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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Fiebre Q: una zoonosis olvidada en Colombia]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto de Investigaciones Biológicas del Trópico (IIBT) Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia Universidad de Córdoba]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Q fever is a widespread zoonosis able to cause countless economic losses in domestic ruminants (sheep, goats and cattle). In humans occurs with great versatility of clinical manifestations; more than half of the cases are often asymptomatic, acute infection usually presents as a nonspecific febrile illness, with great potential to develop pneumonia, hepatitis and chronic endocarditis. In most of Latin American countries, Q fever is a neglected disease, mainly due to lack of knowledge and epidemiological association of health professionals, added to the absence of accurate diagnostic tools, which influence the subreport and misdiagnosis of the disease. In this context, the aim of this review was to describe the clinical aspects, eco-epidemiology, diagnosis and treatment of Q fever. Was used a systematic search for items, which were critically reviewed and evaluated according to their quality, based on scientific rigor, credibility, relevance and applicability of the results on the subjects covered, in order to provide an update and further knowledge of the disease.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Neumonía]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p>Art&iacute;culo de Revisi&oacute;n</p> <hr align='left'  width="12%">     <p><font face="verdana" size="4"><b><a name="bookmark0"></a>Fiebre Q: una zoonosis olvidada en Colombia</b></font></p> <hr align='left'  width="100%">     <p><b><a name="bookmark1"></a>Ver&oacute;nica Contreras, Marco Gonz&aacute;lez, Camilo Guzm&aacute;n, Salim M&aacute;ttar.*</b></p>     <p>Instituto de Investigaciones Biol&oacute;gicas del Tr&oacute;pico (IIBT), Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad de C&oacute;rdoba, Monter&iacute;a, Colombia.</p>     <p>* Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:smattar@correo.unicordoba.edu.co">smattar@correo.unicordoba.edu.co</a></p> </font>     <p align="right"><font size="2" face="verdana">Fecha de Recepci&oacute;n: 01-03-2013. </font></p>     <p align="right"><font size="2" face="verdana">Fecha de Aceptaci&oacute;n: 10-07-2013.</font></p> <hr align='left'  width="100%">      <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La fiebre Q es una zoonosis ampliamente distribuida, capaz de provocar innumerables p&eacute;rdidas econ&oacute;micas en rumiantes dom&eacute;sticos (ovinos, caprinos y bovinos). En humanos se presenta con gran versatilidad de manifestaciones cl&iacute;nicas; m&aacute;s de la mitad de los casos suelen ser asintom&aacute;ticos, la infecci&oacute;n aguda generalmente se presenta como una enfermedad febril no espec&iacute;fica, con gran potencial para desarrollar neumon&iacute;a, hepatitis y endocarditis cr&oacute;nica. En la mayor&iacute;a de pa&iacute;ses latinoamericanos la fiebre Q es una enfermedad olvidada, principalmente por el desconocimiento y falta de asociaci&oacute;n epidemiol&oacute;gica por parte de profesionales de la salud, sumado a la carencia de herramientas de diagn&oacute;stico preciso y asequible, que como consecuencia, influencian en el subreporte y subdiagn&oacute;stico de la enfermedad. El objetivo de esta revisi&oacute;n fue describir los aspectos cl&iacute;nicos, eco-epidemiol&oacute;gicos, diagn&oacute;stico y tratamiento de la fiebre Q. Se utiliz&oacute; una b&uacute;squeda sistem&aacute;tica de art&iacute;culos, los cuales fueron revisados y evaluados cr&iacute;ticamente de acuerdo a su calidad, basado en el rigor cient&iacute;fico, credibilidad, relevancia y aplicabilidad de los resultados sobre los temas abordados a fin de proveer una actualizaci&oacute;n y profundizaci&oacute;n en el conocimiento de la enfermedad.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Palabras clave:</b> Neumon&iacute;a; endocarditis; epidemiolog&iacute;a; reservorios; brotes de enfermedades.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Q fever: a neglected zoonosis in Colombia</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Q fever is a widespread zoonosis able to cause countless economic losses in domestic ruminants (sheep, goats and cattle). In humans occurs with great versatility of clinical manifestations; more than half of the cases are often asymptomatic, acute infection usually presents as a nonspecific febrile illness, with great potential to develop pneumonia, hepatitis and chronic endocarditis. In most of Latin American countries, Q fever is a neglected disease, mainly due to lack of knowledge and epidemiological association of health professionals, added to the absence of accurate diagnostic tools, which influence the subreport and misdiagnosis of the disease. In this context, the aim of this review was to describe the clinical aspects, eco-epidemiology, diagnosis and treatment of Q fever. Was used a systematic search for items, which were critically reviewed and evaluated according to their quality, based on scientific rigor, credibility, relevance and applicability of the results on the subjects covered, in order to provide an update and further knowledge of the disease.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Key words:</b> Pneumonia; endocarditis; epidemiology; reservoirs; diseases outbreaks.</font></p> <hr align='left'  width="100%">     <p align="justify"><font size="3" face="verdana"><b><a name="bookmark2"></a>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><em>Coxiella burnetii</em> es el agente causal de la fiebre Q, que es una zoonosis descrita en m&aacute;s de 50 pa&iacute;ses del mundo (1). A pesar de su gran distribuci&oacute;n, presenta una epidemiolog&iacute;a compleja debido a la interacci&oacute;n de diversos factores, como su amplia variedad de reservorios animales, transmisi&oacute;n aer&oacute;gena, baja dosis infecciosa, diversidad de manifestaciones cl&iacute;nicas y los factores de los hospederos. Adicionalmente, la carencia de herramientas precisas para el diagn&oacute;stico diferencial y el hecho de que no se encuentra incluida en la lista de enfermedades de notificaci&oacute;n obligatoria en la mayor&iacute;a de los pa&iacute;ses, hacen de ella una enfermedad subreportada y subdiagnosticada (2).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La fiebre Q presenta una gran variedad de manifestaciones cl&iacute;nicas; el 60% de los casos suelen ser infecciones asintom&aacute;ticas seguidas por seroconversi&oacute;n. La fiebre Q aguda generalmente se expresa como una enfermedad febril no espec&iacute;fica, con dolor de cabeza, fiebre alta y mialgia; y posibles complicaciones a neumon&iacute;a y hepatitis (1). Los pacientes infectados que poseen ciertas condiciones previas como lesiones valvulares del coraz&oacute;n, linfomas, inmunosupresi&oacute;n, anormalidades vasculares y embarazo, presentan un mayor riesgo de sufrir fiebre Q cr&oacute;nica, en la cual la manifestaci&oacute;n cl&iacute;nica frecuente es la endocarditis (3).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">El ganado bovino, caprino y ovino son los reservorios principales de la bacteria y constituyen una fuente de infecci&oacute;n directa a humanos. Igualmente, una gran variedad de mam&iacute;feros dom&eacute;sticos y silvestres, aves y garrapatas tambi&eacute;n son reservorios (4, 5). La principal forma de contagio es por la inhalaci&oacute;n de la bacteria contenida en part&iacute;culas de polvo contaminados (6). La fiebre Q es considerada una enfermedad de tipo ocupacional en personas cuyos trabajos implican contacto con animales; los veterinarios, trabajadores de campo, orde&ntilde;adores y trabajadores de mataderos presentan un mayor riesgo de infecci&oacute;n (7). Sin embargo, al ser una bacteria que tiene alta resistencia a condiciones ambientales adversas (8) y a su capacidad de ser transportada por el viento, puede llegar a infectar personas que se encuentran en zonas urbanas alejadas de los focos de infecci&oacute;n (9). En contraste, la ruta de transmisi&oacute;n oral no est&aacute; totalmente comprobada.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Desde que la fiebre Q fue descrita por primera vez en Australia y Estados Unidos, han sido reportados casos y brotes de la enfermedad en humanos y animales en pa&iacute;ses europeos como Francia (10), Alemania (11), Reino Unido (12), entre muchos otros. El brote m&aacute;s largo y numeroso de fiebre Q ocurri&oacute; entre 2007 y 2010 en los Pa&iacute;ses Bajos, donde fueron notificados m&aacute;s de 3,500 casos humanos, la mayor&iacute;a de ellos ocurrieron en sitios donde exist&iacute;an fincas de caprinos con abortos producidos por C. burnetii (13). En Estados Unidos, entre 1978 y 1999, la Fiebre Q era reportada con un promedio de 20 casos anuales, pero a partir de 1999 cuando fue declarada de notificaci&oacute;n obligatoria, aument&oacute; el n&uacute;mero de casos reportados y entre el 2000 y 2004 fueron informados 255 casos humanos, con un promedio 51 casos anuales (14).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana">En la mayor&iacute;a de pa&iacute;ses Latinoamericanos son pocos los estudios realizados sobre esta enfermedad. En Uruguay, entre 1975 y 1985, fueron notificados 14 brotes en trabajadores de una procesadora de carnes (15). En Nuevo Le&oacute;n, M&eacute;xico, en 2002, se inform&oacute; una seroprevalencia de anticuerpos contra C. burnetii del 40% en ovejas, 35% en cabras, 28% en ganado lechero y 10% en ganado de carne (16). En Colombia, en 2006 fue reportada por primera vez una seroprevalencia de anticuerpos contra C. burnetii del 23,6% en trabajadores de campo de zonas rurales en los departamentos de C&oacute;rdoba y Sucre (17). A principios de 2012 se report&oacute; un caso humano de endocarditis por Coxiella en Medell&iacute;n, Colombia (18) y a finales de ese a&ntilde;o fue reportado un caso de neumon&iacute;a por Coxiella en un centro hospitalario de Cali, Colombia (19).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Se hace evidente que <em>Coxiella burnetii</em> se encuentra circulando en Colombia, y que la falta de conocimiento y asociaci&oacute;n epidemiol&oacute;gica de la enfermedad por parte de los profesionales de la salud hacen de la fiebre Q una enfermedad subdiagnosticada. El objetivo de la presente revisi&oacute;n fue describir los aspectos cl&iacute;nicos, eco-epidemiol&oacute;gicos, diagn&oacute;stico y tratamiento de la fiebre Q.