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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Títulos de anticuerpos contra Leptospira sp., en primates del zoológico Matecaña, Pereira, Colombia]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objectives. To identify the most frequent serovars of Leptospira sp., in a captive neotropical primate population using the Microagglutination test (MAT), and to evaluate the presence of spirochetes in the drinking water of enclosures using dark-field microscopy. Materials and methods. A point prevalence study was performed in 65 neotropical monkeys using the microagglutination test (MAT) and 21 Leptospira sp., reference strains; observation of spirochetes in water was performed using the dark-field microscopy. Results. The Leptospira sp., seroprevalence was 41.5% (27/65) in neotropical monkeys. Leptospira serovars showing important agglutination were Autumnalis (25%), Ranarum (22.9%), Icterohaemorrhagiae (12.5%), Pomona (12.5%) and Australis (10.4%). Squirrel monkey (Saimiri sciureus), woolly monkey (Lagothrix lagotricha) and cotton-top tamarin (Saguinus oedipus) had non-reactive sera. Spirochetes in drinking water of enclosures were observed. Conclusions. This study shows evidence of the circulation of Leptospira sp., inside the zoo setting, revealing the need of implementing active epidemiological surveillance strategies and educational programs.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font face="verdana" size="2">       <p align="right"><b>ORIGINAL</b></p>     <p align="center"><b><font size="4">T&iacute;tulos de anticuerpos contra <i>Leptospira</i> sp., en primates del zool&oacute;gico Mateca&ntilde;a, Pereira, Colombia</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="3">Antibody titers against <i>Leptospira</i> sp., in primates from Mateca&ntilde;a zoo, Pereira, Colombia</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>Marlyn Romero P,<sup>1</sup>* M.Sc, Miryam Astudillo H,<sup>2</sup> M.Sc, Jorge S&aacute;nchez V,<sup>1</sup> M.Sc, Lina Gonz&aacute;lez G,<sup>1</sup> MVZ, N&eacute;stor Varela A,<sup>3</sup> Esp.</b></p>      <p><sup>1</sup>Universidad de Caldas, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Departamento de Salud Animal, Grupo de Investigaci&oacute;n CIENVET. Manizales, Colombia.    <br> <sup>2</sup>Universidad del Valle, Departamento de Microbiolog&iacute;a, Cali, Colombia.     <br> <sup>3</sup>Zool&oacute;gico Mateca&ntilde;a, Pereira, Colombia. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>*Correspondencia: <a href="mailto:marlyn.romero@ucaldas.edu.co">marlyn.romero@ucaldas.edu.co</a></p>     <p>Recibido: Febrero de 2011; Aceptado: Diciembre de 2011.</p> <hr>       <p><b>RESUMEN</b></p>      <p><b>Objetivo.</b> Identificar los serovares m&aacute;s frecuentes de <i>Leptospira</i> sp., por la t&eacute;cnica de Microaglutinaci&oacute;n (MAT) en una poblaci&oacute;n de primates neotropicales, mantenida en condiciones de cautiverio, y evaluar por microscop&iacute;a de campo oscuro la presencia de espiroquetas en aguas para el consumo de los animales. <b>Materiales y m&eacute;todos.</b> Se realiz&oacute; un estudio de prevalencia de punto en 65 monos neotropicales, mediante la t&eacute;cnica de Microaglutinaci&oacute;n Macrosc&oacute;pica (MAT) usando un cepario de referencia conformado por 21 serovares de <i>Leptospira</i> sp., y la observaci&oacute;n de espiroquetas en el agua mediante microscop&iacute;a de campo oscuro. <b>Resultados.</b> La seroprevalencia de <i>Leptospira</i> sp.,  en los monos neotropicales fue del 41.5% (27/65).  Los serovares de <i>Leptospira</i> Autumnalis (25%), Ranarum (22.9%), Icterohaemorrhagiae (12.5%), Pomona (12.5%) y Australis (10.4%) fueron los m&aacute;s aglutinados por los sueros. Los monos ardilla (<i>Saimiri sciureus</i>), lanudo (<i>Lagothrix lagotricha</i>) y tit&iacute; pielroja (<i>Saguinus oedipus</i>) fueron seronegativos. Se observaron espiroquetas en el agua evaluada.  <b>Conclusiones.</b> Se evidencia la circulaci&oacute;n de <i>Leptospira</i> sp., en el zool&oacute;gico, siendo necesario la implementaci&oacute;n de estrategias de vigilancia epidemiol&oacute;gica activa y programas de promoci&oacute;n.</p>      <p><b>Palabras clave:</b> Monos, seroprevalencia, zool&oacute;gico (<i>Fuente: CAB</i>). </p> <hr>      <p><b>ABSTRACT</b></p>      <p><b>Objectives.</b> To identify the most frequent serovars of <i>Leptospira</i> sp., in a captive neotropical primate population using the Microagglutination test (MAT), and to evaluate the presence of spirochetes in the drinking water of enclosures using dark-field microscopy.<b> Materials and methods.</b> A point prevalence study was performed in 65 neotropical monkeys  using the microagglutination test (MAT) and 21 <i>Leptospira</i> sp., reference strains; observation of spirochetes in water was performed using the dark-field microscopy. <b>Results</b>. The <i>Leptospira</i> sp., seroprevalence was 41.5% (27/65) in neotropical monkeys. <i>Leptospira</i> serovars showing important agglutination were Autumnalis (25%), Ranarum (22.9%), Icterohaemorrhagiae (12.5%), Pomona (12.5%) and Australis (10.4%). Squirrel monkey (<i>Saimiri sciureus</i>), woolly monkey (<i>Lagothrix lagotricha</i>) and cotton-top tamarin (<i>Saguinus oedipus</i>) had non-reactive sera. Spirochetes in drinking water of enclosures were observed. <b>Conclusions.</b> This study shows evidence of the circulation of <i>Leptospira</i> sp., inside the zoo setting, revealing the need of implementing active epidemiological surveillance strategies and educational programs.</p>     <p><b>Keywords:</b>  Monkeys, seroprevalence, zoo (<i>Source: CAB</i>).</p> <hr>      <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>      <p>La Leptospirosis es una enfermedad zoon&oacute;tica bacteriana de  importancia y distribuci&oacute;n global (1). Presenta un comportamiento end&eacute;mico, pero se reportan brotes epid&eacute;micos en varios continentes; siendo considerada una enfermedad reemergente en la actualidad (1,2).  Las enfermedades infecciosas emergentes y reemergentes tienen dos implicaciones biol&oacute;gicas de importancia; en primer lugar, muchas especies de vida silvestre son reservorios de pat&oacute;genos que amenazan la salud de las personas y de los animales dom&eacute;sticos; y segundo, constituyen una amenaza sustancial para la conservaci&oacute;n de la biodiversidad global (3). Por lo tanto, su investigaci&oacute;n puede beneficiar  los esfuerzos en la conservaci&oacute;n de la vida silvestre  y proveer una conexi&oacute;n entre los estudios serol&oacute;gicos y la  necesidad de la detecci&oacute;n, identificaci&oacute;n y vigilancia epidemiol&oacute;gica oportuna de estas enfermedades (4,5).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En la cadena epidemiol&oacute;gica de la leptospirosis participan hospederos de mantenimiento y hospederos definitivos (5).  Los primeros se definen como las especies animales en las cuales la infecci&oacute;n es end&eacute;mica, usualmente transmitida de individuo a individuo por contacto directo.  A diferencia, los hospederos accidentales (como el hombre) se infectan por contacto indirecto por contaminaci&oacute;n ambiental con orina de animales infectados (1).  Esta &uacute;ltima v&iacute;a se presenta a trav&eacute;s de la ingesti&oacute;n de agua o alimento contaminado, y por contacto con mucosas o la piel (2). </p>     <p>Es poco frecuente el reporte de leptospirosis en primates no humanos y por lo tanto, la presentaci&oacute;n de la enfermedad ha sido poco estudiada (6), a pesar de que se ha comprobado que act&uacute;an como portadores renales del pat&oacute;geno, lo cual los convierte en un riesgo para los animales de zool&oacute;gicos y de laboratorio, al igual que para los trabajadores, los veterinarios y los dem&aacute;s primates (7,8).  