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<journal-title><![CDATA[Revista de Medicina Veterinaria]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Utilización de lectinas en la inhibición de la adhesión de Pasteurella multocida]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Use of Lectins in Inhibiting the Adhesion of Pasteurella multocida]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Utilização de lectinas na inibição da adesão de Pasteurella multocida]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The first step of infection is the adhesion of pathogens to target cells. This feature not only allows them to penetrate and deploy offensive strategies to initiate colonization, but to contribute to their protection and preservation against both the immunological and mechanical defense mechanisms of the host. This process is conducted largely by the interaction of lectins, which are proteins of non-immune origin with the ability to recognize and bind carbohydrates. This mechanism has been reported for many microorganisms such as bacteria and viruses. In the particular case of Pasteurella multocida, which is a Gram-negative, opportunistic pathogen bacterium that starts the infection in the respiratory epithelium of many animals, lectin substances have been described on its surface, such as type IV fimbria, and carbohydrates such as lipopolysaccharide or the capsule that recognizes carbohydrates and lectins, respectively, on the surface of epithelial cells of the trachea, a circumstance that allows it to adhere and escape the mucociliary effect. Seeing as, to most of these microorganisms -including P. multocida-the decreased susceptibility to antibacterial agents and the effectiveness of vaccines is evident, new therapeutic and prophylactic tactics have been sought in order to interrupt pathogenic infection by blocking the carbohydrate-lectin bond by competition, where the union of the microorganism to the tissue and, therefore, the infection, is diminished.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[O primeiro passo da infecção é a adesão dos organismos patogênicos às células brancas. Esta característica lhes permite não só penetrar e implantar as estratégias ofensivas para iniciar a colonização, e sim contribuir à proteção e o resguardo destes aos mecanismos de defesa tanto imunológicos como mecânicos do hospedeiro. Este processo se leva a cabo em grande medida pela interação de lectinas, que são proteínas de origem não imune com a capacidade de reconhecer e aglutinar carboidratos. Este mecanismo tem sido reportado para muitos micro-organismos como vírus e bactérias. No caso particular da Pasteurella multocida, que é uma bactéria gram-negativa, patogênica oportunista, que inicia a infecção no epitélio respiratório de muitos animais, Têm sido descritas sobre sua superfície substâncias lectinas como a fimbria tipo IV e carboidratos como o lipopolissacarídeo ou a cápsula que reconhecem carboidratos e lectinas, respectivamente, sobre a superfície das células epiteliais do tubo respiratório, circunstância que lhe permite aderir-se e resguardar-se do efeito muco ciliar. Devido a que para a grande maioria destes micro-organismos -incluindo a P. multocida- é evidente a diminuição da susceptibilidade aos antibacterianos e à efetividade das vacinas, vem se procurando novas táticas terapêuticas e profiláticas com a finalidade de interromper a infecção dos patogênicos através do bloqueio por competência da união carboidratos-lectina, onde se vê diminuída a união do micro-organismo ao tecido e, por conseguinte, a infecção.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font face="verdana" size="2">      <br>    <p align="center"><font size="4"><b>Utilizaci&oacute;n de lectinas en la inhibici&oacute;n    <br> de la adhesi&oacute;n de <i>Pasteurella multocida</i></b></font></p>      <p align="justify">Magda Patricia Carrillo Lamus<a name="nota1"></a><a href="#nota_1"><sup>1</sup></a></p>      <p align="justify"><sup><a name="nota_1"></a><a href="#nota1">1</a></sup> Microbi&oacute;loga agr&iacute;cola y veterinaria, Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute;, Colombia. Esp. MSc (C) en Salud Animal, Universidad Nacional de Colombia. Docente y coordinadora del M&oacute;dulo de Medicina y Terap&eacute;utica, Facultad de Medicina Veterinaria, Fundaci&oacute;n Universitaria San Mart&iacute;n, Bogot&aacute;, Colombia. Investigadora del Grupo de Patobiolog&iacute;a Veterinaria. Gerente del Centro Especializado de Diagn&oacute;stico Veterinario (Microvet).    <br> <a href="mailtomagda.carrillo@sanmartin">magda.carrillo@sanmartin</a></p>      <p align="justify"><b>Recibido</b>: 12 de diciembre de 2012. <b>Aceptado</b>: 20 de marzo de 2013</b></p>  <hr>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>Resumen</b></p></font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">El primer paso de la infecci&oacute;n es la adhesi&oacute;n de los organismos pat&oacute;genos a las c&eacute;lulas blanco. Esta caracter&iacute;stica les permite no solo penetrar y desplegar las estrategias ofensivas para iniciar la colonizaci&oacute;n, sino contribuir a la protecci&oacute;n y el resguardo de estos a los mecanismos de defensa tanto inmunol&oacute;gicos como mec&aacute;nicos del hospedero. Este proceso se lleva a cabo en gran medida por la interacci&oacute;n de lectinas, que son prote&iacute;nas de origen no inmune con la capacidad de reconocer y aglutinar carbohidratos. Este mecanismo ha sido reportado para muchos microorganismos como virus y bacterias. En el caso particular de la <i>Pasteurella multocida, </i>que es una bacteria gramnegativa, pat&oacute;gena oportunista, que inicia la infecci&oacute;n en el epitelio respiratorio de muchos animales, se han descrito sobre su superficie sustancias lectinas como la fimbria tipo IV y carbohidratos como el lipopolisac&aacute;rido o la c&aacute;psula que reconocen carbohidratos y lectinas, respectivamente, sobre la superficie de las c&eacute;lulas epiteliales del tubo respiratorio, circunstancia que le permite adherirse y resguardarse del efecto mucociliar. Debido a que para la gran mayor&iacute;a de estos microorganismos &mdash;incluida <i>P. multocida</i>&mdash; es evidente la disminuci&oacute;n de la susceptibilidad a los antibacterianos y a la efectividad de las vacunas, se han buscado nuevas t&aacute;cticas terap&eacute;uticas y profil&aacute;cticas con el fin de interrumpir la infecci&oacute;n de los pat&oacute;genos por medio del bloqueo por competencia de la uni&oacute;n carbohidratos-lectina, donde se ve disminuida la uni&oacute;n del microorganismo al tejido y, por consiguiente, la infecci&oacute;n.</p>      <p align="justify"><b>Palabras clave: </b><i>Pasteurella multocida, </i>lectinas, adhesi&oacute;n, epitelio.</p>  <hr>      <br>    <p align="center"><font size="3"><b>Use of Lectins in Inhibiting the Adhesion    <br> of <i>Pasteurella multocida</i></b></font></p>  <font size="3">     <p align="justify"><b>Abstract</b></p></font>      <p align="justify">The first step of infection is the adhesion of pathogens to target cells. This feature not only allows them to penetrate and deploy offensive strategies to initiate colonization, but to contribute to their protection and preservation against both the immunological and mechanical defense mechanisms of the host. This process is conducted largely by the interaction of lectins, which are proteins of non-immune origin with the ability to recognize and bind carbohydrates. This mechanism has been reported for many microorganisms such as bacteria and viruses. In the particular case of <i>Pasteurella multocida, </i>which is a Gram-negative, opportunistic pathogen bacterium that starts the infection in the respiratory epithelium of many animals, lectin substances have been described on its surface, such as type IV fimbria, and carbohydrates such as lipopolysaccharide or the capsule that recognizes carbohydrates and lectins, respectively, on the surface of epithelial cells of the trachea, a circumstance that allows it to adhere and escape the mucociliary effect. Seeing as, to most of these microorganisms &mdash;including <i>P. multocida</i>&mdash;the decreased susceptibility to antibacterial agents and the effectiveness of vaccines is evident, new therapeutic and prophylactic tactics have been sought in order to interrupt pathogenic infection by blocking the carbohydrate-lectin bond by competition, where the union of the microorganism to the tissue and, therefore, the infection, is diminished.</p>      <p align="justify"><b>Keywords: </b><i>Pasteurella multocida, </i>lectins, adhesion, epithelium.