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<publisher-name><![CDATA[INSTITUTO DE INVESTIGACIONES MARINAS Y COSTERAS "JOSE BENITO VIVES DE ANDRÉIS" (INVEMAR)    INSTITUTO DE INVESTIGACIONES MARINAS Y COSTERAS -JOSE BENITO VIVES DE ANDRÉIS- (INVEMAR)]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[ECOLOGÍA QUÍMICA DE LAS ESPONJAS EXCAVADORAS CLIONA APRICA, C. CARIBBAEA, C. DELITRIX Y C. TENUIS]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Chemical ecology of the excavating sponges Cliona aprica, C. caribbaea, C. delitrix and C. tenuis]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The Caribbean encrusting and excavating sponges Cliona aprica, C. caribbaea, C. delitrix and C. tenuis (Porifera, Hadromerida, Clionaidae), aggresively undermine and displace live coral tissue. At San Andrés island and Islas del Rosario (Colombian Caribbean), in all 145 observed cases of direct contact of the sponges C. aprica, C. caribbaea and C. tenuis with 17 coral species, corals showed unhealthy signs in their tissue. It was also noticed that the surface of these sponges is colonized by few organisms and that they are rarely preyed upon. To establish the possible use of chemical substances by these sponges in competition for space with corals (allelopathy), as inhibitors of larval settlement (antifouling), and as feeding deterrents against generalist fish (antipredatory), the activity of crude organic extracts was experimentally evaluated. Extracts were prepared in methanol and 1:2 metanol:dichloromethane and incorporated in experimental media at the natural concentration within the sponges. Using an unpublished method being developed by J. Pawlik (University of North Caroline at Wilmington) and M. Ilan (Tel Aviv University), Phytagel&#8482; disks with crude extracts of each of the four sponge species, placed on the coral Montastrea cavernosa, produced a greater degree of polyp mortality than control gels without extract. Gelswith extracts of the sponges C. aprica and C. caribbaea + C. tenuis, served in Petri dishes and used as substratum in the field, inhibited significantly the settlement of fouling organisms, in comparison to control gels. In laboratory trials, wheat flour pellets with extracts C. delitrix and C. caribbaea + C. tenuis were significantly rejected by the omnivore reef damselfish, Stegastes partitus, whereas pellets with extract of C. aprica did not deter feeding. These results suggest that substances present in the crude organic extracts of these sponges may be responsible in part for their ability to compete for reef substrata and to defend themselves from potential aggressors.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p>&nbsp;</p> <font face="verdana" size="2">      <p align="CENTER"><font size="4"><b>ECOLOG&Iacute;A QU&Iacute;MICA DE LAS ESPONJAS    EXCAVADORAS <i>CLIONA APRICA, C. CARIBBAEA, C. DELITRIX Y C. TENUIS</i></b></font></p>     <p align="CENTER">&nbsp;</p>     <p align="CENTER"><font size="3"><b>Chemical ecology of the excavating sponges    <i>Cliona aprica, C. caribbaea, C. delitrix and C. tenuis.</i></b></font> </p>     <p></p>     <p align="CENTER">&nbsp;</p>     <p>    <br>   <b>Andia Chaves-Fonnegra<sup>1</sup>, Mateo L&oacute;pez-Victoria<sup>2</sup>,    Fernando Parra-Velandia<sup>3</sup> y Sven Zea<sup>4</sup></b></p>     <p><sup>1</sup>Departamento de Biolog&iacute;a y Centro de Estudios en Ciencias    del Mar-CECIMAR, Universidad Nacional de Colombia, INVEMAR, Cerro Punta de Bet&iacute;n,    A.A. 10-16, Santa Marta, Colombia. E-Mail:<a href="mailto:andia@invemar.org.co">andia@invemar.org.co</a>        <br>   <sup>2</sup>Departamento de Biolog&iacute;a y Centro de Estudios en Ciencias    del Mar-CECIMAR, Universidad Nacional de Colombia, INVEMAR, Cerro Punta de Bet&iacute;n,    A.A. 10-16, Santa Marta, Colombia. E-Mail:<a href="mailto:parra@science.uval.nl">parra@science.uval.nl</a>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <sup>3</sup>Departamento de Biolog&iacute;a y Centro de Estudios en Ciencias    del Mar-CECIMAR, Universidad Nacional de Colombia, INVEMAR, Cerro Punta de Bet&iacute;n,    A.A. 10-16, Santa Marta, Colombia. E-Mail:<a href="mailto:szea@invemar.org.co">szea@invemar.org.co</a>    <br>   <sup>4</sup>Instituto de Investigaciones Marinas y Costeras-INVEMAR, Km 17 recta    Cali-Palmira (CIAT), A.A. 6713, Santiago de Cali, Colombia. E-Mail:<a href="mailto:mateo@invemar.org.co">mateo@invemar.org.co</a></p>     <p> Contribuci&oacute;n No. 882 del Instituto de Investigaciones Marinas y Costeras - INVEMAR y No. 250 del Centro de Estudios en Ciencias del Mar - CECIMAR de la Facultad de Ciencias de la Universidad Nacional de Colombia</p>          <p>&nbsp;</p>    <hr size="1">      <p> <b>RESUMEN</b></p>     <p> Las esponjas excavadoras incrustantes del Caribe Cliona aprica, C. caribbaea,    C. delitrix y C. tenuis (Porifera, Hadromerida, Clionaidae) socavan y desplazan    agresivamente el tejido coralino. En la isla de San Andr&eacute;s y en las Islas    del Rosario (Caribe colombiano), en todos los 145 casos observados de contacto    directo de las esponjas C. aprica, C. caribbaea y C. tenuis, con 17 especies    de coral, los corales mostraron signos de deterioro en sus tejidos. Se not&oacute;    adem&aacute;s que la superficie de estas esponjas es colonizada por pocos organismos    y que ellas son raramente depredadas. Para establecer la posible utilizaci&oacute;n    de sustancias qu&iacute;micas de estas esponjas en competencia por espacio con    corales (alelopat&iacute;a), como inhibidoras del asentamiento larval (antiepibiosis),    y como disuasorias de la alimentaci&oacute;n de peces generalistas (antidepredaci&oacute;n),    se evalu&oacute; experimentalmente la actividad de sus extractos org&aacute;nicos    crudos. Los extractos se obtuvieron con metanol y metanol:diclorometano (1:2),    y se incluyeron en medios experimentales a las concentraciones naturales en    que se encuentran dentro de las esponjas. Usando un m&eacute;todo no publicado,    en desarrollo por parte de J. Pawlik (Universidad de Carolina del Norte en Wilmington)    y M. Ilan (Universidad de Tel Aviv), medallones de Phytagel&#153; con extracto    de cada una de las cuatro esponjas, puestos sobre el coral Montastrea cavernosa,    produjeron un mayor grado de mortandad de los p&oacute;lipos que geles control    sin extracto. Geles con extracto de las esponjas C. aprica y C. caribbaea +    C. tenuis, vertidos en cajas de petri y usados como sustrato en el medio marino,    inhibieron significativamente el asentamiento de organismos epibiontes, en comparaci&oacute;n    con geles control. En ensayos de laboratorio, &#8220;pellets&#8221; de harina    de trigo con extracto de C. delitrix y C. caribbaea &+ C. tenuis    <br>   fueron significativamente rechazados por el pez omn&iacute;voro arrecifal, Stegastes    partitus, mientras que &#8220;pellets&#8221; con extracto de C. aprica no disuadieron    el consumo. Estos resultados sugieren que sustancias presentes en los extractos    org&aacute;nicos crudos de estas esponjas pueden ser en parte responsables de    su capacidad para competir por sustrato arrecifal y defenderse de sus potenciales    agresores.</p>     <p> PALABRAS CLAVE: Cliona, Esponjas excavadoras incrustantes, Competencia por    espacio, Alelopat&iacute;a, Antiepibiosis, Antidepredaci&oacute;n.</p>  <hr size="1">      <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p> The Caribbean encrusting and excavating sponges Cliona aprica, C. caribbaea,    C. delitrix and C. tenuis (Porifera, Hadromerida, Clionaidae), aggresively undermine    and displace live coral tissue. At San Andr&eacute;s island and Islas del Rosario    (Colombian Caribbean), in all 145 observed cases of direct contact of the sponges    C. aprica, C. caribbaea and C. tenuis with 17 coral species, corals showed unhealthy    signs in their tissue. It was also noticed that the surface of these sponges    is colonized by few organisms and that they are rarely preyed upon. To establish    the possible use of chemical substances by these sponges in competition for    space with corals (allelopathy), as inhibitors of larval settlement (antifouling),    and as feeding deterrents against generalist fish (antipredatory), the activity    of crude organic extracts was experimentally evaluated. Extracts were prepared    in methanol and 1:2 metanol:dichloromethane and incorporated in experimental    media at the natural concentration within the sponges. Using an unpublished    method being developed by J. Pawlik (University of North Caroline at Wilmington)    and M. Ilan (Tel Aviv University), Phytagel&#153; disks with crude extracts    of each of the four sponge species, placed on the coral Montastrea cavernosa,    produced a greater degree of polyp mortality than control gels without extract.    Gelswith extracts of the sponges C. aprica and C. caribbaea + C. tenuis, served    in Petri dishes and used as substratum in the field, inhibited significantly    the settlement of fouling organisms, in comparison to control gels. In laboratory    trials, wheat flour pellets with extracts C. delitrix and C. caribbaea + C.    tenuis were significantly rejected by the omnivore reef damselfish, Stegastes    partitus, whereas pellets with extract of C. aprica did not deter feeding. These    results suggest that substances present in the crude organic extracts of these    sponges may be responsible in part for their ability to compete for reef substrata    and to defend themselves from potential aggressors.