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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[BIODEGRADACIÓN OXIGÉNICA DE BTX EN MATRICES ACUOSAS: EVALUACIÓN DE PARÁMETROS OPERACIONALES]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Selected native aerobic strains able to grow in the presence of volatile aromatics compounds in aqueous matrices were isolated and identified at the Biotechnology laboratory of the Instituto Colombiano del Petróleo ICP. These strains were obtained from water and soil samples contaminated with benzene, toluene and xylenes isomers (BTX), these consortia was capable of reducing BTX concentrations to acceptable international environmental standards. Operational parameters such as temperature, BTX initial concentration, dissolved oxygen (DO) and nutrient content, were evaluated, as they relate to removal rate of BTX in batch systems. These operational conditions will be used to determine the kinetics of removal and the parameters required for the scale-up pilot to plant and industrial size reactors. Operational conditions for the aqueous matrices included saturation of oxygen, temperature (305 K) and pH (6,5) control in an hermetic bioreactor. BTX total concentrations were reduced from 1 70 g·m-3 to 0,3 g·m-3 in less than ten (10) hours with a maximum removal rate of 26,27 g·m-3·h-1 . The removal rate was reduced to 0,745 g·m-3·h-1 for initial BTX concentrations of 5 g·m-3. Benzene showed the highest removal rate (1 5,80 g·m-3·h-1) followed by toluene (6,41 g·m-3·h-1 ). Xylene isomers exhibit the lowest biodegradation rates, ranging from 1,80 g·m-3·h-1 for the o-xylene to 0,85 g·m-3·h-1 forthe p-xylene.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana" size="2">      <p align="center"><font size="4"><b>BIODEGRADACI&Oacute;N OXIG&Eacute;NICA DE BTX EN MATRICES ACUOSAS: EVALUACI&Oacute;N DE PAR&Aacute;METROS OPERACIONALES</b></font></p>     <p>    <center>A. L. MORA<sup>*1</sup>, M. C. VARGAS<sup>*1</sup>, F. DUGARTE<sup>1</sup> y N. E. RAM&Iacute;REZ<sup>1</sup></center></p>     <p>    <center><sup>1</sup>Ecopetrol - Instituto Colombiano  del   Petr&oacute;leo, A.A. 4185   Bucaramanga, Santander, Colombia</center></p>     <p>    <center>e-mail: <a href="mailto:mcvargas@ecopetrol.com.co">mcvargas@ecopetrol.com.co</a> </center></p>     <p>    <center><sup>*</sup><i>A quien debe ser enviada la correspondencia </i></center></p> <hr>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p>En el laboratorio de Biotecnolog&iacute;a del Instituto Colombiano del Petr&oacute;leo (ICP) fueron aisladas y seleccionadas bacterias oxig&eacute;nicas nativas de muestras de aguas y suelos, contaminados con compuestos arom&aacute;ticos vol&aacute;tiles como benceno, tolueno e is&oacute;meros dexilenos (BTX). Un estudio preliminar permiti&oacute; identificar un grupo o consorcio microbiano capaz de biodegradar estos compuestos en matrices acuosas. En el presente estudio se evaluaron par&aacute;metros operacionales tales como ox&iacute;geno disuelto (OD), concentraci&oacute;n de BTX y nutrientes, y su influencia en la cin&eacute;tica de remoci&oacute;n en un sistema tipo <i>batch, </i>operado a escala de laboratorio. Estas condiciones operacionales ser&aacute;n usadas para determinar la cin&eacute;tica de remoci&oacute;n y los par&aacute;metros requeridos para la planta a escala piloto y reactores industriales. El proceso aplicado a matrices acuosas en un reactor totalmente herm&eacute;tico, saturado con ox&iacute;geno gaseoso y operado a pH 6,5 y 306 K, permiti&oacute; disminuir la carga contaminante desde 1 70 g&middot;m<sup>-3</sup> hasta concentraciones inferiores a los 0,3 g&middot;m<sup>-3</sup>, en 10 horas con una velocidad m&aacute;xima de remoci&oacute;n de 26,27 g&middot;m<sup>-3</sup>&middot;h<sup>-1</sup>. Sin embargo, cuando la carga contaminante disminuy&oacute; a concentraciones menores a los 5 g&middot;m<sup>-3</sup>, la velocidad m&aacute;xima s&oacute;lo alcanz&oacute; un valor de 0,745 g&middot;m<sup>-3</sup>&middot;h<sup>-1</sup>. En el sistema evaluado, el benceno present&oacute; la m&aacute;xima velocidad de remoci&oacute;n (15,80 g&middot;m<sup>-3</sup>&middot;h<sup>-1</sup>), seguido del tolueno (6,41 g&middot;m<sup>-3</sup>&middot;h<sup>-1</sup>). Los x&iacute;le&ntilde;os mostraron velocidades de degradaci&oacute;n m&aacute;s bajas, con valores m&aacute;ximos de 1,80 g&middot;m<sup>-3</sup>&middot;h<sup>-1</sup>, para o- y m- x&iacute;le&ntilde;os, y de 0,85 g&middot;m<sup>-3</sup>&middot;h<sup>-1</sup> para el p-xileno.</p>     <p><b><i>Palabras clave</i></b>: <i>BTX, biodegradaci&oacute;n, aer&oacute;bico, consorcio.