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Se realiz&oacute; una b&uacute;squeda sistem&aacute;tica de informaci&oacute;n en las bases de datos SCIENCE DIRECT, NCBI (PubMed y PubMed Central), Biomed Search, MEDLINE, LILACS y Google Acad&eacute;mico. Para la estrategia de b&uacute;squeda fueron utilizados los t&eacute;rminos: &ldquo;Coxiella burnetii&rdquo;, &ldquo;Fiebre Q&rdquo;, combinados con infecci&oacute;n aguda, infecci&oacute;n cr&oacute;nica, endocarditis, epidemiolog&iacute;a, reservorios, prevalencia, patog&eacute;nesis, diagn&oacute;stico y tratamiento. Fueron considerados art&iacute;culos en ingl&eacute;s, espa&ntilde;ol, portugu&eacute;s y franc&eacute;s, los cuales fueron revisados y evaluados cr&iacute;ticamente de acuerdo a su calidad, basado en el rigor cient&iacute;fico, congruencia entre los objetivos y metodolog&iacute;a, credibilidad, relevancia y aplicabilidad de los resultados sobre los temas abordados. Finalmente fueron seleccionados 89 art&iacute;culos, los cuales se enfocan en proveer una informaci&oacute;n actualizada de la enfermedad.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Aspectos hist&oacute;ricos de la fiebre Q</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">En 1933 Derrick (20) describi&oacute; la ocurrencia de varios casos de una enfermedad febril desconocida en trabajadores de un matadero en Brisbane, Australia. Era caracterizada principalmente por fiebre continua, desde siete hasta 20 d&iacute;as de duraci&oacute;n, dolor de cabeza y malestar. Los an&aacute;lisis de laboratorio no permitieron asociar la enfermedad con alg&uacute;n agente etiol&oacute;gico conocido y tampoco pudo ser aislado en ning&uacute;n medio de cultivo, por lo cual fue denominada Fiebre Q (del ingl&eacute;s Query: desconocido). Para esa misma &eacute;poca en Estados Unidos fueron colectadas garrapatas en el &aacute;rea de Nine Mile Creek (Montana), como parte de un estudio de Fiebre Manchada de las Monta&ntilde;as Rocosas. Las garrapatas fueron alimentadas parasitando cobayos en los cuales fue hallado un microorganismo parecido a las rickettsias. Estudios liderados por Cox y Burnet (21) permitieron aislar el microorganismo en el saco vitelino de huevos embrionados de gallina y posteriormente se demostr&oacute; que el microorganismo aislado por Cox y Burnet y el aislado del brote febril de Australia eran los mismos, por lo cual fue denominado inicialmente Rickettsia diaporica y Rickettsia burnetii; finalmente en 1948 fue llamado Coxiella burnetii en honor a Cox y a Burnet (22).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Aspectos biol&oacute;gicos de Coxiella burnetii</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Es una bacteria Gram-negativa e intracelular obligada, con forma de coco-bacilo pleom&oacute;rfico y mide entre 0,2-0,4 |im de ancho y 0,4-1 |im de largo. Se replica dentro de una vacuola parasit&oacute;fora de c&eacute;lulas eucariotas, principalmente en los monocitos circulantes en el torrente sangu&iacute;neo y en macr&oacute;fagos localizados en los n&oacute;dulos linf&aacute;ticos, bazo, pulm&oacute;n e h&iacute;gado, con un tiempo de duplicaci&oacute;n entre 20 y 45 horas (23). Aunque su membrana es similar al de las bacterias Gram-negativas, a diferencia de ellas, solo puede ser visualizada por el m&eacute;todo de tinci&oacute;n de Gim&eacute;nez (24). Inicialmente fue clasificada en la subdivisi&oacute;n a-1 de las proteobacterias, en el orden Rickettsiales, familia Rickettsiaceae (1); sin embargo, el an&aacute;lisis de la secuencia de ARN ribosomal 16S permiti&oacute; reclasificar el g&eacute;nero Coxiella en la subdivisi&oacute;n gamma de las proteobacterias, dentro del orden Legionellales, Familia Coxiellaceae (25).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">El genoma de diferentes cepas de Coxiella comprende un tama&ntilde;o entre 1,9 y 2,2 Mb y est&aacute; organizado en un cromosoma circular. Presenta un gran n&uacute;mero de pseudogenes, los cuales son secuencias de nucle&oacute;tidos que no codifican un producto funcional y elementos m&oacute;viles gen&eacute;ticos, como secuencias de inserci&oacute;n (26). La presencia de ellos favorece la plasticidad gen&oacute;mica y el intercambio de material gen&eacute;tico, y a su vez le permite a la bacteria reorganizar o reducir su genoma para mejorar su adaptaci&oacute;n al estilo de vida intracelular (27).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La bacteria puede contener uno de cuatro pl&aacute;smidos aut&oacute;nomos denominados QpH1, QpDV, QpRS y QpDG (27) o secuencias plasm&iacute;dicas integradas en el genoma (26). Inicialmente, los pl&aacute;smidos eran agrupados en grupos gen&oacute;micos, donde las cepas aisladas de humanos con fiebre Q aguda eran ubicadas dentro de los grupos gen&oacute;micos I, II y III y caracterizadas por contener el pl&aacute;smido QpH1, mientras que las cepas aisladas de pacientes con fiebre Q cr&oacute;nica eran ubicadas dentro de los grupos gen&oacute;micos V y VI y asociadas al pl&aacute;smido QpRS. Sin embargo, estudios posteriores demostraron que los aislados de fiebre Q cr&oacute;nica pod&iacute;an llevar ambos tipos de pl&aacute;smidos (QpH1 y QpRS), lo cual permiti&oacute; sugerir que estos no estaban asociados a la presentaci&oacute;n de la enfermedad (28). Adem&aacute;s, otros estudios de genotipificaci&oacute;n de un gran n&uacute;mero de cepas de la bacteria, an&aacute;lisis polimorfismo de longitud de fragmentos de restricci&oacute;n (RFLP), tipificaci&oacute;n de pl&aacute;smidos, entre otros, tampoco afirman esos resultados (29).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><em>Coxiella burnetii</em> presenta una variaci&oacute;n de fase antig&eacute;nica relacionada con una diferenciaci&oacute;n en el lipopolisacarido (LPS). Las bacterias en fase I son virulentas y las de fase II avirulentas (2) y la transici&oacute;n de la fase I a II es producida por una p&eacute;rdida de az&uacute;cares en el n&uacute;cleo del ant&iacute;geno O (30). Esta conversi&oacute;n de fase es algunas veces asociada con una gran deleci&oacute;n cromos&oacute;mica en la cual se eliminan un importante n&uacute;mero de genes que participan en la bios&iacute;ntesis del LPS (31). C. burnetii manifiesta un ciclo de desarrollo bif&aacute;sico primordial para su supervivencia, en el cual se produce una alternaci&oacute;n de dos morfotipos bacterianos, uno peque&ntilde;o e inactivo denominado variante celular peque&ntilde;a (VCP) y uno grande, metab&oacute;licamente activo denominado variante celular grande (VCG) (32). La variante peque&ntilde;a puede sobrevivir fuera del hospedero, resistir condiciones adversas como desecaci&oacute;n, radiaci&oacute;n UV y presi&oacute;n osm&oacute;tica (3). Por el contrario, la variante grande VCG es &uacute;nicamente intracelular e interviene en la replicaci&oacute;n bacterial.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Mecanismos de patog&eacute;nesis de Coxiella burnetii</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Los seres humanos suelen infectarse al inhalar part&iacute;culas de polvo contaminadas con la bacteria, las cuales se establecen en los monocitos y macr&oacute;fagos alveolares a trav&eacute;s de una endocitosis dependiente de micro-filamentos (3). El ingreso de los organismos en fase II es intervenido por la prote&iacute;na integrina avp3 y el receptor de complemento CR3, mientras que los de fase I &uacute;nicamente son atra&iacute;dos por la integrina avp3 (33). Este mecanismo les permite a los organismos de fase II incorporarse eficientemente y multiplicarse m&aacute;s r&aacute;pido que los de fase I. No obstante, estos &uacute;ltimos inducen una reorganizaci&oacute;n de los filamentos de actina en la superficie de los monocitos que retiran a los receptores CR3, permitiendo as&iacute; su ingreso a la c&eacute;lula (34). Ambas fases se multiplican en las c&eacute;lulas, sin embargo, las bacterias en fase II son destruidas r&aacute;pidamente por los macr&oacute;fagos, mientras que las de fase I utilizan mecanismos que evaden las propiedades microbicidas de estos para lograr su sobrevivencia (35).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Una vez los microorganismos entran a la c&eacute;lula, los fagosomas que contienen las bacterias se fusionan con los lisosomas del hospedero formando una gran vacuola parasit&oacute;fora (36). Dentro de ella, la variante peque&ntilde;a entra en fase de latencia, la cual es posteriormente interrumpida por el pH &aacute;cido que induce su metabolismo a formar las variantes grandes. Una vez estas &uacute;ltimas se empiezan a formar entran en una fase de crecimiento logar&iacute;tmico (10-12 h de generaci&oacute;n) y al final de esta etapa las variantes grandes comienzan una morfog&eacute;nesis para formar nuevas variantes peque&ntilde;as, lo que da el inicio de la fase estacionaria (32). Coxiella induce la biog&eacute;nesis y el sostenimiento de la vacuola parasit&oacute;fora a trav&eacute;s de un sistema de secreci&oacute;n Tipo IV Dot/Icm (T4SS), que transloca prote&iacute;nas bacterianas denominadas sustratos o efectoras hacia el citosol de la c&eacute;lula hospedera, en donde interact&uacute;an para garantizar una infecci&oacute;n exitosa y favorecer la replicaci&oacute;n bacterial dentro de la vacuola (37).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><em>Coxiella burnetii </em>sobrevive dentro de los macr&oacute;fagos humanos a trav&eacute;s del control de la fagocitosis celular y la prevenci&oacute;n del &uacute;ltimo paso de la fusi&oacute;n fagosoma-lisosoma. Los fagosomas que contienen organismos en fase I exhiben en su membrana algunos marcadores como Manosa 6 fosfato, LAMP1 y protones de ATPasa, pero no expresan una proteasa lisosomal llamada catepsina D, que si es encontrada en los fagosomas que contienen organismos en fase II (35) y est&aacute; implicada en la uni&oacute;n fagosoma-lisosoma. Finalmente, el interfer&oacute;n y restaura la etapa de fusi&oacute;n y permite la llegada de una GTPasa denominada Rab7 que est&aacute; involucrada en la regulaci&oacute;n del tr&aacute;fico intracelular. El interfer&oacute;n y induce a la alcalinizaci&oacute;n de la vacuola y el control del metabolismo de iones en los macr&oacute;fagos impidiendo as&iacute; la replicaci&oacute;n bacteriana (35). Los monocitos de los pacientes con fiebre Q cr&oacute;nica poseen un defecto en el proceso de fusi&oacute;n fagosoma-lisosoma y en consecuencia, son incapaces de destruir las bacterias. Esto se encuentra relacionado con una sobreproducci&oacute;n de interleucina 10 (IL10), la cual es una citoquina que interviene como moduladora en la conversi&oacute;n de los fagosomas. Esta falla puede ser corregida en los pacientes tratados con anticuerpos espec&iacute;ficos contra esta &uacute;ltima, los cuales le permiten a los monocitos restaurar sus propiedades antimicrobianas (38).