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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[USO DE LA LEVADURA TORULA (TORULOPSIS UTILIS) EN LA OBTENCIÓN DE BIOMASA DE ARTEMIA]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Studies were carried out to determine the possibilities of use torula yeast (Torulopsis utilis), as a source of feed in intensive cultured Artemia, Maximum biomass yields of 5.14 g/l and 8.43 mm of average total length were obtained for the treatment with the best results. Yeast concentration of 1 g/l/day in the initial 6 days period, can be considered adequate for Artemia growth while the concentration of 1 g/l/day is insufficient to obtain a satisfactory growth. The growth equations in the described culture conditions were as follow: treatment 1 g/l/day, L= -0.5214 + 0.4837 T; treatment 3 g/l/day, L = -1.1707 + 0.738 T.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="center"><font size="4"><b>USO DE LA  LEVADURA TORULA (<i>TORULOPSIS  UTILIS</i>) EN LA OBTENCI&Oacute;N  DE BIOMASA DE <i>ARTEMIA</i></b></font></p>      <p><b>Rafael Tizol  Correa</b></p>     <p><i>Centro de  Investigaciones Pesqueras, Subdirecci&oacute;n de Maricultivo, Barlovento, Santa F&eacute;.  La Habana, CUBA.</i></p> <hr size="1"/>      <p><b>RESUMEN</b></p>     <p>Se llevaron a  cabo estudios para determinar la factibi&iacute;idad del uso de la levadura torula (<i>Torulopsis utilis</i>), como fuente de alimento en cultivos intensivos de <i>Artemia</i>. Se  alcanzaron rendimientos m&aacute;ximos de biomasa de 5.14 g/l y 8.43 mm de largo medio  total en la variante de mejores resultados. Concentraciones de levadura de 1  g/l/d&iacute;a en el per&iacute;odo inicial de 6 d&iacute;as pueden considerarse adecuadas para el  crecimiento de la <i>Artemia</i>, mientras que concentraciones de 3.5 y 7 g/l/d&iacute;a son  excesivas. A partir del s&eacute;ptimo d&iacute;a 3 g/l/d&iacute;a constituye una concentraci&oacute;n  apropiada de alimento mientras que 1 g/l/d&iacute;a es insuficiente para obtener un  crecimiento satisfactorio en esta etapa. Las ecuaciones de crecimiento para  este cultivo en las condiciones descritas son las siguientes: variante de 1  g/l/d&iacute;a, L = -0.5214 + 0.4837 T; variante de 3 g/l/d&iacute;a, L = -1.1707 + 0.738 T.</p> <hr size="1"/>      <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>Studies were carried  out to determine the possibilities of use torula yeast (<i>Torulopsis utilis</i>), as a source of feed in intensive cultured <i>Artemia</i>, Maximum  biomass yields of 5.14 g/l and 8.43 mm of average total length were obtained  for the treatment with the best results. Yeast concentration of 1 g/l/day in  the initial 6 days period, can be considered adequate for <i>Artemia</i> growth  while the concentration of 1 g/l/day is insufficient to obtain a satisfactory  growth. The growth equations in the described culture conditions were as  follow: treatment 1 g/l/day, L= -0.5214 + 0.4837 T; treatment 3 g/l/day, L =  -1.1707 + 0.738 T.</p> <hr size="1"/>      <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     <p>En los sistemas de cultivo intensivos  para la obtenci&oacute;n de biomasa de <i>Artemia</i>, ya  sea de tipo abierto o cerrado, se emplean altas densidades de organismos (en el  orden de varios miles por litro), lo que requiere un alto consumo de alimento, especialmente  en los de circuito abierto. Aunque las microalgas son consideradas como el  alimento mas adecuado, no se pueden valorar estas como alimento &uacute;nico en los  cultivos intensivos, pues en producciones en gran escala de biomasa no es  econ&oacute;micamente rentable por los grandes vol&uacute;menes necesarios (Sotolongo, 1988).  