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> KEY WORDS: Cliona, Encrusting excavating sponges, Space competition, Allelopathy,    Antifouling, Antipredatory.</p>      <hr size="1">        <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p> Los organismos s&eacute;siles y sedentarios de los arrecifes coralinos compiten    frecuentemente por espacio y alimento, adoptando mecanismos para minimizar el    recubrimiento por parte de epibiontes, al tiempo que adquieren y mantienen espacio    y se defienden de depredadores (Jackson y Buss, 1975; Porter y Targett, 1988;    Pawlik, 1997). Para algunos organismos arrecifales se han descrito mecanismos    f&iacute;sicos y etol&oacute;gicos que median en interacciones, como el empleo    de filamentos mesent&eacute;ricos, tent&aacute;culos barredores o digesti&oacute;n    extracelent&eacute;rica en corales (Lang, 1971, 1973), mientras que en otros    casos se ha encontrado que estas interacciones son mediadas qu&iacute;micamente    e involucran la producci&oacute;n de compuestos nocivos (Whittaker y Feeny,    1971; Thacker et al., 1998; Engel y Pawlik, 2000).</p>     <p> De todos los invertebrados, las esponjas son consideradas la fuente m&aacute;s    diversa en productos naturales marinos (Pawlik, 1993; Dumdei et al., 1998).    A algunos de estos compuestos qu&iacute;micos se les ha atribuido funci&oacute;n    alelop&aacute;tica para adquisici&oacute;n y mantenimiento de espacio. El compuesto    7- deacetoxiolepupuano de la esponja Dysidea sp. por ejemplo, produce necrosis    sobre la esponja Cacospongia sp., permiti&eacute;ndole recubrir y ganar espacio    (Thacker et al., 1998). En las interacciones entre esponjas excavadoras y corales    se han identificado compuestos qu&iacute;micos responsables de mantener zonas    muertas de coral alrededor de las papilas exteriores de la esponja Aka (=Siphonodictyon)    sp., y esos mismos compuestos qu&iacute;micos act&uacute;an de forma pasiva    inhibiendo la fijaci&oacute;n y crecimiento de epibiontes, o disuadiendo a los    depredadores (Sullivan et al., 1983). As&iacute; mismo, se ha encontrado que    los extractos metan&oacute;licos de la esponja excavadora Cliona varians disueltos    en agua marina, tienen un efecto letal sobre el coral Madracis mirabilis, pero    existe incertidumbre sobre el uso real de los compuestos de esos extractos en    la competencia por espacio. C. varians es capaz de recubrir gran cantidad de    tejido coralino a la vez que lo excava (Vicente, 1978; Aerts y Kooistra, 1999).</p>     <p> En comunidades de invertebrados s&eacute;siles, el espacio libre sobre el    sustrato es generalmente escaso, por lo que el riesgo de ser colonizado y recubierto    por otros organismos es alto. Algunas especies permanecen recubiertas de epibiontes    y no parecen ser afectadas por estos (Lewis, 1982), pero muchas se encuentran    siempre limpias y libres de epibiontes (Gerhart et al., 1988). Esto &uacute;ltimo    se ha atribuido a la presencia de defensas morfol&oacute;gicas o qu&iacute;micas    (Jackson y Buss, 1975; Dyrynda, 1983; Wahl y Banaigs, 1991; Pawlik, 1992). En    la esponja excavadora Cliona sp. se ha encontrado la presencia de storniamidas    A-D, compuestos con actividad antibacteriana (Palermo et al., 1996). En estudios    recientes se han mezclado extractos org&aacute;nicos crudos de diferentes organismos    marinos dentro de geles a base de Phytagel&#153;, que sirven como sustrato para    el asentamiento de larvas en campo y permiten la liberaci&oacute;n paulatina    de los compuestos al medio, actuando a manera de se&ntilde;ales qu&iacute;micas    que promueven o disuaden el asentamiento de invertebrados marinos (Henrikson    y Pawlik, 1995, 1998).</p>     <p> En ensayos de disuasi&oacute;n alimentaria en los que se ofrece alimento preparado    artificialmente a depredadores de organismos s&eacute;siles (p. ej. peces, cangrejos    y estrellas de mar), se ha comprobado que los compuestos qu&iacute;micos que    contienen las esponjas parecen ser su principal defensa, mientras que los elementos    estructurales del tejido (p. ej. esp&iacute;culas) no tienen este mismo efecto    (Chanas y Pawlik, 1995, 1996, 1997; Chanas et al., 1996; Pawlik, 1997; Assmann    et al., 2000; Waddell y Pawlik, 2000 a, b).</p>     <p> Las esponjas excavadoras del g&eacute;nero Cliona (Porifera, Hadromerida,    Clionaidae) han sido estudiadas desde la d&eacute;cada de 1950 (R&uuml;tzler    y Rieger, 1973). Estas esponjas excavan galer&iacute;as y t&uacute;neles en    sustratos de carbonato de calcio, esculpiendo y extrayendo peque&ntilde;os granos    de carbonato &#8220;chips&#8221; por medio de extensiones celulares que secretan    enzimas que disuelven el carbonato y digieren la materia org&aacute;nica presente;    estos granos son luego transportados al exterior a trav&eacute;s de sus canales    exhalantes (Pomponi, 1976, 1977, 1979). A partir de los a&ntilde;os 80&#8217;s    este grupo de organismos despert&oacute; un    <br>   especial inter&eacute;s debido al aumento progresivo en su abundancia en varias    localidades y zonas arrecifales del Gran Caribe (L&oacute;pez-Victoria et al.,    2003; L&oacute;pez-Victoria y Zea, 2004). Aparte de crecer sobre pavimento calc&aacute;reo    y coral muerto, han sido observados avanzando contra el tejido vivo de los principales    corales constructores del andamiaje arrecifal. Cuando se encuentran con tejido    coralino, env&iacute;an por debajo filamentos excavadores que minan el esqueleto    de sost&eacute;n de los p&oacute;lipos, haciendo que &eacute;stos se retraigan    o se desprendan. Mordiscos de peces y crecimiento de algas filamentosas con    acumulaci&oacute;n de sedimentos en la interfase ayudan a matar los p&oacute;lipos    coralinos; luego, las esponjas avanzan rellenando, horadando y recubriendo el    esqueleto libre (L&oacute;pez-Victoria, 2003; L&oacute;pez-Victoria et al.,    2003). Todas estas esponjas pueden llegar a recubrir (y ocupar en el caso de    Cliona delitrix) completamente una colonia de coral y el proceso completo de    avance sugiere la combinaci&oacute;n del mecanismo normal de bioerosi&oacute;n    de carbonato (Pomponi, 1979; Wilkinson, 1983; Simpson, 1984; Sch&ouml;nberg    y Wilkinson, 2001) con la ayuda de otros organismos (L&oacute;pez-Victoria,    2003), pero tambi&eacute;n el posible papel de compuestos qu&iacute;micos alelop&aacute;ticos    (Sullivan et al., 1983; Sullivan y Faulkner, 1985; Aerts y Kooistra, 1999).</p>     <p>En el transcurso de &eacute;ste y otros trabajos los autores han observado    que en su h&aacute;bitat natural las esponjas Cliona aprica, C. caribbaea y    C. tenuis presentan zoantideos y peque&ntilde;os hidroides epibiontes, as&iacute;    como algunos endobiontes entre el sustrato coralino perforado por las esponjas:    poliquetos de la familia Sabellidae, sip&uacute;nculidos, peque&ntilde;os crust&aacute;ceos    y moluscos. Se han observado ocasionalmente siendo mordidas por peces loro (Scaridae),    mientras que peces generalistas, especialmente el l&aacute;brido Thalassoma    bifasciatum (Bloch, 1791), com&uacute;nmente ignoran los fragmentos de esponja,    y cuando los prueban,    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   inmediatamente los rechazan. Sobre Cliona tenuis se han encontrado gastr&oacute;podos    depredadores de la especie Muricopsis (Risomurex) deformis (Reeve, 1846) en    las formaciones arrecifales de Islas del Rosario (L&oacute;pez- Victoria, 2003).    C. delitrix con frecuencia se encuentra recubierta por zoant&iacute;deos y sus    fragmentos tambi&eacute;n son probados y rechazados por <i>T. bifasciatum.</i></p>     <p> Teniendo en cuenta la magnitud del efecto que ejercen estas esponjas en los    arrecifes, se hace necesario entender el mecanismo de agresi&oacute;n que utilizan    contra coral vivo y en general sus estrategias defensivas y ofensivas como organismos    s&eacute;siles. Por ello, el presente trabajo pretendi&oacute; evaluar el posible    papel ecol&oacute;gico de sus extractos org&aacute;nicos crudos, determinando    si: 1) tienen alg&uacute;n efecto delet&eacute;reo en contacto con el tejido    vivo de coral; 2) inhiben el asentamiento de potenciales epibiontes y, 3) producen    un efecto disuasorio sobre la depredaci&oacute;n por peces omn&iacute;voros.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b><font size="3">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</font></b></p>     <p> <b>&Aacute;rea de estudio</b></p>     <p> Se realizaron observaciones y colecta de esponjas sobre arrecifes situados    en el costado occidental de la Isla de San Andr&eacute;s y en la zona norte    de las Islas del Rosario, Caribe colombiano entre los meses de junio y julio    de 2002. En San Andr&eacute;s se estudiaron esponjas de las especies Cliona    aprica, C. caribbaea y C. delitrix en las estaciones Bajo Bonito (BB), frente    al tubo de descarga de Aguas Negras AN), Las Esponjas (LE), Wildlife profundo    (WP) y Wildlife somero (WS). En Islas del Rosario se estudi&oacute; solamente    C. tenuis en las estaciones Canal del Franc&eacute;s (CF), Majayura (MY) y Piedra    Timar&aacute;n (PT). La fase de laboratorio y experimentaci&oacute;n de campo    se llev&oacute; a cabo en el Instituto de Investigaciones Marinas y Costeras    (INVEMAR), en Punta de Bet&iacute;n, Bah&iacute;a de Santa Marta (<a href="#fig1">Figura    1</a>).