sup> <b>MVZ</b></p>     <p><sup>1</sup>Universidad de C&oacute;rdoba, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Departamento de Ciencias Pecuarias. Monter&iacute;a, Colombia.    <br>  <sup>2</sup>Ejercicio particular.</p>      <p>*Correspondencia: <a href="mailto:rdsalgado@sinu.unicordoba.edu.co">rdsalgado@sinu.unicordoba.edu.co</a></p>     <p>Recibido: Enero 20 de 2009; Aceptado: Agosto 20 de 2009.</p>  <hr>        ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>RESUMEN</b></p>      <p><b>Objetivo. </b>Evaluar el efecto de las hormonas FSH y LH sobre las tasas de maduraci&oacute;n, fertilizaci&oacute;n y desarrollo embrionario <i>in vitro</i>. <b>Materiales y m&eacute;todos.</b> Se utilizaron 1309 oocitos de ovarios de matadero, donde el medio base fue TCM-199 suplementado (FSH y LH) y se conformaron cuatro tratamientos al azar: T1: sin hormonas, T2: 50 &micro;g/ml FSH + 150 &micro;g/ml LH; T3: 100 &micro;g/ml FSH + 100 &micro;g/ml LH y T4: 150 &micro;g/ml FSH + 50 &micro;g/ml LH. <b>Resultados.</b> No se present&oacute; efecto (p&gt;0.05) de los tratamientos suplementados con FSH y LH sobre la tasa de maduraci&oacute;n; por el contrario, T1 fue diferente (p&lt;0.05) a los dem&aacute;s tratamientos. Se present&oacute; efecto (p&lt;0.05) entre los tratamientos suplementados con FSH y LH sobre las tasas de fertilizaci&oacute;n. La tasa de divisiones tempranas, no presentaron efecto (p&gt;0.05) cuando el medio de maduraci&oacute;n fue suplementado con FSH y LH. <b>Conclusiones.</b> La adici&oacute;n de LH en mayor proporci&oacute;n con respecto a la FSH en el medio de maduraci&oacute;n induce una mayor tasa de maduraci&oacute;n, fecundaci&oacute;n y desarrollo embrionario <i>in vitro</i> a partir de oocitos bovinos recuperados postmortem.</p>      <p><b>Palabras clave:</b> Oocito, FSH, LH, maduraci&oacute;n <i>in vitro</i>.</p>  <hr>      <p><b>ABSTRACT</b></p>      <p><b>Objective. </b>To evaluate the effect of FSH and LH on the maturation rates, fertilization and embryo development <i>in vitro</i>. <b>Materials and methods.</b> 1309 oocytes were used slaughterhouse ovaries, where the basal medium was TCM-199 plus (FSH and LH) and four treatments were randomized: T1: no hormones, T2: 50 g / ml FSH + 150 g / ml LH; T3: 100 ng / ml FSH + 100 ng / ml LH and T4: 150 g / ml FSH + 50 g / ml LH. <b>Results. </b>No effect was found (p&gt;0.05) from treatments supplemented with FSH and LH on the rate of maturation, by contrast, T1 was different (p&lt;0.05) than the other treatments. Effect was presented (p&lt;0.05) among treatments supplemented with FSH and LH on the rates of fertilization. The rate of early divisions, had no effect (p&gt; 0.05) when maturation medium was supplemented with FSH and LH. <b>Conclusions.</b> The addition of LH to a greater extent with respect to FSH in maturation medium induces a higher rate of maturation, fertilization and embryo development <i>in vitro</i> from bovine oocytes recovered postmortem.</p>      <p><b>Key words:</b> Oocyte, FSH, LH, <i>in vitro</i> maturation.</p>  <hr>      <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>      <p>La producci&oacute;n de embriones bovinos <i>in vitro</i> trae consigo ventajas como el aprovechamiento de las hembras de alto valor gen&eacute;tico para la obtenci&oacute;n de gran cantidad de descendientes, disminuci&oacute;n del intervalo generacional y por ende aceleraci&oacute;n del mejoramiento y homogeneidad del componente gen&eacute;tico de los hatos ganaderos. Sin embargo, esta t&eacute;cnica tiene limitaciones debido a la baja habilidad de desarrollo al estadio de blastocitos de los oocitos mam&iacute;feros madurados <i>in vitro</i> (1, 2) ya que muchos de los factores que afectan el proceso de maduraci&oacute;n <i>in vivo</i> aun son desconocidos (3).