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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The aim of this study was to determine the molecular diversity of OmpL1, LipL32, LipL41, LigA and LigB proteins and that of the genes that encode them using bioinformatic analysis in different pathogenic strains of Leptospira spp. based on the information available in databases. The amino acid sequences of OmpL1, LipL32, LipL41, LigA and LigB proteins were used, as well as the genes encoding them in strains of Leptospira spp. reported at The National Center for Biotechnology Information (NCBI). The analysis of proteins and genes were performed using the Protein, Nucleotide and Gene resources from the NCBI. The alignment of the consensus sequences was performed using the PSI-BLAST and BLASTn tools. The coverage percentage of the selected sequences ofthe ompL1, lipL32, lipL41, ligA and ligB genes in pathogenic strains of Leptospira spp. is 100% for ompL1, lipL32 and lipL41, 75% for ligA and 99% for ligB with identity percentages of 85, 98, 88, 90 and 80% respectively; the coverage percentage of the selected protein sequences is 100, 77, 99, 100 and 100% with identity percentages of 90, 99, 92, 63 and 60% respectively, indicating that genes and proteins, except LigA and LigB proteins, are highly conserved in various pathogenic serovars of Leptospira spp. According to these results, it is recommended that further analysis of these proteins be made in order to determine the feasibility of its use as vaccine candidates.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[El objetivo de este estudo foi determinar a diversidade molecular das proteínas OmpL1, LipL32, LipL41, LigA e LigB e dos genes que as codificam mediante análises bioinformáticas em diferentes cepas patógenas de Leptospira spp. A partir da informação disponível nas bases de dados. Utilizaram-se as sequências de aminoácidos das proteínas OmpL1, LipL32, LipL41, LigA e LigB, assim como as dos genes que as codificam nas cepas de Leptospira spp. Reportadas em The National Center for Biotechnology Information (NCBI). As análises das proteínas e dos genes se realizaram mediante os recursos Protein, Nucleotide e Gene do NCBI. O alinhamento das sequências consenso se realizou com as ferramentas PSI-BLAST e BLASTn. A porcentagem de cobertura das sequências selecionadas dos genes ompL1, lipL32, lipL41, ligA e ligB em cepas patógenas de Leptospira spp. É de 100% para ompL1, lipL32 e lipL41, 75% para ligA e 99% para ligB com porcentagens de identidade de 85, 98, 88, 90 e 80% respectivamente; A porcentagem de cobertura das sequências selecionadas das proteínas é de 100, 77, 99, 100 e 100% com porcentagens de identidade de 90, 99, 92, 63 e 60% respectivamente, o que indica que os genes e as proteínas, exceto as proteínas LigA e LigB, são altamente conservadas nos diferentes serovares patogênicos de Leptospira spp. Segundo esses resultados, se recomenda realizar análises complementares destas proteínas com finalidade de determinar se é viável o seu uso como candidatos para vacina.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <a name="Inicio"></a>  <font face="verdana" size="2">      <br>    <p align="center"><font size="4"><b>Diversidad molecular de candidatos vacunales en <i>Leptospira </i>spp.</b></font></p>  <font size=3>     <p align="center"><b>Molecular Diversity of Vaccine Candidates in <i>Leptospira </i>spp.</b></p></font>  <font size=3>     <p align="center"><b>Diversidade molecular de candidatos para vacina em <i>Leptospira </i>spp.</b></p></font>      <p align="justify">Patricia Hern&aacute;ndez-Rodr&iacute;guez<a name="nota1"></a><a href="#nota_1"><sup>1</sup></a> / M&oacute;nica Baquero P.<a name="nota2"></a><a href="#nota_2"><sup>2</sup></a> / Andr&eacute;s Felipe Santander Torres<a name="nota3"></a><a href="#nota_3"><sup>3</sup></a> / Arlen G&oacute;mez<a name="nota4"></a><a href="#nota_4"><sup>4</sup></a></p>      <p align="justify"><sup><a name="nota_1"></a><a href="#nota1">1</a></sup> MSc. Universidad de La Salle, Departamento de Ciencias B&aacute;sicas, Programa de Biolog&iacute;a. Grupo de investigaci&oacute;n Biolog&iacute;a Molecular e Inmunogen&eacute;tica (Biomigen), Bogot&aacute;, Colombia.    <br> <a href="mailto:phernandez@unisalle.edu.co">phernandez@unisalle.edu.co</a></p>      <p align="justify"><sup><a name="nota_2"></a><a href="#nota2">2</a></sup> MSc. Universidad de La Salle, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Programa de Medicina Veterinaria, Bogot&aacute;, Colombia.    <br> <a href="mailto:mmbaquero@live.com">mmbaquero@live.com</a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><sup><a name="nota_3"></a><a href="#nota3">3</a></sup> Universidad de La Salle, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Programa de Medicina Veterinaria, Bogot&aacute;, Colombia.    <br> <a href="mailto:andresfsantander@lasalle.edu.co">andresfsantander@lasalle.edu.co</a></p>      <p align="justify"><sup><a name="nota_4"></a><a href="#nota4">4</a></sup> PhD. Universidad de La Salle, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Programa de Medicina Veterinaria, Bogot&aacute;, Colombia.    <br> <a href="mailto:agomez@unisalle.edu.co">agomez@unisalle.edu.co</a></p>      <p align="justify"><b>Recibido</b>: 16 de marzo del 2015 / <b>Aceptado</b>: 17 de abril del 2015</p>      <p align="justify">C&oacute;mo citar este art&iacute;culo: Hern&aacute;ndez-Rodr&iacute;guez P, Baquero M, Santander Torres AF, G&oacute;mez A. Diversidad molecular de candidatos vacunales en <i>Leptospira </i>spp. Rev Med Vet. 2015;(30):95-106.