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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective. Assess the effect of different live prey in the larviculture of Trans-andean shovelnose catfish (Sorubim cuspicaudus). Materials and methods. At the beginning of exogenous feeding, zooplankton produced in mesocosm (T1), wild zooplankton (T2) and brine shrimp (T3), in concentrations of 10.000 zoop/L, were fed twice daily, for six days. 18 five-liter useful volume aquariums were used, with density of 25 Larvas/L, and six replicas per treatment in a random design. The increase in weight (Gp) length (Gl), the specific growth rate (G), survival (S), stress resistance (Re), accumulated mortality (Ma) and mortality due to cannibalism (Mc) were measured. Results. Larvae fed with mesocosm presented the highest survival rate (81.3±15.9%), although larvae fed wild zooplankton (T2) had the highest growth (Gp, Gl, G), and recorded the highest accumulated mortality (42.0±10.7%) and the lowest resistance to stress (30.0±33.0%). Cannibalism was observed in all treatments, ranging from 4.0 (T2) to 14.3% (T1) no significant difference between these values (p>0.05) was observed. Conclusions. The use of zooplankton produced under controlled conditions allows high survival, adequate performance and resistance of the larvae, emerging as viable alternative for the first feeding of white catfish.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[    <font face="verdana" size="2">     <p align="right"><b>ORIGINAL</b></p>     <p align="center"><b><font size="3">Efecto de tres tipos de presas vivas en la larvicultura de bagre blanco (<i>Sorubim cuspicaudus</i>)</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="3">Effect of three types of live preys on larviculture of the trans-andean shovelnose catfish (<i>Sorubim cuspicaudus</i>)</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>Martha Prieto-Guevara,<sup>1*</sup> Ph.D, Jhiry Hern&aacute;ndez B,<sup>2</sup> Prof. Acuicul, Catalino G&oacute;mez R,<sup>2</sup> Prof. Acuicul, Sandra Pardo C,<sup>3</sup> Ph.D, Victor Atencio-Garcia,<sup>1</sup> M.Sc, Priscila V Rosa,<sup>4</sup> Ph.D.</b>      <p><sup>1</sup>Universidad de C&oacute;rdoba, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Departamento de Ciencias Acu&iacute;colas, Grupo del Centro de Investigaci&oacute;n Pisc&iacute;cola CINPIC. Monter&iacute;a-C&oacute;rdoba, Colombia.     <br>   <sup>2</sup>Universidad de C&oacute;rdoba, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Departamento de Ciencias Acu&iacute;colas. Monter&iacute;a-C&oacute;rdoba, Colombia.     <br>   <sup>3</sup>Universidad Nacional de Colombia Sede Medell&iacute;n, Facultad de Ciencias Agrarias, Departamento Producci&oacute;n Animal, Medell&iacute;n, Colombia.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <sup>4</sup>Universidade Federal de Lavras, Departamento de Zootecnia. Lavras, MG, Brasil.</p>        <p>*Correspondencia: <a href="mailto:alimvi@hotmail.com">alimvi@hotmail.com</a></p>     <p>Recibido: Julio de 2012; Aceptado: Febrero de 2013.</p> <hr>      <p><b>RESUMEN</b></p>      <p><b>Objetivo. </b>Evaluar el efecto de diferentes presas vivas en la larvicultura de bagre blanco (<i>Sorubim cuspicaudus</i>). <b>Materiales y m&eacute;todos. </b>Al inicio de la alimentaci&oacute;n ex&oacute;gena de <i>Sorubim cuspicaudus</i>, se ofreci&oacute; zooplancton producido en mesocosmos (T1), zooplancton silvestre (T2) y nauplios de <i>Artemia</i> (T3), en concentraci&oacute;n de 10.000 zoop/L, dos veces al d&iacute;a, durante seis d&iacute;as. Se utilizaron 18 acuarios de cinco litros de volumen &uacute;til, con densidad de 25 Larvas/L, seis r&eacute;plicas por tratamiento en un dise&ntilde;o al azar. Se estimaron la ganancia en peso (Gp) y longitud (Gl), tasa de crecimiento espec&iacute;fico (G), sobrevivencia (S), resistencia al estr&eacute;s (Re), mortalidad acumulada (Ma) y mortalidad por canibalismo (Mc). <b>Resultados.</b> Las larvas alimentadas con mesocosmos presentaron la mayor sobrevivencia (81.3&plusmn;15.9%); aunque el mejor crecimiento lo presentaron las larvas alimentadas con zooplancton silvestre (T2) las cuales presentaron la mayor mortalidad (42.0&plusmn;10.7%) y la menor resistencia al estr&eacute;s (30.0&plusmn;33.0%). El canibalismo se observ&oacute; en todos los tratamientos, oscilando entre 4.0 (T2) y 14.3% (T1) sin diferencias significativas entre estos valores (p&gt;0.05). <b>Conclusiones</b>. El uso de zooplancton producido bajo condiciones controladas permiti&oacute; una alta sobrevivencia, adecuado desempe&ntilde;o y resistencia de las larvas, perfil&aacute;ndose como alternativa viable en la primera alimentaci&oacute;n de bagre blanco.</p>      <p><b>Palabras clave:</b> Alimento vivo, <i>Artemia</i>, larva, mesocosmos (<i>Fuentes: ASFA, CAB</i>).</p> <hr>      <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p><b>Objective.</b> Assess the effect of different live prey in the larviculture of Trans-andean shovelnose catfish (<i>Sorubim cuspicaudus</i>). <b>Materials and methods.</b> At the beginning of exogenous feeding, zooplankton produced in mesocosm (T1), wild zooplankton (T2) and brine shrimp (T3), in concentrations of 10.000 zoop/L, were fed twice daily, for six days. 18 five-liter useful volume aquariums were used, with density of 25 Larvas/L, and six replicas per treatment in a random design. The increase in weight (Gp) length (Gl), the specific growth rate (G), survival (S), stress resistance (Re), accumulated mortality (Ma) and mortality due to cannibalism (Mc) were measured. <b>Results.</b> Larvae fed with mesocosm presented the highest survival rate (81.3&plusmn;15.9%), although larvae fed wild zooplankton (T2) had the highest growth (Gp, Gl, G), and recorded the highest accumulated mortality (42.0&plusmn;10.7%) and the lowest resistance to stress (30.0&plusmn;33.0%). Cannibalism was observed in all treatments, ranging from 4.0 (T2) to 14.3% (T1) no significant difference between these values (p&gt;0.05) was observed. <b>Conclusions.