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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Establecimiento de un protocolo de reproducción para la obtención de especímenes murinos embrionarios/fetales]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Establishment of a Breeding Protocol for Obtaining Embryonic/Fetal Murine Specimens]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Estabelecimento de um protocolo de reprodução para a obtenção de espécimes murinas embrionárias/fetais]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Scientific research uses animal models in experimental situations where it is controversial to research with human specimens; such is the case of research with embryonic/fetal samples, where strict reproductive protocols are required that enable the accurate calculation of gestational age and thus obtaining appropriate sampling. Mice are the most widely used experimental models, as they are easy to handle and are of reproductive efficiency. The purpose of this paper is to present a reproduction protocol that makes it possible to determine the day of pregnancy in Mus musculus biomodel with certainty, in order to obtain embryonic/fetal specimens.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[A pesquisa científica utiliza modelos animais em situações experimentais onde é controverso pesquisar com espécimes humanos, tal é o caso da pesquisa com amostras embrionárias/ fetais, donde se requer de estritos protocolos reprodutivos que possibilitem um cálculo preciso da idade gestational e com isso a obtenção de amostras adequadas. O rato é o modelo de experimentação mais utilizado, pois é de fácil manipulação e eficiência reprodutiva. O objetivo deste trabalho é apresentar um protocolo de reprodução que permite determinar com certeza o dia de prenhez em biomodelo Mus musculus, para a obtenção de espécimes embrionários/fetais.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font face="verdana" size="2">      <br>    <p align="center"><font size="4"><b>Establecimiento de un protocolo de reproducci&oacute;n para la obtenci&oacute;n de espec&iacute;menes murinos embrionarios/fetales</b></font></p>      <p align="justify">Diana Marcela Mendoza<a name="nota1"></a><a href="#nota_1"><sup>1</sup></a> / Liliana Salazar<a name="nota2"></a><a href="#nota_2"><sup>2</sup></a> / Luis Eduardo Bravo<a name="nota3"></a><a href="#nota_3"><sup>3</sup></a></p>      <p align="justify"><sup><a name="nota_1"></a><a href="#nota1">1</a></sup> Estudiante de pregrado, Escuela de Medicina, Universidad del Valle, Cali, Colombia.    <br> <a href="mailto:dimarmend@hotmail.com">dimarmend@hotmail.com</a></p>      <p align="justify"><sup><a name="nota_2"></a><a href="#nota2">2</a></sup> Mag&iacute;ster en Morfolog&iacute;a, Facultad de Salud, Universidad del Valle, Cali, Colombia.    <br> <a href="mailto:iliana.salazar@correounivalle.edu.co">iliana.salazar@correounivalle.edu.co</a></p>      <p align="justify"><sup><a name="nota_3"></a><a href="#nota3">3</a></sup> Especialista en Patolog&iacute;a, MSc en Microbiolog&iacute;a M&eacute;dica, Msc en Epidemiolog&iacute;a, Facultad de Salud, Universidad del Valle, Cali, Colombia.    <br> <a href="mailto:bravo.luiseduardo@gmail.com">bravo.luiseduardo@gmail.com</a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>Recibido</b>: 23 de julio del 2013. <b>Aceptado</b>: 19 de septiembre del 2013</p>      <p align="justify">C&oacute;mo citar este art&iacute;culo: Mendoza DM, Salazar L, Bravo LE. Establecimiento de un protocolo de reproducci&oacute;n para la obtenci&oacute;n de espec&iacute;menes murinos embrionarios-fetales. Rev Med Vet. 2013;(26):79-89.</p>  <hr>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>Resumen</b></p></font>      <p align="justify">La investigaci&oacute;n cient&iacute;fica utiliza modelos animales en situaciones experimentales en las que es controversial investigar con espec&iacute;menes humanos; tal es el caso de la investigaci&oacute;n con muestras embrionarias/fetales, donde se requieren estrictos protocolos reproductivos que posibiliten un c&aacute;lculo preciso de la edad gestacional y con ello la obtenci&oacute;n de muestras adecuadas. El rat&oacute;n es el modelo de experimentaci&oacute;n m&aacute;s utilizado, pues es de f&aacute;cil manipulaci&oacute;n y eficiencia reproductiva. El objetivo de este trabajo es presentar un protocolo de reproducci&oacute;n que permite determinar con certeza el d&iacute;a de pre&ntilde;ez en biomodelo <i>Mus musculus, </i>para la obtenci&oacute;n de espec&iacute;menes embrionarios/fetales.</p>      <p align="justify"><b>Palabras clave: </b>reproducci&oacute;n, tap&oacute;n vaginal, <i>Mus musculus.