</p>  <hr>  <font size=3>     <br>    <p align="justify"><b>Resumen</b></p></font>      <p align="justify">El objetivo de este estudio fue determinar la diversidad molecular de las prote&iacute;nas OmpL1, LipL32, LipL41, LigA y LigB y de los genes que las codifican mediante an&aacute;lisis bioinform&aacute;ticos en diferentes cepas pat&oacute;genas de <i>Leptospira </i>spp., a partir de la informaci&oacute;n disponible en las bases de datos. Se utilizaron las secuencias de amino&aacute;cidos de las prote&iacute;nas OmpL1, LipL32, LipL41, LigA y LigB, as&iacute; como las de los genes que las codifican en las cepas de <i>Leptospira </i>spp. registradas en The National Center for Biotechnology Information (NCBI). Los an&aacute;lisis de las prote&iacute;nas y los genes se realizaron mediante los recursos <i>Protein, Nucleotide </i>y <i>Gene </i>del NCBI. La alineaci&oacute;n de las secuencias consenso se realiz&oacute; con las herramientas PSI-BLAST y BLASTn. El porcentaje de cobertura de las secuencias seleccionadas de los genes <i>ompL1, lipL32, lipL41, ligA </i>y <i>ligB </i>en cepas pat&oacute;genas de <i>Leptospira </i>spp. es de 100% para <i>ompL1, lipL32 </i>y <i>lipL41, </i>75% para <i>ligA </i>y 99% para <i>ligB </i>con porcentajes de identidad de 85, 98, 88, 90 y 80% respectivamente; el porcentaje de cobertura de las secuencias seleccionadas de las prote&iacute;nas es de 100, 77, 99, 100 y 100% con porcentajes de identidad de 90, 99, 92, 63 y 60% respectivamente, lo cual indica que los genes y las prote&iacute;nas, excepto las prote&iacute;nas LigA y LigB, son bastante conservadas en los diferentes serovares pat&oacute;genos de <i>Leptospira </i>spp. Seg&uacute;n dichos resultados, se recomienda realizar an&aacute;lisis complementarios de estas prote&iacute;nas con el fin de determinar si es viable su uso como candidatos vacunales.</p>      <p align="justify"><b>Palabras clave: </b>diversidad, OmpL1, LipL32, LipL41, LigA, LigB.</p>  <hr>  <font size=3>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>    <p align="justify"><b>Abstract</b></p></font>      <p align="justify">The aim of this study was to determine the molecular diversity of OmpL1, LipL32, LipL41, LigA and LigB proteins and that of the genes that encode them using bioinformatic analysis in different pathogenic strains of <i>Leptospira </i>spp. based on the information available in databases. The amino acid sequences of OmpL1, LipL32, LipL41, LigA and LigB proteins were used, as well as the genes encoding them in strains of <i>Leptospira </i>spp. reported at The National Center for Biotechnology Information (NCBI). The analysis of proteins and genes were performed using the <i>Protein, Nucleotide </i>and <i>Gene </i>resources from the NCBI. The alignment of the consensus sequences was performed using the PSI-BLAST and BLASTn tools. The coverage percentage of the selected sequences ofthe <i>ompL1, lipL32, lipL41, ligA </i>and <i>ligB </i>genes in pathogenic strains of <i>Leptospira </i>spp. is 100% for <i>ompL1, lipL32 </i>and <i>lipL41, </i>75% for <i>ligA </i>and 99% for <i>ligB </i>with identity percentages of 85, 98, 88, 90 and 80% respectively; the coverage percentage of the selected protein sequences is 100, 77, 99, 100 and 100% with identity percentages of 90, 99, 92, 63 and 60% respectively, indicating that genes and proteins, except LigA and LigB proteins, are highly conserved in various pathogenic serovars of <i>Leptospira </i>spp. According to these results, it is recommended that further analysis of these proteins be made in order to determine the feasibility of its use as vaccine candidates.</p>      <p align="justify"><b>Keywords: </b>diversity, OmpL1, LipL32, LipL41, LigA, LigB.</p>  <hr>  <font size=3>     <br>    <p align="justify"><b>Resumo</b></p></font>      <p align="justify">El objetivo de este estudo foi determinar a diversidade molecular das prote&iacute;nas OmpL1, LipL32, LipL41, LigA e LigB e dos genes que as codificam mediante an&aacute;lises bioinform&aacute;ticas em diferentes cepas pat&oacute;genas de <i>Leptospira </i>spp. A partir da informa&ccedil;&atilde;o dispon&iacute;vel nas bases de dados. Utilizaram-se as sequ&ecirc;ncias de amino&aacute;cidos das prote&iacute;nas OmpL1, LipL32, LipL41, LigA e LigB, assim como as dos genes que as codificam nas cepas de <i>Leptospira </i>spp. Reportadas em The National Center for Biotechnology Information (NCBI). As an&aacute;lises das prote&iacute;nas e dos genes se realizaram mediante os recursos <i>Protein, Nucleotide e Gene </i>do NCBI. O alinhamento das sequ&ecirc;ncias consenso se realizou com as ferramentas PSI-BLAST e BLASTn. A porcentagem de cobertura das sequ&ecirc;ncias selecionadas dos genes <i>ompL1, lipL32, lipL41, ligA </i>e <i>ligB </i>em cepas pat&oacute;genas de <i>Leptospira </i>spp. &Eacute; de 100% para <i>ompL1, lipL32 e lipL41, </i>75% para <i>ligA </i>e 99% para <i>ligB </i>com porcentagens de identidade de 85, 98, 88, 90 e 80% respectivamente; A porcentagem de cobertura das sequ&ecirc;ncias selecionadas das prote&iacute;nas &eacute; de 100, 77, 99, 100 e 100% com porcentagens de identidade de 90, 99, 92, 63 e 60% respectivamente, o que indica que os genes e as prote&iacute;nas, exceto as prote&iacute;nas LigA e LigB, s&atilde;o altamente conservadas nos diferentes serovares patog&ecirc;nicos de <i>Leptospira </i>spp. Segundo esses resultados, se recomenda realizar an&aacute;lises complementares destas prote&iacute;nas com finalidade de determinar se &eacute; vi&aacute;vel o seu uso como candidatos para vacina.</p>      <p align="justify"><b>Palavras chave: </b>diversidade, OmpL1, LipL32, LipL41, LigA, LigB.</p>  <hr>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p></font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">La leptospirosis es una enfermedad de distribuci&oacute;n mundial (1) que afecta a humanos y animales de zonas tropicales (2,3). Es causada por una espiroqueta del g&eacute;nero <i>Leptospira </i>de la cual se han registrado 20 especies y m&aacute;s de 300 serovares agrupados a su vez en 20 serogrupos (4), de las cuales 14 han sido identificadas como potencialmente pat&oacute;genas (5).