</p>     <p>        <center>     <a name="fig1"><img src="img/revistas/mar/v34n1/v34n1a02fig1.gif"></a>    </center> </p>     <p><b>Observaciones de la interacci&oacute;n esponja-coral en su h&aacute;bitat    natural</b></p>     <p> En cada estaci&oacute;n se realizaron recorridos err&aacute;ticos de buceo    aut&oacute;nomo en busca de colonias de coral en interacci&oacute;n directa    con las esponjas excavadoras Cliona aprica, C. caribbaea y C. tenuis (C. delitrix    est&aacute; pendiente de ser observada en una fase posterior). Por interacci&oacute;n    directa se entendi&oacute; aquella interacci&oacute;n en que no se presentaran    otros organismos o no existiera una franja de sedimento o algas mayor a 5 mm    de ancho. Para cada interacci&oacute;n se estableci&oacute; la especie de coral    y de esponja y se determin&oacute; si exist&iacute;an condiciones de deterioro    sobre los corales (a nivel de p&oacute;lipo) y sobre las esponjas. Las observaciones    fueron catalogadas cualitativamente como: BL = blanqueamiento, PA = palidecimiento,    OS = oscurecimiento, MA = muerte actual, R = retracci&oacute;n de tejido coralino    y MP = medio p&oacute;lipo. La retracci&oacute;n del tejido coralino (R) se    defini&oacute; espec&iacute;ficamente para el coral Montrastraea cavernosa;    en este caso, el tejido coralino se retrae alej&aacute;ndose de la esponja,    siendo visibles detalles esquel&eacute;ticos de los c&aacute;lices y parte del    tejido del coral que se presenta enrojecido internamente. Se diferencia de la    muerte actual (MA) porque en este caso se evidencia que el tejido no se ha perdido,    sino que se encuentra retra&iacute;do o acumulado en direcci&oacute;n contraria    a la esponja, lo que permite observar las estructuras internas de los c&aacute;lices.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   <b> Preparaci&oacute;n de extractos org&aacute;nicos</b></p>     <p> Las muestras de esponja fueron recolectadas con cincel y martillo mediante    buceo aut&oacute;nomo, y trituradas hasta obtener peque&ntilde;os fragmentos    (2-5 cm de espesor). Despu&eacute;s de eliminar epibiontes y endobiontes obvios    a simple vista, fueron introducidas en bolsas herm&eacute;ticas y congeladas.    El proceso de extracci&oacute;n se realiz&oacute; dos veces con metanol (250    ml coral-esponja/500 ml metanol) y luego en metanol: diclorometano 1:2 (250    ml coral-esponja/ 400 ml metanol: diclorometano), durante 24 horas para cada    caso, y en agitaci&oacute;n continua en botellas Schott oscurecidas. La soluci&oacute;n    resultante fue filtrada y secada al m&aacute;ximo posible en un rotavapor. El    extracto obtenido se transfiri&oacute; a un nuevo recipiente previamente oscurecido,    haciendo lavados con eter diet&iacute;lico (10 ml), el cual se dej&oacute; evaporar    durante 12 horas. Posteriormente el extracto fue liofilizado para eliminar residuos    de agua y pesado; se almacen&oacute; en oscuridad y bajo a&#153;&oacute;sfera    de nitr&oacute;geno a -4&ordm; C. Varios individuos de cada especie de esponja    se combinaron para su extracci&oacute;n. Como se realizaron varios tipos de    ensayos y las esponjas usadas en los extractos fueron de diferentes tama&ntilde;os,    la demanda de extracto no permiti&oacute; realizar &eacute;plicas para evaluar    la variaci&oacute;n entre individuos. Se mezcl&oacute; material de Cliona caribbaea    de San Andr&eacute;s y Cliona tenuis de Islas del Rosario ya que en ese momento    se ignoraba que se trataba de especies    <br>   diferentes (taxonom&iacute;a ya resuelta por Zea y Weil, 2003).</p>     <p> Para determinar la concentraci&oacute;n de extracto en las esponjas se realizaron    determinaciones volum&eacute;tricas de peque&ntilde;os fragmentos de coralesponja    en una bureta con agua de mar (50 &plusmn; 0.05 ml); luego algunos fragmentos    se sometieron al proceso de decalcificaci&oacute;n en HNO3 al 10 % por 3 minutos;    otros se introdujeron en 200 ml de HClO durante 30 minutos. En el primer caso    se busc&oacute; obtener el tejido de esponja libre de coral y en el segundo    obtener el fragmento de coral sin tejido de esponja. Posteriormente se volvieron    a realizar determinaciones volum&eacute;tricas en la bureta de la esponja o    coral restante dependiendo del caso. A partir de la diferencia de vol&uacute;menes    se estableci&oacute; la proporci&oacute;n de tejido de esponja en la matriz    de carbonato. El factor de concentraci&oacute;n natural de extracto (FC) se    calcul&oacute; como masa (g) de extracto por volumen (ml) de esponja.</p>     <p><b> Experimento en campo de alelopat&iacute;a por contacto</b></p>     <p> Siguiendo la metodolog&iacute;a desarrollada por Joe Pawlik de la Universidad    de Carolina del Norte en Wilmington (EEUU) y Micha Ilan de la Universidad de    Tel-Aviv (Israel), los geles tratamientos se elaboraron mezclando 0.53 g de    Phytagel&#153; (agente s&oacute;lido gelificante, substituto del agar) con 50    ml de agua destilada fr&iacute;a; esta mezcla se llev&oacute; a ebullici&oacute;n    y posteriormente se le agreg&oacute; la concentraci&oacute;n natural de extracto    que ocurre en cada esponja, disuelta en un volumen determinado de metanol. Es    decir, cada gel al final simulaba una esponja sint&eacute;tica con la cantidad    de extracto equivalente a su volumen natural. De esta forma, se agregaron 3.76    g de extracto de C. aprica en 8.4 ml de metanol, 4.35 g de extracto de Cliona    caribbaea + C. tenuis en 8.8 ml de metanol, &oacute; 3.14 g de extracto de C.    delitrix en 4.8 ml de metanol. Los controles se prepararon mezclando 0.8 g de    Phytagel&#153; con 50 ml de agua destilada fr&iacute;a, agregando la cantidad    equivalente    <br>   de metanol empleado en el proceso de disoluci&oacute;n de cada uno de los extractos.    <br>       <br>   El gel fue vertido en tapas opacas de 28 mm de di&aacute;metro x 5 mm de altura    provenientes de tarros pl&aacute;sticos para pel&iacute;cula fotogr&aacute;fica    (35 mm) y se dejaron solidificar a temperatura ambiente. Se mantuvieron en nevera    durante 24 h antes de su uso. Al momento de realizar el ensayo, los geles se    llevaron al campo, y por medio de buceo sobre cada una de 10 colonias del coral    Montastrea cavernosa fueron colocados tres medallones, uno de control y dos    de tratamiento con extracto de Cliona delitrix y C. aprica &oacute; C. delitrix    y C. caribbaea + C. tenuis. Se sujetaron en contacto con coral vivo, por medio    de   dos ganchos clip a cada lado y dos bandas de caucho amarradas a puntillas clavadas    fuera del &aacute;rea del tejido vivo. Dado que tanto las tapas en las cuales    se vertieron los controles como los tratamientos eran opacas, se tuvo el mismo    grado de sombreado sobre los p&oacute;lipos de coral bajo estas. Los geles permanecieron    en contacto con el tejido coralino durante cuatro d&iacute;as, a continuaci&oacute;n    de los cuales se tomaron fotograf&iacute;as y se hicieron observaciones cualitativas    del grado de deterioro del coral bajo los geles control y tratamiento, asignando    los siguientes valores num&eacute;ricos: 0 = todo el tejido coralino estaba    vivo, 1 = hab&iacute;a tanto tejido coralino vivo como muerto (muerto =50% del    &aacute;rea), 2 = la mayor&iacute;a del tejido coralino estaba muerto (muerto    &gt;50%), y 3 = el tejido coralino muerto era mayor que el &aacute;rea cubierta    por los geles (muerto &gt;100%). Se realizaron comparaciones entre controles    y tratamientos para el extracto de cada especie de esponja por medio de la prueba    de ordenamiento de signos de Wilcoxon p&lt; 0.05 (Siegel y Castellan, 1995).  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Experimento en campo de antiepibiosis </b></p>     <p>Para evaluar en campo el asentamiento de larvas de invertebrados tambi&eacute;n    se utilizaron geles de Phytagel&#153; siguiendo la metodolog&iacute;a propuesta    por Henrikson y Pawlik (1995, 1998). Estos autores demostraron la idoneidad    de estos geles como superficie para el asentamiento de invertebrados marinos,    porque 1) los geles son expuestos a una poblaci&oacute;n natural de prop&aacute;gulos,    2) los extractos son incorporados dentro de los geles a la concentraci&oacute;n    natural en que se encuentran en el organismo, 3) los extractos dentro de una    matriz de gel no alteran las caracter&iacute;sticas f&iacute;sicas de la superficie,    4) el gel permite la paulatina exudaci&oacute;n al medio de los componentes    de los extractos, y 5) despu&eacute;s de 21 d&iacute;as en agua de mar los geles    a&uacute;n contienen en promedio 56% de la cantidad inicial de extracto. En    este caso se mezclaron 0.21 g de Phytagel&#153; con 1.7 g de extracto de Cliona    caribbaea + C. tenuis disuelto en 3.6 ml de metanol, &oacute; 1.5 g de extracto    de C. aprica en 3.3 ml de metanol (C. delitrix no fue evaluada) y se llevaron    a un volumen de 20 ml con agua destilada. La mezcla resultante fue servida en    cajas de petri de vidrio de 90 mm de di&aacute;metro x 10 mm de altura (volumen    servido 20 ml); en el fondo de la caja se peg&oacute; un trozo de malla pl&aacute;stica    (1.5 cm<sup>2</sup>) con silicona para acuarios lo cual favoreci&oacute; la    adherencia del gel a la caja. Las cajas fueron pegadas a l&aacute;minas de acr&iacute;lico    pl&aacute;stico de 10 x 15 cm. El volumen de extracto empleado en todos los    experimentos (por caja de petri) fue equivalente a la cantidad de extracto contenido    en el mismo volumen de esponja. Los medallones control se prepararon mezclando    0.32 g de Phytagel&#153; agregando la cantidad equivalente de metanol empleado    en el proceso de disoluci&oacute;n de los extractos org&aacute;nicos crudos    y llevando a 20 ml con agua destilada. Se elaboraron 10 geles control con metanol,    10 geles con extracto de Cliona aprica y 10 geles con extracto de C. caribbaea    + C. tenuis. Las 30 cajas con los geles fueron amarradas (con los geles en direcci&oacute;n    al   sustrato) en un andamio de tubos de PVC, que fue sumergido a 18 m de profundidad    en Punta de Bet&iacute;n (Santa Marta). El andamio fue cubierto por una malla    pl&aacute;stica de ojo de malla de 3 cm para evitar la entrada de macrodepredadores.    