</b> The use of zooplankton produced under controlled conditions allows high survival, adequate performance and resistance of the larvae, emerging as viable alternative for the first feeding of white catfish.</p>      <p><b>Key words:</b> Live food, <i>Artemia</i>, mesocosms, larvae (<i>Sources: ASFA, CAB</i>).</p>  <hr>      <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las larvas de bagre blanco (<i>Sorubim cuspicaudus</i>) se ubican en la categor&iacute;a de altriciales por presentar poca reserva vitelina y tracto digestivo indiferenciado al inicio de la alimentaci&oacute;n ex&oacute;gena; por tal raz&oacute;n, es indispensable el suministro de alimentos vivos (1). Una limitante de mayor importancia en larvicultura de peces es la primera alimentaci&oacute;n, registrando mayores &iacute;ndices de mortalidad, principalmente cuando las reservas vitelinas se agotan y los organismos empiezan a ingerir alimento ex&oacute;geno; este momento se considera cr&iacute;tico; por lo que requieren en esta etapa de su desarrollo una dieta a base de alimentos vivos, f&aacute;cilmente digeribles y de alto valor nutritivo (1,2). El uso de estos organismos mejora la sobrevivencia y crecimiento de las larvas, las cuales no podr&iacute;an aprovechar los nutrientes presentes en las dietas inertes debido a que en esta etapa el tracto digestivo no est&aacute; totalmente desarrollado y no poseen todas las enzimas requeridas para una adecuada digesti&oacute;n (3).</p>      <p>El bagre blanco, como otros pimel&oacute;didos, responde bien a las t&eacute;cnicas de reproducci&oacute;n artificial con extracto pituitario de carpa (EPC) y an&aacute;logos de Salm&oacute;n (sGnrH-a) (4,5); no obstante falta por definir aspectos que permitan realizar una larvicultura con resultados de crecimiento y sobrevivencia confiables para desarrollar exitosamente tecnolog&iacute;as de producci&oacute;n de alevinos. Un estudio previo report&oacute; que el r&eacute;gimen alimentario del bagre blanco en su fase de alevinaje en estanques en tierra, mostr&oacute; preferencia por clad&oacute;ceros (<i>Diaphanosoma</i>, <i>Moinodaphnia</i>, <i>Moina</i>) y cop&eacute;podos (<i>Argyrodiaptomus</i>, <i>Termocyclops</i>, <i>Mesocyclops</i>) (1); lo cual sugiere que son alimentos que permiten buen desarrollo y crecimiento en sus primeras fases de vida.</p>      <p>La producci&oacute;n de presas espec&iacute;ficas en sistema de mesocosmos presenta caracter&iacute;sticas importantes para el manejo de la primera alimentaci&oacute;n de larvas altriciales, permite ofrecer en condiciones controladas una variedad de presas y tama&ntilde;os, que sirven de est&iacute;mulo al comportamiento predador de la larva, se evitan influencias ambientales desfavorables y aumenta la tasa de supervivencia debido a la ausencia de predadores y pat&oacute;genos que coexisten con el zooplancton silvestre (2). Por otro lado, la estructura y composici&oacute;n del zooplancton silvestre como alimento, puede variar a lo largo del a&ntilde;o, pudiendo influir sobre el desempe&ntilde;o de la larvicultura (1, 6). Entonces, con el suministro de zooplancton seleccionado se puede contribuir a mejorar el proceso productivo de la larvicultura e incrementar la oferta de alevinos para el fomento del cultivo de una especie.</p>      <p>De este modo, el sistema de mesocosmos surge como alternativa en el manejo de la primera alimentaci&oacute;n de peces tropicales, paralelo a sistemas tradicionales como la alimentaci&oacute;n con zooplancton silvestre y el suministro de nauplios de <i>Artemia</i>. El presente estudio evalu&oacute; la larvicultura de bagre blanco al inicio de la alimentaci&oacute;n ex&oacute;gena, alimentando con zooplancton silvestre, nauplios de <i>Artemia</i> y zooplancton generado en sistemas de mesocosmos para determinar su incidencia en la sobrevivencia, crecimiento y calidad de la larva.</p>      <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>      <p><b>Material biol&oacute;gico y unidades experimentales.</b> El estudio se realiz&oacute; en el Centro de Investigaci&oacute;n Pisc&iacute;cola de la Universidad de C&oacute;rdoba CINPIC (Monter&iacute;a, C&oacute;rdoba, Colombia), cuyas coordenadas geogr&aacute;ficas son 8&deg;48' de Latitud Norte y 75&deg;22' de Longitud Oeste, con altura de 15 msnm y valores anuales promedios de temperatura de 27.5&deg;C, humedad relativa del 85% y precipitaciones de 1100 mm. Se utilizaron larvas obtenidas mediante reproducci&oacute;n artificial, de reproductores de bagre blanco mantenidos en cautiverio, inducidos con Ovaprim&reg; en dosis &uacute;nica de 0.3 ml/Kg de peso, en la base de la aleta pectoral, tanto para machos como para hembras (4,5), mantenidos en piletas de 6 m3; a partir de diez horas post-inducci&oacute;n se revis&oacute; cada media hora para determinar el momento de la ovulaci&oacute;n. La fertilizaci&oacute;n se realiz&oacute; en seco, posteriormente estos fueron transferidos a incubadoras cilindro-c&oacute;nicas de 60 L de capacidad y flujo ascendente continuo (4-6 l/min).</p>      <p>Las larvas reci&eacute;n eclosionadas fueron transferidas a incubadoras con volumen de 200 litros y mantenidas all&iacute; hasta las 40 horas post-eclosi&oacute;n (HPE). Todas las larvas proced&iacute;an del desove de una sola hembra, para evitar el sesgo en la calidad de las larvas, fueron contadas individualmente y dispuestas a densidad de 25 larvas/l; para un total de 125 larvas en cada una de las 18 unidades experimentales, conformadas por acuarios de vidrio con volumen operativo de 5 litros, con tres de sus lados cubiertos con pl&aacute;stico negro para aislar visualmente los acuarios, reducir la incidencia de la luz y minimizar los factores de estr&eacute;s en los organismos. Al inicio de la alimentaci&oacute;n ex&oacute;gena se realiz&oacute; una descripci&oacute;n general de larvas, considerando las caracter&iacute;sticas de los ojos, boca, saco vitelino, barbicelos y pigmentaci&oacute;n. Adicionalmente se determin&oacute; la abertura bucal m&aacute;xima, mediante la ecuaci&oacute;n:</p>       <p><img src="img/revistas/mvz/v18n3/vol18n3a7g1.jpg" width="182" height="30">    <br>  (Lms, longitud del maxilar superior).