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b><a name="bookmark3"></a>Epidemiolog&iacute;a de la fiebre Q</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Coxiella burnetii presenta una gran variedad de reservorios en la naturaleza, infecta mam&iacute;feros dom&eacute;sticos y silvestres, aves y artr&oacute;podos, principalmente garrapatas (1, 5). Cualquier animal infectado tiene el potencial de transmitir la bacteria a trav&eacute;s de su expulsi&oacute;n en los fluidos corporales. Sin embargo, los reservorios m&aacute;s importantes como fuente de infecci&oacute;n de los humanos son los rumiantes dom&eacute;sticos (bovinos, caprinos y ovinos), en los cuales la bacteria coloniza el &uacute;tero, placenta y gl&aacute;ndula mamaria, y contaminan el ambiente al expulsar grandes cantidades del microorganismo en las secundinas del parto, placenta, fluidos amni&oacute;ticos, secreciones vaginales, leche, heces y orina (39, 40). En los ovinos y caprinos, la infecci&oacute;n origina abortos, nacimientos de cr&iacute;as d&eacute;biles y partos prematuros; por su parte, los bovinos pueden desarrollar infertilidad, mastitis o retenci&oacute;n placentaria, sin embargo, estos &uacute;ltimos al ser asintom&aacute;ticos en la mayor&iacute;a de los casos, sirven como fuente de riesgo de adquisici&oacute;n de la infecci&oacute;n entre animales y de animales a humanos (40, 41).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">M&aacute;s de 40 especies de garrapatas son infectadas con C. burnetii y pueden servir como indicador de infecci&oacute;n en la naturaleza, incluyen los g&eacute;neros Haemaphysalis sp e Ixodes sp, los cuales son prevalentes en Europa. De igual forma, los g&eacute;neros Rhipicephalus sp, Amblyomma sp y Dermacentor sp, pueden ser infectados y son m&aacute;s frecuentes en Am&eacute;rica. Un estudio realizado en Argentina encontr&oacute; que el 44,6% de 92 garrapatas A. tigrinum y el 15,4% de 13 garrapatas A. parvum provenientes de roedores (Galea mulestoides) estuvieron infectadas con C. burnetii (42). Las garrapatas son consideradas reservorios naturales de la bacteria debido a que C. burnetii puede multiplicarse en los intestinos, est&oacute;mago, ser excretada en las heces y ser transmitida transov&aacute;ricamente (43). Estudios recientes basados en an&aacute;lisis de secuencias de ARN ribosomal de 16S, han reportado la presencia de una bacteria con caracter&iacute;sticas similares a C. burnetii en garrapatas (44), sin embargo, solo ha sido demostrada como endosimbionte de la garrapata Amblyomma americanum (45). A&uacute;n faltan estudios que permitan esclarecer cu&aacute;l es la relaci&oacute;n &iacute;ntima entre este tipo de bacterias y las garrapatas hospederas.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><a name="bookmark4"></a><b>Rutas de infecci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La principal v&iacute;a de transmisi&oacute;n para los seres humanos es la inhalaci&oacute;n de part&iacute;culas de polvo contaminados con los productos de excreci&oacute;n de animales infectados. En un estudio que emple&oacute; un sistema de informaci&oacute;n geogr&aacute;fica se demostr&oacute; que existe mayor riesgo de infecci&oacute;n dentro de un radio menor a 5 km de la fuente de infecci&oacute;n, el cual puede estar influenciado por factores ambientales (viento, precipitaci&oacute;n), patrones de comportamiento animal y humano, entre otros (46). De otro lado, la ingesti&oacute;n de productos de leche cruda contaminada es considerada una ruta poco habitual de transmisi&oacute;n que no ha sido totalmente comprobada (<a href="#f1">Figura 1</a>). Un estudio detect&oacute; la presencia de la bacteria en quesos provenientes de Francia, Jap&oacute;n e Italia, pero no se encontr&oacute; viabilidad de la misma (47). Otro estudio report&oacute; evidencia cl&iacute;nica y serol&oacute;gica de infecci&oacute;n por Coxiella en un cl&uacute;ster de 5 personas que consum&iacute;an leche de vaca no pasteurizada proveniente de una lecher&iacute;a en Estados Unidos (48). se requieren investigaciones adicionales que permitan determinar la probabilidad de infecci&oacute;n por v&iacute;a oral.</font></p>     <p align="center"><a name="f1"></a><a href="img/revistas/rmri/v19n2/v19n1a07-1.jpg" target="_blank">Figura 1</a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Factores de riesgo para el desarrollo de fiebre Q humana</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Existen varios componentes que est&aacute;n relacionados con la expresi&oacute;n cl&iacute;nica de la fiebre Q aguda y cr&oacute;nica. Como por ejemplo, la ruta de infecci&oacute;n o el tama&ntilde;o del in&oacute;culo, pero fundamentalmente son los factores de los hospederos los que constituyen la mayor influencia para la presentaci&oacute;n de la fiebre Q (3). La adquisici&oacute;n de la infecci&oacute;n durante el embarazo es un factor de riesgo importante para el desarrollo de fiebre Q cr&oacute;nica y adem&aacute;s puede provocar abortos, nacimientos con bajo peso, prematurez y abortos frecuentes posteriores (49). Los pacientes con valvulopat&iacute;as cardiacas, injerto vascular o aneurisma arterial tienen un alto riesgo de desarrollar fiebre Q cr&oacute;nica (3). En un estudio se encontr&oacute; que la incidencia de endocarditis entre pacientes con fiebre Q aguda y anormalidades valvulares fue del 39% (12/31 pacientes) e incluso m&aacute;s alta (75%) en pacientes no tratados (6/8 pacientes) (50).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">El sexo es tambi&eacute;n un factor de riesgo; a niveles comparables de exposici&oacute;n y seroprevalencia, la proporci&oacute;n hombre-mujer con infecci&oacute;n por C. burnetii es de 2&#094;45 (3). Adem&aacute;s, otro estudio report&oacute; una tasa m&aacute;s alta de casos sintom&aacute;ticos en hombres adultos (91%) que en mujeres adultas (75%) (51), lo cual podr&iacute;a ser explicado por la presencia de la hormona femenina 17p-estradiol, que constituye un factor protector en modelos animales (52). La edad es tambi&eacute;n otro factor de riesgo en la manifestaci&oacute;n de la fiebre Q, las personas mayores de 15 a&ntilde;os tienen m&aacute;s probabilidad de sufrir fiebre Q sintom&aacute;tica que los m&aacute;s j&oacute;venes (3). Asimismo, la actividad ocupacional tambi&eacute;n constituye un factor de riesgo para la adquisici&oacute;n de fiebre Q, generalmente las personas que trabajan en contacto con animales como veterinarios, trabajadores de mataderos, trabajadores de campo son quienes presentan mayor riesgo de contraer la infecci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La fiebre Q es una zoonosis ubicua que se ha reportado en m&aacute;s de 50 pa&iacute;ses. En Europa el n&uacute;mero de casos reportados es bajo; sin embargo, los estudios de seroprevalencia indican que entre un 2 y 14% de la poblaci&oacute;n general ha estado infectada por C. burnetii (53). A su vez, se han reportado casos y brotes de fiebre Q en humanos y animales en Francia (54), Alemania (11), Espa&ntilde;a (55), entre muchos otros pa&iacute;ses (<a href="#c1">Cuadro 1</a>). La mayor&iacute;a de los casos presentados en pa&iacute;ses europeos ocurren a finales de la primavera e inicio del verano y tambi&eacute;n se relacionan con los per&iacute;odos de partos de ovejas y cabras. El brote m&aacute;s numeroso de fiebre Q que ha sido documentado ocurri&oacute; entre 2007 y 2010 en los Pa&iacute;ses Bajos, con m&aacute;s de 3,500 casos humanos notificados, los cuales ocurrieron en &aacute;reas con gran concentraci&oacute;n de granjas caprinas infectadas por Coxiella burnetii (13). Por otra parte, en Dinamarca, los casos de fiebre Q parecen estar m&aacute;s relacionados con ganado bovino lechero (56).</font></p>     <p align="center"><a name="c1"><img src="img/revistas/rmri/v19n2a07-2.jpg"/></a></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">En Estados Unidos, entre 1978 y 1999 la fiebre Q era reportada con un promedio de 20 casos anuales. Sin embargo, desde que fue convertida en enfermedad de notificaci&oacute;n obligatoria en 1999, un estudio de vigilancia nacional report&oacute; un promedio de 51 casos anuales entre el 2000 y 2004. Las infecciones humanas por fiebre Q han sido reportadas en cada estado de los Estados Unidos, con una incidencia media anual de 0,28 casos por mill&oacute;n (14). Adem&aacute;s, otro estudio report&oacute; la presencia de la bacteria en el 23% de 1266 muestras ambientales procedentes de diferentes estados, la mayor&iacute;a de ellas correspondientes a bacterias viables (57).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">En los pa&iacute;ses latinoamericanos, la fiebre Q no se encuentra en la lista de enfermedades de notificaci&oacute;n obligatoria y son escasos los estudios reportados sobre esta enfermedad. En Uruguay, C. burnetii ha sido descrita desde 1956 tanto en humanos como animales; entre 1975 y 1985 se reportaron 14 brotes de la enfermedad en trabajadores de un establecimiento de procesamiento de carnes. De un total de 1358 casos analizados, el 60% se confirmaron mediante t&eacute;cnica de fijaci&oacute;n de complemento (15). De otro lado, en la Guyana Francesa, la fiebre Q es una enfermedad emergente y la principal manifestaci&oacute;n cl&iacute;nica es la neumon&iacute;a adquirida en la comunidad (CAP). En un estudio retrospectivo se report&oacute; una seroprevalencia del 24% en131 pacientes con CAP ingresados en un hospital de La Cayena entre 2004 y 2007 (58). En Brasil, en 2005 fue reportada una seroprevalencia de anticuerpos contra C. burnetii del 4% (17/437) en personas saludables de una comunidad rural del estado de Minas Gerais (59). En 2008, fue notificado un caso severo de endocarditis por C. burnetii con resultado fatal (60) y en 2012, un estudio report&oacute; la secuenciaci&oacute;n del elemento IS1111 del gen de transposasa de C. burnetii en muestras de sangre y lavado bronco-alveolar de un paciente con neumon&iacute;a grave (60).