</i></p>  <hr>      <br>    <p align="center"><font size="3"><b>Establishment of a Breeding Protocol for Obtaining Embryonic/Fetal Murine Specimens</b></font></p>  <font size="3">     <p align="justify"><b>Abstract</b></p></font>      <p align="justify">Scientific research uses animal models in experimental situations where it is controversial to research with human specimens; such is the case of research with embryonic/fetal samples, where strict reproductive protocols are required that enable the accurate calculation of gestational age and thus obtaining appropriate sampling. Mice are the most widely used experimental models, as they are easy to handle and are of reproductive efficiency. The purpose of this paper is to present a reproduction protocol that makes it possible to determine the day of pregnancy in <i>Mus musculus </i>biomodel with certainty, in order to obtain embryonic/fetal specimens.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>Keywords: </b>Reproduction, vaginal plug, <i>Mus musculus.</i></p>  <hr>      <br>    <p align="center"><font size="3"><b>Estabelecimento de um protocolo de reprodu&ccedil;&atilde;o para a obten&ccedil;&atilde;o de esp&eacute;cimes murinas embrion&aacute;rias/fetais</b></font></p>  <font size="3">     <p align="justify"><b>Resumo</b></p></font>      <p align="justify">A pesquisa cient&iacute;fica utiliza modelos animais em situa&ccedil;&otilde;es experimentais onde &eacute; controverso pesquisar com esp&eacute;cimes humanos, tal &eacute; o caso da pesquisa com amostras embrion&aacute;rias/ fetais, donde se requer de estritos protocolos reprodutivos que possibilitem um c&aacute;lculo preciso da idade gestational e com isso a obten&ccedil;&atilde;o de amostras adequadas. O rato &eacute; o modelo de experimenta&ccedil;&atilde;o mais utilizado, pois &eacute; de f&aacute;cil manipula&ccedil;&atilde;o e efici&ecirc;ncia reprodutiva. O objetivo deste trabalho &eacute; apresentar um protocolo de reprodu&ccedil;&atilde;o que permite determinar com certeza o dia de prenhez em biomodelo <i>Mus musculus, </i>para a obten&ccedil;&atilde;o de esp&eacute;cimes embrion&aacute;rios/fetais.</p>      <p align="justify"><b>Palavras chave: </b>reprodu&ccedil;&atilde;o, tamp&atilde;o vaginal, <i>Mus musculus.</i></p>  <hr>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p></font>      <p align="justify">El animal de laboratorio es aquel esp&eacute;cimen mantenido bajo condiciones controladas, con el fin de ser utilizado como instrumento de medida en investigaci&oacute;n cient&iacute;fica. Actualmente representa un elemento crucial en el entendimiento de procesos biol&oacute;gicos, la validaci&oacute;n de modelos cl&iacute;nicos y en general en la resoluci&oacute;n de interrogantes que contribuyen al desarrollo de la biolog&iacute;a humana (1).</p>      <p align="justify">El uso de modelos animales es frecuente en la comprensi&oacute;n de procesos cuyo estudio en el hombre es controversial; tal es el caso de trabajos que contemplan obtenci&oacute;n de espec&iacute;menes embrionarios, donde es imperativo el establecimiento de estrictos protocolos reproductivos que posibiliten un c&aacute;lculo preciso de la edad gestacional y con ello la obtenci&oacute;n de muestras adecuadas (2).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">El rat&oacute;n, clase: Mamalia, orden: Rodentia, familia: Muridae, g&eacute;nero: Mus, especie: <i>musculus, </i>es considerado por muchos investigadores un modelo animal casi perfecto porque adem&aacute;s de su talla peque&ntilde;a, su corto tiempo generacional, f&aacute;cil mantenimiento y gran rendimiento a lo largo de todo el a&ntilde;o, su genoma es muy similar al de los humanos. En el 2002, cuando se hizo su secuenciaci&oacute;n, se encontr&oacute; que posee m&aacute;s del 99% de genes conservados con el hombre. Por otro lado, padece de s&iacute;ndromes muy similares que lo convierten en un buen candidato para el estudio de patolog&iacute;as como c&aacute;ncer, diabetes, aterosclerosis, enfermedades endocrinas, disfunciones neurol&oacute;gicas, entre otras (3). Es un mam&iacute;fero de sangre caliente con h&aacute;bitos esencialmente nocturnos y un comportamiento influenciado por feromonas, con una din&aacute;mica sexual y social dependiente de la interacci&oacute;n de compuestos odor&iacute;feros (4).</p>      <p align="justify">Las hembras se pueden reproducir en estado salvaje desde la sexta semana, en tanto que la edad m&iacute;nima reproductiva de los ratones de laboratorio es de sesenta d&iacute;as, con un tiempo de gestaci&oacute;n que var&iacute;a entre los diecinueve y veinti&uacute;n d&iacute;as. Poseen un &uacute;tero bicorne unido en su porci&oacute;n caudal; presentan ciclo estral poli&eacute;strico con duraci&oacute;n de cuatro a cinco d&iacute;as; su primer estro puede darse a los veinticuatro d&iacute;as, pero la madurez sexual la alcanzan entre la s&eacute;ptima y la novena semana posnatal (5). El ciclo estral puede ser dividido en cuatro fases: proestro, estro, metaestro y diestro; en cada fase se pueden reconocer cambios morfol&oacute;gicos en ovarios, tubas, &uacute;tero y mamas. Estas etapas pueden ser reconocidas por varios m&eacute;todos, entre ellos, la citolog&iacute;a vaginal, la medici&oacute;n de la impedancia el&eacute;ctrica, la bioqu&iacute;mica de la orina y la observaci&oacute;n visual de los genitales externos.