</p>     <p>Se utiliz&oacute; agua del r&iacute;o Sin&uacute;, previamente filtrada por un filtro lento de arena, tratada con sulfato de aluminio (20 mg/l), aireada y reposada durante tres d&iacute;as para obtener apropiada calidad. La aireaci&oacute;n fue individual en cada acuario, diariamente se registr&oacute; la temperatura, ox&iacute;geno disuelto con ox&iacute;metro digital (YSI, 550A, USA) y pH con pH-metro digital (WTW, 320, Alemania). La dureza total, alcalinidad y amonio total fueron medidos al inicio, en la mitad y al final del estudio. La alcalinidad fue determinada por el m&eacute;todo de la fenolftale&iacute;na, utilizando reactivos HACH (&aacute;cido sulf&uacute;rico, fenolftale&iacute;na y verde de bromocresol), con un titulador digital (HACH, USA). La dureza se registr&oacute; con el m&eacute;todo de titulaci&oacute;n EDTA con sodio a concentraci&oacute;n de 0.08M mediante la utilizaci&oacute;n de un titulador digital (HACH, USA). El amonio total se determin&oacute; mediante el m&eacute;todo de titulaci&oacute;n &aacute;cida utilizando reactivos HACH (agua desmineralizada, &aacute;cido sulf&uacute;rico 8N y soluci&oacute;n indicadora HACH, USA). La mortalidad diaria y total se determin&oacute; colectando las larvas muertas por acuario antes y despu&eacute;s de la alimentaci&oacute;n. Heces y alimento no consumido fueron retirados mediante sifoneo dos horas despu&eacute;s de la alimentaci&oacute;n y seguidamente se realiz&oacute; recambio hasta de 30% del volumen de agua total.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se suministr&oacute; dos raciones diarias (8:00 am y 5:00 pm), durante seis d&iacute;as, de los siguientes alimentos: T1, zooplancton entre 250-400 &micro;m producidos en mesocosmos compuesto por cop&eacute;podos del g&eacute;nero <i>Diaptomus</i> sp (41%) y clad&oacute;ceros (59%) de los g&eacute;neros <i>Diaphanosoma</i> sp, <i>Moina</i> sp y <i>Moinodaphnia</i> sp; T2, zooplancton silvestre 250-400 &micro;m compuesto por cop&eacute;podo cyclopoides (52%) y clad&oacute;ceros (48%); T3, nauplios reci&eacute;n eclosionados de <i>Artemia</i> (250 &micro;m); para un total de 50000 presas en cada acuario por d&iacute;a (densidad 10 ind/ml). La densidad del zooplancton se determin&oacute; volum&eacute;tricamente contando tres al&iacute;cuotas de 1 ml en c&aacute;mara multicelda con ayuda de estereoscopio (Leica, Wild MZ8, Alemania), se determin&oacute; el n&uacute;mero total de organismos por mililitro y la composici&oacute;n porcentual de cada grupo por tratamiento.</p>      <p><b>Producci&oacute;n de zooplancton.</b> Cepas del cop&eacute;podo calanoide <i>Diaptomus</i> sp y los clad&oacute;ceros <i>Diaphanosoma</i> sp, <i>Moina</i> sp., y <i>Moinodaphnia</i> sp., obtenidas en el Laboratorio de Alimento Vivo de la Universidad de C&oacute;rdoba; fueron mantenidas en frascos de 250 ml, usando como alimento microalgas <i>Ankistrodesmus</i> y <i>Scenedesmus</i> en concentraci&oacute;n de 1x10<sup>5</sup> cel/ml y 3x10<sup>5</sup> cel/ml para cop&eacute;podos y clad&oacute;ceros, respectivamente; de acuerdo con m&eacute;todo implementado por Mart&iacute;nez et al (7). Se realiz&oacute; proliferaci&oacute;n de biomasas en frascos de 3 l, con aireaci&oacute;n moderada, iluminaci&oacute;n constante y renovaci&oacute;n de 30% del volumen de agua cada tres d&iacute;as, mediante el uso de filtros de 40 mm para retener clad&oacute;ceros y nauplios de cop&eacute;podos. El incremento de biomasa en el tiempo se realiz&oacute; siguiendo el m&eacute;todo descrito por Prieto et al (8), el cual consiste b&aacute;sicamente en realizar in&oacute;culos sucesivos, empleando el m&eacute;todo de serial de vol&uacute;menes.</p>      <p>Para la producci&oacute;n de zooplancton en el sistema mesocosmos se utiliz&oacute; agua filtrada a 40 mm, en un sistema modular en concreto de 6 m3 en exterior, protegido con techo traslucido, aireaci&oacute;n constante, fotoperiodo natural y temperatura ambiente (28&plusmn;1&deg;C). Para conformar el mesocosmos se inocularon biomasas de cop&eacute;podos y clad&oacute;ceros en relaci&oacute;n 65:35 respectivamente; producidas con aireaci&oacute;n individualmente en tanques circulares en fibra de vidrio (capacidad 1000 l); acorde a la diferencia en la estrategia reproductiva y m&eacute;todo establecido por Mart&iacute;nez et al (7). Una vez en producci&oacute;n, se realiz&oacute; cosecha parcial diaria del cultivo de mesocosmos con red planct&oacute;nica de 100 &micro;m y selecci&oacute;n a trav&eacute;s de tamices entre 250 y 400 &micro;m para la alimentaci&oacute;n de las larvas en estudio. Luego de establecer la concentraci&oacute;n de zooplancton, se calcul&oacute; la raci&oacute;n diaria para cada unidad experimental por el m&eacute;todo volum&eacute;trico, ajustando la densidad final descrita.</p>      <p><b>Zooplancton silvestre y artemia. </b>Mediante arrastres diarios en estanques en tierra fertilizados, utilizando red planct&oacute;nica de 35 &micro;m y sistema de tamices de tambor, se colect&oacute; y separ&oacute; entre 250 y 400 &micro;m zooplancton silvestre. Previo al suministro, se cont&oacute; e identific&oacute; los grupos principales (Rot&iacute;feros, Clad&oacute;ceros y Cop&eacute;podos). Los n&aacute;uplios Instar I de <i>Artemia</i> fueron obtenidos mediante eclosi&oacute;n diaria de cistos, en incubadoras cil&iacute;ndricas conteniendo agua de mar a 35% de salinidad y 30&deg;C, con aireaci&oacute;n fuerte e iluminaci&oacute;n directa constante mediante l&aacute;mparas fluorescentes con 2000 lux en la superficie del agua. La cosecha se realiz&oacute; despu&eacute;s de 24 horas, para lo cual se retir&oacute; la aireaci&oacute;n y se aprovech&oacute; el fototropismo positivo de los nauplios para que se concentraran en el fondo de las incubadoras.</p>      <p><b>Par&aacute;metros de desempe&ntilde;o.