Los s&iacute;ntomas de leptospirosis observados en infecciones naturales de primates generalmente son leves, pasan desapercibidos; limit&aacute;ndose a respuestas febriles, conjuntivitis e inquietud (9). Por otra parte, la respuesta humoral es detectada s&oacute;lo en  per&iacute;odos cortos de tiempo (7). Sin embargo, en condiciones de cautiverio, el fr&aacute;gil equilibrio entre los agentes infecciosos y los hospederos se rompe, debido a problemas como la desnutrici&oacute;n y el estr&eacute;s cr&oacute;nico (fruto de ambientes inadecuados, totalmente distintos a los ambientes naturales), el desconocimiento de las necesidades b&aacute;sicas de las diferentes especies, la limitaci&oacute;n espacial que los puede predisponer a una reinfecci&oacute;n, as&iacute; como, las alteraciones org&aacute;nicas y del comportamiento, que favorecen el establecimiento de enfermedades y el desarrollo de cuadros cl&iacute;nicos m&aacute;s severos (4,6,9). </p>     <p>A pesar de estas limitaciones, los zool&oacute;gicos ofrecen oportunidades para el estudio de la leptospirosis en situaciones controladas y son fuente importante de informaci&oacute;n para la investigaci&oacute;n epidemiol&oacute;gica de enfermedades transmisibles (8). Teniendo en cuenta la escasa informaci&oacute;n sobre la epidemiolog&iacute;a de la leptospirosis en poblaciones silvestres en zool&oacute;gicos colombianos, el presente trabajo tuvo como objetivo realizar una evaluaci&oacute;n serol&oacute;gica para establecer los serovares m&aacute;s frecuentes de <i>Leptospira</i> sp., por la t&eacute;cnica de microaglutinaci&oacute;n (MAT), en una poblaci&oacute;n de primates neotropicales mantenida en condiciones de cautiverio y evaluar por microscop&iacute;a de campo oscuro la presencia de espiroquetas en aguas de bebida de los animales.</p>       <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>      <p><b>Localizaci&oacute;n.</b> El zool&oacute;gico de Mateca&ntilde;a se encuentra localizado en la ciudad de Pereira, departamento de Risaralda, Colombia.  El municipio se encuentra a 4&deg;49 minutos de latitud norte y 75&deg;45 minutos de latitud oeste de Greenwich, con una temperatura promedio de 21&deg;C.</p>     <p><b>Primates no-humanos.</b> La poblaci&oacute;n de primates neotropicales evaluados est&aacute; conformada por 65 individuos, pertenecientes a nueve especies taxon&oacute;micas: <i>Ateles fusciceps, Cebus albifrons, Cebus apella,  Cebus capucinus, Saimiri sciureus, Ateles hybridus, Lagothrix lagotricha,  Saguinus oedipus y Saguinus leucopus</i>.</p>     <p><b>Normas de &eacute;tica.</b> El estudio fue aprobado por el Comit&eacute; de &Eacute;tica de la Universidad de Caldas y cont&oacute; con el consentimiento informado para la toma de las muestras.</p>     <p><b>Muestras sangu&iacute;neas de los primates.</b> Los monos neotropicales fueron sometidos a un procedimiento de contenci&oacute;n qu&iacute;mica, utilizando como protocolo anest&eacute;sico una mezcla de Ketamina (10 mg/kg) y Xilacina (1mg/kg) v&iacute;a intramuscular. Se sigui&oacute; el pulso, la frecuencia respiratoria y card&iacute;aca, la relajaci&oacute;n muscular, analgesia, reflejos (palpebral, corneal, interdigital y genital)  cada 10 minutos.  La vena de elecci&oacute;n para la colecta, cantidad de sangre y el tama&ntilde;o de la aguja,  se seleccion&oacute; de acuerdo con la edad y la masa corporal de cada animal. Las muestras de sangre fueron tomadas con tubo Vacutainer sin anticoagulante, luego de un reposo de 10 minutos se centrifugaron a 3000 rpm durante cinco minutos y el suero obtenido se almacen&oacute; a -20&deg;C hasta su procesamiento en el laboratorio.