</i> <hr>      <p><font size="3"><b>ABSTRACTT</b></font></p>     <p>Selected native aerobic strains able to grow in the presence of volatile aromatics compounds in aqueous matrices were isolated and identified at the Biotechnology laboratory of the Instituto Colombiano del Petr&oacute;leo ICP. These strains were obtained from water and soil samples contaminated with benzene, toluene and xylenes isomers (BTX), these consortia was capable of reducing BTX concentrations to acceptable international environmental standards. Operational parameters such as temperature, BTX initial concentration, dissolved oxygen (DO) and nutrient content, were evaluated, as they relate to removal rate of BTX in batch systems. These operational conditions will be used to determine the kinetics of removal and the parameters required for the scale-up pilot to plant and industrial size reactors. Operational conditions for the aqueous matrices included saturation of oxygen, temperature (305 K) and pH (6,5) control in an hermetic bioreactor. BTX total concentrations were reduced from 1 70 g&middot;m<sup>-3</sup> to 0,3 g&middot;m<sup>-3</sup> in less than ten (10) hours with a maximum removal rate of 26,27 g&middot;m<sup>-3</sup>&middot;h<sup>-1</sup> . The removal rate was reduced to 0,745 g&middot;m<sup>-3</sup>&middot;h<sup>-1</sup> for initial BTX concentrations of 5 g&middot;m<sup>-3</sup>. Benzene showed the highest removal rate (1 5,80 g&middot;m<sup>-3</sup>&middot;h<sup>-1</sup>) followed by toluene (6,41 g&middot;m<sup>-3</sup>&middot;h<sup>-1</sup> ). Xylene isomers exhibit the lowest biodegradation rates, ranging from 1,80  g&middot;m<sup>-3</sup>&middot;h<sup>-1</sup> for the o-xylene to 0,85 g&middot;m<sup>-3</sup>&middot;h<sup>-1</sup> forthe p-xylene.</p>     <p><b><i>Keywords</i></b>: <i>BTX, biodegradation, aerobic, consortium</i>.</p> <hr>      <p><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p>Los hidrocarburos arom&aacute;ticos vol&aacute;tiles: benceno, tolueno, etilbenceno e is&oacute;meros del xileno, com&uacute;nmente conocidos como BTX, se liberan a la atm&oacute;sfera, aguas y suelos como productos de procesos qu&iacute;micos e industriales, constituyendo una gran fracci&oacute;n de la mezcla de residuos org&aacute;nicos que contaminan el ambiente (Grifoll <i>et al</i>., 1995). Estos compuestos se movilizan f&aacute;cilmente en cuerpos de agua, especialmente por la relativa alta solubilidad del benceno (1,750 g&middot;m<sup>-3</sup>) y del tolueno (525 g&middot;m<sup>-3</sup>), consider&aacute;ndose de alto impacto ambiental (Bowlen and Kosson 1995). Adicionalmente, por sus propiedades qu&iacute;micas, los BTX son cancer&iacute;genos y mutag&eacute;nicos, a&uacute;n en muy bajas concentraciones, por lo cual la Agencia de Protecci&oacute;n Ambiental de EUA "Environmental Protection Agency EPA" los ha clasificado dentro del grupo de los hidrocarburos altamente t&oacute;xicos (Chen <i>et al</i>., 1995).</p>     <p>Los m&eacute;todos de tratamiento m&aacute;s utilizados para la eliminaci&oacute;n de BTX presentes en matrices acuosas comprenden procesos f&iacute;sicos y qu&iacute;micos, entre los que se tienen las t&eacute;cnicas conocidas como como air stripping o venting y peroxidaci&oacute;n con per&oacute;xido de hidr&oacute;geno. En el primer caso existen problemas ambientales asociados con la volatilizaci&oacute;n de los t&oacute;xicos y su respectiva emisi&oacute;n a la atm&oacute;sfera. Con el tratamiento qu&iacute;mico pueden presentarse limitaciones en caso de una r&aacute;pida descomposici&oacute;n del per&oacute;xido y/o precipitaci&oacute;n de metales pesados (Bowlenn <i>et al</i>., 1995).  Otras alternativas, como la incineraci&oacute;n o sorci&oacute;n mediante carb&oacute;n activado, son altamente costosas (Bowlen <i>et al</i>., 1995).</p>     <p>Por otra parte, se han estudiado los tratamientos biol&oacute;gicos, tanto oxig&eacute;nicos como anoxig&eacute;nicos, para la remediaci&oacute;n de suelos, lodos, aguas y aire contaminadas con BTX. Los procesos anaerobios son muy lentos y las reacciones de sulfatos y nitratos involucrados en el proceso inhiben la remoci&oacute;n de tolueno y m-, p- xilenos (Reinhard <i>et al</i>., 1997 ).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La degradaci&oacute;n microbiana oxig&eacute;nica aplicada a matrices acuosas presenta ventajas, tanto econ&oacute;micas como operacionales, sobre los procesos f&iacute;sicos y qu&iacute;micos (Irvine, 1995; Yocum <i>et al</i>., 1995). Para este tipo de tratamiento se ha reportado principalmente el uso de reactores con c&eacute;lulas inmovilizadas, con los cuales se logran remociones superiores al 99,9%. En estos sistemas las c&eacute;lulas microbianas est&aacute;n fuertemente influenciadas por factores f&iacute;sicos y qu&iacute;micos, tales como temperatura, ox&iacute;geno, nutrientes, salinidad, presi&oacute;n, pH y concentraci&oacute;n del contaminante.  