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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación del perfil metabólico lipídico en cerdas gestantes y su relación con la nutrición fetal]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective. Evaluate the lipidic metabolism of gestating sows in response to a modification in the fat level of the diet and its effect on fetal nutrition through metabolic indicators. Materials and methods. Fifty-six first-timers or multiparous sows were selected receive a diet without adding extra fat (SAp or SAm) or with extra fat addition (AGp o AGm). The SA diet consisted in feeding a conventional commercial diet of 3 kg/day, in the AG diet the corn was reduced and soybean oil was included to supply 20% extra fat. Blood samples were collected at 85, 100, 113 days of gestation and 24 hours postpartum, and on 50% of the piglets born alive per litter. Serum cholesterol (CT), triglycerides (TG), high (HDL) and low (LDL) density lipoproteins, non-esterified fatty acids (NEFA) and beta hydroxybutyrate (BHB) were analyzed. Results. The Serum concentrations of HDL, LDL, CT NEFA, BHB, and TG (p<0.01) increased in sows on days 100 and 113, but decreased at 24 hours postpartum. Blood metabolites in piglets under the influence of both treatments showed significant differences (p<0.01). Conclusions. There was no statistical effect from the modification of dietary fat on LDL and NEFA; for the remaining indicators differences were evident in pregnant sows. There was no correlation between metabolic indicators in mothers and piglets.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Indicadores]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[metabolismo de lípidos]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[nutrición prenatal]]></kwd>
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<kwd lng="en"><![CDATA[sows]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[   <font face="verdana" size="2">       <p align="right"><b>ORIGINAL</b></p>     <p align="center"><b><font size="3">Evaluaci&oacute;n del perfil metab&oacute;lico lip&iacute;dico en cerdas gestantes  y su relaci&oacute;n con la nutrici&oacute;n fetal</font></b></p>     <p> </p>     <p align="center"><b><font size="3">Evaluation of the lipid metabolic profile and its relation with fetal nutrition in gestating sows  </font></b></p>     <p> </p>     <p><b>Pamela Duque G,<sup>1</sup>* M.Sc, R&oacute;mulo Campos G,<sup>2</sup> Ph.D, Arnobio L&oacute;pez G,<sup>2</sup> Ph.D.</b></p>      <p><sup>1</sup>Universidad Nacional de Colombia, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Sede Palmira.      <br>   <sup>2</sup>Universidad Nacional de Colombia, Departamento de Ciencia Animal, Sede Palmira, Valle del Cauca, Colombia.    <br> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>*Correspondencia: <a href="mailto:pcduqueg@unal.edu.co">pcduqueg@unal.edu.co</a></p>     <p>Recibido: Agosto de 2011; Aceptado: Septiembre de 2012.</p> <hr>       <p><b>RESUMEN</b></p>      <p><b>Objetivo.</b> Evaluar el metabolismo lip&iacute;dico de cerdas gestantes como respuesta a la modificaci&oacute;n del nivel graso de la dieta y su efecto sobre la nutrici&oacute;n fetal a trav&eacute;s de indicadores metab&oacute;licos. <b>Materiales y m&eacute;todos.</b> Cincuenta y seis cerdas gestantes prim&iacute;paras o mult&iacute;paras se seleccionaron para suministrarles una dieta sin adici&oacute;n de grasa extra (SAp o SAm) o con adici&oacute;n de grasa extra (AGp o AGm). La dieta SA consisti&oacute; en suministrar 3 kg/d&iacute;a de una dieta comercial convencional, en la dieta AG se redujo el ma&iacute;z y se incluy&oacute; aceite de soya para proporcionar 20% de grasa extra. Las muestras sangu&iacute;neas se colectaron a los 85, 100, 113 d&iacute;as de gestaci&oacute;n y a las 24 horas posparto, asimismo, al 50% de los lechones nacidos vivos de cada camada. Se analizaron concentraciones s&eacute;ricas de colesterol (CT), triglic&eacute;ridos (TG), lipoprote&iacute;nas de alta (HDL) y baja densidad (LDL), &aacute;cidos grasos no esterificados (NEFA) y betahidroxibutirato (BHB). <b>Resultados.