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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Inhibición de colonización intestinal por Vibrio cholerae con Lactobacillus acidophilus1 en conejos lactantes]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad de Nariño Facultad de Ciencias Exactas y Naturales Departamento de Biología]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective. To assess the capacity in vitro and in vivo of Lactobacillus acidophilus1 isolated in this study, capable of preventing diarrheal disease caused by Vibrio cholerae 01 OGAWA in rabbits newborn. Materials and methods. Lactobacillus acidophilus1 was isolated from faeces of healthy children and was selected from a group of lactic acid bacteria (LAB). The better starchy substrate for the growth of the LAB was previously standardized. Using the L. acidophilus1, there was carried out an in vitro and in vivo assay of antagonistic inhibition on the enteropathogen and it was evaluated the prevention of colonization by V. cholerae 01 Ogawa in rabbits newborn. Results. L. acidophilus1 present the better amylolytic capacity, p<0.5 in the ANDEVA. It was found that an inoculum with a cell density of 35x10(6) bacteria/ml in the lactic ferment is able to exert the greatest antagonistic effect in vitro over V. cholerae. The probiotic effect was demonstrated in vivo, since rabbits exposed to the pathogen without having received probiotic had a lower survival probability of 0.25 regarding the group of animals exposed with the pathogen and simultaneously fed with the probiotic whose probability of survival was of 0.95. Conclusions. L. acidophilus1 is considered a probiotic microorganism capable of surviving when passing through the gastrointestinal tract in an animal model and preventing intestinal colonization by V. cholerae 01 Ogawa in rabbits newborn.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font face="verdana" size="2">       <p align="right"><b>ORIGINAL</b></p>     <p align="center"><b><font size="3">Inhibici&oacute;n de colonizaci&oacute;n intestinal por <i>Vibrio cholerae</i> con <i><i>Lactobacillus</i> acidophilus1</i> en conejos lactantes</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="3"><i>Lactobacillus</i> probiotics may prevent <i>Vibrio cholerae</i> colonization in rabbits newborn</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>Alvaro Pazos M,<sup>1*</sup> Ph.D, Milena Guerrero F,<sup>1</sup> M.Sc.</b></p>       <p><sup>1</sup>Universidad de Nari&ntilde;o, Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, Departamento de Biolog&iacute;a, Pasto, Colombia.     <br> </p>      <p>*Correspondencia: <a href="mailto:alpazmo@udenar.edu.co">alpazmo@udenar.edu.co</a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Recibido: Octubre de 2012; Aceptado: Mayo de 2013.</p>  <hr>      <p><b>RESUMEN</b> </p>      <p><b>Objetivo.</b> Evaluar la capacidad <i>in vitro</i> e <i>in vivo</i> de <i><i>Lactobacillus</i> acidophilus1</i>, aislado en este estudio, para prevenir enfermedad diarreica causada por <i>Vibrio cholerae</i> 01 OGAWA, en conejos lactantes.<b> Materiales y m&eacute;todos.</b> Se aisl&oacute; <i><i>Lactobacillus</i> acidophilus1</i> a partir de heces de ni&ntilde;os sanos, se seleccion&oacute; por su capacidad amilol&iacute;tica a partir de un grupo de bacterias &aacute;cido l&aacute;cticas (BAL). El mejor sustrato amil&aacute;ceo para el crecimiento de la BAL fue estandarizado previamente. Con <i><i>L. acidophilus</i>1</i> se realiz&oacute; un ensayo <i>in vitro</i> e <i>in vivo</i> de inhibici&oacute;n antag&oacute;nica sobre el enteropat&oacute;geno y se evalu&oacute; la prevenci&oacute;n de la colonizaci&oacute;n por <i>V. cholerae</i> 01 OGAWA en conejos lactantes. <b>Resultados.</b> De acuerdo con el an&aacute;lisis de varianza <i><i>L. acidophilus</i>1</i> present&oacute; la mejor capacidad amilol&iacute;tica respecto a las otras BAL aisladas, p&lt;0.5. Se encontr&oacute; que un in&oacute;culo con una densidad celular de 35x10<sup>6</sup> bacterias/ml en el fermento l&aacute;ctico es capaz de ejercer el mayor efecto antag&oacute;nico <i>in vitro</i> sobre <i>V. cholerae</i>. Se demostr&oacute; el efecto probi&oacute;tico <i>in vivo</i>, ya que los conejos enfrentados con el pat&oacute;geno y sin recibir probi&oacute;tico tuvieron una probabilidad de sobrevida menor de 0.25 respecto al grupo de animales retados con el pat&oacute;geno y simult&aacute;neamente alimentados con el probi&oacute;tico cuya probabilidad de sobrevida fue de 0.95. <b>Conclusiones.</b> <i><i>L. acidophilus</i>1</i> se considera un microorganismo probi&oacute;tico, capaz de sobrevivir a su paso por el tracto gastrointestinal en un modelo animal y prevenir la colonizaci&oacute;n intestinal por <i>V. cholerae</i> 01 OGAWA en conejos lactantes.</p>      <p><b>Palabras clave: </b>Conejos,<i> <i>Lactobacillus</i> acidophilus</i>, probi&oacute;ticos, <i>Vibrio cholerae</i>, (<i>Fuente: DeCS</i>).</p> <hr>      <p><b>ABSTRACT</b></p>      <p><b>Objective. </b>To assess the capacity <i>in vitro</i> and <i>in vivo</i> of <i><i>Lactobacillus</i> acidophilus1</i> isolated in this study, capable of preventing diarrheal disease caused by <i>Vibrio cholerae</i> 01 OGAWA in rabbits newborn. <b>Materials and methods.</b> <i><i>Lactobacillus</i> acidophilus1</i> was isolated from faeces of healthy children and was selected from a group of lactic acid bacteria (LAB). The better starchy substrate for the growth of the LAB was previously standardized. Using the <i><i>L. acidophilus</i>1</i>, there was carried out an <i>in vitro</i> and <i>in vivo</i> assay of antagonistic inhibition on the enteropathogen and it was evaluated the prevention of colonization by <i>V. cholerae</i> 01 Ogawa in rabbits newborn. <b>Results.</b> <i><i>L. acidophilus</i>1</i> present the better amylolytic capacity, p&lt;0.5 in the ANDEVA. It was found that an inoculum with a cell density of 35x10<sup>6</sup> bacteria/ml in the lactic ferment is able to exert the greatest antagonistic effect <i>in vitro</i> over <i>V. cholerae</i>. The probiotic effect was demonstrated <i>in vivo</i>, since rabbits exposed to the pathogen without having received probiotic had a lower survival probability of 0.25 regarding the group of animals exposed with the pathogen and simultaneously fed with the probiotic whose probability of survival was of 0.95. <b>Conclusions.