Desde la demostraci&oacute;n por diferentes autores como Sorgeloos (1973), Cognie  (1975) y Person-le Ruyet (1975) (citados por Sorgeloos, 1976), que la <i>Artemia</i> puede ser cultivada con diferentes tipos  de alimentos inertes, la producci&oacute;n controlada de sus adultos se convirti&oacute; en  econ&oacute;micamente viable. El empleo de productos inertes como harinas de trigo y  arroz, yema de huevo, polvo y salvado de arroz, levaduras, etc, adem&aacute;s de  disminuir significativamente los costos, simplifica marcadamente los procesos  de obtenci&oacute;n de biomasa.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Debido a su peque&ntilde;o tama&ntilde;o de part&iacute;culas, su alto contenido proteico y  su bajo costo de producci&oacute;n, las levaduras han sido consideradas como un  substituto parcial o total de las microalgas en los cultivos de especies  filtadoras como rot&iacute;feros, <i>Artemia</i> y  moluscos bivalvos (Cotteau <i>et al</i>, 1990).  En el caso de la producci&oacute;n de biomasa de <i>Artemia</i>, son simplemente empleadas las levaduras  panaderas, sin embargo no se tienen referencias sobre el uso en esos cultivos  de levadura torula. Este producto posee hasta el 48% de la prote&iacute;na cruda y una  baja producci&oacute;n de fibra (&raquo;2.1%) (Tac&oacute;n, 1987); por otra parte es un  subproducto de la producci&oacute;n de ca&ntilde;a de az&uacute;car, la cual constituye una de las  principales industrias de Cuba.</p>     <p>El presente trabajo tiene como objetivo determinar la factibilidad del  uso de levadura torula como alimento para la obtenci&oacute;n de biomasa de <i>Artemia</i>, as&iacute; como su r&eacute;gimen adecuado de  alimentaci&oacute;n.</p>      <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>     <p>En un sistema de circuito abierto en  tanques rectangulares de 1001 con tres r&eacute;plicas, se cultiv&oacute; <i>Artemia</i> desde el nauplio hasta la fase adulta,  alimentada exclusivamente con la levadura torula (<i>Torulopsis utilis</i>) previamente hidratada. La levadura, para  ser suministrada, se diluy&oacute; en agua de mar en tanques de 501 con aireaci&oacute;n  fuerte, dosificando la misma desde &eacute;stos por goteo, con el fin de obtener un  flujo constante de alimento en los tanques de cultivo. Se emplearon  concentraciones de 1, 3, 6 y 7 g/l/d&iacute;a.</p>     <p>En el experimento se utiliz&oacute; filtro de arena para el tratamiento del  agua y un recambio del 200% diario en una primera fase de 6 d&iacute;as,  incrementando el mismo hasta 400% en los d&iacute;as sucesivos. El agua excedente  escurri&oacute; por un rebozo frontal cubierto con malla de 120, 200 y 300 mieras en  dependencia del tama&ntilde;o de los animales. En el interior de &eacute;ste rebozo se  mantuvo una aireaci&oacute;n fuerte para evitar la colmataci&oacute;n de la malla. En el  tanque de cultivo se incluy&oacute; una aireaci&oacute;n intensa utilizando una piedra  difusora, garantizando la suspensi&oacute;n del alimento. Diariamente se monitorearon  el pH, la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno disuelto, la salinidad y la temperatura,  para conocer las variaciones de los mismos durante el experimento.</p>     <p>Se emple&oacute; una densidad inicial de 2000 nauplios/l, los cuales fueron  eclosionados seg&uacute;n la metodolog&iacute;a convencional descrita por Sorgeloos <i>et al</i> (1986). Durante las primeras 24 horas  despu&eacute;s de la eclosi&oacute;n los organismos no fueron alimentados. Antes de  incorporar los nauplios a los estanques de cultivo, se realiz&oacute; una composici&oacute;n  por largo a 50 ejemplares, determinando el largo medio inicial. Posteriormente  en los d&iacute;as 4, 6, 8, 10 y 12 se repiti&oacute; este proceso, tomando una muestra  similar de cada variante de cultivo y observando la tasa de crecimiento diario  de los organismos. Paralelamente se observaron aspectos tales como estadios de  desarrollo, sucesi&oacute;n de mudas, el estado fisiol&oacute;gico de los animales, etc. Al  final del experimento se determin&oacute; la biomasa obtenida en cada variante y se  calcul&oacute; el peso medio de los organismos.