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">En Colombia fue reportada una seroprevalencia de anticuerpos contra C. burnetii del 24% en trabajadores de &aacute;reas rurales de los departamentos de C&oacute;rdoba y Sucre (17). En 2012 fue notificado un caso humano de endocarditis por Coxiella en la ciudad de Medell&iacute;n (18) y a finales de ese a&ntilde;o fue reportado un caso de neumon&iacute;a por Coxiella en un centro hospitalario de la ciudad de Cali, Colombia (19). Aunque en este pa&iacute;s se ha demostrado la circulaci&oacute;n indirecta de la bacteria, es importante la realizaci&oacute;n de estudios eco-epidemiol&oacute;gicos en poblaciones animales, de bovinos, ovinos y caprinos que constituyen la fuente de infecci&oacute;n para humanos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Manifestaciones cl&iacute;nicas: Fiebre Q en humanos</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana">La infecci&oacute;n por Coxiella suele ser asintom&aacute;tica en el 60% de los casos (3). El per&iacute;odo de incubaci&oacute;n es aproximadamente de dos a tres semanas y no existe una presentaci&oacute;n distintiva de la enfermedad, dado que las manifestaciones cl&iacute;nicas dependen de varios factores, anteriormente descritos, por lo cual los s&iacute;ntomas pueden ser diferentes entre pacientes y manifestarse en una forma aguda o cr&oacute;nica (1, 61).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Fiebre Q aguda</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La manifestaci&oacute;n cl&iacute;nica m&aacute;s com&uacute;n es una enfermedad febril inespec&iacute;fica, los s&iacute;ntomas frecuentes son fiebre alta entre 39-40&deg;C, fatiga, escalofr&iacute;os y dolor de cabeza severo (1). Otros s&iacute;ntomas como tos, n&aacute;useas, v&oacute;mitos, dolor abdominal y mialgia tambi&eacute;n han sido reportados (62). La aparici&oacute;n de rash o exantema es poco frecuente (5-20% de pacientes), suele ser inespec&iacute;fica y puede presentarse como lesiones maculares rosas o purp&uacute;rica en el tronco (1). La neumon&iacute;a es una importante manifestaci&oacute;n cl&iacute;nica de la fiebre Q aguda y C. burnetii puede ser una causa subestimada de neumon&iacute;a adquirida en la comunidad. Suele aparecer cuatro o cinco d&iacute;as despu&eacute;s de los primeros signos de la enfermedad, aunque tambi&eacute;n puede presentarse en pacientes asintom&aacute;ticos. se manifiesta con una tos seca y no productiva, dolor retro-orbital, mialgia y sudoraci&oacute;n (1). Los hallazgos en la radiograf&iacute;a de t&oacute;rax pueden resultar inespec&iacute;ficos y algunos casos pueden incluir opacidades redondeadas y adenopat&iacute;a hiliar. se pueden presentar otros s&iacute;ntomas como taquipnea, estertores, dolor en el pecho, efusiones pleurales, falta de aliento o distress respiratorio agudo (63).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La hepatitis es otra manifestaci&oacute;n de la fiebre Q aguda, generalmente se expresa como una hepatitis granulomatosa, con fiebre y dolor abdominal. Tambi&eacute;n puede manifestarse como una hepatitis infecciosa con hepatomegalia o ictericia (1, 64). Los niveles de transaminasas hep&aacute;ticas pueden elevarse dos y tres veces de su nivel normal (62). En un estudio se encontr&oacute; que los pacientes que desarrollan hepatitis son m&aacute;s j&oacute;venes, no est&aacute;n inmunocomprometidos, presentan un mayor n&uacute;mero de episodios febriles y dolores de cabeza, mialgia, trombocitopenia y exhiben una elevada velocidad de sedimentaci&oacute;n globular. De forma contraria, los pacientes de mayor edad tienden a presentar problemas pulmonares, son inmunocomprometidos, y los dolores de cabeza, fiebre y trombocitopenia son menos frecuentes (65).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Fiebre Q cr&oacute;nica</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La infecci&oacute;n cr&oacute;nica por C. burnetii es poco usual y puede desarrollarse despu&eacute;s de una infecci&oacute;n aguda o asintom&aacute;tica. Aproximadamente el 5% de los pacientes desarrollan fiebre Q cr&oacute;nica y la tasa de mortalidad var&iacute;a de 5 a 60% (66). El &oacute;rgano principalmente afectado es el coraz&oacute;n, aunque tambi&eacute;n las arterias, el h&iacute;gado y los huesos. La endocarditis es la manifestaci&oacute;n cl&iacute;nica m&aacute;s importante de la fiebre Q cr&oacute;nica y ocurre en el 60-70% de los casos (67), puede ser totalmente asintom&aacute;tica, tanto cl&iacute;nica como histol&oacute;gicamente y m&aacute;s de la mitad de los casos presentan hemocultivos negativos. Los factores de riesgo que predisponen a una fiebre Q cr&oacute;nica incluyen la presencia de lesiones valvulares previas, inmunosupresi&oacute;n, injertos vasculares, aneurismas y embarazo (51). Los resultados de la endocarditis por fiebre Q incluyen vegetaciones en cualquier v&aacute;lvula (a&oacute;rtica bic&uacute;spide, mitral y v&aacute;lvulas prot&eacute;sicas), fiebre de bajo grado, insuficiencia cardiaca, hepatomegalia y esplenomegalia en aproximadamente la mitad de los pacientes. Adem&aacute;s, otras manifestaciones como hepatitis cr&oacute;nica, osteomielitis, artritis s&eacute;ptica, enfermedad pulmonar intersticial o s&iacute;ndrome de fatiga cr&oacute;nica tambi&eacute;n pueden presentarse (62).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Fiebre Q en el embarazo</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">En las mujeres embarazadas como en muchos otros mam&iacute;feros, la bacteria se establece y multiplica en la placenta, &uacute;tero y gl&aacute;ndulas mamarias (49). La fiebre Q es una causa importante morbimortalidad materno-fetal. Generalmente la infecci&oacute;n ocurre de manera asintom&aacute;tica, pero puede estar asociada con la recurrencia de abortos espont&aacute;neos posteriores (68). Las consecuencias de la fiebre Q en el embarazo dependen del trimestre de adquisici&oacute;n de la infecci&oacute;n. Las complicaciones obst&eacute;tricas, son por ende, significativamente m&aacute;s frecuentes en pacientes que se infectan en el primer trimestre de embarazo en comparaci&oacute;n con los que se infectan tard&iacute;amente (69).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">En un estudio se encontr&oacute; que en las mujeres infectadas durante el primer trimestre frecuentemente resulta en abortos, mientras que aquellas que se infectan en el segundo trimestre resultan en prematurez (49). En otro estudio fue investigado el rol de la patogenicidad de C. burnetii en el embarazo en una serie de casos de 53 pacientes, y se observ&oacute; que el 81,1% de las mujeres embarazadas que no recibieron tratamiento presentaron complicaciones obst&eacute;tricas, entre las cuales se encontraron abortos espont&aacute;neos (13,3%), retardaci&oacute;n en el crecimiento intrauterino (27%), oligoamnios (10,8%) y muerte fetal intrauterina o parto prematuro (27%) (69).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Evaluaci&oacute;n de pacientes y diagn&oacute;stico</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana">La versatilidad de manifestaciones cl&iacute;nicas en la Fiebre Q puede complicar o retardar el diagn&oacute;stico cl&iacute;nico, por lo cual el diagn&oacute;stico inicial debe estar basado en una sospecha epidemiol&oacute;gica de historia de exposici&oacute;n animal, cercan&iacute;a a una zona end&eacute;mica y en los resultados del test serol&oacute;gico. Los par&aacute;metros de diagn&oacute;stico paracl&iacute;nico no son muy espec&iacute;ficos y se pueden encontrar tanto en la forma aguda como en la cr&oacute;nica. Los m&aacute;s comunes son trombocitopenia (35% de los pacientes), elevaci&oacute;n de enzimas hep&aacute;ticas (62%) y aumento en la velocidad de sedimentaci&oacute;n globular (55%). La creatina fosfoquinasa y lactato deshidrogenasa se aumenta en el 20% de los pacientes (65).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>T&eacute;cnicas de diagn&oacute;stico indirecto: Serolog&iacute;a</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">El diagn&oacute;stico serol&oacute;gico de la fiebre Q se basa en la detecci&oacute;n de anticuerpos contra la fase I y II de C. burnetii. La t&eacute;cnica de inmunofluorescencia indirecta (iFi) es la prueba de oro para el diagn&oacute;stico de la fiebre Q humana, sin embargo, otros m&eacute;todos como el ensayo inmunoabsorbente unido a enzima (ELIsA) y la t&eacute;cnica de fijaci&oacute;n de complemento (TFc) tambi&eacute;n son utilizados (<a href="#c2">Cuadro 2</a>).</font></p>     <p align="center"><a name="c2"><img src="img/revistas/rmri/v19n2a07-3.jpg"/></a></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">En la infecci&oacute;n aguda, la respuesta de anticuerpos contra la fase II surge primero y con t&iacute;tulos m&aacute;s altos que la respuesta de anticuerpos contra la fase i (1). La seroconversi&oacute;n generalmente ocurre siete a 15 d&iacute;as despu&eacute;s de la aparici&oacute;n de los s&iacute;ntomas. Los anticuerpos IgM contra la fase II surgen en la segunda semana de la enfermedad aguda, seguido por los anticuerpos igG contra la fase ii (70).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Para la confirmaci&oacute;n del diagn&oacute;stico mediante IFI, se requiere la demostraci&oacute;n de una elevaci&oacute;n de cuatro veces en los t&iacute;tulos de anticuerpos IgG contra la fase II, en las muestras de suero entre la fase aguda (primera semana de enfermedad) y la fase convaleciente (3-4 semanas despu&eacute;s) (71). No obstante, para un diagn&oacute;stico en los estados iniciales de la enfermedad es recomendable la combinaci&oacute;n del test serol&oacute;gico con PCR (Reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa) (72). De otro lado, la infecci&oacute;n cr&oacute;nica est&aacute; asociada con un continuo incremento en los t&iacute;tulos de anticuerpos IgG anti-fase I (&gt; 1:800) que podr&iacute;an ser m&aacute;s altos que los anticuerpos IgG anti-fase II (73).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La IFI es una t&eacute;cnica altamente sensible y espec&iacute;fica, por lo cual es de gran utilidad en situaciones end&eacute;micas. Por lo tanto, es importante para la detecci&oacute;n, seguimiento de pacientes e identificaci&oacute;n del riesgo de desarrollo de fiebre Q cr&oacute;nica (74). Inicialmente, la t&eacute;cnica de Fijaci&oacute;n de Complemento (TFC) era empleada para el diagn&oacute;stico de fiebre Q en humanos y animales, sin embargo, es poco recomendable debido a su baja sensibilidad y porque no distingue entre las clases de inmunoglobulinas IgG e IgM (74). De otro lado, la t&eacute;cnica ELISA, es mucho m&aacute;s sensible y m&aacute;s f&aacute;cil de estandarizar que el TFC. Es un m&eacute;todo de diagn&oacute;stico de gran utilidad para la ejecuci&oacute;n de estudios a gran escala en humanos y animales debido a que puede incluir un mayor n&uacute;mero de muestras, por lo cual su uso es de gran ventaja en situaciones epid&eacute;micas (75).