</b> Las concentraciones s&eacute;ricas de HDL, LDL, CT, NEFA, BHB y TG, (p&lt;0.01) aumentaron tanto en las  cerdas prim&iacute;paras como mult&iacute;paras al d&iacute;a 100 y 113, pero disminuyeron a las 24 horas posparto.  Los metabolitos sangu&iacute;neos en los lechones bajo la influencia de los dos tratamientos presentaron diferencias significativas (p&lt;0.01). <b>Conclusiones.</b> No se encontr&oacute; efecto de la modificaci&oacute;n  de la grasa en la dieta sobre LDL y NEFA; para los restantes indicadores se present&oacute; diferencia en las cerdas en gestaci&oacute;n. No se encontr&oacute; correlaci&oacute;n entre los indicadores metab&oacute;licos de las madres y los lechones.</p>      <p><b>Palabras clave:</b> Indicadores, metabolismo de l&iacute;pidos, nutrici&oacute;n prenatal (<i>Fuentes: DeCS, AGROVOC</i>).</p> <hr>  <b>ABSTRACT</b>      <p><b>Objective.</b> Evaluate the lipidic metabolism of gestating sows in response to a modification in the fat level of the diet and its effect on fetal nutrition through metabolic indicators. <b>Materials and methods.</b> Fifty-six first-timers or multiparous sows were selected receive a diet without adding extra fat (SAp or SAm) or with extra fat addition (AGp o AGm). The SA diet consisted in feeding a conventional commercial diet of 3 kg/day, in the AG diet the corn was reduced and soybean oil was included to supply 20% extra fat. Blood samples were collected at 85, 100, 113  days of gestation and 24 hours postpartum, and on 50% of the piglets born alive per litter. Serum cholesterol (CT), triglycerides (TG), high (HDL) and low (LDL) density lipoproteins, non-esterified fatty acids (NEFA) and beta hydroxybutyrate (BHB) were analyzed. <b>Results.</b> The Serum concentrations of HDL, LDL, CT NEFA, BHB, and TG (p&lt;0.01) increased in sows on days 100 and 113, but decreased at 24 hours postpartum. Blood metabolites in piglets under the influence of both treatments showed significant differences (p&lt;0.01). <b>Conclusions.</b> There was no statistical effect from the modification of dietary fat on LDL and NEFA; for the remaining indicators differences were evident in pregnant sows. There was no correlation between metabolic indicators in mothers and piglets.</p>      <p><b>Key words: </b>Lipid metabolism, indicators, prenatal nutrition, sows (<i>Sources: DeCS, AGROVOC</i>).</p> <hr>       <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>      <p>La gestaci&oacute;n de la cerda est&aacute; caracterizada por aumento de peso, distribuci&oacute;n de nutrientes entre el feto y los tejidos reproductivos y aumento en los tejidos de reserva para la movilizaci&oacute;n de nutrientes. Por ello, la dieta de las cerdas no debe centrarse exclusivamente en una sola caracter&iacute;stica, sino que debe pretender una mejora general de la funci&oacute;n reproductiva respetando las interacciones entre los distintos factores productivos en las etapas fisiol&oacute;gicas involucradas incluso en el periparto (1).</p>      <p>Durante la pre&ntilde;ez de la cerda, el crecimiento &oacute;ptimo y el desarrollo fetal depender&aacute; de los nutrientes suministrados y de la habilidad para utilizarlos, adem&aacute;s, de la eficiencia de la placenta para transferir nutrientes de la madre hacia el feto (2). Dependiendo de los niveles de nutrientes que circulen en la sangre materna, el feto se alimentar&aacute; de acuerdo con los requerimientos del metabolismo fetal  (3). As&iacute;, el crecimiento del feto, depende directamente de los nutrientes que atraviesan la placenta, la madre debe adaptar su metabolismo con el fin de apoyar este aporte permanente de  sustratos (4).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Para evaluar el grado de movilizaci&oacute;n grasa y la transferencia de nutrientes a trav&eacute;s de la placenta hacia el feto, resulta &uacute;til determinar los metabolitos bioqu&iacute;micos de los indicadores m&aacute;s relevantes del metabolismo lip&iacute;dico, como las lipoprote&iacute;nas plasm&aacute;ticas. Estas regulan la s&iacute;ntesis, degradaci&oacute;n  y transporte de  los l&iacute;pidos (5), y tambi&eacute;n otros metabolitos como colesterol, &aacute;cidos grasos no esterificados, triglic&eacute;ridos y &beta;-hidroxibutirato que son indicadores claves asociados al metabolismo graso y energ&eacute;tico. Estos indican cambios adaptativos durante la gestaci&oacute;n como respuesta a complejos reajustes fisiol&oacute;gicos, los cuales involucran la m&aacute;xima conservaci&oacute;n de energ&iacute;a y el uso eficiente de nutrientes para el mutuo beneficio de la madre y el desarrollo de la cr&iacute;a.