</p>  <hr>      <br>    <p align="center"><font size="3"><b>Utiliza&ccedil;&atilde;o de lectinas na inibi&ccedil;&atilde;o da ades&atilde;o    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> de <i>Pasteurella multocida</i></b></font></p>  <font size="3">     <p align="justify"><b>Resumo</b></p></font>      <p align="justify">O primeiro passo da infec&ccedil;&atilde;o &eacute; a ades&atilde;o dos organismos patog&ecirc;nicos &agrave;s c&eacute;lulas brancas. Esta caracter&iacute;stica lhes permite n&atilde;o s&oacute; penetrar e implantar as estrat&eacute;gias ofensivas para iniciar a coloniza&ccedil;&atilde;o, e sim contribuir &agrave; prote&ccedil;&atilde;o e o resguardo destes aos mecanismos de defesa tanto imunol&oacute;gicos como mec&acirc;nicos do hospedeiro. Este processo se leva a cabo em grande medida pela intera&ccedil;&atilde;o de lectinas, que s&atilde;o prote&iacute;nas de origem n&atilde;o imune com a capacidade de reconhecer e aglutinar carboidratos. Este mecanismo tem sido reportado para muitos micro-organismos como v&iacute;rus e bact&eacute;rias. No caso particular da <i>Pasteurella multocida, </i>que &eacute; uma bact&eacute;ria gram-negativa, patog&ecirc;nica oportunista, que inicia a infec&ccedil;&atilde;o no epit&eacute;lio respirat&oacute;rio de muitos animais, T&ecirc;m sido descritas sobre sua superf&iacute;cie subst&acirc;ncias lectinas como a fimbria tipo IV e carboidratos como o lipopolissacar&iacute;deo ou a c&aacute;psula que reconhecem carboidratos e lectinas, respectivamente, sobre a superf&iacute;cie das c&eacute;lulas epiteliais do tubo respirat&oacute;rio, circunst&acirc;ncia que lhe permite aderir-se e resguardar-se do efeito muco ciliar. Devido a que para a grande maioria destes micro-organismos &mdash;incluindo a <i>P. multocida&mdash; &eacute; </i>evidente a diminui&ccedil;&atilde;o da susceptibilidade aos antibacterianos e &agrave; efetividade das vacinas, vem se procurando novas t&aacute;ticas terap&ecirc;uticas e profil&aacute;ticas com a finalidade de interromper a infec&ccedil;&atilde;o dos patog&ecirc;nicos atrav&eacute;s do bloqueio por compet&ecirc;ncia da uni&atilde;o carboidratos-lectina, onde se v&ecirc; diminu&iacute;da a uni&atilde;o do micro-organismo ao tecido e, por conseguinte, a infec&ccedil;&atilde;o.</p>      <p align="justify"><b>Palavras chave: </b><i>Pasteurella multocida, </i>lectinas, ades&atilde;o, epit&eacute;lio.</p>  <hr>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p></font>      <p align="justify">Las enfermedades infecciosas respiratorias agudas son una de las mayores causas de morbilidad y mortalidad en animales dedicados a la producci&oacute;n. Ello posiblemente se deba a la necesidad de criar los animales bajo sistemas intensivos; tales enfermedades son las responsables de grandes p&eacute;rdidas econ&oacute;micas (1, 2). Dentro de la amplia gama de microorganismos potencialmente pat&oacute;genos, bacterias del g&eacute;nero <i>Pasteurella </i>sp. (3-5) son aisladas de animales de diversas especies, desde aves hasta mam&iacute;feros, bien sea que se encuentren sanos o enfermos (3, 6, 7). En el caso particular de los conejos, <i>Pasteurella multocida </i>hace parte del complejo respiratorio, esta es una de las enfermedades m&aacute;s comunes y severas tanto en conejos de granja como de laboratorio (8-13).</p>      <p align="justify">El grupo de Patobiolog&iacute;a Veterinaria de la Universidad Nacional de Colombia (PbVUN) ha utilizado como modelo para el estudio de las enfermedades respiratorias agudas causadas por bacterias gramnegativas la producida por <i>Pasteurella multocida </i>en los conejos (14-16). Los trabajos iniciales se llevaron a cabo con la enfermedad natural, y se encontr&oacute; que en el pulm&oacute;n de los conejos afectados se produc&iacute;an severos cambios microvasculares particularmente en la forma septic&eacute;mica de la entidad. Posteriormente, los estudios en el tracto respiratorio alto mostraron marcadas alteraciones en la fosa nasal como aumento de la actividad, hiperplasia y degeneraci&oacute;n de las c&eacute;lulas caliciformes (CC) en el epitelio respiratorio, migraci&oacute;n de polimorfonucleares (PMN) y escasa presencia de bacterias tanto en los animales enfermos como en los sanos (15, 17-19).</p>      <p align="justify">En recientes trabajos <i>in vitro </i>en los que se utilizaron cultivos de septo nasal de feto de conejo expuestos individualmente a <i>P. multocida, </i>y los cuales fueron localizados con anticuerpos policlonales inmunomarcados contra el microorganismo, se encontr&oacute; que la bacteria mostraba predilecci&oacute;n de adherirse al glicoc&aacute;lix de la membrana citoplasm&aacute;tica de las cilias de las c&eacute;lulas correspondientes en el epitelio respiratorio (18).</p>      <p align="justify">Este resultado es consecuente con lo descrito por diferentes grupos de investigaci&oacute;n que reportan c&oacute;mo este microorganismo utiliza adhesinas con propiedad de lectinas entre las que se encuentran el LPS y la fimbria tipo IV para reconocer y adherirse al epitelio como un primer paso en el proceso de infecci&oacute;n, esta uni&oacute;n capacita a la bacteria con el fin de localizarse cerca de los suministros de alimento y resistir los embates de los fluidos que constantemente limpian las superficies de las mucosas (20), este microorganismo persiste en el sitio de uni&oacute;n donde prolifera, e instaura una colonizaci&oacute;n estable y produce enzimas o exotoxinas necesarias para protegerse de otras defensas del hospedero, invadir y causar s&iacute;ntomas cl&iacute;nicos (3, 21, 22); en parte debido a esto, la prevenci&oacute;n y el tratamiento de las enfermedades causadas por <i>P. multocida </i>son dif&iacute;ciles y este proceso contribuye a la poca eficacia tanto de los antibi&oacute;ticos como de las vacunas (3, 23, 24).</p>  <font size="3">     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>    <p align="justify"><b><i>PASTEURELLA MULTOCIDA</i></b></p></font>      <p align="justify"><i>P. multocida </i>hace parte de la flora normal de muchas especies animales y ha sido objeto de estudios desde 1880 cuando Louis Pasteur la reconoci&oacute; como agente causal de enfermedades fatales en aves de corral; hoy en d&iacute;a se le involucra en enfermedades que afectan una amplia cantidad de especies animales, pero tambi&eacute;n forma parte de la flora orofar&iacute;ngea normal de dichas especies (3, 22, 25-28).</p>      <p align="justify">Este microorganismo es un cocobacilo bipolar, no motil, gramnegativo, con 0,3-1,0 de ancho y 1,0-2,0 de largo, oxidasa y catalasa positivos, no hemol&iacute;tico. Se han descrito 5 tipos capsulares (A, B, D, E y F) y 16 serotipos som&aacute;ticos (29, 30). Los distintos tipos de <i>P. multocida </i>se asocian con enfermedades espec&iacute;ficas en humanos (31) y diferentes especies animales; as&iacute;, la rinitis atr&oacute;fica de los cerdos se relaciona con los serotipos A y D; la septicemia hemorr&aacute;gica en bovinos con B:2; B:2,5; E:2 y E:2,5; el c&oacute;lera aviar con A, F, y eventualmente D, y el complejo respiratorio de los conejos con los serotipos A:3 y A:12 (27, 28, 32-37).</p>      <p align="justify">Se han descrito varios factores de virulencia para las distintas <i>P. multocida, </i>entre los m&aacute;s relevantes se cuentan el lipopolisac&aacute;rido (LPS) y la c&aacute;psula que para el caso de las cepas pertenecientes al grupo A est&aacute; compuesta por &aacute;cido hialur&oacute;nico que es un pol&iacute;mero de &aacute;cido D-glucur&oacute;nico y N-acety-D-glucosamina (27, 29-32). Prote&iacute;nas como la prote&iacute;na de membrana externa ligadora del hierro, proteasa, neuraminidasa y la porina; adem&aacute;s, el m&aacute;s recientemente propuesto sistema de metilaci&oacute;n de la adenina (22, 27, 33). En algunos serotipos como el A y D se sabe que producen una toxina denominada toxina <i>P. multocida </i>(PMT); esta es una prote&iacute;na citot&oacute;xica de 146 kDa que act&uacute;a a trav&eacute;s de un complejo de v&iacute;as de se&ntilde;alizaci&oacute;n intracelular y estimula la formaci&oacute;n de rearreglos del citoesqueleto. En conejos, la PMT purificada tiene la capacidad de iniciar neumon&iacute;a aunque a&uacute;n no se conoce su papel espec&iacute;fico en la enfermedad natural (22, 27).</p>      <p align="justify">La c&aacute;psula le provee a <i>P. multocida </i>resistencia a la desecaci&oacute;n, actividad antifagoc&iacute;tica, protecci&oacute;n contra la actividad antibacteriana del complemento y act&uacute;a como receptor sobre la bacteria de lectinas ubicadas sobre las c&eacute;lulas del hospedero, mecanismo que contribuye a la adhesi&oacute;n previa a la infecci&oacute;n (29, 34-36). Para la membrana externa se han descrito diferentes prote&iacute;nas (OMP) que act&uacute;an como una barrera selectiva que previene el ingreso de mol&eacute;culas t&oacute;xicas para la bacteria cruciales en la supervivencia de esta en medioambientes adversos y, a su vez, contribuyen en la captaci&oacute;n de nutrientes, transporte de mol&eacute;culas dentro y fuera, e interacci&oacute;n con los tejidos del hospedero (22, 37-39).</p>      <p align="justify">Los an&aacute;lisis de la secuencia gen&oacute;mica de la cepa PM70 de <i>P. multocida </i>han identificado un grupo de genes que codifican para una serie de prote&iacute;nas involucradas en la adhesi&oacute;n de las bacterias al hospedero, entre aquellos se encuentran los genes que codifican para la hemaglutinina filamentosa PfbH1 y PfhB2 y las subunidades fimbriales PtfA, FimA, Fip_1 y FIp_2, y los genes que codifican para las prote&iacute;nas estructurales de las fimbrias de superficie Hsf_1 y Hsf_2, a los que se les reconoce la importancia en la adhesi&oacute;n de este pat&oacute;geno al hospedero (22, 27, 38, 40, 41).