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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Virulencia, producción y desplazamiento de nematodos entomopatógenos sobre larvas del picudo de la guayaba Conotrachelus psidii Marshall: (Coleoptera: Curculionidae) en laboratorio]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Virulence, production and dispersal of entomo-pathogenic nematodes to larvae of the guava weevil Conotrachelus psidii Marshall: (Coleoptera: Curculionidae) in the laboratory]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[El picudo de la guayaba Conotrachelus psidii Marshall es una de las principales plagas del cultivo de la guayaba en Santander - Colombia, causa pérdidas severas afectando la calidad y cantidad de los frutos. El control biológico es una opción viable para el manejo de la plaga y en especial, los nematodos entomopatógenos (NEPs) han mostrado buenos resultados (63-90% mortalidad) para el control de larvas de cuarto instar del picudo de la guayaba. En el presente estudio se evaluó el efecto de siete especies de NEPs aislados en Colombia: Steinernema websteri JCL006, Steinernema sp. 1 JCL024, Steinernema sp. 2 JCL007, Steinernema sp. 3 JCL027, S. colombiense SNI0198, Heterorhabditis bacteriophora HNI0100 y Heterorhabditis sp. SL0708 sobre larvas de cuarto instar del picudo de la guayaba en condiciones de laboratorio. También se evaluó la producción y el desplazamiento de las especies de NEPs más virulentas. Se registró que Heterorhabditis sp. SL0708 genera una mortalidad del 85% sobre el picudo de la guayaba, Steinernema sp. 1 JCL024 del 75% y S. colombiense SNI0198 del 55%, las otras especies de NEPs generaron mortalidad menor al 25%. La mayor producción de JI por larva del picudo se registró en Heterorhabditis sp. SL0708, la cual también mostró mayor capacidad de reconocimiento cuando el hospedero es C. psidii.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[O bicudo-da-goiaba Conotrachelus psidii Marshall, é uma das principais pragas do cultivo da goiaba no Sanander - Colômbia. Ocasiona perdas muito grandes, afetando a qualidade e a quantidade dos frutos. O controle biológico é uma opção viável para o manejo da praga, especialmente, os nematóides entomopatogênicos-(NEPs) mostraram bons resultados (63-90% mortalidade) para o controle do quarto instar do bicudo-da-goiaba. No presente estudo foi avaliado o efeito de sete espécies de NEPs isolados na Colômbia: Steinernema websteri JCL006, Steinernema sp. 1 JCL024, Steinernema sp. 2 JCL007, Steinernema sp. 3 JCL027, S. colombiense SNI0198, Heterorhabditis bacteriophora HNI0100 e Heterorhabditis sp. SL0708, sobre larvas de quarto instar do picudo da goiaba no laboratório. A produção, e o deslocamento das espécies mais virulentas também foram medidos. Para Heterorhabditis sp. SL0708 foi registrada mortalidade de 85%, para Steinernema sp. 1 JCL024 do 75% e para S. colombiense SNI0198 do 55%, as outras espécies de NEPs causaram mortalidade do inseto menor que 25%. A maior produção de JI por larva do bicudo foi registrada em Heterorhabditis sp. SL0708, a qual também mostrou maior capacidade de reconhecimento quando o hospedeiro é C. psidii.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="verdana">     <p align="center"><font size=4><b>Virulencia, producci&oacute;n y desplazamiento de nematodos entomopat&oacute;genos sobre larvas del picudo de la guayaba <i>Conotrachelus psidii </i>Marshall (Coleoptera: Curculionidae) en laboratorio</b></font></p>     <p align="center"><font size=3><b>Virulence, production and dispersal of entomo-pathogenic nematodes to larvae of the guava weevil <i>Conotrachelus psidii </i>Marshall (Coleoptera: Curculionidae) in the laboratory</b></font></p>     <p align="center">Yalexy Delgado-Ochica<sup>1</sup>, Adriana S&aacute;enz Aponte<sup>1</sup></p>     <p align="center"><sup>1</sup> Laboratorio de Control Biol&oacute;gico, Facultad de Ciencias, Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute; D.C., Colombia.</p>     <p align="center">Received: 01-10-2012   Accepted: 11-11-2012 Published on line: 27-11-2012</p> <hr>     <p><font size=3><b>Abstract</b></font></p>     <p>The guava weevil <i>Conotrachelus psidii </i>Marshall is a major pest affecting guava cultivation in Santander, Colombia; it causes serious losses in the quality and the volume of fruit produced. Biological control is a viable option for pest management; entomopathogen-ic nematodes (EPNs), particularly, have shown good results (63-90% mortality) in controlling fourth instar larvae of the guava weevil. In this study we evaluated the effect of seven species of EPNs isolated in Colombia: <i>Steinernema websteri </i>JCL006, <i>Steinernema </i>sp. 1 JCL024, <i>Steinernema </i>sp. 2 JCL007, <i>Steinernema </i>sp. 3 JCL027, <i>S. colombiense </i>SNI0198, <i>Heterorhabditis bacteriophora </i>HNI0100 and <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708 on fourth instar larvae of the guava weevil in laboratory conditions, and measured the production and the displacement of the most virulent. <i>Heterorhabdi-tis </i>sp. SL0708 induced mortality of 85%, <i>Steinernema </i>sp. 1 JCL024 75% and <i>S. colombiense </i>SNI0198 55%, the other species of EPNs, less than 25% mortality. Increased production of JI by weevil larva was recorded in <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708, which also showed greater recognition capability when the host was <i>C. psidii.