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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Músculo esquelético y lesión por reperfusión. Ultraestructura, alteración y regeneración: Revisión sistemática]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: The tissue function is based on the cell association and communication through junctions or the extracellular matrix, which comprises connective tissue. Ischemia injury leads to changes to which the cells respond and it depends on duration and intensity of stimulus injury. In short periods of prolonged ischemia and reperfusion, skeletal striated muscle tissue shows changes in the predominance of muscle fiber types and components of the extracellular matrix intramuscular. Objective: To determine the changes which occur in skeletal muscle during prolonged reperfusion in both muscle fibers in its extracellular matrix. Methods: A systematic review was performed by searching for articles in English and Spanish published in journals indexed in databases Ovid Medline, PubMed, Science Direct and Wiley. MeSH descriptors used were skeletal muscle, ischemia, reperfusion, fast twitch fiber type, slow twitch fiber type, sarcomere and myoblast. The terms tissue and histology were coupled. Results: 81 relevant publications were selected and supplemented with images of skeletal muscles from samples processed at the Laboratory of Histology of the Universidad del Valle, Colombia. Conclusion: The recovery of muscle during ischemia followed by reperfusion, tends toward the normal histological and functional pattern. In some cases it is a slow process and even after several months has not been completed. Likewise, they may persist mild or moderate alterations in muscle contraction, given the changes that occur in the intramuscular extracellular matrix.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p>Art&iacute;culo de Revisi&oacute;n</p> </font> <hr align="left" width="12%">     <p><font face="verdana" size="4"><a name="caption1"></a><a name="bookmark0"></a><b>M&uacute;sculo esquel&eacute;tico y lesi&oacute;n por reperfusi&oacute;n. Ultraestructura, alteraci&oacute;n y regeneraci&oacute;n: Revisi&oacute;n sistem&aacute;tica </b></font></p> <hr align="left" width="100%">     <p><font face="verdana" size="2"><b>Doris H. Rosero<sup>1</sup>, Liliana Salazar<sup>2</sup>, Maria Ana Tovar<sup>2</sup></b> </font></p> <font face="verdana" size="2">     <p>1 &nbsp;&nbsp;&nbsp;Enfermera, MSc en Ciencias Biom&eacute;dicas. Profesora del Departamento de Ciencias B&aacute;sicas, Universidad Icesi. Profesora del Departamento de Morfolog&iacute;a,&nbsp;Universidad del Valle. Cali, Colombia.</p>     <p>2 &nbsp;&nbsp;&nbsp;Fisioterapeuta, MSc en Morfolog&iacute;a. Grupo de investigaci&oacute;n Tejidos Blandos y Mineralizados, Profesora del Departamento de Morfolog&iacute;a, Universidad del&nbsp;Valle. Cali, Colombia.</p>     <p>3 &nbsp;&nbsp;&nbsp;M&eacute;dica, cirujana, especialista en Medicina F&iacute;sica y Rehabilitaci&oacute;n, especialista en Docencia Universitaria. Profesora del Departamento de Medicina F&iacute;sica y&nbsp;Rehabilitaci&oacute;n, Universidad del Valle. Cali, Colombia.</p>     <p>Correo: <a href="mailto:doris.rosero@correounivalle.edu.co">doris.rosero@correounivalle.edu.co</a></p>     <p>Fecha de Recepci&oacute;n: 01/03/2015 </p>     <p>Fecha de Solicitud de Correcciones: 30/07/2015&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Fecha de Aceptaci&oacute;n: 30/09/2015</p> </font> <hr align="left" width="100%">     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Introducci&oacute;n:</b> La funci&oacute;n tisular se basa en la asociaci&oacute;n celular y la comunicaci&oacute;n mediante uniones intercelulares o la matriz extracelular,&nbsp;que compone el tejido conectivo. La isquemia conlleva a cambios de lesi&oacute;n&nbsp;a los cuales las c&eacute;lulas responden seg&uacute;n duraci&oacute;n e intensidad del est&iacute;mulo&nbsp;de lesi&oacute;n. En periodos cortos de isquemia y prolongados de reperfusi&oacute;n, el&nbsp;tejido muscular estriado esquel&eacute;tico presenta cambios en la predominancia de&nbsp;los tipos de fibras musculares y en los componentes de la matriz extracelular&nbsp;intramuscular. <b>Objetivo: </b>Establecer los cambios que se presentan en el&nbsp;m&uacute;sculo esquel&eacute;tico durante la reperfusi&oacute;n prolongada, tanto en las fibras&nbsp;musculares como en su matriz extracelular. M&eacute;todos: Se realiz&oacute; una revisi&oacute;n&nbsp;sistem&aacute;tica mediante la b&uacute;squeda de art&iacute;culos en ingl&eacute;s y espa&ntilde;ol publicados&nbsp;en revistas indexadas en las bases de datos Ovid Medline, PubMed, Wiley&nbsp;y Science Direct. Los descriptores MESH utilizados fueron skeletal muscle,&nbsp;ischemia, reperfusion, fiber type fast twitch, fiber type slow twitch, sarcomere&nbsp;and myoblast. Se acoplaron los t&eacute;rminos histology y tissue.<b> Resultados:</b> Se&nbsp;seleccionaron 81 publicaciones y se complement&oacute; con im&aacute;genes de m&uacute;sculos&nbsp;esquel&eacute;ticos provenientes de muestras procesadas en el Laboratorio de&nbsp;Histolog&iacute;a de la Universidad del Valle, Colombia. <b>Conclusi&oacute;n:</b> La recuperaci&oacute;n&nbsp;del m&uacute;sculo durante la reperfusi&oacute;n seguida de isquemia, tiende hacia el patr&oacute;n&nbsp;histol&oacute;gico y funcional normal. En algunos casos es un proceso lento y que&nbsp;a&uacute;n despu&eacute;s de varios meses no ha finalizado. As&iacute; mismo, pueden persistir&nbsp;alteraciones leves o moderadas en la contracci&oacute;n muscular, dados los cambios&nbsp;que se presentan en la matriz extracelular intramuscular.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Palabras clave: m&uacute;sculo esquel&eacute;tico, isquemia, reperfusi&oacute;n, angiog&eacute;nesis, mioblastos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Skeletal muscle and reperfusion injury: ultra structure, disease and regeneration: systematic review</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Introduction:</b> The tissue function is based on the cell association and communication through junctions or the extracellular matrix, which comprises&nbsp;connective tissue. Ischemia injury leads to changes to which the cells respond&nbsp;and it depends on duration and intensity of stimulus injury. In short periods&nbsp;of prolonged ischemia and reperfusion, skeletal striated muscle tissue shows&nbsp;changes in the predominance of muscle fiber types and components of the&nbsp;extracellular matrix intramuscular. <b>Objective: </b>To determine the changes which&nbsp;occur in skeletal muscle during prolonged reperfusion in both muscle fibers&nbsp;in its extracellular matrix. Methods: A systematic review was performed by&nbsp;searching for articles in English and Spanish published in journals indexed in&nbsp;databases Ovid Medline, PubMed, Science Direct and Wiley. MeSH descriptors&nbsp;used were skeletal muscle, ischemia, reperfusion, fast twitch fiber type, slow&nbsp;twitch fiber type, sarcomere and myoblast. The terms tissue and histology were&nbsp;coupled. <b>Results:</b> 81 relevant publications were selected and supplemented&nbsp;with images of skeletal muscles from samples processed at the Laboratory of&nbsp;Histology of the Universidad del Valle, Colombia. <b>Conclusion:</b> The recovery&nbsp;of muscle during ischemia followed by reperfusion, tends toward the normal&nbsp;histological and functional pattern. In some cases it is a slow process and even&nbsp;after several months has not been completed. Likewise, they may persist mild&nbsp;or moderate alterations in muscle contraction, given the changes that occur in&nbsp;the intramuscular extracellular matrix.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Keywords:</b> skeletal muscle, ischemia, reperfusion, angiogenesis, myoblasts.</font></p> <hr align="left" width="100%"> <font size="3" face="verdana"><a name="bookmark2"></a><b>Introducci&oacute;n</b></font>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La asociaci&oacute;n celular que se requiere para que un tejido realice sus procesos moleculares y fisiol&oacute;gicos adecuadamente, implica no s&oacute;lo la integridad de las c&eacute;lulas que lo conforman, sino tambi&eacute;n la organizaci&oacute;n con su matriz extracelular. Tal constituci&oacute;n puede verse afectada por factores&nbsp;medioambientales inducidos o no, que generan cambios inicialmente de lesi&oacute;n y luego de adaptaci&oacute;n o de muerte celular, seg&uacute;n sea el tiempo de&nbsp;exposici&oacute;n al da&ntilde;o. En el caso de las lesiones reversibles, las respuestas que se generan para modificar en el tejido algunas de sus caracter&iacute;sticas&nbsp;normales, aseguran de manera eficiente su sobrevivencia al mecanismo de alteraci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Las c&eacute;lulas en el tejido muscular estriado esquel&eacute;tico son los miocitos esquel&eacute;ticos y asociados con el conectivo intramuscular, se adaptan a lesiones reversibles inducidas como la isquemia, frente a la cual genera cambios durante la reperfusi&oacute;n. Se considera que la capacidad de regeneraci&oacute;n&nbsp;del tejido mediante la diferenciaci&oacute;n celular a partir de las c&eacute;lulas sat&eacute;lites, permite su recuperaci&oacute;n en las primeras dos semanas despu&eacute;s de la&nbsp;exposici&oacute;n al da&ntilde;o; sin embargo, se ha visto que esta recuperaci&oacute;n es parcial y que a&uacute;n en per&iacute;odos m&aacute;s prolongados hasta cuatro semanas, a&uacute;n se&nbsp;presentan cambios tanto de regeneraci&oacute;n celular, como de aumento en la proporci&oacute;n de la matriz extracelular intramuscular o el espacio que esta&nbsp;ocupa, de acuerdo con el tiempo de isquemia al que el m&uacute;sculo fue expuesto.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana">En este orden de ideas, el objetivo del presente art&iacute;culo fue llevar a cabo una revisi&oacute;n completa del tejido muscular estriado esquel&eacute;tico, desde su origen embrionario, pasando por su histolog&iacute;a normal y definiendo los cambios de lesi&oacute;n y adaptaci&oacute;n que tienen lugar durante la reperfusi&oacute;n.&nbsp;Para ello, se reportan los hallazgos de una revisi&oacute;n bibliogr&aacute;fica sistem&aacute;tica sobre los tres aspectos y que provee hallazgos sobre las perspectivas&nbsp;de recuperaci&oacute;n posterior a los procedimientos quir&uacute;rgicos o situaciones que requieren el uso de un torniquete.</font></p> <font size="2" face="verdana">     <p align="justify"><b>B&uacute;squeda de la informaci&oacute;n</b></p> </font>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Se llev&oacute; a cabo la revisi&oacute;n sistem&aacute;tica de los art&iacute;culos publicados en las bases electr&oacute;nicas Ovid Medline, PubMed, Wiley y Science Direct&nbsp;entre los a&ntilde;os 1980 a 2015. Los criterios de b&uacute;squeda y selecci&oacute;n&nbsp;se limitaron a publicaciones originales en ingl&eacute;s y en espa&ntilde;ol,&nbsp;relacionados con las caracter&iacute;sticas histol&oacute;gicas normales del tejido&nbsp;muscular, dise&ntilde;os experimentales sobre isquemia y reperfusi&oacute;n y&nbsp;la recuperaci&oacute;n del m&uacute;sculo durante los periodos prolongados de&nbsp;reperfusi&oacute;n. Se incluyeron los art&iacute;culos de revisi&oacute;n con informaci&oacute;n&nbsp;relevante sobre la histolog&iacute;a normal del m&uacute;sculo esquel&eacute;tico y sus&nbsp;cambios de lesi&oacute;n o adaptaci&oacute;n en relaci&oacute;n con los procesos de&nbsp;isquemia y reperfusi&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Los descriptores MeSH utilizados para la b&uacute;squeda fueron skeletal muscle, ischemia, reperfusi&oacute;n, fiber type fast twitch, fiber type slow&nbsp;twitch, sarcomere and myoblast. Se acoplaron los conceptos tissue&nbsp;and histology. Para el almacenamiento e inclusi&oacute;n de las referencias&nbsp;se cont&oacute; con el software de acceso libre EndNote Web (Thomson&nbsp;Reuters, Nueva York-Estados Unidos).