</b> <i><i>L. acidophilus</i>1</i> is considered a probiotic microorganism capable of surviving when passing through the gastrointestinal tract in an animal model and preventing intestinal colonization by <i>V. cholerae</i> 01 Ogawa in rabbits newborn.    <br> </p>     <p><b>Key words:</b><i> <i>Lactobacillus</i> acidophilus</i>, probiotics, rabbits, <i>Vibrio cholerae</i> (<i>Source: MeSH</i>)<i>.</i></p> <hr>       <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>      <p>A nivel mundial las enfermedades infecciosas contin&uacute;an siendo el principal problema por resolver en el siglo XXI. Seg&uacute;n la OMS, las enfermedades diarreicas son la segunda mayor causa de muerte en ni&ntilde;os menores de cinco a&ntilde;os. En 2012, fueron reportados por la OMS 245.393 casos de c&oacute;lera con m&aacute;s del 49% de los casos ocurridos en Am&eacute;rica, principalmente en Hait&iacute; y Rep&uacute;blica Dominicana (1). En Colombia, en el periodo Enero-Agosto de 2013 se documentaron 76 muertes por enfermedad diarreica aguda (EDA) en lo corrido del a&ntilde;o y 1.878.989 casos, de los cuales 25.1% en ni&ntilde;os menores de 5 a&ntilde;os. En comparaci&oacute;n con el a&ntilde;o 2012, hasta Agosto de 2013 en Colombia se registr&oacute; un aumento de 14.4% de mortalidad por EDA (2).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las bacterias de los g&eacute;neros <i>Shigella</i>, <i>Campylobacter</i> y las especies <i>V. cholerae</i>, <i>E. coli</i> patog&eacute;nica y rotavirus, son los principales agentes causantes de muertes por EDA en pa&iacute;ses emergentes. En Estados Unidos de 21 a 37 millones de casos de EDA se producen por a&ntilde;o en una poblaci&oacute;n de 16.5 millones de ni&ntilde;os y en tales casos <i>Salmonella</i>, <i>Campylobacter</i> y <i>E. coli</i> 0157 enterohemorr&aacute;gica y enteroagregativa son las bacterias m&aacute;s frecuentes de infecciones transmitidas por alimentos (3). La alta incidencia de las infecciones asociadas a estos agentes se debe principalmente a su f&aacute;cil diseminaci&oacute;n, los perfiles de resistencia a los f&aacute;rmacos antimicrobianos y los complejos mecanismos moleculares de patogenicidad (4).</p>      <p>El c&oacute;lera es la EDA m&aacute;s grave que se conoce y se caracteriza por su r&aacute;pida diseminaci&oacute;n que conlleva a epidemias en periodos cortos de tiempo. Es producida por la bacteria <i>V. cholerae</i> que se encuentra en el agua o alimentos contaminados y puede causar la muerte de 50% de los infectados. </p>      <p>En pa&iacute;ses como Hait&iacute; y Rep&uacute;blica Dominicana se reporta una letalidad alta por c&oacute;lera; con un n&uacute;mero de casos de muertes de 8258 y 453 casos acumulados hasta agosto de 2013 respectivamente (2), lo anterior sumado a que el flujo de inmigrantes y visitantes entre estos pa&iacute;ses y Colombia es considerable, creemos pertinente tener en cuenta el Plan Nacional para el Control del C&oacute;lera (PNCC) que se desarrolla en Colombia desde el a&ntilde;o 2011, en particular con relaci&oacute;n al desarrollo de estrategias de prevenci&oacute;n que permitan evitar la aparici&oacute;n de brotes o epidemias. La creaci&oacute;n del PNCC se sustenta en epidemias que sobrevinieron con el terremoto de Hait&iacute; en 2009, con lo cual el n&uacute;mero de casos en este pa&iacute;s y Rep&uacute;blica Dominicana y por tanto, el riesgo de brotes en Centroam&eacute;rica y Suram&eacute;rica se incrementaron considerablemente en los &uacute;ltimos a&ntilde;os. Por otro lado, aun cuando se establecen las medidas sanitarias y de prevenci&oacute;n, la alta incidencia de EDA se convierte en un serio problema de salud p&uacute;blica a nivel mundial, por lo cual los esfuerzos para conseguir estrategias de manejo y control de estas infecciones son de constante inter&eacute;s cient&iacute;fico. </p>      <p>La microbiota gastrointestinal humana (MIH) juega un papel importante en la salud del individuo dado que la composici&oacute;n y la actividad de los microorganismos son responsables de funciones metab&oacute;licas colectivas, de barrera e interacciones con el hu&eacute;sped (5,6). Trillones de microorganismos habitan el intestino humano, formando una comunidad ecol&oacute;gica compleja que influencia en su normal funcionamiento y en la susceptibilidad a enfermedades (7). Las BAL aut&oacute;ctonas del tracto gastrointestinal humano (TGH) contribuyen a beneficios nutricionales en la salud, tales como el mejoramiento de la digesti&oacute;n de lactosa y el alivio de ciertos tipos de diarreas (5,8,9). La MIH es objeto de numerosas investigaciones, con especial inter&eacute;s en la secuenciaci&oacute;n del genoma de las bacterias que la conforman (10), es as&iacute; que en la actualidad se llevan a cabo el <i>Human Microbiome Project</i> (HMP) en USA y el <i>Metagenomics of the Human Intestine</i> (metaHIT) en Europa y sus investigaciones han reportado que el organismo humano consiste en 1013 c&eacute;lulas eucariotas y 1014 microbianas, donde las m&aacute;s de 1000 especies bacterianas en el ambiente gastrointestinal humano (AGH) inciden en la regulaci&oacute;n del equilibrio homeost&aacute;tico con el hospedero o en el desenlace de una enfermedad (7). Estos avances describen aspectos importantes de la MIH tales como su capacidad de adherirse a las prote&iacute;nas del hospedero (col&aacute;geno, fibrin&oacute;geno, fibronectina) y por lo tanto, la adherencia como un prerrequisito para una persistencia de las cepas bacterianas en el AGH (11). Asimismo, se&ntilde;alan beneficios de la interacci&oacute;n entre la microbiota y el organismo hospedero, atribuidos en gran parte a la MIH, tales como la participaci&oacute;n en la formaci&oacute;n de la pared intestinal, la resistencia a la colonizaci&oacute;n y la producci&oacute;n de &aacute;cidos grasos de cadena corta. Estos metabolitos juegan un papel fisiol&oacute;gico importante, como el &aacute;cido ac&eacute;tico en los m&uacute;sculos, coraz&oacute;n y cerebro, el &aacute;cido propi&oacute;nico en la gluconeog&eacute;nesis y el &aacute;cido but&iacute;rico en la funci&oacute;n de los enterocitos (11,12). La MIH es capaz de mejorar las interacciones con el sistema inmune de las mucosas y la degradaci&oacute;n de xenobi&oacute;ticos (6,11,13). La inmensa diversidad de la MIH, la variaci&oacute;n interpersonal y fluctuaciones temporales en la