</i></p>     <p><b>Keywords: </b>Biological control, <i>Heterorhabditis </i>sp., juvenil infective, <i>Steinernema </i>sp.</p> <hr>     <p><font size=3><b>Resumen</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El picudo de la guayaba <i>Conotrachelus psidii </i>Marshall es una de las principales plagas del cultivo de la guayaba en Santander - Colombia, causa p&eacute;rdidas severas afectando la calidad y cantidad de los frutos. El control biol&oacute;gico es una opci&oacute;n viable para el manejo de la plaga y en especial, los nematodos entomopat&oacute;genos (NEPs) han mostrado buenos resultados (63-90% mortalidad) para el control de larvas de cuarto instar del picudo de la guayaba. En el presente estudio se evalu&oacute; el efecto de siete especies de NEPs aislados en Colombia: <i>Steinernema </i>websteri JCL006, <i>Steinernema </i>sp. 1 JCL024, <i>Steinernema </i>sp. 2 JCL007, <i>Steinernema </i>sp. 3 JCL027, <i>S. colombiense </i>SNI0198, <i>Heterorhabditis bacteriophora </i>HNI0100 y <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708 sobre larvas de cuarto instar del picudo de la guayaba en condiciones de laboratorio. Tambi&eacute;n se evalu&oacute; la producci&oacute;n y el desplazamiento de las especies de NEPs m&aacute;s virulentas. Se registr&oacute; que <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708 genera una mortalidad del 85% sobre el picudo de la guayaba, <i>Steinernema </i>sp. 1 JCL024 del 75% y <i>S. colombiense </i>SNI0198 del 55%, las otras especies de NEPs generaron mortalidad menor al 25%. La mayor producci&oacute;n de JI por larva del picudo se registr&oacute; en <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708, la cual tambi&eacute;n mostr&oacute; mayor capacidad de reconocimiento cuando el hospedero es <i>C. psidii.</i></p> <hr>     <p><font size=3><b>Resumo</b></font></p>     <p>O bicudo-da-goiaba <i>Conotrachelus psidii </i>Marshall, &eacute; uma das principais pragas do cultivo da goiaba no Sanander - Col&ocirc;mbia. Ocasiona perdas muito grandes, afetando a qualidade e a quantidade dos frutos. O controle biol&oacute;gico &eacute; uma op&ccedil;&atilde;o vi&aacute;vel para o manejo da praga, especialmente, os nemat&oacute;ides entomopatog&ecirc;nicos-(NEPs) mostraram bons resultados (63-90% mortalidade) para o controle do quarto instar do bicudo-da-goiaba. No presente estudo foi avaliado o efeito de sete esp&eacute;cies de NEPs isolados na Col&ocirc;mbia: <i>Steinernema websteri </i>JCL006, <i>Steinernema </i>sp. 1 JCL024, <i>Steinernema </i>sp. 2 JCL007, <i>Steinernema </i>sp. 3 JCL027, <i>S. colombiense </i>SNI0198, <i>Heterorhabditis bacteriophora </i>HNI0100 e <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708, sobre larvas de quarto instar do picudo da goiaba no laborat&oacute;rio. A produ&ccedil;&atilde;o, e o deslocamento das esp&eacute;cies mais virulentas tamb&eacute;m foram medidos. Para <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708 foi registrada mortalidade de 85%, para <i>Steinernema </i>sp. 1 JCL024 do 75% e para <i>S. colombiense </i>SNI0198 do 55%, as outras esp&eacute;cies de NEPs causaram mortalidade do inseto menor que 25%. A maior produ&ccedil;&atilde;o de JI por larva do bicudo foi registrada em <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708, a qual tamb&eacute;m mostrou maior capacidade de reconhecimento quando o hospedeiro &eacute; <i>C. psidii.</i></p> <hr>     <p><font size=3><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p>La mayor producci&oacute;n de guayaba en Colombia se encuentra en el Departamento de Santander con 51.176 toneladas (34%) de las 145.665 toneladas a nivel nacional, seguido por Boyac&aacute; (20%), y Tolima (12,3%). A partir de la guayaba se sustenta la agroindustria del bocadillo, cuya producci&oacute;n anual en Santander se valora en m&aacute;s de US$24 millones anules (1), sin embargo, su producci&oacute;n se ha visto afectada por la plaga conocida como el picudo de la guayaba <i>Conotrachelus psidii </i>Marshall (Coleoptera: Curculionidae). El da&ntilde;o es realizado por las larvas que se alimentan de las semillas y la pulpa, que provocan un ennegrecimiento y endurecimiento de la parte afectada. Las excretas de la larva en el interior de la guayaba ocasionan petrificaci&oacute;n del fruto, maduraci&oacute;n prematura y ca&iacute;da del mismo (2), haciendo al fruto inservible para cualquier forma de consumo y para la agroindustria del bocadillo.