</p>      <p>Es importante establecer una efectiva estrategia para la alimentaci&oacute;n de cerdas gestantes tanto en tipo de nutrientes y momento espec&iacute;fico de su aporte, usando criterios de nutrici&oacute;n precisos (6). Esto es crucial en el crecimiento tanto fetal como maternal en el caso de hembras prim&iacute;paras, mejorando la productividad y eficiencia de la producci&oacute;n porcina. Se considera que el crecimiento fetal se incrementa dram&aacute;ticamente en la &uacute;ltima fase de la gestaci&oacute;n por tanto se hace necesario establecer una estrategia alimenticia para este per&iacute;odo (7).</p>      <p>El objetivo del presente estudio fue evaluar el metabolismo lip&iacute;dico de cerdas gestantes como respuesta a la modificaci&oacute;n del nivel graso de la dieta y su efecto sobre la nutrici&oacute;n fetal a trav&eacute;s de indicadores metab&oacute;licos.</p>      <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>      <p><b>Animales y dietas experimentales. </b>El experimento se realiz&oacute; en una porc&iacute;cola comercial en el Valle del Cauca ubicada entre latitud norte a 3&deg; 24'43&rdquo; y longitud oeste 76&deg;2'01&rdquo;. Cincuenta y seis cerdas entre primerizas y mult&iacute;paras de genotipo comercial Landrace x Large White PIC, fueron seleccionadas a partir del d&iacute;a 85 de gestaci&oacute;n y se asignaron a uno de los dos tratamientos experimentales: SA (Sin adici&oacute;n de grasa) (n=28) o AG (Adici&oacute;n de grasa) (n=28). La asignaci&oacute;n final fue de 14 animales para cada uno de los tratamientos as&iacute;: SAp para cerdas primerizas sin adici&oacute;n de grasa, SAm para cerdas mult&iacute;paras sin adici&oacute;n de grasa, AGp para cerdas primerizas con adici&oacute;n de grasa y AGm para cerdas mult&iacute;paras con adici&oacute;n de grasa.</p>      <p>Desde el inicio de la gestaci&oacute;n al d&iacute;a 84, las cerdas recibieron 2 kg/d&iacute;a de alimento, y a partir del d&iacute;a 85 hasta el 113 a las cerdas se les suministraron las dietas experimentales. La dieta SA consisti&oacute; en proporcionar 3 kg/d&iacute;a de alimento balanceado comercial convencional rutinariamente usado en la granja, y la dieta AG consisti&oacute; en reducir 2 kg de ma&iacute;z  e incluir 2 kg de aceite de soya para proporcionar a la dieta un 20% de grasa extra, suministrados en 3 kg/d&iacute;a del alimento. Todas las dietas fueron isocal&oacute;ricas e isoproteicas (<a href="#tab1">Tabla 1</a>).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v18n2/v18n2a16t1.jpg" width="332" height="227" alt="Tabla 1"><a name="tab1"></a></p>      <p><b>Toma de muestras en cerdas y lechones. </b>Al momento del pesaje en los d&iacute;as 85, 100, 113 de gestaci&oacute;n y a las 24 h posparto despu&eacute;s del suministro diario de alimentaci&oacute;n se colect&oacute; sangre en todas las cerdas de cada uno de los tratamientos. Asimismo, se muestre&oacute; el 50% de los lechones nacidos vivos de cada camada. Las muestras  se tomaron por venipunci&oacute;n en la vena cava anterior, utilizando tubos al vac&iacute;o (sistema Vacutainer, BD, Franklin Lakes, NJ USA), sin anticoagulante. El suero fue separado por centrifugaci&oacute;n a 2000 g por 15 min. Con los sueros provenientes de los lechones se efectu&oacute; un pool, donde en una &uacute;nica muestra por tratamiento se analiz&oacute; el total de lechones muestreados en dicho grupo. Las muestras se congelaron a -20&deg;C hasta el momento del an&aacute;lisis. Mediante t&eacute;cnicas enzim&aacute;ticas colorim&eacute;tricas y reactivos comerciales se analizaron las concentraciones s&eacute;ricas de colesterol (CT), triglic&eacute;ridos (TG), lipoprote&iacute;nas de alta (HDL) y baja densidad (LDL), &aacute;cidos grasos no esterificados (NEFA) y betahidroxibutirato (BHB), a trav&eacute;s de equipo analizador qu&iacute;mico semiautom&aacute;tico (Rayto, RT-1904C, Shenzhen, R.P China).