El experimento se realiz&oacute; durante octubre 2002 y se dej&oacute; en el    agua por un per&iacute;odo de 22 d&iacute;as. Las cajas fueron removidas y se    llevaron al laboratorio donde se mantuvieron en acuarios con agua de mar filtrada    durante 5 d&iacute;as. Se evalu&oacute; la abundancia y porcentaje de cobertura    de organismos s&eacute;siles presentes bajo el esteroscopio. Para determinar    la abundancia, se cont&oacute; el n&uacute;mero total de organismos que colonizaron    la superficie del gel en cada caja de petri, excepto el grupo hidroide (muy    abundante) para el que se contaron los organismos presentes en 8 cuadrados de    1 cm<sup>2</sup> elegidos al azar por caja de petri. Para determinaci&oacute;n    de la cobertura, con ayuda de una cuadr&iacute;cula se tomaron 50 puntos al    azar en los que se evalu&oacute; la presencia o ausencia de organismos. La    <br>   relaci&oacute;n de los puntos en que se presentaron los organismos respecto    al n&uacute;mero total de puntos permiti&oacute; estimar el porcentaje de cobertura.    Se realizaron comparaciones de estas variables entre extractos y controles por    medio de las pruebas estad&iacute;sticas Kruskal-Wallis y Dunn (Zar, 1996).</p>     <p> <b>Experimento de disuasi&oacute;n de la depredaci&oacute;n</b></p>     <p> Se realizaron experimentos en laboratorio para evaluar el efecto disuasorio    de los extractos org&aacute;nicos crudos de las esponjas Cliona aprica, C. caribbaea    + C. tenuis y C. delitrix sobre la alimentaci&oacute;n del pez Stegastes partitus    (Poey, 1868). Este es un pez omn&iacute;voro habitante de arrecifes coralinos    someros y de parches arrecifales de profundidad (Allen, 1991); se alimenta de    plantas, peque&ntilde;os invertebrados, an&eacute;monas coloniales y tent&aacute;culos    de gusanos (Hauser, 1984), y es una especie abundante en el &aacute;rea de Santa    Marta. Los consumidores generalistas han sido considerados ideales en estudios    de disuasi&oacute;n alimentaria porque representan la mayor&iacute;a de peces    depredadores de arrecifes y pueden ser disuadidos m&aacute;s f&aacute;cilmente    que los consumidores especialistas, ya que estos &uacute;ltimos han desarrollado    mecanismos para tolerar las defensas de sus presas (Pawlik et al., 1995). Esta    especie de pez ha sido empleada con anterioridad en diferentes ensayos de ictiotoxicidad    y antidepredaci&oacute;n con algas marinas y esponjas, respondiendo bien a dietas    artificiales a base de at&uacute;n y gelatina sin sabor (Due&ntilde;as, 2000;    D&iacute;az-Ru&iacute;z, 2002).</p>     <p> Los peces fueron colectados en Punta de Bet&iacute;n con ayuda de un trasmallo    vertical de nylon monofilamento con un ojo de malla de 1 cm<sup>2</sup>. Los    peces fueron perseguidos individualmente y obligados a enredarse en la malla    de la que se liberaron cuidadosamente. Durante el proceso de aclimataci&oacute;n,    15 peces se ubicaron individualmente en frascos bomboneros de 1 gal&oacute;n,    separados por cartulina negra para evitar que se vieran unos a otros. Los peces    fueron alimentados tres veces al d&iacute;a con &#8220;pellets&#8221; control    preparados con 3 g de harina de trigo + 1 ml de agua. Los &#8220;pellets&#8221;    tratamiento se prepararon con   3 g de harina de trigo + el volumen equivalente de extracto para 3 ml de esponja    + 1 ml de agua. Para el experimento se suministr&oacute; a los peces la mitad    de la raci&oacute;n de &#8220;pellets&#8221; control que generalmente com&iacute;an    en sus horas de alimentaci&oacute;n, de manera que no estuvieran saciados, y    posteriormente se inici&oacute; la prueba ofreciendo a cada pez un &#8220;pellet&#8221;    control, luego un &#8220;pellet&#8221; tratamiento, y nuevamente ofreciendo    un &#8220;pellet&#8221; control. Los peces que no comieron el &#8220;pellet&#8221;    control inicial o final no se tuvieron en cuenta para el an&aacute;lisis de    datos. En la mayor&iacute;a de los casos se ensayaron 10 peces, aunque en   algunos s&oacute;lo se pudo en nueve. Los resultados se registraron tomando    en cuenta el n&uacute;mero de peces que consumieron &#8220;pellets&#8221; tratamiento    y se analizaron por medio de una prueba exacta de Fisher (Siegel y Castellan,    1995). Experimentos preliminares con &#8220;pellets&#8221; de harina a los que    se les a&ntilde;adi&oacute; calamar liofilizado, mostraron consumo tanto en    controles como en tratamientos con extracto. El sabor y contenido nutritivo    del calamar enmascararon el efecto disuasorio de los extractos. En otros experimentos,    los &#8220;pellets&#8221; con metanol siempre fueron consumidos (Chaves-Fonnegra,    2003).</p>     <p>&nbsp; </p>     <p><b><font size="3">RESULTADOS</font></b></p>      <p><b> Observaciones en el h&aacute;bitat natural</b></p>      <p> Se observaron 145 interacciones entre las esponjas excavadoras Cliona aprica,    C. caribbaea y C. tenuis y 17 especies de coral en las dos &aacute;reas de estudio.    Aunque Cliona delitrix est&aacute; presente en los arrecifes estudiados de San    Andr&eacute;s, &eacute;sta no se incluy&oacute; en las observaciones, ya que    inicialmente se hizo &eacute;nfasis en las esponjas caf&eacute;s. Posteriormente    se tomaron algunas muestras de <i>C. delitrix</i> para la fase experimental    debido a que era observada com&uacute;nmente en las estaciones de San Andr&eacute;s.    En todas las interacciones observadas se present&oacute; alguna condici&oacute;n    de deterioro sobre el tejido coralino (<a href="img/revistas/mar/v34n1/v34n1a02tab1.gif">Tabla 1</a>), mientras que s&oacute;lo en cuatro casos se observ&oacute; deterioro sobre la    esponja (<a href="#tab2">Tabla 2</a>) En la mayor&iacute;a de interacciones    se observ&oacute; mucus proveniente del coral, pero no se vieron filamentos    mesent&eacute;ricos o p&oacute;lipos extendidos, ya que las observaciones se    hicieron durante el d&iacute;a. Las principales condiciones de deterioro sobre    el tejido coralino del borde fueron palidecimiento (PA), blanqueamiento (BL)    y muerte actual (MA) (<a href="#fig2">Figura 2</a>).</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>        <center>     <a name="tab2"><img src="img/revistas/mar/v34n1/v34n1a02tab2.gif"></a>    </center> </p>     <p>        <center>     <a name="fig2"><img src="img/revistas/mar/v34n1/v34n1a02fig2.gif"></a>    </center> </p>     <p><b>Experimento de alelopat&iacute;a en campo</b></p>     <p> El grado de deterioro del tejido de las colonias de Montastrea cavernosa bajo    los geles con extracto de Cliona aprica (n = 10; T = 28; p = 0.0078) y C. delitrix    (n = 6; T = 15; p = 0.0313) fue mayor que bajo los geles control, mientras que    para C. caribbaea + C. tenuis no se obtuvieron diferencias estad&iacute;sticamente    significativas entre controles y tratamientos (n = 4; T = 6; p = 0.1250), posiblemente    debido al bajo n&uacute;mero de muestras por falta de extracto. No obstante,    en este &uacute;ltimo caso el grado de deterioro observado bajo los geles con    extracto siempre fue mayor y solo en uno de los cuatro casos el deterioro fue    igual que bajo el gel control (Figura 3).</p>     <p>    <br>   <b> Experimento de antiepibiosis en campo</b></p>     <p> Los resultados de este experimento mostraron que despu&eacute;s de 22 d&iacute;as    en campo, el asentamiento de organismos epibiontes sobre los geles no fue notorio    a simple vista. No obstante, al esteroscopio se observaron peque&ntilde;os invertebrados:    hidroides, poliquetos (Serpulidae y Spirorbidae), briozoos (Gemelipora sp. y    otros), esponjas, ascidias, algas, cirripedios (Balanus trigonus) y entoproctos,    as&iacute; como otros morfotipos sin identificar. Los hidroides se observaron    formando una pel&iacute;cula compuesta por miles de estolones verticales (colonias    j&oacute;venes) cuya base se encontraba generalmente con mucus y sedimento.</p>     <p> Se presentaron en promedio mayores abundancias y porcentajes de cobertura    sobre geles control (n=10) que sobre geles tratamiento (n=10), y se obtuvieron    diferencias significativas entre todos los geles control y tratamiento (abundancia:    KW= 19.8, p&lt; 0.001; cobertura: KW= 17.34, p&lt; 0.001) eliminando el grupo    hidroides que fue muy abundante. La abundancia y porcentaje de cobertura de    epibiontes sin el grupo hidroides fueron similares entre los geles de Cliona    aprica y C. caribbaea + C. tenuis, pero menores y diferentes a los encontrados    sobre los geles control (Dunn, p= 0.05) (<a href="img/revistas/mar/v34n1/v34n1a02tab3.gif">Tabla 3</a>).   En cuanto a grupos de organismos se obtuvieron diferencias significativas entre    todos los geles control y tratamiento con abundancias y coberturas de poliquetos,    briozoos, esponjas, ascidias y entoproctos en los geles tratamiento (<a href="img/revistas/mar/v34n1/v34n1a02tab3.gif">Tabla 3</a>).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <b>Experimento de disuasi&oacute;n de la depredaci&oacute;n</b></p>     <p> Los extractos de Cliona delitrix y C. caribbaea + C. tenuis produjeron un    efecto disuasorio en la alimentaci&oacute;n del pez Stegastes partitus (n= 10,    p= 0.02; n= 9, p= 0.02; respectivamente), mientras que el extracto de C. aprica    no gener&oacute; dicho efecto (p= 0.10, n= 9) (<a href="#fig4">Figura 4</a>).