composici&oacute;n, especialmente durante la enfermedad y su desarrollo temprano son retos que impactar&aacute;n en el control de EDAs (5,7,11). </p>      <p>Los probi&oacute;ticos definidos por la FAO/WHO (2011), como microorganismos vivos que confieren beneficios a la salud del hospedero, incluyen <i>Lactobacillus</i> sp. y <i>Bifidobacterium</i> sp., microorganismos com&uacute;nmente utilizados como probi&oacute;ticos junto con ciertos tipos de levaduras y otras BAL (12,14). Las caracter&iacute;sticas de un probi&oacute;tico fueron definidas por Kamlesh et al (2011) (14). <i>L. acidophilus</i> se encuentra en el TGI y en ese nicho resiste la acci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos, sales biliares, la acidez y puede competir por nutrientes con microorganismos pat&oacute;genos. Un estudio reporta el potencial probi&oacute;tico de <i>L. acidophilus</i> en el control de <i>Salmonella</i> (15). Otro reporta su capacidad para estimular la producci&oacute;n de IgA en TGI, la producci&oacute;n de linfocitos e inhibici&oacute;n de la adhesi&oacute;n e invasi&oacute;n de pat&oacute;genos (13). Actualmente se estudia el efecto antioxidante de <i>L. acidophilus</i> y en modelos <i>in vivo</i> se encontr&oacute; una disminuci&oacute;n en los niveles de glucosa en la sangre de pacientes con diabetes tipo 2 (16).</p>      <p>En este escenario, los probi&oacute;ticos se constituyen en una potencial herramienta para estimular la salud humana y animal (17-19). Por tanto, esta investigaci&oacute;n tuvo como objetivo evaluar el efecto inhibitorio <i>in vitro</i> e <i>in vivo</i> de <i>L. acidophilus1</i> aislado de TIH, sobre la cepa pat&oacute;gena de referencia <i>V. cholerae</i> 01 OGAWA en conejos lactantes.</p>      <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>      <p><b>Aislamiento de BAL de tracto intestinal humano.</b> Se aisl&oacute; el microorganismo de muestras de materia fecal (MF) seg&uacute;n recomendaciones descritas en literatura especializada (18,19). Las BAL fueron aisladas de MF de cinco infantes (I1=tres a&ntilde;os de edad, I2=dos meses, I3=cuatro a&ntilde;os, I4=un a&ntilde;o e I5=trece a&ntilde;os) las cuales fueron tomadas durante cinco d&iacute;as consecutivos (a,b,c,d,e) para un total de 25 muestras. Se incluyeron ni&ntilde;os con nulos antecedentes de diarreas y sin terapia con antibi&oacute;ticos. </p>      <p>Las colonias compatibles con BAL se repicaron en agar MRS azul de anilina hasta observar cultivos ax&eacute;nicos. La conservaci&oacute;n se realiz&oacute; en tioglicolato m&aacute;s glicerol a -25&deg;C (20).</p>      <p><b>Capacidad amilol&iacute;tica de BAL.</b> Los cultivos en agar MRS-almid&oacute;n fueron expuestos a vapores de iodo bisublimado que ante el almid&oacute;n vir&oacute; su color a un complejo caf&eacute;-azulado diferenciando sus l&iacute;mites con halos de hidr&oacute;lisis del almid&oacute;n. Al cabo de 2 min de exposici&oacute;n se tomaron las mediciones (21). Los resultados del di&aacute;metro del halo de hidr&oacute;lisis en mm se estudiaron mediante an&aacute;lisis de varianza y posterior prueba de Tukey. Se seleccion&oacute; la bacteria con mejor capacidad amilol&iacute;tica y el mejor sustrato amil&aacute;ceo que permiti&oacute; el crecimiento &oacute;ptimo de la BAL fue estandarizado en un trabajo previo (20). </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Identificaci&oacute;n de BAL con mejor capacidad amilol&iacute;tica.</b> Se realiz&oacute; mediante claves taxon&oacute;micas descritas en Bergey&rsquo;s Manual of Determinative Bacteriology (22) y pruebas bioqu&iacute;micas de degradaci&oacute;n de carbohidratos y utilizaci&oacute;n de amino&aacute;cidos en galer&iacute;as API CH50 (biom&eacute;rieux, Marcy l&rsquo;Etoile, France).</p>      <p><b>Evaluaci&oacute;n de par&aacute;metros de fermentaci&oacute;n.</b> Para estimar la producci&oacute;n de biomasa se utiliz&oacute; el m&eacute;todo de recuento en placa en agar MRS. La determinaci&oacute;n de prote&iacute;nas se realiz&oacute; por el m&eacute;todo de Lowry. La determinaci&oacute;n de az&uacute;cares y &aacute;cido l&aacute;ctico se realiz&oacute; por cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta eficiencia (HPLC) (20).</p>      <p><b>Ensayo de antagonismo <i>in vitro</i> del probi&oacute;tico sobre <i>V. cholerae</i> 01 OGAWA.</b> Se aplic&oacute; el m&eacute;todo de difusi&oacute;n en pocillos descrito por Alvarado et al (23). A la BAL en el sustrato amil&aacute;ceo elegido se le realizaron 3 diluciones (10<sup>-1</sup>,10<sup>-2</sup>,10<sup>-3</sup>) en SSF y en cada una de ellas se ajust&oacute; la densidad celular del in&oacute;culo en c&aacute;mara de Neubauer. Posteriormente, se vertieron 40 &micro;l de cada suspensi&oacute;n celular en pozos de 7 mm de di&aacute;metro en agar MRS. Luego se cubri&oacute; con una capa de agar TCBS con 25 &micro;l de in&oacute;culo de <i>V. cholerae</i>. Lo anterior se incub&oacute; a 35&deg;C por 48 h, tiempo en el cual se midieron los halos de inhibici&oacute;n del probi&oacute;tico sobre el pat&oacute;geno (20). Se aplic&oacute; un dise&ntilde;o irrestrictamente al azar con arreglo bifactorial combinatorio y 10 r&eacute;plicas, donde el factor A correspondi&oacute; a dos niveles de sustrato: a<sub>1</sub>=melaza con leche en polvo y a<sub>2</sub>=MRS; y el factor B correspondi&oacute; a cuatro niveles de diluci&oacute;n del sustrato, a saber: b<sub>1</sub>=sustrato puro, b<sub>2</sub>=10<sup>-1</sup>, b<sub>3</sub>=10<sup>-2</sup> y b<sub>4</sub>=10<sup>-3</sup>. La unidad experimental estuvo representada por una caja petri y un total de 80 unidades experimentales. Con el objeto de uniformizar las observaciones, previo an&aacute;lisis del Test de Bartley y Harley, estas se transformaron mediante ra&iacute;z cuadrada de X, donde X fue la observaci&oacute;n. Los datos se sometieron a ANDEVA y prueba de Tukey para comparar las medias de los tratamientos en aquellas fuentes de variaci&oacute;n que resultaron estad&iacute;sticamente significativas, p&lt;0.1.</p>      <p><b>Ensayo de protecci&oacute;n del probi&oacute;tico contra <i>V. cholerae</i> 01 Ogawa en conejos lactantes.