De &eacute;stos depende que el sistema pueda producir una alta densidad celular, generando una biopel&iacute;cula <i>biofilme</i> que permita mantener biomasa tolerante a altas concentraciones del contaminante, y usar &eacute;sta como fuente disponible para la actividad biol&oacute;gica, proceso conocido como adaptabilidad de la poblaci&oacute;n microbiana, (Zhou and Crawford, 1995).</p>     <p>En el presente trabajo se evalu&oacute; el efecto de par&aacute;metros operacionales tales como nivel de ox&iacute;geno disuelto, temperatura y concentraci&oacute;n de nutrientes, en un sistema oxig&eacute;nico tipo <i>batch</i>, totalmente herm&eacute;tico, sobre la capacidad que presentan algunos microorganismos nativos para metabolizar BTX bajo condiciones aerobias. Tales microorganismos fueron aislados y seleccionados en el laboratorio de Biotecnolog&iacute;a del Instituto Colombiano del Petr&oacute;leo. Los resultados revelan que la cin&eacute;tica del proceso es funci&oacute;n directa de la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno disuelto en el medio y de la concentraci&oacute;n de contaminante en el medio, para el rango evaluado (40 - 170 g&middot;m<sup>-3</sup>).</p>     <p><font size="3"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p><b>Aislamiento y selecci&oacute;n de microorganismos</b></p>     <p>Los cultivos puros usados para la conformaci&oacute;n del consorcio bacteriano evaluado en este estudio fueron aislados a partir de aguas, suelos industriales contaminados con benceno, tolueno y xilenos, y muestras representativas de gasolinas. En tubos de 15&middot;10-<sup>6</sup> m<sup>3</sup> se adicion&oacute; una mezcla de agua contaminada (suelo contaminado o gasolina) y medio mineral en relaci&oacute;n de 1:9, disponiendo como &uacute;nica fuente de carbono y energ&iacute;a una mezcla de benceno, tolueno, o-xileno, m-xileno y p-xileno (BTX), en concentraciones de 50, 20 y 10 g&middot;m<sup>-3</sup>, respectivamente. Los tubos fueron sellados herm&eacute;ticamente con tefl&oacute;n y silicona, e incubados en rotor de tubos a 303 K por una semana, haciendo transferencia seriada hasta conseguir un desarrollo estable de crecimiento (Stetzenbach <i>et al</i>.,1986). Una vez alcanzado un buen crecimiento microbiano, dado por una densidad &oacute;ptica de 1,2, medida a 540 nM, se realiz&oacute; el aislamiento microbiano sobre placas de agar de medio basal de sales, solidificado con 2% de agar noble. A fin de lograr una &oacute;ptima selecci&oacute;n, las cajas fueron incubadas en c&aacute;mara de humo con soluci&oacute;n saturada de BTX a 303 K durante cinco d&iacute;as (Oh <i>et al</i>.,1994).</p>     <p>La identificaci&oacute;n de los microorganismos se hizo mediante coloraci&oacute;n de Gram y el sistema Biolog, basado en una bater&iacute;a de ensayos enzim&aacute;ticos que permite una identificaci&oacute;n tentativa del microorganismo. Los microorganismos aislados fueron identificados como <i>Pseudomonas cepacea</i> y <i>Pseudomonas putida</i> tipo A1.</p>     <p>En un estudio preliminar se determinaron las condiciones de operaci&oacute;n del reactor, las caracter&iacute;sticas del consorcio microbiano y la concentraci&oacute;n de adici&oacute;n a la soluci&oacute;n acuosa. Para este estudio se determinaron condiciones de pH &oacute;ptimo en el rango de 6,5 a 7,0 y, como medio mineral salino, una mezcla de sales constituida  por: 2,22&middot;103 g&middot;m<sup>-3</sup>de fosfato &aacute;cido de potasio (K2HPO4), 7,26&middot;103 g&middot;m<sup>-3</sup> de fosfato di&aacute;cido de potasio (KH2PO4), 3,96&middot;103 g&middot;m<sup>-3</sup> de sulfato de amonio [(NH<sub>4</sub>)<sub>2</sub> SO<sub>4</sub>], y 0,2&middot;103 g&middot;m<sup>-3</sup> de sulfato de magnesio heptahidratado (MgSO<sub>4</sub>&middot;7H<sub>2</sub>O), (Yocum <i>et al</i>., 1995, Vargas <i>et al</i>., 1997).</p>     <p><b>Reactor de Biodegradaci&oacute;n</b></p>     <p>El reactor de biodegradaci&oacute;n oxig&eacute;nica tipo <i>batch</i> empleado en el laboratorio se construy&oacute; con base en el dise&ntilde;o reportado por Lee <i>et al</i>. (1993). El biorreactor, con una capacidad de cinco litros, est&aacute; equipado con un medidor de ox&iacute;geno disuelto y v&aacute;lvulas (superiores y laterales) que facilitan la toma de muestras (acuosas y gaseosas).</p>     <p><b>Biodegradaci&oacute;n de BTX</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los ensayos de biodegradaci&oacute;n se realizaron a fin de determinar las condiciones &oacute;ptimas para el crecimiento y la actividad microbiana. En estos experimentos el proceso se evalu&oacute; a pH 6,5 bajo diferentes condiciones de ox&iacute;geno disuelto, nutrientes y temperatura, siguiendo el procedimiento general descrito a continuaci&oacute;n.