</p>      <p align="justify">Se han realizado varios trabajos en los que se ha identificado la porina OmpL1, las lipoprote&iacute;nas LipL32 y LipL41 (6) y las adhesinas LigA y LigB como candidatos potenciales para el desarrollo de vacunas, debido a su alto grado de inmunogenicidad (7). Entre estas la LigB es de mayor inter&eacute;s por estar presente en todos los serovares pat&oacute;genos, lo cual la convierte en un componente clave para la elaboraci&oacute;n de una vacuna recombinante universal para leptospirosis (8).</p>      <p align="justify">La primera prote&iacute;na transmembranal descrita en <i>Leptospira interrogans </i>fue la OmpL1 (9). Su estructura contiene por lo menos diez segmentos transmembranales &beta; y canales de porinas en la bicapa lip&iacute;dica; su funci&oacute;n es permitir la difusi&oacute;n de solutos hidrof&iacute;licos a trav&eacute;s de la membrana externa hacia el periplasma. Es una prote&iacute;na de 31 kDa que se encuentra en peque&ntilde;as cantidades (10) en todas las cepas pat&oacute;genas de <i>Leptospira </i>y est&aacute; ausente en las cepas sapr&oacute;fitas (3,9).</p>      <p align="justify">Tambi&eacute;n conocida como Hap1, LipL32 es un ant&iacute;geno inmunodominante por su capacidad inmunog&eacute;nica (11), y es el blanco principal de la respuesta inmune tanto en animales como en humanos (12). Es considerada un blanco para el desarrollo de vacunas y nuevos m&eacute;todos diagn&oacute;sticos (13,14). La expresi&oacute;n del gen que codifica a LipL32 fue detectada en seis cepas de <i>Leptospira </i>spp. que incluyen cinco cepas de <i>L. interrogans </i>y una de <i>L. borgpetersenii, </i>lo que indica que la prote&iacute;na LipL32 recombinante es un candidato &oacute;ptimo como ant&iacute;geno molecular para el diagn&oacute;stico (15). LipL32 es la lipoprote&iacute;na m&aacute;s abundante de las especies pat&oacute;genas de <i>Leptospira </i>y se ubica en la superficie de la membrana externa (10,16); sin embargo, estudios recientes realizados por Pinne y Haake, en 2013, buscaron validar los resultados sobre la localizaci&oacute;n de LipL32 registrados con anterioridad (16), y encontraron que esta prote&iacute;na, en su mayor&iacute;a o totalmente, no se ubica en la superficie de la membrana externa. Los resultados que presenta este nuevo estudio fundamentan una localizaci&oacute;n bajo la superficie de la membrana a partir de la observaci&oacute;n de LipL32 en los productos cromatogr&aacute;ficos del experimento que incluy&oacute; prote&oacute;lisis de la membrana externa; adicionalmente, se comprob&oacute; mediante inmunofluorescencia que LipL32 no fue detectada en la superficie de la membrana externa intacta de <i>L. interrogans </i>pero s&iacute; bajo diferentes m&eacute;todos de permeabilizaci&oacute;n de membrana. De esta manera, un cambio en la localizaci&oacute;n de esta lipoprote&iacute;na presenta una nueva perspectiva que promueve la formulaci&oacute;n de trabajos para aclarar el verdadero papel de LipL32 en la leptospirosis, pues a pesar de los diferentes estudios su funci&oacute;n sigue siendo desconocida (17).</p>      <p align="justify">La lipoprote&iacute;na LipL41 tiene un peso molecular de 41 kDa y se encuentra exclusivamente en cepas pat&oacute;genas (18). La secuencia de amino&aacute;cidos de esta prote&iacute;na en <i>L. interrogans </i>serovar Pomona tiene una similitud del 99% con la secuencia de <i>L. kirschneri </i>serovar Grippotyphosa, lo cual sugiere que existe un alto grado de conservaci&oacute;n (19). Adem&aacute;s existe una correlaci&oacute;n positiva entre la patogenicidad y la reactividad con el antisuero de LipL41 (20). Se ha propuesto como ant&iacute;geno en la prueba de Elisa como herramienta de serodiagn&oacute;stico para la leptospirosis bovina (21), y junto con OmpL1 se expresan durante la infecci&oacute;n de mam&iacute;feros, lo cual produce un efecto inmunog&eacute;nico sin&eacute;rgico (22).</p>      <p align="justify">Las prote&iacute;nas LigA, LigB y LigC pertenecen a la familia de las prote&iacute;nas similares a inmunoglobulinas (Lig). LigA y LigB son consideradas ant&iacute;genos candidatos para el desarrollo de inmun&oacute;genos (23). Los genes que codifican para las prote&iacute;nas Lig se expresan &uacute;nicamente en cepas pat&oacute;genas (24). La prote&iacute;na LigA recombinante utilizada como vacuna confiere inmunoprotecci&oacute;n contra una dosis letal de <i>Leptospira interrogans </i>serovar Pomona con el h&aacute;mster como modelo experimental (25); esta prote&iacute;na tiene un peso molecular de 130 kDa (23). La prote&iacute;na LigB, con un peso molecular de 212 kDa (26), se ha propuesto para ser utilizada como ant&iacute;geno en vacunas recombinantes debido a que se revel&oacute; su protecci&oacute;n con una mayor tasa de supervivencia y una reducci&oacute;n en las lesiones histopatol&oacute;gicas de &oacute;rganos vitales de h&aacute;mster (27).</p>      <p align="justify">A pesar de los diferentes estudios que han publicado secuencias parciales y completas tanto de nucle&oacute;tidos como de amino&aacute;cidos, de genes y prote&iacute;nas respectivamente, no se han identificado secuencias consenso que se conservan en los serovares pat&oacute;genos y que pueden llevar al desarrollo de vacunas recombinantes que confieran inmunoprotecci&oacute;n contra <i>Leptospira </i>spp. Con la realizaci&oacute;n del presente trabajo se busca determinar la diversidad molecular de las prote&iacute;nas OmpL1, LipL32, LipL41, LigA y LigB, y de los genes que las codifican mediante an&aacute;lisis bioinform&aacute;ticos, para buscar secuencias conservadas en diferentes cepas pat&oacute;genas de <i>Leptospira </i>spp.