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Obtenci&oacute;n de las im&aacute;genes</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Las im&aacute;genes que complementan esta revisi&oacute;n fueron obtenidas de biopsias musculares de biomodelos, procesadas en el Laboratorio&nbsp;de Histolog&iacute;a de la Universidad del Valle; el software de toma de&nbsp;im&aacute;genes que se utiliz&oacute; fue LASV3.8 (Leica Microsystems, Wetzlar,&nbsp;Alemania) adaptado a microscopio de luz Leica DM750 (Leica&nbsp;Microsystems, Wetzlar, Alemania), con c&aacute;mara digital Leica DFC295&nbsp;(Leica Microsystems Wetzlar, Alemania).</font></p> <font size="3" face="verdana"><a name="bookmark3"></a><b>Resultados</b></font>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Al utilizar los descriptores MeSH, la b&uacute;squeda permiti&oacute; identificar un total de 9033 art&iacute;culos, distribuidos en: 1659 art&iacute;culos en PubMed,&nbsp;1946 en OVID Medline, 270 en Science Direct y 5158 en Wiley. Se&nbsp;descartaron 8953 art&iacute;culos que hac&iacute;an referencia a isquemia con&nbsp;efectos en &oacute;rganos diferentes al m&uacute;sculo esquel&eacute;tico, per&iacute;odos&nbsp;prolongados de isquemia, per&iacute;odos cortos de reperfusi&oacute;n y resultados&nbsp;de tratamientos farmacol&oacute;gicos o paliativos durante los per&iacute;odos&nbsp;de isquemia y reperfusi&oacute;n. Se revis&oacute; y seleccion&oacute; el texto completo&nbsp;de 81 publicaciones que mencionaron caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas&nbsp;y funcionales de normalidad en el m&uacute;sculo esquel&eacute;tico, as&iacute; como&nbsp;efectos de la reperfusi&oacute;n tanto en las fibras musculares como en la&nbsp;matriz extracelular intramuscular (<a href="#f1">Figura 1</a>).</font></p>     <p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/rmri/v21n2/v21n2a12-1.jpg"/></a></p>     <p><font face="verdana"><font size="3"><b>Discusi&oacute;n</b></font> </font></p>     <p><font face="verdana"><font size="2"><b>Desarrollo embrionario</b></font></font> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana">A finales de la tercera semana del desarrollo intrauterino, durante el proceso de gastrulaci&oacute;n, c&eacute;lulas mesobl&aacute;sticas migran hacia las crestas&nbsp;laterales de la notocorda y se agrupan en dos columnas longitudinales&nbsp;para dar origen al mesodermo para-axial; simult&aacute;neamente,&nbsp;otro grupo de c&eacute;lulas migra hacia la regi&oacute;n medial generando el&nbsp;mesodermo intermedio y otras, se ubican en la regi&oacute;n m&aacute;s perif&eacute;rica&nbsp;formando el mesodermo lateral. El mesodermo para-axial da lugar&nbsp;a los somitas y en su interior, las c&eacute;lulas migran hacia los bordes&nbsp;dorsomedial y ventrolateral del somita, formando los precursores de&nbsp;las c&eacute;lulas musculares o mioblastos. Por otra parte, las c&eacute;lulas ubicadas&nbsp;en la regi&oacute;n medial forman el dermatoma. Las c&eacute;lulas precursoras&nbsp;de m&uacute;sculo dan lugar a c&eacute;lulas mesenquimales nuevamente, que&nbsp;migran bajo el dermatoma para generar el dermomiotoma. De&nbsp;acuerdo con Buckingham et al. en el a&ntilde;o 2008 (1), la diferenciaci&oacute;n&nbsp;de los mioblastos durante la cuarta semana, depende de la activaci&oacute;n&nbsp;de los factores determinantes miog&eacute;nicos MyoD y Myf5 a trav&eacute;s de&nbsp;se&ntilde;ales provenientes de los tejidos circundantes como la presencia de&nbsp;Miogenina y factores de transcripci&oacute;n, como el factor potenciador de&nbsp;los miocitos 2-Mef2 (2, 3).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Durante la diferenciaci&oacute;n celular, los mioblastos se fusionan y forman fibras musculares largas y multinucleadas. Se desarrollan&nbsp;las miofibrillas en el citoplasma y, hacia el final del tercer mes de&nbsp;gestaci&oacute;n, las estriaciones caracter&iacute;sticas del m&uacute;sculo esquel&eacute;tico se&nbsp;hacen evidentes. Estas se definen como fibras musculares primarias o&nbsp;miotubos primarios. Por otra parte, algunos mioblastos no se fusionan&nbsp;para formar fibras primarias, sino que, contin&uacute;an proliferando y&nbsp;diferenci&aacute;ndose para dar lugar a las fibras secundarias al fusionarse&nbsp;entre ellas; al inicio estas fibras son m&aacute;s peque&ntilde;as, delgadas, de&nbsp;longitud corta y se ubican rodeando las fibras primarias (4).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">En estudios in vitro (5) se observ&oacute; que los mioblastos se desprenden del miotoma y migran hacia el lugar en el que van a dar lugar a fibras&nbsp;primarias y secundarias. Este estado se conoce como delaminaci&oacute;n&nbsp;y migraci&oacute;n, procesos dados por la expresi&oacute;n de los factores paired&nbsp;box 3-Pax3 y el Protooncogen c-met, entre otros (<a href="#f2">Figura 2</a>). Durante la&nbsp;formaci&oacute;n del componente muscular esquel&eacute;tico de una extremidad,&nbsp;los mioblastos migran a diferentes velocidades; aquellos que migran,&nbsp;se fusionan primero y forman las fibras primarias, contribuyen a&nbsp;formar los m&uacute;sculos en los que predominan las fibras de contracci&oacute;n&nbsp;lenta u oxidativas; las fibras secundarias conformar&aacute;n los m&uacute;sculos en&nbsp;los que predominan las fibras de contracci&oacute;n r&aacute;pida o glucol&iacute;ticas. Los&nbsp;m&uacute;sculos distales se desarrollan primero que los m&uacute;sculos proximales&nbsp;y las extremidades superiores, o anteriores en el caso de los roedores,&nbsp;se desarrollan primero que las inferiores, o posteriores (5).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">A medida que se desarrollan las fibras primarias y secundarias, c&eacute;lulas mesenquimales migran y se diferencian a fibroblastos por acci&oacute;n&nbsp;del factor de crecimiento transformante beta (TGF B) y el factor de&nbsp;crecimiento de los fibroblastos (FCF) principalmente. Los fibroblastos&nbsp;contribuyen a la formaci&oacute;n del tejido conectivo que asocia cada&nbsp;fibra muscular, el endomisio; delimita los fasc&iacute;culos musculares,&nbsp;el perimisio y, rodea totalmente el m&uacute;sculo, el epimisio. Las tres&nbsp;estructuras constituyen la matriz extracelular o tejido conectivo&nbsp;intramuscular (6).</font></p>     <p align="center"><a name="f2"><img src="img/revistas/rmri/v21n2/v21n2a12-2.jpg"/></a></p> <font face="verdana">     <p align="justify"><font size="2">En la duod&eacute;cima semana gestacional, las estriaciones caracter&iacute;sticas de este tipo de m&uacute;sculo, se hacen evidentes, debido al desarrollo de&nbsp;las miofibrillas en el sarcoplasma y gradualmente se tienen miotubos&nbsp;secundarios que se diferenciar&aacute;n a miocitos esquel&eacute;ticos. Un proceso&nbsp;similar ocurre en la diferenciaci&oacute;n celular a partir de c&eacute;lulas sat&eacute;lite,&nbsp;influenciado por el factor MLC3F (7).</font></p> <font size="2"><a name="bookmark6"></a><b>Matriz extracelular intramuscular o tejido conectivo intramuscular</b></font></font>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Est&aacute; conformado por los componentes fibrilares y no fibrilares que est&aacute;n en &iacute;ntima relaci&oacute;n con los miocitos, los fasc&iacute;culos musculares y&nbsp;el m&uacute;sculo, los cuales presentan un balance din&aacute;mico entre s&iacute;ntesis,&nbsp;remodelaci&oacute;n y degradaci&oacute;n, de acuerdo con los requerimientos&nbsp;funcionales y los est&iacute;mulos mec&aacute;nicos o de lesi&oacute;n al que el tejido&nbsp;muscular estriado esquel&eacute;tico se encuentra expuesto (6). Entre las&nbsp;funciones que cumple el tejido conectivo se describen, dar soporte&nbsp;mec&aacute;nico para los vasos sangu&iacute;neos y nervios, facilitar la transmisi&oacute;n&nbsp;de fuerza desde la fibra muscular a las fibras adyacentes, al fasc&iacute;culo y a&nbsp;la uni&oacute;n miotendinosa - hueso y, proveer respuesta el&aacute;stica al m&uacute;sculo&nbsp;esquel&eacute;tico (8). Tanto el endomisio como el perimisio juegan un papel&nbsp;importante en el desarrollo de masa muscular durante el crecimiento&nbsp;y en la estabilidad mec&aacute;nica y qu&iacute;mica. El endomisio (<a href="#f3">Figura 3</a>)&nbsp;consiste en una red delgada y continua de fibras col&aacute;genas que se&nbsp;distribuyen en varias direcciones e histol&oacute;gicamente se clasifica como&nbsp;tejido conectivo laxo. Mediante esta estructura se da la relaci&oacute;n del&nbsp;tejido conectivo con la l&aacute;mina basal que se relaciona con el sarcolema,&nbsp;as&iacute; como entre c&eacute;lulas y con los capilares continuos adyacentes a&nbsp;cada miocito esquel&eacute;tico. La presencia del tejido conectivo que&nbsp;asocia los miocitos entre s&iacute;, el endomisio, se observa principalmente&nbsp;en cortes transversales como una delgada capa de tejido conectivo&nbsp;laxo, formado principalmente por fibras reticulares. All&iacute; se localizan&nbsp;los capilares m&aacute;s peque&ntilde;os y las ramificaciones neuronales finas,&nbsp;paralelos a la fibra muscular.</font></p>     <p align="center"><a name="f3"><img src="img/revistas/rmri/v21n2/v21n2a12-3.jpg"/></a></p><font size="2" face="verdana">     <p align="justify">El perimisio consiste en fibras que siguen un patr&oacute;n de ondulaci&oacute;n uniforme observado por microscop&iacute;a electr&oacute;nica de superficie, cuya&nbsp;organizaci&oacute;n le permite adaptaciones a los cambios de longitud de las&nbsp;fibras, as&iacute; como resistencia dado por la proporci&oacute;n de col&aacute;geno tipo&nbsp;I que presenta. Los fasc&iacute;culos musculares que constituye se clasifican&nbsp;como primarios, si son peque&ntilde;os, indivisibles y rodeados por tejido&nbsp;conectivo laxo tambi&eacute;n denominado perimisio primario; y, fasc&iacute;culos&nbsp;secundarios, al estar formados por dos o m&aacute;s fasc&iacute;culos primarios&nbsp;y organizados mediante tejido conectivo moderadamente denso o&nbsp;denso irregular, conocido como perimisio secundario (<a href="#f4">Figura 4</a>). Este&nbsp;se detalla como una capa de un espesor mayor, con aumento de fibras&nbsp;col&aacute;genas rodeando la agrupaci&oacute;n de fibras musculares que forman el&nbsp;fasc&iacute;culo (6, 9).</p> </font>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">El epimisio rodea el m&uacute;sculo estriado esquel&eacute;tico en su totalidad y permite el ingreso de las ramificaciones de los grandes vasos&nbsp;sangu&iacute;neos hacia las fibras musculares. Est&aacute; constituido por una&nbsp;doble capa de fibras col&aacute;genas dispuestas de manera entrecruzada,&nbsp;que contin&uacute;a con la fascia muscular superficial y a nivel de la uni&oacute;n&nbsp;musculo-tendinosa con el paratenon y el epitenon. Esta disposici&oacute;n&nbsp;le provee estabilidad mec&aacute;nica para la transmisi&oacute;n de las fuerzas&nbsp;que recibe del perimisio hacia el resto del m&uacute;sculo y los tendones.&nbsp;A su vez, al formar el l&iacute;mite con el m&uacute;sculo adyacente, el conectivo&nbsp;permite no s&oacute;lo que los vasos sangu&iacute;neos y nervios transcurran&nbsp;en este espacio para ingresar a cada m&uacute;sculo, sino que les provee&nbsp;la capacidad de adaptarse y deformarse frente a los cambios que&nbsp;ocurren en los m&uacute;sculos durante el movimiento (6, 9, 10). Ambos,&nbsp;el perimisio y el epimisio, en t&eacute;rminos generales se conforman por&nbsp;tejido conectivo denso irregular. La sustancia intercelular, producida&nbsp;por los fibroblastos, adem&aacute;s de mantener la estructura del m&uacute;sculo&nbsp;esquel&eacute;tico, permite la migraci&oacute;n, proliferaci&oacute;n y diferenciaci&oacute;n de&nbsp;las c&eacute;lulas que soporta. Los tipos de col&aacute;geno que se han identificado&nbsp;en mayor concentraci&oacute;n en el epimisio y el perimisio, son los tipo&nbsp;I y III o col&aacute;geno reticular y, col&aacute;geno tipo IV en la l&aacute;mina basal&nbsp;(11). El <a href="#c1">Cuadro 1</a> resume los componentes moleculares de la matriz&nbsp;extracelular intramuscular.