</p>      <p><b>Dise&ntilde;o experimental y an&aacute;lisis estad&iacute;stico.</b> El dise&ntilde;o correspondi&oacute; a un an&aacute;lisis de bloques completos al azar, donde el factor de bloqueo fue cerdas gestantes o lechones.  El an&aacute;lisis  estad&iacute;stico realizado fue MANOVA (an&aacute;lisis multivariante de la varianza para las variables dieta y experiencia en partos (prim&iacute;paras o mult&iacute;paras), cuando se presentaron diferencias estad&iacute;sticas se emple&oacute; la prueba de Tukey. Igualmente, se realiz&oacute; estad&iacute;stica descriptiva y pruebas de correlaci&oacute;n de Pearson para las variables asociadas a los indicadores metab&oacute;licos en estudio. El valor de probabilidad aceptado fue de (p&lt;0.05) Todos los an&aacute;lisis se efectuaron utilizando el paquete estad&iacute;stico SAS versi&oacute;n 9.1 (SAS Institute Inc., Cary, North Carolina, USA) (8).</p>      <p><b>RESULTADOS</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Indicadores metab&oacute;licos en cerdas gestantes.</b> En las concentraciones s&eacute;ricas de HDL, CT, TG y BHB se encontraron diferencias significativas (p&lt;0.05) entre tratamientos  antes del parto. Sin embargo, no se encontraron diferencias (p&gt;0.05) para  LDL  y NEFA en este mismo per&iacute;odo. En el per&iacute;odo posparto se encontraron diferencias significativas en los tratamientos experimentales (p&lt;0.05) para los metabolitos analizados (<a href="#tab2">Tabla 2</a>).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v18n2/v18n2a16t2.jpg" width="336" height="534" alt="Tabla 2"><a name="tab2"></a></p>      <p>En la <a href="#fig1">figura 1</a>, se muestra  la din&aacute;mica de las concentraciones de HDL, LDL, TG y CT desde el d&iacute;a 85 a las 24 horas posparto.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v18n2/v18n2a16f1.jpg" width="338" height="862" alt="Figura 1"><a name="fig1"></a></p>      <p>Las cerdas primerizas sin adici&oacute;n grasa en la dieta (SAp) mostraron una mayor concentraci&oacute;n (p&lt;0.01) en los metabolitos de HDL, LDL, CT y TG.</p>      <p>Para HDL y LDL se observ&oacute; un aumento en los d&iacute;as 100 y 113 respecto a las concentraciones del d&iacute;a 85 (p&lt;0.05). Por el contrario, CT y TG disminuyeron para estos mismos per&iacute;odos. Despu&eacute;s del parto, los tratamientos presentaron disminuci&oacute;n en las concentraciones de HDL, LDL, CT y TG, excepto las cerdas primerizas de ambos tratamiento en las cuales las concentraciones de LDL aumentaron.</p>      <p>Las concentraciones de NEFA, disminuyeron para los d&iacute;as 100, 113 (p&lt;0.05) y despu&eacute;s del parto, contrariamente para BHB las concentraciones aumentaron despu&eacute;s del parto (<a href="#fig2">Figura 2</a>).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v18n2/v18n2a16f2.jpg" width="340" height="544" alt="Figura 2"><a name="fig2"></a></p>      <p><b>Indicadores metab&oacute;licos de los lechones.</b> En las concentraciones s&eacute;ricas de los lechones se encontraron diferencias significativas entre tratamientos (p&lt;0.01) (<a href="#tab3">Tabla 3</a>). Para los metabolitos  LDL, CT y NEFA la mayor concentraci&oacute;n se present&oacute; para los lechones de las cerdas primerizas  con adici&oacute;n de grasa en la dieta (<a href="#tab3">Tabla 3</a>).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v18n2/v18n2a16t3.jpg" width="331" height="228" alt="Tabla 3"><a name="tab3"></a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En las concentraciones de HDL los lechones de las cerdas mult&iacute;paras con adici&oacute;n de grasa presentaron los valores m&aacute;s altos y para las concentraciones en TG, los lechones de las cerdas primerizas con adici&oacute;n de grasa presentaron la mayor concentraci&oacute;n.