</p>      <p align="justify">Para el control de las infecciones producidas por <i>P. multocida </i>se han utilizado vacunas (bacterinas), cuya eficacia es discutible (42); en algunos casos se ha comprobado que vacunas vivas son capaces de causar enfermedad cl&iacute;nica (42-44), y tanto la ineficacia como el desarrollo de resistencia a los antibi&oacute;ticos es ampliamente conocida (45).</p>      <p align="justify">En otra v&iacute;a, la patog&eacute;nesis de la infecci&oacute;n por <i>P. multocida </i>en el nivel molecular es poco entendida; sin embargo, es claro que adem&aacute;s de los factores arriba comentados, sobre la bacteria existen sustancias proteicas denominadas lectinas que poseen la capacidad de reconocer carbohidratos (CHO) sobre la superficie de las c&eacute;lulas del hospedero, y a su vez sobre el epitelio existen lectinas que son reconocidas por los residuos CHO expuestos en la superficie bacteriana, que le permiten adherirse y evadir las l&iacute;neas de defensa del hospedero (46-48).</p>  <font size="3">     <br>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>LECTINAS</b></p></font>      <p align="justify">Las lectinas se definen como prote&iacute;nas de origen no inmune que tienen especificidad por residuos de carbohidratos, monosac&aacute;ridos, glicoprote&iacute;nas o glicol&iacute;pidos terminales o subterminales, con los que forman uniones no covalentes selectivas y reversibles, caracter&iacute;stica que les confiere la propiedad de reconocer, aglutinar c&eacute;lulas o precipitar glicoconjugados (46, 49-52). Son ubicuas en la naturaleza y se encuentran en todo tipo de organismos, desde bacterias y virus hasta plantas y vertebrados, son f&aacute;ciles de detectar y a menudo de aislar, y su papel es la base de numerosos procesos biol&oacute;gicos (52).</p>      <p align="justify">El t&eacute;rmino lectina fue inicialmente propuesto por Boyd y Shapleighen en 1954 proveniente del verbo en lat&iacute;n <i>Legere, </i>el cual significa discernir, y se refiere a la marcada selectividad con la que las lectinas se unen a estructuras carbohidrato; tambi&eacute;n han sido denominadas con los nombres de hemaglutinina o fitohemaglutinina. Hoy en d&iacute;a la denominaci&oacute;n m&aacute;s aceptada es la de lectina, la cual fue inicialmente propuesta por Goldstein et &aacute;l., en 1980, y adoptada por la nomenclatura del Comit&eacute; de la Uni&oacute;n Internacional de Bioqu&iacute;mica.</p>      <p align="justify">Las lectinas son diversas estructuralmente, con grandes diferencias en tama&ntilde;o, estructura terciaria y cuaternaria, y la estructura de los sitios de combinaci&oacute;n llamados DRC (dominio de reconocimiento de carbohidratos), tienen la capacidad de unirse a ciertos az&uacute;cares mediante interacciones moleculares no covalentes como fuerzas de van der Waals, puentes de hidr&oacute;geno, interacciones i&oacute;nicas e interacciones electrost&aacute;ticas. La uni&oacute;n entre la lectina y el carbohidrato ocurre por lo menos en dos puntos de cada mol&eacute;cula y es fundamental la disposici&oacute;n espacial del DRC, que forma una &quot;bolsa&quot; en la que ingresa el carbohidrato. A pesar de que cada lectina tiene predilecci&oacute;n por un CHO espec&iacute;fico puede tener un DRC secundario, es decir, reconocer en menor grado otros az&uacute;cares y, en algunos casos, en la afinidad pueden contribuir los polisac&aacute;ridos vecinos a estos &uacute;ltimos (53). Es com&uacute;n que lectinas con caracter&iacute;sticas muy diferentes reconozcan el mismo carbohidrato y que algunas lectinas semejantes tengan afinidad por distintos az&uacute;cares. Las lectinas siempre tienen afinidad principal por un carbohidrato espec&iacute;fico, pero pueden tenerla por otros residuos (53-55).</p>      <p align="justify">Desde principios del siglo XIX se conoce a las lectinas como prote&iacute;nas con actividad hemaglutinante y perteneciente de manera exclusiva al reino de las plantas, y no se les prest&oacute; mayor atenci&oacute;n hasta la d&eacute;cada de los sesenta cuando se les empez&oacute; a utilizar como herramientas importantes en el estudio de los carbohidratos (simples y complejos) en soluci&oacute;n o en superficies celulares y caracterizaci&oacute;n celular (56-58). Las funciones de las lectinas son diversas pero en su mayor&iacute;a son de reconocimiento, de adhesi&oacute;n de c&eacute;lulas o sustancias que incluyen s&iacute;ntesis enzim&aacute;tica, degradaci&oacute;n de oligo y polisac&aacute;ridos, transporte de carbohidratos, respuesta inmunol&oacute;gica a ant&iacute;genos carbohidratos y migraci&oacute;n de leucocitos a sitios de inflamaci&oacute;n. El hallazgo de que las de las lectinas WGA <i>(wheat germ), Canavalia ensiformis </i>(concanavalin A) y SBA <i>(soybean) </i>aglutinan c&eacute;lulas malignas y no lo hacen con c&eacute;lulas normales provee informaci&oacute;n que indica que el c&aacute;ncer podr&iacute;a estar asociado con cambios en los az&uacute;cares de las superficies celulares y permite la aplicaci&oacute;n de las lectinas en la investigaci&oacute;n de esta enfermedad (56-58). En el caso de las interacciones bacterianas las m&aacute;s importantes son las que son irreversibles y esto le permite ser m&aacute;s resistente a la acci&oacute;n mec&aacute;nica de defensa del organismo, son interacciones altamente espec&iacute;ficas donde la bacteria se une solamente a un sustrato que posee un tipo de receptor CHO espec&iacute;fico, un ejemplo cl&aacute;sico es la adhesi&oacute;n entre una lectina bacteriana como la fimbria tipo IV presente en <i>Pasteurella multocida </i>y el carbohidrato espec&iacute;fico manosa sobre la superficie del hospedero, en este caso solo las bacterias que poseen una lectina que reconozca este carbohidrato en particular podr&aacute;n adherirse al epitelio del hospedero (52, 59, 60).</p>      <p align="justify">Las fimbrias son multisubunidades submicrosc&oacute;picas tambi&eacute;n llamadas pilis, que diferencian carbohidratos espec&iacute;ficos. Esta caracter&iacute;stica ha sido repetidamente reportada en <i>Escherichia coli </i>K99 que posee especificidad por el &aacute;cido N-glicolilneuram&iacute;nico, lo cual es fundamental debido a que en la infecci&oacute;n por este microorganismo en cerdos esta sustancia se encuentra en las c&eacute;lulas intestinales de los animales reci&eacute;n nacidos y es remplazada por &aacute;cido N-acetilneuram&iacute;nico en el proceso de crecimiento y desarrollo del animal, es por esto que este pat&oacute;geno lo reconoce y causa diarrea a menudo fatal en lechones pero no en animales adultos (61).</p>      <p align="justify">En la pr&aacute;ctica cl&iacute;nica y de laboratorio las lectinas son utilizadas de diversas formas como la identificaci&oacute;n de tipos celulares particulares como es el caso de c&eacute;lulas neopl&aacute;sicas, diferenciaci&oacute;n de tipos sangu&iacute;neos o en el estudio de la funci&oacute;n espec&iacute;fica de linfocitos de acuerdo con la expresi&oacute;n de carbohidratos en su superficie; tambi&eacute;n se las emplea en la identificaci&oacute;n de microorganismos y en la terapia antiadhesi&oacute;n contra ellos (62-64).</p>      <p align="justify">La mayor&iacute;a de las enfermedades infecciosas inician con la adhesi&oacute;n de un organismo pat&oacute;geno a las c&eacute;lulas de la mucosa del hospedero. La adhesi&oacute;n es requerida para evitar el lavado y desalojo de los pat&oacute;genos por los mecanismos fisiol&oacute;gicos caracter&iacute;sticos del tejido involucrado, como por ejemplo, el movimiento permanente del tracto gastrointestinal o la acci&oacute;n mucociliar del tracto respiratorio (<a href="#f1">figura 1</a>). Este contacto tambi&eacute;n le permite a los pat&oacute;genos un mejor acceso a los recursos nutricios, facilita la liberaci&oacute;n de toxinas en el hospedero y la eventual penetraci&oacute;n del pat&oacute;geno a los tejidos. En muchos casos, la uni&oacute;n es mediada por lectinas presentes en la superficie de los microorganismos que se unen a glicoprote&iacute;nas o glicol&iacute;pidos en la superficie de los tejidos del hospedero como es el caso de los ap&eacute;ndices filamentosos largos y cortos reconocidos como pilis o fimbrias que protruyen desde la superficie de los microorganismos (<a href="#f2">figura 2</a>) (65-68); la especificidad de las lectinas es seguramente uno de los factores determinantes que no solo reconoce qu&eacute; especie colonizar sino que adem&aacute;s determina cu&aacute;ndo debe iniciarse esta colonizaci&oacute;n, y reside en lectinas de ambas superficies &mdash;la del hospedero y la de los pat&oacute;genos&mdash; que reconocen glicoprote&iacute;nas y glicol&iacute;pidos particulares en la membrana de su contraparte (52, 68).