</p>       <p>Los componentes y las condiciones de los medios de cultivo pueden afectar la regulaci&oacute;n meiotica de los oocitos mam&iacute;feros cultivados <i>in vitro</i> (4, 5). Las gonadotropinas hipofisiarias juegan un rol muy importante en la regulaci&oacute;n de la maduraci&oacute;n de los oocitos (6-8). La hormona fol&iacute;culo estimulante (FSH) act&uacute;a en la maduraci&oacute;n <i>in vitro</i> a trav&eacute;s de las c&eacute;lulas del <i>cumulus</i>, estimulando la producci&oacute;n de &aacute;cido hialur&oacute;nico y la expansi&oacute;n de estas c&eacute;lulas, el cual facilita la capacitaci&oacute;n esperm&aacute;tica, mejor&aacute;ndose as&iacute; la fertilizaci&oacute;n y el desarrollo embrionario (9). La hormona luteinizante (LH) estimula la progresi&oacute;n de la meiosis en el oocito del estado de profase a metafase II, en preparaci&oacute;n para la fertilizaci&oacute;n, mediante un decremento del cAMP en el oocito, lo cual es necesario para la transici&oacute;n de profase a metafase (10-13). </p>      <p>Las hormonas LH y FSH, son com&uacute;nmente utilizadas en la suplementaci&oacute;n de los medios de maduraci&oacute;n ya sean independientes o en combinaci&oacute;n y en diferentes concentraciones, lo que conlleva a variabilidad entre los resultados de diferentes investigaciones. El objetivo del presente estudio fue evaluar el efecto de las hormonas FSH y LH en  diferentes combinaciones y concentraciones en la capacidad de desarrollo de embriones bovinos producidos <i>in vitro</i>.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>      <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>      <p><b>Sitio de estudio.</b> El estudio se realiz&oacute; en el Laboratorio de Biotecnolog&iacute;a de la Reproducci&oacute;n animal "LABRA" de la Universidad de C&oacute;rdoba, ubicado en el corregimiento de Ber&aacute;stegui, municipio de Ci&eacute;naga de Oro, C&oacute;rdoba, Colombia. La zona se encuentra en un bosque h&uacute;medo tropical, altura de 10 msnm, temperatura promedio de 32&deg;C, humedad relativa de 84% y precipitaci&oacute;n anual de 1100 mm (14). </p>      <p><b>Recolecci&oacute;n de ovarios y oocitos.</b> Los ovarios fueron obtenidos en el matadero municipal de Ceret&eacute;, C&oacute;rdoba y transportados al laboratorio en soluci&oacute;n salina (NaCl 0.9%) suplementada con 100 &micro;g/ml de estreptomicina a 35&deg;C. Los oocitos fueron colectados por el m&eacute;todo de aspiraci&oacute;n directa de los fol&iacute;culos que ten&iacute;an entre 2 y 5 mm de di&aacute;metro con jeringa de 10 ml y aguja calibre 18. Una vez aspirados, el contenido de la jeringa fue depositado en una placa de petri de 90 mm para colectar y clasificar los oocitos grado I y II. </p>      <p><b>Maduraci&oacute;n <i>in vitro</i>. </b>Los oocitos fueron lavados en medio de maduraci&oacute;n TCM 199 suplementado con 10% de SFB, 0.3 mM de piruvato de Na, 75 &micro;g/ml de gentamicina y cultivados en gotas de 50 ml en grupos de 10 a 20, cubiertos con aceite mineral, incubados por 24 h a 38.8&deg;C, 5% de CO<sub>2</sub> y humedad atmosf&eacute;rica del 96%, distribuidos al azar en cuatro tratamientos:</p>      <p>T1 = Sin suplemento de FSH y LH     <br>   T2 =  Suplementado con 50 &micro;g/ml de FSH y 150 &micro;g/ml de LH.    <br>   T3 = Suplementado con 100 &micro;g/ml de FSH y 100 &micro;g/ml de LH.    <br>   T4 = Suplementado con 150 &micro;g/ml de FSH y 50 &micro;g/ml de LH.    <br>  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Fertilizaci&oacute;n <i>in vitro</i>.