</p>     <p>Un volumen de 2&middot;10<sup>-3</sup> m<sup>3</sup> de medio mineral modificado de sales de amonio, f&oacute;sforo y magnesio (Yocum <i>et al</i>., 1995) se adicion&oacute; al recipiente de 5&middot;10<sup>-3</sup> m<sup>3</sup> y el conjunto se someti&oacute; a esterilizaci&oacute;n. A continuaci&oacute;n el sistema de reacci&oacute;n se satur&oacute; con ox&iacute;geno (empleando ox&iacute;geno puro o aire libre de CO<sub>2</sub>) y se sell&oacute; herm&eacute;ticamente. Finalmente, a trav&eacute;s de las v&aacute;lvulas superiores, se contamin&oacute; el medio l&iacute;quido con una soluci&oacute;n de BTX y se adicion&oacute; el consorcio biodegradador a una concentraci&oacute;n del 10%, con un t&iacute;tulo microbiano de 10<sup>7</sup>. Los BTX se adicionaron como reactivos puros (a una concentraci&oacute;n variada, sujeta al tipo de experimento). El consorcio fue previamente centrifugado y resuspendido en un medio mineral modificado de sales de fosfato, amonio y magnesio. </p>     <p>Para cada experimento de biodegradaci&oacute;n se prepar&oacute; un control abi&oacute;tico en el cual el inoculo fue remplazado con el mismo volumen de medio basal est&eacute;ril. Todos los cultivos de biodegradaci&oacute;n y sus respectivos controles fueron preparados por duplicado.</p>     <p>El cambio en la concentraci&oacute;n de los monoarom&aacute;ticos a lo largo del proceso se determin&oacute; mediante la t&eacute;cnica instrumental Cromatograf&iacute;a de Gases (CG) empleando un detector de ionizaci&oacute;n en llama (FID). La cuantificaci&oacute;n de los BTX se realiz&oacute; mediante el m&eacute;todo est&aacute;ndar externo. Durante la experimentaci&oacute;n se monitorearon par&aacute;metros como absorbancia (<font face="Palatino Linotype">&lambda;</font> = 450 nm), unidades formadoras de colonia (UFC&middot;10<sup>-6</sup> m<sup>-3</sup>), pH, temperatura (T), ox&iacute;geno disuelto (OD) y concentraci&oacute;n de BTX.</p>     <p><b>Efecto de la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno</b></p>     <p>Para estudiar este par&aacute;metro, el proceso microbiano aplicado en matrices acuosas contaminadas con 60 g&middot;m<sup>-3</sup> BTX se evalu&oacute; de manera independiente, con ox&iacute;geno gaseoso y con aire libre de CO2. En ambos casos los gases se aplicaron hasta el punto de saturaci&oacute;n con una concentraci&oacute;n final de ox&iacute;geno en el medio l&iacute;quido igual a 40 g&middot;m<sup>-3</sup> y 8,08 g&middot;m<sup>-3</sup>, respectivamente. El ensayo se llev&oacute; a cabo empleando el medio Basal de Sales descrito anteriormente y a temperatura ambiente (296 K).</p>     <p><b>Efecto de la concentraci&oacute;n de nutrientes</b></p>     <p>Con el fin de optimizar la fuente nutricional en el medio de cultivo microbiano (matriz acuosa contaminada con 60 g&middot;m<sup>-3</sup> de BTX), el proceso de biodegradaci&oacute;n se estudi&oacute; variando la concentraci&oacute;n de las sales  de  amonio  [(Na)<sub>2</sub>SO<sub>4</sub>],  fosfato  (K<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub>  y KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub>) y magnesio (MgSO<sub>4</sub>&middot;7H<sub>2</sub>O). De esta forma se formularon y evaluaron tres medios, con diferentes niveles de concentraci&oacute;n salina.</p>     <p>Medio 1: 2,22&middot;10<sup>3</sup> g&middot;m<sup>-3</sup> de fosfato &aacute;cido de potasio (K<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub>), 7,26&middot;10<sup>3</sup> g&middot;m<sup>-3</sup> de fosfato di&aacute;cido de potasio (KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub>), 3,96&middot;10<sup>3</sup> g&middot;m<sup>-3</sup> de  sulfato  de  amonio [(NH<sub>4</sub>)<sub>2</sub>SO<sub>4</sub>] y 0,1&middot;10<sup>3</sup> g&middot;m<sup>-3</sup> de sulfato de magnesio heptahidratado (MgSO<sub>4</sub>&middot;7H<sub>2</sub>O), pH 7,0. Medio 2. 1,11&middot;10<sup>3</sup> g&middot;m<sup>-3</sup> de K<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub>, 3,63&middot;10<sup>3</sup> g&middot;m<sup>-3</sup> de KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub>, 1,98&middot;10<sup>3</sup> g&middot;m<sup>-3</sup>de (NH<sub>4</sub>)<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> y 100 g&middot;m<sup>-3</sup>  de MgSO<sub>4</sub>&middot;7H<sub>2</sub>O, pH 7,0. Medio 3. 750 g&middot;m<sup>-3</sup> de K<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub>, 250 g&middot;m<sup>-3</sup>  de KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub> y 600 g&middot;m<sup>-3</sup> de (NH<sub>4</sub>)<sub>2</sub>SO<sub>4</sub>, pH 7,0. Todos los ensayos se realizaron a temperatura ambiente (296 K &plusmn; 3) empleando matrices acuosas contaminadas con 60 g&middot;m<sup>-3</sup> de BTX y ox&iacute;geno gaseoso.