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f4"><img src="img/revistas/rmri/v21n2/v21n2a12-4.jpg"/></a></p>     <p align="center"><a name="f4"><img src="img/revistas/rmri/v21n2/v21n2a12-5.jpg"/></a></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Los est&iacute;mulos mec&aacute;nicos asociados a reguladores moleculares del tipo factores de crecimiento, por ejemplo, el factor de crecimiento similar&nbsp;a la insulina-IGF, influyen en la regulaci&oacute;n de la s&iacute;ntesis, degradaci&oacute;n&nbsp;y homeostasis de las fibras col&aacute;genas (12). Los cambios biog&eacute;nicos&nbsp;en la matriz extracelular conducen a degradaci&oacute;n proteol&iacute;tica a&nbsp;partir de las metaloproteinasas presentes en el conectivo, que hacen&nbsp;parte de la familia de las proteasas dependientes de zinc, conocidas&nbsp;como metaloproteinasas de la matriz extracelular (MMPs) y que&nbsp;generan cambios especialmente en la concentraci&oacute;n de col&aacute;geno&nbsp;tipo IV, proporcionales al grado de lesi&oacute;n o adaptaci&oacute;n de las fibras&nbsp;musculares. De la misma manera, la movilidad y el ejercicio act&uacute;an&nbsp;como reguladores de los niveles del col&aacute;geno presentes en la l&aacute;mina&nbsp;basal, siendo diferentes entre grupos musculares (13).</font></p>     <p align="center"><a name="c1"><img src="img/revistas/rmri/v21n2/v21n2a12-6.jpg"/></a></p><font size="2" face="verdana">     <p align="justify"><b>Relaci&oacute;n con el sistema nervioso perif&eacute;rico y microcirculaci&oacute;n</b></p> </font>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">El tejido muscular estriado esquel&eacute;tico requiere de las unidades motoras y la microvascularizaci&oacute;n para mantener un funcionamiento&nbsp;adecuado. Las placas motoras o uniones neuromusculares, son un tipo&nbsp;especializado de sinapsis formada por motoneuronas derivadas de un&nbsp;nervio perif&eacute;rico en contacto con las fibras musculares esquel&eacute;ticas, en&nbsp;las que un neurotransmisor liberado hacia la hendidura sin&aacute;ptica que&nbsp;genera excitaci&oacute;n y contracci&oacute;n muscular, es la acetilcolina. Factores&nbsp;como la mol&eacute;cula Wnt y el factor de crecimiento transformante&nbsp;Beta (FGF-B), los componentes de la l&aacute;mina basal y prote&iacute;nas de&nbsp;uni&oacute;n presentes en la matriz extracelular, entre otros, participan en&nbsp;el desarrollo de la uni&oacute;n neuromuscular, tanto de la diferenciaci&oacute;n&nbsp;presin&aacute;ptica como en el ensamblaje de los receptores postsin&aacute;pticos&nbsp;(17).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">En el estad&iacute;o embrionario m&uacute;ltiples motoneuronas inervan la misma fibra muscular; sin embargo, disminuyen en cantidad progresivamente&nbsp;a partir del nacimiento hasta conseguir que una terminal nerviosa&nbsp;inerve a una determinada fibra muscular. Cada motoneurona tiene&nbsp;la posibilidad de ramificarse en muchas terminales nerviosas, con&nbsp;el fin de proveer inervaci&oacute;n a muchos miocitos en los m&uacute;sculos&nbsp;relacionados con motricidad gruesa. Por otra parte, a nivel de las&nbsp;fibras de los m&uacute;sculos altamente activos y especializados como los&nbsp;m&uacute;sculos extraoculares, una motoneurona inerva muy pocas fibras&nbsp;musculares (18).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Asociados a la placa motora y ubicados dentro del m&uacute;sculo en paralelo a las fibras musculares, se encuentran los husos neuromusculares&nbsp;(<a href="#f4">Figura 4</a>), receptores de estiramiento que tienen en su interior&nbsp;dos tipos de fibras musculares conocidas como c&eacute;lulas del huso&nbsp;o intrafusales, que se dividen en fibras de bolsa nuclear y fibras de&nbsp;cadena nuclear. Est&aacute;n rodeadas por una c&aacute;psula interna y una cubierta&nbsp;externa de tejido conectivo laxo. Las fibras de bolsa nuclear contienen&nbsp;agregados de n&uacute;cleos en su regi&oacute;n media; en contraste, las fibras de&nbsp;cadena nuclear poseen n&uacute;cleos dispuestos en hilera. Ambas fibras&nbsp;est&aacute;n rodeadas a nivel de la regi&oacute;n media por las terminales nerviosas&nbsp;aferentes a manera de espiral; as&iacute; mismo, reciben est&iacute;mulos de las&nbsp;terminales eferentes provenientes del sistema nervioso central. Su&nbsp;organizaci&oacute;n, proporci&oacute;n y tama&ntilde;o var&iacute;an con el tipo de m&uacute;sculo en&nbsp;el que se localicen (19). Por otra parte, el &oacute;rgano tendinoso de Golgi&nbsp;es un mecanorreceptor encapsulado inervado &uacute;nicamente por fibras&nbsp;sensitivas aferentes para transmitir informaci&oacute;n sobre propiocepci&oacute;n&nbsp;y tensi&oacute;n o fuerza muscular generada durante la contracci&oacute;n. Las fibras&nbsp;col&aacute;genas que lo sostienen se encuentran adheridas en un extremo&nbsp;hacia la aponeurosis y en el otro por fibras musculares dispuestas en&nbsp;serie y la cantidad presente var&iacute;a seg&uacute;n el tipo de m&uacute;sculo (20).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Los capilares arteriales y venosos en el endomisio se relacionan longitudinalmente con las fibras musculares a lo largo de su&nbsp;trayecto, constituyendo la microvascularizaci&oacute;n del tejido muscular&nbsp;estriado esquel&eacute;tico. Murakami et al., en el a&ntilde;o 2010 (21),&nbsp;encontraron diferencias en la irrigaci&oacute;n capilar de los m&uacute;sculos&nbsp;predominantemente oxidativos como el s&oacute;leo y glucol&iacute;ticos como&nbsp;el extensor longo de los dedos. Las &aacute;reas del m&uacute;sculo en las que se&nbsp;encuentran las fibras de contracci&oacute;n lenta, poseen elevada densidad&nbsp;capilar en comparaci&oacute;n con aquellas en las que la proporci&oacute;n de fibras&nbsp;de contracci&oacute;n r&aacute;pida es m&aacute;s alta. As&iacute; mismo, m&uacute;ltiples anastomosis&nbsp;conectan los diferentes capilares, evidenciando di&aacute;metros superiores&nbsp;en los capilares y sus anastomosis que rodean las fibras tipo I; por&nbsp;ende, factores reguladores como el factor de crecimiento vascular&nbsp;endotelial (VEGF) son producidos en mayor concentraci&oacute;n en los&nbsp;m&uacute;sculos predominantemente oxidativos que en los glucol&iacute;ticos.&nbsp;El di&aacute;metro entre las fibras es variable, por lo cual el consumo de&nbsp;ox&iacute;geno y su distribuci&oacute;n no es homog&eacute;neo, incluso en condiciones&nbsp;de adaptaci&oacute;n (21, 22).</font></p> <font size="2" face="verdana"><b><a name="bookmark7"></a>Ultraestructura de las fibras musculares esquel&eacute;ticas</b></font>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La fibra muscular esquel&eacute;tica es una c&eacute;lula multinucleada altamente especializada en producir contracci&oacute;n, caracter&iacute;stica que permite&nbsp;a trav&eacute;s de la asociaci&oacute;n entre fibras dada por el tejido conectivo,&nbsp;transmitir fuerza y generar movimiento por el desplazamiento de&nbsp;segmentos corporales. Los miocitos esquel&eacute;ticos son cil&iacute;ndricos,&nbsp;longitudinalmente observados, con un di&aacute;metro entre 10 y 100 &micro;&nbsp;y longitud variable que puede ir desde cinco mil&iacute;metros hasta 35&nbsp;cent&iacute;metros, seg&uacute;n el tama&ntilde;o del m&uacute;sculo que conforman. El di&aacute;metro&nbsp;determina la fuerza y la longitud, la velocidad de contracci&oacute;n, as&iacute;&nbsp;como, el desplazamiento de la fibra muscular, entendido como la&nbsp;distancia capaz de acortarse. Los miocitos se clasifican de acuerdo con&nbsp;el tipo de contracci&oacute;n que generan, tipo de metabolismo e isoforma&nbsp;de la cadena pesada de miosina; mientras que las fibras tipo I o de&nbsp;contracci&oacute;n lenta, poseen la isoforma MCH I, generan contracciones&nbsp;prolongadas y de menor fuerza, las fibras tipo IIa o de contracci&oacute;n&nbsp;intermedia, poseen la isoforma MHC IIa; por otra parte, las fibras&nbsp;tipo IIx (Ilb) o de contracci&oacute;n r&aacute;pida, descrita en seres humanos que&nbsp;poseen la isoforma MHC IIx, las cuales generan contracciones cortas&nbsp;y de mayor fuerza (23).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana">Al observar la fibra desde la periferia hacia el centro, se encuentra rodeada por el sarcolema o membrana plasm&aacute;tica; si bien su&nbsp;estructura b&aacute;sica es similar a otras membranas plasm&aacute;ticas, en el&nbsp;miocito esquel&eacute;tico se encuentran modificaciones en diferentes&nbsp;regiones, en especial a nivel de uni&oacute;n miotendinosa y neuromuscular.&nbsp;Est&aacute; compuesta por el sarcolema, la membrana m&aacute;s interna en&nbsp;contacto con el sarcoplasma, cuyas invaginaciones dan lugar a los&nbsp;t&uacute;bulos transversos; externa a ella y rode&aacute;ndola se ubica la l&aacute;mina&nbsp;basal, compuesta principalmente por col&aacute;geno tipo IV y laminina, as&iacute;&nbsp;como proteoglucanos y glucoprote&iacute;nas (24).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Entre el sarcolema y la l&aacute;mina basal, se encuentran las c&eacute;lulas sat&eacute;lites, importantes en la regeneraci&oacute;n de las fibras musculares en&nbsp;lesi&oacute;n reversible. Son c&eacute;lulas mono nucleadas que aparecen en las&nbsp;extremidades hacia el d&iacute;a 17 despu&eacute;s de la fecundaci&oacute;n una vez las&nbsp;fibras primarias se han formado (25).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Actualmente, se establecen dos posibles alternativas sobre el origen de las c&eacute;lulas sat&eacute;lites. El primer origen potencial es el somita; durante el&nbsp;desarrollo embrionario c&eacute;lulas precursoras miog&eacute;nicas migran hacia&nbsp;el compartimiento de formaci&oacute;n de m&uacute;sculo esquel&eacute;tico las cuales&nbsp;permanecen inactivas en lugar de diferenciarse. El segundo origen&nbsp;potencial es vascular; c&eacute;lulas de origen hematopoy&eacute;tico migran hacia&nbsp;los vasos sangu&iacute;neos, las cuales pueden permanecer en el endotelio&nbsp;o diferenciarse hacia c&eacute;lulas sat&eacute;lite y trasladarse hasta el sarcolema&nbsp;(26).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Durante la vida postnatal, las c&eacute;lulas sat&eacute;lites se desarrollan a una tasa m&aacute;s lenta. Muchas de ellas se fusionan a la fibra muscular&nbsp;adyacente contribuyendo a incrementar el tama&ntilde;o de la misma. Al&nbsp;finalizar la etapa de crecimiento del ciclo vital del individuo, estas&nbsp;c&eacute;lulas permanecen inactivas y se activan en caso de da&ntilde;o muscular&nbsp;(4). En su estado inactivo, su n&uacute;cleo contiene mayor proporci&oacute;n&nbsp;de heterocromatina que eucromatina. Si son activadas, cambian su&nbsp;morfolog&iacute;a desarrollando prolongaciones citoplasm&aacute;ticas, aumento en&nbsp;el volumen del citoplasma, cambio en la proporci&oacute;n heterocromatina/&nbsp;eucromatina y, organelas como el aparato de Golgi, mitocondrias y&nbsp;ribosomas, aumentan en tama&ntilde;o y n&uacute;mero (27).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Se ha observado que la distribuci&oacute;n de las c&eacute;lulas sat&eacute;lites no es equitativa entre los diferentes grupos de fibras musculares. Holterman&nbsp;et al, en el a&ntilde;o 2005 (27), observaron que las fibras de contracci&oacute;n&nbsp;lenta poseen mayor n&uacute;mero de c&eacute;lulas sat&eacute;lite en relaci&oacute;n a las fibras&nbsp;de contracci&oacute;n r&aacute;pida. Se cree que la concentraci&oacute;n de capilares a&nbsp;lo largo de la fibra muscular y la uni&oacute;n neuromuscular influye en la&nbsp;elevada densidad de c&eacute;lulas sat&eacute;lites. As&iacute; mismo, es probable que el&nbsp;flujo sangu&iacute;neo provea c&eacute;lulas precursoras miog&eacute;nicas (MPC) que&nbsp;contribuyen a mantener la concentraci&oacute;n de c&eacute;lulas sat&eacute;lites inactivas&nbsp;alrededor de las fibras musculares.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">En el sarcoplasma, se encuentran las miofibrillas formadas por grupos de sarc&oacute;meros dispuestos en serie. El total de sarc&oacute;meros depende&nbsp;de la longitud y el di&aacute;metro de la fibra muscular. Un m&uacute;sculo puede&nbsp;acortarse varios cent&iacute;metros, a pesar de que cada sarc&oacute;mero se&nbsp;acorta aproximadamente 1 um, esto se debe a los filamentos gruesos&nbsp;de miosina, filamentos delgados de actina y prote&iacute;nas de sost&eacute;n&nbsp;importantes en la sarcomerog&eacute;nesis como la titina, nebulina, alfa&nbsp;actinina, miomesina, prote&iacute;na C y tropomodulina.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Los t&uacute;bulos transversos, extensiones de la membrana plasm&aacute;tica que envuelven las miofibrillas, est&aacute;n en contacto con el ret&iacute;culo&nbsp;sarcopl&aacute;smico a trav&eacute;s de sus cisternas terminales formando la tr&iacute;ada.