</p>      <p><b>DISCUSI&Oacute;N</b></p>      <p>El aumento de las  concentraciones de HDL y LDL  para los d&iacute;as 100 y 113, posiblemente se debi&oacute; a que durante la en la pre&ntilde;ez tard&iacute;a por efecto de los estr&oacute;genos y de la activaci&oacute;n de la resistencia insul&iacute;nica se present&oacute; un incremento de la actividad lipol&iacute;tica del tejido adiposo. Esto permiti&oacute; un aumento de las fracciones de triglic&eacute;ridos y de las lipoprote&iacute;nas que los transportan como LDL y HDL (4). Igualmente, se han encontrado valores mayores entre los 84-110 d&iacute;as de gestaci&oacute;n (0.91 mmol/L y 0.81 mmol/L), que despu&eacute;s del parto (0.74 mmol/L y 0.52 mmol/L) para HDL y LDL (9).</p>      <p>La adici&oacute;n de grasa no afect&oacute; las concentraciones de HDL y LDL en las cerdas  en ninguno de los tratamientos experimentales.  Contrario a los resultados hallados por Czech et al (9) quienes encontraron una correlaci&oacute;n entre la administraci&oacute;n de mananoligosac&aacute;ridos y el incremento de las fracciones de HDL y una reducci&oacute;n de la fracci&oacute;n de LDL.</p>      <p>Las concentraciones s&eacute;ricas de colesterol no fueron afectadas por el incremento de la  grasa en la dieta. Sin embargo, Gatford et al (10)  encontraron que al aumentar la nutrici&oacute;n materna se incrementaron las concentraciones de colesterol (2.3 vs. 2.7 mmol/L).</p>      <p>Se espera durante toda la gestaci&oacute;n un aumento en el contenido de triglic&eacute;ridos, m&aacute;s a&uacute;n  tras el consumo de dietas con mayor contenido de grasa, principalmente cuando el prop&oacute;sito de &eacute;stas es  proporcionar los &aacute;cidos grasos para el feto (11). No obstante, los resultados de esa investigaci&oacute;n muestran una disminuci&oacute;n progresiva en las concentraciones de TG. Mosnier et al (12) encontraron que las concentraciones plasm&aacute;ticas de TG 37 d&iacute;as antes del parto fueron menores que durante los 7 d&iacute;as previos al parto y disminuyeron progresivamente en esta semana. La reducci&oacute;n de los TG en el plasma durante la gestaci&oacute;n tard&iacute;a y la lactancia temprana pueden ser explicados por la captaci&oacute;n de la gl&aacute;ndula mamaria para la producci&oacute;n de leche, probablemente debido  a que se presenta lip&oacute;lisis intracelular de triglic&eacute;ridos como fuente primaria para los compuestos grasos de la leche. Ji et al (13) encontraron que aunque el crecimiento de la gl&aacute;ndula mamaria en la cerda es bajo durante la gestaci&oacute;n temprana, incrementa m&aacute;s de tres veces durante el &uacute;ltimo tercio de la gestaci&oacute;n. Por tanto,  la cerda adapta todos sus procesos digestivos y fisiol&oacute;gicosÂ  para la utilizaci&oacute;n y transferencia de una gran cantidad de l&iacute;pidos en las gl&aacute;ndulas mamarias para la producci&oacute;n de leche y calostro (14).</p>      <p>Las concentraciones halladas para NEFA, fueron mayores en el d&iacute;a 85 que para los d&iacute;as 100 y 113, esto se present&oacute; probablemente, debido a que las raciones ofrecidas a las cerdas antes del d&iacute;a 85 fueron de menor volumen que para los d&iacute;as siguientes. Es probable que las cerdas, movilizaron &aacute;cidos grasos para cubrir las demandas energ&eacute;ticas  para el crecimiento del feto en desarrollo y de las gl&aacute;ndulas mamarias, ya  que para este periodo es muy r&aacute;pido (15).</p>      <p>Cuando se evaluaron los valores s&eacute;ricos de NEFA en cerdas gestantes y lactantes tanto en forma individual como grupos en explotaciones comerciales, se encontr&oacute; para el d&iacute;a 94 de gestaci&oacute;n una oscilaci&oacute;n entre 0.05 y 1.58 mmol/L. Para el d&iacute;a 108, entre 0.06-1.50 mmol/L, en la lactancia en el d&iacute;a 7 un rango entre 0.07 y 0.98 mmol/L; y para el d&iacute;a 21, un rango de 0.06 a 1.20 mmol/L (16). Los valores encontrados en la presente investigaci&oacute;n se encuentran dentro del rango hallado explotaciones comerciales.</p>      <p>Las concentraciones halladas de BHB para las cerdas antes del parto fueron bajas, la raz&oacute;n principal es la alta utilizaci&oacute;n de nutrientes energ&eacute;ticos incluso BHB por parte de los fetos en crecimiento, dado que el BHB atraviesa la barrera placentaria (4). Variaciones en las concentraciones de BHB debidas a manipulaciones nutricionales han sido informadas cuando adicionaron almid&oacute;n de ma&iacute;z o aceite de soya  a una dieta para cerdas mult&iacute;paras, observando que a las cerdas que se les hab&iacute;a ofrecido aceite de soya tuvieron un menor incremento en las concentraciones de BHB que las cerdas alimentadas con suplemento de ma&iacute;z (17).