</p>     <p><b>Efecto de la concentraci&oacute;n de contaminante sobre el proceso de biodegradaci&oacute;n</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Aplicando el procedimiento general de biodegradaci&oacute;n bajo las condiciones operacionales estandarizadas previamente (ox&iacute;geno gaseoso, medio mineral 2, 306 K), se evalu&oacute; el efecto de la carga contaminante sobre la actividad microbiana. El proceso se aplic&oacute; por separado a matrices acuosas contaminadas con concentraciones de BTX iguales a 40, 60, 100 y 170 g&middot;m<sup>-3</sup>.</p>     <p><b>Estudio estad&iacute;stico</b></p>     <p>El proceso de biodegradaci&oacute;n aer&oacute;bica, aplicado a matrices acuosas contaminadas con concentraciones cercanas a los 170 g&middot;m<sup>-3</sup> de BTX, fue evaluado por duplicado bajo condiciones &oacute;ptimas de operaci&oacute;n: 2 &middot;10<sup>-3</sup> m<sup>3</sup> del medio mineral 2, ox&iacute;geno gaseoso hasta el punto de saturaci&oacute;n (concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno disuelto en el medio igual a 40 g&middot;m<sup>-3</sup>), 306 K de temperatura y pH = 6,5.</p>     <p><b>Seguimiento anal&iacute;tico</b></p>     <p>La separaci&oacute;n de los vol&aacute;tiles desde la matriz acuosa se realiz&oacute; mediante extracci&oacute;n l&iacute;quido-l&iacute;quido, empleando n-hexano como solvente. El cambio en la concentraci&oacute;n de los monoarom&aacute;ticos a lo largo del proceso se determin&oacute; mediante cromatograf&iacute;a de gases (CG). Una peque&ntilde;a fracci&oacute;n (10 &mu;L) de los extractos org&aacute;nicos fue inyectada en un cromat&oacute;grafo de gases (CG) Hewlett Packard (HP) 5890A Serie II, equipado con un inyector split/splitless (523 K, relaci&oacute;n split 1:50), un detector de ionizaci&oacute;n en llama (FID) operado a 573 K y un sistema computarizado de datos (SCD).</p>     <p>Para la separaci&oacute;n de los vol&aacute;tiles se emple&oacute; una columna capilar de s&iacute;lica fundida con fase estacionaria apolar de fenilmetilsiloxano (Ultra 2, J&W Scientific, Folson, CA, USA), de 25 m x 0,2&middot;10<sup>-3</sup> m d.i. x 0,33 &mu;m de espesor de pel&iacute;cula interna. La temperatura del horno se program&oacute; desde 318 K (3 min) hasta 373 K (10 min), con una velocidad de calentamiento de 3&deg; min<sup>-1</sup>. Se us&oacute; helio como gas de arrastre con un flujo de 0,81&middot;10<sup>-6</sup> m<sup>3</sup>&middot;min<sup>-1</sup>. Los flujos de aire e hidr&oacute;geno fueron de 300 y 30&middot;10<sup>-6</sup> m<sup>3</sup>&middot;min<sup>-1</sup>, respectivamente. La cuantificaci&oacute;n de los BTX se realiz&oacute; mediante el m&eacute;todo de patr&oacute;n externo.</p>     <p><font size="3"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p><b>Efecto del ox&iacute;geno</b></p>     <p>Al evaluar el proceso de biodegradaci&oacute;n de BTX en medios saturados con ox&iacute;geno gaseoso (OD = 40 g&middot;m<sup>-3</sup>) y con aire libre de CO2 (O.D. = 8,08 g&middot;m<sup>-3</sup>) se observ&oacute; mayor velocidad de biodegradaci&oacute;n en el primer caso. En el sistema de biodegradaci&oacute;n saturado con ox&iacute;geno gaseoso se alcanz&oacute; un porcentaje de biodegradaci&oacute;n del 99% en 30 horas, mientras que en el sistema saturado con aire fueron necesarias 38 horas. Como se aprecia en la <a href="#fig1">Figura 1</a>, los sistemas presentaron remociones del 99,5% a las 24 h y 30 h, respectivamente.</p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="fig1"><img src="img/revistas/ctyf/v1n4/v1n4a06fig1.jpg"></a></center></p>     <p>Las velocidades de biodegradaci&oacute;n alcanzaron valores m&aacute;ximos de 6,44 g&middot;m<sup>-3 </sup>h<sup>-1</sup> y 5,35 g&middot;m<sup>-3</sup> h<sup>-1</sup> para los sistemas saturados con ox&iacute;geno y aire, respectivamente. Como se aprecia en la <a href="#fig2">Figura 2</a>, esta tendencia est&aacute;  directamente  relacionada  con  el  crecimiento microbiano, el cual present&oacute; una fase de latencia de 8 horas para el sistema con aire, mientras que en el sistema con ox&iacute;geno gaseoso no se observ&oacute;. En este &uacute;ltimo caso, la actividad celular se inici&oacute; desde el tiempo cero, alcanzando un m&aacute;ximo a las 13 h, con un porcentaje de remoci&oacute;n de BTX del 85%. Para el sistema con aire libre de CO<sub>2</sub> este m&aacute;ximo se present&oacute; a las 18 h, con una remoci&oacute;n del 86%.