</font><font size="2" face="verdana"> </font></p> <font size="2" face="verdana">     <p align="justify">Recientemente, se ha venido desarrollando una nueva t&eacute;cnica diagn&oacute;stica denominada ELISPOT, que consiste en un ensayo inmunoabsorbente que mide la respuesta del Interferon gamma (INF y) y de las c&eacute;lulas T espec&iacute;ficas para ant&iacute;genos en fase I y II de Coxiella. En un estudio se encontr&oacute; que esta t&eacute;cnica identifica adecuadamente pacientes convalecientes, y en los pacientes cr&oacute;nicos se presenta un perfil distinto con un recuento mucho m&aacute;s alto en la fase I y fase II de Coxiella. No obstante, a&uacute;n se requieren estudios adicionales de comparaci&oacute;n de esta t&eacute;cnica con ensayos serol&oacute;gicos convencionales en una gran cohorte de pacientes para su validaci&oacute;n (76).</p> </font>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>T&eacute;cnicas de diagn&oacute;stico directo</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Este tipo de t&eacute;cnicas se basan en la identificaci&oacute;n directa de la bacteria o uno de sus componentes y para su realizaci&oacute;n se requiere de un laboratorio con nivel de bioseguridad tipo III y de personal especializado en el manejo y cultivo de muestras cl&iacute;nicas (77). Existen tres t&eacute;cnicas que permiten visualizar directamente la bacteria, la tinci&oacute;n o coloraci&oacute;n, la t&eacute;cnica de inmunohistoqu&iacute;mica y el cultivo bacterial (<a href="#c3">Cuadro 3</a>). En la t&eacute;cnica de coloraci&oacute;n directa se utiliza el m&eacute;todo de tinci&oacute;n de Gim&eacute;nez o Giemsa en frotis o tejidos fijados. La sensibilidad y especificidad de esta t&eacute;cnica es baja dado a que se corre el riesgo de confusi&oacute;n con otras bacterias como Chlamydia sp, Chlamydophila sp o Brucella sp (40). La t&eacute;cnica de inmunohistoqu&iacute;mica es utilizada para la examinaci&oacute;n patol&oacute;gica en casos de fiebre Q cr&oacute;nica y en la identificaci&oacute;n de lesiones placentarias de animales abortados (78).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana">El cultivo celular en c&eacute;lulas in vitro es la prueba de oro para la identificaci&oacute;n de Coxiella. Sin embargo, este m&eacute;todo tambi&eacute;n requiere de un alto nivel de bioseguridad y presenta baja sensibilidad, por lo cual es raramente realizado y no es recomendable para estudios epidemiol&oacute;gicos a gran escala (77). C. burnetii puede ser cultivada en l&iacute;neas celulares de ri&ntilde;&oacute;n de mono verde africano Chlorocebus sp (C&eacute;lulas Vero), l&iacute;nea celular de garrapatas IDE8, c&eacute;lulas de mosquito y c&eacute;lulas de fibroblastos humanos (79). De otro lado, en una investigaci&oacute;n se desarroll&oacute; un medio complejo de nutrientes libre de c&eacute;lulas, con una composici&oacute;n que corresponde estrictamente a los requerimientos metab&oacute;licos del microorganismo dentro del fagolisosoma, por lo cual favorece el crecimiento exitoso de Coxiella. Este es un avance importante porque facilita estudios nuevos de patog&eacute;nesis y gen&eacute;tica de la bacteria, as&iacute; como el desarrollo de subunidades vacunales (80).</font></p>     <p align="center"><a name="c3"><img src="img/revistas/rmri/v19n2a07-4.jpg" /></a></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR)</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">En las &uacute;ltimas d&eacute;cadas han sido perfeccionadas t&eacute;cnicas r&aacute;pidas y sensibles de PCR (PCR convencional o PCR cuantitativa a tiempo real) para la detecci&oacute;n de ADN de C. burnetii. Puede ser usada en diversos tipos de muestras, como biopsias humanas, cultivo celular, sangre, suero, artr&oacute;podos o muestras ambientales (81). La PCR en muestras de sangre entera o suero es &uacute;til en el diagn&oacute;stico inicial de la fiebre Q aguda, dado a que el resultado suele ser positivo en la mayor&iacute;a de pacientes que no han desarrollado anticuerpos durante la fase aguda de la enfermedad (primeras dos semanas despu&eacute;s del inicio de s&iacute;ntomas) o en aquellos que presentan respuesta de anticuerpos IgM en fase II. Sin embargo, esta t&eacute;cnica resulta negativa en pacientes que han desarrollado respuesta de anticuerpos IgG o en aquellos que han recibido tratamiento antibi&oacute;tico (72). En un estudio se encontr&oacute; que cuando la PCR es incluida en el procedimiento de diagn&oacute;stico de infecci&oacute;n basado &uacute;nicamente en serolog&iacute;a, se incrementa la sensibilidad (78% frente a un 29% con serolog&iacute;a como &uacute;nico m&eacute;todo diagn&oacute;stico) (82).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Los m&eacute;todos basados en PCR utilizan una o m&aacute;s secuencias diana espec&iacute;ficas del genoma de C. burnetii. Las m&aacute;s utilizadas son las secuencias plasm&iacute;dicas (QpH1 y QpRS), los genes cromos&oacute;micos como el gen que codifica la enzima super&oacute;xido dismutasa (htpAB), el gen icd de la enzima Isocitrato-deshidrogenasa, el gen com1 que codifica la prote&iacute;na de membrana externa y el gen transposasa en el elemento de inserci&oacute;n IS1111 (<a href="#c3">Cuadro 3</a>, <a href="#f2">Figura 2</a>). Esta &uacute;ltima es la principal diana escogida para los ensayos de PCR, debido a que est&aacute; presente en m&uacute;ltiples copias en el genoma (7 a 120 copias) y por tanto mejora la sensibilidad en la detecci&oacute;n. No obstante, no es recomendable su uso si se requiere cuantificar la carga bacterial del microorganismo debido a que el n&uacute;mero de copias difiere entre las cepas de la bacteria (83); adem&aacute;s, tambi&eacute;n es utilizada en estudios de zoonosis para establecer la infecci&oacute;n por C. burnetii en animales (<a href="#f2">Figura 2</a>). Para obtener un m&eacute;todo confiable de PcR cuando el fin es detectar y cuantificar, se debe incluir al menos un marcador (o diana) que se presente con copia &uacute;nica en el genoma (icd, com1, htpAB, etc) y adicionalmente se debe utilizar un marcador de m&uacute;ltiple copia (IS1111) que permita mejorar la sensibilidad. A pesar de la gran utilidad de estas t&eacute;cnicas en el diagn&oacute;stico de la fiebre Q, una desventaja de ellas es que son incapaces de distinguir si el ADN bacterial corresponde a microorganismos vivos o muertos (84).</font></p>     <p align="center"><a name="f2"><img src="img/revistas/rmri/v19n2a07-5.jpg"/></a></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Tratamiento de la fiebre Q aguda y cr&oacute;nica</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Para la fiebre Q aguda el tratamiento de elecci&oacute;n es doxiciclina 100 mg cada 12 horas durante 14 a 21 d&iacute;as. Este debe ser administrado inmediatamente una vez existe sospecha de fiebre Q y aun cuando se carecen de los resultados de diagn&oacute;stico serol&oacute;gico, dado que la doxiciclina previene efectivamente el desarrollo de complicaciones severas cuando es administrada al inicio de la enfermedad. En ni&ntilde;os menores de ocho a&ntilde;os se recomienda el uso de cotrimoxazol en caso de enfermedad leve y doxiciclina si la enfermedad empeora. Otros reg&iacute;menes de antibi&oacute;ticos pueden ser usados si la doxiciclina est&aacute; contraindicada a causa de las alergias e incluyen moxifloxacina, claritromicina, cotrimoxazol (trimetoprim/sulfametoxazol) y rifampicina (69, 85). La terapia m&eacute;dica en pacientes con fiebre Q cr&oacute;nica consiste en una dosis de 100 mg de doxiciclina dos veces al d&iacute;a y 200 mg de hidroxicloroquinolona tres veces al d&iacute;a, puede variar de 18 a 24 meses de acuerdo al sitio de infecci&oacute;n. Sin embargo, el tratamiento &oacute;ptimo aun est&aacute; siendo debatido (71). Los pacientes mensualmente deben ser evaluados cl&iacute;nica y serol&oacute;gicamente para evitar reca&iacute;das y evoluci&oacute;n a endocarditis. Adem&aacute;s, se recomienda un seguimiento oftalmol&oacute;gico cada seis meses para detectar acumulaci&oacute;n de hidroxicloroquinolona en la retina.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Tratamiento de la fiebre Q en el embarazo</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Existen controversias sobre la terapia m&eacute;dica de la fiebre Q aguda durante el embarazo, dado que el conocimiento es limitado y aun debe ser evaluado. Generalmente en este caso se utiliza cotrimoxazol (320 mg de trimetoprim y 600 mg de sulfametoxazol) durante cinco semanas, debido a que tiene efectos bacteriost&aacute;ticos (69). En un estudio en donde se emple&oacute; una larga terapia con cotrimoxazol durante el embarazo indic&oacute; que se pueden reducir las complicaciones obst&eacute;tricas; sin embargo, dicha evidencia est&aacute; basada en una serie de casos no aleatorizados y sin controles, por lo cual su interpretaci&oacute;n debe ser cuidadosa (69).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana">En otro estudio se evalu&oacute; las consecuencias materno-fetales de la infecci&oacute;n por Coxiella en mujeres embarazadas despu&eacute;s de un brote en Alemania, algunas de ellas recibieron distintos tratamientos antibi&oacute;ticos (Cotrimoxazol, macr&oacute;lidos, entre otros) y otras no. No se encontr&oacute; relaci&oacute;n entre la infecci&oacute;n por C. burnetii y complicaciones en el embarazo, por ende, la tasa riesgo-beneficio en el tratamiento de este tipo de pacientes permanece incierto (86). De otro lado, en algunos estudios se ha reportado que el cotrimoxazol es antagonista del &aacute;cido f&oacute;lico debido a que interfiere con su producci&oacute;n y puede causar una disminuci&oacute;n del mismo en el feto. El uso de este antibi&oacute;tico en el embarazo podr&iacute;a incrementar el riesgo de malformaciones cong&eacute;nitas (principalmente del tracto urinario y anormalidades cardiovasculares), malformaciones en la edad gestacional, nacimiento prematuro, entre otros (87, 88). Por tanto, es recomendado el uso de &aacute;cido f&oacute;lico si se utiliza este tratamiento. No obstante, son necesarias investigaciones adicionales sobre el uso del cotrimoxazol en el embarazo y una mayor evidencia para mejores opciones de tratamiento durante el mismo.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Mecanismos de prevenci&oacute;n y control</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Algunas ocupaciones est&aacute;n asociadas con un mayor riesgo de adquirir infecci&oacute;n por Coxiella burnetii, principalmente aquellas que involucran el manejo de animales, como veterinarios, granjeros, trabajadores de mataderos y de plantas procesadoras de carne. De igual forma, el personal de hospitales y laboratorios de diagn&oacute;stico que manipulan material biol&oacute;gico o experimentan con animales tambi&eacute;n se encuentran en riesgo. Entre las medidas de prevenci&oacute;n y control de la fiebre Q que deben ser usados se encuentra la educaci&oacute;n a empleados con riesgo ocupacional sobre las fuentes de infecci&oacute;n, el riesgo de exposici&oacute;n y presentaci&oacute;n cl&iacute;nica de la fiebre Q. Asimismo, deben realizarse esfuerzos educacionales en grupos vulnerables a desarrollar fiebre Q cr&oacute;nica, como trabajadores con valvulopat&iacute;as preexistentes, con pr&oacute;tesis vascular, aneurismas, inmunosuprimidos o mujeres embarazadas (71).