&nbsp;Este, se constituye como un ret&iacute;culo endoplasm&aacute;tico liso formado por&nbsp;un conjunto de membranas dispuestas rodeando cada miofibrilla y&nbsp;anclado a los t&uacute;bulos transversos a trav&eacute;s de sus cisternas terminales&nbsp;(28). De esta manera, se hace posible el contacto del miocito con el&nbsp;espacio extracelular y la propagaci&oacute;n de los cambios en el potencial de&nbsp;membrana a lo largo de las fibras musculares para dar lugar al acople&nbsp;excitaci&oacute;n-contracci&oacute;n. La propagaci&oacute;n de la excitaci&oacute;n iniciada por&nbsp;la placa motora, se distribuye de manera uniforme en todas las fibras&nbsp;musculares, inclusive si el di&aacute;metro de los t&uacute;bulos T es mayor que el&nbsp;de las fibras de contracci&oacute;n r&aacute;pida (29, 30).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Este ret&iacute;culo est&aacute; dividido en dos regiones, una longitudinal y otra de uni&oacute;n. A nivel del ret&iacute;culo sarcopl&aacute;smico longitudinal se encuentra la&nbsp;ATPasa de calcio cuya funci&oacute;n es el bombeo de calcio del citoplasma&nbsp;al interior del ret&iacute;culo sarcopl&aacute;smico durante la relajaci&oacute;n muscular&nbsp;y el mantenimiento de la concentraci&oacute;n citos&oacute;lica en reposo. Se han&nbsp;identificado dos isoformas para el m&uacute;sculo estriado esquel&eacute;tico y&nbsp;card&iacute;aco; la isoforma SERCA 1 est&aacute; presente en mayor proporci&oacute;n en&nbsp;las fibras de contracci&oacute;n r&aacute;pida y la isoforma SERCA 2, se encuentra&nbsp;en las fibras de contracci&oacute;n lenta y en los cardiomiocitos. La regi&oacute;n&nbsp;de uni&oacute;n consta del canal sensible a voltaje conocido como receptor&nbsp;de dihidropirimidina, el canal de liberaci&oacute;n de calcio conocido como&nbsp;receptor de rianodina y la calsecuestrina. A trav&eacute;s del canal sensible a&nbsp;voltaje se activa la v&iacute;a de fosforilaci&oacute;n que tiene como intermediario&nbsp;el cAMP y la fosfocinasa A. La fosforilaci&oacute;n del receptor de rianodina&nbsp;disocia la calstabina, prote&iacute;na inhibidora de receptor y en consecuencia&nbsp;se da la liberaci&oacute;n del calcio al sarcoplasma el cual participa en el acople&nbsp;excitaci&oacute;n-contracci&oacute;n. La calsecuestrina tambi&eacute;n es fosforilada para&nbsp;permitir la salida del calcio al sarcoplasma (31).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Una de las propiedades de los t&uacute;bulos T es la plasticidad, que radica por una parte, en su capacidad para deformarse durante la contracci&oacute;n&nbsp;y regresar a su forma inicial durante el reposo y por otra, en la&nbsp;regeneraci&oacute;n e hipertrofia en respuesta a la lesi&oacute;n por denervaci&oacute;n&nbsp;y posterior reinervaci&oacute;n (32). Esta caracter&iacute;stica provee estabilidad&nbsp;a la fibra y permite su recuperaci&oacute;n despu&eacute;s de la lesi&oacute;n. Por otra&nbsp;parte, se ha observado en estudios in vitro que el t&uacute;bulo T es capaz&nbsp;de englobar sustancias presentes en el medio externo, aspecto que ha&nbsp;dado lugar al estudio de funciones adicionales, entre ellas el balance&nbsp;h&iacute;drico y la regulaci&oacute;n del volumen celular, la recuperaci&oacute;n durante&nbsp;la fatiga muscular, el paso de sustancias como el &aacute;cido l&aacute;ctico hacia el&nbsp;intersticio y el transporte de mol&eacute;culas a trav&eacute;s de los mecanismos de&nbsp;endocitosis y exocitosis, aspectos a&uacute;n en investigaci&oacute;n (33, 34).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La s&iacute;ntesis de ATP que tiene lugar en las mitocondrias, es activada, entre otros factores, por la concentraci&oacute;n de ADP en el citoplasma,&nbsp;lo que sugiere que la fibra glucol&iacute;tica es m&aacute;s sensible al ADP que&nbsp;la oxidativa (35). Estas organelas se encuentran localizadas a nivel&nbsp;subsarcol&eacute;mico e intermiofibrilar y su densidad depende del tipo de&nbsp;fibra muscular. En fibras musculares con capacidad oxidativa pueden&nbsp;llegar a ocupar un 20% del volumen citoplasm&aacute;tico. Las mitocondrias&nbsp;de localizaci&oacute;n subsarcol&eacute;mica constituyen alrededor del 15% del&nbsp;volumen mitocondrial en un miocito funcionalmente activo y cambia&nbsp;el n&uacute;mero de su poblaci&oacute;n con las variaciones del uso o desuso&nbsp;del m&uacute;sculo esquel&eacute;tico. Son aptas para aumentar su capacidad de&nbsp;oxidaci&oacute;n de l&iacute;pidos como respuesta al aumento en la actividad&nbsp;contr&aacute;ctil, como sucede en el entrenamiento f&iacute;sico; por otra parte,&nbsp;las mitocondrias intermiofibrilares contienen mayor proporci&oacute;n de&nbsp;enzimas de la cadena respiratoria (36).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana">La membrana externa mitocondrial contiene los receptores de comunicaci&oacute;n con el sarcoplasma, mientras que en la membrana&nbsp;interna mitocondrial, se encuentran los complejos proteicos que&nbsp;hacen parte de la cadena de transporte de electrones, entre los que&nbsp;se encuentran NADH, coenzima Q, FADH, GADPH y citocromos.&nbsp;La densidad mitocondrial depende del tipo de fibra muscular; en&nbsp;fibras musculares con capacidad oxidativa puede llegar a ocupar un&nbsp;20% del volumen citoplasm&aacute;tico. Durante el proceso de fosforilaci&oacute;n&nbsp;oxidativa se producen radicales libres de ox&iacute;geno, en especial ani&oacute;n&nbsp;super&oacute;xido a nivel de los complejos FADH y coenzima Q (37). La&nbsp;matriz mitocondrial contiene el ADN mitocondrial y las enzimas que&nbsp;oxidan piruvato y &aacute;cidos grasos en Acetil CoA que ingresa a la cadena&nbsp;de transporte de electrones.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Cambios en las fibras y la matriz extracelular intramuscular causados por isquemia</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La evidencia refiere que los m&uacute;sculos esquel&eacute;ticos toleran bien per&iacute;odos de isquemia hasta de seis horas cuyo factor determinante en&nbsp;el grado de lesi&oacute;n, es el tipo de fibras que predomine (38). Entre los&nbsp;estudios sobre cambios secundarios a isquemia en periodos menores&nbsp;a seis horas se pueden mencionar los realizados por R&aacute;cz &amp; Illy&eacute;s&nbsp;en 1997 (39), en los que describen los cambios que se presentan en&nbsp;las fibras sometidas a dos y tres horas de isquemia. Posteriormente,&nbsp;Carmo-Araujo y colaboradores en el a&ntilde;o 2007 (40), muestran&nbsp;evidencias sobre cambios secundarios a periodos de isquemia&nbsp;menores a seis horas, mientras que Walters TJ, et al. en el a&ntilde;o 2008&nbsp;(38), describen los cambios que se presentan 14 d&iacute;as despu&eacute;s de&nbsp;reperfusi&oacute;n en cada tipo de fibra.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La oclusi&oacute;n puede provocar vasoespasmo intenso distal, seguido de trombosis; seg&uacute;n el grado de inmovilizaci&oacute;n y p&eacute;rdida de la funci&oacute;n&nbsp;endotelial, se extiende y obstruye la circulaci&oacute;n lo que agrava la&nbsp;isquemia. Al mismo tiempo, una trombosis venosa profunda puede&nbsp;ocurrir como resultado de la hipoxia y el flujo venoso lento. La&nbsp;intensidad de la lesi&oacute;n isqu&eacute;mica depende del nivel de oclusi&oacute;n, la&nbsp;circulaci&oacute;n colateral y el grado de la demanda tisular de ox&iacute;geno.&nbsp;As&iacute;, el tiempo de isquemia es un factor crucial en la determinaci&oacute;n&nbsp;de la intensidad de las lesiones y la viabilidad del tejido. Las c&eacute;lulas&nbsp;muestran diferentes tiempos de sobrevida a la isquemia. Las neuronas&nbsp;mueren luego de cinco (5) minutos, los miocitos cardiacos pueden&nbsp;resistir hasta 30 minutos, las c&eacute;lulas renales hasta 1 hora y las c&eacute;lulas&nbsp;musculares esquel&eacute;ticas entre 3 y 6 horas (40).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Los efectos funcionales de la isquemia incluyen alteraciones en la contracci&oacute;n muscular despu&eacute;s de 2 horas de isquemia seguido de 2&nbsp;horas de reperfusi&oacute;n en ambos tipos de fibras; as&iacute; mismo, despu&eacute;s de&nbsp;3 horas de isquemia los niveles de ATP descienden en un 48% en los&nbsp;m&uacute;sculos con predominio oxidativo m&aacute;s que en los de predominio&nbsp;glucol&iacute;tico (41).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Entre las patolog&iacute;as que causan isquemia se encuentran la enfermedad arterial perif&eacute;rica oclusiva, la deformaci&oacute;n por presi&oacute;n prolongada&nbsp;que conlleva a &uacute;lceras, la cirug&iacute;a ortop&eacute;dica que implica la utilizaci&oacute;n&nbsp;de un torniquete y durante los trasplantes que contienen tejido&nbsp;muscular esquel&eacute;tico. En las primeras horas de isquemia, los cambios&nbsp;bioqu&iacute;micos de las funciones celulares b&aacute;sicas son reversibles. Sin&nbsp;embargo, cuando la isquemia se prolonga por un per&iacute;odo mayor a&nbsp;cinco horas, otra secuencia de reacciones se produce y conlleva a&nbsp;la disminuci&oacute;n excesiva de la energ&iacute;a de la c&eacute;lula y muerte celular&nbsp;(42). Carmo-Ara&uacute;jo et. al en el a&ntilde;o 2007, describen que el m&uacute;sculo&nbsp;esquel&eacute;tico sometido a cuatro horas de isquemia, presenta cambios&nbsp;en el di&aacute;metro de las fibras musculares y diferentes intensidades de&nbsp;reactividad a las pruebas de NADH-TR y ATP asa, seg&uacute;n el tipo de&nbsp;fibra muscular (40).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Cambios en las fibras y la matriz extracelular intramuscular causados por reperfusi&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La reperfusi&oacute;n ocurre cuando el flujo sangu&iacute;neo retorna a un tejido despu&eacute;s de un periodo de isquemia. Aunque permite la recuperaci&oacute;n&nbsp;del tejido, al limitar la necrosis post-isqu&eacute;mica, se ha descrito que la&nbsp;reperfusi&oacute;n puede en s&iacute; misma lesionar los tejidos, ocasionando la&nbsp;&ldquo;lesi&oacute;n por reperfusi&oacute;n&rdquo; y en ocasiones la necrosis por reperfusi&oacute;n. Los&nbsp;vasos sangu&iacute;neos de mediano calibre se encuentran dilatados mientras&nbsp;que en la microcirculaci&oacute;n hay vasoconstricci&oacute;n, lo que tiende a&nbsp;aumentar la isquemia y los cambios de lesi&oacute;n (43). Los efectos de la&nbsp;lesi&oacute;n por reperfusi&oacute;n dependen, entre otros, de los da&ntilde;os causados&nbsp;por la isquemia y del grado de sensibilidad de cada tejido. Se conoce&nbsp;que el da&ntilde;o se debe en parte a la respuesta inflamatoria que se produce&nbsp;en los tejidos afectados por la isquemia. De acuerdo con el estudio&nbsp;realizado por Ghaly &amp; Marsh en el a&ntilde;o 2010 (44) se genera un aumento&nbsp;en la concentraci&oacute;n de neutr&oacute;filos, de su actividad mieloperoxidasa&nbsp;y los factores quimiot&aacute;cticos, durante las primeras horas posteriores&nbsp;a isquemia, con disminuci&oacute;n gradual en los siguientes tres d&iacute;as; la&nbsp;infiltraci&oacute;n leucocitaria aumenta as&iacute; como la actividad oxidativa&nbsp;de los macr&oacute;fagos. Los leucocitos que entran al tejido durante la&nbsp;reperfusi&oacute;n liberan interleuquinas y radicales libres (hidroxilo,&nbsp;super&oacute;xido, entre otros) en respuesta al da&ntilde;o tisular producido por&nbsp;la isquemia. Las interleuquinas promueven la respuesta inflamatoria&nbsp;y los radicales libres tienden a da&ntilde;ar las prote&iacute;nas celulares, el ADN y&nbsp;la membrana plasm&aacute;tica de las c&eacute;lulas que sobrevivieron a la isquemia&nbsp;(45). La muerte celular induce la liberaci&oacute;n de m&aacute;s radicales libres.&nbsp;La inflamaci&oacute;n, si se vuelve cr&oacute;nica, puede finalmente reproducir la&nbsp;isquemia, por extravasaci&oacute;n de fluidos y estasis sangu&iacute;neo (46). Esta&nbsp;inflamaci&oacute;n se hace evidente en microscop&iacute;a &oacute;ptica por edema tanto&nbsp;de las fibras musculares como a nivel del conectivo, aumento de los&nbsp;espacios que ocupan el endomisio y perimisio, alteraci&oacute;n en el patr&oacute;n&nbsp;histol&oacute;gico normal e infiltraci&oacute;n celular (47).