</p>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p></font>      <p align="justify">El presente estudio descriptivo se realiz&oacute; en las salas de sistemas de la Universidad de La Salle (sede norte), en Bogot&aacute; (Colombia). Se utilizaron las secuencias de amino&aacute;cidos de las prote&iacute;nas: OmpL1 (GI: 51475352), LipL32 (GI: 302310467), LipL41 (GI: 56407625), LigA (GI: 218148452) y LigB (GI: 218148514) y las secuencias de nucle&oacute;tidos de los genes: <i>ompL1 </i>(GI: 51475351), <i>lipL32 </i>(GI: 166084878), <i>lipL41 </i>(GI: 56407624), <i>ligA </i>(GI: 218148451) y <i>ligB </i>(GI: 218148533) de las cepas de <i>Leptospira </i>spp. registradas en el National Center for Biotechnology Information (NCBI) (28). Se emplearon los recursos <i>Nucleotide </i>y <i>Gene </i>para determinar la secuencia, el tama&ntilde;o y la posici&oacute;n de los genes analizados dentro de las cepas de <i>Leptospira </i>spp. Adem&aacute;s se utiliz&oacute; el recurso <i>Protein </i>para la determinaci&oacute;n del n&uacute;mero de amino&aacute;cidos de las prote&iacute;nas OmpL1, LipL32, LipL41, LigA y LigB registradas en esta base de datos gen&eacute;tica. As&iacute; mismo, empleando estas mismas herramientas se consult&oacute; el n&uacute;mero de registros de las prote&iacute;nas y de los genes en las especies de <i>L. weilii, L. nogu-chii, L. kirschneri, L. santarosai, L. borgpetersenii </i>y <i>L. interrogans. </i>Las secuencias seleccionadas de los genes fueron alineadas con el recurso BLASTn y las secuencias seleccionadas de prote&iacute;nas fueron alineadas con PSI-BLAST del NCBI, recursos creados para establecer la variabilidad molecular entre secuencias (29). Para establecer la diversidad molecular se tuvo en cuenta el valor E, que hace referencia a la significancia estad&iacute;stica de la alineaci&oacute;n.</p>  <font size="3">     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>    <p align="justify"><b>RESULTADOS</b></p></font>      <p align="justify">En el NCBI se encontr&oacute; el reporte del genoma de cuatro cepas pat&oacute;genas de <i>Leptospira </i>spp.: <i>L. interrogans </i>serovar Copenhageni cepa Fiocruz L1-130 (GI cromosoma I: 45655914; GI cromosoma II: 45655585), <i>L. interrogans </i>serovar Lai cepa 56601 (GI cromosoma I: 294827553; GI cromosoma II: 294653513), <i>L. borgpetersenii </i>serovar Hardjo-bovis cepa JB197 (GI cromosoma I: 116123488; GI cromosoma II: 116332445) y <i>L. borgpetersenii </i>serovar Hardjo-bovis cepa L550 (GI cromosoma I: 116119596; GI cromosoma II:116329556). Adem&aacute;s, se identific&oacute; e incluy&oacute; en el estudio el genoma de dos cepas sapr&oacute;fitas de <i>Leptospira </i>spp.: <i>L. biflexa </i>serovar Patoc cepa &quot;Patoc 1 (Paris)&quot; (GI cromosoma I: 167777849; GI cromosoma II: 189913173) y <i>L. biflexa </i>seorvar Patoc cepa &quot;Patoc 1 (Ames)&quot; (GI cromosoma I: 167774246; GI cromosoma II: 167777524). En la <a href="#t1">tabla 1</a> se enmarca la clasificaci&oacute;n y la longitud de las secuencias de nucleotidos -bp <i>(base pair)</i>- correspondiente a cada microorganismo. En la <a href="#t2">tabla 2</a> se indica la posici&oacute;n en el cromosoma I de los genes consenso de <i>ompL1, lipL32, lipL41, ligA </i>y <i>ligB </i>dentro del genoma de las cuatro cepas pat&oacute;genas de <i>Leptospira </i>spp.</p>      <p align="center"><a name="t1"></a><img src="img/revistas/rmv/n30/n30a08t01.jpg"></p>     <p align="center"><a name="t2"></a><img src="img/revistas/rmv/n30/n30a08t02.jpg"></p>      <p align="justify">Luego de la revisi&oacute;n en el NCBI se identific&oacute; que las secuencias completas de los genes <i>ompL1 </i>, <i>lipL32, lipL41 </i>, ligA y ligB han sido registradas en 33, 40, 40, 12 y 12 cepas, respectivamente. As&iacute; mismo, en la <a href="#f1">figura 1</a> se indica el n&uacute;mero de veces que se generan informes en los que se han identificado los genes <i>ompL1, lipL32, lipL41, ligA </i>y <i>ligB </i>en <i>Leptospira </i>spp. Por otra parte, en la <a href="#f2">figura 2</a> se muestra el n&uacute;mero de veces que se han registrado las prote&iacute;nas OmpL1, LipL32, Lipl41, LigA y LigB en las especies de <i>Leptospira.</i></p>      <p align="center"><a name="f1"></a><img src="img/revistas/rmv/n30/n30a08f01.jpg"></p>      <p align="center"><a name="f2"></a><img src="img/revistas/rmv/n30/n30a08f02.jpg"></p>      <p align="justify">Al realizar con BLASTn la alineaci&oacute;n de las secuencias seleccionadas de los genes <i>ompL1, lipL32, lipL41, ligA </i>y <i>ligB, </i>se observa que el porcentaje promedio de cobertura con las cepas pat&oacute;genas de <i>Leptospira </i>spp. es de 100% para <i>ompL1, lipL32 </i>y <i>lipL41, </i>75% para <i>ligA </i>y 99% para <i>ligB. </i>De la misma manera, se obtuvieron porcentajes promedios de identidad de los genes <i>ompL1, lipL32, lipL41, ligA </i>y <i>ligB, </i>frente a las cepas pat&oacute;genas de <i>Leptospira </i>spp. de 85, 98, 88, 90 y 80% respectivamente (E &lt; 0,5). En la <a href="#t3">tabla 3</a> se muestran las secuencias seleccionadas para los an&aacute;lisis de estos genes.</p>      <p align="center"><a name="t3"></a><img src="img/revistas/rmv/n30/n30a08t03.jpg"></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Las secuencias de aminoacidos registrados que se seleccionaron para las prote&iacute;nas OmpL1, LipL32, LipL41, LigA y LigB tienen 135, 87, 133, 42 y 71 amino&aacute;cidos, respectivamente. Con esta informaci&oacute;n y la identificaci&oacute;n de las secuencias, se realiz&oacute; la alineaci&oacute;n de las prote&iacute;nas OmpL1, LipL32, LipL41, LigA y LigB con PSI-BLAST, lo que permite observar que el porcentaje promedio de cobertura con las cepas pat&oacute;genas de <i>Leptospira </i>spp. fue de 100% para OmpL1, LipL41, LigA y LigB, y de 77% para LipL32. As&iacute; mismo, fueron obtenidos los porcentajes promedio de identidad de las prote&iacute;nas OmpL1, LipL32, LipL41, LigA y LigB frente a las cepas pat&oacute;genas de <i>Leptospira </i>spp., con lo cual se obtuvieron los siguientes porcentajes: 90, 99, 92, 63 y 60% respectivamente (E &lt; 0,5).