</b> Al inicio del estudio se tomaron 100 larvas y entre 15 a 20 larvas por cada acuario al final del experimento, se preservaron en formalina al 4% (v/v) tamponada; para su posterior evaluaci&oacute;n. Las larvas fueron pesadas en balanza anal&iacute;tica 0.01 mg (Ohaus Adventurer, Dinamarca) y medidas desde la punta del hocico hasta el final de la aleta caudal, con la ayuda de un analizador de imagen (Axiovision 4.3, Alemania) y estereoscopio (Leica, Wild MZ8, Alemania) con c&aacute;mara digital incorporada (Canon, Power G10, Jap&oacute;n).</p>      <p>La ganancia en peso (Gp) y la ganancia en longitud (Gl) se estim&oacute; empleando las ecuaciones: Gp (mg)= Pmf - Pmi; donde Pmf y Pmi corresponden al peso medio final e inicial respectivamente. Gl (mm)= Ltf-Lti; donde Ltf y Lti corresponden a la longitud total final e inicial respectivamente. La tasa de crecimiento espec&iacute;fico (G) se estim&oacute; con la f&oacute;rmula: G (%/d&iacute;a)= Ln (Pmf-Pmi)/t x 100; donde Pmf y Pmi corresponden al peso final e inicial respectivamente, t es el tiempo de cultivo expresado en d&iacute;as y Ln es el logaritmo neperiano.</p>     <p>Al final del experimento se contaron las larvas vivas y la sobrevivencia final se calcul&oacute; con la f&oacute;rmula: S (%) = (n&uacute;mero final de larvas/n&uacute;mero inicial de larvas) x 100. Igualmente se retiraron 20 larvas de cada unidad experimental con una nasa con ojo de malla de 400 &micro;m, se colocaron fuera del agua, sobre papel absorbente durante ocho minutos; posteriormente se transfirieron a un recipiente con agua de la misma unidad experimental; 20 minutos m&aacute;s tarde se contaron las larvas que sobrevivieron y de esta manera se calcul&oacute; la sobrevivencia a la prueba de resistencia al estr&eacute;s; este m&eacute;todo fue utilizado por Kerguel&eacute;n-Durango et al (6) en <i>Prochilodus magdalenae</i> como un indicador de calidad larval. Diariamente, se colect&oacute; y cont&oacute; por cada unidad experimental las larvas muertas.</p>      <p>La mortalidad diaria (Md) se calcul&oacute; con la siguiente f&oacute;rmula: Md (%) = (n&uacute;mero de larvas muertas d&iacute;a/n&uacute;mero inicial de larvas) x 100. Para establecer la mortalidad acumulada (Ma), se cuantific&oacute; el n&uacute;mero total de larvas muertas por d&iacute;a y se utiliz&oacute; la ecuaci&oacute;n: Ma(%)=(n&uacute;mero total de larvas muertas/n&uacute;mero inicial de larvas) x 100. Se consider&oacute; como mortalidad por canibalismo (Mc) a la diferencia entre la mortalidad total y la mortalidad acumulada, esta mortalidad se estim&oacute; mediante la f&oacute;rmula: Mc(%) = ((n&uacute;mero inicial Larvas - n&uacute;mero final Larvas) - mortalidad acumulada)/(N&deg; inicial Larvas) x 100.</p>      <p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico.</b> Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o completamente aleatorio con tres tratamientos, cada uno con seis repeticiones. A todas las variables se les realiz&oacute; las pruebas de normalidad (Shapiro-Wilk) y homogeneidad de varianza (Kolmogorov-Smirnov), previamente transformadas mediante la funci&oacute;n  arcoseno.  Luego se analizaron mediante an&aacute;lisis de varianza (ANOVA) y cuando se observaron diferencias estad&iacute;sticas significativas se aplic&oacute; la prueba de Rango M&uacute;ltiple de Diferencia M&iacute;nima Significante (LSD), utilizando para todos los casos una significancia de p&lt;0.05. El an&aacute;lisis estad&iacute;stico fue realizado con ayuda del programa SAS (9).</p>      <p><b>RESULTADOS</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En la <a href="#t1">tabla 1</a> se presentan los valores promedios de temperatura, ox&iacute;geno disuelto, pH, alcalinidad, dureza y amonio total en el agua utilizada durante el experimento en los diferentes tratamientos. Ninguno de los par&aacute;metros analizados present&oacute; diferencias significativas (p&gt;0.05).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v18n3/vol18n3a7t1.jpg"><a name="t1"></a></p>      <p>Las larvas de bagre blanco iniciaron la primera alimentaci&oacute;n entre 48 y 51 HPE, a temperatura promedio del agua de 28.5&plusmn;0.7&deg;C, con peso promedio de 1.0&plusmn;0.0 mg, longitud total promedio de 5.6&plusmn;0.4 mm y abertura bucal inicial promedio de 622.3&plusmn;70.2 &micro;m. El cuerpo se observ&oacute; trasl&uacute;cido, con presencia del tubo digestivo formado, sin diferenciaci&oacute;n de gl&aacute;ndulas anexas, los barbillones blanquecinos en formaci&oacute;n y l&aacute;melas branquiales definidas, boca en posici&oacute;n terminal y ojos completamente pigmentados.</p>      <p>En la <a href="#t2">tabla 2</a> se registr&oacute; el desempe&ntilde;o en crecimiento de las larvas de bagre blanco. Las larvas alimentadas con zooplancton silvestre (T2) presentaron la mayor Gp (24.9&plusmn;2.2 mg) y G (54.4&plusmn;1.3 %/d&iacute;a) siendo diferente estad&iacute;sticamente a los otros tratamientos (p&lt;0.05); tambi&eacute;n la mayor Gl fue tambi&eacute;n fue registrada en las larvas alimentadas con T1 (10.5&plusmn;0.7 mm), pero sin observarse diferencia significativa (p&gt;0.05) con las alimentadas con zooplancton producido en sistema de mesocosmos (T2, 11.3&plusmn;0.5 mm).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v18n3/vol18n3a7t2.jpg"><a name="t2"></a></p>      <p>En la <a href="#t3">tabla 3</a> se registran los valores promedios de sobrevivencia al final del ensayo (S) y la sobrevivencia despu&eacute;s que las larvas fueron sometidas a la prueba de resistencia al estr&eacute;s (Re). La sobrevivencia final oscil&oacute; entre 54.0&plusmn;14.1% (T2) y 81.3&plusmn;15.9% (T1) sin observarse diferencia significativa entre los diferentes tratamientos (p&gt;0.05). La mayor sobrevivencia a la prueba de resistencia al estr&eacute;s se observ&oacute; en larvas alimentadas con <i>Artemia</i> (95.6&plusmn;5.4%) (p&lt;0.05); seguidas por las alimentadas con zooplancton producido en sistema mesocosmo (61.3&plusmn;40.9%) y silvestre (30.0&plusmn;33.0%) sin presentarse diferencias significativas entre estos valores.