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<journal-title><![CDATA[Boletín de Investigaciones Marinas y Costeras - INVEMAR]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[INSTITUTO DE INVESTIGACIONES MARINAS Y COSTERAS "JOSE BENITO VIVES DE ANDRÉIS" (INVEMAR)    INSTITUTO DE INVESTIGACIONES MARINAS Y COSTERAS -JOSE BENITO VIVES DE ANDRÉIS- (INVEMAR)]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[MONITOREO DE LOS NIVELES DE TESTOSTERONA Y ESTRADIOL EN EL PLASMA SANGUÍNEO DE HEMBRAS DE PARGO PALMERO LUTJANUS ANALIS MANTENIDAS BAJO DOS TERMOPERIODOS DE ACONDICIONAMIENTO DIFERENTES]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Monitoring of testosterone and oestradiol levels in blood plasma of mutton snapper Lutjanus analis females maintained under two different thermoperiod conditioning cycles]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Corporación Centro de Investigación de la Acuicultura de Colombia (CENIACUA)  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Two groups of adult Mutton snapper fish Lutjanus analis captured in the wild, each one of three females and four males, were kept during eight months under controlled temperature and photoperiod conditions in the lab in order to stimulate their sexual maturation which was in a state of latency because of the effects of confinement. The first group was maintained under an artificial cycle with temperature manipulation and the second under a control cycle, in which this parameter was left at natural conditions. Every two months blood samples from all females were taken for the analysis of plasma testosterone (T) and oestradiol (E2) levels, taking ovarian biopsies simultaneously to register the mean diameter of the oocytes. After six months, a significative increase in the mean diameter of the oocytes of the three females of the artificial cycle was observed, with coincidence and statistic relationship with the increase in the T and E2 (r = 0.62 y 0.82 respectively). No oocyte growth was observed in the females under the control cycle. In both, artificial and control cycles, T and E2 levels showed a close relationship with photoperiod (r = 0.84 y r = 0.61) while temperature showed a lower or non significant relationship (r = 0.40 y r = 0.20). Statistical differences (P<0.1) were found between the condition factors of the two groups, while the sexual steroids didn&#8217;t show any differences between them. The present work constitutes the first report on the analysis of sexual steroid levels during the gonadal maturation process in fish of the Family Lutjanidae kept under an artificial conditioning cycle.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Pargo palmero]]></kwd>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Maduración sexual]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[Ciclo artificial de acondicionamiento]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[   <font face="verdana" size="2">      <p>&nbsp;</p>      <p>    <center><font size="4"><b>MONITOREO DE LOS NIVELES DE TESTOSTERONA Y ESTRADIOL EN EL PLASMA SANGU&Iacute;NEO DE HEMBRAS DE PARGO PALMERO LUTJANUS ANALIS MANTENIDAS    BAJO DOS TERMOPERIODOS DE ACONDICIONAMIENTO DIFERENTES</b></font></center></p>          <p>&nbsp;</p>        <p>    <center><font size="4"><b>Monitoring of testosterone and oestradiol levels in blood plasma of mutton snapper Lutjanus analis females maintained under two different      thermoperiod conditioning cycles</b></font></center></p>          <p>&nbsp;</p>        <p><b>Fabio Casta&ntilde;o&sup1; y Juli&aacute;n Botero&sup1;</b></p>     <p>&sup1;Corporaci&oacute;n Centro de Investigaci&oacute;n de la Acuicultura de    Colombia (CENIACUA), e-mail: <a href="mailto:ceniacua@ceniacua.org">ceniacua@ceniacua.org</a>,    Laboratorio de Punta Canoa, A.A. 2877, Cartagena, Colombia.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  <hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p>Dos grupos de pargos palmeros Lutjanus analis adultos capturados en el medio    natural, cada uno compuesto por tres hembras y cuatro machos, fueron sometidos    durante ocho meses a condiciones de temperatura y fotoperiodo controladas en    el laboratorio para estimular su maduraci&oacute;n sexual, que estaba en estado    de latencia por efectos del confinamiento. El primer grupo se mantuvo bajo un    ciclo artificial con manipulaci&oacute;n de la temperatura y el segundo bajo    un ciclo control donde este par&aacute;metro se dej&oacute; en condiciones naturales.    