</p>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></p></font>      <p align="justify">Los genomas reportados indican que tanto las especies pat&oacute;genas como las saprofitas de <i>Leptospira </i>spp. cuentan con dos cromosomas: uno grande y uno peque&ntilde;o. Un estudio que compar&oacute; el genoma de <i>L. interrogans, L. borgpetersenii </i>y <i>L. biflexa </i>determin&oacute; que las tres especies comparten 2052 genes; <i>L. biflexa </i>comparte 93 y 44 genes con <i>L. interrogans </i>y <i>L. borgpetersenii, </i>respectivamente, quienes a su vez comparten 656 genes. Los genes espec&iacute;ficos de <i>L. biflexa, L. interrogans </i>y <i>L. borgpetersenii </i>son 1348, 627 y 265, respectivamente. Los 2052 genes que comparten las tres especies tienen funciones de mantenimiento como metabolismo de ADN y ARN, procesamiento de prote&iacute;nas y secreci&oacute;n, estructura celular, procesos celulares y metabolismo energ&eacute;tico e intermediario (30).</p>      <p align="justify">Es evidente que a pesar de los numerosos estudios registrados en las bases de datos sobre los genes y las prote&iacute;nas que se encuentran en cepas de <i>Leptospira </i>spp., a&uacute;n no se conoce con exactitud la funci&oacute;n que muchas de ellas desempe&ntilde;an en la patogenicidad y en la interacci&oacute;n hu&eacute;sped-pat&oacute;geno. De esta forma, se ha calculado que aproximadamente el 40% de los genes totales de este pat&oacute;geno codifica para prote&iacute;nas de funci&oacute;n desconocida. Sin embargo, dentro de los genes con funcionalidad definida se incluyen los responsables de la bios&iacute;ntesis de los lipopolisac&aacute;ridos como LipL32, LipL41 y las prote&iacute;nas de superficie Lig (31, 32). A pesar de conocerse otros genes conservados entre las especies patogenas de <i>Leptospira, </i>como lo son los codificantes para Loa22, HemO y LA1641, la funci&oacute;n exacta dentro de la patogenicidad se desconoce y a pesar de tener resultados prometedores en su estudio para atenuaci&oacute;n de cepas, falta investigaci&oacute;n que clarifique de qu&eacute; manera est&aacute;n involucrados en los procesos de infecci&oacute;n y si son indispensables para el desarrollo de esta (31-33).</p>      <p align="justify">Al analizar las alineaciones de los genes <i>ompL1, lipL32, lipL41, ligA y ligB, </i>se evidencia que los porcentajes de identidad son similares; sin embargo, la cobertura de las secuencias frente a las cepas de <i>Leptospira </i>spp. variaron, en mayor medida la del gen <i>ligA. </i>Esta variaci&oacute;n respecto a los genes <i>lig </i>se ha detectado en diferentes estudios (34,35), en los cuales se examinaron los patrones de variaci&oacute;n de secuencia y de recombinaci&oacute;n de estos genes frente a cepas pat&oacute;genas de <i>Leptospira, </i>con lo cual se encontr&oacute; que los genes <i>ligB </i>permanec&iacute;an intactos, a diferencia del gen <i>ligA </i>encontrado exclusivamente en las cepas <i>L. interrogans </i>y <i>L. kirschneri </i>(35). El gen <i>ligA </i>deriva del gen <i>ligB </i>por un proceso parcial de duplicaci&oacute;n de genes, por lo cual ambos se encuentran involucrados con los procesos de infecci&oacute;n; de todas formas, no se requieren las dos copias, lo que explicar&iacute;a la ausencia de <i>ligA </i>en algunas cepas de <i>Leptospira </i>y la variaci&oacute;n detectada (35,36).</p>      <p align="justify">Por otra parte, al observar los porcentajes de alineaci&oacute;n de las prote&iacute;nas OmpL1, LipL32, LipL41, LigA y LigB, se identific&oacute; una variaci&oacute;n en la identidad de estas &uacute;ltimas dos secuencias. Se ha encontrado que las prote&iacute;nas Lig tienen un promedio de identidad bajo, como es el caso de LigA, la cual posee una identidad de secuencia de solo 37% (35); sin embargo, comparadas con otras prote&iacute;nas que poseen secuencias completas m&aacute;s conservadas, la generaci&oacute;n de anticuerpos en modelos animales como el h&aacute;mster son muy similares (37). Con esto se indica que las prote&iacute;nas Lig presentan una diversidad importante, por lo que se deben analizar cuidadosamente con el fin de seleccionar polip&eacute;ptidos para uso en el diagn&oacute;stico o como candidatos vacunales (35).</p>      <p align="justify">Un an&aacute;lisis comparativo de los genomas de los serovares Copenhageni y Lai de <i>L. interrogans </i>concluye que existen diferencias en las v&iacute;as de bios&iacute;ntesis, adaptaci&oacute;n, colonizaci&oacute;n y patog&eacute;nesis entre serovares. Se identific&oacute; un gran n&uacute;mero de lipoprote&iacute;nas y prote&iacute;nas de membrana externa espec&iacute;ficas, que actuar&iacute;an en la patog&eacute;nesis (38); esto es acorde con estudios que indican que las vacunas realizadas con ciertas prote&iacute;nas son serovar-espec&iacute;ficas (39,40). Por otra parte, se determin&oacute; que existen prote&iacute;nas de membrana externa que est&aacute;n conservadas entre los serovares pat&oacute;genos. Estas prote&iacute;nas son las recomendadas para el desarrollo de vacunas recombinantes (38).</p>      <p align="justify">Los an&aacute;lisis bioinform&aacute;ticos realizados indican que los genes <i>ompL1, lipL32, lipL41, ligA y ligB </i>se encuentran exclusivamente en cepas pat&oacute;genas de <i>Leptospira </i>spp., seg&uacute;n lo registrado por diferentes autores (9,10,13,14,19,24,41). Los genomas de las cuatro especies pat&oacute;genas secuenciadas indican que existe una variaci&oacute;n en la localizaci&oacute;n de estos genes en el cromosoma I.