</p>      <p align="justify">En hembras menores de quince meses, durante el proestro, los fol&iacute;culos antrales en expansi&oacute;n secretan estr&oacute;genos que promueven la proliferaci&oacute;n y el consecuente engrosamiento del epitelio vaginal; en la citolog&iacute;a se observan c&eacute;lulas epiteliales nucleadas y pocos leucocitos. Esta caracter&iacute;stica dura alrededor de doce horas y en ella el orificio vaginal posee un color rosado, es h&uacute;medo y dilatado.</p>      <p align="justify">En el estro ocurre la ovulaci&oacute;n, la hembra aumenta su receptividad, observ&aacute;ndose comportamientos proceptivos de b&uacute;squeda del macho, as&iacute; como lordosis, postura dorsoarqueada en respuesta a la monta del macho, lo que permite la intromisi&oacute;n del pene en la vagina (esta postura se utiliza como &iacute;ndice de receptividad sexual). La receptividad sexual dura alrededor de trece horas, usualmente se liberan entre diez y veinte &oacute;vulos por ovulaci&oacute;n.</p>      <p align="justify">Debido a la ca&iacute;da de los niveles de estr&oacute;genos, la capas m&aacute;s externas del epitelio vaginal se queratinizan y descaman hacia el lumen. Por este motivo, el frotis vaginal se caracteriza por grandes cantidades de c&eacute;lulas cornificadas, irregulares y sin n&uacute;cleo, disminuci&oacute;n en las mitosis y ausencia de leucocitos. Aqu&iacute; el orificio vaginal se encuentra dilatado, menos rosado que en la fase anterior.</p>      <p align="justify">En el metaestro existe secreci&oacute;n de progesterona; se observa descamaci&oacute;n de las c&eacute;lulas cornificadas (deterioro del epitelio) y se encuentran leucocitos en la capa superficial del epitelio vaginal. Este momento dura aproximadamente veinti&uacute;n horas.</p>      <p align="justify">En el diestro se presenta un marcado incremento del n&uacute;mero leucocitario y reducci&oacute;n de la altura epitelial. En el extendido se observan algunas c&eacute;lulas epiteliales nucleadas (inicio de la fase proliferativa). Este estado dura entre 56 a 65 h aproximadamente (6).</p>      <p align="justify">El n&uacute;mero de individuos por camada es de seis a diecis&eacute;is seg&uacute;n el grado de consanguinidad, edad y cepa; estas caracter&iacute;sticas determinan una de las mejores estructuras de producci&oacute;n embrionaria/fetal en el tiempo.</p>      <p align="justify">La formaci&oacute;n de tap&oacute;n mucoso en el introito vaginal, como indicador de la fecundaci&oacute;n, brinda al observador un par&aacute;metro objetivo de este acontecimiento que, combinado con observaci&oacute;n de caracter&iacute;sticas comportamentales y f&iacute;sicas, proporcionan al investigador herramientas para tener precisi&oacute;n en las edades embrionarias de las camadas (7).</p>      <p align="justify">En nuestro medio, espec&iacute;ficamente para el caso del bioterio de la Universidad del Valle, Cali, Colombia, la disponibilidad de protocolos de apareamiento es limitada, por lo cual surge la necesidad de estandarizar metodolog&iacute;as que sean &uacute;tiles a los futuros investigadores en el &aacute;rea de las ciencias biom&eacute;dicas con inter&eacute;s en la obtenci&oacute;n de biomodelos intrauterinos del <i>Mus musculus.</i></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">El objetivo de este trabajo es presentar la construcci&oacute;n de un protocolo de reproducci&oacute;n que permiti&oacute; obtener espec&iacute;menes embrionarios/fetales murinos del biomodelo animal <i>Mus musculus </i>de los estadios E15, E16, E17, E17.5, E18 y E18.5.</p>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p></font>      <p align="justify">Para el establecimiento del protocolo de reproducci&oacute;n, se solicit&oacute; al bioterio de la Universidad del Valle, el suministro de los biomodelos. Se recibieron veintitr&eacute;s hembras y seis machos entre la sexta y la octava semana de vida, con pesos estimados de 40 g para las hembras y 50 g para los machos. Todo el proceso de reproducci&oacute;n se realiz&oacute; en una de las salas del bioterio dispuesta para el proyecto, entre el 23 de diciembre del 2011 y el 1 de marzo del 2012.</p>      <p align="justify">Los biomodelos se alojaron en jaulas de policarbonato Arcare, con dimensiones de 44 cm x 20 cm X 21 cm. Se utiliz&oacute; viruta de madera para el cubrimiento del piso. La alimentaci&oacute;n y el agua se suministraron <i>ad libitum. </i>El manual del bioterio no tiene establecida variaci&oacute;n en la alimentaci&oacute;n al momento de la pre&ntilde;ez. El espacio donde se ubicaron los 29 biomodelos mantuvo las condiciones ambientales de luz-oscuridad (12-12 h), temperatura entre 18-22 &deg;C y humedad relativa ambiental de 55-65%.</p>      <p align="justify">Se utiliz&oacute; un estante con cuatro niveles: el nivel inferior se dispuso para las hembras pre&ntilde;adas y en los niveles superiores se ten&iacute;an las jaulas con los machos que se apareaban con las hembras.</p>      <p align="justify">El protocolo se organiz&oacute; en cuatro etapas: 1) establecimiento del patr&oacute;n de identificaci&oacute;n para cada individuo; 2) formaci&oacute;n de los grupos de apareamiento; 3) evidencia de tap&oacute;n mucoso vaginal y aislamiento, y 4) verificaci&oacute;n de edades embrionarias y fetales.