</p>      <p align="center"><a name="f1"></a><img src="img/revistas/rmv/n25/n25a09f01.jpg"></p>     <p align="center"><a name="f2"></a><img src="img/revistas/rmv/n25/n25a09f02.jpg"></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">El caso de <i>Pasteurella multocida </i>no es diferente. Glorioso et &aacute;l. (69) estudiaron la adhesi&oacute;n de <i>P. multocida </i>en monocapas de cultivos de c&eacute;lulas HeLa y c&eacute;lulas paraquerat&oacute;ticas far&iacute;ngeas donde el hallazgo m&aacute;s representativo fue la inhibici&oacute;n de la adhesi&oacute;n de la bacteria a los dos tipos celulares con N-acetil-D-glucosamina, lo que sugiere que existen receptores tipo lectinas sobre ambas superficies epiteliales que act&uacute;an como mediadores de la uni&oacute;n bacteriana a las c&eacute;lulas del hospedero; este papel se le atribuye en buena medida a las fimbrias que cuando est&aacute;n presentes en determinadas cepas se observa un elevado patr&oacute;n de adhesi&oacute;n y la ausencia de estas en la misma cepa muestra poca o ninguna adhesividad (66). Este hallazgo es consecuente con lo descrito por Al-Haddawi et &aacute;l. (70) que explican c&oacute;mo la fimbria reconoce a la N-acetil-D-glucosamina presente en las cilias del epitelio respiratorio y, a su vez, reitera que con la utilizaci&oacute;n de N-acetil-D-glucosamina es posible bloquear por competencia tal uni&oacute;n (fimbria-CHO). Por otra parte, el &aacute;cido hialur&oacute;nico presente en el serotipo capsular A es posible que contribuya a la uni&oacute;n, en este caso actuando como receptor de lectinas ubicadas sobre el epitelio, aunque para la <i>P. multocida </i>contribuir&iacute;a m&aacute;s a la evasi&oacute;n de los mecanismos del sistema inmune (62, 71-73). Jacques et &aacute;l. (74) y Hatfaludi et &aacute;l. (22) sostienen que a pesar de que <i>P. multocida </i>posee diferentes estructuras que contribuyen a la uni&oacute;n a las c&eacute;lulas del epitelio respiratorio, el LPS y la fimbria tipo IV ser&iacute;an los principales mediadores de dicha adhesi&oacute;n actuando como receptor CHO y lectina respectivamente (75). Estudios con <i>P. multocida </i>A:3 aislada de conejos enfermos encontraron que la disminuci&oacute;n del material capsular y la presencia de la fimbria incrementaron la adhesi&oacute;n de la bacteria a la tr&aacute;quea (46, 49, 66, 70).</p>      <p align="justify">Las lectinas fimbriales de superficie son estructuras submicrosc&oacute;picas elongadas relativamente r&iacute;gidas, filamentos (0,2-20 nm de largo) constituidos por cientos de subunidades proteicas heterooligom&eacute;ricas; estas estructuras multiplican las posibilidades de interacci&oacute;n con los receptores de superficie de los hospederos y permiten una fuerte adhesi&oacute;n; por ejemplo, <i>E. coli </i>con las fimbrias tipo 1 (lectina espec&iacute;fica para manosa) o tipo P (lectina espec&iacute;fica para galactosa) se adhieren a las c&eacute;lulas epiteliales en el tracto gastrointestinal y el tracto urinario, y eluden la remoci&oacute;n como consecuencia de los fluidos como la orina (22, 76-78).</p>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>TERAPIA ANTIADHESIVA</b></p></font>      <p align="justify">Las vacunas contraadhesinas bacterianas tipo lectina han mostrado eficacia en bovinos y cerdos, por ejemplo, el inmunizar vacas con adhesinas fimbriales permite la producci&oacute;n de anticuerpos antifimbriales en la leche que hacen posible que los terneros adquieran resistencia a los problemas diarreicos. Por otra parte, existe un incremento en la resistencia bacteriana a las drogas antimicrobianas y a la vacunaci&oacute;n que obliga a la comunidad cient&iacute;fica a investigar sobre nuevas alternativas terap&eacute;uticas (78). Una alternativa a las anteriores aproximaciones para la prevenci&oacute;n y el control de las infecci&oacute;n de origen bacteriano que ha mostrado resultados prometedores es el uso de sustancias que interfieren con la habilidad de las bacterias de adherirse a los tejidos del hospedero que es un requisito para la infecci&oacute;n, m&aacute;s espec&iacute;ficamente, se ha implementado el uso de az&uacute;cares con capacidad de interferir en la adhesi&oacute;n de estos microorganismos a trav&eacute;s de sus ligandos con propiedades de lectinas a los CHO de las membranas de las distintas superficies de sus hospederos (61, 64, 76, 78, 79).</p>      <p align="justify">El proceso de adhesi&oacute;n no es tan simple como habitualmente se describe, puesto que un mismo tipo bacteriano puede coexpresar m&aacute;s de un tipo de estructuras de adhesi&oacute;n y m&aacute;s de una lectina, a&uacute;n m&aacute;s, la expresi&oacute;n misma de las lectinas es dependiente de las condiciones de crecimiento en el microambiente en el que se encuentre la bacteria (64, 76, 78, 79). Con todo, uno de los principales mecanismos de adhesi&oacute;n de que disponen las bacterias son sus constituyentes glicos&iacute;dicos, bien sea en forma de glicoprote&iacute;nas como las lectinas o como az&uacute;cares complejos; as&iacute;, para <i>P. multocida </i>entre el 20 y el 30 % de todos sus genes codifican para prote&iacute;nas de membrana (OMP) y cerca del 50 % del total de la masa de la membrana externa est&aacute; compuesta por prote&iacute;nas (22); por tanto, una inhibici&oacute;n de uno de los constituyentes m&aacute;s abundantes de la superficie adhesiva de este grupo de pat&oacute;genos seguramente se reflejar&aacute; en cantidades menores de los adheridos y, en consecuencia, menores oportunidades de iniciar infecci&oacute;n, colonizaci&oacute;n y enfermedad. La terapia antiadhesiva con base en productos inocuos, en buena parte propios de los mismos microorganismos como los CHO, es una alternativa con diferentes ventajas frente a terapias un tanto m&aacute;s agresivas; para ello se utilizan productos naturales biodegradables; inocuos para el hospedero, para los propios microorganismos y el ambiente; muy econ&oacute;micos; de f&aacute;cil consecuci&oacute;n, y no generan resistencia (65, 76, 78, 80, 81).</p>      <p align="justify">Un ejemplo de actividad antiadhesiva natural son las secreciones mucosas presentes en todas las superficies epiteliales y en fluidos corporales de las distintas especies animales. El moco est&aacute; compuesto por una mezcla de agua, iones, l&iacute;pidos, prote&iacute;nas y glicoprote&iacute;nas denominadas mucinas, estas &uacute;ltimas son la mayor macromol&eacute;cula constitutiva del moco epitelial y est&aacute;n fuertemente implicadas en la salud y enfermedad de estos tejidos; en la mayor&iacute;a de los epitelios animales las mucinas son un grupo heterog&eacute;neo de glicoprote&iacute;nas de superficie altamente glicosiladas, es decir, sustituidas con oligosac&aacute;ridos; entre el 50 % y 90 % del peso molecular de las mucinas est&aacute; compuesto por carbohidratos como N-acetil-D-galactosamina, N-acetil-D-glucosa y peque&ntilde;as cantidades de manosa, fucosa, arabinosa, glucosa, xilosa y galactosa, y a pesar de que debido a su composici&oacute;n se ha demostrado el papel de la mucina en la adhesi&oacute;n celular, en la mayor&iacute;a de los casos las mucinas tienen una fuerte actividad antiadherente (82-84). Existen excelentes ejemplos evolutivos que ilustran con claridad la extensi&oacute;n y los beneficios derivados de esta forma de defensa; as&iacute;, algunos organismos acu&aacute;ticos secretan mucinas, carbohidratos antiadhesivos y lectinas que reducen el potencial adhesivo de microorganismos pat&oacute;genos como la <i>Pseudomona fluorescens </i>(83), tambi&eacute;n lo ilustra muy bien el componente sulfatado en el moco de la mucosa g&aacute;strica que inhibe la adhesi&oacute;n del <i>Helicobacter pylori, </i>a menos que los componentes del moco se alteren durante la inflamaci&oacute;n (65, 76, 78).</p>      <p align="justify">Un ejemplo cl&aacute;sico de eficacia de la terapia antiadherente a trav&eacute;s de CHO (cuyos constituyentes principales son taninos condensados o proantocianidinas) de origen natural lo compone el uso del jugo de ar&aacute;ndano <i>(Vaccinium </i>sp.) utilizado en el tratamiento de infecciones urinarias recurrentes por <i>E. coli </i>en el humano, que tambi&eacute;n disminuye la adhesi&oacute;n de <i>Streptococcus mutans </i>principal causante de las caries dentales (<a href="#f3">figura 3</a>) (76, 68, 75, 85, 86).</p>      <p align="center"><a name="f3"></a><img src="img/revistas/rmv/n25/n25a09f03.jpg"></p>      <p align="justify">La terapia antiadhesi&oacute;n tambi&eacute;n tiene algunas limitaciones, y esto se debe a que existen muchos genes en los microorganismos que codifican para diferentes adhesinas dato que indica que se necesita una mezcla de agentes antiadhesi&oacute;n para tener resultados efectivos. Tambi&eacute;n es importante recordar que la bacteria es un organismo din&aacute;mico que expresa diferentes adhesinas en las distintas etapas de su proceso infeccioso, lo que puede conducir a que la bacteria se adapte al nuevo medioambiente por mutaciones o transferencia de material gen&eacute;tico; por consiguiente, como ocurre con los antibi&oacute;ticos, puede darse un cambio en la bacteria que le permita desarrollar resistencia a los agentes antiadhesi&oacute;n. Sin embargo, si esto sucede seguramente ser&aacute; un mecanismo que se desarrolle de una manera mucho m&aacute;s lenta que con los antibacterianos debido a que los agentes que son utilizados no son bactericidas, y la propagaci&oacute;n y distribuci&oacute;n de las cepas resistentes es mucho menor a la que ocurre ante sustancias antibi&oacute;ticas (75, 76, 78).