</b> Despu&eacute;s de la maduraci&oacute;n, los oocitos fueron lavados tres veces en medio de fertilizaci&oacute;n TAL FERT (TALP Caisson) suplementado con 10 &micro;g/ml de heparina y PHE (0.25 mM epinefrina + 1 mM hip&oacute;taurina + 3 mM penicilamida). Los espermatozoides se obtuvieron a trav&eacute;s del m&eacute;todo de  Swim-up y se le adiciono a cada gota de fertilizaci&oacute;n aproximadamente 1.5 x 10<sup>6</sup> esperm/ml. Los espermatozoides y los oocitos fueron cultivados en gotas de 50 &micro;l por 24 h a 38.8&deg;C, 5% de CO<sub>2</sub> y humedad relativa del 96%. </p>        <p><b>Cultivo <i>in vitro</i> de embriones.</b> Despu&eacute;s de la fertilizaci&oacute;n, los presuntos zigotos fueron lavados en medio de desarrollo TCM-199 suplementado con 20% de SFB, 0.3 mM de piruvato y 50&micro;g/ml de gentamicina. Luego se cultivaron en gotas de 50 ml (10 a 20 presuntos cigotos/gota) cubiertas con aceite mineral a 38.8&deg;C, 5% de CO<sub>2</sub>, y humedad relativa del 96%. El cultivo se contin&uacute;o hasta el d&iacute;a 7 post-fertilizaci&oacute;n.</p>      <p><b>Evaluaci&oacute;n de la maduraci&oacute;n y fertilizaci&oacute;n <i>in vitro</i>.</b> Para la evaluaci&oacute;n de la maduraci&oacute;n y de la fertilizaci&oacute;n, a los oocitos que se encontraban en MIV por 24 h o en FIV por 18 a 24 h, se les retiraron todas las c&eacute;lulas del <i>cumulus</i> y se procedi&oacute; a montarlos en una l&aacute;mina portaobjetos. Luego fueron sumergidos en soluci&oacute;n fijadora (una parte de &aacute;cido ac&eacute;tico/tres partes de metanol) por 24 horas.  Posteriormente fueron te&ntilde;idos con orceina al 2% en 45% de &aacute;cido ac&eacute;tico de 10 a 15 min y fueron examinados en un microscopio de contraste de fase a 100X. </p>      <br>      <p><b>EVALUACION EMBRIONARIA</b></p>      <p><b>Evaluaci&oacute;n embrionaria temprana (estado 2-8 c&eacute;lulas).</b> La evaluaci&oacute;n de la divisi&oacute;n embrionaria temprana se realiz&oacute; de manera directa el d&iacute;a 3 del cultivo, (el d&iacute;a 0 fue el d&iacute;a de la fecundaci&oacute;n), mediante observaci&oacute;n con estereoscopio, se evaluaron las tasas de divisi&oacute;n de 2 a 8 c&eacute;lulas.</p>      <p><b>Evaluaci&oacute;n embrionaria al estado de m&oacute;rula-blastocito.</b> La evaluaci&oacute;n de la tasa de producci&oacute;n de embriones al estado de m&oacute;rula (Mo) y blastocitos (B) fue realizada de forma directa en un estereoscopio, observando la cantidad que se encontraban en estos estados avanzados y clasificados en Mo compactas o blastocito, para poder determinar la tasa de producci&oacute;n de embriones para cada tratamiento.</p>      <p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico.</b> Los resultados correspondientes a la tasa de maduraci&oacute;n, fecundaci&oacute;n y desarrollo embrionario de los oocitos cultivados <i>in vitro</i>, fueron analizados a trav&eacute;s de un an&aacute;lisis de varianza (ANAVA), y se establecieron diferencias significativas por medio de la prueba de Duncan.</p>      <br>      <p><b>RESULTADOS</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Maduraci&oacute;n <i>in vitro</i>.</b> No se present&oacute; efecto (p&gt;0.05) en las tasas de maduraci&oacute;n <i>in vitro</i> para T2, T3 y T4 respectivamente. Por el contrario, hubo efecto (p&lt;0.05) para T1 con respecto a los dem&aacute;s tratamientos (<a href="#tab1">Tabla 1</a>). </p>      <p align="center"><a name="tab1"></a><img src="img/revistas/mvz/v15n1/v15n1a08t1.jpg" ></p>      <p><b>Fertilizaci&oacute;n <i>in vitro</i>. </b>Se present&oacute; efecto (p&lt;0.05) en las tasas de fertilizaci&oacute;n para T2. No hubo efecto (p&gt;0.05) entre T3 y T4; sin embargo, fueron diferentes a los otros tratamientos. Las tasas de fertilizaci&oacute;n presentaron (p&lt;0.05) para T1 comparado con los tratamientos suplementados con FSH y LH (<a href="#tab2">Tabla 2</a>).