</p>     <p><b>Muestreo y an&aacute;lisis del agua.</b> Se tomaron 10 ml de agua de los bebederos de cinco locaciones de monos neotropicales y una muestra del tanque distribuidor del zool&oacute;gico Mateca&ntilde;a, las cuales fueron analizadas mediante microscop&iacute;a de campo oscuro.</p>     <p><b>T&eacute;cnica de Microaglutinaci&oacute;n MAT.</b> El procesamiento de las muestras se efectu&oacute; en el laboratorio de Diagn&oacute;stico de Leptospirosis de la Universidad del Valle (Cali); laboratorio que participa en el control externo de la MAT realizado por la Sociedad Internacional de Leptospirosis. El mantenimiento de las cepas y el manejo de la t&eacute;cnica se realiz&oacute; bajo los par&aacute;metros convencionales (10), utilizando un cepario de referencia suministrado por el Laboratorio Internacional de Referencia para el Diagn&oacute;stico de la Leptospirosis del <i>Royal Tropical Institute, Amsterdam</i> (Holanda). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los 21 serovares de <i>Leptospira</i> evaluados fueron: Bataviae, Mini, Autumnalis, Sutumnalis, Canicola, Shermani, Icterohaemorrhagiae, Cynopteri, Australis, Celledoni, Gryppotyphosa, Hebdomanis, Javanica, Manhao, Pomona, Pyrogenes, Sejroe,  Tarassovi, Bataviae, Patoc, Hurstbridge y Djasiman. Se consideraron como positivos los sueros con t&iacute;tulos &ge;1:50. Se determin&oacute; el  t&iacute;tulo de anticuerpos utilizando microscopio de campo oscuro, objetivo 25X, cuando al comparar con un control de ant&iacute;geno,  el 50% o una proporci&oacute;n mayor de las leptospiras estaban aglutinadas en una diluci&oacute;n del suero entre  1:50 y 1:3200.</p>     <p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico. </b>Se utiliz&oacute; el paquete estad&iacute;stico Epidemiology Program Office Epi Info&trade; versi&oacute;n 6. </p>       <p><b>RESULTADOS</b></p>      <p>La seroprevalencia de Lectospira sp., en la poblaci&oacute;n de primates neotropicales evaluados fue del 41.5% (27/65).  Los monos neotropicales mono ardilla (<i>Saimiri sciureus</i>), mono lanudo (<i>Lagothrix lagotricha</i>) y tit&iacute; pielroja (<i>Saguinus oedipus</i>) fueron seronegativos (<a href="#tab1">Tabla 1</a>).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v17n3/v17n3a18t1.jpg" "Tabla 1"><a name="tab1"></a></p>     <p>Los serovares de <i>Leptospira</i> Autumnalis (25%), Ranarum (22.9%), Icterohaemorrhagiae (12.5%), Pomona (12.5%) y Australis (10.4%) fueron los m&aacute;s aglutinados por los sueros de los primates neotropicales (<a href="#tab2">Tabla 2</a>). </p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v17n3/v17n3a18t2.jpg" "Tabla 2"><a name="tab2"></a></p>      <p><b>DISCUSI&Oacute;N</b></p>      <p>No fue posible determinar las v&iacute;as de transmisi&oacute;n y las fuentes de infecci&oacute;n relacionadas con la presencia de animales positivos para <i>Leptospira</i> sp., en el zool&oacute;gico Mateca&ntilde;a. Sin embargo, de las seis muestras de agua evaluadas por microscop&iacute;a de campo oscuro, en tres de &eacute;stas se visualizaron formas microsc&oacute;picas compatibles con <i>Leptospira</i> sp., pero por la baja especificidad de la t&eacute;cnica, no fue posible establecer con certeza su naturaleza pat&oacute;gena o sapr&oacute;fita (2).  Este hallazgo sugiere que es necesario realizar evaluaciones complementarias para dilucidar su clasificaci&oacute;n, teniendo en cuenta que las leptospiras pat&oacute;genas pueden sobrevivir en agua por muchos meses, dependiendo de la temperatura, el pH, la salinidad o el grado de contaminaci&oacute;n (11).  Asimismo, trabajos realizados en aguas de lagos del zool&oacute;gico de la Plata (Argentina) demostraron la presencia de leptospiras, haciendo evidente el papel del agua en la epidemiolog&iacute;a de la enfermedad (12).