</p>     <p>    <center><a name="fig2"><img src="img/revistas/ctyf/v1n4/v1n4a06fig2.jpg"></a></center></p>     <p>Pasadas las 13 h y 18 h en los sistemas saturados con ox&iacute;geno gaseoso y aire, respectivamente, se observ&oacute; la etapa de declive en el cultivo microbiano, manifestada por la disminuci&oacute;n progresiva de los valores de ufc&middot;10<sup>-6</sup> m<sup>-3</sup>. Esto sugiere que en estos momentos los microorganismos no s&oacute;lo han suspendido su crecimiento, sino que han empezado a morir. Este &uacute;ltimo fen&oacute;meno puede ser causado por la ausencia de sustrato en el medio ya que, como se coment&oacute; anteriormente, en esos tiempos de reacci&oacute;n la concentraci&oacute;n de BTX ha bajado notablemente (remociones cercanas al 90% en ambos casos). En los respectivos controles no se observ&oacute; variaci&oacute;n en la concentraci&oacute;n de BTX, lo cual indica que la oxidaci&oacute;n del proceso es netamente biol&oacute;gica.</p>     <p><b>Efecto de nutrientes</b></p>     <p>El estudio del proceso de biodegradaci&oacute;n en los tres medios de cultivo formulados (medios 1, 2 y 3) se llev&oacute; a cabo saturando el medio de reacci&oacute;n con ox&iacute;geno gaseoso. Los resultados indican que los microorganismos tienen capacidad para remover m&aacute;s del 90% de los BTX presentes en concentraciones de 60 g&middot;m<sup>-3 </sup>, en un tiempo aproximado de 22 h. Sin embargo, tal como se ilustra en la <a href="#fig3">Figura 3</a>, el mejor comportamiento bacteriano se observ&oacute; en el medio 2. En el sistema conformado con este medio se present&oacute; la m&aacute;xima velocidad de biodegradaci&oacute;n (4,14 g&middot;m<sup>-3 </sup>&middot;h<sup>-1</sup>) y se alcanz&oacute; remoci&oacute;n de BTX del 83% en 14 h, disminuy&eacute;ndose la carga de contaminante hasta 10,8 g&middot;m<sup>-3 </sup>, l&iacute;mite exigido por la EPA para vertimientos industriales. Transcurridas 18 h de proceso se observ&oacute; una remoci&oacute;n del 95,7%, y una concentraci&oacute;n m&iacute;nima remanente durante 6 h, al final de las cuales se present&oacute; una remoci&oacute;n del 100% (<a href="#fig3">Figura 3</a>). </p>     <p>    <center><a name="fig3"><img src="img/revistas/ctyf/v1n4/v1n4a06fig3.jpg"></a></center></p>     <p>El reactor que conten&iacute;a el medio 1 present&oacute; un comportamiento similar al del medio 2. Sin embargo, la velocidad m&aacute;xima de biodegradaci&oacute;n s&oacute;lo alcanz&oacute; un valor de 3,49 g&middot;m<sup>-3</sup>&middot;h<sup>-1</sup>. En este caso, a las 18 h s&oacute;lo se hab&iacute;a removido el 77% de la carga contaminante, alcanz&aacute;ndose una concentraci&oacute;n de BTX igual a 14,2 g&middot;m<sup>-3</sup> (<a href="#fig3">Figura 3</a>). Aunque en el reactor que conten&iacute;a el medio 3 se alcanz&oacute; una velocidad m&aacute;xima de biodegradaci&oacute;n de 3,40 g&middot;m<sup>-3 </sup> h<sup>-1</sup>, hacia las 18 h s&oacute;lo se hab&iacute;a alcanzado una remoci&oacute;n del 62%.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los sistemas de reacci&oacute;n con medio mineral 1 y 2 mostraron la misma tendencia de degradaci&oacute;n, con velocidades m&aacute;ximas de degradaci&oacute;n muy similares (<a href="#fig3">Figura 3</a>). Sin embargo, presentaron marcadas diferencias en los tiempos de remoci&oacute;n total, requiri&eacute;ndose 30 h y 38 h, respectivamente. Este fen&oacute;meno se puede explicar con base en el crecimiento bacteriano como se aprecia en la <a href="#fig4">Figura 4</a>. Los microorganismos cultivados en el medio 3 presentaron una fase de latencia de 6 h, mientras que los microorganismos cultivados en los medios 1 y 2 empezaron su fase exponencial desde el tiempo cero.</p>     <p>    <center><a name="fig4"><img src="img/revistas/ctyf/v1n4/v1n4a06fig4.jpg"></a></center></p>     <p><b>Efecto de la concentraci&oacute;n del contaminante (BTX)</b></p>     <p>El sistema de biodegradaci&oacute;n operado a 306 K con medio mineral 2 y ox&iacute;geno gaseoso se aplic&oacute; por separado a matrices acuosas contaminadas con 40, 60, 100 y 170 g&middot;m<sup>-3 </sup> de BTX. Como se aprecia en la <a href="#fig5">Figura 5</a>, el consorcio microbiano mostr&oacute; buena actividad metab&oacute;lica en las cuatro concentraciones de contaminantes evaluadas, alcanz&aacute;ndose remociones del 99,99% en 6 y 9 horas, para los medios con 40 y 60 g&middot;m<sup>-3 </sup> deBTX, respectivamente, y en 10 h para matrices con 100 y 170 g&middot;m<sup>-3 </sup>. </p>     <p>    <center><a name="fig5"><img src="img/revistas/ctyf/v1n4/v1n4a06fig5.jpg"></a></center></p>     <p>Aunque en los sistemas con 100 y 170 g&middot;m<sup>-3 </sup>  se observaron iguales tiempos de remoci&oacute;n total, se presentaron diferencias en los tiempos necesarios para alcanzar los par&aacute;metros de la EPA, mientras que en matrices contaminadas con 100 g&middot;m<sup>-3 </sup>  se requiere de aproximadamente 5,5 h, para matrices contaminadas con 170  son necesarias 7,5 h. Vale la pena resaltar que en estos casos, a las 8 h los sistemas ya hab&iacute;an superado el 90% de la remoci&oacute;n total, con un remanente m&iacute;nimo que permanece por 2 h m&aacute;s.