</p>  <font size="3">     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>    <p align="justify"><b>CONCLUSIONES</b></p></font>      <p align="justify">En medicina humana es ya un lugar com&uacute;n se&ntilde;alar los inconvenientes que representa el tratamiento de las distintas infecciones bacterianas con sustancias antimicrobianas (24). Tambi&eacute;n en el &aacute;mbito de la medicina veterinaria tales inconvenientes adquieren un rol significativo por el menor control en el uso de estas sustancias, particularmente en las especies animales destinadas al consumo humano (87); en consecuencia, cantidades residuales de ellas llegan permanentemente a la cadena alimenticia del humano v&iacute;a la ingesti&oacute;n de carnes o leche de animales que han sido sometidos a permanentes tratamientos con los antibacterianos, la mayor&iacute;a de las veces de forma inadecuada.</p>      <p align="justify">Por otro lado, para la prevenci&oacute;n de la infecci&oacute;n y enfermedad por <i>P. multocida </i>en las especies susceptibles de ser infectadas por este microorganismo se han ensayado m&uacute;ltiples aproximaciones para la utilizaci&oacute;n de vacunas, sin resultados satisfactorios (27, 29, 43, 42, 61, 78). Esto ha llevado a la b&uacute;squeda de alternativas para la prevenci&oacute;n y eventual tratamiento de diferentes agentes bacterianos, y en el caso particular de la <i>P. multocida </i>por medio de una estrategia no destructiva del pat&oacute;geno sino impidi&eacute;ndole su primer paso de patogenicidad como es la adhesi&oacute;n a receptores glicos&iacute;dicos en la membrana apical de la c&eacute;lulas del epitelio respiratorio, sitio inicial de colonizaci&oacute;n antes de su diseminaci&oacute;n a regiones m&aacute;s profundas del sistema respiratorio, como consecuencia de condiciones ambientales no completamente conocidas, con resultados m&aacute;s catastr&oacute;ficos para el hospedero (88-90). Por tanto, llevar a cabo tal estrategia no destructiva por medio de una terapia preventiva de la infecci&oacute;n y colonizaci&oacute;n antes de que el pat&oacute;geno ejerza efectos da&ntilde;inos sobre las c&eacute;lulas del tracto respiratorio superior permitir&iacute;a impedir que alcance lugares m&aacute;s profundos como el pulm&oacute;n (27, 29, 61).</p>      <p align="justify">En consonancia con lo anterior, y adem&aacute;s de la putativa ventaja de ejercer una menor presi&oacute;n evolutiva a formas m&aacute;s virulentas de algunas bacterias (61, 80), el empleo de CHO como posibles preventivos de su adhesi&oacute;n tendr&iacute;a beneficios adicionales entre los que se encuentran: los az&uacute;cares son de f&aacute;cil obtenci&oacute;n y aplicaci&oacute;n, son muy solubles en agua y poseen un pH estable (83). Se cita el ejemplo del jugo de ar&aacute;ndano que, al ser ingerido, inhibe la adhesi&oacute;n de <i>E. coli </i>al epitelio urogenital (80). Adicionalmente, los CHO, por ser sustancias naturales, podr&iacute;an ser menos nocivos para el organismo hospedero debido al bajo efecto citot&oacute;xico de los mismos en comparaci&oacute;n con algunas lectinas (52).</p>      <p align="justify">Debido a que las lectinas reconocen y se unen a CHO como el &aacute;cido N-acetilneuram&iacute;nico (&aacute;cido si&aacute;lico), N-acetil-D-galactosamina, D-galactosa, D-manosa localizados en la membrana apical de las c&eacute;lulas del epitelio respiratorio, incluidas las cilias, estos &uacute;ltimos actuar&iacute;an como receptores para dichas lectinas, propias de la superficie de <i>P. multocida </i>a las cuales se unen, como evidencia de que <i>P. multocida </i>tiene estructuras con comportamiento similar a estas lectinas como es el caso de la fimbria, la cual adem&aacute;s de sus propiedades adhesivas tiene otras protectoras para el pat&oacute;geno como son la disminuci&oacute;n de la acci&oacute;n del moco respiratorio y de la fagocitosis (53, 58, 80, 91, 92).</p>      <p align="justify">Glorioso et &aacute;l. (69), Sharon et &aacute;l. (64), Ofek y Doyle (65) y Ruffolo et &aacute;l. (66) reportaron que sobre la superficie bacteriana existen residuos de D-manosa, D-glucosa, D-galactosa, N-acetil-D-glucosamina, N-acetil-D-galactosamina probablemente localizados en la c&aacute;psula o en la cadena O del LPS, y que la bacteria aprovecha entre otros procesos para interactuar con el moco y reconocer sustancias con propiedad de lectinas ubicadas sobre el epitelio; debido a esta caracter&iacute;stica dichas lectinas pueden reconocer, aglutinar y precipitar al microorganismo (52, 62, 71, 93); un ejemplo de ello son las colectinas que se ha reportado que interact&uacute;an con el ant&iacute;geno O del LPS de <i>Bordetella bronchiseptica </i>(11). Y de acuerdo con esto, seg&uacute;n una propuesta a&uacute;n m&aacute;s interesante, consecuente con los estudios realizados por Sharon y Lis (52), se pueden utilizar como estrategia terap&eacute;utica o profil&aacute;ctica estos mismos CHO. Como en los estudios reportados por Al-Haddawi et &aacute;l. (70), la inhibici&oacute;n de la adhesi&oacute;n de <i>Pasteurella multocida </i>a cultivos de c&eacute;lulas HeLa se dio por la previa aplicaci&oacute;n de N-acetil-D-glucosamina a las c&eacute;lulas.</p>      <p align="justify">Esto demuestra que es posible bloquear la uni&oacute;n de la <i>P. multocida </i>al epitelio respiratorio del septo nasal de conejos y, a trav&eacute;s de tal bloqueo, impedir que el pat&oacute;geno induzca lesiones sobre dichas c&eacute;lulas; como consecuencia de ello, es probable que las mismas c&eacute;lulas epiteliales, al no sufrir da&ntilde;o por el pat&oacute;geno, est&eacute;n en capacidad de ejercer sus funciones protectoras innatas, de manera sobresaliente el barrido mucociliar.</p>  <hr>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>REFERENCIAS</b></p></font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">1. Griffin D. Economic impact associated with respiratory disease in beef cattle. Vet Clin of North Am Food Anim Pract. 1997; 13: 367-377.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0122-9354201300010000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">2.&nbsp;Bureau F, Detilieux J, Dorts T, Uys&iacute;epruyst Ch, Coghe J, Leroy Pl et &aacute;l. Spirometric performance in belgian blue calves: Effects on economic losses due to the bovine respiratory compiex. J Anim Sci. 79: 2001: 1301-1304.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0122-9354201300010000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">3.&nbsp;Harper M, Boyce J, Adler B. Minireview: <i>Pasteurella multocida </i>pathogenesis: 125 years after Pasteur. FEMS Microbiol Lett. 2006; (265): 1-10&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0122-9354201300010000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">4.&nbsp;Moreno A. Aislamiento y tipificaci&oacute;n de <i>Pasteurella multocida </i>y <i>Bordetella bronchiseptica </i>involucradas en el complejo neum&oacute;nico de conejos en una granja de la sabana de Bogot&aacute;. Tesis. Facultad de Medicina Veterinaria y de Zootecnia. Universidad Nacional de Colombia; 1995.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0122-9354201300010000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">5.&nbsp;Hodgson C, Lainson A, ZadoksHotchkiss R. Multilocus sequence typing of a global collection of <i>Pasteurella multocida </i>isolates from cattle and other host species demonstrates niche association. BMC Microbiology. 2011; 11: 115.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0122-9354201300010000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">6.&nbsp;Al-haj Alia H, Sawadaa T, Hatakeyamab H, Katayamac Y, Ohtsukid N, Itohd O. Invasion of chicken embryo fibroblast cells by avian <i>Pasteurella multocida. </i>Vet Microb. 2004; (104): 55-62&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0122-9354201300010000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">7.&nbsp;Orth J, Aktories K. Review: <i>Pasteurella multocida </i>Toxin Activates Various Heterotrimeric G. Proteins by Deamidation. Toxins. 2010; 2: 205-214.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0122-9354201300010000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">8.&nbsp;Flatt R, Dungworth D. Enzootic pneumon&iacute;a in rabbits microbiology and comparison with lesions experimentally produced by <i>Pasteurella multocida </i>and clamydial organism. Am J Vet Res. 1971; 32: 627-637.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0122-9354201300010000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">9.&nbsp;Deeb B, Digiacomo R, Bernard Bl, Silvernagel S. <i>Pasteurella multocida </i>and infections in rabbits. J Clin Microbiol. 1990; 28: 70-75.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0122-9354201300010000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">10.&nbsp;Bonilla F, Garc&iacute;a-Delgado G. Adherence of <i>Pasteurella multocida </i>to rabbit respiratory epithelial cells in vitro. Rev LatAmer Microbiol. 1993; 35:  361-369.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0122-9354201300010000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">11.