</p>     <p>El ciclo del picudo dura en promedio 199 d&iacute;as: huevo, 4 a 7 d&iacute;as; la larva pasa por cuatro instares larvales, del primero al tercero ocurren dentro del fruto, 42 a 56 d&iacute;as; el cuarto instar larval ocurre en el suelo, 60 a 90 d&iacute;as; pupa en el suelo, 30 a 60 d&iacute;as. Los adultos salen del suelo entre los 20 y 30 d&iacute;as despu&eacute;s. La infestaci&oacute;n en los frutos por parte de las larvas, se ha observado el valor m&aacute;s alto durante la cosecha, que va desde inicios de septiembre hasta diciembre (1, 3).</p>     <p>El control del picudo en Santander es muy escaso y dif&iacute;cil, dado que los guayabales se encuentran silvestres &oacute; asociados a sistemas silvopastoriles, por lo que &eacute;sta plaga genera p&eacute;rdidas econ&oacute;micas significativas y aumenta sus poblaciones en cada cosecha (1). Debido a las p&eacute;rdidas provocadas, se buscan estrategias econ&oacute;micamente viables para el sistema agr&iacute;cola de la regi&oacute;n y ecol&oacute;gicamente sostenibles para el control del picudo, que puedan ser incorporadas a un programa de Manejo Integrado de Plagas (MIP) como el control biol&oacute;gico, control cultural, uso de feromonas, desarrollo de plantas resistentes, entre otras alternativas (4).</p>     <p>Uno de los agentes de control biol&oacute;gico son los nematodos entomopat&oacute;genos (NEPs) de las familias Steinernematidae y Heterorhabditidae (Rhabditida), los cuales son organismos pat&oacute;genos obligados de insectos. Est&aacute;n asociados en un mutualismo con bacterias que causan septicemia y otras afecciones letales en el hu&eacute;sped. El ciclo de vida del nematodo tiene diferentes etapas de las cuales el Juvenil Infectivo (JI) es de vida libre que parasita al hospedero, al que busca mediante desplazamiento activo (crucero) o pasivo (emboscador). La asociaci&oacute;n nematodo-bacteria es la que determina la efectividad y selectividad de estos controladores, raz&oacute;n por la cual se realizan gran variedad de ensayos en laboratorio para establecer la patogenicidad y virulencia de las especies de para seleccionar la especie a ser implementada en el control de un determinado organismo (5).</p>     <p>Los NEPs son potenciales agentes para el control del picudo de la guayaba dado que varios de sus estados ocurren en o sobre el suelo, lo que podr&iacute;a desencadenar una estrategia racional para manejar esta plaga, como se ha demostrado en otros estudios. Del Valle <i>et al. </i>(5, 6) y Dolinski <i>et al. </i>(7) demostraron la alta susceptibilidad del cuarto instar larval del picudo de la guayaba por parte de <i>Heterorhabditis baujardii </i>LPP7 (mortalidad 80%) y <i>Heterorhabditis indica </i>Homl (mortalidad 85%) en experimentos de laboratorio e invernadero a una dosis de 100 nematodos por larva del picudo de la guayaba (5-7).</p>     <p>Teniendo en cuenta la importancia del cultivo, los da&ntilde;os generados por el picudo y la posibilidad de los nematodos entomopat&oacute;genos para controlar esta plaga, se evalu&oacute; la virulencia de siete especies de NEPs aislados en Colombia, sobre larvas de cuarto instar del picudo. Adem&aacute;s de la producci&oacute;n y desplazamiento de JIs de las especies m&aacute;s virulentas, bajo condiciones de laboratorio.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size=3><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>     <p>Se evaluaron siete especies de NEPs (<a href="#t1">Tabla 1</a>). De la 1 a la 6 son aislamientos obtenidos por CENICAFE, cuyos an&aacute;lisis de la secuencia de rDNA las clasific&oacute; como especies diferentes (8). La especie <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708 es un aislamiento realizado en la Pontificia Universidad Javeriana, cuyo ciclo de vida y patogenicidad, entre otras caracter&iacute;sticas, ha mostrado ser una especie distinta a <i>Heterorhabditis bacteriophora </i>(9).</p>     <center><a name="t1"><img src="img/revistas/unsc/v17n3/v17n3a04t1.jpg"></a></center>     <p>La producci&oacute;n y la obtenci&oacute;n de los JIs reci&eacute;n emergidos (sin fase de almacenamiento), de las diferentes especies de NEPs utilizadas en este estudio, se realiz&oacute; a partir de larvas de &uacute;ltimo instar de <i>Galler&iacute;a mellonella </i>(L.) (Lepidoptera: Pyralidae) con trampas White a 25&deg;C, siguiendo las recomendaciones de S&aacute;enz y Olivares (10) y Realpe-Aranda (11).</p>     <p>Para la obtenci&oacute;n de larvas de cuarto instar del picudo de la guayaba, se colectaron frutos infestados con la plaga provenientes de Guavat&aacute; (Santander). En el laboratorio se separaron las larvas de cuarto instar (longitud de 10-12 mm y coloraci&oacute;n crema) y las larvas de otros instares se depositaron en bandejas pl&aacute;sticas con guayaba para permitir su desarrollo. Las larvas seleccionadas para los ensayos se dejaron 24 horas en observaci&oacute;n antes de ser utilizadas, y se escogieron aquellas que se mov&iacute;an y larva, dado que cuando estas son perturbadas, son bastante agresivas; se incubaron a 24&deg;C + 1. Se registr&oacute; la mortalidad cada 24 horas durante 15 d&iacute;as.