</p>     <p>Se aplic&oacute; el an&aacute;lisis de varianza para  determinar la existencia de diferencias estad&iacute;sticamente significativas entre  los tratamientos considerando solamente los que alcanzaron la fase final de  cultivo. Mediante el test de rangos m&uacute;ltiples de Duncan se compararon los  valores del largo medio correspondientes a cada tratamiento para cada uno de  los muestreos, para establecer el momento en que ocurri&oacute; el desfasaje entre los  mismos. El an&aacute;lisis de regresi&oacute;n fue empleado para obtener una ecuaci&oacute;n que  describiera el crecimiento en este per&iacute;odo, lo que permitir&aacute; predecir el largo  de los organismos en las diferentes etapas del cultivo.</p>      <p><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></p>      <p>De las cuatro variantes estudiadas, las que incluyeron  un r&eacute;gimen de alimentaci&oacute;n de 5 y 7 g/l/d&iacute;a de levadura torula presentaron una  mortalidad total al sexto d&iacute;a, como resultado de la disminuci&oacute;n del ox&iacute;geno  disuelto a concentraciones extremas de 0.3 y 0.1 mg/l respectivamente (<a href="#tab1">tabla  1</a>). En la variante de 3 g/l/d&iacute;a, aunque ocurri&oacute; igualmente una disminuci&oacute;n  brusca de la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno por debajo de los valores considerados  cr&iacute;ticos (2 mg/l) (Laine, comunicaci&oacute;n personal; Sorgeloos <i>et al</i>. 1986),  alcanzando hasta 1.6 mg/l, no se produjeron mortalidades como en los casos  anteriores; por el contrario en la variante de 1 g/l/d&iacute;a no se observaron  casos extremos en cuanto a la presencia de ox&iacute;geno en el agua.</p>      <p align="center"><img src="img/revistas/mar/v23n1/v23n1a10tab1.gif"><a name="tab1"></a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En los primeros d&iacute;as de vida de estos organismos se suceden  intensamente los procesos de muda, con el objetivo de formar y perfeccionar los  diferentes sistemas biol&oacute;gicos, hasta llegar al animal completamente  constituido. Aunque el ritmo de ingesti&oacute;n de alimento en esa primera fase es  elevado, el consumo total es inferior que en etapas posteriores. As&iacute;, en las  variantes de 3, 5 y 7 g/l/d&iacute;a se observ&oacute; en el medio de cultivo una alta  concentraci&oacute;n de alimento no consumido, especialmente en las variantes de 5 y 7  g/l/d&iacute;a, lo que provoc&oacute; un deterioro en el medio y la mortalidad consecuentes.</p>      <p>El an&aacute;lisis de varianza arroj&oacute; diferencias significativas (a=0.05)  entre los tratamientos de 1 y 3 g/l/d&iacute;a. En la <a href="#tab2">tabla 2</a> se presentan los valores  del incremento diario en la talla de los organismos; en las variantes de 1 y 3  g/l/d&iacute;a no existen diferencias estad&iacute;sticamente significativas entre las medias  de los dos tratamientos en los primeros 6 d&iacute;as, seg&uacute;n arroj&oacute; la prueba de  Duncan, incluso el largo medio de los organismos en la variante de 1 g/l/d&iacute;a  (1.58 mm) es ligeramente superior a la de los animales de la variante 3 g/l/d&iacute;a  (1.49 mm). Esto nos muestra que concentraciones de 1 g/l/d&iacute;a durante los  primeros 6 d&iacute;as de cultivo son suficientes para garantizar un crecimiento  adecuado, posibilitando que las condiciones del medio se mantengan dentro de  los par&aacute;metros favorables. De la misma forma podemos considerar que las  concentraciones de 3, 5 y 7 g/l/d&iacute;a, son excesivas para este periodo y pueden  provocar altas mortalidades al deteriorar la calidad del medio.