</p>     <p>Las velocidades m&aacute;ximas de biodegradaci&oacute;n alcanzaron valores de 28 - 19,95 - 15,52 y 15,56 g&middot;m<sup>-3 </sup>h<sup>-1</sup>, para los sistemas con 170, 100, 60 y 40 g&middot;m<sup>-3 </sup>. Estos resultados indican que en concentraciones m&aacute;ximas de BTX de 170 g&middot;m<sup>-3 </sup> el proceso microbiano no se inhibe. En este caso se observ&oacute; una relaci&oacute;n directa entre las velocidades m&aacute;ximas de biodegradaci&oacute;n y la carga de contaminante.</p>     <p>Este comportamiento es corroborado por los valores de unidades formadoras de colonia (ufc&middot;m<sup>-6</sup>), medidos a lo largo del proceso de biodegradaci&oacute;n para los cuatro sistemas evaluados (40, 60, 100 y 170 g&middot;m<sup>-3 </sup> ), los cuales revelan que las altas cargas de contaminante no inhiben el crecimiento bacteriano y los t&iacute;tulos microbianos se mantienen hasta que el sustrato arom&aacute;tico se consume.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Estudio estad&iacute;stico</b></p>     <p>En la <a href="#tab1">Tabla 1 </a>se reportan las concentraciones, los porcentajes y las velocidades de remoci&oacute;n de BTX a lo largo de la biodegradaci&oacute;n, tanto para los biorreactores como para el control. Como se observa, los valores de desviaci&oacute;n est&aacute;ndar est&aacute;n por debajo de 4 y los coeficientes de variaci&oacute;n no superan el 5%, lo que muestra la veracidad del proceso.</p>     <p>    <center><a name="tab1"><img src="img/revistas/ctyf/v1n4/v1n4a06t1.jpg"></a></center></p>     <p>En la <a href="#fig6">Figura 6</a> se ilustran las velocidades de remoci&oacute;n para la mezcla de BTX y para los compuestos individuales a lo largo del proceso. El sistema present&oacute; una remoci&oacute;n promedio del 97% a la hora 6, mientras que en las &uacute;ltimas 4 h s&oacute;lo se logr&oacute; un 2,5 % de la remoci&oacute;n total de BTX.  En este caso el benceno present&oacute; los valores m&aacute;s altos de velocidad m&aacute;xima de remoci&oacute;n (15,80 g&middot;m<sup>-3 </sup> h<sup>-1</sup>), seguido del tolueno (6,41 g&middot;m<sup>-3 </sup> h<sup>-1</sup>), alcanz&aacute;ndose una remoci&oacute;n total de estos monoarom&aacute;ticos a las 7 h y 9 h (<a href="#tab1">Tabla 1</a>), respectivamente. Por otra parte los xilenos mostraron las velocidades m&aacute;ximas de degradaci&oacute;n m&aacute;s bajas, con valores de 1,80 g&middot;m<sup>-3 </sup> h<sup>-1</sup>, para o- y m- xilenos y de 0,85 g&middot;m<sup>-3 </sup> h<sup>-1</sup> para el p-xileno. La velocidad m&aacute;xima de remoci&oacute;n en la mezcla alcanz&oacute; valores promedio de 26,27 g&middot;m<sup>-3 </sup>h<sup>-1</sup>, para concentraciones altas de BTX.  Sin  embargo, cuando la carga contaminante se encuentra por debajo de 5 g&middot;m<sup>-3 </sup> , la velocidad m&aacute;xima de remoci&oacute;n disminuye a valores de 0,745 g&middot;m<sup>-3 </sup>  h<sup>-1</sup>.</p>     <p>    <center><a name="fig6"><img src="img/revistas/ctyf/v1n4/v1n4a06fig6.jpg"></a></center></p>     <p>Por otra parte, los resultados obtenidos para el control (<a href="#tab1">Tabla 1</a>) muestran claramente que la desaparici&oacute;n de los BTX es un proceso netamente biol&oacute;gico y no est&aacute; generada por efectos de volatilizaci&oacute;n.</p>     <p><font size="3"><b>CONCLUSIONES</b></font></p> <ul>    <li>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los resultados revelan que los microorganismos nativos, aislados y evaluados en el Laboratorio de Biotecnolog&iacute;a del Instituto Colombiano del Petr&oacute;leo (Consorcio BTX-ICP), presentan capacidad para metabolizar BTX bajo condiciones oxig&eacute;nicas, soportando cargas de contaminante con concentraciones cercanas a los 170 g&middot;m<sup>-3 </sup>.</p></li>     <li>    <p>Se encontr&oacute; que el proceso de biodegradaci&oacute;n de BTX, empleando el consorcio ICP, es funci&oacute;n directa del ox&iacute;geno disuelto en el medio, en donde se evidenci&oacute; una velocidad m&aacute;xima de biodegradaci&oacute;n de 6,44 g&middot;m<sup>-3 </sup> h<sup>-1</sup>. Aunque el consorcio bacteriano creci&oacute; favorablemente mostrando la misma tendencia de biodegradaci&oacute;n en los tres medios minerales evaluados, su velocidad m&aacute;xima de biodegradaci&oacute;n alcanz&oacute; valores m&aacute;s altos (4,14 g&middot;m<sup>-3 </sup> h<sup>-1</sup>) en el sistema operado con el medio 2.</p></li>     <li>    <p>Los resultados obtenidos al evaluar el par&aacute;metro nutricional indican claramente que los microorganismos aislados por el laboratorio de Biotecnolog&iacute;a del ICP presentaron capacidad para crecer y metabolizar BTX en medios l&iacute;quidos con concentraciones de medio mineral PAM m&aacute;s bajas que las reportadas por Yocum <i>et al</i>., 1995.