</p>     <p>Las larvas del picudo muertas se disectaron para comprobar la presencia de nematodos.</p>     <p><b>Producci&oacute;n de JI a partir de larvas del picudo de la guayaba: </b>Las especies de NEPs que generaron porcentajes de mortalidad superiores al 50%, se les evalu&oacute; la producci&oacute;n de JI por larva de cuarto instar del picudo de la guayaba. Las larvas del picudo infectadas se incubaron a 25&deg;C y despu&eacute;s de 5 d&iacute;as, se montaron en trampas White modificadas (11, 12) para la recuperaci&oacute;n de los JI. Los conteos de los JI presentaban coloraci&oacute;n uniforme (sanas).</p>     <p><b>Pruebas de virulencia de JI: </b>Se realiz&oacute; un ensayo completamente al azar de ocho tratamientos; siete especies de NEPs y un control sin NEPs (agua destilada), con 10 replicas cada uno y una repetici&oacute;n en el tiempo, como se ha realizado en otros estudios (7). Cada unidad experimental consisti&oacute; en una caja de petri de 3 cm de di&aacute;metro, con 16 g de arena de r&iacute;o est&eacute;ril h&uacute;medo, se colocaron 100 JI y una larva de cuarto instar del picudo de la guayaba con el volumen de agua para completar la capacidad del campo del sustrato (30% de humedad P/P); las unidades experimentales contaban con una sola se realizaron diariamente por diluci&oacute;n, siguiendo las recomendaciones de Kaya y Stock (12).</p>     <p><b>B&uacute;squeda por el hospedero: </b>Se usaron columnas de arena para evaluar la capacidad de los JI para desplazarse, encontrar y matar las larvas de cuarto instar del picudo de la guayaba, dado que en el suelo se profundizan a 10 cm en promedio. Se seleccionaron las especies de NEPs que presentaron la mayor virulencia (+70%) y producci&oacute;n de JI.</p>     <p>Se utiliz&oacute; un tubo de PVC de 10 cm de alto por 5 cm de di&aacute;metro, en el lado inferior se dej&oacute; una caja de petri peque&ntilde;a (5 cm de di&aacute;metro). En el fondo de cada tubo, se ubic&oacute; una larva de <i>C. psidii </i>&oacute; de <i>G. mellonella </i>inmovilizada con angeo met&aacute;lico para impedir el movimiento vertical de la larva. Posteriormente se cubri&oacute; con sustrato est&eacute;ril (54% arena, 26% arcilla, 19% sedimentos, pH: 4,6; 3,4% materia org&aacute;nica; 40% humedad) proveniente de Guavat&aacute; (05&deg;55&#39;09,2&#39;&#39; de latitud Norte y 73&deg; 41&#39; 37,5&#39;&#39; de longitud Oeste; a 1.922 m de altitud) y sobre la columna se aplic&oacute; una de tres dosis de JI (0, 200 o 500 JI/tubo). La dosis de 200 JI es la empleada en ensayos de efectividad de NEPs, mientras que la dosis de 500 JI es cercana a 250.000 JI/m<sup>2</sup>, la cual es recomendada generalmente para aplicaciones en campo (13). Las columnas se taparon manteniendo la posici&oacute;n vertical y se incubaron por 72 horas a 25&deg;C. Se removieron las larvas muertas y se disectaron para verificar la presencia de nematodos. El dise&ntilde;o fue factorial de tres dosis, dos especies de nematodos y dos especies hospedero. Se realizaron 10 r&eacute;plicas por tratamiento y se repiti&oacute; el experimento una vez en el tiempo (a los 30 d&iacute;as).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico: </b>La mortalidad de cada ensayo fue convertida a porcentaje. Los datos que cumpl&iacute;an con los supuestos de normalidad y homogeneidad se les realizaron an&aacute;lisis de varianza de una v&iacute;a (ANOVA); y los datos que no cumpl&iacute;an con los supuestos se les efectuaron la prueba de Kruskal-Wallis (H), con SPSS19. Los ensayos con diferencias significativas entre los tratamientos se analizaron con una prueba a posteriori de Tukey (param&eacute;trico) &oacute; de Dunnet (No-param&eacute;trico) a una significancia de p &lt;0,05, las diferencias se indican en las figuras con diferentes letras sobre las barras.</p>     <p><font size=3><b>Resultados</b></font></p>     <p><b>Pruebas de virulencia de los JI: </b>Se encontr&oacute; que el picudo de la guayaba es susceptible a las siete especies de NEPs evaluadas. La especie <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708 present&oacute; la mayor virulencia (85&plusmn;8%) seguida por <i>Steinernema </i>sp. 1 JCL024 (78+8%) y <i>S. colombiense </i>SNI0198 (55&plusmn;12%), estas tres especies de NEPs mostraron diferencias significativas (p &lt;0,05) con respecto al control (0%) (<a href="#f1">Figura 1</a>). Las otras especies de nematodos evaluadas <i>Steinernema </i>sp. 3 JCL027, <i>H. bacteriophora </i>HNI0100, <i>S. websteri</i>JCL006 y <i>Steinernema </i>sp. 2 JCL007 presentaron 25 a 15% de mortalidad sobre las larvas del picudo. Respecto al tiempo, la mortalidad en el 80% de los tratamientos se registr&oacute; en las primeras 48 horas, hasta las 72 horas.