</p>      <p>Es importante se&ntilde;alar que si en un primer per&iacute;odo la  concentraci&oacute;n de 1 g/l/d&iacute;a result&oacute; adecuada para el desarrollo y crecimiento  de los organismos, despu&eacute;s del sexto d&iacute;a resulta insuficiente para garantizar  el adecuado ritmo de crecimiento. En esta variante se observ&oacute; un retardo en el  incremento diario del largo en comparaci&oacute;n con la del 3 g/l/d&iacute;a, a partir del  s&eacute;ptimo d&iacute;a, lo cual se mantiene hasta el final del experimento, obteniendo una  talla media final inferior a los 12 d&iacute;as de cultivo (1 g/l/d&iacute;a con 6.05 mm; 3  g/l/d&iacute;a con 8.43 mm).</p>      <p align="center"><img src="img/revistas/mar/v23n1/v23n1a10tab2.gif"><a name="tab2"></a></p>      <p>Constituye un elemento importante en los  cultivos de <i>Artemia</i>  la determinaci&oacute;n  del momento de la cosecha. En la primera fase, de aproximadamente 6 d&iacute;as y  cuando a&uacute;n no ha concluido el proceso de formaci&oacute;n total del organismo, la  mayor&iacute;a de los nutrientes son empleados en llevar a cabo mudas de formaci&oacute;n y no  de crecimiento. Al concluir &eacute;ste per&iacute;odo, comienza una etapa de crecimiento  intenso que llega a su m&aacute;ximo desarrollo a 9-10 d&iacute;as de cultivo, en que el  animal alcanza su estado de preadulto donde est&aacute; completamente formado pero no  ha alcanzado a&uacute;n una fase reproductora. A partir de este momento disminuye  bruscamente el ritmo de crecimiento, debido al comienzo de la formaci&oacute;n de las  estructuras reproductoras en los machos y los sacos de puesta en las hembras.  Los per&iacute;odos se&ntilde;alados pueden variar en el tiempo en diferentes condiciones de  cultivo, pero el conocimiento de este esquema general de crecimiento es de gran  importancia, pues nos permite aplicar el r&eacute;gimen de alimentaci&oacute;n y cosechar en  el momento oportuno.</p>      <p>Sorgeloos et  al (1986)  alcanzaron un sistema intensivo de cultivo de organismos con un largo medio  total de 8 mm a las 2 semanas, con 5-7 g/l de biomasa. En nuestras experiencias  los ejemplares alcanzaron un largo medio de 8.43 mm con largos m&aacute;ximos de 11.5  mm y 5.14 g/l de biomasa para la variante de 3 g/l/d&iacute;a y un largo medio de 6.05  mm con m&aacute;ximos de 7.5 mm con una biomasa de 1.9 g/l para la variante de 1  g/l/d&iacute;a Estos resultados muestran que el empleo de la levadura torula como  alimento en cultivos de <i>Artemia</i> ofrece  resultados satisfactorios y constituye una variante v&aacute;lida en la obtenci&oacute;n de  biomasa mediante cultivos intensivos.&nbsp;  Con el empleo de salvado de arroz se han obtenido relaciones de biomasa  vs. alimento de 1:1.4 (Guitart y Gonz&aacute;lez, 1987); en nuestro caso la eficiencia  ha sido menor con una relaci&oacute;n de 1:2.</p>     <p>En la <a href="#tab2">tabla 2</a>, se observa la variaci&oacute;n del largo medio de los  organismos durante los 12 d&iacute;as de cultivo. Se debe destacar que durante los  primeros 6 d&iacute;as, el crecimiento para ambas variantes posee el mismo  comportamiento, haci&eacute;ndose m&aacute;s acentuado a partir del s&eacute;ptimo d&iacute;a,  especialmente en la variante de 3 g/l/d&iacute;a. Al comparar entre si los valores del  largo medio de ambas variantes para los diferentes muestreos, mediante la  prueba de Duncan, no se obtuvieron diferencias estad&iacute;sticamente significativas  entre las medidas entre 1 y 6 d&iacute;as para a=0.05, sin embargo en las  comparaciones de las medias desde el s&eacute;ptimo al doceavo d&iacute;a el test arroj&oacute;  diferencias significativas entre las mismas.</p>     <p>Considerando los resultados expresados anteriormente, es posible  recomendar como esquema de alimentaci&oacute;n para cultivos de <i>Artemia</i>, con el empleo de levadura torula como  alimento el siguiente: una fase inicial de 6 d&iacute;as con una adici&oacute;n de 1 g/l/d&iacute;a  y a partir del s&eacute;ptimo d&iacute;a incrementar la cantidad de alimento en el medio a 3  g/l/d&iacute;a hasta la cosecha.