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v18n3/vol18n3a7t3.jpg"><a name="t3"></a></p>      <p>En el primer d&iacute;a, la mortalidad diaria oscil&oacute; entre 0.5&plusmn;0.7% (T1) y 6.8&plusmn;8.5% (T2) sin observarse diferencia estad&iacute;stica entre estos valores (p&gt;0.05); entre los d&iacute;as 2 y 4 de la larvicultura  fue mayor en las larvas alimentadas con zooplancton silvestre (T2) registrando mortalidades diarias por encima de 9%; mientras que los d&iacute;as 5 y 6 la mortalidad diaria fue mayor en las larvas alimentadas con nauplios de <i>Artemia</i> (T3), registrando mortalidades diarias cercanas a 6% (p&lt;0.05). Las larvas alimentadas con zooplancton producido en sistema de mesocosmo (T1) registraron la menor mortalidad diaria durante el ensayo, en ninguno de los d&iacute;as super&oacute; en promedio 2.0% (<a href="#f1">Figura 1</a>).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v18n3/vol18n3a7f1.jpg"><a name="f1"></a></p>      <p>En la <a href="#t4">tabla 4</a> se muestra la mortalidad acumulada (Ma) al final del ensayo y la mortalidad por causa del canibalismo. La mayor mortalidad acumulada se obtuvo en las larvas alimentadas con zooplancton silvestre (T2, 42.0&plusmn;10.7%) y la menor en las larvas alimentadas con mesocosmos (T1, 4.5&plusmn;2.7%) observ&aacute;ndose diferencia significativa entre los tratamientos (p&lt;0.05). Diariamente se observ&oacute; canibalismo, al momento de retirar las larvas muertas se encontraban larvas mordidas, restos como cabezas y colas; al final del experimento algunas larvas hab&iacute;an desaparecido por completo. El canibalismo oscil&oacute; entre 4.0&plusmn;3.4% (T2) 14.2&plusmn;17.2% (T3) sin observarse diferencia significativa entre estos valores promedios (p&gt;0.05).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v18n3/vol18n3a7t4.jpg"><a name="t4"></a></p>       <p><b>DISCUSION</b></p>      <p>La calidad del agua utilizada en el ensayo est&aacute; dentro del rango adecuado para la larvicultura de bagre blanco seg&uacute;n lo reportado por Espinosa (4). Por tanto la calidad del agua utilizada en este estudio, no afect&oacute; el crecimiento ni la sobrevivencia, ya que se mantuvieron en los rangos adecuados para el cultivo y larvicultura de esta especie.</p>      <p>En larvicultura, el momento de la alimentaci&oacute;n ex&oacute;gena es determinante pues en esta etapa, se presentan las mayores tasas de mortalidad debido a que las larvas deben aprender y acostumbrarse a capturar y a consumir alimento (1). El inicio de la alimentaci&oacute;n ex&oacute;gena de bagre blanco registrada en este estudio (48-51 HPE, temperatura promedio de 27.5&deg;C); es similar al rango de tiempo reportado, en la misma franja de temperatura, para otros pimel&oacute;didos como bagre rayado <i><i>Pseudoplatystoma</i> fasciatum</i> y yaque <i>Leairius marmaratus</i> (10,11). La abertura bucal de bagre blanco al inicio de la alimentaci&oacute;n ex&oacute;gena registrada en el presente estudio (622&plusmn;70.2 &micro;m); se puede considerar en el rango de la abertura bucal reportada para otros pimel&oacute;didos como <i>Leiarius marmoratus</i> (532.7&plusmn;7.8 &micro;m) por Ramirez-Merlano et al (11).</p>      <p>El conocimiento sobre la dimensi&oacute;n de la abertura bucal es fundamental para tener una idea acerca del tama&ntilde;o del alimento que debe suministrarse a las larvas; ya que estas seleccionan el alimento teniendo en cuenta el tama&ntilde;o de la presa (1, 12). Considerando la abertura bucal de bagre blanco al inicio de la alimentaci&oacute;n ex&oacute;gena, es posible inferir que todas las presas ten&iacute;an el tama&ntilde;o adecuado para manejo de primera alimentaci&oacute;n; el tama&ntilde;o del zooplancton silvestre utilizado (250-400 &micro;m) fue adecuado y de f&aacute;cil captura para las larvas. En este rango de tama&ntilde;o la mayor&iacute;a de los cop&eacute;podos se encontraban en estadio de n&aacute;uplios y copepodito; siendo considerados como alimentos adecuados para las larvas, ya que a pesar de ser part&iacute;culas de mayor tama&ntilde;o presentan un movimiento m&aacute;s lento permitiendo a los peces una f&aacute;cil captura (13). Atencio-Garc&iacute;a et al (12), encontraron que en el manejo de la primera alimentaci&oacute;n de yam&uacute; <i>Brycon amazonicus</i> el consumo de zooplancton de mayor tama&ntilde;o permite mejores tasas de crecimiento.</p>      <p>El mayor incremento en Gl, Gp y G se registr&oacute; en las larvas de bagre blanco alimentadas con zooplancton silvestre. A pesar de ser valores mayores con respecto a los otros tratamientos (mesocosmos y <i>Artemia</i>), no representan una perspectiva real del desempe&ntilde;o de la especie por efecto del tratamiento en particular, sino un efecto de la alta mortalidad (42%) que conllev&oacute; a una baja densidad, lo cual permiti&oacute; a las larvas un mejor aprovechamiento del alimento suministrado, por existir menor competencia por este y mayor espacio disponible.</p>      <p>Las larvas alimentadas con mesocosmos, exhibieron valores aceptables de Gl, Gp y G registrando una alta sobrevivencia (81.3&plusmn;15.9%) y baja mortalidad (4.48%). Teniendo en cuenta estas circunstancias, los registros de crecimiento y sobrevivencia perfilan el mesocosmos como una alternativa eficiente de alimentaci&oacute;n para la larvicultura de bagre blanco. Los menores resultados de crecimiento se encontraron cuando se aliment&oacute; con nauplios de <i>Artemia</i>, que a pesar de registrar sobrevivencias aceptables (64.8&plusmn;16.3%) y crecimiento (Gl y Gp), el desempe&ntilde;o fue inferior al registrado con mesocosmos, no obstante que se exig&iacute;a menor competencia de las larvas por el espacio y la alimentaci&oacute;n.</p>      <p>Estos resultados se&ntilde;alan una de las grandes ventajas que tienen los organismos zooplanct&oacute;nicos cultivados en mesocosmos sobre la <i>Artemia</i>, como es el hecho de pertenecer al mismo h&aacute;bitat de las larvas objeto de cultivo (agua dulce), donde se pueden mantener en buenas condiciones y por m&aacute;s tiempo suspendidos en el agua, permiti&eacute;ndole a la larva un mejor aprovechamiento del alimento, a diferencia de los nauplios de <i>Artemia</i> que por ser de otro h&aacute;bitat (agua salada), despu&eacute;s de un per&iacute;odo de tiempo corto, los que no son consumidos, van al fondo y no son aprovechados por las larvas en cultivo.