</p>      <p>Te&oacute;ricamente el aumento de las concentraciones de BHB despu&eacute;s del parto, puede deberse a que la cerda pasa de un metabolismo anab&oacute;lico de la gestaci&oacute;n a un metabolismo catab&oacute;lico en la lactancia,  present&aacute;ndose lip&oacute;lisis de la grasa corporal de reserva para la producci&oacute;n  de calostro y leche (15). Las cerdas en esta situaci&oacute;n fisiol&oacute;gica est&aacute;n propensas a la acumulaci&oacute;n de cuerpos cet&oacute;nicos en el plasma, no obstante y posiblemente por el efecto de las dietas esto no fue observado. Jones et al (17) encontraron concentraciones metab&oacute;licas para BHB en el d&iacute;a 14 de lactancia de 0.04 mmol/L,  valores similares a los encontrados en este estudio.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>No se encontr&oacute; correlaci&oacute;n entre las concentraciones s&eacute;ricas de las cerdas a los 100 y 113 d&iacute;as con las concentraciones s&eacute;ricas de los lechones al nacimiento (r=0.026; p&lt;0.852) (r=-0.089; p&lt;0.54). Resultados similares encontraron Laws et al (18), donde  la grasa suministrada en la gestaci&oacute;n tard&iacute;a en dietas para cerdas no afect&oacute; la concentraci&oacute;n de NEFA en el plasma de los lechones. Cantidades limitadas de &aacute;cidos grasos libres son absorbidos por el &uacute;tero y atraviesan la barrera placentaria, principalmente en condiciones de ayuno. Asimismo, se ha encontrado que las concentraciones de NEFA son menores en el plasma fetal que en  el plasma maternal (19).</p>        <p>En el presente trabajo no se encontr&oacute; correlaci&oacute;n entre las concentraciones de TG de las cerdas en el d&iacute;a 100 y las concentraciones de TG de la camada (r=0.108, p&lt;0.23), pero, una correlaci&oacute;n inversa fue hallada en las cerdas a las 24 horas posparto con relaci&oacute;n a las concentraciones de TG de los lechones al nacimiento (p&lt;0.022, r=-0.87). Las concentraciones mayores de TG halladas en los lechones no pueden explicarse por lipolisis en el  tejido adiposo pardo,  &oacute;rgano &uacute;nico en los mam&iacute;feros, utilizado para sobrevivir cuando las dietas est&aacute;n bajas en macro nutrientes esenciales, bajo condiciones de estr&eacute;s y especialmente para la termorregulaci&oacute;n al nacimiento (20), porque, se ha demostrado que el lech&oacute;n no tiene grasa parda (21) y que los TG no atraviesan la placenta, pero el h&iacute;gado del feto puede sintetizarlos a partir de los &aacute;cidos grasos maternales y la placenta puede  entregar l&iacute;pidos al feto como &aacute;cidos grasos libres (22), los cuales son transportados como en lipoprote&iacute;na ricas en TG en el plasma maternal (4),  pero no hay una fuerte evidencia de que la placenta tenga receptores para estas lipoprote&iacute;nas (22).</p>      <p>No se encontr&oacute; correlaci&oacute;n entre las concentraciones de HDL y LDL de las cerdas en los d&iacute;as 85 y 100 con las concentraciones de HDL y LDL de los lechones (r=0.028, p&lt;0.21) (r=0.078, p&lt;0.37). Se encontr&oacute; correlaci&oacute;n entre HDL y LDL materno a los 113 d&iacute;as de gestaci&oacute;n con el HDL y LDL de los lechones al nacimiento (r=0.381, p&lt;0.0063) (r=-0.04, p&lt;0.73), respectivamente. Czech et al (9) encontraron en lechones concentraciones de (HDL 1.22 mmol/L y de LDL 1.24 mmol/L). Los valores para HDL fueron similares a los hallados en este estudio, sin embargo, los valores de LDL fueron mayores difiriendo con los de este estudio.</p>      <p>En este experimento se encontr&oacute; correlaci&oacute;n media y significativa en las concentraciones de CT de los lechones y las concentraciones de CT de las cerdas a los 113 d&iacute;as (r=0.57, p&lt;0.001), posiblemente por que a finales de la gestaci&oacute;n entre el 10% al 20% de colesterol fetal que ha cruzado la barrera placentaria proviene de la madre, y los tejidos fetales se originan de la s&iacute;ntesis de novo del colesterol, que es un componente integral del organismo en desarrollo (23).