</p>      <p align="center"><a name="tab2"></a><img src="img/revistas/mvz/v15n1/v15n1a08t2.jpg"></p>      <p><b>Divisiones tempranas (2-8 c&eacute;lulas).</b> No se present&oacute; efecto (p&gt;0.05) en las tasas de divisiones tempranas (2-8 c&eacute;lulas) para T2, T3 y T4 respectivamente. Mientras que hubo efecto (p&lt;0.05) para T1 comparado con los dem&aacute;s tratamientos (<a href="#tab3">Tabla 3</a>). </p>      <p align="center"><a name="tab3"></a><img src="img/revistas/mvz/v15n1/v15n1a08t3.jpg"></p>     <p><b>Desarrollo embrionario al estado de m&oacute;rula-blastocisto</b>. No Hubo efecto (p&gt;0.05) entre T2 y T3 sobre las tasas de desarrollo embrionario al estado morula-blastocito. Sin embargo T2 fue diferente (p&lt;0.05) a los dem&aacute;s tratamientos; mientras que T3 y T4 fueron similares (p&gt;0.05) pero diferente a T1 (<a href="#tab4">Tabla 4</a>).</p>     <p align="center"><a name="tab4"></a><img src="img/revistas/mvz/v15n1/v15n1a08t4.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>      <p><b>DISCUSI&Oacute;N</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las tasas de maduraci&oacute;n de los tratamientos suplementados con FSH y LH  en las concentraciones y combinaciones utilizadas en el presente estudio estimularon altas tasas de maduraci&oacute;n nuclear (87 a 92%). Ha sido demostrado que la LH o FSH sola o en combinaci&oacute;n, induce altas tasas de maduraci&oacute;n de oocitos bovinos <i>in vitro</i>. Resultados similares han sido comunicados por Ratto et al (15) quienes encontraron a  concentraciones de 0.08 UI de h-FSH una tasa de maduraci&oacute;n del 93%;  Chohan y Hunter  (16) 92% al utilizar 10 &micro;g/ml de b-FSH y 10 &micro;g/ml de b-LH; Boelhauve et al (17); 84% y 81.7% al utilizar 22 &micro;g/ml de FSH &oacute; 8 &micro;g/ml de LH respectivamente. </p>      <p>En la ausencia de gonadotropinas (FSH y LH) solamente el 36.43 % alcanz&oacute; la maduraci&oacute;n nuclear (Metafase II), lo cual indica la importancia de las gonadotropinas (FSH y LH) para una adecuada maduraci&oacute;n <i>in vitro</i> (10, 18, 19). Este resultado podr&iacute;a ser explicado dado que los oocitos al ser extra&iacute;dos de los fol&iacute;culos y cultivados en un medio adecuado, inician la maduraci&oacute;n nuclear en ausencia de FSH y LH,  debido a que son retirados los factores inhibidores de la meiosis presente en el l&iacute;quido folicular (20-23). Resultados similares han sido reportados por Zuelke y Brackett (7), quienes obtuvieron 37.5% de maduraci&oacute;n nuclear en ausencia de hormonas.</p>      <p>En este estudio se demostr&oacute; que las mayores tasas de fertilizaci&oacute;n <i>in vitro</i> (81.81%) fueron alcanzadas cuando el medio de maduraci&oacute;n conten&iacute;a una mayor proporci&oacute;n de LH, lo que demuestra la influencia positiva de esta hormona sobre la tasa de penetraci&oacute;n. Esto podr&iacute;a ser explicado por una mayor tasa de maduraci&oacute;n nuclear que estar&iacute;a favoreciendo cambios en la zona pelucida, espec&iacute;ficamente a nivel de receptores ZP3, que son los responsables de la uni&oacute;n del espermatozoide al &oacute;vulo  y participar en el proceso de fertilizaci&oacute;n (24-26). Resultados similares han sido comunicados por Ratto et al  (15) y Chohan y Hunter  (16), quienes obtuvieron una tasa de fecundaci&oacute;n de 76.9% y 79.9% respectivamente.