</p>     <p>        <center>     <a name="fig4"><img src="img/revistas/mar/v34n1/v34n1a02fig4.gif"></a>    </center> </p>     <p>    <br>   <b><font size="3">DISCUSI&Oacute;N</font></b></p>     <p> Muchas interacciones entre organismos que implican respuestas de ataque y    defensa no involucran factores f&iacute;sicos sino agentes qu&iacute;micos (Whittaker    y Feeny, 1971; Engel y Pawlik, 2000). La mayor&iacute;a de estos agentes pueden    cumplir dos o m&aacute;s funciones adaptativas en un organismo (Bakus et al.,    1985) y pueden estar afectando directamente la supervivencia de una poblaci&oacute;n,    como la estructura y funci&oacute;n de una comunidad o un ecosistema. La evaluaci&oacute;n    del papel de compuestos qu&iacute;micos est&aacute; influenciada significativamente    por el tipo de ensayo, los organismos empleados en el ensayo, la concentraci&oacute;n    de los compuestos a ensayar y la duraci&oacute;n de los experimentos (Becerro    et al., 1997). Por lo tanto, debe tenerse en cuenta que el presente trabajo    es una primera aproximaci&oacute;n experimental en ensayos ecol&oacute;gicamente    relevantes, sobre el papel que pueden desempe&ntilde;ar los compuestos qu&iacute;micos    contenidos en los extractos org&aacute;nicos crudos de las esponjas excavadoras    en estudio.</p>     <p><b> Alelopat&iacute;a</b></p>     <p> En su h&aacute;bitat natural los corales en interacci&oacute;n directa con    las tres especies de esponjas estudiadas presentaron deterioro de sus tejidos    en la zona de contacto, observ&aacute;ndose principalmente palidecimiento, blanqueamiento    y muerte actual de los p&oacute;lipos adyacentes. Esto supone que las agresiones    causadas por este tipo de esponjas sean la causa directa de deterioro del tejido    coralino, que podr&iacute;a presentarse: 1) cuando la esponja y el coral est&aacute;n    en contacto directo (efecto f&iacute;sico o qu&iacute;mico), especialmente en    la noche cuando los p&oacute;lipos se extienden, 2) cuando la esponja y el coral    est&aacute;n en cercan&iacute;a, por medio de exudaci&oacute;n de los compuestos    (efecto qu&iacute;mico a distancia), o 3) a trav&eacute;s de los filamentos    excavadores por contacto directo o exudaci&oacute;n a distancia sobre la base    de los p&oacute;lipos. En el presente estudio no se pusieron en contacto directo    esponja y coral, sino que se desagregaron las caracter&iacute;sticas f&iacute;sicas    de las qu&iacute;micas de la esponja. Los experimentos de alelopat&iacute;a    por contacto fueron dise&ntilde;ados para determinar el efecto qu&iacute;mico    por contacto de los extractos sobre el tejido del coral, obteniendo como resultado    la muerte del tejido del coral, tanto bajo controles como tratamientos. Lo anterior    pudo    <br>   deberse, al menos en parte, al posible efecto f&iacute;sico producido por la    presi&oacute;n de contacto de los geles, como a que se cubrieron los p&oacute;lipos    y no recibieron luz durante los cuatro d&iacute;as del experimento. Sin embargo,    las diferencias entre controles y tratamientos permitieron establecer que hubo    un efecto delet&eacute;reo adicional en los p&oacute;lipos bajo los geles con    extracto de las esponjas, que bajo los controles debido a los compuestos contenidos    en los extractos.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Las observaciones y el experimento realizado, permiten sugerir que en las    esponjas excavadoras los mecanismos de perforaci&oacute;n del sustrato act&uacute;an    en conjunto con mecanismos alelop&aacute;ticos, por medio de la liberaci&oacute;n    de compuestos qu&iacute;micos directamente de tejido a tejido en los puntos    de contacto, tanto superior a trav&eacute;s de la dermis, como inferior a trav&eacute;s    de los filamentos excavadores; o por la exudaci&oacute;n y posterior difusi&oacute;n    de &eacute;stos compuestos superficial o internamente, alcanzando el tejido    coralino. Estos procesos debilitar&iacute;an y matar&iacute;an los p&oacute;lipos    del coral previa o paralelamente al proceso de relleno, perforaci&oacute;n y    avance sobre y entre el sustrato de carbonato. Empero, la evidencia experimental    y las observaciones no permiten discernir si hay un efecto delet&eacute;reo    natural a distancia a trav&eacute;s de la exudaci&oacute;n y difusi&oacute;n    de compuestos. En otros estudios con la esponja excavadora Aka (=Siphonodictyon)    sp. se encontr&oacute; que el compuesto sifonodictidina se presenta en el mucus    de la esponja y parece ser responsable de mantener zonas muertas de coral alrededor    de los &oacute;sculos, aunque el compuesto no se ha probado directamente sobre    el tejido coralino. Adem&aacute;s, podr&iacute;a actuar en forma pasiva inhibiendo    la fijaci&oacute;n y crecimiento de ep&iacute;fitos o disuadiendo a depredadores    generalistas (Sullivan et al., 1983; Sullivan y Faulkner, 1985). As&iacute;    mismo, dos especies de esponjas excavadoras, Aka=Siphonodictyon) coralliphagum    y Aka (=Siphonodictyon) sp. involucran diferentes compuestos (sifonodictiales    1-7 y sifonodictidina, respectivamente) con la funci&oacute;n de matar los p&oacute;lipos    de coral    <br>   (Sullivan y Faulkner, 1985). As&iacute; mismo, la esponja no excavadora Plakortis    zygompha en contacto directo con el coral Agaricia lamarcki produce efectos    de blanqueamiento sobre el tejido coralino (Targett y Schmhal, 1984). Empero,    se requerir&iacute;a comprobar si el mucus solo es el responsable de la acci&oacute;n    delet&eacute;rea, independientemente de si contiene los metabolitos o no. Tambi&eacute;n,    en el caso de    <br>   los experimentos en que el extracto se incluye en un medio que se pone en contacto    directo con el tejido coralino, falta comprobar si el efecto qu&iacute;mico    es inducido por el efecto f&iacute;sico del gel, que de por s&iacute; produce    sombreado y ahogamiento local del tejido mientras dura el experimento.</p>     <p> Se ha afirmado previamente que los Clionaidae incrustantes no parecen producir    compuestos alelop&aacute;ticos que afecten las colonias de coral, ya que al    hacer implantes de la esponja Cliona tenuis (como C. caribbaea) en colonias    sanas de Diploria labyrinthiformis, Montrastraea annularis y Acropora palmata,    los p&oacute;lipos no se vieron afectados y las esponjas no se extendieron en    el coral (R&uuml;tzler, 2002). En estos casos, claramente las esponjas no pose&iacute;an    los filamentos pioneros socavadores y por ello sucumbieron a las defensas del    coral (McKenna, 1997; Sch&ouml;nberg y Wilkinson, 2001; L&oacute;pez-Victoria    et al., 2003). Aunque las esponjas puedan exudar compuestos qu&iacute;micos    alelop&aacute;ticos o nocivos (Duque et al., 2001), el coral tiene mecanismos    de agresi&oacute;n y defensa que contrarrestan el efecto de &eacute;stos exudados.    S&oacute;lo cuando las esponjas excavadoras desarrollan los filamentos pioneros    (Sch&ouml;nberg y Wilkinson, 2001; R&uuml;tzler, 2002; L&oacute;pez-Victoria    et al., 2003) y pueden socavar por debajo de la capa de los p&oacute;lipos,    evitando las defensas del coral, pueden avanzar contra coral vivo. Es posible    que la penetraci&oacute;n de estos filamentos pioneros permita que los compuestos    qu&iacute;micos sean difundidos internamente en el tejido coralino vivo, aunque    esto est&aacute; por comprobarse.</p>     <p> Se ha considerado que las especies s&eacute;siles qu&iacute;micamente agresivas,    por el costo metab&oacute;lico de producir las sustancias, tienden solo a mantener    el espacio ganado, mientras las no defendidas, invierten en crecimiento r&aacute;pido,    ganando espacio recubriendo o tapando los vecinos (Aerts y van Soest, 1999).    Esponjas excavadoras incrustantes como Cliona aprica, C. caribbaea y C. tenuis    parecen emplear ambas estrategias para avanzar contra los corales, pero socavando    por debajo y empleando quiz&aacute;s compuestos alelop&aacute;ticos. Esto podr&iacute;a    deberse, al menos en parte, al aporte energ&eacute;tico de sus zooxantelas,    como lo ha planteado Hill (1996) para Cliona varians. Por su parte, el &eacute;xito    de C. delitrix, especie que no contiene este tipo de simbiontes (R&uuml;tzler,    2002), podr&iacute;a radicar en el empleo de compuestos de mayor efecto alelop&aacute;tico,    evidente en anchos halos de mortalidad a su alrededor. Empero, a&uacute;n no    se conocen las tasas de avance lateral contra coral de esta especie para ser    comparada con las otras.</p>     <p>    <br>   <b>Antiepibiosis</b></p>     <p> Seg&uacute;n Henrikson y Pawlik, (1995), despu&eacute;s de 21 d&iacute;as    en agua de mar los geles a base de Phytagel&#153; a&uacute;n contienen en promedio    56% de la cantidad inicial de extracto. Se consider&oacute; por tanto que a    los 22 d&iacute;as el efecto podr&iacute;a ser observable, encontr&aacute;ndose    diferencias entre los geles control y tratamiento. Otras observaciones realizadas    en este estudio con los mismos geles vueltos a sumergir por un periodo de 15    d&iacute;as m&aacute;s y a 2 m de profundidad corroboraron esta suposici&oacute;n    pues se contin&uacute;o presentando inhibici&oacute;n del asentamiento (Chaves-    Fonnegra, 2003). Sin embargo, la existencia de compuestos antiepibi&oacute;ticos    en el extracto no necesariamente demuestra que est&aacute;n siendo liberados    naturalmente al medio por parte del organismo que los produce o que se encuentran    en las c&eacute;lulas epiteliales que podr&iacute;an estar en contacto con los    organismos epibiontes.