</b> El ensayo <i>in vivo</i> se realiz&oacute; tomando como modelo animal, conejos lactantes. Luego de administrar una dosis de 0.5x10<sup>8</sup> bact/ml m&aacute;s del 95% de los conejos desarrollaron enfermedad diarr&eacute;ica y la sobrevida promedio despu&eacute;s de ser retados con el enteropat&oacute;geno fue de 13 d&iacute;as, tiempo de seguimiento para el ensayo de protecci&oacute;n. Se analizaron cuatro grupos con 60 conejos lactantes cada uno. Tres grupos recibieron tratamiento para evaluar el efecto protector y en el cuarto se evalu&oacute; el efecto terap&eacute;utico del producto alimenticio. El grupo 1 recibi&oacute; el fermento l&aacute;ctico como parte suplementaria de su dieta: &uacute;nicamente leche materna; como primer control, el grupo 2 recibi&oacute; el sustrato amil&aacute;ceo elegido, sin fermentar; como segundo control, el grupo 3 no recibi&oacute; ning&uacute;n suplemento, solo fueron lactados por sus madres; y el grupo 4 recibi&oacute; el fermento l&aacute;ctico luego de ser retado con el pat&oacute;geno, para observar el efecto terap&eacute;utico del probi&oacute;tico. Todos los animales fueron lactados por sus madres durante los 21 d&iacute;as del ensayo. Para el ensayo de protecci&oacute;n se utiliz&oacute; <i><i>L. acidophilus</i>1</i>, cultivado en el sustrato amil&aacute;ceo elegido hasta el tiempo de cosecha. El pat&oacute;geno para el reto fue <i>V. cholerae</i> 01 OGAWA, luego de incubaci&oacute;n en caldo TCBS a 37&deg;C por 12 h (24). </p>      <p>Respecto a la alimentaci&oacute;n con el probi&oacute;tico, el grupo 1 de conejos se aliment&oacute; con &eacute;ste desde el d&iacute;a del nacimiento hasta el d&iacute;a 21, con un volumen de 50 &micro;l que conten&iacute;a 1x10<sup>5</sup> bacterias durante 3 veces al d&iacute;a. El grupo 2 se aliment&oacute; con el sustrato amil&aacute;ceo elegido en iguales dosis; el grupo 3 no recibi&oacute; ning&uacute;n suplemento alimenticio y el grupo 4 se aliment&oacute; con el producto probi&oacute;tico a partir del mismo d&iacute;a que aparecieron los s&iacute;ntomas de diarrea, en iguales dosis que los anteriores. El reto de los animales se realiz&oacute; con una dosis previamente estandarizada del pat&oacute;geno (0.5x10<sup>8</sup> bact/ml) siete d&iacute;as despu&eacute;s de su nacimiento. Esta cantidad fue distribuida a su vez en 4 dosis de 250 &micro;l cada 6 h con c&aacute;nula esof&aacute;gica de 1.0 mm de di&aacute;metro &uacute;til. </p>      <p>El poder de colonizaci&oacute;n del lactobacilo y la inhibici&oacute;n de la colonizaci&oacute;n del pat&oacute;geno se eval&uacute;o indirectamente, practicando recuentos de colonias de bacterias l&aacute;cticas y <i>V. cholerae</i> de heces de conejos lactantes, tanto de retados como no retados. Las muestras se tomaron diariamente durante los 13 d&iacute;as del ensayo pos infecci&oacute;n.</p>     <p>Los datos se analizaron con el programa STATA 10.0. El plan de an&aacute;lisis requiri&oacute; de una base de datos con las medidas de peso diario de los conejos, sobrevida y cuantificaci&oacute;n del n&uacute;mero de UFC de <i><i>L. acidophilus</i>1</i> y <i>V. cholerae</i> 01 OGAWA, e incluy&oacute; el test de an&aacute;lisis de variantes de una v&iacute;a, prueba de rangos m&uacute;ltiples DUNCAN y un an&aacute;lisis de estimaci&oacute;n de sobrevida por Kaplan-Meier. Se utiliz&oacute; el test de ANOVA, para evaluar la significancia de los resultados de protecci&oacute;n en el modelo animal. Esta investigaci&oacute;n fue avalada por el Comit&eacute; de &Eacute;tica en Investigaci&oacute;n de la Universidad de Nari&ntilde;o.</p>       <p><b>RESULTADOS</b></p>      <p><b>Aislamiento de BAL.</b> Se obtuvieron 75 aislados en agar MRS-azul de anilina compatibles con BAL. La pureza de los cultivos se verific&oacute; con la coloraci&oacute;n de Gram encontrando bacilos Gram positivos y catalasa negativos (20).</p>      <p><b>Capacidad amilol&iacute;tica. </b>8 de los 75 aislados fueron positivos en la prueba de hidr&oacute;lisis del almid&oacute;n. La BAL con mejor capacidad amilol&iacute;tica fue seleccionada luego de analizar el di&aacute;metro de los halos (en mm) de degradaci&oacute;n de almid&oacute;n mediante an&aacute;lisis de varianza y prueba de Tukey, p&lt;0.5. As&iacute;, de los 8 fue seleccionado el aislado del individuo (I) de dos meses de edad (2), de la primera y quinta muestra (a) y (e), purificado a partir de la diluci&oacute;n 10-5 (5), identificados como I2a5 e I2e5 (<a href="#fig1">Figura 1</a>).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v18supl/vol18supla13f1.jpg" width="332" height="342" alt="Figura 1"><a name="fig1"></a></p>     <p><b>Identificaci&oacute;n del aislado. </b>Los resultados de las pruebas microbiol&oacute;gicas, fisiol&oacute;gicas y bioqu&iacute;micas realizadas, permitieron identificar el aislado como <i><i>Lactobacillus</i> acidophilus1</i> (<a href="#tab1">Tabla 1</a>).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v18supl/vol18supla13t1.jpg" width="339" height="279" alt="Tabla 1"><a name="tab1"></a></p>      <p><b>Elecci&oacute;n del sustrato.</b> Se seleccion&oacute; el medio de melaza-leche para el cultivo de <i><i>L. acidophilus</i>1</i>, teniendo en cuenta las condiciones de crecimiento recomendadas por Heczko et al (8). Las condiciones de fermentaci&oacute;n fueron estandarizadas previamente (20).</p>      <p><b>Evaluaci&oacute;n de par&aacute;metros de fermentaci&oacute;n de  <i><i>L. acidophilus</i>1</i> en el medio melaza-leche.</b> En este sustrato amil&aacute;ceo se obtuvo alta producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico (67.3 g/l) y un alto rendimiento de &aacute;cido l&aacute;ctico en relaci&oacute;n con el consumo de az&uacute;cares (<a href="#fig2">Figura 2</a>). Al estimar la masa celular y la producci&oacute;n de prote&iacute;na se determin&oacute; el tiempo de cosecha a las 14 h, con 75x10<sup>8</sup> UFC de <i><i>L. acidophilus</i>1</i>/ml y una concentraci&oacute;n proteica de 14.5 g/l.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v18supl/vol18supla13f2.jpg" width="342" height="388" alt="Figura 2"><a name="fig2"></a></p>      <p><b>Ensayo de inhibici&oacute;n antag&oacute;nica <i>in vitro</i>.</b> Los resultados del an&aacute;lisis de varianza y la prueba de Tukey (p&lt;0.1) para los halos de inhibici&oacute;n, permitieron determinar que el fermento l&aacute;ctico inhibe el crecimiento <i>in vitro</i> del pat&oacute;geno <i>V. cholerae</i> a una densidad celular de 35x10<sup>6</sup> bact/ml presente en la diluci&oacute;n 10<sup>-1</sup>, respecto al sustrato puro (sin diluir) y a las diluciones 10<sup>-2</sup> y 10<sup>-3</sup>.