&nbsp;Huertas C, Iregui C. Estudio prospectivo de la neumon&iacute;a enzo&oacute;tica por <i>Pasteurella multocida </i>y <i>Bordetella bronchiseptica </i>en dos granjas cun&iacute;culas en la altillanura de Bogot&aacute;. Abstracts XV Congreso Panamericano de Ciencias Veterinarias. Campo Grande, MS-Brasil; 1996. p. 109: 257.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0122-9354201300010000900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">12.&nbsp;Deeb B, Digiacomo R. Respiratory diseases of rabbits. Res Med. 2000; 3: 465-480.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0122-9354201300010000900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">13.&nbsp;Suelam I, Samie A, Molecular Diversity of <i>Pasteurella multocida </i>Isolated From Different Rabbit Outbreaks at Zagazig Suburbs, Egypt. Global Vet. 2011; 6 (2): 208-212.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0122-9354201300010000900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">14.&nbsp;Murillo J, Iregui C. Descripci&oacute;n morfol&oacute;gica de la presencia de bacterias durante el curso del s&iacute;ndrome de neumon&iacute;a enzo&oacute;tica en conejos. Rev Acovez. 1993; 17:  23-26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0122-9354201300010000900014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">15.&nbsp;Botero L, Iregui C. Caracterizaci&oacute;n por inmunohistoqu&iacute;mica de la relaci&oacute;n de la <i>Pasteurella multocida </i>y la <i>Bordetella bronchiseptica </i>con el epitelio de fosas nasales y nasofaringe durante el curso de la neumon&iacute;a enzo&oacute;tica de los conejos. Rev Med Vet Zoot. 1999; 46: 3-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0122-9354201300010000900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">16.&nbsp;Iregui C, Botero L, Figueroa J. Modelo de los mecanismos moleculares del inicio de la infecci&oacute;n por bacterias gramnegativas en tracto respiratorio alto. Proyecto presentado a la Divisi&oacute;n de Investigaci&oacute;n sede Bogot&aacute; (DIB). Universidad Nacional de Colombia; 2001.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0122-9354201300010000900016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">17.&nbsp;Esquinas P, Iregui C, Botero L. Comparaci&oacute;n ultraestructural de fosa nasal y nasofaringe de conejos sanos y enfermos con el s&iacute;ndrome de neumon&iacute;a enzo&oacute;tica. Memorias Cuarta Reuni&oacute;n Argentina de Patobiolog&iacute;a Veterinaria. La Plata, Argentina; 2004: 56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0122-9354201300010000900017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">18.&nbsp;Esquinas P. Interacci&oacute;n in vitro entre la <i>Pasteurella multocida </i>y/o su lipopolisac&aacute;rido con epitelio de septo nasal de conejo. Tesis de Maestr&iacute;a. Universidad Nacional de Colombia; 2006.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0122-9354201300010000900018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">19.&nbsp;Doncel B. Cuantificaci&oacute;n y caracterizaci&oacute;n histoqu&iacute;mica preliminar de las c&eacute;lulas caliciformes en fosa nasal y nasofaringe de conejos sanos y con el s&iacute;ndrome de neumon&iacute;a enzo&oacute;tica. Tesis de Maestr&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia; 2004.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0122-9354201300010000900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">20.&nbsp;Hartmann M, Lindhorst T. The Bacterial Lectin FimH, a Target for Drug Discovery - Carbohydrate Inhibitors of Type 1 Fimbriae-Mediated Bacterial Adhesion. Eur J Org Chem. 2011: 3583-3609.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0122-9354201300010000900020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">21.&nbsp;Firon F, Ofek I, Sharon N. Carbohydrate-binding sites of the mannose-specific fimbrial lectins of enterobacteria. Infect Immun. 1984; 43 (3): 1088-1090.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0122-9354201300010000900021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">22.&nbsp;Hatfaludi T, Al-Hasani K, Boyce J, Adler B. Review: Outer membrane proteins of <i>Pasteurella multocida. </i>Vet Microb. 2010; 144: 1-17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0122-9354201300010000900022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">23.&nbsp;Dowling A, Hodgson JC, Dagleish MP, Eskersall PD, Sales J. Pathophysiological and immune cell response in calves prior to and following lung challenge with formalin-killed <i>Pasteurella multocida </i>biotype A:3 and protection studies involving subsequent homologous live challenge. Vet Immun Immunopat. 2004; 100: 197-207.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0122-9354201300010000900023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">24.&nbsp;Kumarasamy K, Toleman M, Walsh T, Bagaria J, Butt F, Balakrishnan R et &aacute;l. Emergence of a new antibiotic resistance mechanism in India, Pakistan, and the UK: a molecular, biological, and epidemiological study. Reflection and reaction. 2010; 10: 70143-2.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0122-9354201300010000900024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">25.&nbsp;Davies R, MacCorquodaie R, Reilly S. Characterisation of bovine strains of <i>Pasteurella multocida </i>and comparision with isolates of avian, ovine and porcine origin. Vet Med. 1994; 99: 145-158.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0122-9354201300010000900025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">26.&nbsp;Cohen J. The immunopathogenesis of sepsis. Nature. 2002; 420: 885-891.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0122-9354201300010000900026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">27.&nbsp;Boyce J, Lo C, Wilkie I, Adler B. Pathogenesis of bacterial infections in animals. 3 edition. Chapter 20. Blackwell Publishing; 2004.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0122-9354201300010000900027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">28.&nbsp;Harper M, St. Michael F, John M, Vinogradov E, Adler B, Boyce J, Cox A. <i>Pasteurella multocida </i>Heddleston serovars 1 and 14 express different lipopolysaccharide structures but share the same lipopolysaccharide biosynthesis outer core locus. Vet Microb. 2011; 150: 289-296.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0122-9354201300010000900028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">29.&nbsp;Boyce J, Adler B. The capsule is a virulence determinant in the pathogenesis of <i>Pasteurella multocida </i>M1404 (B:2) Infec Immun. 2000; 68: 3463-3468.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0122-9354201300010000900029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">30.&nbsp;Townsend K, Boyce J, Chung J, Frost A, Adler B. Genetic organization of <i>Pasteurella multocida </i>cap loci and development of a multiplex capsular PCR typing system. J Clin Microbiol. 2001; 39 (3): 924-929.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0122-9354201300010000900030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">31.&nbsp;Caroff M, Karibian D, Cavaillon J, Haeffner-Cavaillon N. Forum in immunology: structural and functional analyses of bacterial lipopoly saccharides. Microbes and Infection. 2002; 4: 915-926.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0122-9354201300010000900031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">32.&nbsp;St. Michael F, Vinogradov E, Li J, Cox J. Structural analysis of the lipopolysaccharide from <i>Pasteurella multocida </i>genome strain pm70 and identification of the putative lipopoly saccharide glycosyl transferases. Glycobiology. 2004; 15:4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0122-9354201300010000900032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">33.&nbsp;Chen L, Paulsen D, Scruggs D, Banes M, Reeks B, Lawrence, M. Alteration of DNA adenine methylase (dam) activity <i>Pasteurella multocida </i>causes increased spontaneous frequency and attenuation in mice. Microbiology. 2003; 149: 2283-2290.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0122-9354201300010000900033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">34.&nbsp;Pruimboom I, Rimler R, Ackermann M. Enhanced adhesion of <i>Pasteurella multocida </i>to cultured turkey peripheral blood monocytes. Infect Immun. 1999; 67: 1292-1296.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0122-9354201300010000900034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">35.&nbsp;Steen J, Steen J, Harrison P, Seemann T, Wilkie I, Harper M et &aacute;l. PFis Is Essential for Capsule Production in <i>Pasteurella multocida </i>and regulates Expression of other Important Virulence Factors. Plos Pathogens. 2010; 6 (2): 1-14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0122-9354201300010000900035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">36.&nbsp;Sthitmatee N, Kataoka Y, Sawada T. Inhibition of capsular protein synthesis of <i>Pasteurella multocida </i>strain P-1059. J Vet Med Sci. 2011; 73 (11): 1445-1451.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0122-9354201300010000900036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">37.