</p>     <p> En los geles experimentales de antiepibiosis, los hidroides fueron el grupo    m&aacute;s representativo de organismos asentados, tanto en abundancia como    en cobertura, concordando con su abundancia natural en el &aacute;rea (Bandel    y Wedler, 1987). El asentamiento de estos organismos no se vi&oacute; inhibido    o incrementado por los extractos de Cliona aprica y C. caribbaea + C. tenuis,    lo que es posible se deba a su m&eacute;todo de crecimiento de estolones rastreros    o ejes verticales (Jackson, 1979), con puntos de fijaci&oacute;n espaciados    y limitados, a sus estructuras de protecci&oacute;n (p. ej. perisarco), asent&aacute;ndose    sobre superficies sin estar los tejidos directamente en contacto con el sustrato    (Hughes, 1977), y a su capacidad para engrosar sus tubos adhiriendo gran cantidad    de part&iacute;culas.</p>     <p> Los extractos en cambio s&iacute; generaron un efecto inhibidor de crecimiento    sobre otros invertebrados de crecimiento incrustante y masivo como poliquetos,    briozoos, esponjas, ascidias y entoproctos, lo que posiblemente los hace m&aacute;s    vulnerables a la acci&oacute;n de sustancias aleloqu&iacute;micas contenidas    en los extractos. Sin embargo, se debe tener en cuenta que para las ascidias    s&oacute;lo se manifest&oacute; el efecto en t&eacute;rminos de abundancia,    que de todos modos fue muy baja. Es posible que a largo plazo o en otra &eacute;poca    clim&aacute;tica el reclutamiento de &eacute;stos organismos sea mayor y el    efecto de los extractos sea m&aacute;s notorio.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> As&iacute; mismo, es posible que otros grupos de organismos que reclutan preferiblemente    en otra &eacute;poca del a&ntilde;o, como los cirripedios (Balanus trigonus)    (Garc&iacute;a, 1991), y que se presentaron en baja abundancia y cobertura,    puedan ser inhibidos por los extractos de las esponjas. Ser&iacute;a necesario    hacer colectas estacionales y pruebas en las diferentes &eacute;pocas clim&aacute;ticas,    o durante un per&iacute;odo de tiempo mayor, para saber si los extractos tienen    o no, un efecto antiepibi&oacute;tico sobre esos grupos. Aunque el experimento    se desarroll&oacute; en &eacute;poca de tendencia al incremento de reclutamiento    larval en Punta de Bet&iacute;n (Zea,    <br>   1992; Garc&iacute;a y Salzwedel, 1993), debe tenerse en cuenta que el efecto    de los extractos en los organismos puede variar estacionalmente y de acuerdo    a los picos larvales en la columna de agua (Henrikson y Pawlik, 1998). Por tanto,    el experimento permite elucidar el efecto que los extractos de las esponjas    provenientes de San Andr&eacute;s, y de Islas del Rosario pueden tener sobre    los principales grupos de organismos epibiontes, que en general se encuentran    tanto en Santa Marta como en el Caribe, y no a nivel espec&iacute;fico.</p>     <p> <b>Disuasi&oacute;n de la depredaci&oacute;n</b></p>     <p> Las esponjas Cliona caribbaea y C. tenuis perforan e incrustan las colonias    de coral exponiendo una delgada capa de su cuerpo a los depredadores. En campo    se observ&oacute; que algunas esponjas presentaban marcas (raspaduras o mordiscos)    causadas por peces loros, los cuales se observaron aliment&aacute;ndose sobre    los bordes de la interacci&oacute;n coral-esponja, probablemente aprovechando    el tejido coralino debilitado y vulnerable por causa de la perforaci&oacute;n    (L&oacute;pez-Victoria, 2003; L&oacute;pez-Victoria et al., 2003). Se ha encontrado    que varios peces loro consumen esponjas en su dieta (Randall y Har&#153;an,    1968; Wulff, 1997; Dunlap y Pawlik, 1998), aunque en Bonaire y las Antillas    Holandesas se alimentan casi exclusivamente en asociaciones de algas con sustratos    de coral muerto (Bruggemann et al., 1994), y ocasionalmente pueden morder coral    vivo en los bordes de sus territorios (Bruckner y Bruckner, 1998).</p>     <p> En experimentos adicionales a este estudio, conociendo la cantidad de &#8220;pellets&#8221;    control con que se lograba saciar a cada uno de los individuos usados del pez    Stegastes partitus, se evalu&oacute; qu&eacute; porcentaje de esa cantidad era    rechazado cuando se ofrec&iacute;an los &#8220;pellets&#8221; con extracto,    pero en condiciones de ayuno. Se encontr&oacute; que el rechazo por los peces    fue mayor para alimento con extracto de Cliona delitrix (63.9 % &plusmn; 8.35)    que para alimento con extracto de C. caribbaea + C. tenuis (25.37 % &plusmn;    8.74) y C. aprica (14.67 % &plusmn; 8.13) (Chaves-Fonnegra, 2003). Estos resultados    permiten considerar que la    <br>   capacidad disuasoria de los extractos de C. delitrix es mayor que la de C. caribbaea    + C. tenuis, y que la menor corresponde a C. aprica, esto &uacute;ltimo en concordancia    con los experimentos de disuasi&oacute;n. C. delitrix, C. caribbaea y C. tenuis    se encuentran principalmente en estadio de crecimiento beta (Pang, 1973; L&oacute;pez-Victoria    et al., 2003), aunque la primera engruesa en mayor grado su tejido observaciones    de los autores), mientras que C. aprica se encuentra en estadio de crecimiento    alfa y beta incompleto, en ambos casos no llegando a recubrir totalmente toda    la superficie del sustrato (L&oacute;pez-Victoria et al.,    <br>   2003). Por lo tanto, es posible que el mayor grado de disuasi&oacute;n contra    depredadores de las tres primeras esponjas est&eacute; relacionado con el mayor    grado de exposici&oacute;n del tejido de la esponja al medio, en comparaci&oacute;n    con C. aprica.</p>     <p> En casi todos los casos en que se probaron, los extractos crudos de las esponjas    excavadoras en estudio presentaron un efecto delet&eacute;reo en contacto con    el tejido coralino vivo, inhibieron el asentamiento de animales bent&oacute;nicos    s&eacute;siles y disuadieron la alimentaci&oacute;n del pez Stegastes partitus    (<a href="#tab4">Tabla 4</a>). Lo anterior, sumado a su capacidad para perforar    por debajo el sustrato de sost&eacute;n de los p&oacute;lipos coralinos, conferir&iacute;a    a estas esponjas excavadoras una ventaja adaptativa para crecer exitosamente    y competir por el sustrato.</p>     <p>        <center>     <a name="tab4"><img src="img/revistas/mar/v34n1/v34n1a02tab4.gif"></a>    </center> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><b><font size="3">AGRADECIMIENTOS</font></b></p>     <p> Este estudio se enmarc&oacute; en el programa de Biodiversidad de Ecosistemas    Marinos (BEM) del Instituto de Investigaciones Marinas y Costeras &#8220;Jos&eacute;    Benito Vives de Andreis&#8221; (INVEMAR), dentro del proyecto de investigaci&oacute;n    de la Universidad Nacional de Colombia titulado &#8220;Taxonom&iacute;a del    complejo de esponjas excavadoras de coral Cliona aprica - C. langae - C. caribbaea    y su impacto sobre algunos arrecifes coralinos del Caribe colombiano&#8221;    (110109-10387 COLCIENCIAS). Cont&oacute; con el apoyo del proyecto &#8220;Origen    de la biodiversidad del Caribe: Sistem&aacute;tica y biogeograf&iacute;a de    las esponjas del g&eacute;nero Agelas&#8221; (110109-11241 COLCIENCIAS- UNAL),    del CEINER (Centro de Investigaci&oacute;n, Educaci&oacute;n y Recreaci&oacute;n    Oceanario Islas del Rosario, Colombia) y de SIGMA XI (The Scientific Research    Society). Muchas gracias a todas las personas que nos prestaron su ayuda, en    especial a Joe Pawlik y a Micha Ilan por las ideas en los varios m&eacute;todos,    especialmente el de alelopat&iacute;a por contacto. Este trabajo es resultado    directo del Trabajo de Grado de A.C-F. de la Universidad Jorge Tadeo Lozano,    Facultad de Biolog&iacute;a Marina.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <b><font size="3">BIBLIOGRAF&Iacute;A</font></b></p>     <!-- ref --><p>1. Aerts, L.A.M. y D. Kooistra. 1999. Ecological strategy and competitive ability    in the excavating reef sponge Anthosigmella varians. En: Sponge - Coral Interactions    on Caribbean reefs. Tesis de PhD, Univ. Amsterdam, Holanda, 157 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0122-9761200500010000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 2. Aerts, L.A.M. y R.W.M. van Soest. 1999. The role of toxicity in competition    for space between sponges and corals. En: Sponge - Coral Interactions on Caribbean    reefs. Tesis de PhD, Univ. Amsterdam, Holanda, 157 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0122-9761200500010000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 3. Allen, G.R. 1991. Damselfishes of the world. Mergus Publishers, Melle,    Alemania, 271 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0122-9761200500010000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 4. Assmann, M., E. Lichte, J.R. Pawlik y M. K&ouml;ck. 2000. Chemical defenses    of the Caribbean sponges Agelas wiedenmayeri and Agelas conifera. Mar. Ecol.    Prog. Ser., 207: 255-262.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0122-9761200500010000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 5. Bakus, G.J., B. Schulte, S. Jhu, M. Wright, G. Green y P. G&oacute;mez.    1985. Antibiosis and antifouling in marine sponges: Laboratory versus field    studies. 3d Int. Sponge. Conf.: 102-108.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0122-9761200500010000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 6. Bandel, K. y E. Wedler. 