</p>     <p>Es importante resaltar que en el a&ntilde;o 2007 en el zool&oacute;gico Mateca&ntilde;a se present&oacute; un brote de leptospirosis en animales y en el personal; por lo tanto, la alta seroprevalencia de punto de leptospirosis encontrada (41.5%) en este estudio indica que los primates evaluados estuvieron expuestos a la infecci&oacute;n por <i>Leptospira</i> sp., y que existe un riesgo de transmisi&oacute;n a las especies susceptibles, incluidos los operarios responsables de su cuidado; teniendo en cuenta que se ha sugerido su papel como portadores renales del pat&oacute;geno (13). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La seroprevalencia fue superior a la reportada en los zool&oacute;gicos de Rio de Janeiro y de Aracaju (6, 8), as&iacute; como a la encontrada en 286 muestras de <i>Cebus apella</i> (16.1%) capturados en un ambiente natural del estado de Tocantins, Brasil (14); e inferior a la detectada en el zool&oacute;gico de Sao Paulo del 65% (13/21) (15). Estas diferencias se pueden deber a factores relacionados con el agente, los hospederos, el ambiente, el manejo y a caracter&iacute;sticas propias de la t&eacute;cnica MAT.</p>      <p>Los t&iacute;tulos de los sueros evaluados para los distintos serovares de <i>Leptospira interrogans</i>, variaron entre 1:50 y 1:1600 (<a href="#tab2">Tabla 2</a>).  Predominaron los t&iacute;tulos bajos de 1:50  (45.8%), lo que sugiere, que s&oacute;lo hubo o hay infecci&oacute;n y el t&iacute;tulo de inmunoglobulinas en el momento del examen corresponde a un punto de la curva de anticuerpos. Asimismo, los animales portadores de un serovar presentaron t&iacute;tulos bajos. La MAT detecta especialmente inmunoglobulina IgM, lo cual indica infecci&oacute;n inicial y por consiguiente no siempre est&aacute;n correlacionados con los signos cl&iacute;nicos, los cuales muchas veces se presentan cuando los niveles de IgM han descendido. </p>     <p>Los t&iacute;tulos serol&oacute;gicos &ge;100 (54.2 %) evidencian que los animales padecieron la enfermedad o que la infecci&oacute;n est&aacute; en curso.  Los t&iacute;tulos &ge;1600 (4.2%), pueden indicar una infecci&oacute;n activa, sin presentar manifestaciones cl&iacute;nicas, siendo viable tambi&eacute;n la eliminaci&oacute;n del agente por la orina (9).  En este caso es necesario realizar estudios complementarios con el fin de confirmar el diagn&oacute;stico mediante t&eacute;cnicas como el aislamiento, tipificaci&oacute;n y an&aacute;lisis molecular e implementar el tratamiento respectivo.</p>     <p>Las investigaciones serol&oacute;gicas sobre la leptospirosis en primates neotropicales en cautiverio han presentado resultados variables.  Los serovares de <i>Leptospira</i> sp., m&aacute;s frecuentemente encontrados en primates de Brasil fueron Castellonis, Copenhageni, Grippotyphosa (15), resultados diferentes a los hallados en el presente estudio, en donde predominaron Autumnalis, Ranarum, Icterohaemorrhagiae, Pomona y Australis, que evidencian la presencia de leptospiras pat&oacute;genas en zool&oacute;gicos. </p>     <p>Se ha descrito un amplio rango de reservorios de los serovares Autumnalis y Australis como roedores silvestres, proci&oacute;nidos (mapache), must&eacute;lidos (comadreja y zorrillo), roedores sinantr&oacute;picos (<i>Rattus norvegicus, Rattus rattus, Mus musculus</i>), porcinos y bovinos (16).  En este caso, las condiciones de cautiverio que favorecen el contacto estrecho entre animales con or&iacute;genes ecol&oacute;gicos y antecedentes epidemiol&oacute;gicos dis&iacute;miles, pueden contribuir a la exposici&oacute;n de los animales con diferentes serovares (17).