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">En relaci&oacute;n con los monocitos, estos se diferencian hacia uno de dos tipos de macr&oacute;fagos en el tejido conectivo; los macr&oacute;fagos&nbsp;tipo I inducidos por interfer&oacute;n gamma (IFN-D) con funciones&nbsp;proinflamatorias, los cuales se encargan de la producci&oacute;n de&nbsp;radicales libres de ox&iacute;geno, interleuquina 1 y 6 (IL-1 y 6), factor de&nbsp;necrosis tumoral (TNF) y se asocian a necrosis muscular. Por otra&nbsp;parte, los macr&oacute;fagos tipo II producen IL 4, 10 y 13, promueven la&nbsp;reparaci&oacute;n celular y se relacionan con los procesos de regeneraci&oacute;n&nbsp;del tejido muscular estriado esquel&eacute;tico lesionado. En roedores se ha&nbsp;evidenciado que los macr&oacute;fagos tipo I promueven la proliferaci&oacute;n de&nbsp;c&eacute;lulas precursoras miog&eacute;nicas, mientras que los macr&oacute;fagos tipo II&nbsp;estimulan la diferenciaci&oacute;n celular y la fusi&oacute;n de mioblastos (48, 49).&nbsp;Adem&aacute;s del da&ntilde;o de la membrana celular, edema, disfunci&oacute;n&nbsp;microvascular y necrosis muscular asociados con procesos de&nbsp;morbilidad y disfunci&oacute;n definitiva del tejido muscular (50) que&nbsp;pro duce la reperfusi&oacute;n, a nivel metab&oacute;lico se ha descrito una reducci&oacute;n&nbsp;gradual de los dep&oacute;sitos energ&eacute;ticos intracelulares de trifosfato de&nbsp;adenosina (ATP), de fosfocreatina, de gluc&oacute;geno muscular, con&nbsp;aumentos en las concentraciones intracelulares de hidrogeniones&nbsp;y de lactato (51). El estr&eacute;s oxidativo evidenciado mediante biopsias&nbsp;musculares humanas, se presenta tambi&eacute;n en el ret&iacute;culo sarcopl&aacute;smico&nbsp;por disminuci&oacute;n en la fosforilaci&oacute;n de la mol&eacute;cula 4E-BP1 por AKT,&nbsp;ambas involucradas en la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas, en las alteraciones en&nbsp;la movilidad de calcio, la entrada de glucosa al tejido y la glucolisis, as&iacute;&nbsp;como la activaci&oacute;n de caspasa 3, principalmente durante la reperfusi&oacute;n&nbsp;(52, 53). Se ha reportado que este fen&oacute;meno induce en el m&uacute;sculo&nbsp;esquel&eacute;tico condiciones de hipoxia, hipercapnia y acumulaci&oacute;n a&nbsp;nivel extracelular de metabolitos como ATP, adenosina, protones,&nbsp;lactato, hipoxantina y colina, entre otros (54, 55). Se da la expresi&oacute;n&nbsp;de genes como HIF1B (factor 1B inducible por hipoxia), CASP-8&nbsp;(caspasa 8) para la activaci&oacute;n de la v&iacute;a extr&iacute;nseca de la apoptosis, IL-8&nbsp;(interleuquina 8), mediador de la respuesta inflamatoria y PLAUR&nbsp;(receptor de uroquinasa activado por plasmina), en la reorganizaci&oacute;n&nbsp;tisular durante los cambios de lesi&oacute;n que ocurren tanto en las fibras&nbsp;musculares como en el conectivo (56, 57).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">En condiciones normales la NADPH (nicotinamida adenina dinucleotido fosfato), funciona como un aceptor de electrones en el&nbsp;proceso de respiraci&oacute;n celular mediado por la xantina deshidrogenasa.&nbsp;Durante la reperfusi&oacute;n, la xantina se convierte en oxidasa y utiliza&nbsp;iones ox&iacute;geno para la s&iacute;ntesis de radicales libres. La formaci&oacute;n de altas&nbsp;concentraciones de radicales libres a trav&eacute;s del sistema xantina oxidasa&nbsp;en los neutr&oacute;filos que migran al tejido lesionado por quimiotaxis,&nbsp;produce un da&ntilde;o mayor de la membrana plasm&aacute;tica, incremento de&nbsp;la respuesta inflamatoria y el consecuente edema tisular, generando&nbsp;alteraciones locales y sist&eacute;micas (42, 58).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana">Las caracter&iacute;sticas histol&oacute;gicas del m&uacute;sculo esquel&eacute;tico sometido a cuatro horas de isquemia y una hora de reperfusi&oacute;n corresponden a&nbsp;edema, disminuci&oacute;n en el di&aacute;metro de las fibras o hipercontractilidad&nbsp;y necrosis; sometidas a pruebas de NADH-TR (nicotinamida adenina&nbsp;dinucle&oacute;tico tetrazolium reductasa) y mATPasa (miosina adenosin&nbsp;trifosfatasa), varias de las fibras evidenciaron reactividad moderada&nbsp;o d&eacute;bil (40).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Mars y Gregory en 1991 evidenciaron que despu&eacute;s de 90 minutos de isquemia inducida con torniquete y 3 horas de reperfusi&oacute;n, el 29% de&nbsp;fibras tipo I presentaron aumento en el tama&ntilde;o en relaci&oacute;n con el 7%&nbsp;de fibras tipo IIa y 5% de fibras tipo IIb; la distancia entre las fibras&nbsp;aument&oacute; durante la reperfusi&oacute;n en el 48% de las fibras analizadas (59).&nbsp;Estudios en donde se compar&oacute; la respuesta del m&uacute;sculo vasto y del&nbsp;s&oacute;leo sometidos a 2 horas de isquemia y 0 a 6 horas de reperfusi&oacute;n&nbsp;mediante el uso de marcadores inmunohistoqu&iacute;micos para IgM&nbsp;y C3 mostraron que el dep&oacute;sito de C3 predomina en las fibras de&nbsp;contracci&oacute;n r&aacute;pida del m&uacute;sculo vasto presentando el 28% +/- 12.4 de&nbsp;fibras lesionadas comparado con el s&oacute;leo, el cual present&oacute; el 17.3 +/-11.8 de fibras alteradas (60).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Walters, et al., en el 2008, afirman que el tipo de fibras que predomina en el m&uacute;sculo influye en la recuperaci&oacute;n de la lesi&oacute;n inducida por&nbsp;isquemia y reperfusi&oacute;n. Los m&uacute;sculos con predominancia de fibras&nbsp;glucol&iacute;ticas (plantar) sometidos a dos horas y cuatro horas de&nbsp;isquemia y 14 d&iacute;as de reperfusi&oacute;n evidenciaron al inicio entre el 45%&nbsp;y 69% de p&eacute;rdida de su capacidad contr&aacute;ctil. El s&oacute;leo no perdi&oacute; su&nbsp;capacidad contr&aacute;ctil en el grupo de 2 horas de isquemia, sin embargo,&nbsp;en el de cuatro horas perdi&oacute; el 30% de su capacidad, presentando&nbsp;recuperaci&oacute;n el d&iacute;a 14 (38).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Isquemia de tres horas es un periodo cr&iacute;tico en el que el m&uacute;sculo sufre da&ntilde;o, sin afectar severamente su capacidad de regeneraci&oacute;n. En las&nbsp;isquemias de cuatro horas, el tejido muscular estriado esquel&eacute;tico es&nbsp;susceptible a necrosis en un 30% y puede llegar a ser un 90% si la&nbsp;isquemia se prolonga hasta cinco horas. La denervaci&oacute;n previa sea&nbsp;qu&iacute;mica o quir&uacute;rgica aumenta en cierto grado la tolerancia a isquemia&nbsp;de cuatro horas y reperfusi&oacute;n (61), al igual que la administraci&oacute;n de&nbsp;medicamentos antes de la colocaci&oacute;n del torniquete.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Los cambios que se generan en la matriz extracelular intramuscular secundarios a lesi&oacute;n, implican la degradaci&oacute;n y s&iacute;ntesis tanto del&nbsp;componente fibrilar (fibras col&aacute;geneas y el&aacute;sticas) como no fibrilar&nbsp;(glucosaminoglucanos, proteoglucanos y glucoprote&iacute;nas), en los que el&nbsp;incremento en la concentraci&oacute;n de metaloproteinasas (MMP) es uno&nbsp;de los principales aspectos. Estas prote&iacute;nas, as&iacute; como sus inhibidores&nbsp;tisulares (TIMP), presentan un aumento en la expresi&oacute;n por parte de&nbsp;c&eacute;lulas miog&eacute;nicas in vitro, tales como MMP 1, 2, 3, 7, 9, 10, 14 y&nbsp;16, relacionadas con la migraci&oacute;n de mioblastos y en la formaci&oacute;n&nbsp;de los miotubos, por tanto, en la regeneraci&oacute;n del tejido muscular.&nbsp;La MMP 8 est&aacute; relacionada con los procesos y cicatrizaci&oacute;n y las&nbsp;metaloproteinasas 2 y 9 (MMP-2 y MMP-9), tambi&eacute;n denominadas&nbsp;gelatinasas, presentan mayores concentraciones en la inflamaci&oacute;n, por&nbsp;ejemplo, en las miopat&iacute;as de tipo inflamatorio, como las polimiositis&nbsp;y dermatomiositis (62).</font></p> <font size="2" face="verdana"><b><a name="bookmark8"></a>Angiog&eacute;nesis y regeneraci&oacute;n tisular</b></font>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Los procesos de angiog&eacute;nesis requieren de migraci&oacute;n celular, la presencia de factores de transcripci&oacute;n como el de crecimiento&nbsp;vascular endotelial (VEFG), iones calcio, anclaje del endotelio a la&nbsp;matriz extracelular y s&iacute;ntesis de uniones laterales y basales as&iacute; como,&nbsp;de una membrana basal que lo relacione con el tejido conectivo&nbsp;(63). Se cree que la concentraci&oacute;n de capilares a lo largo de la fibra&nbsp;muscular y la uni&oacute;n neuromuscular influye en la elevada densidad&nbsp;de c&eacute;lulas sat&eacute;lites y puede deberse a la liberaci&oacute;n de factores desde&nbsp;la uni&oacute;n neuromuscular o los capilares adyacentes. Myf5 y Pax7&nbsp;son factores reguladores miog&eacute;nicos presentes en estas c&eacute;lulas,&nbsp;fundamentales en la regeneraci&oacute;n del tejido muscular estriado&nbsp;esquel&eacute;tico (64). Estos est&aacute;n mediados por la expresi&oacute;n de factores&nbsp;producidos por los mioblastos durante el ensamblaje de las fibras&nbsp;musculares y su componente contr&aacute;ctil. En los hallazgos descritos&nbsp;por Degenfeld et. al. en el a&ntilde;o 2003 (65), se evidenci&oacute; la expresi&oacute;n de&nbsp;factores de crecimiento y maduraci&oacute;n como el factor de crecimiento&nbsp;vascular endotelial-VEGF, la mol&eacute;cula de adhesi&oacute;n vascular&nbsp;celular-VCAM, el factor de crecimiento derivado de las plaquetas-PDGF, angiopoyetina-1 y TGF-B, estos productos contribuyen a la&nbsp;generaci&oacute;n de un vaso sangu&iacute;neo maduro por medio de inducci&oacute;n de&nbsp;la proliferaci&oacute;n, migraci&oacute;n y adhesi&oacute;n de las c&eacute;lulas endoteliales, as&iacute;&nbsp;como el equilibrio entre ellas para la formaci&oacute;n de ramificaciones que&nbsp;dan lugar a los capilares.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La capacidad de regeneraci&oacute;n del m&uacute;sculo esquel&eacute;tico, aunque limitada, est&aacute; dada por las c&eacute;lulas sat&eacute;lites, de modo que las lesiones a&nbsp;nivel de la l&aacute;mina basal o de la relaci&oacute;n de las fibras con el conectivo,&nbsp;ocasiona cambios progresivos cuya evidencia cl&iacute;nica inicial es la&nbsp;debilidad muscular y el dolor (66, 67). Camillo et. al, en el a&ntilde;o 2004&nbsp;(68), describieron que la vascularizaci&oacute;n y la inervaci&oacute;n en el m&uacute;sculo&nbsp;s&oacute;leo, por ejemplo, son determinantes en su concentraci&oacute;n de c&eacute;lulas&nbsp;sat&eacute;lite. La denervaci&oacute;n es un factor que incrementa la migraci&oacute;n de&nbsp;c&eacute;lulas sat&eacute;lite, as&iacute; como su diferenciaci&oacute;n en miocitos que se fusionan&nbsp;y forman nuevas fibras musculares. El est&iacute;mulo nervioso es requerido&nbsp;para que la funci&oacute;n contin&uacute;e, por lo que seis meses posterior a la&nbsp;denervaci&oacute;n, tanto la migraci&oacute;n como la diferenciaci&oacute;n disminuyen&nbsp;y desaparecen.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Sassoli et. al en el a&ntilde;o 2014 (69), en cultivos de c&eacute;lulas mesenquimales estromales (MSC), evidenciaron mediante t&eacute;cnicas de&nbsp;inmunofluorescencia entre otras, el aumento en la expresi&oacute;n de MMP-2 y MMP-9, la regulaci&oacute;n en la diferenciaci&oacute;n miog&eacute;nica de c&eacute;lulas&nbsp;indiferenciadas a c&eacute;lulas sat&eacute;lite, de c&eacute;lulas sat&eacute;lite a mioblastos y la&nbsp;diferenciaci&oacute;n de fibroblastos esquel&eacute;ticos que producen los elementos&nbsp;que constituyen la matriz y pueden generar o no fibrosis por exceso en&nbsp;la s&iacute;ntesis del componente fibrilar. De la misma manera, se describe&nbsp;una interacci&oacute;n din&aacute;mica y coordinada entre c&eacute;lulas sat&eacute;lite y los&nbsp;fibroblastos presentes en el tejido conectivo durante la regeneraci&oacute;n&nbsp;del tejido muscular estriado esquel&eacute;tico. Esta interacci&oacute;n consiste en&nbsp;la regulaci&oacute;n entre s&iacute;, de la producci&oacute;n de factores de transcripci&oacute;n&nbsp;como Tcf4, el cual influye en la funci&oacute;n tanto de los fibroblastos como&nbsp;en la diferenciaci&oacute;n de las c&eacute;lulas sat&eacute;lite (70).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Otro de los estudios en los que se eval&uacute;a la recuperaci&oacute;n de ambos tipos de fibras en per&iacute;odos prolongados de reperfusi&oacute;n es el realizado&nbsp;por Woitaske MD et al. en el a&ntilde;o 1998 (71), observaron que la&nbsp;recuperaci&oacute;n morfol&oacute;gica en las fibras tipo II se da a un ritmo m&aacute;s&nbsp;lento que en las fibras tipo I despu&eacute;s de 7 y 14 d&iacute;as de isquemia.