&nbsp;Confer A, Suckow M, Montelargo M, Dabo S, Milocio L, Gillestie A, Merediyh G. Intranasal vaccination of rabbits with <i>Pasteurella multocida </i>outer membranes that express iron-regulated proteins. Am J Vet Res. 2001; 62 (5): 697-703.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0122-9354201300010000900037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">38.&nbsp;Bosch M, Garrido E, Llagostera M, P&eacute;rez De Rozas A, Badiola L, Barb&eacute; I. Caracterization of the <i>Pasteurella multocida hgba </i>gene encoding a Hemoglobin-binding protein. Infect Immun. 2002; 70 (11): 5955-5964.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0122-9354201300010000900038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">39.&nbsp;Balkovetz DF, Katz J. Review: Bacterial invasion by a paracellular route: divide and conquer. Microb Infect. 2003; 5: 613-619.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0122-9354201300010000900039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">40.&nbsp;Bosch M, Garrido E, Llagostera M, P&eacute;rez de Rozas A, Badiola L, Barb&eacute; I. Caracterization of the <i>Pasteurella multocida hgba </i>gene encoding a hemoglobin-binding protein. Infect Immun. 2002; 70 (11): 5955-5964.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0122-9354201300010000900040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">41.&nbsp;Hartmann M, Lindhorst T. The Bacterial Lectin FimH, a Target for Drug Discovery - Carbohydrate Inhibitors of Type 1 Fimbriae-Mediated Bacterial Adhesion. Eur J Org Chem. 2011: 3583-3609.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0122-9354201300010000900041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">42.&nbsp;Suckow M, Haab R, Miloscio L, Guilloud N. Field trial of a <i>Pasteurella multocida </i>extract. Vaccine in rabbits. J Amer Assoc Lab Anim Scien Jan. 2008; 47 (1): 18-21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0122-9354201300010000900042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">43.&nbsp;Rimler R, Rebers P, Rhoades, K. Fowl Cholera: cross-protection induced by <i>Pasteurella multocida </i>separated from infected turkey blood. Avian Dis. 1979; 23: 730-741.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0122-9354201300010000900043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">44.&nbsp;Verma R, Jaiswal T. Haemorrhagic Septicaemia Vaccines. Vaccine. 1998; 16: 1184-1192.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0122-9354201300010000900044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">45.&nbsp;Dowling A, Hodgson J, Dagleish M, Eskersall P, Sales J. Pathophysiological and immune cell response in calves prior to and following lung challenge with formalin-killed <i>Pasteurella multocida </i>biotype a:3 and protection studies involving subsequent homologous live challenge. Vet Immun Immunopat. 2004; 100: 197-207.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0122-9354201300010000900045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">46.&nbsp;Perfumo C, Itagaki S, Venturini C, Doi K. Aplicaci&oacute;n de t&eacute;cnicas de lectina histoqu&iacute;mica para la identificaci&oacute;n de g&eacute;neros de bacterias pat&oacute;genas primarias del pulm&oacute;n del cerdo y del conejo; 1985.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0122-9354201300010000900046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">47.&nbsp;Paustian M, May B, Kapur V. <i>Pasteurella multocida </i>gene expression in response iron limitation. Infect Immun. 2001; 69: 4109-4115.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S0122-9354201300010000900047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">48.&nbsp;Boyce J, Wilkie L, Harper M, Paustian M, Kapur V, Adler B. Genomic-scale analysis of <i>Pasteurella multocida </i>gene expression during growth within the natural chicken host. Infect Immun. 2002; 70: 6871-6879.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S0122-9354201300010000900048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">49.&nbsp;Perfumo C, Mores N, Armocida A, Piffer L, Massone A, Itagaki S. Histochemical and lectinhistochemical studies on nasal mucosa on pigs with or without respiratory diseases. J Vet Med Sci. 1998; 60: 1021-1023.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S0122-9354201300010000900049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">50.&nbsp;Barbeito C, Massone A, Quiroga M. Aplicaci&oacute;n de las t&eacute;cnicas de lectin-histoqu&iacute;mica. Aplicaciones en patolog&iacute;a veterinaria. La Plata: Universidad Nacional de La Plata; 1990.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S0122-9354201300010000900050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">51.&nbsp;Peacock J, Colsky A, Pinio V. Lectins and antibodies as tool for studying cellular interactions. J Immunol Meth. 1990; 126: 147-157.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000171&pid=S0122-9354201300010000900051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">52.&nbsp;Sharon N, Lis H. Lectins. 2 Edition. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers; 2003.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000173&pid=S0122-9354201300010000900052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">53.&nbsp;Sharon N. Atomic Basis of Protein-Carbohydrate Interactions: An Overview. Chapter 1;  2005. p. 1-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000175&pid=S0122-9354201300010000900053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">54.&nbsp;Barondes, H. Lectins: their multiple endogenous cellular functions. Ann Rev Biochero. 1981; 207-231.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000177&pid=S0122-9354201300010000900054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">55.&nbsp;Roth J. Cellular Sialoglycoconjugates: A Histochemical Perspective. Histochem J. 1993; 25: 687-710.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000179&pid=S0122-9354201300010000900055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">56.&nbsp;Spicer S, Baron D, Sato A, Schulte, B. Variability of cell surface glycoconjugates - relation to differences in cell function. J Histochem Citochem 1981; 29 (9): 994-1002.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000181&pid=S0122-9354201300010000900056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">57.&nbsp;Corredor C. Glicoproteinas Salivares: variaciones interpersonales detectadas por lectinas. Odontol&oacute;gica Maxilofacial. SCCOMF. 1988; 3: 9-18.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000183&pid=S0122-9354201300010000900057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">58.&nbsp;Sharon N. Lectins: past, present and future. Biochem Soc Trans 2008; 36: 1457-1460.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000185&pid=S0122-9354201300010000900058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">59.&nbsp;Doyle R, Keller K. Lectins and diagnostic microbiology. Eur J Clin Microbiol. 1984; 3: 4-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000187&pid=S0122-9354201300010000900059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">60.&nbsp;Corredor C. Electroforesis de afinidad para el estudio de glicoproteinas s&eacute;ricas o salivares. Odontol&oacute;gica maxilofacial. SCCOMF. 1990; 4: 28-38.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000189&pid=S0122-9354201300010000900060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">61.&nbsp;Ofek I, Sharon N. Visions &amp; Reflections. A bright future for anti-adhesion therapy of infectious diseases. Cell Molec Life Scien. 2002; 59: 1666-1667.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000191&pid=S0122-9354201300010000900061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">62.&nbsp;Pistole T. Interaction of bacteria and fungi with lectins and Lectin-like substances. Ann Rev Microbiol. 1981; 35: 85-111.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000193&pid=S0122-9354201300010000900062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">63.&nbsp;Danguy A, Kiss R, Pasteels J. Lectins in histochemistry. A survey. Biological Structures and Morphogeneseis. 1988; 1 (3): 93-106.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000195&pid=S0122-9354201300010000900063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">64.&nbsp;Sharon N. Lectins: carbohydrate-specific reagents and biological recognition molecules. J Biol Chem. 2007; 282 (5): 2753-2764.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000197&pid=S0122-9354201300010000900064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">65.&nbsp;Ofek I, Doyle R. Bacterial Adhesion to Cells and Tissues. T Mic. 1994;  3 (4): 163.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000199&pid=S0122-9354201300010000900065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">66.&nbsp;Ruffolo C, Tennent J, Michalski W, Adler B. Identification, Purification, and Characterization of the Type 4 Fimbriae of <i>Pasteurella multocida. </i>Infect Immun. 1997; 65 (1): 339-343.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000201&pid=S0122-9354201300010000900066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">67.