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">El personal de atenci&oacute;n de salud debe tomar precauciones en procedimientos que generen aerosoles, como atenci&oacute;n de partos o manejo de pacientes infectados, para los cuales se debe utilizar protecci&oacute;n facial y respiratoria, guantes y ropa de protecci&oacute;n. se requiere una adecuada disposici&oacute;n de residuos contaminados y manipulaci&oacute;n cuidadosa de ropa de pacientes, la limpieza y desinfecci&oacute;n de instrumentos, equipos y superficies. De igual forma, debe asegurarse una adecuada disposici&oacute;n y manipulaci&oacute;n de material biol&oacute;gico como placentas, productos de partos o fetos abortados (71).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Vacunaci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La fiebre Q puede ser prevenida con una vacuna que solo es producida y licenciada en Australia (Qvax) para protecci&oacute;n de grupos de riesgo ocupacional, sin embargo, a&uacute;n no ha sido registrada en la mayor&iacute;a de los pa&iacute;ses. su efectividad solo se ha probado en j&oacute;venes adultos saludables y no en personas con factores de riesgo cardiovascular o pacientes con enfermedad vascular subyacente (89). Adem&aacute;s, solo puede ser suministrada en individuos que no han estado en contacto con la bacteria y en personas que tienen respuesta inmune contra el pat&oacute;geno puede provocar reacciones adversas como inflamaci&oacute;n y abscesos, por lo cual, previo a su administraci&oacute;n se requiere un test de piel para evitar complicaciones.</font></p>     <p align="justify"><font size="3" face="verdana"><a name="bookmark5"></a><b>Conclusiones</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La fiebre Q es una zoonosis que no es ajena en Colombia. Su prevalencia es subestimada y subdiagnosticada, principalmente por la falta de conocimiento y consecuente asociaci&oacute;n epidemiol&oacute;gica por parte de los profesionales de la salud, pero adem&aacute;s de ello, otros factores influencian en gran medida la dificultad para su identificaci&oacute;n, lo cual a&ntilde;ade un reto para la detecci&oacute;n de la fiebre Q grave. En Colombia se ha demostrado la circulaci&oacute;n de la bacteria en humanos, sin embargo, no existen estudios epidemiol&oacute;gicos en animales que constituyan la fuente de infecci&oacute;n, lo cual es importante, dado que este vac&iacute;o de conocimiento impide la implementaci&oacute;n de medidas de prevenci&oacute;n y control de la enfermedad. A&uacute;n quedan por dilucidar distintos aspectos importantes de la bacteria, de reservorios como las garrapatas, de los factores de los hospederos y adem&aacute;s, es importante conocer el rol que podr&iacute;a tener la infecci&oacute;n por Coxiella a trav&eacute;s de la ruta oral.</font></p>     <p align="justify"><font size="3" face="verdana"><b><a name="bookmark6"></a>Agradecimientos</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Los autores agradecen a Diva Santana por su colaboraci&oacute;n en la realizaci&oacute;n de la figura ilustrativa del art&iacute;culo. A la Universidad de C&oacute;rdoba, Proyecto CIUC C&oacute;digo 1-2-08-110-26.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="3" face="verdana"><a name="bookmark7"></a><b>Conflictos de inter&eacute;s</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Los autores declaran no tener conflictos de inter&eacute;s.</font></p>     <p align="justify"><font size="3" face="verdana"><b><a name="bookmark8"></a>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">1.    Maurin M, Raoult D. Q fever. Clin Microbiol Rev 1999;12(4):518-553.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0122-0667201300020000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">2.    Schaik E. Phylogenetic diversity, virulence and comparative genomics, in Coxiella burnetii In: Toman HR, Samuel JE, Mege JL editors. Recent advances and new perspectives in research of the Q fever bacterium. Springer Netherlands; 2012.p.13-38.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0122-0667201300020000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">3.    Raoult D, Marrie TJ and Mege JL. Natural history and pathophysiology of Q fever. Lancet Infect Dis 2005;5(4):219-226.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0122-0667201300020000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">4.    Ioannou I, Chochlakis D, Kasinis N, Anayiotos P et al. Carriage of Rickettsia sp, Coxiella burnetii and Anaplasma sp by endemic and migratory wild birds and their ectoparasites in Cyprus. Clin Microbiol Infec 2009;15(s2):158-160.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0122-0667201300020000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">5.    Ruiz-Fons F, Rodr&iacute;guez O, Torina A, Naranjo V et al. Prevalence of Coxiella burnetti infection in wild and farmed ungulates. Vet microbiol 2008;126(1):282-286.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0122-0667201300020000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">6.    van Woerden HC, Mason B, Nehaul W, Lika K, Smith R et al. Q fever outbreak in industrial setting. Emerg Infect Dis 2004;10(7):1282.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0122-0667201300020000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">7.    McQuiston JH and Childs JE. Q fever in humans and animals in the United States. Vector Borne Zoonotic Dis 2002;2(3):179-191.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0122-0667201300020000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">8.    Waag D. Coxiella burnetii: Host and bacterial responses to infection. Vaccine 2007;25(42):7288-7295.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0122-0667201300020000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">9.    Tissot-Dupont H, Amadei MA, Nezr M, Raoult D. Wind in November, Q fever in December. Emerg Infect Dis 2004;10(7):1264.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0122-0667201300020000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">10.    Dupont H, Raoult D, Brouqui P, Janbon F et al., Epidemiologic features and clinical presentation of acute Q fever in hospitalized patients: 323 French cases. Am J Med 1992;93(4):427-434.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0122-0667201300020000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">11.    Porten K, Rissland J, Tigges A, Broll S et al. A super-spreading ewe infects hundreds with Q fever at a farmers' market in Germany. BMC Infect Dis 2006;6(1):147.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0122-0667201300020000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">12.    Thomas DRT, Salmon RL, Kench SM, Coleman TJ et al. The risk of acquiring Q fever on farms: a seroepidemiological study. Occup Environ Med 1995;52(10):644-647.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0122-0667201300020000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">13.    Dijkstra F, Hoek W, Wijers N, Schimmer B et al. The 2007-2010 Q fever epidemic in the Netherlands: characteristics of notified acute Q fever patients and the association with dairy goat farming. FEMS Immunol Med Microbiol 2012;64(1):3-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0122-0667201300020000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">14.    McQUISTON JH, Holman RC, McCALL CL, Childs JE et al., National surveillance and the epidemiology of human Q fever in the United States, 1978-2004. Am J Trop Med Hyg 2006;75(1):36-40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0122-0667201300020000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">15.    Somma-Moreira RE, caffarena RM, Perez G, Somma-Sald&iacute;a S, Monteiro, M. Fiebre Q en Uruguay. Rev Inst Med Trop Sao Paulo 1987;29(3):168-173.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0122-0667201300020000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">16.    Salinas-Mel&eacute;ndez J, Avalos-Ram&iacute;rez R., Riojas-Valdez V, Kawas-Garza J, Fimbres-Durazo H. Serologic survey in animals of' Q fever in Nuevo Leon. Rev Lat Amer Microbiol 2002;44(2):75-78.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0122-0667201300020000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">17.    M&aacute;ttar S, Parra M. Detection of antibodies to Anaplasma, Bartonella and coxiella in rural inhabitants of the caribbean area of colombia. Revista MVZ c&oacute;rdoba 2006;11(2):781-789.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0122-0667201300020000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">18.    Betancur cA, M&uacute;nera AG. coxiella burnetii endocarditis: Q fever. Acta Med colomb 2012;37(1):31-33.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0122-0667201300020000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">19.    Cardona JcM. Neumon&iacute;a por coxiella burnetii: presentaci&oacute;n de un caso y revisi&oacute;n de la literatura/coxiella burnetii pneumonia: case report and literature review. CES Medicina 2012;26(2):201-208.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0122-0667201300020000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">20.    Derrick E. Q fever, a new fever entity: clinical features, diagnosis and laboratory investigation. Rev infect Dis 1983;5:790- 800.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0122-0667201300020000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">21.    cox HR. A filter-passing infectious agent isolated from ticks. ill. Description of organism and cultivation experiments. Public Health Rep 1938;53:2270-2276.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0122-0667201300020000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">22.    Derrick E. The course of infection with coxiella burnetii. Med J Aust 1973;1:1051-1057.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0122-0667201300020000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">23.    Mertens K, Samuel JE. Bacteriology of coxiella. in: Raoult D, Parola P Editors. Rickettsial diseases. New York, USA: Taylor &amp; Francis Group LLc; 2007.p.257-270.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0122-0667201300020000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">24.    Gimenez DF. Staining rickettsiae in yolk-sac cultures. Biotech Histochem 1964;39(3):135-140.