</p>      <p>En cuanto a la sobrevivencia, el alto valor (81.3&plusmn;15.9%) registrado en el presente estudio en larvas alimentadas a base de cultivos mixtos de cop&eacute;podos y clad&oacute;ceros en sistema de mesocosmos, permite sugerir que estos organismos zooplanct&oacute;nicos presentaron las caracter&iacute;sticas requeridas por las larvas, tales como homogeneidad en la diversidad de especies y apropiada calidad nutricional. Estos alimentos permitieron una adecuada digesti&oacute;n y aprovechamiento de los nutrientes, al ser cultivados y monitoreados en condiciones controladas. Adem&aacute;s, al ser seleccionados por tama&ntilde;o se permiti&oacute; su ingesta obteni&eacute;ndose as&iacute; buenos resultados de crecimiento en longitud, peso, tasa de crecimiento especifico y un &iacute;tem alimentario que se convierte en una alternativa viable como alimento para manejar la primera alimentaci&oacute;n de bagre blanco. Otros estudios tambi&eacute;n han reportado buenas sobrevivencia cuando se utiliza zooplancton seleccionado y cultivado como lo reportado por Marciales-Caro et al (13) quienes obtuvieron sobrevivencia de 63.1% alimentados con clad&oacute;ceros (<i>Moina</i> sp y <i>Diaphanosoma</i> sp) a raz&oacute;n de 0.5 ind/ml en la primera alimentaci&oacute;n de larvas de <i>Pseudoplatystoma</i> sp.</p>      <p>A diferencia, el zooplancton silvestre no cuenta con estas caracter&iacute;sticas, ya que la estructura y composici&oacute;n (especies y nutrientes) del mismo puede variar con la &eacute;poca del a&ntilde;o, influyendo as&iacute; sobre el desempe&ntilde;o de las larvas, al mismo tiempo es frecuente la presencia de predadores de larvas entre sus componentes (1,6,12); adem&aacute;s este tipo de predaci&oacute;n se puede sugerir como responsable de la alta mortalidad y elevada variabilidad (Coef de variaci&oacute;n=125%) el primer d&iacute;a en este tratamiento. Por su parte, el uso de n&aacute;uplios de <i>Artemia</i> en larvicultura, adem&aacute;s de ofrecer resultados inferiores en sobrevivencia (64.8&plusmn;16.3%) y crecimiento en longitud, peso y tasa de crecimiento espec&iacute;fico, resulta oneroso en la larvicultura del bagre blanco. Seg&uacute;n D&iacute;az-Olarte et al (14), los costos de producci&oacute;n de la <i>Artemia</i>, como presa para el manejo de primera alimentaci&oacute;n; es una de las causas de b&uacute;squeda de nuevas alternativas de alimentaci&oacute;n en la larvicultura, como el uso de especies del zooplancton.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Nu&ntilde;ez et al (15), reportaron sobrevivencia en larvas de bagre rayado <i>Pseudoplatustoma magdaleniatum</i> de 55.0&plusmn;13.2% alimentados con <i>Artemia</i>, siendo estos valores inferiores a los registros en este estudio (64.8&plusmn;16.3%). En cuanto al zooplancton silvestre, estos autores reportan sobrevivencia de 44.0&plusmn;14.8%; mientras que en este trabajo, la sobrevivencia, con este mismo tratamiento, fue superior (54.0&plusmn;14.1%). Lo anterior podr&iacute;a indicar que la estructura y composici&oacute;n del zooplancton silvestre var&iacute;a en el tiempo y por tanto, tambi&eacute;n los resultados en su uso como presa viva en larvicultura de peces tropicales.</p>      <p>Adicionalmente el zooplancton silvestre, presenta otros inconvenientes cuando es utilizado como alimento para larvas, ya que al ser extra&iacute;do del medio natural tiene el riesgo de contener organismos predadores, dentro de los cuales se destacan los cop&eacute;podos ciclopoides, muy abundantes en las aguas continentales del neotr&oacute;pico (16). Estos resultados permiten sugerir lo inadecuado que resulta el manejo de la primera alimentaci&oacute;n de bagre blanco con zooplancton silvestre por los riesgos de introducir cop&eacute;podos predadores que afectan el desempe&ntilde;o de la larvicultura, principalmente la sobrevivencia. Al mismo tiempo, la constituci&oacute;n y perfil nutricional del zooplancton natural, var&iacute;a con relaci&oacute;n a la temporada y el nivel de nutrientes presentes en el cuerpo de agua (1) lo cual no garantiza la composici&oacute;n estable del zooplancton en el tiempo, al momento de realizar la larvicultura.</p>      <p>La prueba de resistencia al estr&eacute;s permite estimar la calidad y viabilidad de las larvas acorde al tipo de alimento empleado, as&iacute;, una mayor sobrevivencia a esta prueba indica una mejor condici&oacute;n de la larva y por tanto una mejor calidad nutricional del alimento ofrecido en asocio con las condiciones de manejo (1,6).</p>      <p>Las larvas alimentadas con <i>Artemia</i> presentaron los valores m&aacute;s altos en la resistencia al estr&eacute;s (95%), con relaci&oacute;n al tratamiento con mesocosmos (61%). Esto es una ventaja nutricional de la alimentaci&oacute;n a base de <i>Artemia</i>, permitiendo la producci&oacute;n de una larva resistente a la manipulaci&oacute;n y traslado al sitio de cultivo (estanques de alevinajes). A&uacute;n as&iacute;, los resultados obtenidos en el tratamiento con mesocosmos, tambi&eacute;n son adecuados, lo que indica que este alimento ofrece caracter&iacute;sticas nutricionales que permiten a las larvas alta resistencia para el manejo y transporte. En contraste, las larvas alimentadas con zooplancton silvestre presentaron resistencia reducida al estr&eacute;s (30.0&plusmn;33.0%), evidenciando baja condici&oacute;n para su manejo, lo cual no garantiza resistencia para el empaque, transporte y cambios ambientales a que es sometida la larva para continuar con su cultivo (alevinaje).</p>      <p>Valores similares a los obtenidos con nauplios de <i>Artemia</i> en este estudio fueron reportados por Nu&ntilde;ez et al (15) en larvicultura de bagre rayado, alimentados con <i>Artemia</i> (91.0%). Estos resultados sugieren que <i>Artemia</i> sigue siendo un alimento de muy buena calidad nutricional y que larvas alimentadas con mesocosmos se comportan de forma similar a los resultados obtenidos por estos autores, al alimentar con zooplancton de mayor tama&ntilde;o (250-400 &micro;m).