</p>      <p><b>Protecci&oacute;n intestinal contra <i>V. cholerae</i> 01 OGAWA por cultivos probi&oacute;ticos en modelo animal.</b> El ensayo de protecci&oacute;n intestinal contra <i>V. cholerae</i> 01 OGAWA a trav&eacute;s de la administraci&oacute;n oral de un fermento l&aacute;ctico que contuvo <i><i>L. acidophilus</i>1</i> revisti&oacute; la mayor relevancia del presente estudio y condujo a probar la hip&oacute;tesis de protecci&oacute;n intestinal <i>in vivo</i> (<a href="#fig3">Figura 3</a>).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v18supl/vol18supla13f3.jpg" width="336" height="397" alt="Figura 3"><a name="fig3"></a></p>      <p>Estos resultados significar&iacute;an que la administraci&oacute;n oral de probi&oacute;ticos est&aacute; relacionada con una mejor nutrici&oacute;n de los animales, evidenciado por la ganancia en peso del grupo tratado con el fermento l&aacute;ctico.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Por otra parte, hubo una p&eacute;rdida de peso promedio, a los 7 d&iacute;as de nacidos, en dos grupos de conejos inoculados con <i>V. cholerae</i> 01 OGAWA, los conejos infectados con s&iacute;ntomas de diarrea perdieron peso hasta un d&iacute;a posterior al tratamiento con probi&oacute;ticos (<a href="#fig3">Figura 3</a>). Asimismo, hubo una ganancia gradual de peso promedio en el grupo tratado con probi&oacute;ticos, respecto al grupo de conejos lactados  (<a href="#fig3">Figura 3</a>,<a href="#fig4"> 4</a>). </p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v18supl/vol18supla13f4.jpg" width="333" height="313" alt="Figura 4"><a name="fig4"></a></p>      <p>Del an&aacute;lisis pre y post reto seg&uacute;n tratamientos, se puede decir que hubo una menor ganancia promedio de peso antes del reto p&lt;0.05 en los grupos de animales que no recibieron probi&oacute;ticos (DS azul o fucsia). Las diferencias de pesos promedio a los 21 d&iacute;as del ensayo fueron estad&iacute;sticamente significativas, p&lt;0.05. Despu&eacute;s del reto el beneficio del probi&oacute;tico se observ&oacute; en los animales protegidos y retados (DS en rojo), pues tuvieron ganancia de peso similar al grupo control (DS en fucsia), de &eacute;sta manera se logr&oacute; evidenciar que la ausencia del reto y la protecci&oacute;n con probi&oacute;ticos favorecen el crecimiento y desarrollo de los animales significativamente.</p>     <p>El efecto terap&eacute;utico del probi&oacute;tico se manifest&oacute; en la recuperaci&oacute;n y la ganancia de peso observada luego del proceso infeccioso, en comparaci&oacute;n al grupo lactado (control). Los promedios de pesos al final del ensayo fueron 70.8 g y 50.3 g para los grupos tratados y no tratados con probi&oacute;ticos respectivamente.</p>     <p><b>An&aacute;lisis de sobrevida.</b> La protecci&oacute;n intestinal del probi&oacute;tico contra <i>V. cholerae</i> fue demostrada en el an&aacute;lisis de sobrevida (<a href="#fig5">Figura 5</a>). Se puede observar que los conejos enfrentados con el pat&oacute;geno y sin recibir probi&oacute;tico (lactados) tuvieron una probabilidad de sobrevida menor respecto al grupo de animales retados con el pat&oacute;geno y simult&aacute;neamente alimentados con probi&oacute;ticos, cuya probabilidad de sobrevida fue mayor.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v18supl/vol18supla13f5.jpg" width="330" height="375" alt="Figura 5"><a name="fig5"></a></p>      <p><b>Evaluaci&oacute;n del poder de colonizaci&oacute;n de <i><i>L. acidophilus</i>1</i> y <i>V. cholerae</i> 01 OGAWA en heces.</b> En la <a href="#fig6">figura 6</a> se observa al d&iacute;a ocho o un d&iacute;a post-reto la aparici&oacute;n de un pico de infecci&oacute;n por <i>V. cholerae</i> 01 OGAWA (cuadro verde, <a href="#fig6">Figura 6</a>), coincidiendo con los s&iacute;ntomas de diarrea y p&eacute;rdida de peso observados entre el octavo y d&eacute;cimo d&iacute;a del ensayo (cuadros verdes y azules, <a href="#fig3">Figura 3</a>). </p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v18supl/vol18supla13f6.jpg" width="335" height="391" alt="Figura 6"><a name="fig6"></a></p>      <p>La colonizaci&oacute;n por <i>V. cholerae</i> 01 OGAWA solo se manifest&oacute; en los recuentos de colonias promedios de las muestras de heces de los conejos retados dos d&iacute;as post-reto (cuadro verde), sugiriendo que existe una protecci&oacute;n contra la colonizaci&oacute;n de <i>V. cholerae</i> 01 OGAWA en los siguientes d&iacute;as del ensayo en el grupo tratado con probi&oacute;tico, lo que no sucedi&oacute; con el grupo control (lactados), en los cuales los recuentos de UFC <i>V. cholerae</i> 01 OGAWA/g de heces en los siguientes d&iacute;as post in&oacute;culo tuvieron su expresi&oacute;n m&aacute;xima en el d&iacute;a 9 con 1.2x10<sup>7</sup> UFC/g de heces y cayeron gradualmente hasta el d&iacute;a 11.</p>       <p><b>DISCUSI&Oacute;N</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los probi&oacute;ticos se utilizan para tratar enfermedades gastrointestinales, incluyendo enfermedades inflamatorias del intestino, s&iacute;ndrome del intestino irritable y EDAs (25). Los mecanismos por los cuales los probi&oacute;ticos protegen contra las enfermedades intestinales incluyen la optimizaci&oacute;n del equilibrio microbiano, exclusi&oacute;n competitiva de pat&oacute;genos, promoci&oacute;n de la secreci&oacute;n de moco, producci&oacute;n de bacteriocinas, mejora de la integridad de la barrera y maduraci&oacute;n de la inmunidad intestinal (6,25).</p>      <p>En humanos, la administraci&oacute;n del probi&oacute;tico <i>L. acidophilus</i>, reduce significativamente la incidencia de la enterocolitis en reci&eacute;n nacidos (26). Un mecanismo importante incluye la funci&oacute;n de barrera, garantizada por el mantenimiento y estabilidad de las uniones celulares. Esta BAL tiene efecto anti-inflamatorio y citoprotector, m&aacute;s espec&iacute;ficamente en EDA donde se puede constituir en una nueva herramienta de prevenci&oacute;n en la poblaci&oacute;n vulnerable, como reci&eacute;n nacidos y prematuros (19,26).</p>      <p>Las BAL aisladas con capacidad amilol&iacute;tica se obtuvieron en mayor proporci&oacute;n de ni&ntilde;os reci&eacute;n nacidos porque en ni&ntilde;os de m&aacute;s de un a&ntilde;o no fue posible seleccionar BAL con las caracter&iacute;sticas requeridas. Este hallazgo seg&uacute;n Gibson et al (5) se debe posiblemente a que con la edad el cambio en la dieta, en el metabolismo y la exposici&oacute;n a infecciones concomitante con el uso de antibi&oacute;ticos, induce un aumento en la variabilidad del microbioma intestinal nativo (7,12,26).