</p>      <p align="justify">Para todos los genes se observa que el mayor n&uacute;mero de reportes se ha realizado en diferentes cepas y serovares de <i>L. interrogans, </i>seguido por <i>L. borgpetersenii, L. santarosai, L. kirschneri, L. noguchi </i>y <i>L.weilii. </i>Se observ&oacute; que las secuencias de los genes estudiados son poco variables entre las cepas registradas; esto concuerda con estudios que determinaron que entre los genes <i>ompL1, lipL32 y lipL41 </i>hay una equivalencia de 96-99% (19). En cuanto a los genes <i>ligA </i>y <i>ligB, </i>un estudio demostr&oacute; que <i>ligB </i>est&aacute; presente en todas las cepas pat&oacute;genas de <i>Leptospira </i>spp. (35). Las prote&iacute;nas LigA y LigB desempe&ntilde;an un papel importante en la virulencia de la enfermedad debido a que act&uacute;an como adhesinas (26).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Un estudio evalu&oacute; la secuencia de los genes <i>ompL1 </i>y <i>lipL32 </i>y de sus respectivas prote&iacute;nas en 38 cepas de <i>Leptospira </i>spp., para demostrar que existe mayor variabilidad en el <i>ompL1 </i>que en el gen <i>lipL32. </i>La variabilidad existente se debe a que los mecanismos de los genes de <i>Leptospira </i>spp. que codifican para prote&iacute;nas de membrana externa incluyen mutaciones de nucle&oacute;tidos que generan polimorfismos simples de nucle&oacute;tidos y transferencia horizontal de ADN entre las diferentes especies de <i>Leptospira </i>spp. (42). Se considera que los mecanismos evolutivos de los genes <i>ligA </i>y <i>ligB </i>consisten en recombinaci&oacute;n y transferencia horizontal de ADN (35).</p>      <p align="justify">Se sugiere que las secuencias seleccionadas son regiones invariables presentes en las prote&iacute;nas de cepas pat&oacute;genas de <i>Leptospira </i>spp. nominadas como candidatos vacunales, exceptuando LigA y LigB, prote&iacute;nas con el menor porcentaje de identidad con las cepas pat&oacute;genas utilizadas. Se recomienda realizar m&aacute;s investigaciones relacionadas con la identificaci&oacute;n de una regi&oacute;n invariable de estas prote&iacute;nas, preferiblemente de la regi&oacute;n C- terminal, que es la m&aacute;s conservada de esta prote&iacute;na (35).</p>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>CONCLUSIONES</b></p></font>      <p align="justify">Mediante este estudio se confirm&oacute;, con ayuda de diferentes herramientas bioinform&aacute;ticas, que existen regiones conservadas, tanto en los genes como en las prote&iacute;nas entre las diferentes especies, serovares y cepas de <i>Leptospira </i>(excepto la secuencia identificada para LigB), que se proponen como secuencias de amino&aacute;cidos para la generaci&oacute;n de vacunas recombinantes que confieran inmunoprotecci&oacute;n a diferentes cepas de <i>Leptospira </i>spp. Se recomienda realizar estudios de secuenciaci&oacute;n de estos genes en cepas de campo aisladas de animales enfermos, para verificar las secuencias consenso identificadas.</p>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>AGRADECIMIENTOS</b></p></font>      <p align="justify">Los autores expresan agradecimiento a la Universidad de La Salle por promover el fortalecimiento del trabajo en leptospirosis, con el fin de conocer una enfermedad que afecta a la salud p&uacute;blica y a la industria pecuaria en el mundo.</p>  <hr>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>REFERENCIAS</b></p></font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">1.&nbsp;Bharti AR, Nally JE, Ricaldi JN, Matthias MA, D&iacute;az MM, Lovett MA, et al. Leptospirosis: a zoonotic disease of global importance. Lancet Infect Dis. 2003;3(12): 757-71.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0122-9354201500020000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">2.&nbsp;Adler B, Moctezuma A. Leptospira and leptospirosis. Vet Microbiol. 2010;140(3-4): 287-96.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0122-9354201500020000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">3.&nbsp;Hern&aacute;ndez-Rodr&iacute;guez P, D&iacute;az C, Dalmau E, Quintero G. A comparison between Polymerase Chain Reaction (PCR) and traditional techniques for the diagnosis of leptospirosis in bovines. J Microbiol Methods. 2011;84(1):1-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0122-9354201500020000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">4.&nbsp;Picardeau M. Diagnosis and epidemiology of leptospirosis. Med Mal Infect. 2013;43(1):1-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0122-9354201500020000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">5.&nbsp;Rajapakse S, Rodrigo C, Handunnetti SM, Fernando SD. Current immunological and molecular tools for leptospirosis: diagnostics, vaccine design, and biomarkers for predicting severity. Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2015;14(2):1-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0122-9354201500020000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">6.&nbsp;Chen HW, Zhang Z, Halsey ES, Guevara C, Canal E, Hall E, et al. Detection of leptospira-specific antibodies using a recombinant antigen-based enzyme-linked immunosorbent assay. Am J Trop Med Hyg. 2013;89(6):1088-94.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0122-9354201500020000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">7.&nbsp;Wang Z, Jin L, Wegrzyn A. Leptospirosis vaccines. Microb Cell Fact. 2007;6(39):1-10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0122-9354201500020000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">8.