</p>     <p>El serovar <i>Icterohaemorrhagiae</i> ha sido frecuentemente identificado en estudios serol&oacute;gicos en casos confirmados y probables de leptospirosis en seres humanos en Colombia (18,20). Asimismo, la infecci&oacute;n por &eacute;ste serovar ha sido comprobada por serolog&iacute;a y genotipificaci&oacute;n en un brote de leptospirosis severa en monos capuchinos confiscados y mantenidos en un centro de rehabilitaci&oacute;n de fauna silvestre colombiano (21). El serovar Icterohaemorrhagiae fue aislado de 3 casos fatales de leptospirosis presente en macacos de Gibraltar en cautiverio (<i>Macaca sylvanus</i>) en el parque zool&oacute;gico Nacional de Washington, D.C. (13), siendo descrito adem&aacute;s en varias especies de mam&iacute;feros en el zool&oacute;gico de Rio de Janeiro (17). </p>     <p>Estos hallazgos permiten sugerir que a pesar de que los primates evaluados en el presente trabajo tienen h&aacute;bitos arbor&iacute;colas en su medio natural, se ven forzados a tener mayor contacto con el piso de las instalaciones, debido a las condiciones de cautiverio; aumentando el riesgo de contacto con roedores, o con ambientes y alimentos contaminados con su orina (21), convirti&eacute;ndose en una fuente de infecci&oacute;n de este serovar, teniendo en cuenta que los roedores, especialmente los sinantr&oacute;picos como la rata parda (<i>Rattus norvergicus</i>), son reservorios importantes (8). </p>     <p>Como medidas de control se pueden implementar: la utilizaci&oacute;n de barreras f&iacute;sicas que eviten el ingreso de los roedores, mejorar el manejo de los restos de alimentos en los recintos, suministrar el agua en recipientes localizados en estructuras elevadas, proporcionar suficientes plataformas para que los animales descansen, limpiar frecuentemente el piso de las instalaciones, recubrimiento del piso con cemento para evitar acumulaciones de agua, y mantenimiento preventivo de instalaciones, entre otras medidas (21).</p>     <p>La alta seroprevalencia de <i>Leptospira</i> sp., en el presente estudio sugiere que se deben incluir  los primates no humanos en los programas de vigilancia epidemiol&oacute;gica activa de la infecci&oacute;n en poblaciones silvestres mantenidas en condiciones naturales y en cautiverio; debido a que  los m&eacute;dicos veterinarios por lo general  asumen que los monos no son susceptibles a la infecci&oacute;n por <i>Leptospira</i>; apreciaci&oacute;n que puede conducir a  diagn&oacute;sticos y tratamientos errados . </p>     <p>Adicionalmente, la infraestructura de los zool&oacute;gicos puede ser propicia para la sobrevivencia de <i>Leptospira</i> sp., en el ambiente, como consecuencia de la presencia de  &aacute;reas adyacentes muy arborizadas, que en ocasiones entorpecen la entrada de la radiaci&oacute;n solar a los recintos de los animales, o mantienen una humedad elevada; especialmente en los per&iacute;odos de verano y de alta pluviosidad, siendo com&uacute;n la formaci&oacute;n de charcos de agua en las instalaciones, aspecto que es importante controlar (22).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Finalmente se evidenci&oacute; la circulaci&oacute;n de <i>Leptospira</i> sp., en los primates neotropicales del zool&oacute;gico Mateca&ntilde;a; siendo necesario fortalecer los programas de promoci&oacute;n y prevenci&oacute;n de la leptospirosis para evitar la transmisi&oacute;n de la infecci&oacute;n a otras especies animales y a los funcionarios. </p>      <p><b>Agradecimientos</b></p>     <p> A la Vicerrector&iacute;a de Investigaciones y Postgrados de la Universidad de Caldas, al Zool&oacute;gico Mateca&ntilde;a de Pereira y al Laboratorio de Diagn&oacute;stico de Leptospirosis de la Universidad del Valle, por la financiaci&oacute;n  de esta investigaci&oacute;n.</p>  <hr>     <p><b>REFERENCIAS</b></p>      <!-- ref --><p>1. Bharti A, Nally J, Ricaldi JN, Matthias MA, Diaz M, Lovett MA et al.  