</p>      <p><i><i>L. acidophilus</i>1</i> se puede considerar un microorganismo probi&oacute;tico dado que en el presente estudio se evidenci&oacute; que su consumo puede proporcionar beneficios en la salud de los animales, adem&aacute;s es resistente a la acidez del TGI y cuando se ingiere es capaz de sobrevivir a su paso por el TGI dado que fue recuperado a partir de heces frescas de conejos lactantes tratados con el alimento probi&oacute;tico. As&iacute;, todas estas caracter&iacute;sticas se ajustan a las descritas por Kamlesh et al (14) y Khani et al (19) para un microorganismo ser considerado como probi&oacute;tico. </p>      <p>Los ensayos de fermentaci&oacute;n permitieron conocer la respuesta metab&oacute;lica de <i><i>L. acidophilus</i>1</i> a diferentes fuentes de carbono y nitr&oacute;geno (20). Los az&uacute;cares consumidos del medio de cultivo favorecen la producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico en altas concentraciones, este comportamiento permiti&oacute; determinar el car&aacute;cter homofermentativo de la bacteria <i><i>L. acidophilus</i>1</i> y su potencial industrial para la producci&oacute;n de este metabolito. Se encontr&oacute; que <i><i>L. acidophilus</i>1</i> inhibe el crecimiento <i>in vitro</i> del pat&oacute;geno <i>V. cholerae</i> a una densidad celular de 35x10<sup>6</sup> bact/ml presente en la diluci&oacute;n 10<sup>-1</sup> respecto al sustrato puro y a las diluciones 10<sup>-2</sup> y 10<sup>-3</sup>, resultados concordantes con un estudio previo (16).</p>      <p>La sobrevida de los conejos infectados con <i>V. cholerae</i> del grupo tratado con probi&oacute;tico fue mayor respecto a los grupos control, pues as&iacute; lo confirma el an&aacute;lisis de sobrevida p&lt;0.05. Se puede concluir entonces que el probi&oacute;tico tiene un efecto protector en conejos contra el pat&oacute;geno <i>V. cholerae</i> 01 OGAWA. El beneficio del probi&oacute;tico se observa en forma contundente en los animales protegidos y retados, pues tuvieron ganancia de peso similar al grupo control (lactado), lo que sugiere que la ausencia del reto y la protecci&oacute;n con probi&oacute;ticos favorecen el crecimiento y desarrollo de los animales, resultados que concuerdan con los hallazgos de Ritchie et al (27). El efecto protector o profil&aacute;ctico del probi&oacute;tico es mucho m&aacute;s evidente que el efecto terap&eacute;utico pues luego de la estimaci&oacute;n de sobrevida por Kaplan-Meier, s&oacute;lo el 10% de los conejos murieron, en comparaci&oacute;n del 60% observado cuando se hizo uso del probi&oacute;tico pos-reto. La medida terap&eacute;utica tomada en el estado &aacute;lgido de la infecci&oacute;n diarreica, se comport&oacute; de manera positiva, manifest&aacute;ndose en la inhibici&oacute;n de la colonizaci&oacute;n de <i>V. cholerae</i>, similar al hallazgo de Lee et al (28) evidenciado en la desaparici&oacute;n de la diarrea, resoluci&oacute;n de la infecci&oacute;n, ganancia promedio de peso de los animales, m&aacute;s no en la restauraci&oacute;n del equilibrio de la microbiota l&aacute;ctica end&oacute;gena, en contraste con la microbiota encontrada por Combes et al (34) y Chamorro et al (29) en conejos reci&eacute;n nacidos luego de la administraci&oacute;n de f&oacute;rmulas dietarias.</p>      <p>Nuestros hallazgos sugieren en un futuro el uso de <i><i>L. acidophilus</i>1</i> para restablecer o mantener el equilibrio de TGI luego del contacto con V. cholera y controlar la infecci&oacute;n, en contraste a los recientes reportes sobre el uso de BAL como L. lactis para la elaboraci&oacute;n de vacunas de administraci&oacute;n oral, que potencia la respuesta inmune de la mucosa e inmunidad sist&eacute;mica espec&iacute;fica tipo IgA contra el pat&oacute;geno <i>V. cholerae</i> 01(6,30,31) y la comprensi&oacute;n de c&oacute;mo el sistema inmune adaptativo hace frente al notable n&uacute;mero y diversidad de microbios que colonizan el TGI, este probi&oacute;tico es muy prometedor para establecer nuevos enfoques de modulaci&oacute;n de redes inmunes para tratar y prevenir la enfermedad (6).</p>      <p>Los resultados obtenidos en ratones permiten recomendar la administraci&oacute;n oral de probi&oacute;ticos en humanos en riesgo de infecci&oacute;n o incluso en situaciones de epidemias, debido al efecto altamente protector observado (30,32).</p>      <p>En el futuro, si se tiene en cuenta que la interacci&oacute;n de las toxinas bacterianas con receptores de la superficie de las c&eacute;lulas hospederas (31) -tales como el receptor de Lipopolisac&aacute;rido LPS- es un paso indispensable en la patog&eacute;nesis del c&oacute;lera, el bloqueo de tales interacciones es una potencial y atractiva estrategia terap&eacute;utica que conlleva al dise&ntilde;o y caracterizaci&oacute;n de la expresi&oacute;n de probi&oacute;ticos recombinantes, simulando la uni&oacute;n entre el receptor GM1 (galactoman&oacute;sido 1) y Ctx (toxina c&oacute;lera) e infectando ratones para comprobar los cambios con <i>V. cholerae</i> virulento. </p>      <p>Sin embargo, es de tener en cuenta en el dise&ntilde;o y aplicaci&oacute;n de vacunas o m&eacute;todos profil&aacute;cticos, que para <i>V. cholerae</i> se han documentado elementos gen&eacute;ticos m&oacute;viles, integrones, fagos, islas de patogenicidad y otros elementos gen&eacute;ticos del &ldquo;mobiloma&rdquo; (10,33) como resultado de los eventos de evoluci&oacute;n gen&oacute;mica y procesos de transferencia lateral, que han conllevado a la emergente aparici&oacute;n de variantes de &eacute;ste pat&oacute;geno con capacidad de adaptaci&oacute;n y poder patog&eacute;nico incrementados, raz&oacute;n por la cual las investigaciones destinadas al dise&ntilde;o y uso de microorganismos probi&oacute;ticos u otras herramientas profil&aacute;cticas o terap&eacute;uticas deber&aacute;n tener en cuenta estos mecanismos. Los microorganismos probi&oacute;ticos son una herramienta promisoria para el equilibrio de la MIH, permite el subyacente control de <i>V. cholerae</i>, pues su capacidad de producir enzimas y activaci&oacute;n de complejas v&iacute;as metab&oacute;licas puede ayudar a generar ambientes