&nbsp;Dellagostin OA, Grassmann AA, Hartwig DD, F&eacute;lix SR, Da Silva &Eacute;F, McBride AJ. Recombinant vaccines against leptospirosis. Hum Vaccin. 2011;7(11):1215-24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0122-9354201500020000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">9.&nbsp;Dong H, Hu Y, Xue F, Sun D, Ojcius D, Mao Y, Yan J. Characterization of the <i>ompL1 </i>gene of pathogenic <i>Leptospira </i>species in China and crossimmunogenicity of the OmpL1 protein. BMC Microbiol. 2008;8:223-35.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0122-9354201500020000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">10.&nbsp;Haake DA, Matsunaga J. Characterization of the leptospiral outer membrane and description of three novel leptospiral membrane proteins. Infect Immun. 2002;70(9):4936-45.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0122-9354201500020000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">11.&nbsp;Li X, Zhao J, Qian J, Mao Y, Pan J, Li L, et al. Identification of immunodominant B- and T-Cell combined epitopes in outer membrane lipoproteins LipL32 and LipL21 of <i>Leptospira interrogans. </i>Clin Vaccine Immunol. 2010;17(5):778-83.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0122-9354201500020000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">12.&nbsp;Haake DA, Chao G, Zuerner RL, Barnett JK, Barnett D, Mazel M, et al. The leptospiral major outer membrane protein LipL32 is a lipoprotein expressed during mammalian infection. Infect Immun. 2000;68(4):2276-85.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0122-9354201500020000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">13.&nbsp;Guerreiro H, Croda J, Flannery B, Mazel M, Matsunaga J, Galvao Reis M. Leptospiral proteins recognized during the humoral immune response to leptospirosis in humans. Infect Immun. 2001;69(8):4958-68.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0122-9354201500020000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">14.&nbsp;Zhang X, Yu Y, He P, Zhang YX, Hu BY, Yang Y, et al. Expression and comparative analysis of genes encondig outer membrane proteins LipL21, LipL32 and OmpL1 in epidemic leptospires. Acta Biochim Biophys Sin (Shanghai). 2005;37(10):649-56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0122-9354201500020000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">15.&nbsp;Flannery B, Costa D, Carvalho FP, Guerreiro H, Matsunaga J, Da Silva ED, et al. Evaluation of recombinant <i>Leptospira </i>antigen based enzyme-linked immunosorbent assays for the serodiagnosis of leptospirosis. J Clin Microbiol. 2001;39(9):3303-10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0122-9354201500020000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">16.&nbsp;Murray GL, Morel V, Cerqueira GM, Croda J, Sri-kram A, Henry R, et al. Genome-wide transposon mutagenesis in pathogenic <i>Leptospira </i>species. Infect Immun. 2009;77(2):810-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0122-9354201500020000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">17.&nbsp;Pinne M, Haake DA. LipL32 Is a Subsurface Lipoprotein of <i>Leptospira interrogans: </i>presentation of new data and reevaluation of previous studies. PLoS One. 2013;8(1):e510-25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0122-9354201500020000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">18.&nbsp;Shang ES, Summers TA, Haake DA. Molecular cloning and sequence analysis of the gene encoding LipL41, a surface-exposed lipoprotein of pathogenic <i>Leptospira </i>species. Infect Immun. 1996;64(6):2322-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0122-9354201500020000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">19.&nbsp;Vedhagiri K, Natarajaseenivasan K, Chellapandi P, Prabhakaran SG, Selvin J, Sharma S, Vijayachari P. Evolutionary implication of outer membrane lipoprotein-encoding genes <i>ompL1, lipL32 </i>and <i>lipL41 </i>of pathogenic <i>Leptospira </i>species. Genomics Proteomics Bioinformatics. 2009;7(3):96-106.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0122-9354201500020000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">20.&nbsp;Hu Y, Guo ZQ, Sun BL, Yang P, Yan J. Study on the location of membrane and detection of antibody in the sera of genus-specific antigen LipL41s in patients with <i>Leptospira interrogans. </i>Zhonghua Liu Xing Bing Xue Za Zhi. 2007;28(8):776-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0122-9354201500020000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">21.&nbsp;Mariya R, Chaudhary P, Kumar AA, Thangapandian E, Amutha R, Srivastava SK. Evaluation of a recombinant LipL41 antigen <i>of Leptospira interrogans </i>serovar Canicola in ELISA for serodiagnosis of bovine leptospirosis. Comp Immunol Microbiol Infect Dis. 2006;29(5-6):269-77.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0122-9354201500020000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">22.&nbsp;Lin X, Sun A, Ruan P, Zhang Z, Yan J. Characterization of conserved combined T and B cell epitopes in <i>Leptospira interrogans </i>major outer membrane proteins OmpL1 and LipL41. BMC Microbiol. 2011;11(1):21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0122-9354201500020000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">23.&nbsp;Palaniappan RU, Chang YF, Jusuf SS, Artiushin S, Timoney JF, McDonough SP, Mohammed HO. Cloning and molecular characterization of an immunogenic LigA protein of <i>Leptospira interrogans. </i>Infect Immun. 2002;70(11):5924-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0122-9354201500020000800023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">24.&nbsp;Palaniappan   RU,   Chang   YF,   Hassan F, McDonough SP, Pough M, Barr SC, et al. Expression of leptospiral immunoglobulin-like protein by <i>Leptospira interrogans </i>and evaluation of its diagnostic potential in a kinetic ELISA. J Med Microbiol. 