</p>      <p>Las tasas de fertilizaci&oacute;n para T3 y T4 fueron similares entre ellos, pero inferiores a  T2 indicando el efecto (p&lt;0.05) de la relaci&oacute;n hormonal (LH y FSH), donde a medida que se disminuye la proporci&oacute;n de LH sobre FSH la tasa de fertilizaci&oacute;n <i>in vitro</i> se ve disminuida (<a href="#tab2">Tabla 2</a>). Resultado similar ha sido comunicado por Zuelke y Brackett (7) quienes obtuvieron 73.5%.</p>       <p>Los medios suplementados con hormonas tienen la capacidad de producir buenas tasas de maduraci&oacute;n, fertilizaci&oacute;n y divisiones tempranas. Los resultados de las tasas de divisiones tempranas en los tratamientos suplementados con hormonas FSH y LH son similares a los comunicados por Chohan y Hunter  (16) quienes obtuvieron una tasa de divisi&oacute;n de 49.4%. No obstante Ratto et al  (15) y Choi et al (27) reportaron resultados superiores con tasas de 62.7% y 66.7% (en cocultivo de c&eacute;lulas oviductales y medio condicionado, respectivamente) y 84.3%; mientras que Younis et al (28) reportaron resultados inferiores 37.6% y 39.6% para el tratamiento con FSH y LH respectivamente. Por el contrario, una baja tasa de divisi&oacute;n se present&oacute; cuando los oocitos fueron madurados en ausencia de hormonas FSH y LH lo que podr&iacute;a inferirse en la falta de adquirir la capacidad de desarrollo embrionario por ausencia del est&iacute;mulo hormonal (FSH y LH) necesario para la adecuada  reanudaci&oacute;n de la meiosis (10, 27).</p>      <p>La mayor tasa de desarrollo embrionario al estado de m&oacute;rula-blastocito (35.83%) fue obtenida a partir de oocitos madurados <i>in vitro</i> con una concentraci&oacute;n de hormonas en el medio de maduraci&oacute;n de 150 &micro;g/ml de LH + 50 &micro;g/ml FSH; siendo similar al tratamiento donde el medio de maduraci&oacute;n se suplement&oacute; hormonalmente con 100 &micro;g/ml de FSH y 100 &micro;g/ml de LH, pero difiere (p&lt;0.05) con los dem&aacute;s tratamientos. Sin embargo, cuando el medio de maduraci&oacute;n fue suplementado con 50 &micro;g/ml LH + 150 &micro;g/ml de FSH no vari&oacute; significativamente (p&gt;0.05) del tratamiento suplementado con 100 &micro;g/ml LH + 100 &micro;g/ml FSH. Por el contrario, una baja tasa (10.15%) de embriones al estado de m&oacute;rula/blastocisto fue observada en el medio de maduraci&oacute;n sin la adici&oacute;n de hormonas FSH y LH. </p>         <p>La baja producci&oacute;n de embriones al estado de morula-blastocito (10.15%) en el tratamiento sin la adici&oacute;n de las hormonas FSH y LH podr&iacute;a ser explicado por fallas en la maduraci&oacute;n citoplasm&aacute;tica, lo cual afecta la capacidad de desarrollo de los oocitos fertilizados hasta estos estadios embrionarios (20-22). Resultado similar fue hallado por Zuelke y Brackett (7), quienes obtuvieron una tasa de 7.9% en el tratamiento sin hormonas durante la maduraci&oacute;n.</p>      <p>En conclusi&oacute;n, el presente estudio demuestra la influencia positiva que tienen las gonadotropinas hipofisiarias sobre las tasas maduraci&oacute;n, fertilizaci&oacute;n y desarrollo embrionario <i>in vitro</i>, obteni&eacute;ndose mejores resultados cuando la proporci&oacute;n de LH fue superior que la FSH en el medio de maduraci&oacute;n.</p>  <hr>      <p><b>REFERENCIAS</b></p>      <!-- ref --><p>1. Dielman SJ, Hendriksen PJ, Viuff D, Thomsen PD, Hyttel P, Knijn HM, et al. Effect of <i>in vivo</i> prematuration and <i>in vivo</i> final maturation on developmental capacity and quality of pre-implantation embryos. 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Localization of angiotensin II in pig ovary and its effects on oocyte maturation <i>in vitro</i>. Theriogenology 2004; 61:447-459.