</p>     <center><a name="f1"><img src="img/revistas/unsc/v17n3/v17n3a04f1.jpg"></a></center>     <p><b>Producci&oacute;n de JI por larva del picudo de guayaba: </b><i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708, <i>Steinernema </i>sp. 1 JCL024 y <i>S. colombiense </i>SNI0198 fueron las especies que presentaron porcentajes de mortalidad superiores al 50%, sobre las cuales se evalu&oacute; la producci&oacute;n de JI/ larva del picudo de la guayaba. La mayor producci&oacute;n se registr&oacute; al tercer d&iacute;a, y el 80% de producci&oacute;n de los JI se alcanz&oacute; en los primeros ocho d&iacute;as, con incremento en la producci&oacute;n algunos d&iacute;as despu&eacute;s en las tres especies evaluadas (<a href="#f2">Figura 2</a>).</p>     <center><a name="f2"><img src="img/revistas/unsc/v17n3/v17n3a04f2.jpg"></a></center>     <p><i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708 fue la especie que produjo el mayor n&uacute;mero promedio de JI por larva (78.701&plusmn;8.387), seguido por <i>Steinernema </i>sp. 1 JCL024 (42.924&plusmn;7.319) y S. colombiense SNI0198 (24.879&plusmn;5.885) (<a href="#f3">Figura 3</a>). Se presentaron diferencias estad&iacute;sticas (p&lt;0,05) entre <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708 y las otras dos especies.</p>     <center><a name="f3"><img src="img/revistas/unsc/v17n3/v17n3a04f3.jpg"></a></center>     <p><b>B&uacute;squeda por el hospedero: </b>Para las pruebas de las columnas de arena se evalu&oacute; <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708 y <i>Steinernema </i>sp. 1 JCL024 por presentar porcentajes de mortalidad superiores al 50%. No se registraron diferencias significativas (p &lt;0,05) entre los porcentajes de mortalidad de <i>C. psidii </i>y <i>G. mellonella, </i>pero si entre estos dos hu&eacute;spedes con el control y entre las dosis (p &lt;0,05) (<a href="#f4">Figura 4</a>). El aislado <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708 present&oacute; el mayor porcentaje de mortalidad sobre larvas del picudo de la guayaba (75&plusmn;11%) en la dosis de 200 JI; en la dosis de 500 JI la mortalidad fue menor (35&plusmn;11%). <i>Steinernema </i>sp. 1 JCL024 sobre larvas del picudo gener&oacute; una mortalidad de 30&plusmn;26-35&plusmn;34%, en las dosis de 200 JI e 500 JI, respectivamente. Para <i>G. mellonella </i>las dos especies de nematodos evaluadas mostraron mortalidad entre 75 y 35% (dosis de 200 y 500 JI respectivamente).</p>     <center><a name="f4"><img src="img/revistas/unsc/v17n3/v17n3a04f4.jpg"></a></center>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Discusi&oacute;n</b></p>     <p>En los ensayos de laboratorio se aplicaron 100 JI/ larva como se ha propuesto en la literatura (12), para evaluar la susceptibilidad de un hospedero y realizar el proceso de selecci&oacute;n de la especie de NEP potencial para ser implementada como agente de control biol&oacute;gico. De las pruebas de laboratorio, las siete especies de nematodos evaluadas produjeron mortalidad larval, donde una especie de <i>Heterorhabditis </i>y una de <i>Steinernema </i>generaron mortalidades significativamente mayores a las otras especies. Dolinski <i>et al. </i>(14) evaluaron nueve especies de NEPs en larvas de cuarto instar del picudo de la guayaba, quienes plantean que todas las especies de <i>Heterorhabditis </i>evaluadas fueron m&aacute;s virulentas (80-75%) que las especies de <i>Steinernema </i>(65-45%), lo que difiere con el presente estudio, donde <i>H. bacteriophora </i>HNI0100 present&oacute; 25% mortalidad.</p>     <p>El tiempo de mortalidad registrado para todas las especies de NEPs evaluadas sobre <i>C. psidii </i>(&lt;72 horas) fue menor en el presente estudio a la que se ha registrado para esta plaga, la cual, se encuentra en los primeros tres d&iacute;as para <i>H. baujardi </i>LPP7 (5), diez d&iacute;as para <i>H. indica </i>y 44 d&iacute;as para <i>S. riobrave </i>(14). El presente estudio se realiz&oacute; con larvas reci&eacute;n emergidas del fruto, aproximadamente de seis semanas, mientras que en los estudios de Del Valle <i>et al. </i>(5) y Dolinski <i>et al. </i>(14) se realizaron con larvas que se encontraban al final de su cuarto instar larval, terminando sus ensayos en estado de prepupa. Estos resultados son coincidentes con lo registrado para el picudo de la nuez <i>Curculio caryae </i>(Coleoptera: Curculionidae), cuyas larvas m&aacute;s maduras parecen ser m&aacute;s resistentes a la infecci&oacute;n de los NEPs que las larvas m&aacute;s j&oacute;venes (15). En el caso de <i>C. psidii, </i>el cuarto instar larval es el estado en el cual abandona el fruto para profundizarse en el suelo, se vuelve inactivo y se convierte en prepupa; la prepupa es morfol&oacute;gicamente similar al cuarto instar larval, pero es un poco m&aacute;s peque&ntilde;a, su cut&iacute;cula pierde humedad y se vuelve m&aacute;s dura (16), por lo que el avance de sus estadios puede afectar posiblemente la capacidad de penetraci&oacute;n de los NEPs.