2004;53(Pt 10):975-84.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0122-9354201500020000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">25.&nbsp;Palaniappan RU, McDonough SP, Divers TJ, Chen CS, Pan MJ, Matsumoto M, Chang YF. Immunoprotection of recombinant leptospiral immunoglobulin-like protein A against <i>Leptospira interrogans </i>serovar pomona infection. Infect Immun. 2006;74(3):1745-50.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0122-9354201500020000800025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">26.&nbsp;Choy HA, Kelley MM, Chen TL, Moller AK, Matsunaga J, Haake DA. Physiological osmotic induction of <i>Leptospira interrogans </i>adhesion: LigA and LigB bind extracellular matrix proteins and fibrinogen. Infect Immun. 2007;75(5):2441-50.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0122-9354201500020000800026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">27.&nbsp;Yan W, Faisal SM, McDonough SP, Divers TJ, Barr SC, Chang CF, et al. Immunogenicity and protective efficacy of recombinant <i>Leptospira </i>immunoglobulin-like protein B (rLigB) in a hamster challenge model. Microbes Infect. 2009;11(2):230-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0122-9354201500020000800027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>28.&nbsp;National Center for Biotechnology Information (NCBI). Nucleotide and protein tools. Tools &#91;internet&#93;. 2015 &#91;citado 2015 feb 21&#93;. Disponible en: <a href="http://www.nlm.nih.gov" target="_blank">http://www.nlm.nih.gov</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0122-9354201500020000800028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">29.&nbsp;Jones DT, Swindells MB. Getting the most from PSIBLAST. Thends Biochem Sci. 2001;27(3):161-4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0122-9354201500020000800029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">30.&nbsp;Picardeau M, Bulach DM, Bouchier C, Zuerner RL, Zidane N, Wilson PJ, et al. Genome sequence of the saprophyte <i>Leptospira biflexa </i>provides insights into the evolution of <i>Leptospira </i>and the pathogenesis of leptospirosis. PLoS One. 2008;3(2):e1607.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0122-9354201500020000800030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">31.&nbsp;Adler B, Lo M, Seemann T, Murray GL. Pathogenesis of leptospirosis: the influence of genomics. Vet Microbiol. 2011;153(1-2):73-81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0122-9354201500020000800031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">32.&nbsp;Zheng L, Ge Y, Hu W, Yan J. Expression changes of major outer membrane protein antigens in <i>Leptospira interrogans </i>during infection and its mechanism. Zhejiang Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2013;42(2):156-63.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0122-9354201500020000800032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">33.&nbsp;Ristow P, Bourhy P, McBride FW, Figueira CP, Huerre M, Ave P, et al. The OmpA-like protein Loa22 is essential for leptospiral virulence. PLoS Pathogens. 2007;3(7):e97.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0122-9354201500020000800033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">34.&nbsp;Matsunaga J, Barocchi MA, Croda J, Young TA, S&aacute;nchez Y, Siqueira I, et al. Pathogenic <i>Leptospira species </i>express surface-exposed proteins belonging to the bacterial immunoglobulin superfamily. Mol Microbiol. 2003;49(4):929-45.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0122-9354201500020000800034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">35.&nbsp;McBride AJ, Cerqueira GM, Suchard MA, Moreira AN, Zuerner RL, Reis MG, et al. Genetic diversity of the leptospiral immunoglobulin-like (Lig) genes in pathogenic <i>Leptospira </i>spp. Infect Genet Evol. 2009;9(2):196-205.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0122-9354201500020000800035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">36.&nbsp;Srimanote P, Wongdeethai N, Jieanampunkul P, Samonkiert S, Leepiyasakulchai C, Kalambaheti T, Prachayasittikul V. Recombinant LigA for leptospirosis diagnosis and ligA among the <i>Leptospira </i>spp.  clinical isolates. 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A LigA three-domain region protects hamsters from lethal infection by <i>Leptospira interrogans. </i>PLoS Negl Trop Dis. 2011;5(12):1-10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0122-9354201500020000800037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">38.&nbsp;Nascimento AL, Ko AI, Martins EA, Monteiro-Vitorello CB, Ho PL, Haake DA, et al. Comparative genomics of two <i>Leptospira interrogans </i>serovars reveals novel insights into physiology and pathogenesis. J Bacteriol. 2004;186(7):2164-72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0122-9354201500020000800038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">39.&nbsp;Levett PN. Leptospirosis. Clin Microbiol Rev. 2001;14(2):296-326.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0122-9354201500020000800039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">40.&nbsp;Roach JM, Van Vuuren M, Picard JA. A serological survey of antibodies to <i>Leptospira </i>species in dogs in South Arica. J S Ar Vet Assoc. 2010;81(3):156-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0122-9354201500020000800040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">41.&nbsp;Hern&aacute;ndez-Rodr&iacute;guez P, G&oacute;mez A, Baquero M, Quintero G. Identification of o<i>mpl1 </i>and <i>lipl32 </i>genes to diagnosis of pathogenic <i>Leptospira </i>spp. isolated from cattle. 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