</p>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>Etapa 1. Establecimiento del patr&oacute;n de identificaci&oacute;n en cada esp&eacute;cimen</b></p></font>      <p align="justify">Todos los espec&iacute;menes incluidos en la investigaci&oacute;n tuvieron asignado un c&oacute;digo &uacute;nico cuya estructura estuvo determinada por una letra y dos d&iacute;gitos. El primer car&aacute;cter correspond&iacute;a a la letra may&uacute;scula <i>H </i>o <i>M </i>que designaba el sexo del esp&eacute;cimen; los d&iacute;gitos que acompa&ntilde;aban la letra indicaban el orden en que fueron rotulados.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Para la identificaci&oacute;n visual de las hembras, se dibuj&oacute; un car&aacute;cter gr&aacute;fico en la cola; de esta forma un s&iacute;mbolo relacionaba cada animal con su c&oacute;digo &uacute;nico. El patr&oacute;n gr&aacute;fico estuvo compuesto por l&iacute;neas realizadas con marcador permanente. En los machos, por ser m&aacute;s sensibles a est&iacute;mulos olfatorios, se omiti&oacute; la simbolizaci&oacute;n gr&aacute;fica de los mismos en el cuerpo; para su identificaci&oacute;n se asign&oacute; a cada jaula un r&oacute;tulo que conten&iacute;a el c&oacute;digo de cada uno.</p>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>Etapa 2. Formaci&oacute;n de grupos de apareamiento</b></p></font>      <p align="justify">Se utiliz&oacute; el sistema reproductivo polig&aacute;mico o har&eacute;n. Durante el d&iacute;a, los machos permanecieron en jaulas individuales y las hembras se agruparon en cuatro jaulas; en subgrupos de cinco y seis. Los apareamientos se planificaron para las horas de oscuridad, de tal forma que a partir de las 7 p.m. se ten&iacute;an seis cub&iacute;culos nocturnos de reproducci&oacute;n, correspondientes a cada uno de los machos.</p>      <p align="justify">En el plantel de apareamiento, conocido como har&eacute;n las hembras, se trasladan a las jaulas de los machos. En el protocolo dise&ntilde;ado, tres hembras fueron trasladadas a cada jaula de los machos; las cinco hembras restantes se agruparon en una misma jaula sin participar del contacto reproductivo; el planteamiento inicial estableci&oacute; que cuando las reproducciones fueran exitosas se utilizar&iacute;an estas hembras en el proceso de apareamiento para completar nuevamente el har&eacute;n de cada macho.</p>      <p align="justify">Pasadas ocho horas, se proced&iacute;a a la revisi&oacute;n del &aacute;rea genital en las hembras, para determinar presencia de tap&oacute;n mucoso vaginal; quienes lo presentaban, eran llevadas a jaula individual. Aquellas hembras a las que no se evidenciaba presencia del tap&oacute;n, se devolv&iacute;an a sus jaulas, pues la c&oacute;pula se consideraba infructuosa.</p>      <p align="justify">Cada noche se vari&oacute; el grupo de hembras en contacto con los machos, por esta raz&oacute;n fue imperioso el diligenciamiento riguroso de los esquemas reproductivos. Esto constituy&oacute; la gu&iacute;a para realizar la rotaci&oacute;n de los biomodelos. Al completar un ciclo de seis d&iacute;as donde todos los machos fueron rotados con hembras distintas, se otorg&oacute; dos d&iacute;as de receso al proceso de apareamiento, tiempo tras el cual se reanudaron las actividades seg&uacute;n lo descrito.</p>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>Etapa 3. Evidencia de tap&oacute;n mucoso vaginal y aislamiento</b></p></font>      <p align="justify">La evidencia de tap&oacute;n mucoso en el introito vaginal de la hembra se consider&oacute; el par&aacute;metro decisivo para apareamiento exitoso (<a href="#f1">figura 1</a>). Se determin&oacute; observar el &aacute;rea genital de la hembra en la ma&ntilde;ana, pasadas las ocho horas de contacto nocturno con el macho.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f1"></a><img src="img/revistas/rmv/n26/n26a08f01.jpg"></p>      <p align="justify">Para reconfirmaci&oacute;n de pre&ntilde;ez se tuvieron en cuenta otras dos caracter&iacute;sticas: a) cambios en comportamiento, visualizados como &quot;nidaci&oacute;n&quot; a partir del d&iacute;a seis, y b) cambios f&iacute;sicos, abultamientos laterales en la regi&oacute;n abdominal y palpaci&oacute;n fetal, caracteres que se hac&iacute;an evidentes aproximadamente al d&iacute;a doce de la gestaci&oacute;n (<a href="#f2">figura 2</a>) (7).</p>      <p align="center"><a name="f2"></a><img src="img/revistas/rmv/n26/n26a08f02.jpg"></p>      <p align="justify">Se observa la presencia de abultamientos laterales en la regi&oacute;n abdominal. La palpaci&oacute;n de dichas masas m&oacute;viles y el incremento significativo de peso, acompa&ntilde;ado de cambios comportamentales en el animal, confirman la pre&ntilde;ez.