</p>     <p>La producci&oacute;n acumulada de los JIs para <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708 en larvas de <i>G. mellonella </i>es de 150.000 a 280.000 JI/larva (10), estos valores son correspondientes a lo obtenido para <i>C. psidii </i>(74.071 JIs), teniendo en cuenta que &eacute;ste representa un poco menos de la mitad del peso comparado con <i>G. mellonella; </i>para <i>H. bacteriophora </i>la producci&oacute;n acumulada es de 78.750 JI/larva de <i>G. mellonella </i>y para <i>S. colombiense </i>es de 86.250 JI/larva (11). Adicionalmente, estas producciones pueden ser muy variables, ya que oscilan entre 30.000 y 240.000 JI/larva dentro del mismo hospedero, esto depende principalmente de la capacidad del hospedero para suplir los requerimientos nutricionales de los nematodos (10). Estas producciones indican que <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708 tiene la capacidad de penetrar, matar y multiplicarse dentro del picudo de la guayaba, salir nuevamente al ambiente en busca de nuevos hospederos y probablemente persistir en el tiempo.</p>     <p>El tiempo de producci&oacute;n de los JIs de <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708, <i>Steinernema </i>sp. 1 JCL024 y <i>S. colombiense </i>SNI0198 a partir de larvas de <i>C. psidii </i>es similar a lo registrado en larvas de <i>G. mellonella, </i>donde la producci&oacute;n es mayor en los primeros 3 d&iacute;as y disminuye a trav&eacute;s del tiempo, y durante los diez primeros d&iacute;as de emergencia se obtienen las mayores producciones de nematodos, con un 90% de los JI (10 - 17). La producci&oacute;n de los JIs de <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708 inici&oacute; a los 7-10 d&iacute;as despu&eacute;s de la infecci&oacute;n, por lo que se puede decir que &eacute;ste nematodo presenta dentro del picudo de la guayaba un ciclo de vida largo y uno corto, seg&uacute;n lo reportado en <i>G. mellonella, </i>en el cual se presenta un ciclo de vida largo y dos cortos (10).</p>     <p>Los ensayos en las columnas de arena permitieron evaluar la capacidad de b&uacute;squeda e infecci&oacute;n de las especies de NEPs, registrando que <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708 tiene mayor capacidad que <i>Steinernema </i>sp. 1 JCL024 de encontrar y matar las larvas de <i>C. psidii </i>en la dosis de 200 JI. Los porcentajes de mortalidad no difieren entre las dos especies de nematodos cuando el hospedero es <i>G. mellonella. </i>Dolinski <i>et al. </i>(14) realizaron pruebas en columnas de arena para el picudo de la guayaba con dos especies de <i>Heterorhabditis </i>y una de <i>Steinernema, </i>donde los heterorhabditidos presentaron mayor mortalidad larval (70-80%), lo cual coincide con el presente estudio; sin embargo, esos porcentajes de mortalidad se alcanzaron en la dosis de 500 JI y en el presente estudio en la dosis de 200 JI. La dosis de 200 JI corresponde a 1x10<sup>9</sup> JI/ha, la cual es menor a 2,5x10<sup>9</sup> JI/ha que se ha registrado en la mayor&iacute;a de los casos para que los NEPs sean efectivos al ser aplicados al suelo (18, 19). En situaciones donde el hospedero es particularmente susceptible &oacute; en condiciones controladas, tales como en laboratorio e invernadero, dosis menores tambi&eacute;n pueden ser efectivas (20).</p>     <p>Las dos especies de NEPs presentaron porcentajes de mortalidad elevados para <i>G. mellonella </i>(70-75%) en las pruebas de las columnas de arena, lo que indica que las dos especies tienen la capacidad de desplazamiento vertical en 10 cm de profundidad, la cual es la distancia promedio en la que se encuentran las larvas de cuarto instar del picudo de la guayaba en el suelo. Este desplazamiento indica que las especies presentan estrategia de forrajeo tipo &quot;crucero&quot; (b&uacute;squeda activa), los cuales son m&aacute;s efectivos en encontrar el recurso sedentario y cr&iacute;ptico que los tipo &quot;emboscadores&quot; (21, 22). La larva del picudo de la guayaba es inm&oacute;vil y permanece en el suelo por largos periodos de tiempo (60-90 d&iacute;as), por lo que presentar forrajeo tipo &quot;crucero&quot; por parte del NEP, es m&aacute;s efectiva para encontrar este hospedero.</p>     <p>Aunque las dos especies de nematodos evaluadas tienen estrategia de forrajeo tipo &quot;crucero&quot;, es <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708 la que genera mayor porcentaje de mortalidad para <i>C. psidii. </i>Se ha registrado que los NEPs presentan quimiorreceptores, con los cuales se orientan hacia su hospedero dependiendo de sus liberaciones de CO2, de otros olores como &aacute;cido l&aacute;ctico, heces, entre otros (21), y ese reconocimiento por un determinado hospedero va a afectar su desplazamiento y su eficacia, principalmente en los &quot;crucero&quot;, ya que les confiere un mayor potencial para encontrarlo (22). La mayor virulencia registrada por <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708 indica que su capacidad para reconocer <i>C. psidii </i>es mayor que <i>Steinernema </i>sp. 1 JCL024.