hostiles para el pat&oacute;geno. </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En conclusi&oacute;n este trabajo encontr&oacute; que existe una protecci&oacute;n de la colonizaci&oacute;n de <i>V. cholerae</i> 01 OGAWA en el grupo de conejos lactantes tratados con <i>L. acidophilus</i>. Se pudo comprobar la hip&oacute;tesis de estudio pues la sobrevida del grupo de conejos tratado con probi&oacute;ticos fue mayor a la del grupo lactado por sus madres y alimentado con el sustrato puro; entonces <i>L. acidophilus</i> tiene un efecto protector en conejos contra la cepa pat&oacute;gena de <i>V. cholerae</i> 01 OGAWA. </p>      <p>Una perspectiva de inter&eacute;s es comprender c&oacute;mo la MIH afecta a la salud y la enfermedad y la biolog&iacute;a de sus relaciones con <i>L. acidophilus</i>, de tal manera que propicie un cambio en la concepci&oacute;n de pat&oacute;genos individuales como &uacute;nicos agentes causales, hacia un enfoque ecol&oacute;gico teniendo en cuenta la comunidad y las condiciones del micro-nicho en su conjunto (6,7,10). </p>      <p><b>Agradecimientos</b></p>     <p>A la Vicerrector&iacute;a de Investigaciones-VIPRI, de la Universidad de Nari&ntilde;o por la financiar el trabajo. Al Departamento de Biolog&iacute;a. Al Grupo de Investigaci&oacute;n Salud P&uacute;blica de la Universidad de Nari&ntilde;o. A las Bi&oacute;logas con &eacute;nfasis en Microbiolog&iacute;a. Nubia Yandar y Sof&iacute;a Guzm&aacute;n de la Universidad de Nari&ntilde;o. Al Profesor Luis E Bravo de la Universidad del Valle.</p>       <p><b>REFERENCIAS</b></p>        <!-- ref --><p>1. World Health Organization WHO. Number of reported cholera cases. Global Health Observatory (GHO); 2013.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0122-0268201300040001300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>2. INS. Bolet&iacute;n Epidemiol&oacute;gico No 35. Bogot&aacute;, Colombia: Instituto Nacional de Salud INS; 2013. URL Disponible en: <a href="http://www.ins.gov.co/boletin-epidemiologico/Boletn%20Epidemiolgico/2013%20Boletin%20epidemiologico%20Semana%2035.pdf" target="_blank">http://www.ins.gov.co/boletin-epidemiologico/Boletn%20Epidemiolgico/2013%20Boletin%20epidemiologico%20Semana%2035.pdf</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0122-0268201300040001300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Nomoto K. Prevention of Infections by Probiotics. Review. J Biosci Bioeng 2005; 100(6):583-592.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0122-0268201300040001300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>4. Binns C, Lee KM. The use of probiotics to prevent diarrhea in young children attending child care centers: A review. J Exp Clin Med 2010; 2(6):269-273.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0122-0268201300040001300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>5. Gibson GR, Probert HM, Loo JV, Rastall RA, Roberfroid MB. Dietary modulation of the human colonic microbiota: updating the concept of prebiotics. Nutr Res Rev 2004; 17(2):259-275.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0122-0268201300040001300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>6. Maynard CL, Elson CO, Hatton RD, Weaver CT. Reciprocal interactions of the intestinal microbiota and immune system. Nature 2012; 489(7415):231-241.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0122-0268201300040001300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>7. Lozupone C,  Stombaugh J, Gordon J, Jansson J, Knight R. Diversity, stability and resilience of the human gut microbiota. Nature 2012; 489(7415):220-230.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0122-0268201300040001300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>8. Heczko PB, Strus M, Kochan P. Critical evaluation of probiotic activity of lactic acid bacteria and their effects. J Physiol Pharmacol 2006; 57(Suppl 9):5-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0122-0268201300040001300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>9. Ljungh A, Wadstr&ouml;m T. Lactic acid bacteria as probiotics. Curr Issues Intest Microbiol 2006; 7(2):73-89.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0122-0268201300040001300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>       <!-- ref --><p>10. Weinstock GM. Genomic approaches to studying the human microbiota. Nature 2012; 489(7415):250-256.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0122-0268201300040001300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>11. Aureli P, Capurso L, Castellazzi AM, Clerici M, Giovannini M, Morelli L, et al. Probiotics and health: An evidence-based review. Pharmacol Res 2011; 63(5):366-376.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0122-0268201300040001300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>12. Tremaroli V, B&auml;ckhed F. Functional interactions between the gut microbiota and host metabolism. Nature 2012; 489(7415):242-249.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0122-0268201300040001300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>13. Galdeano CM, de Leblanc AM, Carmuega E, Weill R, Perdig&oacute;n G. Mechanisms involved in the immunostimulation by probiotic fermented milk. J Dairy Res 2009; 76(4):446-454.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0122-0268201300040001300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>14. Kamlesh S, Basavaraj K, Ajay K, Vidhi T. Probiotics: A review. Asian Pac J Trop Biomed 2011; S287-S290.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0122-0268201300040001300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>15. Castillo NA, Moreno A, Maldonado GC, Perdig&oacute;n G.  Probiotics: An alternative strategy for combating salmonellosis Immune mechanisms involved. Food Res Int 2012; 45(2):831-841.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0122-0268201300040001300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>16. Chandrakant A, Marcia P, Duane G, Kalidas S. <i>in vitro</i> bioassay based screening of antihyperglycemia and antihypertensive activities of <i><i>Lactobacillus</i> acidophilus1</i> fermented pear juice. Innov Food Sci Emerg Technol 2012; 13(4):221-230.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0122-0268201300040001300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>17. Quigley EM. Gut microbiota and the role of probiotics in therapy.   