</p>      <p align="justify">Una vez identificado el tap&oacute;n se proced&iacute;a a aislar a la hembra en jaula individual, rotulada con c&oacute;digo de la hembra, fecha (dd/mm/aa) y hora de su visualizaci&oacute;n. De esta manera se prescindi&oacute; de marcaje gr&aacute;fico en cola. Permanec&iacute;an en estas condiciones hasta el cumplimiento de la edad gestacional de inter&eacute;s para la interrupci&oacute;n de la pre&ntilde;ez y posterior obtenci&oacute;n de los biomodelos embrionarios/fetales.</p>      <p align="justify">El proyecto cont&oacute; con el aval del comit&eacute; de &eacute;tica animal de la Universidad del Valle. De esta forma los animales fueron mantenidos bajo la normatividad vigente indicada en la Ley 84 de 1989.</p>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>RESULTADOS</b></p></font>      <p align="justify">Las veintitr&eacute;s hembras se sometieron al esquema de apareamiento y de variaci&oacute;n peri&oacute;dica de este. Una de las hembras debi&oacute; ser sacrificada por orden del veterinario (H21). En el primer ciclo de rotaciones (seis d&iacute;as de reproducci&oacute;n y dos de descanso) no se observ&oacute; aparici&oacute;n de tap&oacute;n vaginal en ninguna de las hembras; solo a partir del segundo ciclo se evidenci&oacute; la primera gestaci&oacute;n. De las veintid&oacute;s hembras, dieciocho se pre&ntilde;aron; en diez de ellas se confirmaron los par&aacute;metros determinados como evidencia y reconfirmatorio de pre&ntilde;ez, presencia de tap&oacute;n vaginal, cambios en comportamiento y cambios f&iacute;sicos. En ocho hembras se determin&oacute; la pre&ntilde;ez solo por caracter&iacute;sticas comportamentales y f&iacute;sicas (<a href="#f3">figura 3A</a>).</p>      <p align="center"><a name="f3"></a><img src="img/revistas/rmv/n26/n26a08f03.jpg"></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">El n&uacute;mero m&iacute;nimo de espec&iacute;menes por camada fue de nueve; el n&uacute;mero m&aacute;ximo fue de diecis&eacute;is, para un total de 227 espec&iacute;menes (<a href="#f4">figura 4</a>).</p>      <p align="center"><a name="f4"></a><img src="img/revistas/rmv/n26/n26a08f04.jpg"></p>      <p align="justify">El protocolo de reproducci&oacute;n previamente descrito condujo a un 82% de gestaciones en la poblaci&oacute;n bajo estudio. De ellas, el 56% correspondi&oacute; a la identificaci&oacute;n de tap&oacute;n vaginal mucoso y reconfirmaci&oacute;n posterior.</p>      <p align="justify">Para la obtenci&oacute;n de las edades embrionarias se utilizaron &uacute;nicamente las diez hembras en que se evidenci&oacute; tap&oacute;n vaginal y par&aacute;metros reconfirmatorios de pre&ntilde;ez. Para la determinaci&oacute;n de la edad embrionaria se tom&oacute; como d&iacute;a 0 la observaci&oacute;n de tap&oacute;n vaginal, as&iacute;, se obtuvo un total de 73 embriones para las edades E15, E16, E17, E17.5, E18, E18.5. Las ocho restantes entraron en el grupo de obtenci&oacute;n de edades postnatales, donde se tom&oacute; como d&iacute;a 0 el momento del parto. Para la verificaci&oacute;n de las edades se tuvo en cuenta la descripci&oacute;n realizada en el atlas de Karl Theiler (<a href="#f5">figura 5</a>).</p>      <p align="center"><a name="f5"></a><img src="img/revistas/rmv/n26/n26a08f05.jpg"></p>      <p align="justify">Se pueden identificar las caracter&iacute;sticas externas relevantes: piel arrugada, gruesa; p&aacute;rpados fusionados y gruesos; dedos de pies y manos paralelos; desaparici&oacute;n de hernia inguinal fisiol&oacute;gica.</p>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></p></font>      <p align="justify">Obtener el n&uacute;mero de biomodelos en las edades requeridas para las investigaciones biom&eacute;dicas depende de la efectividad del protocolo de reproducci&oacute;n que se utilice y este, a su vez, depende fundamentalmente del nivel de preparaci&oacute;n y a&ntilde;os de experiencia que el personal encargado de la colonia tenga alrededor del proceso reproductivo de los murinos. En el protocolo aqu&iacute; presentado se obtuvo un 82% de gestaciones; valor que <i>per se </i>no se compara con otros estudios debido a las caracter&iacute;sticas propias en cuanto al n&uacute;mero utilizado. Al realizar el c&aacute;lculo del PEI (Productivity Efficiency Index), se determina un valor de 0,85, inferior al esperado para la cepa (1,5), valor que podr&iacute;a deberse a factores como la endogamia y la edad de las hembras, la cual, como lo reportan varios laboratorios de producci&oacute;n de biomodelos (8), constituye un determinante en la efectividad reproductiva. Si se compara con el n&uacute;mero de camadas por hembra, se puede corroborar el efecto que tiene la endogamia, no solo en la efectividad reproductiva, sino espec&iacute;ficamente en el n&uacute;mero de camadas por hembra, ya que el promedio de individuos por camada fue de 10,5; valor que resulta inferior al esperado para la cepa.