</p>     <p>De forma general los factores abi&oacute;ticos controlados durante el  experimento, como son la salinidad, la temperatura y el pH se mantuvieron  dentro de los rangos adecuados para el cultivo de esta especie (<a href="#tab1">tabla 1</a>), excepto  el ox&iacute;geno disuelto que present&oacute; variaciones bruscas en las variantes de 3, 5 y  7 g/l/d&iacute;a, como se explic&oacute; anteriormente. La salinidad mostr&oacute; un comportamiento  relativamente estable con valores entre 38 y 40 &permil; en todas las variantes de  cultivo. La temperatura alcanz&oacute; valores de 27 &deg;C al inicio, estabiliz&aacute;ndose  posteriormente entre 24 y 25 &deg;C. El pH vari&oacute; poco durante la experiencia sin  mostrar alteraciones bruscas y se mantuvo en un rango entre 7 y 8, valores  adecuados para el cultivo de esta especie (Sorgeloos <i>et al</i>, 1986).</p>     <p>Al aplicar el an&aacute;lisis de regresi&oacute;n se obtuvieron las  ecuaciones que describen el crecimiento de esta especie en el per&iacute;odo de  trabajo, para un 95% de confiabilidad (variante 1 g/l/d&iacute;a, L = -0.5214 + 0.4837  T; variante 3 g/l/d&iacute;a, L = -1.1707 + 0.738 T). Se comprob&oacute; que exist&iacute;a un mejor  ajuste en el crecimiento tradicional de Von-Berttalanffy, lo cual consideramos  acertado si tenemos en cuenta que este estudio incluye la parte inicial de la  vida de esta especie donde el crecimiento es relativamente intenso. Esta  ecuaci&oacute;n nos permite conocer el largo de los organismos en cualquier momento  del cultivo, con el empleo de las variantes de alimentaci&oacute;n y cultivo aqu&iacute;  usadas.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p>Nuestro agradecimiento al Dr. J.J. Laine especialista en <i>Artemia</i> de France Aquaculture.</p>      <p><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></p>     <!-- ref --><p>1 Coutteau, P; P.  Lavens y P. Sorgeloos. 1990. Baker's yeast as a potential substitute for live algae in aquaculture  diets: artemia as a case study. Jour. World Aquae. Soc, 21(1): 1-9. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000036&pid=S0122-9761199400010001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2 Guitart, B.  y E. Gonz&aacute;lez. 1987. Sinopsis de datos biol&oacute;gicos sobre Artemia y su uso en aquacultura. Inf.  Proy., Centro Invest. Pesq., Cuba, 10 p. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000037&pid=S0122-9761199400010001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3 Sorgeloos, P. 1976. The brine shrimp Artemia salina: a bottleneck in mariculture?. Confer. Teen. FAO Acuic.  FIR;AQ/Conf./76/E.  77: 1-5. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000038&pid=S0122-9761199400010001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4 Sorgeloos, P.; P. Lavene; P. Leger; W. Tackaert y D. Versichele. 1986. Manual para el cultivo y uso de la artemia en la acuicultura. FAO Documento de Campo, 10: 100-115. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000039&pid=S0122-9761199400010001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5 Sotolongo, M.E. 1988. The evaluation of various diets for  optimal growth and survival of different life   stages of artemia. Gen. Aquae. Course. Inf.  Proy., Kanagawa Inter. Fish. Training Center.   JICA. Jap&oacute;n, pag. 73-78.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000040&pid=S0122-9761199400010001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6 Tac&oacute;n, G.J. 1987. The nutrition and feeding of farmed  fish and shrimp. A training manual 2. Nutrient sources and composition.  GCP\RLA\075\ITA. Field Doc. S/E FAO: 45-72.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000041&pid=S0122-9761199400010001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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