&nbsp;Corona y Rathbone en el a&ntilde;o 2014 (2), evidenciaron que los m&uacute;sculos&nbsp;tibial anterior y extensor longo de los dedos sometidos a dos horas&nbsp;de isquemia, reperfusi&oacute;n de 0, 1, 3, 7, 14, 21 y 28 d&iacute;as, e inyecci&oacute;n&nbsp;intravenosa de c&eacute;lulas mesenquimales dos d&iacute;as despu&eacute;s de la lesi&oacute;n,&nbsp;presentaron resultados positivos en cuanto a regeneraci&oacute;n tisular y&nbsp;disminuci&oacute;n en un 40% de miocitos con n&uacute;cleos centrales a los 14 d&iacute;as.&nbsp;Al administrarse v&iacute;a intravenosa c&eacute;lulas indiferenciadas derivadas de&nbsp;m&eacute;dula &oacute;sea, tambi&eacute;n se dio un incremento en la vascularizaci&oacute;n a un&nbsp;nivel cercano a lo observado en los m&uacute;sculos control (72), donde al&nbsp;d&iacute;a 28 el patr&oacute;n histol&oacute;gico fue similar al normal.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Durante la regeneraci&oacute;n muscular tienden a aumentar los niveles de la cadena pesada de la miosina en mayor proporci&oacute;n en las ratas&nbsp;j&oacute;venes que en las mayores; en ambos grupos, los m&uacute;sculos pueden&nbsp;adaptarse frente a est&iacute;mulos de carga o contracci&oacute;n frecuentes, para&nbsp;este caso, generando hipertrofia muscular (73). Al comparar los&nbsp;cambios histol&oacute;gicos de m&uacute;sculos sometidos a 2 horas de isquemia&nbsp;y 7 a 14 d&iacute;as de reperfusi&oacute;n, en ratas j&oacute;venes y mayores, se observ&oacute;&nbsp;en ambos alteraciones en el patr&oacute;n normal, con mejor capacidad&nbsp;de regeneraci&oacute;n en los biomodelos j&oacute;venes (74). Por otra parte, en&nbsp;procedimientos en m&uacute;sculos de ratas sometidas a isquemia de una&nbsp;hora inducida mediante oclusi&oacute;n arterial directa, con reperfusi&oacute;n de&nbsp;5 d&iacute;as, son evidentes los n&uacute;cleos centrales en tinci&oacute;n de hematoxilina-eosina, los cuales disminuyeron progresivamente hacia el d&iacute;a 14 donde&nbsp;ya no se observaron (75). En isquemia de tres horas con reperfusi&oacute;n&nbsp;de 24 y 32 d&iacute;as, se observ&oacute; en el extensor radial longo del carpo de&nbsp;ratas Wistar, n&uacute;cleos centrales y recuperaci&oacute;n parcial del &aacute;rea que&nbsp;ocup&oacute; la matriz extracelular intramuscular, la cual present&oacute; aumentos&nbsp;importantes en per&iacute;odos previos como una hora y ocho d&iacute;as (76).&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana">Finalmente, la fibrosis es una consecuencia relacionada con la&nbsp;severidad de lesi&oacute;n; factores como el de crecimiento transformante &beta;1&nbsp;(TGF &beta;1) y el interfer&oacute;n gamma (IFN-D ), mediadores de fibrosis, se&nbsp;encuentran elevados frente a isquemia de dos horas con reperfusi&oacute;n de&nbsp;ocho horas y sus niveles se reducen tres d&iacute;as despu&eacute;s; por el contrario,&nbsp;en el caso de contusi&oacute;n asociada, en el que el grado de lesi&oacute;n tiende a&nbsp;ser mayor, las concentraciones de ambos factores son mayores en los&nbsp;siguientes tres d&iacute;as. v</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">En tinciones espec&iacute;ficas para el tejido conectivo como Sirius red y con t&eacute;cnicas de inmunohistoqu&iacute;mica, al ser aplicadas en las muestras&nbsp;obtenidas a los 21 d&iacute;as despu&eacute;s de la lesi&oacute;n, se observa aumento en el&nbsp;dep&oacute;sito de col&aacute;geno tipo I, el cual es indicador de respuesta fibr&oacute;tica,&nbsp;asociado a destrucci&oacute;n de las fibras musculares (44). A mayor grado&nbsp;de lesi&oacute;n, los procesos de regeneraci&oacute;n se ven afectados negativamente&nbsp;en lo cual influye el estr&eacute;s oxidativo que se presenta concomitante a los&nbsp;procesos de inflamaci&oacute;n aguda (77,78). En la reparaci&oacute;n de hombro,&nbsp;Mazzoca et. al, (79) lograron aislar y cultivar c&eacute;lulas precursoras de&nbsp;tejido conectivo, que si bien se asocian a una mejor cicatrizaci&oacute;n del&nbsp;&aacute;rea operada, siendo este el eje central del estudio, pueden conllevar&nbsp;a un aumento en los fibroblastos y en la proporci&oacute;n de este tejido&nbsp;en la regi&oacute;n intervenida. La rigidez y la limitaci&oacute;n en la movilidad&nbsp;secundarias a artrofibrosis post artrosc&oacute;picas, han sido descritas como&nbsp;complicaciones de las artroscopias (80) y este corresponde a uno de&nbsp;los factores por los cuales la recuperaci&oacute;n del tejido muscular puede&nbsp;no ser completa, sin embargo, un buen proceso de rehabilitaci&oacute;n&nbsp;posterior a la cirug&iacute;a y un seguimiento cercano a cada caso puede&nbsp;tener un papel importante en la prevenci&oacute;n de ambos aspectos (81).</font></p> <font size="3" face="verdana"><a name="bookmark9"></a><b>Conclusiones</b></font>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">El movimiento muscular, la transmisi&oacute;n de fuerza y la conservaci&oacute;n de la estructura del tejido muscular estriado esquel&eacute;tico requieren&nbsp;de una estrecha relaci&oacute;n con el tejido conectivo, su irrigaci&oacute;n e&nbsp;inervaci&oacute;n, factores que influyen en la recuperaci&oacute;n durante la&nbsp;reperfusi&oacute;n seguida de periodos cortos o prolongados de isquemia,&nbsp;en especial, si se presenta un aumento en la proporci&oacute;n del conectivo,&nbsp;lo que conlleva a fibrosis y limitaci&oacute;n funcional moderada.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La artrofibrosis es una de las complicaciones que debe tenerse en cuenta durante el postquir&uacute;rgico mediato y prolongado, as&iacute; como al&nbsp;implementar los ejercicios de rehabilitaci&oacute;n, puesto que la evidencia&nbsp;muestra que existe un riesgo de que a lo largo de la reperfusi&oacute;n no se&nbsp;llegue al patr&oacute;n histol&oacute;gico y funcional normal de la regi&oacute;n afectada.</font></p> <font size="3" face="verdana"><a name="bookmark10"></a><b>Recomendaciones</b></font>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Futuras investigaciones requieren la caracterizaci&oacute;n de la matriz extracelular intramuscular a lo largo de la reperfusi&oacute;n, teniendo en&nbsp;cuenta periodos prolongados frente a periodos cortos de isquemia&nbsp;hasta tres horas.</font></p> <font size="3" face="verdana"><a name="bookmark11"></a><b>Agradecimientos</b></font>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Los autores agradecen a la Secci&oacute;n de Histolog&iacute;a del Departamento de Morfolog&iacute;a de la Universidad del Valle, y a las profesionales del&nbsp;Laboratorio de Histolog&iacute;a por su disposici&oacute;n y colaboraci&oacute;n en la&nbsp;realizaci&oacute;n de este art&iacute;culo.</font></p> <font size="3" face="verdana"><b><a name="bookmark12"></a>Conflicto de intereses</b></font>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Los autores declaran no tener conflicto de intereses en la realizaci&oacute;n de este art&iacute;culo.</font></p> <font size="3" face="verdana"><a name="bookmark13"></a><b>Referencias</b></font>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">1. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Buckingham M, Montarras D. Skeletal muscle stem cells. Curr&nbsp;Opin Genet Dev. 2008;18(4):330-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0122-0667201500020001200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">2. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Fong AP, Tapscott SJ. Skeletal muscle programming and reprogramming. Curr Opin Genet Dev. 2013;23(5):568-73.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0122-0667201500020001200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">3. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Lo KW, Jiang T, Gagnon KA, Nelson C, Laurencin CT. Small-molecule based musculoskeletal regenerative engineering.&nbsp;Trends Biotechnol. 2014;32(2):74-81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0122-0667201500020001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">4. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Cossu G, Biressi S. Satellite cells, myoblasts and other occasional&nbsp;myogenic progenitors: possible origin, phenotypic features and&nbsp;role in muscle regeneration. Semin Cell Dev Biol. 2005;16(4-5):623-31.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0122-0667201500020001200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">5. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Buckingham M, Bajard L, Chang T, Daubas P, Hadchouel J,&nbsp;Meilhac S, et al. The formation of skeletal muscle: from somite&nbsp;to limb. J Anat. 2003;202(1):59-68.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0122-0667201500020001200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">6. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Purslow PP. Muscle fascia and force transmission. J Bodyw Mov&nbsp;Ther. 2010;14(4):411-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0122-0667201500020001200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">7. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Zammit PS, Partridge TA, Yablonka-Reuveni Z. The skeletal&nbsp;muscle satellite cell: the stem cell that came in from the cold. J&nbsp;Histochem Cytochem. 2006;54(11):1177-91.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0122-0667201500020001200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">8. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Gao Y, Kostrominova TY, Faulkner JA, Wineman AS. Age-related changes in the mechanical properties of the epimysium&nbsp;in skeletal muscles of rats. J Biomech. 2008;41(2):465-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0122-0667201500020001200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">9. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Fang SH, Nishimura T, Takahashi K. Relationship between&nbsp;development of intramuscular connective tissue and toughness&nbsp;of pork during growth of pigs. J Anim Sci. 1999;77(1):120-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0122-0667201500020001200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">10. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Turrina A, Mart&iacute;nez-Gonz&aacute;lez MA, Stecco C. The muscular&nbsp;force transmission system: role of the intramuscular connective&nbsp;tissue. J Bodyw Mov Ther. 2013;17(1):95-102.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0122-0667201500020001200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">11. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Elashry MI, Collins-Hooper H, Vaiyapuri S, Patel K.&nbsp;Characterisation of connective tissue from the hypertrophic&nbsp;skeletal muscle of myostatin null mice. J Anat. 2012;220(6):603-11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0122-0667201500020001200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">12. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Heinemeier KM, Mackey AL, Doessing S, Hansen M, Bayer ML,&nbsp;Nielsen RH, et al. GH/IGF-I axis and matrix adaptation of the&nbsp;musculotendinous tissue to exercise in humans. Scandinavian&nbsp;Journal of Medicine &amp; Science in Sports. 2012;22(4):e1-e7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0122-0667201500020001200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">13. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Koskinen SO, Wang W, Ahtikoski AM, Kjaer M, Han XY,&nbsp;Komulainen J, et al. Acute exercise induced changes in rat&nbsp;skeletal muscle mRNAs and proteins regulating type IV&nbsp;collagen content. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol.&nbsp;2001;280(5):R1292-300.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0122-0667201500020001200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">14. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Kjaer M. Role of extracellular matrix in adaptation of tendon&nbsp;and skeletal muscle to mechanical loading. Physiol Rev.&nbsp;2004;84(2):649-98.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0122-0667201500020001200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">15. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Laing N, et al. Molecular diagnosis of Duchenne muscular&nbsp;dystrophy: past, present and future in relation to implementing&nbsp;therapies. Clin Biochem Rev. 2011;32:129-34.