</p>      <p align="justify">Por otro lado, en el bioterio donde se realiz&oacute; el proceso experimental, al momento de requerir los biomodelos, se organizan los procesos de apareamiento de manera aleatoria basados en la influencia del entorno social en la especie, mediante la utilizaci&oacute;n de apareamiento aleatorio, tipo har&eacute;n, donde un macho se pone con dos o m&aacute;s hembras. Fundamentalmente se inducen y sincronizan los ciclos estrales de las hembras teniendo en cuenta el efecto Whitten, seg&uacute;n el cual se agrupan varias hembras en cercan&iacute;a de un macho y son las feromonas excretadas por la orina del macho las que act&uacute;an sobre el eje hipot&aacute;lamo-hip&oacute;fisis-ovarios, sincronizando el ciclo a partir del cuarto d&iacute;a de la exposici&oacute;n (9). Este esquema es &uacute;til en cuanto al rendimiento reproductivo si se acompa&ntilde;a de otras estrategias como seguimiento del ciclo estral mediante citolog&iacute;a exfoliativa; sin embargo, en las hembras <i>Mus musculus </i>es un proceso dispendioso que requiere pericia en la toma de la muestra, pues el est&iacute;mulo de la introducci&oacute;n de la pipeta a la vagina puede inducir estado de seudopre&ntilde;ez. En especies como la rata hacer seguimiento de los ciclos estrales a partir de la citolog&iacute;a exfoliativa se facilita por la anatom&iacute;a de la vulva.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Para la determinaci&oacute;n de pre&ntilde;ez en los ratones <i>Mus musculus </i>en el protocolo, el m&eacute;todo definido fue la observaci&oacute;n de tap&oacute;n vaginal (una mezcla de las secreciones de las gl&aacute;ndulas sexuales del macho, con secreciones vaginales). La visualizaci&oacute;n de este hallazgo result&oacute; compleja en las fases iniciales. As&iacute;, en la primera semana de inicio no se evidenci&oacute; presencia de tap&oacute;n vaginal en ninguna hembra, lo cual podr&iacute;a explicarse por falta de madurez sexual de los biomodelos suministrados, pues la especie <i>Mus musculus </i>alcanza la madurez sexual entre la quinta y la octava semana de edad; las hembras un poco m&aacute;s temprano. Por otro lado, se debe reconocer que al inicio del proceso, la experticia del observador es muy importante para su determinaci&oacute;n.</p>      <p align="justify">La formaci&oacute;n del tap&oacute;n vaginal es variable en cada individuo y se encuentra sujeto a aspectos como la producci&oacute;n de secreciones (tanto en el macho como en la hembra), el tiempo que lleve en el introito vaginal y la capacidad del observador para diferenciar este car&aacute;cter de la presencia simple de moco en dicha zona. Su efectividad como predictor de pre&ntilde;ez es alta. Los estudios cl&aacute;sicos de Snell (10) mostraron una efectividad del 80 al 90%. En nuestro protocolo su efectividad fue del 100%; en todas las hembras que lo presentaron se pudo confirmar pre&ntilde;ez por par&aacute;metros reconfirmatorios. En aquellas hembras donde solo se evidenci&oacute; pre&ntilde;ez por par&aacute;metros f&iacute;sicos, se asume que hubo presencia de tap&oacute;n vaginal, pero su periodo de duraci&oacute;n pudo ser m&aacute;s corto o se present&oacute; confusi&oacute;n por parte del observador. La sola presencia de tap&oacute;n vaginal no garantiza la pre&ntilde;ez, pues durante el periodo de preimplantaci&oacute;n el <i>Mus musculus </i>es extremadamente sensible a los cambios f&iacute;sicos y del entorno, lo cual puede llevar a la interrupci&oacute;n de la gestaci&oacute;n, o a lo que tambi&eacute;n se conoce como bloqueo de la gestaci&oacute;n. Dos son los factores principales considerados precipitantes de este bloqueo: el primero, el efecto Bruce, se produce por la exposici&oacute;n de la hembra al olor urinario de un macho desconocido en el periodo postapareamiento. Estas se&ntilde;ales provienen de p&eacute;ptidos del complejo mayor de histocompatibilidad (MHC) en la orina del macho extra&ntilde;o (10). El segundo factor es el cambio en el entorno de la hembra, por ejemplo, el aumento del ruido. Los roedores tienen un espectro de sonidos audibles con sensibilidad m&aacute;xima a frecuencias que son inaudibles al humano. Los efectos del sonido en su fisiolog&iacute;a y comportamiento depender&aacute;n no solo de su intensidad (volumen), frecuencia, duraci&oacute;n y el potencial de vibraci&oacute;n, sino tambi&eacute;n en la edad y la capacidad auditiva de la cepa; los cambios en los olores son tambi&eacute;n importantes precipitantes de bloqueos en periodo preimplantacional, pues conllevan sobrest&iacute;mulo al sistema nervioso vegetativo. De ah&iacute; la importancia que tiene para el personal encargado del bioterio y los investigadores conocer sobre influencias del entorno en el comportamiento reproductivo de los murinos (10-13).</p>      <p align="justify">El 13,64% equivale a cuatro hembras que no presentaron tap&oacute;n vaginal ni pre&ntilde;ez, a pesar de estar en edad reproductiva f&eacute;rtil. Esto puede estar relacionado con el estr&eacute;s hormonal al que fueron sometidas cada noche. El estr&eacute;s tiene un efecto supresor sobre la funci&oacute;n y el comportamiento de la hembra y puede causar interrupci&oacute;n de la ovulaci&oacute;n, deterioro de la maduraci&oacute;n uterina necesaria para la implantaci&oacute;n o inhibici&oacute;n del comportamiento preceptivo. Pudo deberse tambi&eacute;n a inducci&oacute;n del efecto Bruce por no reconocimiento del tap&oacute;n vaginal, por lo cual no se aislaban y continuaban en contacto con diferentes machos cada noche (14-15).