1987. Hydroid, Amphineuran and Gastropod Zonation    in the Littoral of the Caribbean Sea, Colombia. Senckenbergiana Maritima, 19    (1-2): 1-130.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0122-9761200500010000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 7. Becerro, M.A., X. Turon y M.J. Uriz. 1997. Multiple functions for secondary    metabolites in encrusting marine invertebrates. J. Chem. Ecol., 23 (6): 1527-1547.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0122-9761200500010000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 8. Bruckner, A.W. y R.J. Bruckner. 1998. Rapid wasting syndrome or coral predation    by stoplight parrotfish? Reef Encounter, 23: 18-22.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0122-9761200500010000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 9. Bruggemann, J.H., J. Begeman, E.M. Bosma, P. Verburg y A.M. Breeman. 1994.    Foraging by the stoplight parrotfish Sparisoma viridae: II. Intake and asimilation    of food, protein and energy. Mar. Ecol. Prog. Ser., 106: 57-71.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0122-9761200500010000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 10. Chanas, B. y J.R. Pawlik. 1995. Defenses of Caribbean sponges against    predatory reef fish. II. Spicules, tissue toughness, and nutritional quality.    Mar. Ecol. Prog. Ser., 127: 195-211.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0122-9761200500010000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 11. ________. 1996. Does the skeleton of a sponge provide a defense against    predatory reef fish?. Oecolog&iacute;a, 107: 225-231.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0122-9761200500010000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 12. ________.1997. Variability in the chemical defense of the Caribbean reef    sponge Xetospongia muta. Proc. 8th Int. Coral. Reef. Sym., 2: 1363-1368. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0122-9761200500010000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Chanas, B., J.R. Pawlik., T. Lindel y W. Fenical. 1996. Chemical defense    of the Caribbean sponge Agelas clathrodes (Smidt). J. Exp. Mar. Biol. Ecol.,    208: 185-196.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0122-9761200500010000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 14. Chaves-Fonnegra, A. 2003. Evaluaci&oacute;n del posible papel ecol&oacute;gico    de los extractos org&aacute;nicos crudos de las esponjas excavadoras Cliona    aprica Pang, 1973, C. caribbaea Carter, 1882, C. delitrix Pang, 1973 y C. tenuis,    Zea y Weil, sp.nov. Tesis Biol. Mar., Univ. Jorge Tadeo Lozano, Santa Marta,    127 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0122-9761200500010000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 15. D&iacute;az-Ru&iacute;z, M. C. 2002. Ensayos de actividad biol&oacute;gica    y ecolog&iacute;a qu&iacute;mica de los extractos org&aacute;nicos crudos de    algunas macroalgas del Caribe colombiano. Tesis Biol. Mar., Univ. Jorge Tadeo    Lozano, Santa Marta,, 73 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0122-9761200500010000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 16. Due&ntilde;as, A. 2000. Ensayos sobre bioactividad y ecolog&iacute;a qu&iacute;mica    de extractos org&aacute;nicos crudos de la esponja marina Axinyssa ambrosia    (Clase: Desmospongiae, Familia: Halichondridae). Tesis Biol., Univ. Nacional,    Bogot&aacute;, 92 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0122-9761200500010000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 17. Dumdei, E.J., J.W. Blunt, M.H.G. Munro, C.N. Battershill y M.J. Page.    1998. The whys and whats of sponge chemistry: Why chemist extract sponges and    what problems does this cause?: 353-364. En Watanabe, Y. y N. Fusetani (Eds.):    Sponge Sciences. Multidisciplinary Perspectives. Spring Verlag, Tokyo.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0122-9761200500010000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 18. Dunlap, M. y J.R. Pawlik. 1998. Spongivory by parrotfish in Florida mangrove    and reef habitats. P.S.Z.N.I Mar. Ecol., 19 (4): 325-337.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0122-9761200500010000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 19. Duque, C., A. Bonilla, E. Bautista y S. Zea. 2001. Exudation of low molecular    weight compounds (thiobismethane, methyl isocyanide, and methyl isothiocyanate)    as a possible chemical defense mechanism in the marine sponge Ircinia felix.    Bioch. Syst. Ecol., 29: 459-467.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0122-9761200500010000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 20. Dyrynda, P.E.J. 1983. Modular sessile invertebrates contain larvotoxic    allelochemicals. Develop. Compar. Inmun., 7: 621-624.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0122-9761200500010000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 21. Engel, S. y J.R. Pawlik. 2000. Allelopathic activities of sponge extracts.    Mar. Ecol. Prog. Ser., 207: 273-281.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0122-9761200500010000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 22. Garc&iacute;a, C.B. 1991. Comparison of successional patterns on hard    substrata: The Caribbean Sea and the North Sea. Bremen. Tesis Doctoral, Univ.    Bremen, 148 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0122-9761200500010000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 23. Garc&iacute;a, C.B. y H. Salzwedel. 1993. Recrui&#8482;ent patterns of    sessile invertebrates onto fouling plates in the bay of Santa Marta, colombian    Caribbean. An. Inst. Invest. Mar. Punta de Bet&iacute;n., 22: 30-44.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0122-9761200500010000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 24. Gerhart, D.J., D. Rittschof y S.W. Mayo. 1988. Chemical ecology and the    search for marine antifoulants: Studies of a predatory-prey symbiosis. J. Chem.    Ecol., 14 (10): 1905- 1917.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0122-9761200500010000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 25. Hauser, H. 1984. Book of marine fishes. Pisces Books Gulf Publishing Company.    Huston-Texas, 192 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0122-9761200500010000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 26. Henrikson, A.A. y J.R. Pawlik. 1995. A new antifouling assay method: results    from field experiments using extracts of four marine organisms. J. Exp. Mar.    Biol. Ecol., 194: 157-165.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0122-9761200500010000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 27. ________. 1998. Seasonal variation in biofuling of gels containing extracts    of marine organisms. Biofouling, 12 (1-3): 245-255.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0122-9761200500010000200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 28. Hill, M.S. 1996. Symbiotic zooxanthellae enhance boring and growth rates    of the tropical sponge Anthosigmella varians forma varians. Mar. Biol., 125:    649-654.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0122-9761200500010000200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 29. Hughes, R.G. 1977. Aspects of the biology and life-history of Nemertesia    antennina (L.) (Hidrozoa: Plumulariidae). J. Mar. Biol. Ass., 57: 641-657.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0122-9761200500010000200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 30. Jackson, J.B.C. 1979. Morphological strategies of sessile animals: 499    -555. En Larwood, G. y B.R. Rosen (Eds.): Biology and systematics of colonial    organisms. Academic Press, London.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0122-9761200500010000200030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 31. Jackson, J.B.C. y L.W. Buss. 1975. Allelopathy and spatial competition    among coral reef invertebrates. Proc. Nat. Acad. Sci., 72: 5160-5163.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0122-9761200500010000200031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 32. Lang, J.C. 1971. Interespecific aggression by scleractinian corals. I.    The rediscovery of Scolymia cubensis (Milne Edwards and Haime). Bull. Mar. Sci.,    21: 952-959.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0122-9761200500010000200032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 33. ________. 1973. Interespecific aggression by scleractinian corals. II.    Why the race is not only to the swift. Bull. Mar. Sci., 23: 261-279.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0122-9761200500010000200033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 34. Lewis, S.M. 1982. Sponge-Zoanthid associations: Functional interactions:    465-474. En R&uuml;tzler, K. y I.G. Macintyre (Eds.): The Atlantic Barrier Reef    ecosystem at Carrie Bow Cay, Belize, I structure and communities. Smithsonian    Institution Press, Washington.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0122-9761200500010000200034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 35. L&oacute;pez-Victoria, M. 2003. Interacciones entre esponjas excavadoras    del complejo Cliona aprica - C. langae - C. caribbaea y corales p&eacute;treos    en el Caribe colombiano. Tesis M.Sc. Biol. Mar., Univ. Nacional-INVEMAR, Santa    Marta, 105p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0122-9761200500010000200035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 36. L&oacute;pez-Victoria, M. y S. Zea. 2004. Storm-mediated coral colonization    by an excavating Caribbean sponge. Clim Res, 26: 251-256.