</p>      <p>En las larvas alimentadas con mesocosmos, la mortalidad registr&oacute; el valor m&aacute;s bajo entre los tratamientos evaluados. Esto muestra la calidad del alimento en cuanto a especies seleccionadas para establecer el mesocosmos, donde no s&oacute;lo se tuvo en cuenta su contenido nutricional sino tambi&eacute;n la selectividad de la especie por estos zoopl&aacute;nctontes, los patrones de coexistencia de los mismos en el medio de cultivo y la ausencia de predadores.</p>      <p>En contraste, en las larvas alimentadas con <i>Artemia</i> la mortalidad fue mayor. A pesar de suministrar el alimento en estado de nauplios, los cuales son atractivos por su color y no son agresivos, la mortalidad fue superior al tratamiento con mesocosmos. Este resultado pudo estar relacionado por el poco tiempo de disponibilidad de los nauplios de <i>Artemia</i> en el medio para el consumo por parte de las larvas, lo cual est&aacute; influenciado por la reducida sobrevivencia de este alimento en el agua dulce. Esto hace que los individuos que no son consumidos por las larvas mueran y lleguen al fondo como ya fue mencionado. La mayor mortalidad se registr&oacute; en las larvas alimentadas con zooplancton silvestre, sugiri&eacute;ndose como posibles causas, la presencia de predadores dentro del alimento suministrado.</p>      <p>En general, los resultados de mortalidad evidencian la apropiada calidad del mesocosmo como alimento adecuado para la larvicultura de bagre blanco en su primera alimentaci&oacute;n ex&oacute;gena, momento en el cual se registran las mayores mortalidades. Al ser comparado con el zooplancton silvestre, influenciado por su estructura y composici&oacute;n la cual puede variar a lo largo del a&ntilde;o, con presencia de cop&eacute;podos Ciclopoides; predadores que influyen sobre el desempe&ntilde;o de las larvas en cultivo (1, 12). As&iacute;, la baja mortalidad asociada a una alta sobrevivencia registrada en larvas alimentadas con mesocosmos, permite avanzar en el manejo de la primera alimentaci&oacute;n de bagre blanco sin depender del zooplancton silvestre y sus riesgos asociados, ni de <i>Artemia</i> por su elevado costo.</p>      <p>En otros pimel&oacute;didos, Nu&ntilde;ez et al (15), reportaron mortalidades de 46.3&plusmn;6.0% para larvas de bagre rayado alimentadas con n&aacute;uplios de <i>Artemia</i>, siendo esta muy superior a la registrada en este trabajo con mesocosmos. Estudios anteriores presentan a <i>Artemia</i> como el mejor alimento para esta etapa en larvicultura de peces, en el presente trabajo se evidencia que el mesocosmos la supera en cuanto a sobrevivencia y crecimiento, mostr&aacute;ndose como un alimento m&aacute;s apropiado en la primera alimentaci&oacute;n ex&oacute;gena para larvas de Bagre blanco.</p>      <p>El canibalismo es un aspecto relevante en la larvicultura (17). En todos los tratamientos se registr&oacute; canibalismo y en general fue bajo (4-14.0%); observ&aacute;ndose que cuando la mortalidad por otras causas fue mayor, esta conducta registr&oacute; menores valores (<a href="#t1">Tabla 4</a>). Por tanto, el canibalismo en las larvas alimentadas con zooplancton producido en sistema mesocosmos se sugiere relacionada con la elevada sobrevivencia (81.3&plusmn;15.9%) en ese tratamiento, porque conlleva a menor espacio disponible para las larvas facilitando la probabilidad de encuentro entre las mismas, incitando con esto al canibalismo. En larvas alimentadas con <i>Artemia</i>, se registr&oacute; 7.9%, algo razonable dada la mayor mortalidad (27.5&plusmn;8.2%), lo cual proporciona m&aacute;s espacio entre las larvas y menor posibilidad de encuentro. Por consiguiente, en el tratamiento con zooplancton silvestre la mortalidad por canibalismo fue de 4.0&plusmn;3.4%, siendo la m&aacute;s baja en el experimento y ratificando que a mayor mortalidad mayor espacio y menor probabilidad de encuentro entre las larvas y con esto menor mortalidad por canibalismo.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Diaz-Olarte et al (14) observaron mayor canibalismo en larvicultura <i>Pseudoplatystoma</i> al incrementar las densidades siembra de 15 Larvas/L a 45 Larvas/L. Nu&ntilde;ez et al (15) reportaron mortalidad por canibalismo de 2.4&plusmn;9.6% en larvas de bagre rayado <i>Pseudoplatystoma</i> sp., alimentadas con <i>Artemia</i>, valor inferior al obtenido en el presente estudio con el tratamiento de mesocosmos, dato tambi&eacute;n razonable dado que la sobrevivencia (81.3&plusmn;15.9%) obtenida en este estudio en el tratamiento con mesocosmos es superior a la reportada por estos autores (53.7&plusmn;13.2%).</p>      <p>En este estudio se evidenci&oacute; que el tipo de presa tiene efecto directo sobre el desempe&ntilde;o en larvicultura, indicando que entre las presas usadas, el mesocosmos entre 250-400 &micro;m es una alternativa importante como alimento para larvas de bagre blanco; permitiendo una elevada sobrevivencia (superior al 80%) y adecuadas longitud, peso y resistencia al estr&eacute;s de las larvas, siendo similares a los obtenidos con <i>Artemia</i> y contrastando con el bajo desempe&ntilde;o cuando se alimenta con zooplancton silvestre. Acorde a los resultados obtenidos, el d&iacute;a cr&iacute;tico en la fase de manejo de la primera alimentaci&oacute;n del Bagre blanco ocurre entre el segundo y tercer d&iacute;a de larvicultura.</p>     <p>En conclusi&oacute;n el uso de zooplancton producido bajo condiciones controladas permiti&oacute; una alta sobrevivencia, adecuado desempe&ntilde;o y resistencia de las larvas, perfil&aacute;ndose como alternativa viable en la primera alimentaci&oacute;n de bagre blanco.</p>      <p><b>Agradecimientos</b></p>      <p>Al Centro de Investigaciones Pisc&iacute;colas de la Universidad de C&oacute;rdoba - CINPIC por facilitar sus instalaciones y material biol&oacute;gico para desarrollar este trabajo; a la Oficina de Investigaci&oacute;n y Extensi&oacute;n de la Universidad por su apoyo econ&oacute;mico. A Yamid Hern&aacute;ndez Julio, M.Sc., por su dedicaci&oacute;n y apoyo al editar y formatear este manuscrito.