</p>      <p align="justify">El proceso de obtenci&oacute;n de los biomodelos embrionarios y posnatales requeridos en el protocolo de investigaci&oacute;n se inici&oacute; con el marcaje de las hembras, debido a que esto es fundamental para el establecimiento de los esquemas de apareamiento m&oacute;viles organizados en cada noche. Los machos se identificaron directamente en las jaulas individuales. Existen muchos m&eacute;todos para la sistematizaci&oacute;n de la identificaci&oacute;n, tales como agujeros en oreja, amputaci&oacute;n de un dedo, tatuajes en cola, marcas en el pelo y aplicaci&oacute;n de grapas met&aacute;licas numeradas, los cuales pueden ser temporales, semitemporales o permanentes, pero es condici&oacute;n de todos que causen el menor <i>disconfort </i>y que no interfieran con el normal funcionamiento del animal. El procedimiento de elecci&oacute;n para la identificaci&oacute;n en el bioterio es el marcaje con grapas met&aacute;licas numeradas. Para el trabajo no se consider&oacute; necesario este sistema, pues el tiempo de la investigaci&oacute;n no era muy largo; por lo tanto, se pens&oacute; en un sistema de marcaje temporal. Inicialmente se realizaron marcas en el cabello; sin embargo, la manipulaci&oacute;n del rat&oacute;n result&oacute; dif&iacute;cil, pues su inmovilizaci&oacute;n completa le generaba estr&eacute;s y adem&aacute;s tomaba mucho tiempo. El m&eacute;todo de elecci&oacute;n fue el marcaje temporal, el cual, seg&uacute;n el reporte de Kasanen y colaboradores, fue el m&eacute;todo de predilecci&oacute;n, pues no conlleva cambios en los par&aacute;metros cardiovasculares (16).</p>      <p align="justify">Al utilizar este sistema se debe tener en cuenta que las tintas no pierdan sus cualidades. Las pocas duraderas se desvanecen y debe realizarse semanalmente el proceso de identificaci&oacute;n. Por otro lado, para disminuir la posible influencia del compuesto odor&iacute;fero presente en el marcador, el proceso se debe ejecutar en las horas de la ma&ntilde;ana, de tal forma que en las noches, cuando la hembra entra en contacto con el macho, no est&eacute; presente dicho est&iacute;mulo (17). Al observar presencia de tap&oacute;n mucoso vaginal se suspend&iacute;a el marcaje corporal y la identificaci&oacute;n se realizaba directamente en la caja donde pasar&iacute;a su pre&ntilde;ez.</p>      <p align="justify">En el dise&ntilde;o y la ejecuci&oacute;n del protocolo se tuvieron en cuenta los <i>principios de las tres </i>R, establecidos por Russell y Burch, y reconocidos en la normatividad sobre experimentaci&oacute;n con biomodelos. Por esta raz&oacute;n, para las edades postnatales, el momento del parto se consider&oacute; como P0. Para optimizar el uso de los biomodelos y evitar sacrificios innecesarios, cada camada de neonatos se organiz&oacute; en subgrupos de cuatro (seleccionados por similitud en peso). Cada subgrupo se us&oacute; para la obtenci&oacute;n de una edad posnatal distinta.</p>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>CONCLUSIONES</b></p></font>      <p align="justify">Obtener edades embrionarias del rat&oacute;n <i>Mus musculus </i>o de otra especie de murinos, donde el investigador tenga la certeza de ella, requiere el establecimiento de un protocolo de reproducci&oacute;n riguroso, con optimizaci&oacute;n del tiempo de reproducci&oacute;n. Para lograr estos objetivos es necesario tener experiencia y conocimiento de los procesos reproductivos de la especie, particularmente del ciclo estral, de los m&eacute;todos de identificaci&oacute;n de las fases, los modelos de apareamiento, el reconocimiento de las caracter&iacute;sticas de pre&ntilde;ez; hay que tener el compromiso del respeto por los derechos del animal, garantizar el buen trato y la aplicaci&oacute;n de los principios &eacute;ticos.</p>      <p align="justify">Los apareamientos programados son &uacute;tiles cuando se requiere obtener embriones de una etapa precisa, para tener precisi&oacute;n en la fecha de nacimiento, o para producir ratones pseudopre&ntilde;adas para la transferencia de embriones o la inseminaci&oacute;n artificial. Para aumentar el rendimiento reproductivo se recomienda utilizar m&eacute;todos de seguimiento del ciclo estral de los biomodelos, sin importar el sistema de cr&iacute;a que se utilice. El proceso de apareamiento en condiciones de laboratorio se debe iniciar entre la sexta y la octava semana.</p>  <font size="3">     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>    <p align="justify"><b>AGRADECIMIENTOS</b></p></font>      <p align="justify">Los autores de este trabajo agradecen a la Vicerrector&iacute;a de Investigaciones de la Universidad del Valle, por la financiaci&oacute;n del proyecto &quot;Expresi&oacute;n y aparici&oacute;n de las mucinas g&aacute;stricas embrionarias y fetales utilizando microarreglos de tejidos&quot;, convocatoria interna a&ntilde;o 2011.</p>  <hr>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>REFERENCIAS</b></p></font>      <!