&nbsp;Chiu C, Wong S, Hancock R, Speert D, Adherence of Burkholderia cepacia torespiratory tract epithelial cells and inhibition with dextrans. Microbiology. 2001; 147: 2651-2658.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000203&pid=S0122-9354201300010000900067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">68.&nbsp;Acord J, Maskell J, Sefton A. A rapid microplate method for quantifying inhibition of bacterial adhesion to eukaryotic cells. J Microb Met. 2005; 60: 55-62.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000205&pid=S0122-9354201300010000900068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">69.&nbsp;Glorioso J, Jones G, Rush H, Pentler L, Darif C, Coward J. Adhesion type A <i>Pasteurella multocida </i>to rabbit pharyngeal cells and its possibie role in rabbit respiratory tract infections. Infec Immun. 1982; 35: 1103-1109.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000207&pid=S0122-9354201300010000900069&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">70.&nbsp;Al-Haddawi M, Jasni S, Zamri-Saad M, Mutalib A, Zulkif&uuml;z L, Son R. In vitro study of <i>Pasteurella multocida </i>adhesion to trachea, lung and aorta of rabbits. Vet J. 2000; 159: 274-281.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000209&pid=S0122-9354201300010000900070&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">71.&nbsp;Payne P, Campbell S, Patchetl R. Kroll R. The use of immobilized lectins in the separation of <i>Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Listeria and Salmonella </i>spp. from pure cultures and foods. J Appli Bact. 1992; 73: 41-52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000211&pid=S0122-9354201300010000900071&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">72.&nbsp;Jacques M, Foiry B. Electron microscopic visualization of capsular material of <i>Pasteurella multocida </i>types and labeled with polycationic ferritin. Infect Immune. 1987; 169: 8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000213&pid=S0122-9354201300010000900072&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">73.&nbsp;Qaddoumi M, Lee V. Lectins as Endocytic Ligands: An Assessment of Lectin Binding and Uptake to Rabbit Conjunctival Epithelial Cells. Pharm Res. 2004; 21: 7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000215&pid=S0122-9354201300010000900073&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">74.&nbsp;Jacques M, Paradis S. Adhesin receptor interactions in Pasteurellaceae. FEMS Microb Rev. 1998; 22: 45-59.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000217&pid=S0122-9354201300010000900074&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">75.&nbsp;Matto S, Miller J, Cotter P. Role of <i>Bordetella bronchiseptica </i>fimbriae in tracheal colonizatton and development of a humoral Immune response. Infec&iacute; Immun. 2000; 68: 2024-2033.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000219&pid=S0122-9354201300010000900075&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">76.&nbsp;Foo L, Lu Y, Howell A, Vorsa N. The Structure of Cranberry Proanthocyanidins which Inhibit Adherence of Uropathogenic P-fimbriated <i>E. coli </i>in vitro. Phytochemistry. 2000; 54: 173-183.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000221&pid=S0122-9354201300010000900076&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">77.&nbsp;Mason M, Azizi S, Nogare A. Respiratory epithelial carbohydrate levels of rats with gramnegative bacillary colonization. J Lab Clin Med. 1992; 120 (5): 740-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000223&pid=S0122-9354201300010000900077&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">78.&nbsp;Ofek I, Hasty D, Sharon N. MiniReview: Antiadhesion therapy of bacterial diseases: prospects and problems. FEMS Immun Med Microb. 2003; 38: 181-191.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000225&pid=S0122-9354201300010000900078&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">79.&nbsp;Cisar O, Takahashi J, Ruhl S, Donkersloot J, Sandberg A. Specific inhibitors of bacterial adhesion: observations from the study of gram-positive bacteria that initiate biofilm formation on the tooth surface. Adv Dent Res. 1997; 11 (1): 168-175.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000227&pid=S0122-9354201300010000900079&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">80.&nbsp;Sharon N, Ofek I. Fighting infectious diseases with inhibitors of microbial adhesion to host tissues. Crit Rev Food Scien Nutrit. 2002; 42 (Suppl.): 267-272.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000229&pid=S0122-9354201300010000900080&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">81.&nbsp;Aronson M, Medalia O, Schori L, Mirelman D, Sharon N, Ofek I. Prevention of colonization of the urinary tract of mice with <i>Escherichia coli </i>by blocking of bacterial adherence with methyl a-d-mannopyranoside. Lancet Infect Dis. 2010; 10 (9): 597-602.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000231&pid=S0122-9354201300010000900081&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">82.&nbsp;Shi L, Ardehali R, Caldwell K, Valint P. Mucin coating on polymeric material surfaces to suppress bacterial adhesion. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 2000; 17: 229-239.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000233&pid=S0122-9354201300010000900082&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">83.&nbsp;Bavington C, Page C. Stopping Bacterial Adhesion: A Novel Approach to reating Infections. Respiration. 2005; 72: 335-344.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000235&pid=S0122-9354201300010000900083&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">84.&nbsp;Lehmanna F, Tiralongob E, Tiralongoa J. Review: Sialic acid-specific lectins: occurrence, specificity and function. Cell Mol Life Sci. 2006; 63: 1331-1354.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000237&pid=S0122-9354201300010000900084&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">85.&nbsp;Kahn D, Panariello V, Saeli J, Sampson J, Schwwartz E. Implications for therapy of urinary tract infection and calculi: effect of cranberry juice on urine. J Am Dietetic Assoc. 1967; 51: 251.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000239&pid=S0122-9354201300010000900085&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">86.&nbsp;Weiss E, Lev-Dor R, Kashmamn Y, Goldhar J, Sharon N, Ofek I. Inhibiting interspecies coagregation of plaque bacteria with a cranberry juice contrituent. J Am Dent Assoc. 1998; 129: 1719-1723.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000241&pid=S0122-9354201300010000900086&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">87.&nbsp;Dziva F, Christensen H, van Leengoed L, Mohan K, Olsen J. Differentiation of <i>Pasteurella multocida </i>isolates from cases of atrophic rhinitis in pigs from zimbabwe by rapd and ribotyping. Vet Mic. 2004; 19: 102 (1-2): 117-22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000243&pid=S0122-9354201300010000900087&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">88.&nbsp;Frost A, Adler B. <i>Pasteurella multocida: </i>the elusive determinants of virulence and immunity. Vetmicrob. 2000; 72: 1-2.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000245&pid=S0122-9354201300010000900088&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">89.&nbsp;Miyoshi S, Hamada H, Miyoshi A, Ito R, Hamaguchi N, Murakami S et &aacute;l. <i>Pasteurella multocida </i>pneumonia: Zoonotic transmission confirmed by molecular epidemiological analysis. Japan Geriatrics Society. 2011; 159-163.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000247&pid=S0122-9354201300010000900089&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">90.&nbsp;Digiacomo R, Taylor F, Alien B, Hinton M. Naturally acquiered <i>Pasteurella multocida </i>infection in rabbits: immunological aspeets. Labanim Sci. 1990; 40: 289-292.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000249&pid=S0122-9354201300010000900090&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">91.&nbsp;Borkowska-Opacka B, Rutkowska-Jurga I, Truszynky M. Determination of the serotypes of <i>Pasteurella multocida </i>strains isoiated from rabbit. Bull Vet Ins Pulawy. 1995; 39: 9-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000251&pid=S0122-9354201300010000900091&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">92.&nbsp;Mogoll&oacute;n J, Valenzuela S. Inmunidad y patog&eacute;nesis de las enfermedades respiratorias del cerdo (revisi&oacute;n de literatura). Rev Ceisa. 1995; 2: 104-126.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000253&pid=S0122-9354201300010000900092&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">93.&nbsp;Kawamoto E, Swada T, Maruyama T. Evaluation of transport media for <i>Pasteurella multocida </i>isolates from rabbit nasal specimens. J Clin Microbiol. 1997; 35: 1948-1951.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000255&pid=S0122-9354201300010000900093&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>  </font>      ]]></body><back>
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