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0122-0667201500020001200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">16. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Alexander M, Casar J, Motohashi N, Myers J, Eisenberg&nbsp;I, Gonzalez R, Estrella E, Kang P, Kawahara G, Kunkel L.&nbsp;Regulation of DMD pathology by an ankyrin-encoded miRNA.&nbsp;Skeletal muscle Journal. 2011;1(27):1-17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0122-0667201500020001200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">17. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Wu H, Xiong W, Mei Lin. To build a synapse: signaling&nbsp;pathways in neuromuscular junction assembly. Development.&nbsp;2010;137:1017-33.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0122-0667201500020001200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">18. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Wilson MH, Deschenes M. R. The neuromuscular junction:&nbsp;anatomical features and adaptations to various forms of&nbsp;increased, or decreased neuromuscular activity. Intern J&nbsp;Neuroscience. 2005;115:803-28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0122-0667201500020001200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">19. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Wicke W, Wasicky R, Brugger PC, Kaminski S, Lukas JR.&nbsp;Histochemical and immunohistochemical study on muscle&nbsp;fibers in human extraocular muscle spindles. Exp Eye Res.&nbsp;2007;84(4):670-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0122-0667201500020001200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">20. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Treffort N, Picquet F, Petit J, Falempin M. The structure and&nbsp;response properties of Golgi tendon organs in control and&nbsp;hypodynamia-hypokinesia rats. Exp Neurol. 2005;195(2):313-21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0122-0667201500020001200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">21. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Murakami S, Fujino H, Takeda I, Momota R, Kumagishi K,&nbsp;Ohtsuka A. comparison of capillary architecture between&nbsp;slow and fast muscles in rats using a confocal laser scanning&nbsp;microscope. Acta Med Okayama. 2010;64(1):11-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0122-0667201500020001200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">22. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Poole D, Barstow T, Mc Donough P, Jones A. control of oxygen&nbsp;uptake during exercise. Med Sci Sports Exerc. 2008;40(3):462-74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0122-0667201500020001200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">23. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Rosero-Salazar DH, Salazar-Monsalve L, Tovar-S&aacute;nchez MA.&nbsp;Histoqu&iacute;mica enzim&aacute;tica en el diagn&oacute;stico de miopat&iacute;as:&nbsp;revisi&oacute;n sistem&aacute;tica. Medicina &amp; Laboratorio. 2015;20(9-10):467-88.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0122-0667201500020001200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">24. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Sanes JR. The basement membrane/basal lamina of skeletal&nbsp;muscle. J Biol Chem. 2003;278(15):12601-4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0122-0667201500020001200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">25. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Morgan JE, Partridge TA. Muscle satellite cells. Int J Biochem&nbsp;Cell Biol. 2003;35(8):1151-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0122-0667201500020001200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">26. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Fano G, Di Tano G, Parabita M, Beltramin A, Mariggi&ocirc; MA.&nbsp;Stem cells in adult skeletal muscle tissue: more than a working&nbsp;hypothesis. Basic Appl Myol. 2004;14(1):13-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0122-0667201500020001200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">27. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Holterman CE, Rudnicki MA. Molecular regulation of satellite&nbsp;cell function. Semin Cell Dev Biol. 2005;16(4-5):575-84.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0122-0667201500020001200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">28. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Kaisto T. Special features of vesicle trafficking in skeletal muscle&nbsp;cells. Finland: University of Oulu; 2003.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0122-0667201500020001200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">29. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Edwards J, Cully T, Shannon T, Stephenson G, Launikonis B.&nbsp;Longitudinal and transversal propagation of excitation along the&nbsp;tubular system of rat fast-twitch muscle fibres studied by high&nbsp;speed confocal microscopy. J Physiol. 2012;590(3):475-91.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0122-0667201500020001200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">30. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Al-Qusairi L, Weiss N, Toussaint A, Berbey C, Messaddeq N,&nbsp;Kretz C, Sanoudou D, Beggs A. H, Allard B, Mandel JL, Laporte&nbsp;J, Jacquemond V, Buj-Bello A. T-tubule disorganization and&nbsp;defective excitation-contraction coupling in muscle fibers&nbsp;lacking myotubularin lipid phosphatase. Proc Natl Acad Sci U S&nbsp;A. 2009;106(44):18763-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0122-0667201500020001200030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">31. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Reyes-Ju&aacute;rez JL, Zarain-Herzberg &Aacute;. Funci&oacute;n del ret&iacute;culo&nbsp;sarcopl&aacute;smico y su papel en las enfermedades card&iacute;acas. Arch&nbsp;Cardiol M&eacute;x. 2006;76(4):18-32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0122-0667201500020001200031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">32. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Takekura H, Tamaki H, Nishizawa T, Kasuga N. Plasticity of&nbsp;the transverse tubules following denervation and subsequent&nbsp;reinnervation in rat slow and fast muscle fibres. J Muscle Res&nbsp;Cell Motil. 2003;24(7):439-51.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S0122-0667201500020001200032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">33. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Al-Qusairi L, Laporte, J. T-tubule biogenesis and triad formation&nbsp;in skeletal muscle and implication in human diseases. Skeletal&nbsp;muscle Journal. 2011;1(26):2-11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000154&pid=S0122-0667201500020001200033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">34. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Hallerdei J, Scheibe RJ, Parkkila S, Waheed A, Sly WS, Gros&nbsp;G, Wetzel P, Endeward V. T tubules and surface membranes&nbsp;provide equally effective pathways of carbonic anhydrase-facilitated lactic acid transport in skeletal muscle. PLoS One.&nbsp;2010;5(12):e15137.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000156&pid=S0122-0667201500020001200034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">35. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Gueguen N, Lefaucheur L, Fillaut M, Herpin P. Muscle fiber&nbsp;contractile type influences the regulation of mitochondrial&nbsp;function. Mol Cell Biochem. 2005;276(1-2):15-20.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000158&pid=S0122-0667201500020001200035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">36. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Gueguen N, Lefaucheur L, Ecolan P, Fillaut M, Herpin P Ca2+-activated myosin-ATPases, creatine and adenylate kinases&nbsp;regulate mitochondrial function according to myofibre type in&nbsp;rabbit. J Physiol. 2005;564(Pt 3):723-35.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000160&pid=S0122-0667201500020001200036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">37. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Sivitz WI, Yorek MA. Mitochondrial dysfunction in diabetes:&nbsp;from molecular mechanisms to functional significance&nbsp;and therapeutic opportunities. Antioxid Redox Signal.&nbsp;2010;12(4):537-77.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000162&pid=S0122-0667201500020001200037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">38. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Walters TJ, Kragh JF, Baer DG. Influence of fiber-type&nbsp;composition on recovery from tourniquet-induced skeletal&nbsp;muscle ischemia-reperfusion injury. Appl Physiol Nutr Metab.&nbsp;2008;33(2):272-81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000164&pid=S0122-0667201500020001200038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">39. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Racz IB, Illy&eacute;s G, Sarkadi L, Hamar J. The functional and&nbsp;morphological damage of ischemic reperfused skeletal muscle.&nbsp;Eur Surg Res. 1997;29(4):254-63.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000166&pid=S0122-0667201500020001200039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">40. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Carmo-Araujo EM, Dal-Pai-Silva M, Dal-Pai V, Cecchini R,&nbsp;Anjos Ferreira AL. Ischaemia and reperfusion effects on skeletal&nbsp;muscle tissue: morphological and histochemical studies. Int J&nbsp;Exp Pathol. 2007;88(3):147-54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000168&pid=S0122-0667201500020001200040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">41. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Carvalho AJ, McKee NH, Green HJ. Metabolic and contractile&nbsp;responses of fast and slow twitch rat skeletal muscles to ischemia&nbsp;and reperfusion. Plast Reconstr Surg. 1997;99(1):163-71.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000170&pid=S0122-0667201500020001200041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">42. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Da Silveira M, Bonneti W Ischemia and reperfusion in skeletal&nbsp;muscle: injury mechanisms and treatment perspectives. J Vasc&nbsp;Br. 2004;3(4):367-78.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000172&pid=S0122-0667201500020001200042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">43. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Saltzman DJ, Kerger H, Jimenez JC, Farzan D, Wilson JM,&nbsp;Thompson JE, et al. Microvascular changes following four-hour&nbsp;single arteriole occlusion. Microsurgery. 2013;33(3):207-15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000174&pid=S0122-0667201500020001200043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">44. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Ghaly A, Marsh DR. Ischaemia-reperfusion modulates&nbsp;inflammation and fibrosis of skeletal muscle after contusion&nbsp;injury. Int J Exp Pathol. 2010;91(3):244-55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000176&pid=S0122-0667201500020001200044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">45. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Ma A, Qi S, Chen H. Antioxidant therapy for prevention of&nbsp;inflammation, ischemic reperfusion injuries and allograft&nbsp;rejection. Cardiovasc Hematol Agents Med Chem. 2008;6(1):20-43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000178&pid=S0122-0667201500020001200045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">46. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Carden DL, Granger DN. Pathophysiology of ischaemia-reperfusion injury. J Pathol. 2000;190(3):255-66.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000180&pid=S0122-0667201500020001200046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">47. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Loerakker S, Manders E, Strijkers GJ, Nicolay K, Baaijens FP,&nbsp;Bader DL, et al. The effects of deformation, ischemia, and&nbsp;reperfusion on the development of muscle damage during&nbsp;prolonged loading. J Appl Physiol (1985). 2011;111(4):1168-77.