</p>     <p>Las pruebas de columnas de arena se realizaron con sustrato del &aacute;rea de estudio, el cual present&oacute; materia org&aacute;nica, con mayor cantidad de arena (54%) que de arcilla, donde la arena genera porosidad en el sustrato. La porosidad es un factor importante para los JIs dado que cuando los poros del suelo son m&aacute;s peque&ntilde;os (poca arcilla-26%) la movilidad de los JIs decrece y se reducen los niveles de ox&iacute;geno disponibles para los JIs, disminuyendo as&iacute; su capacidad de supervivencia y de percibir las se&ntilde;ales del hospedero (10 - 22, 23). Adicionalmente, las pr&aacute;cticas agr&iacute;colas como la aplicaci&oacute;n de fertilizantes y plaguicidas tambi&eacute;n pueden afectar negativamente el comportamiento de los nematodos (22), por lo que la carencia de estos dos tipos de pr&aacute;cticas en el &aacute;rea guayabera santandereana y el tipo de suelo, favorece la aplicaci&oacute;n de los NEPs.</p>     <p><font size=3><b>Conclusi&oacute;n</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708 fue el nematodo que present&oacute; mayor virulencia, producci&oacute;n de JI por larva del picudo de la guayaba y capacidad para encontrar a <i>C. psidii, </i>es la especie que se debe evaluar en invernadero y campo para ser incorporada en programas de manejo integrado de plagas en Santander.</p>     <p><b>Agradecimientos</b></p>     <p>A la Pontificia Universidad Javeriana por la financiaci&oacute;n del proyecto de investigaci&oacute;n (4138); a Rosalva Velasco, Alvaro Hern&aacute;ndez y German Rueda agricultores de Guavat&aacute; (Santander) por el apoyo en la consecuci&oacute;n del material biol&oacute;gico.</p>     <p><b>Conflicto de intereses</b></p>     <p>Los autores expresan que no existen m&aacute;s que intereses cient&iacute;ficos alrededor de los resultados de esta investigaci&oacute;n.</p> <hr>     <p><font size=3><b>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p>1. Insuasty O, Monroy R, D&iacute;az A, Bautista J. <i>Manejo fitosanitario del cultivo de la guayaba (Psidium guajava L.) en Santander. </i>Corpoica- ICA Imprenta nacional de Colombia. 2011, 40 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0122-7483201200030000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>2. Insuasty O, Monroy R, Diaz A, Bautista J. <i>Manejo integrado del picudo de la guayaba Conotrachelus psidii Marshall en Santander. </i>Corpoica, Ica, Secretaria de Agricultura y desarrollo de Santander. 2007, 27 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0122-7483201200030000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>3. Monroy E, Insuasty O. Aspectos biol&oacute;gicos y duraci&oacute;n de los estadios del picudo de la guayaba <i>Conotrachelus psidii. Revista Corpoica: Ciencia y Tecnolog&iacute;a Agropecuaria </i>2006; 7 (2): 73-79.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0122-7483201200030000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>4. Dolinski  C,  Lancely  L.  Microbial  control of arthropod pests of tropical tree fruits. <i>Neotropical Entomology </i>2007; 36 (2): 161-179.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0122-7483201200030000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>5. Del Valle E, Dolinski C, Souza R, Samuels R. Performance de <i>Heterorhabditis baujardi </i>LPP7 (28) (Nematoda: Rhabditida) seleccionada para tolerancia a elevadas no controle de <i>Conotrachelus psidii, </i>(Coleoptera: Curculionidae). <i>Nematolog&iacute;a Brasileira </i>2005; 29: 199-205.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0122-7483201200030000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>6. Del Valle E, Dolinski C, Barreto E, Souza R, Samuels R. Efficacy of <i>Heterorhabditis baujardi </i>LPP7 (Nematoda: Rhabditida) applied in <i>Galleria mellonella </i>(Lepidoptera: Pyralidae) insect cadavers to <i>Conotrachelus psidii, </i>(Coleoptera: Curculionidae) larvae. <i>BiocontrolScience and Technology </i>2008; 18: 33-41.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0122-7483201200030000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>7. Dolinski  C,  Lancely  L.   Microbial   control of arthropod pests of tropical tree fruits. <i>Neotropical Entomology </i>2006; 36 (2): 161-179.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0122-7483201200030000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>8. L&oacute;pez-n&uacute;&ntilde;ez JC, Cano L, G&oacute;ngora CE, Stock P. Diversity and evolutionary relationships of entomopathogenic nematodes (Steinernematidae and Heterorhabditidae) from the Central Andean region of Colombia. <i>Nematology </i>2007; 9 (3): 333-341.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0122-7483201200030000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>9. S&aacute;enz AA, L&oacute;pez JC. Ciclo de vida y patogenicidad del aislamiento nativo <i>Heterorhabditis </i>sp. SL0708 (Rabditida: Heterorhabditidae). <i>Revista Colombiana de Entomolog&iacute;a </i>2011; 37 (1): 43-47.