Leptospirosis: a zoonotic disease of global importance. Lancet Infect Dis 2003; 3(12):757-771.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0122-0268201200030001800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>2. Levett PN. Leptospirosis.  Clin Microbiol Rev 2001; 14(2):296-326.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0122-0268201200030001800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>3. Daszak P, Cunningham A, Hyatt A. Anthropogenic environmental change and the emergence of infectious diseases in wildlife. Acta Trop 2001; 78(2):103- 116.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0122-0268201200030001800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>4. Cutler SJ, Fooks AR, van der Poel WHM. Public Health threat of new, reemerging and neglected zoonoses in the industrialized world. Emerg Infect Dis 2010; 16(1):1-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0122-0268201200030001800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>5. Sleeman J. Wildlife zoonoses for the veterinary practitioner. J Exotic Pet Med 2006; 15(1):25-32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0122-0268201200030001800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>6. Lilenbaum W, Monteiro RV, Albuquerque CE, Ristow P, Fraguas S, Cardoso VS et al. <i>Leptospira</i>l antibodies in wild felines from Rio de Janeiro Zoo, Brazil. Vet J 2004; 168(2):191-193.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0122-0268201200030001800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>7. Scarcelli E, Piatti RM, Fedullo JDL, Fai&ccedil;al S, Cardoso MV, Castro V et al. <i>Leptospira</i> spp. detection by polymerase chain reaction (PCR) in clinical samples of captive black-capped capuchin monkey (Cebus apella). Braz J Microbiol 2003; 34(2):143-146.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0122-0268201200030001800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>8. Pimentel JS, Gennari SM, Dubey J, Marvulo MFV, Vasconcellos SA, Morais ZM et al. Inqu&eacute;rito sorol&oacute;gico para toxoplasmose e leptospirose em mam&iacute;feros selvagens neotropicais do zool&oacute;gico de Aracaju, Sergipe. Pesq Vet Bras 2009; 29(12):1009-1014.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0122-0268201200030001800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>9. Silva C, G&iacute;rio RJ da S, Guerra-Neto G, Brich M, Santana LA, Am&acirc;ncio FH et al. Anticorpos anti-<i>Leptospira</i> spp. em animais selvagens do zool&oacute;gico municipal de Ribeir&atilde;o Preto, Estado de S&atilde;o Paulo State, Brazil. Braz J Vet Res Anim Sci 2010; 47(3):237-242.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0122-0268201200030001800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>10. Astudillo M, Gonz&aacute;lez A, Batista N, Mirabal M, Men&eacute;ndez J. Estudio seroepidemiol&oacute;gico de la leptospirosis humana en el departamento del Valle del Cauca, Colombia. Rev Cubana Med Trop 2009; 61(2):1-10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0122-0268201200030001800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>11. Brod CS, Aleixo JA, Jouglard SDD, Fernandes CPH, Teixeira JLR, Dellagostin OA. Evid&ecirc;ncia do c&atilde;o como reservat&oacute;rio da leptospirose humana: isolamento de um sorovar, caracteriza&ccedil;&atilde;o molecular e utiliza&ccedil;&atilde;o em inqu&eacute;rito sorol&oacute;gico. Rev Soc Bras Med Trop 2005; 38(4):294-300.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0122-0268201200030001800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>12. Gatti M, Arias D, Rosetti C, Selva S, Copes J, Laplace R et al.  Investigaci&oacute;n de <i>Leptospira</i>s en lagos del zool&oacute;gico de la Plata, Argentina. Analecta Vet 2004; 24(1):18-20.