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000182&pid=S0122-0667201500020001200047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">48. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Saclier M, Cuvellier S, Magnan M, Mounier R, Chazaud B.&nbsp;Monocyte/macrophage interactions with myogenic precursor&nbsp;cells during skeletal muscle regeneration. FEBS J. 2013;&nbsp;280(17):4118-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000184&pid=S0122-0667201500020001200048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">49. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Brunelli S, Rovere-Querini P The immune system and the repair&nbsp;of skeletal muscle. Pharmacol Res. 2008;58(2):117-21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000186&pid=S0122-0667201500020001200049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">50. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Blaisdell FW The pathophysiology of skeletal muscle ischemia&nbsp;and the reperfusion syndrome: a review. Cardiovasc Surg.&nbsp;2002;10(6):620-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000188&pid=S0122-0667201500020001200050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">51. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Carvalho AJ, McKee NH, Green HJ. Metabolic and contractile&nbsp;responses of fast- and slow-twitch rat skeletal muscles to&nbsp;ischemia. Can J Physiol Pharmacol. 1996;74(12):1333-41.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000190&pid=S0122-0667201500020001200051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">52. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Hocker AD, Boileau RM, Lantz BA, Jewett BA, Gilbert JS,&nbsp;Dreyer HC. Endoplasmic Reticulum Stress Activation during&nbsp;Total Knee Arthroplasty. Physiol Rep. 2013;1(3):e00052.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000192&pid=S0122-0667201500020001200052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">53. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Deldicque L, Hespel P, Francaux M. Endoplasmic reticulum&nbsp;stress in skeletal muscle: origin and metabolic consequences.&nbsp;Exerc Sport Sci Rev. 2012;40(1):43-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000194&pid=S0122-0667201500020001200053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">54. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Korth U, Merkel G, Fernandez FF, Jandewerth O, Dogan G,&nbsp;Koch T, et al. Tourniquet-induced changes of energy metabolism&nbsp;in human skeletal muscle monitored by microdialysis.&nbsp;Anesthesiology. 2000;93(6):1407-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000196&pid=S0122-0667201500020001200054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">55. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Mense S. Algesic agents exciting muscle nociceptors. Exp Brain&nbsp;Res. 2009;196(1):89-100.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000198&pid=S0122-0667201500020001200055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">56. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Wiendl H, Hohlfeld R, Kieseier BC. Immunobiology of muscle: &nbsp;&nbsp;&nbsp;advances in understanding an immunological microenvironment. Trends Immunol. 2005;26(7):373-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000200&pid=S0122-0667201500020001200056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">57. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Dragu A, Schn&uuml;rer S, Surmann-Schmitt C, von der Mark K,&nbsp;St&uuml;rzl M, Unglaub F, et al. Gene expression analysis of ischaemia&nbsp;and reperfusion in human microsurgical free muscle tissue&nbsp;transfer. J Cell Mol Med. 2011;15(4):983-93.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000202&pid=S0122-0667201500020001200057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">58. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Chondrogianni N, Petropoulos I, Grimm S, Georgila K, Catalgol&nbsp;B, Friguet B, et al. Protein damage, repair and proteolysis. Mol&nbsp;Aspects Med. 2014;35:1-71.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000204&pid=S0122-0667201500020001200058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">59. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Mars M, Gregory MA. A histometric analysis of skeletal&nbsp;myofibers following 90 min of tourniquet ischemia and&nbsp;reperfusion. J Surg Res. 1991;50(2):191-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000206&pid=S0122-0667201500020001200059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">60. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Chan RK, Austen WG, Ibrahim S, Ding GY, Verna N, Hechtman&nbsp;HB, et al. Reperfusion injury to skeletal muscle affects primarily&nbsp;type II muscle fibers. J Surg Res. 2004;122(1):54-60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000208&pid=S0122-0667201500020001200060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">61. &nbsp;&nbsp;&nbsp;K&uuml;&ccedil;&uuml;ker I, Tuncer S, Sencan A, Bircan F, Caglar E, Elmas C, et al.&nbsp;The effect of surgical and chemical denervation on ischaemia/&nbsp;reperfusion injury of skeletal muscle. J Plast Reconstr Aesthet&nbsp;Surg. 2012;65(2):240-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000210&pid=S0122-0667201500020001200061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">62. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Alameddine HS. Matrix metalloproteinases in skeletal muscles:&nbsp;friends or foes? Neurobiol Dis. 2012;48(3):508-18.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000212&pid=S0122-0667201500020001200062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">63. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Scianna M, Bell CG, Preziosi L. A review of mathematical&nbsp;models for the formation of vascular networks. J Theor Biol.&nbsp;2013;333:174-209.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000214&pid=S0122-0667201500020001200063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">64. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Zammit P, Beauchamp J. The skeletal muscle satellite cell: stem&nbsp;cell or son of stem cell? Differentiation. 2001;68:193-204.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000216&pid=S0122-0667201500020001200064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">65. &nbsp;&nbsp;&nbsp;von Degenfeld G, Banfi A, Springer ML, Blau HM. Myoblastmediated gene transfer for therapeutic angiogenesis and&nbsp;arteriogenesis. Br J Pharmacol. 2003;140(4):620-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000218&pid=S0122-0667201500020001200065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">66. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Morgan JE, Partridge T. A. Muscle satellite cells. The International&nbsp;Journal of Biochemistry &amp; Cell Biology. 2003;35:1151-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000220&pid=S0122-0667201500020001200066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">67. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Scharner J, and Zammit P. The muscle satellite cell at 50: the&nbsp;formative years. Skeletal muscle Journal. 2011;1(28):1-13.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000222&pid=S0122-0667201500020001200067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">68. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Camillo AC, Rocha ReC, Chopard RP. Structural and&nbsp;microvascular study of soleous muscle ofWistar rats after section&nbsp;of the sciatic nerve. Arq Neuropsiquiatr. 2004;62(3B):835-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000224&pid=S0122-0667201500020001200068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">69. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Sassoli C, Nosi D, Tani A, Chellini F, Mazzanti B, Quercioli F,&nbsp;et al. Defining the role of mesenchymal stromal cells on the&nbsp;regulation of matrix metalloproteinases in skeletal muscle cells.&nbsp;Experimental Cell Research. 2014;323(2):297-313.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000226&pid=S0122-0667201500020001200069&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">70. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Murphy MM, Lawson JA, Mathew SJ, Hutcheson DA, Kardon&nbsp;G. Satellite cells, connective tissue fibroblasts and their&nbsp;interactions are crucial for muscle regeneration. Development.&nbsp;2011;138(17):3625-37.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000228&pid=S0122-0667201500020001200070&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">71. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Woitaske MD, McCarter RJ. Effects of fiber type on ischemia-reperfusion injury in mouse skeletal muscle. Plast Reconstr&nbsp;Surg. 1998;102(6):2052-63.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000230&pid=S0122-0667201500020001200071&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">72. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Corona BT, Rathbone CR. Accelerated functional recovery&nbsp;after skeletal muscle ischemia-reperfusion injury using freshly&nbsp;isolated bone marrow cells. J Surg Res. 2014;188(1):100-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000232&pid=S0122-0667201500020001200072&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">73. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Cutlip RG, Baker BA, Hollander M, Ensey J. Injury and adaptive&nbsp;mechanisms in skeletal muscle. 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Biotechnol Bioeng. 2012;109(4):1051-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000236&pid=S0122-0667201500020001200074&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">75. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Itoh M, Kudoh Y. Morphologic changes in rat skeletal muscle&nbsp;after anterior tibial muscle and artery ligation2011; 8: &#91;56-63&nbsp;pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000238&pid=S0122-0667201500020001200075&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->&#93;.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">76. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Rosero Salazar DH, Salazar Monsalve L. Digital image analysis&nbsp;of striated skeletal muscle tissue injury during reperfusion after&nbsp;induced ischemia. Proc. of SPIE. 2015. 9287:1-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000240&pid=S0122-0667201500020001200076&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">77. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Kjaer M. Role of extracellular matrix in adaptation of tendon&nbsp;and skeletal muscle to mechanical loading. Physiol Rev.&nbsp;2004;84:649-98.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000242&pid=S0122-0667201500020001200077&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">78. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Fang SH, Nishimura T, Takahashi K. Relationship between&nbsp;development of intramuscular connective tissue and toughness&nbsp;of pork during growth of pigs. J Anim Sci. 1999;77:120-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000244&pid=S0122-0667201500020001200078&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">79. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Mazzocca AD, McCarthy MB, Chowaniec DM, Cote MP,&nbsp;Arciero RA, Drissi H. Rapid isolation of human stem cells&nbsp;(connective tissue progenitor cells) from the proximal humerus&nbsp;during arthroscopic rotator cuff surgery. Am J Sports Med.&nbsp;2010;38(7):1438-47.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000246&pid=S0122-0667201500020001200079&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">80. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Oro AB, Gigante F, Lapera M. Artrolisis artroscopica en el&nbsp;reemplazo total de rodilla.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000248&pid=S0122-0667201500020001200080&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">81. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Vaquero J, Vidal C, Medina E, Baena J. Arthroscopic lysis in&nbsp;knee arthrofibrosis. Arthroscopy. 1993;9(6):691-4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000250&pid=S0122-0667201500020001200081&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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