-- ref --><p align="justify">1.&nbsp;Von Hoosier G. The age of biology: opportunities and challenges for Laboratory Animal Medicine. Scand J Lab Anim Sci. 1999;26(4):176-184.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0122-9354201300020000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">2.&nbsp;P&eacute;rez G. Fundamento del trabajo con animales de laboratorio en proyectos de investigaci&oacute;n. Revista del Hospital J. M. Ramos Mej&iacute;a. 2007;12(3):1-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0122-9354201300020000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">3.&nbsp;Taft RA, Davisson M, Wiles M V. Know thy mouse. Trends in Genetics. 2006;22(12):649-653.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0122-9354201300020000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">4.&nbsp;Committee for the Update of the Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. Guide for the care and use of laboratory animals. 8a ed. Washington: National Academic Press; 2011.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0122-9354201300020000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">5.&nbsp;Benav&iacute;des FJ, Guenet JL. Manual de gen&eacute;tica de roedores de laboratorio. Principios b&aacute;sicos y aplicaciones. En: Sociedad Espa&ntilde;ola para las Ciencias del Animal de Laboratorio (SECAL). Universidad de Alcal&aacute;; 2003.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0122-9354201300020000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">6.&nbsp;Sep&uacute;lveda Angulo MT, Sabanero L&oacute;pez M, Dur&aacute;n Castro E, Flores Villavicencio LL, Ram&iacute;rez Emiliano J, Sol&iacute;s Ortiz SM. Ciclo estral del rat&oacute;n hembra intacto y ovariectomizado. Acta Universitaria. 2012;22(2):5-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0122-9354201300020000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">7.&nbsp;Byers SL, <i>et al. </i>Mouse estrous cycle identification tool and images. PLoS One. 2012;7(4):e35538.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0122-9354201300020000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">8.&nbsp;A Jackson Laboratory Resource Manual, Breeding Strategies for Maintaining Colonies of Laboratory Mice; 2009.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0122-9354201300020000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">9.&nbsp;Jemiolo B, Harvey S, Novotny M. Promotion of the Whitten effect in female mice by synthetic analogs of male urinary constituents. Proc Natl Acad Sci U S A. 1986;83(12): 4576-4579.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0122-9354201300020000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">10.&nbsp;Snell GD. Biology of the Laboratory Mouse. Philadelphia: Blakiston; 1941.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0122-9354201300020000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">11.&nbsp;Castelhano-Carlos MJ, Baumans V. The impact of light, noise, cage cleaning and inhouse transport on welfare and stress of laboratory rats. Lab Anim. 2009;43(4):311-327.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0122-9354201300020000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">12.&nbsp;Kelliher KR, Wersinger SR. Olfactory regulation of the sexual behavior and reproductive physiology of the laboratory mouse: effects and neural mechanisms. ILAR J. 2009;50(1):28-42.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0122-9354201300020000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">13.&nbsp;Arteaga M, Guzm&aacute;n R. Comunicaci&oacute;n qu&iacute;mica en animales dom&eacute;sticos. Vet. Mex. 2007;38(1):105-123.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0122-9354201300020000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">14.&nbsp;Oropeza Meza JM. Estr&eacute;s por subalimentaci&oacute;n, ruido y calor en la eficiencia reproductiva de ratas de la cepa Wistar en Universidad Aut&oacute;noma de Chihuahua. Chihuahua; 2007.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0122-9354201300020000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">15.&nbsp;Becker SD, Hurst JL. Female behaviour plays a critical role in controlling murine pregnancy block. Proc Biol Sci. 2009;276(1662):1723-1729.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0122-9354201300020000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">16.&nbsp;Kasanen IHE, Voipio HM, Leskinen H, Luodonpää M, Nevalainen TO. Comparison of ear tattoo, ear notching and microtattoo in rats undergoing cardiovascular telemetry. Laboratory Animals. 2011;45(3):154-159.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0122-9354201300020000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">17.&nbsp;Sharp T, Saunders G, Mitchell B. Marking of pest animals used in research. Institute for Laboratory Animal Research Journal. 2007;(44):1-15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0122-9354201300020000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>   </font>      ]]></body><back>
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