Para el an&aacute;lisis de los niveles plasm&aacute;ticos de testosterona (T)    y estradi&oacute;l (E2) se tomaron muestras bimensuales de sangre a cada una    de las hembras, recolect&aacute;ndose biopsias ov&aacute;ricas simult&aacute;neamente    para registrar el di&aacute;metro medio de los oocitos. Al cabo de seis meses    se hizo evidente un incremento en el di&aacute;metro medio de los oocitos en    las tres hembras del ciclo artificial, el cual coincidi&oacute; y se correlacion&oacute;    con el aumento de los niveles de T y E2 (r = 0.62 y 0.82, respectivamente).    En las hembras del ciclo control no se observ&oacute; crecimiento de los oocitos.    En los dos ciclos se observ&oacute; que los niveles de T y E2 se relacionaron    con el fotoperiodo (r = 0.84 y r = 0.61), mientras que con la temperatura esta    relaci&oacute;n fue mucho menor, o incluso no significante (r = 0.40 y r = 0.20).    Se presentaron diferencias significativas (P&lt;0.1) entre los factores de condici&oacute;n    (K) de los dos grupos, mientras que entre los niveles de T y E2 no se presentaron    diferencias. El presente trabajo constituye el primer reporte sobre el an&aacute;lisis    de los niveles de esteroides sexuales durante el proceso de maduraci&oacute;n    gonadal en peces de la familia Lutjanidae sometidos a un ciclo artificial de    acondicionamiento.</p>     <p>PALABRAS CLAVE: Pargo palmero, Lutjanus analis, Maduraci&oacute;n sexual, Ciclo artificial de acondicionamiento. </p>  <hr size="1">      <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>Two groups of adult Mutton snapper fish Lutjanus analis    captured in the wild, each one of three females and four males, were kept during    eight months under controlled temperature and photoperiod conditions in the    lab in order to stimulate their sexual maturation which was in a state of latency    because of the effects of confinement. The first group was maintained under    an artificial cycle with temperature manipulation and the second under a control    cycle, in which this parameter was left at natural conditions. Every two months    blood samples from all females were taken for the analysis of plasma testosterone    (T) and oestradiol (E2) levels, taking ovarian biopsies simultaneously to register    the mean diameter of the oocytes. After six months, a significative increase    in the mean diameter of the oocytes of the three females of the artificial cycle    was observed, with coincidence and statistic relationship with the increase    in the T and E2 (r = 0.62 y 0.82 respectively). No oocyte growth was observed    in the females under the control cycle. In both, artificial and control cycles,    T and E2 levels showed a close relationship with photoperiod (r = 0.84 y r =    0.61) while temperature showed a lower or non significant relationship (r =    0.40 y r = 0.20). Statistical differences (P&lt;0.1) were found between the    condition factors of the two groups, while the sexual steroids didn&#8217;t    show any differences between them. The present work constitutes the first report    on the analysis of sexual steroid levels during the gonadal maturation process    in fish of the Family Lutjanidae kept under an artificial conditioning cycle. </p>      <p>KEY WORDS: Mutton snapper; Lutjanus analis; Sexual maturation, Artificial conditioning cycle.</p>  <hr size="1">      <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p>Uno de los principales problemas que se presenta en la reproducci&oacute;n    artificial de peces marinos de aguas tropicales es el de la reabsorci&oacute;n    de sus g&oacute;nadas o estado de latencia reproductiva que se produce por el    estr&eacute;s del cautiverio prolongado en el laboratorio. Este fen&oacute;meno,    descrito en detalle en los trabajos de Campbell et al. (1994), Bromage (1995),    Tucker (1998), Cleary y Pankhurst (2000) y Kubokawa et al. (1999), pr&aacute;cticamente    obliga a obtener los desoves a partir de reproductores silvestres en estado    de madurez, inyectados con hormonas inmediatamente despu&eacute;s de su captura,    antes de que se produzca la reversi&oacute;n gonadal. En