</p></li>     <li>    <p>Las remociones alcanzadas son del 100%, con sistemas de reacci&oacute;n oxig&eacute;nico por lotes y  tiempos de residencia de 10 h. Los coeficientes de variaci&oacute;n (<i>CV &lt; 5</i>) y las desviaciones est&aacute;ndar (s &lt; 4) obtenidas garantizan la veracidad de los datos y, por ende, del proceso.</p></li>    </ul>     <p><font size="3"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p>Los autores expresan sus agradecimientos a la doctora Julia Raquel Acero y a los Ingenieros Mauricio Carde&ntilde;osa y Luis Ortiz, por sus sugerencias y comentarios durante la realizaci&oacute;n de este trabajo.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>A los laboratorios de Biotecnolog&iacute;a y Cromatograf&iacute;a del Instituto Colombiano del Petr&oacute;leo, por su colaboraci&oacute;n en la ejecuci&oacute;n de las muestras.</p>     <p>A Ecopetrol ICP, especialmente al Instituto Colombiano de Petr&oacute;leo y al Complejo Industrial de Barrancabermeja, por el apoyo financiero, que hizo posible el desarrollo de este proyecto.</p> <hr>     <p><font size="3"><b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p>Bowlen, C. and Kosson, D., 1995. "In situ Proccessess for Bioremediation of BTX and Petroleum fuel Products" in: Young, L and Cerniglia, C., 1995. "<i>Microbial Transformation and Degradating of Toxic Organic Chemicals</i>", by Wiley-Liss: 515 - 542.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0122-5383199800010000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Chen, C. and Taylor, R., 1995. "Thermophilic Biodegradation of BTEX by two <i>Thermus species</i>",  Biotechnology and Bioengineering, 48:   614 - 624.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0122-5383199800010000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Grifoll, M., Selifonov, S., Gotlin, Ch. and Chapman, P., 1995. "Actions of a versatile fluorene degrading bacterial isolated on Polyciclic Aromatic Compounds", <i>Applied Environmental</i> Microbiology, 61 (10):  3711 - 3723.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0122-5383199800010000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Irvine, R. L., 1995. "Adsorption and Desorption Studies in the Aqueous Phase for the Toluene Activated Carbon System", <i> Environmental Progress</i>,  13 (1):  21 - 25.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0122-5383199800010000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Lee, J. Y., Choi, Y. B. and Kim, H. S., 1993.  "Simultaneous Biodegradation of Toluene and p-xylene in a Novel bioreactor: Experimental Results and Mathematical Analysis", <i> Biotechnology</i>, 9:  46 - 53.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0122-5383199800010000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Oh, Y. S., Shareetdeen, Z., Baltzis, B. and Bartha, R., 1994. "Interaction between benzene, toluene and p-xylene (BTX) during their biodegradation",<i> Biotechnology and Bioengineering</i>, 44:  533 - 538.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0122-5383199800010000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Reinhard, M., Shan, S., Kitanidis, P. K., Orwin, E., Hopkins, G. and Lebron, C. A., 1997. "In situ BTEX Biotransformation under Enhanced Nitrate and Sulfate Reducing Conditions", <i> Environ. Sci. Technol</i>. 31:  28  -  36.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0122-5383199800010000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Stetzenbach, L., Kelley, L. M. and Sinclair, N. A., 1986. "Isolation, identification and growth of well-water bacteria", <i>Ground water</i>, 24 (1):  6 - 10.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0122-5383199800010000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Vargas, M. C., Ram&iacute;rez N. E. Mora, A, y Dugarte, F. 1997. "Biodegradaci&oacute;n de hidrocarburos ar&oacute;maticos vol&aacute;tiles benceno, tolueno e is&oacute;meros del xileno en matrices acuosas",<i> Documento Institucional Instituto Colombia- no del Petr&oacute;leo</i>. Ecopetrol.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0122-5383199800010000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Yocum, P. S., Irvine, R. L. and Bumpus, J. A., 1995. "Bioremediation of Water Contaminated with jet fuel-4 in a Modified Sequencing batch reactor",<i> Water Environmental Research</i>, 67 (2):  174  - 180.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0122-5383199800010000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Zhou, E. and Crawford, R. L., 1995.  "Effects of oxygen, nitrogen, and temperature on gasoline biodegradation in soil", <i> Biodegradation</i>, 6:  127 - 140.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0122-5383199800010000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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