</p>      <p>En conclusi&oacute;n no se encontr&oacute; efecto de la modificaci&oacute;n del nivel  de grasa en la dieta sobre los indicadores metab&oacute;licos LDL y NEFA. Para los restantes indicadores se present&oacute; diferencia en las cerdas en gestaci&oacute;n. No se encontr&oacute; correlaci&oacute;n entre los indicadores metab&oacute;licos de las madres y los lechones. Posiblemente, los niveles de  sustituci&oacute;n grasa afectaron el metabolismo lip&iacute;dico de la madre, pero &eacute;ste no gener&oacute; efecto sobre la nutrici&oacute;n fetal.</p>       <p><b>REFERENCIAS</b></p>        <!-- ref --><p>1. Penz AM, Ebert A.R, Fatores nutricionais que influenciam o peso e a uniformidade dos leit&otilde;es ao nascimento. In: Congresso Brasileiro de Veterin&aacute;rios Especialistas em Su&iacute;nos. Porto Alegre 15-18 de Octubre de 2001. Porto Alegre: ABRAVES; 2001.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0122-0268201300020001600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>2. Cerisuelo Garc&iacute;a A. Influence of maternal feed allowance during mid-gestation on progeny muscle fiber development and sow performance over three consecutive cycles. &#91;Tesis Doctoral&#93;. Bellaterra: Universitat aut&oacute;noma de Barcelona, Departament de Ci&egrave;ncia Animal i dels Aliments; 2007.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0122-0268201300020001600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>3. Argenti P,  Fuentes A, Palma J, Rivas A. Efecto del uso de la glucosa en cerdas gestantes treinta d&iacute;as preparto sobre el peso de los lechones al nacer. Zootec Trop 2001; 19(3):443-453.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0122-0268201300020001600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>4. Herrera E. Implications of dietary fatty acids during pregnancy on placental, fetal and postnatal development. A review. Placenta 2002; 23(16):S9-S19.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0122-0268201300020001600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>       <!-- ref --><p>5. Kaneko JJ. Clinical biochemistry of domestic animals. San Diego, CA: Academic Press; 1997.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0122-0268201300020001600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>6. Babinszky L, Halas V. Innovative swine nutrition: some present and potential applications of latest scientific findings for safe pork production. Ital J Anim Sci 2009; 8(3):7-20.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0122-0268201300020001600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>       <!-- ref --><p>7. McPherson RL, Ji F, Wu G, Blanton JR, Kim Jr, Kim SW. Growth and compositional changes of fetal tissues in pigs. J Anim Sci 2004; 82(9):2534-2540.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0122-0268201300020001600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>8. Statistical Analysis Systems Institute (SAS Institute). SAS User's guide: statistics. Version 9.1 ed. SAS Institute, Cary, N.C. 2005.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0122-0268201300020001600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>9. Czech A, Mokrzycka A, Grela ER, Pejsak Z. Influence of mannanoligosaccharides additive to sows diets on blood parameters of sows and their piglets. Bull Vet Inst Pulawy 2009; 53:89-95.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0122-0268201300020001600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>       <!-- ref --><p>10. Gatford  KL, Ekert JE, Blackmore K, De Blasio MJ, Boyce JM, Owens JA, Campbell RG, Owens PC. Variable maternal nutrition and growth hormone treatment in the second quarter of pregnancy in pigs alter semitendinosus muscle in adolescent progeny. Br J Nutr 2003; 90:283-293.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0122-0268201300020001600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>11. Haggarty P. Effect of placental function on fatty acid requirements during pregnancy. Eur J Clin Nutr 2004; 58:1559-1570.