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0122-0268201000010000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Kito S, Bavister BD. Male pronuclear formation and early embryonic development of hamster oocytes matured <i>in vitro</i> with gonadotrophin, amino acids and cysteamine. J Repro Fertil 1997; 110:35-46.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0122-0268201000010000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Downs SM, Mastropolo AM. Culture conditions affect meiotic regulation <i>in cumulus</i> cell-enclosed mouse oocyte. Mol Reprod Dev 1997; 46:551-566.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0122-0268201000010000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Moor RM, Trouson AO. Hormonal and follicular factors affecting maturation of sheep <i>in vitro</i> and their subsequent developmental capacity. J Reprod Fertil 1997; 49:101-109.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0122-0268201000010000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Zuelke KA, Brackett, BG. Luteinizing hormones enhanced <i>in vitro</i> maturation of bovine oocyte with and without protein supplementation. Biol Reprod 1990; 43:784-787.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0122-0268201000010000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Saeki K, Hoshi M, Leibfried-Rutledge ML, First NL. <i>in vitro</i> fertilization and development of bovine oocytes matured in serum-free medium. Biol Reprod 1991; 44:256-260. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0122-0268201000010000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Sirad MA, Desrosier S, Assidi M. In vivo and <i>in vitro</i> effects of FSH on oocyte maturation and developmental competence. Theriogenology 2007; 68(Supl 1): S71-S76. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0122-0268201000010000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Eppig JJ, Viveiros MM, Bivens CM, De La Fuente R. The Ovary (Second Edition). En: Regulation of  mammalian oocyte maturation. Part II. &#91;En linea&#93;. USA: ACADEMIC PRESS; 2003. [fecha de acceso 16 de octubre de 2008]. 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Dev Biol 2006; 299:345-355.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0122-0268201000010000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Bilodeau S, Fortier MA, Sirard MA. Effect of adenylate ciclasa stimulation on meiotic resumption and cyclic AMP content on zone-free and cumulus-enclosed bovine oocyte <i>in vitro</i>. J Reprod Fertil 1993; 97:5-11.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0122-0268201000010000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Plancha CE, Albertini DF. Hormonal regulation of meiotic maturation in the hamster oocyte involves a cytoskeleton-mediated process. Biol Reprod 1994; 51:852-864.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0122-0268201000010000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Instituto geogr&aacute;fico Agust&iacute;n Codazzi, C&oacute;rdoba. Caracter&iacute;sticas geogr&aacute;ficas. Santa Fe de Bogot&aacute;: 1995.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0122-0268201000010000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Ratto M, Berland M, Wolter M. et al. Desarrollo de embriones de bovino obtenidos por fecundaci&oacute;n <i>in vitro</i> cultivados con c&eacute;lulas oviductales o medio condicionado y transferidos a hembras receptoras. Arch Med vet 1999; 31(1):89-96. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0122-0268201000010000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Chohan KR, Hunter AG. <i>in vitro</i> maturation, fertilization and early cleavage rates of bovine fetal oocytes. Theriogenology 2004; 61:373-380.