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0122-0268201200030001800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <p>13. Morosini de Andrade T. T&iacute;tulos de anticorpos contra <i>Leptospira</i> spp e an&aacute;lise bioqu&iacute;mica no soro sang&uuml;&iacute;neo em macaco Prego (Cebus apella nigritus). &#91;Tesis de Doctorado&#93;. Jaboticabal, Brasil: Universidad Estatal Paulista &ldquo;J&uacute;lio de Mesquita Filho&rdquo;, Faculdade de Ci&ecirc;ncias Agr&aacute;rias e Veterinarias; Area Medicina Veterinaria Preventiva; 2007.</p>     <!-- ref --><p>14. Souza J&uacute;nior MF, Lobato ZIP, Lobato FCF, Moreira EC, de Oliveira RR, Leite GG et al.  Presen&ccedil;a de anticorpos da clase IgM de <i>Leptospira</i> interrogans em animais silvestres do Estado do Tocantins, 2002.  Rev Soc Bras Med Trop 2006; 39(3):292-294.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0122-0268201200030001800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>15. Corr&ecirc;a SHR, Vasconcellos SA, Morais Z, Teixeira AA, Dias RA, Guimar&atilde;es MADB et al.  Epidemiologia da leptospirose em animais silvestres na Fundac&atilde;o Parque Zool&oacute;gico de S&atilde;o Paulo.  Braz J Vet Res Anim Sci 2004; 41(3):189-193.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0122-0268201200030001800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>16. Ward MP. Clustering of reported cases of leptospirosis among dogs in the United States and Canada. Prevent Vet Med 2002; 56:215-226.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0122-0268201200030001800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>17. Lilenbaum W, Monteiro RV, Ristow P, Fraguas S, Cardoso VS, Fedullo LPL. Leptospirosis antibodies in mammals from Rio de Janeiro Zoo, Brazil.  Res Vet Sci 2002; 73(12):319-321.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0122-0268201200030001800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>18. Romero MH, S&aacute;nchez JA, Hayek LC. Leptospirosis, brucelosis y toxoplasmosis: zoonosis de importancia en poblaci&oacute;n ocupacionalmente expuesta.  Biosalud 2008; 7(1):21-27.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0122-0268201200030001800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>19. Romero MH, S&aacute;nchez JA, Hayek LC. Prevalencia de anticuerpos contra <i>Leptospira</i> en poblaci&oacute;n urbana humana y canina del departamento del Tolima. Revista de Salud P&uacute;blica 2010; 12(2):268-275.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0122-0268201200030001800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>20. Agudelo-Fl&oacute;rez P, Restrepo-Jaramillo BN, Arboleda-Naranjo M.  Situaci&oacute;n de la leptospirosis en el Urab&aacute; antioque&ntilde;o colombiano: estudio seroepidemiol&oacute;gico y factores de riesgo en poblaci&oacute;n general urbana. Cad Sa&uacute;de P&uacute;blica 2007; 23(9):2094-2102.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0122-0268201200030001800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>21. Szonyi B, Agudelo-Fl&oacute;rez P, Ram&iacute;rez M, Moreno N, Ko Albert I. An outbreak of severe leptospirosis in capuchin (Cebus) monkeys. Vet J 2011; 188(2):237-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0122-0268201200030001800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <p>22. Neto-Guerra G. Freq&uuml;&ecirc;ncia de anticorpos contra <i>Leptospira</i> spp. em fel&iacute;deos neotropicais em cativeiro no Brasil. &#91;Tesis Mestre&#93;. Jaboticabal, Brazil: Universidad Estatal Paulista &ldquo;J&uacute;lio de Mesquita Filho&rdquo;, Faculdade de Ci&ecirc;ncias Agr&aacute;rias e Veterin&aacute;rias, Departamento Patolog&iacute;a Animal; 2006.</p>  </font>      ]]></body><back>
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