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0122-0667201300020000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">25.    Roux V, Bergoin M, Lamaze N, Raoult D. Reassessment of the taxonomic position of Rickettsiella grylli. int J Syst Bacteriol 1997;47(4):1255-1257.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0122-0667201300020000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">26.    Seshadri RP, Eisen JA, Read TD, Nelson T, et al. complete genome sequence of the Q-fever pathogen coxiella burnetii. Proc NAS 2003;100(9):5455-5460.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0122-0667201300020000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">27.    Beare PA, Samuel JE, Howe D, Virtaneva K, Porcella SF, Heinzen RA. Genetic diversity of the Q fever agent, coxiella burnetii, assessed by microarray-based whole-genome comparisons. J Bacteriol 2006;188(7):2309-2324.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0122-0667201300020000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">28.    Thiele D, Willems H. is plasmid based differentiation of coxiella burnetii in 'acute' and 'chronic' isolates still valid? Eur J Epidemiol 1994;10(4):427-434.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0122-0667201300020000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">29.    Glazunova O, Roux V, Freylikman O, Sekeyova Z, et al. coxiella burnetii genotyping. Emerg infect Dis 2005;11(8):1211.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S0122-0667201300020000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">30.    Amano K, Williams Jc, Missler SR, Reinhold VN. Structure and biological relationships of coxiella burnetii lipopolysaccharides. J Biol chem 1987;262(10):4740-4747.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000154&pid=S0122-0667201300020000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">31.    Thompson H, Hoover T, Vodkin M, Shaw E. Do chromosomal Deletions in the Lipopolysaccharide Biosynthetic Regions Explain All cases of Phase Variation in coxiella burnetii Strains? Ann N Y Acad Sci 2003;990(1):664-670</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000156&pid=S0122-0667201300020000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">32.    Coleman SA, Fischer ER, Howe D, Mead DJ, Heinzen RA. Temporal analysis of coxiella burnetii morphological differentiation. J Bacteriol 2004;186(21):7344-7352.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0122-0667201300020000700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">33.    Capo c, Moynault A, collette Y, Olive D, et al. Coxiella burnetii avoids macrophage phagocytosis by interfering with spatial distribution of complement receptor 3. J inmunol 2003;170(8):4217-4225.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0122-0667201300020000700033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">34.    Meconi S, Jacomo V, Boquet P, Raoult D, Mege J-L, Capo C. Coxiella burnetii induces reorganization of the actin cytoskeleton in human monocytes. Infect Immun 1998;66(11):5527-5533.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0122-0667201300020000700034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">35.    Ghigo E, Capo C, Tung CH, Raoult D, Gorvel JP, et al. Coxiella burnetii Survival in THP-1 Monocytes Involves the Impairment of Phagosome Maturation: IFN-y Mediates its Restoration and Bacterial Killing. J Inmunol 2002;169(8):4488-4495.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S0122-0667201300020000700035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">36.    Romano PS, Gutierrez MG, Beron W, Rabinovitch M, Colombo MI. The autophagic pathway is actively modulated by phase </font><font size="2" face="verdana">II Coxiella burnetii to efficiently replicate in the host cell. Cell Microbiol 2007;9(4):891-909.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S0122-0667201300020000700036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">37.    Voth DE, Heinzen R. Coxiella burnetii type IV secretion and cellular microbiology. Curr Opin Microbiol 2009;12(1):74-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S0122-0667201300020000700037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">38.    Ghigo E, Honstettre A, Capo C, Gorvel J-P, Raoult D, Mege J-L. Link between impaired maturation of phagosomes and defective Coxiella burnetii killing in patients with chronic Q fever. J Infect Dis 2004;190(10):1767-1772.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S0122-0667201300020000700038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">39.    Berri M, Souriau A, Crosby M Rodolakis A. Shedding of Coxiella burnetii in ewes in two pregnancies following an episode of Coxiella abortion in a sheep flock. Vet microbiol 2002;85(1):55-</font><font size="2" face="verdana">60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000171&pid=S0122-0667201300020000700039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">40.    Guatteo R, Beaudeau F, Berri M, Rodolakis A, Joly A, Seegers H. Shedding routes of Coxiella burnetii in dairy cows: implications for detection and control. Vet Res 2006;37(6):827-833.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000173&pid=S0122-0667201300020000700040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">41.    Rodolakis A. Q Fever in dairy animals. Ann. N. Y. Acad. 2009;1166(1):90-93.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000175&pid=S0122-0667201300020000700041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">42.    Pacheco RC, Echaide IE, Alves RN, Beletti ME, Nava S, Labruna MB. Coxiella burnetii in Ticks, Argentina. Emerg Infect Dis 2013;19(2):344.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000177&pid=S0122-0667201300020000700042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">43.    Woldehiwet Z. Q fever (coxiellosis): epidemiology and pathogenesis. Res Vet Sci 2004; 77(2):93-100.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000179&pid=S0122-0667201300020000700043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">44.    Heise SR, Elshahed M and Little S. Bacterial diversity in Amblyomma americanum (Acari: Ixodidae) with a focus on members of the genus Rickettsia. J Med Entomol 2010;47(2):258-268.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000181&pid=S0122-0667201300020000700044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">45.   Jasinskas A,         Zhong and J. Barbour AG          Highly prevalent Coxiella sp. bacterium in the tick vector Amblyomma americanum.          Appl Environ Microbiol   2007;73: 1  334-336.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000183&pid=S0122-0667201300020000700045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">46.    Schimmer B, Ter Schegget R, Wegdam M, Z&uuml;chner L, De Bruin A, Schneeberger PM, et al. The use of a geographic information system to identify a dairy goat farm as the most likely source of an urban Q-fever outbreak. BMC Infect Dis 2010;10(1):69.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000185&pid=S0122-0667201300020000700046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">47.    Hirai A, Nakama A, Chiba T, Kai A. Development of a method for detecting Coxiella burnetii in cheese samples. J Vet Med Sci 2012;74(2):175.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000187&pid=S0122-0667201300020000700047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">48.    Signs KA, Stobierski MG, Gandhi TN. Q Fever Cluster Among Raw Milk Drinkers in Michigan, 2011. Clin Infect Dis 2012;55(10):1387-1389.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000189&pid=S0122-0667201300020000700048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">49.    Raoult D, Fenollar F, Stein A. Q fever during pregnancy: diagnosis, treatment, and follow-up. Arch Intern Med 2002;162(6):701.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000191&pid=S0122-0667201300020000700049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">50.    Fenollar F, Fournier PE, Carrieri MP, Habib G, Messana T, Raoult D. Risks factors and prevention of Q fever endocarditis. Clin Infect Dis 2001;33(3):312-316.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000193&pid=S0122-0667201300020000700050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">51.    Tissot-Dupont H, Vaillant V, Rey S, Raoult D. Role of sex, age, previous valve lesion, and pregnancy in the clinical expression and outcome of Q fever after a large outbreak. Clin Infect Dis 2007;44(2):232-237.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000195&pid=S0122-0667201300020000700051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">52.    Leone M, Honstettre A, Lepidi H, Capo C, Bayard F, Raoult D, et al. Effect of sex on Coxiella burnetii infection: protective role of 17beta-estradiol. J Infect Dis 2004;189(2):339-345.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000197&pid=S0122-0667201300020000700052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">53.    de Valk H. Q fever: new insights, still many queries. Euro Surveill 2012;17(20062):571.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000199&pid=S0122-0667201300020000700053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">54.    Frankel D, Richet H, Renvoise A, Raoult D. Q fever in France, 1985-2009. Emerg Infect Dis 2011;17(3):350.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000201&pid=S0122-0667201300020000700054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">55.    Montes M, Cilla G, Vicente D, Nieto V, Ercibengoa M, PEREZ-TRALLERO E. Gipuzkoa, Basque Country, Spain (19842004): a hyperendemic area of Q fever. Ann N Y Acad Sci 2006;1078(1):129-132.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000203&pid=S0122-0667201300020000700055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">56.    Bosnjak E, Hvass AMSW, Villumsen S, Nielsen H. Emerging evidence for Q fever in humans in Denmark: role of contact with dairy cattle. Clin Microbiol Infect 2010;16(8):1285-1288.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000205&pid=S0122-0667201300020000700056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">57.    Kersh GJ, Fitzpatrick KA, Self JS, Priestley RA, Kelly AJ, Lash RR, et al. Presence and Persistence of Coxiella burnetii in the Environments of Goat Farms Associated with a Q Fever Outbreak. Appl Environ Microbiol 2013;79(5):1697-1703.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000207&pid=S0122-0667201300020000700057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">58.    