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0122-0268201000010000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Boelhauve  M, Sinowatz  F, Wolf E and Paula-Lopes F. Maturation of bovine oocytes in the presence of leptin improves development and reduces apoptosis of <i>in vitro</i> produced blastocysts. Biol Reprod 2005;73:737â€“744.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0122-0268201000010000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Bevers MM, Dieleman SJ, Van den Hurk R, Izadyar F. Regulation and modulation of oocyte maturation in the bovine. Theriogenology 1997; 47:13-22. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0122-0268201000010000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Sirard MA. Resumption of meiosis: mechanism involved in meiotic progression and its relation with developmental competence. Theriogenology 2001; 55:1241-1254.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0122-0268201000010000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Conti M, Bo Andersen C, Richard F, Mehats C, Chun S, Horner K, et al. Role of cyclic nucleotide signaling in oocyte maturation. Mol Cell Endocrinol 2002; 187:153-159.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0122-0268201000010000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Sirard MA, Richard F, Mayes M. Controlling meiotic resumption in bovine oocytes: a review. Thenogenology 1996; 49:483-497.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0122-0268201000010000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22.	Chian RC, Niwa K, Sirard MA. Effects of cumulus cell on male pronuclear formation and subsecuente early development of bovine oocytes <i>in vitro</i>. Theriogenology 1994; 41:1499-1508.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0122-0268201000010000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Luvoni GC, Chigioni S, Perego L, Lodde V, Modina S, Luciano AM. Effect of gonadotropins during <i>in vitro</i> maturation of feline oocyte-<i>c&uacute;mulos</i> cell functional coupling and intracellular concentration of glutathione. Anim Reprod Sci 2006; 96:66-78. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0122-0268201000010000800023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Bauskin AR, Franken DR, Eberspaecher U, Donner P. Characterization of human zona <i>pellucida</i> glycoproteins. Mol Hum Reprod  1999; 5(6):534-540.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0122-0268201000010000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. Bleil JD, Wassarman PM. Sperm-egg interactions in the mouse: sequence of events and induction of the acrosome reaction by a zona <i>pellucida</i> glycoprotein. Dev Biol 1983; 95(2):317-24.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0122-0268201000010000800025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. Florman HM, Wassarman PM. O-linked oligosaccharides of mouse egg ZP3 account for its sperm receptor activity. Cell 1985; 41(1):313-24. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0122-0268201000010000800026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. Choi YH, Carnevale EM, Steidel GE, Squires J, Squires EL. Effect of gonadotrophin on bovine oocitos matured in TCM-199. Theriogenology 2001; 56:61-670.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0122-0268201000010000800027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. Younis AI, Brackett BG, Fayer-Hosken RA. Influence of serum and hormones on bovine oocyte maturation and fertilization <i>in vitro</i>. Gamete Res 1989; 23:189-201.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0122-0268201000010000800028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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