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0122-9761200500010000200036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 37. L&oacute;pez-Victoria, M. S. Zea y E. Weil. 2003 (2004). New aspects on    the biology of the encrusting excavating sponges Cliona aprica, Cliona caribbaea    y Cliona sp. Boll. Mus. Ist. Biol. Univ. Genova, 68: 425-432.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0122-9761200500010000200037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 38 .Mckenna, S.A. 1997. Interactions between the boring sponge Cliona lampa    and two hermatipic corals from Bermuda. Proc. 8th Int. Coral. Reef. Sym., 2:    1369-1374.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0122-9761200500010000200038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 39. Palermo, J.A., M.F. Rodr&iacute;guez-Brasco y A.M. Seldes. 1996. Stornamides    A-D: Alkaloids from a Patagonian sponge Cliona sp. Tetrahedron, 52 (8): 2727-2734.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0122-9761200500010000200039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 40. Pang, R.K. 1973. The systematics of some Jamaican excavating sponges.    Postilla, 161: 1-75.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0122-9761200500010000200040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 41. Pawlik, J.R. 1992. Chemical ecology of the settlement of benthic marine    invertebrates. Oceanogr. Mar. Biol. Annu. Rev., 30: 273 - 335.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0122-9761200500010000200041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 42. ________. 1993. Marine invertebrate chemical defenses. Chem. Rev., 93    (5): 1911-1922.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0122-9761200500010000200042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 43. ________. 1997. Fish predation on Caribbean reef sponges: An emerging    perspective of chemical defenses. Proc. 8th Int. Coral. Reef. Sym., 2: 1255-1258.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0122-9761200500010000200043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 44. Pawlik, J.R., B. Chanas, R.J. Toonen y W. Fenical. 1995. Defenses of caribbean    sponges against predatory reef fish: I. Chemical deterrency. Mar. Ecol. Prog.    Ser., 127: 183-194.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0122-9761200500010000200044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 45. Pomponi, S.A. 1976. An ultraestructural study of boring sponges cells    and excavated substrata. Scanning Electron Microscopy, 8: 569-576.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S0122-9761200500010000200045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 46. ________. 1977. Etching cells of boring sponges: an ultrastructural analysis.    Proc. 3rd. Int. Coral Reef Sym., Miami.2. Geologia: 485-490.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0122-9761200500010000200046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 47. ________. 1979. Ultrastructure and cytochemistry of the etching area of    boring sponges. Coll. Int. C.N.R.S., 291: 317-332.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000154&pid=S0122-9761200500010000200047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 48. Porter, J.W. y N.M. Targett. 1988. Allelochemical interactions between    sponges and corals. Biol. Bull., 175: 230-239.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0122-9761200500010000200048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 49. Randall, J.E. y W.D. Hartman. 1968. Sponge -feeding fishes of the west    Indies. Int. J. Life. Oceans. Coastal. Waters., 1 (3): 216 -225.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000156&pid=S0122-9761200500010000200049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 50. R&uuml;tzler, K. 2002. Impact of crustose clionid sponges on Caribbean    reef corals. Acta Geol. Hisp., 37 (1): 61-72.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0122-9761200500010000200050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 51. R&uuml;tzler, K. y G. Rieger. 1973. Sponge burrowing: Fine structure of    Cliona lampa penetrating calcareous substrata. Mar. Biol., 21: 144-162.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000158&pid=S0122-9761200500010000200051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 52. Sch&ouml;nberg, C.H.L. y C.R. Wilkinson. 2001. Induced colonization of    corals by a clionid bioeroding sponge. Coral Reefs, 20: 69-76.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0122-9761200500010000200052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 53. Siegel, S. y N.J. Castellan. 1995. Estad&iacute;stica no param&eacute;trica:    Aplicada a las ciencias de la conducta. Editorial Trillas, S.A. M&eacute;xico,    438 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000160&pid=S0122-9761200500010000200053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 54. Simpson, T.L. 1984. The cell biology of sponges. Springer-Verlag, New    York, 662 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0122-9761200500010000200054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 55. Sullivan, B. y D.J. Faulkner. 1985. Chemical studies of burrowing sponge    Siphonodictyon coralliphagum: 45-50. En K. R&uuml;tzler (Ed.): New perspectives    in sponge biology. Smithsonian Institution Press, Washington.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000162&pid=S0122-9761200500010000200055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 56. Sullivan, B. y L. Webb. 1983. Siphonodictidine, a metabolite of the burrowing    sponge Siphonodictyon sp. that inhibits coral growth. Science, 221: 1175-1176.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S0122-9761200500010000200056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 57. Targett, N.M. y G. Schmahl. 1984. Chemical ecology and distribution of    sponges in the Salt River Canyon, St. Croix, U.S.V.I. USA: NOAA Technical memorandum    OAR NURP-1. 29 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000164&pid=S0122-9761200500010000200057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 58. Thacker, R.W., M.A. Becerro, W.A. Lumbang y V.J. Paul. 1998. Allelopathic    interactions between sponges on a tropical reef. Ecology, 79 (5): 1740-1750.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S0122-9761200500010000200058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 59. Vicente, V.P. 1978. An ecological evaluation of the west indian Demosponge    Anthosigmella varians (Hadromerida: Spirastrellidae). Mar. Bull. Sci., 24 (4):    771-777.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000166&pid=S0122-9761200500010000200059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 60. Waddell, B. y J.R. Pawlik. 2000a. Defenses of Caribbean sponges against    invertebrate predators: I. Assays with hermit crabs. Mar. Ecol. Prog. Ser.,    195: 125-132.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S0122-9761200500010000200060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 61. ________. 2000b. Defenses of Caribbean sponges against invertebrate predators:    II. Assays with sea stars. Mar. Ecol. Prog. Ser., 195: 133-144.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000168&pid=S0122-9761200500010000200061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 62. Wahl, M. y B. Banaigs. 1991. Marine epibiosis: III Possible antifouling    defense adaptations in Polysyncraton lacazei (Giard) (Didemnidae, Ascidiacea).    J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 145: 49-63.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S0122-9761200500010000200062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 63. Whittaker, R.H. y P.P. Feeny. 1971. Allelochemics: Chemical interactions    between species. Science, 171: 757-770.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000170&pid=S0122-9761200500010000200063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 64. Wilkinson, C.R. 1983. Role of sponges in coral reef structural processes:    263-274. En Barnes D.J. (Ed.): Perspectives on coral reefs. Brian Clouston Publisher,    Manuka, Australia.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000171&pid=S0122-9761200500010000200064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 65. Wulff, J.L. 1997. Parrotfish predation on cryptic sponges of Caribbean    coral reefs. Mar. Biol., 129: 41-52.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000172&pid=S0122-9761200500010000200065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 66. Zar, J.H. 1996. Biostatistical analysis. Prentice Hall Inc., Upper Saddle    River, New Jersey, USA, 662 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000173&pid=S0122-9761200500010000200066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 67. Zea, S. 1992. Estimation of demosponge (Porifera, Demospongiae) larval    settlement rates from shorterm recruitment rates: preliminary experiments. Helgolander    Meeresuntersuchungen, 46 (3): 293-300.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000174&pid=S0122-9761200500010000200067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 68. Zea, S. y E. Weil. 2003. Taxonomy of the Caribbean excavating sponge species    complex Cliona caribbaea - C. aprica - C. langae (Porifera, Hadromerida, Clionaidae).    Caribb. J. Sci., 39 (3): 348-370.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000175&pid=S0122-9761200500010000200068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br> </p> </font>       ]]></body><back>
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