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0122-7483201200030000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>10. S&aacute;enz AA, Olivares W Capacidad de b&uacute;squeda de <i>Steinernema </i>sp. SNIO 198 (Rhabditida: Steinernematidae) para el control de <i>Sagalassa valida </i>Walker (Lepidoptera: Glyphipterygidae). <i>Revista Colombiana de entomolog&iacute;a </i>2008; 34 (1): 51-56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0122-7483201200030000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>11. Realpe-Aranda  FJ,  Bustillo-Pardey  AE, L&oacute;pez-N&uacute;&ntilde;ez J.C. Optimizaci&oacute;n de la cr&iacute;a de <i>Galleria mellonella </i>(L.) para la producci&oacute;n de nematodos entomopat&oacute;genos par&aacute;sitos de la broca del caf&eacute;. <i>Cenicaf&eacute; </i>2007; 58 (2): 142-157.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0122-7483201200030000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>12. Kaya HK, Stock P. Techniques in insect nematology. In: Lacey L.A. (ed.). Manual of techniques in insect pathology. San Diego, CA. 1997; 281-324.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0122-7483201200030000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>13. Shapiro-Ilan DI, Gouge DH, Piggott SJ, Patterson J. Application technology and environmental considerations for use of entomopathogenic nematodes in biological control. <i>Comparative and General Pharmacology </i>2006; 38: 124-133.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0122-7483201200030000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>14. Dolinski C, Del Valle EE, Stuart, R.J. Virulence of entomopathogenic nematodes to larvae of guava weevil, <i>Conotrachelus psidii </i>(Coleoptera: Curculionidae), in laboratory and greenhouse experiments. <i>Biological control </i>2006; 38: 422-427.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0122-7483201200030000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>15. Shapiro-Ilan DI, Mizell R, Campbell JF. Susceptibility of the plum curculio <i>Conotrachelus nenuphar </i>to   entomopathogenic   nematodes.   <i>Journal of Nematology </i>2002; 34 (3): 246-249.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0122-7483201200030000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>16. Monroy E, Insuasty O. Aspectos biol&oacute;gicos y duraci&oacute;n de los estadios del picudo de la guayaba <i>Conotrachelus psidii. Revista Corpoica: Ciencia yy Tecnolog&iacute;a Agropecuaria </i>2006; 7 (2): 73-79.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0122-7483201200030000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>17. S&aacute;enz A, Luque J. Cultivo <i>in vivo </i>y m&eacute;todo de almacenamiento para juveniles infectivos de <i>Steinernema feltiae </i>(Rhabditidae: Steinernematidae). <i>Agronom&iacute;a Colombiana </i>2000; 17 (1-3): 37-45.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0122-7483201200030000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>18. Grewal PS, Ehlers RU, Shapiro-Ilan DI. <i>Nematodes as biocontrol agents. </i>CABI Publishing. New York. 2005, 505 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0122-7483201200030000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>19. Wilson M, Gaugler R. Factors limiting short-term persistence of entomopathogenic nematodes. <i>Journal Entomology </i>2004; 128 (4): 250-253.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0122-7483201200030000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>20. Leite  LG,  Tavares  FM,  Goulart  RM, Batista A, Parra JR. Patogenicidade de nemat&oacute;ides entomopatog&ecirc;nicos a larvas de 6&deg; instar do bicho-fur&atilde;o, <i>Ecdytolopha aurantiana </i>(Lepidoptera: Tortricidae), e avalia&ccedil;&atilde;o de dosagens de <i>Heterorhabditis indica </i>na mortalidade do inseto. <i>Revista Agr&iacute;cola </i>2005; 80: 316-330.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0122-7483201200030000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>21. Kaya HK, Gaugler R. Entomopathogenic nematodes. <i>Annual Review of Entomology </i>1993; 38: 181-206.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0122-7483201200030000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>22. Lewis EE. Behavioral ecology. In: Gaugler R. (Ed.). <i>Entomopathogenic Nematology.   </i>CABI Publishing. New York. 2002, 205- 221.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0122-7483201200030000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>23. Koppenhofer AM, Fuzy EM. Soil moisture effects on infectivity and persistence of the EN <i>S. scarabaei, S. glaseri, H. zealandica </i>and <i>H. bacteriophora. Applied Soil Ecology </i>2007; 35: 128-139.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0122-7483201200030000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p> </font>      ]]></body><back>
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