</p>     <p>&nbsp;</p>       <p><b>REFERENCIAS</b></p>     <!-- ref --><p>1.	Prieto MJ, Atencio VJ. Zooplancton y mesocosmo en la larvicultura de peces neotropicales. Rev Bras Zootecn 2008; 37(Supl):1-17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0122-0268201300030000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>2.	Prieto M, Casta&ntilde;o F, Sierra J, Logato P, Botero J. Alimento vivo en la larvicultura de peces marinos. Cop&eacute;podos y mesocosmos. Rev MVZ C&oacute;rdoba 2006a; 11(1):30-36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0122-0268201300030000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>3.	Prieto MJ, Moraes G, Okamura D, Logato PV, Araujo FG. Tipo de alimento, sobreviv&ecirc;ncia e desempenho inicial de P&oacute;s-larvas de Pacu (<i>Piaractus mesopotamicus</i>). Cienc Agrotec 2006c; 30(5):1002-1007.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0122-0268201300030000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>4.	Espinosa JA. Estandarizaci&oacute;n de un protocolo para la crioconservaci&oacute;n de semen de bagre blanco <i>Sorubim cuspicaudus</i>. &#91;Tesis de Maestr&iacute;a&#93;, Monter&iacute;a, Colombia: Universidad de C&oacute;rdoba, Facultad de Ciencias B&aacute;sicas, Departamento de Qu&iacute;mica; 2012.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0122-0268201300030000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>5.	Atencio-Garc&iacute;a V. Producci&oacute;n de alevinos de especies nativas. Rev MVZ C&oacute;rdoba 2001; 6(1):9-14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0122-0268201300030000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>6.	Kerguel&eacute;n-Durango E, Atencio-Garc&iacute;a V, Wadnipar L, Narv&aacute;ez A. Manejo de la primera alimentaci&oacute;n del bocachico (<i>Prochilodus magdalenae</i>). Rev MVZ C&oacute;rdoba 2003; 8(1):254-260.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0122-0268201300030000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>7.	Mart&iacute;nez JL, Ortiz ME, Prieto MJ. Estandarizaci&oacute;n de un sistema de mesocosmos: patrones de coexistencia. Rev Colomb Cienc Pecu 2008; 21(3):480-481.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0122-0268201300030000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>8.	Prieto MJ, De la Cruz L, Morales MA. Cultivo experimental del cladocero <i>Moina</i> sp usando como alimento <i>Ankistrodesmus</i> sp y <i>Saccharomyces cereviseae</i>. Revista MVZ C&oacute;rdoba 2006b; 11(1):705-714.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0122-0268201300030000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>9.	SAS/STAT. SAS User's guide: Product documentation. 6.0 ed. Cary (NC): SAS Institute, Inc.; 2012.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0122-0268201300030000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>10.	Mojica HO, Rodr&iacute;guez JA, Orozco CJ. Manual de reproducci&oacute;n y cultivo. El Bagre rayado (<i><i>Pseudoplatystoma</i> fasciatum</i>) INPA (regional oriental). Villavicencio, Meta: INPA-PRONATTA; 2003.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0122-0268201300030000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>11.	Ramirez-Merlano JA, Otero-Paternina AM, Corredor Santamar&iacute;a W, Medina_Robles VM, Cruz-Casallas PE, Velasco-Santamar&iacute;a YM. Utilizaci&oacute;n de organismo vivos como alimentaci&oacute;n de larvas de yaque (<i>Leiarius marmoratus</i>) bajo condiciones de laboratorio. Orinoquia 2010; 14(1):45-58.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0122-0268201300030000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>12.	Atencio-Garc&iacute;a V, Zaniboni-Filho E, Pardo-Carrasco S, Arias-Castellanos A. Influ&ecirc;ncia da primeira alimenta&ccedil;&atilde;o na larvicultura e alevinagem do yam&uacute; <i>Brycon siebenthalae</i>. Acta Sci Anim Sci 2003; 25(1):61-72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0122-0268201300030000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>13.	Marciales-Caro LJ, Diaz-Olarte JJ, Medina-Robles VM, Cruz-Casallas PE. Evaluaci&oacute;n del crecimiento y sobrevivencia de larvas de bagre rayado <i>Pseudopatystoma fasciatum</i> (Linneaus, 1766) alimentadas con alimento vivo natural y enriquecido con &aacute;cidos grasos. Rev Colomb Cienc Pecu 2010; 23:308-316.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0122-0268201300030000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>14.	Diaz-Olarte JJ, Cruz-Casallas NE, Marciales-Caro LJ, Medina-Robles VM, Cruz-Casallas PE. Efectos de la densidad de siembra y dsiponibilidad de alimento sobre el desarrollo y sobrevivencia de las larvas de <i><i>Pseudoplatystoma</i> fasciatum</i>. Orinoquia 2009; 13(1):21-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0122-0268201300030000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>15.	Nu&ntilde;ez J, Dugu&eacute; R, Corcuy Arana N, Duponchelle F, Renno JF, Raynaud T, et al. Induced breeding and larval rearing of Surub&iacute;, <i><i>Pseudoplatystoma</i> fasciatum</i> (Linnaeus, 1766), from the Bolivian Amazon. Aquacult Res 2008; 39(7):764-776.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0122-0268201300030000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>16.	Gaviria S, Aranguren N. Especies de vida libre de la subclase Copepoda (Arthropoda, Crustacea) en aguas continentales de Colombia. Biota Colombiana 2007; 8(1):53-68.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0122-0268201300030000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>17.	Atencio-Garcia VJ, Zaniboni-Filho E. El canibalismo en la larvicultura de peces. Rev MVZ C&oacute;rdoba 2006; 11(1):9-19.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0122-0268201300030000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>  </font>      ]]></body><back>
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