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0122-0268201300020001600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>       <!-- ref --><p>12. Mosnier E, Etienne M, Ramaekers P, P&egrave;re MC. The metabolic status during the peri partum period affects the voluntary feed intake and the metabolism of the lactating multiparous sow. J Livsci 2010; 127:127-136.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0122-0268201300020001600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>13. Ji F, Hurley WL, Kim SW. Characterization of mammary gland   development in pregnant gilts. J Anim Sci 2006; 84:579-587.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0122-0268201300020001600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>14. Quiniou  N, Richard S, Mourot J, Etienne M. Effect of dietary fat or starch supply during gestation and/or lactation on the performance of sows, piglets' survival and on the performance of progeny after weaning. Animal 2008; 2(11):1633-1644.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0122-0268201300020001600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>15. Zhang RF, Hu Q, Li PF, Xue LF, Piao XS, Li DF. Effects of lysine intake during middle to late gestation (Day 30 to 110) on reproductive performance, colostrum composition, blood metabolites and hormones of multiparous sows. Asian-Aust J Anim Sci 2011; 24(8):1142-1147.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0122-0268201300020001600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>16. Verheyen AJM, Maes DGD, Mateusen B, Deprez P, Janssens GPJ, De Lange L, Counotte G.  Serum biochemical reference values for gestating and lactating. Vet J 2007; 174:92-98.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0122-0268201300020001600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>17. Jones GM, Edwards SA, Sinclair AG, Gebbie FE, Rooke JA, Jagger S et al. The effect of maize starch or soya-bean oil as energy sources in lactation on sow and piglet performance in association with sow metabolic state around peak lactation. J Anim Sci 2002; 75:57-66.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0122-0268201300020001600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>18. Laws J, Litten JC, Laws A, Lean IJ, Dodds PF, Clarke L. Effect of type and timing of oil supplements to sows during pregnancy on the growth performance and endocrine profile of low and normal birth weight offspring. Br J Nutr 2009; 101:240-249.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0122-0268201300020001600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>19. P&egrave;re MC, Effects of meal intake on materno-foetal exchanges of energetic substrates in the pig. Reprod Nutr Dev 2001; 41:285-296.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0122-0268201300020001600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>20. Cannon B, Nedergar J. Brown adipose tissue: function and physiological significance.  Physiol Rev 2004; 84:277-359.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0122-0268201300020001600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>21. Gondret F, Perruchot MH, Tacher S, Berard J, Bee G. Differential gene expressions in subcutaneous adipose tissue pointed to a delayed adipocytic differentiation in small pig fetuses compared to their heavier siblings. Differentiation 2011; 81:253-260.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0122-0268201300020001600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>22. Mota D, Orozco H, Villanueva D, Bonilla H, Suarez X, Hern&aacute;ndez R, Roldan  P et al. Foetal and neonatal energy metabolism in pigs and humans: a review. Veterinarni Medicina 2011; 56(5):215-225.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0122-0268201300020001600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>23. Sliwa E, Tatara MR, Pierzynowski SG. Total cholesterol, glucose and electrolytes in piglets serum after &alpha;-Ketuglutarate (AKG) and dexamethasone treatment during prenatal and neonatal life. Bull Vet Inst Pulawy 2006; 50:561-566.</p>   </font>      ]]></body><back>
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