Curr Opin Pharmacol 2011; 11(6):593-603.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0122-0268201300040001300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>18. Guarner F, Khan AG, Garisch J, Eliakim R, Gangl A, Thomson A, et al. World gastroenterology organization global guidelines: probiotic and prebiotics. J Clin Gastroenterol 2012; 46(6):468-481.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0122-0268201300040001300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>19. Khani S, Hosseini HM, Taheri M, Nourani MR, Fooladi A. Probiotics as an alternative strategy for prevention and treatment of human diseases: A review. Inflamma Allergy Drug Targets 2012; 11(2):79-89.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0122-0268201300040001300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>20. Guerrero M, Guzm&aacute;n S, Yandar M, Pazos A. Efecto inhibitorio de <i>Lactobacillus</i> acidophilus sobre el enteropat&oacute;geno <i>V. cholerae</i> 01 Ogawa <i>in vitro</i>. Universidad y Salud 2002; 1(3):8-14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0122-0268201300040001300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>21. De Roissart IH, Editors. Bacteries Lactiques. 4th Ed. Montpellier: IRD; 1995.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0122-0268201300040001300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>       <!-- ref --><p>22. Sneath P, Holt J.G. Bergey's Manual of Determinative Bacteriology. Vol III. 9th Ed. Estados Unidos: Williams and Wilkins Co; 1994.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0122-0268201300040001300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>23. Alvarado CC, D&iacute;az CG. Efecto antag&oacute;nico de <i>Lactobacillus</i> plantarum aislado de pastizal de finca lechera. RESPYN &#91;en linea&#93;. 2009; 10(1). URL  Disponible en: <a href="http://www.respyn.uanl.mx/x/1/articulos/articulo_Lactobacillus_plantarum.htm" target="_blank">http://www.respyn.uanl.mx/x/1/articulos/articulo_Lactobacillus_plantarum.htm</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0122-0268201300040001300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>24. CDC's Global Disease Detection (GDD) Manual: Rapid Diagnostic Test for Cholera. 2011.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0122-0268201300040001300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>25. Gareau MG, Sherman PM, Walker WA. Probiotics and the gut microbiota in intestinal health and disease. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 2010; 7(9):503-514.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0122-0268201300040001300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>26. Sheng S, Yueyue Y, Guo Y, He S, Haikaeli M, Hoenig J, et al. Synergistic Protection of Combined Probiotic Conditioned Media against Neonatal Necrotizing Enterocolitis-Like Intestinal Injury. PLoS One 2013; 8(5):6-19.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0122-0268201300040001300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>27. Ritchie JM, Rui H, Bronson RT, Waldor MK. Back to the future: studying cholera pathogenesis using infant rabbits. MBio 2010; 18(1):1-10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0122-0268201300040001300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>28. Lee DJ, Drongowski RA, Coran AG, Harmon CM. Evaluation of probiotic treatment in a neonatal animal model. Pediatr Surg Int 2010; 16(4):237-242.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0122-0268201300040001300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>29. Chamorro S, de Blas C, Grant G, Badiola I, Menoyo D, Caraba&ntilde;o R. Effect of dietary supplementation with glutamine and acombination of glutamine-arginine on intestinal health in twenty-five-day-old weaned rabbits. J Anim Sci 2010; (1):170-180.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0122-0268201300040001300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>30. Zamri HF, Shamsudin MS, Rahim RA, Neela V. Oral vaccination with Lactococcus lactis expressing the <i>Vibrio cholerae</i> Wzm protein to enhance mucosal and systemic immunity. Vaccine 2012; 30(21):3231-3238.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0122-0268201300040001300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>31. Linares DM, Geertsma ER, Poolman B. Evolved Lactococcus lactis  strains for enhanced expression of recombinant membrane proteins. J Mol Biol 2010; 401(1):45-55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0122-0268201300040001300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>32. Focareta A, Pat&oacute;n JC, Morona R, Cook J, Patona AW. Recombinant Probiotic for Treatment and Prevention of Cholera. Gastroenterol 2006; 130(6):1688-1695.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0122-0268201300040001300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p>33. Safa A, Nair GB, Kong RY. Evolution of new variants of <i>Vibrio cholerae</i> O1. Trends Microbiol 2010; 18(1):46-54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0122-0268201300040001300033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>34. Combes S, Michelland RJ, Monteils V, Cauquil L, Souli&eacute; V, Tran NU, et al. Postnatal development of the rabbit caecal microbiota composition and activity. FEMS Microbiol Ecol 2011; 77(3):680-689.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0122-0268201300040001300034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>   </font>      ]]></body><back>
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<ref id="B1">
<label>1</label><nlm-citation citation-type="book">
<collab>World Health Organization WHO</collab>
<source><![CDATA[Number of reported cholera cases]]></source>
<year>2013</year>
<publisher-name><![CDATA[Global Health Observatory (GHO)]]></publisher-name>
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<label>2</label><nlm-citation citation-type="book">
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<source><![CDATA[Boletín Epidemiológico No 35]]></source>
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<publisher-name><![CDATA[Colombia: Instituto Nacional de Salud INS]]></publisher-name>
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<ref id="B3">
<label>3</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
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