Epelboin L, Chesnais C, Boulle C, Drogoul A-S, Raoult D, Djossou F, et al. Q Fever Pneumonia in French Guiana: Prevalence, Risk Factors, and Prognostic Score. Clin Infect Dis 2012;55(1):67-74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000209&pid=S0122-0667201300020000700058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">59.    Costa PS, Brigatte ME, Greco DB. Antibodies to Rickettsia rickettsii, Rickettsia typhi, Coxiella burnetii, Bartonella henselae, Bartonella quintana, and Ehrlichia chaffeensis among healthy population in Minas Gerais, Brazil. Mem Inst O Cruz 2005;100(8):853-859.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000211&pid=S0122-0667201300020000700059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">60.    Siciliano RF, Ribeiro HB, Furtado RH, Castelli JB, Sampaio RO, Santos FC, et al. Endocarditis due to Coxiella burnetii (Q fever): a rare or underdiagnosed disease? Case report. Rev Soc Bras Med Trop 2008;41(4):409-412.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000213&pid=S0122-0667201300020000700060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">61.    Marrie TJ, Stein A, Janigan D, Raoult D. Route of infection determines the clinical manifestations of acute Q fever. J Infect Dis 1996;173(2):484-487.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000215&pid=S0122-0667201300020000700061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">62.    Terheggen U, Leggat PA. Clinical manifestations of Q fever in adults and children. Travel Med Infect Dis 2007;5(3):159-164.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000217&pid=S0122-0667201300020000700062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">63.    Marrie TJ. Q fever pneumonia. Infect Dis Clin N Am 2010;24(1):27.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000219&pid=S0122-0667201300020000700063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">64.    Rice PS, Kudesia G, McKendrick MW, Cullen DR. Coxiella burnetii serology in granulomatous hepatitis. J Infect 1993;27(1):63-66.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000221&pid=S0122-0667201300020000700064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">65.    Raoult D, Tissot-Dupont H, Foucault C, Gouvernet J, Fournier PE, Bernit E, et al. Q fever 1985-1998: clinical and epidemiologic features of 1,383 infections. Medicine 2000;79(2):109-123.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000223&pid=S0122-0667201300020000700065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">66.    Landais C, Fenollar F, Thuny F, Raoult D. From acute Q fever to endocarditis: serological follow-up strategy. Clin Infect Dis 2007;44(10):1337-1340.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000225&pid=S0122-0667201300020000700066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">67.    Fenollar F, Fournier P, Raoult D. Molecular detection of Coxiella burnetii in the sera of patients with Q fever endocarditis or vascular infection. J Clin Microbiol 2004;42(11):4919-4924.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000227&pid=S0122-0667201300020000700067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">68.    Carcopino X, Raoult D, Bretelle F, Boubli L, Stein A. Q Fever during Pregnancy. Ann NY Acad Sci 2009;1166(1):79-89.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000229&pid=S0122-0667201300020000700068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">69.    Carcopino X, Raoult D, Bretelle F, Boubli L, Stein A. Managing Q fever during pregnancy: the benefits of long-term cotrimoxazole therapy. Clin Infect Dis 2007;45(5):548-555.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000231&pid=S0122-0667201300020000700069&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">70.    Dupuis G, Peter O, Peacock M, Burgdorfer W, Haller E. Immunoglobulin responses in acute Q fever. J Clin Microbiol 1985;22(4):484-487.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000233&pid=S0122-0667201300020000700070&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">71.    Anderson A, Bijlmer H, Fournier P-E, Graves S, Hartzell J, Kersh GJ, et al. Diagnosis and Management of Q Fever -Recommendations from CDC and the Q Fever Working Group. MMWR 2013;62(RR03):1-23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000235&pid=S0122-0667201300020000700071&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">72.    Schneeberger PM, Hermans M, van Hannen E, Schellekens J, Leenders A, Wever P Real-Time PCR with Serum Samples Is Indispensable for Early Diagnosis of Acute Q Fever. Clin Vaccine Immunol 2010;17(2):286-290.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000237&pid=S0122-0667201300020000700072&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">73.    van der Hoek W, Versteeg B, Meekelenkamp JCE, Renders NHM, Leenders ACAP, Weers-Pothoff I, et al. Follow-up of 686 Patients With Acute Q Fever and Detection of chronic Infection. clin Infect Dis 2011; 52(12):1431-1436.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000239&pid=S0122-0667201300020000700073&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">74.    Herremans T, Hogema BM, Nabuurs M, Peeters M, Wegdam-Blans M, Schneeberger P, et al. Comparison of the performance of IFA, CFA, and ELISA assays for the serodiagnosis of acute Q fever by quality assessment. Diag Micr Infect Dis 2013;75(1):16-</font><font size="2" face="verdana">21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000241&pid=S0122-0667201300020000700074&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">75.    Meekelenkamp J, Schneeberger, PM., Wever, PC., Leenders, A. Comparison of ELISA and indirect immunofluorescent antibody assay detecting Coxiella burnetii IgM phase II for the diagnosis of acute Q fever. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 2012;31(6):1267-1270.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000243&pid=S0122-0667201300020000700075&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">76.    Limonard GJM, Thijsen SF, Bossink AW, Asscheman A, Bouwman JJM. Developing a new clinical tool for diagnosing chronic Q fever: the Coxiella ELISPOT. FEMS Immunol Med Mic 2012; 64(1): 57-60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000245&pid=S0122-0667201300020000700076&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">77.    Fournier PE, Marrie TJ, Raoult D. Diagnosis of Q fever. J Clin Microbiol 1998;36(7):1823-1834.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000247&pid=S0122-0667201300020000700077&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">78.    Bildfell RJ, Thomson GW, Haines DM, McEwen BJ, Smart N. Coxiella Burnetii Infection is Associated with Placentitis in Cases of Bovine Abortion. J Vet Diagn Invest 2000;12(5):419-425.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000249&pid=S0122-0667201300020000700078&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">79.    Herrin B, Mahapatra S, Blouin EF, Shaw EI. Growth of Coxiella burnetii in the Ixodes scapularis-Derived IDE8 Tick Cell Line. Vector Borne Zoonotic Dis 2011;11(7):917-922.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000251&pid=S0122-0667201300020000700079&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">80.    Omsland A, Cockrell DC, Howe D, Fischer ER, Virtaneva K, Sturdevant DE, et al. Host cell-free growth of the Q fever bacterium Coxiella burnetii. Proc NAS 2009;106(11):4430-4434.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000253&pid=S0122-0667201300020000700080&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">81.    Ughetto EG, Raoult D, Rolain JM. Three years experience of real-time PCR for the diagnosis of Q fever. Clin Microbiol Infect 2009;15:200-201.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000255&pid=S0122-0667201300020000700081&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">82.    Hou MY, Hung MN, Lin PS, Wang YC, Lin CC, Shu PY, et al. Use of a single-tube nested real-time PCR assay to facilitate the early diagnosis of acute Q fever. JPN J Infect Dis 2011;64(2):161-162.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000257&pid=S0122-0667201300020000700082&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">83.    Klee SR, Tyczka J, Ellerbrok H, Franz T, Linke S, Baljer G, et al. Highly sensitive real-time PCR for specific detection and quantification of Coxiella burnetii. BMC Microbiol 2006;6(1):2.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000259&pid=S0122-0667201300020000700083&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">84.    Kramer M, Obermajer N, Bogovic Matijasic B, Rogelj I, Kmetec V. Quantification of live and dead probiotic bacteria in lyophilised product by real-time PCR and by flow cytometry. Appl Microbiol Biotechnol 2009;84(6):1137-1147.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000261&pid=S0122-0667201300020000700084&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">85.    Dijkstra F, Riphagen-Dalhuisen J, Wijers N, Hak E, Van der Sande M, Morroy G, et al. Antibiotic therapy for acute Q fever in The Netherlands in 2007 and 2008 and its relation to hospitalization. Epidemiol Infect 2011; 139:1332-1341.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000263&pid=S0122-0667201300020000700085&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">86.    Boden K, Brueckmann A, Wagner-Wiening C, Hermann B, Henning K, Junghanss T, et al. Maternofetal consequences of Coxiella burnetii infection in pregnancy: a case series of two outbreaks. BMC Infect Dis 2012;12(1):359.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000265&pid=S0122-0667201300020000700086&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">87.    Yang JX, Krewski, D, Wang Y, Walker M, Wen SW. Exposure to trimethoprim/sulfamethoxazole but not other FDA category C and D anti-infectives is associated with increased risks of preterm birth and low birth weight. Int J Infect Dis 2011;15(5):336-e341.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000267&pid=S0122-0667201300020000700087&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">88.    Santos, F., Use of anti-infective drugs during pregnancy: prevalence, predictors of use and the risk of preterm birth and small-for-gestational-age newborns. 2012.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000269&pid=S0122-0667201300020000700088&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">89.    Gefenaite G, Munster J, Van Houdt R, Hak E. Effectiveness of the Q fever vaccine: a meta-analysis. Vaccine 2011;29(3):395-398.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000271&pid=S0122-0667201300020000700089&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"> </p>     <p align="center"><font size="2" face="verdana">Rev. Med. Risaralda 2013; 19 (2): 137-146.</font></p>      ]]></body><back>
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