circunstancias especiales    donde esta estrategia no es posible, como es el caso de los laboratorios de    la Corporaci&oacute;n Centro de Investigaci&oacute;n de la Acuicultura de Colombia    - CENIACUA, donde por razones de bioseguridad no se pueden introducir reproductores    silvestres sin someterlos antes a una prolongada cuarentena para evitar el contagio    de los reproductores de camar&oacute;n con posibles pat&oacute;genos, se debe    dise&ntilde;ar y poner en pr&aacute;ctica un sistema o ciclo de acondicionamiento    artificial donde se manipule la temperatura y el fotoperiodo en los tanques    de los peces para estimular y reactivar su proceso de maduraci&oacute;n gonadal.    En los trabajos de Lam (1983), Munro (1990) y Sumpter (1990) se explica detalladamente    la importancia de estas variables ambientales sobre la maduraci&oacute;n, regulaci&oacute;n    y sincronizaci&oacute;n de los ciclos reproductivos en los tele&oacute;steos.  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> El comportamiento de los esteroides sexuales durante la gametog&eacute;nesis    y maduraci&oacute;n gonadal y su relaci&oacute;n con las variables medioambientales    ha sido estudiado principalmente en peces de agua dulce, particularmente en    salm&oacute;nidos y cipr&iacute;nidos (Blythe, et al., 1994). Aunque existen    algunas referencias que hacen menci&oacute;n a los esteroides en especies de    aguas subtropicales y templadas, como los trabajos de Carragher y Pankhurst    (1993), Webb et al. (1999) y Bj&ouml;rnsson et al. (1998) para peces de las    familias Sparidae, Ascipenseridae y Pleuronectidae respectivamente, son muy    escasos, por no decir inexistentes este tipo de estudios en peces marinos de    aguas tropicales. El presente trabajo constituye el primer reporte, hasta donde    se tiene noticia, del an&aacute;lisis y seguimiento de los esteroides sexuales    durante el proceso de maduraci&oacute;n gonadal en peces de la familia Lutjanidae    (pargo palmero = Lutjanus analis), sometidos a un termoperiodo artificial de    acondicionamiento. </p>     <p> Esta investigaci&oacute;n se desarroll&oacute; con el objetivo de reestablecer    el proceso de maduraci&oacute;n gonadal de los reproductores cuarentenados,    mediante la aplicaci&oacute;n de un ciclo de acondicionamiento artificial, capaz    de revertir el estado de latencia gonadal manipulando la temperatura y el fotoperiodo.    Las actividades de la investigaci&oacute;n se desarrollaron entre septiembre    de 2002 a mayo 2003 en los laboratorios de la Corporaci&oacute;n Centro de Investigaci&oacute;n    de la Acuicultura de Colombia (CENIACUA), ubicados en el corregimiento de Punta    Canoa (Bol&iacute;var, Caribe colombiano) y estuvieron enmarcadas dentro del    Programa de Diversificaci&oacute;n de la Corporaci&oacute;n, cuyo objetivo es    el de desarrollar tecnolog&iacute;as que permitan a mediano plazo la diversificaci&oacute;n    del sector camaricultor colombiano. </p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>METODOLOG&Iacute;A</b></font></p>     <p><b>Captura y mantenimiento de los reproductores:</b></p>     <p> El grupo de peces de la investigaci&oacute;n estuvo conformado por 14 reproductores    cuyo peso y longitud total oscilaba entre 1.953 - 2.737 gr y 45 - 52 cm respectivamente,    los cuales fueron capturados en el Bajo de Canceco y en las Islas del Rosario    (Caribe colombiano) mediante el uso de l&iacute;neas de mano con anzuelo y palangre.    Con los peces se conformaron dos grupos experimentales, cada uno con tres hembras    y cuatro machos, los cuales fueron mantenidos en dos tanques circulares de fibra    de vidrio de 10 T c/u bajo techo dentro del laboratorio. Durante el estudio    los peces fueron alimentados a saciedad, d&iacute;a de por medio, con alimento    congelado compuesto por calamar, pescado y camar&oacute;n. Una vez a la semana    se les proporcion&oacute; un alimento concentrado elaborado en el laboratorio    con 40% de prote&iacute;na, 16% de grasa y 11% de humedad, enriquecido con una    premezcla de vitaminas, minerales y pigmentos proporcionada por Laboratorios    ROCHE &reg;. </p>     <p><b>Ciclos de acondicionamiento:</b></p>     <p> El primer grupo de hembras (N = 3) se mantuvo durante ocho meses bajo un ciclo    artificial de termoperiodo cuya caracter&iacute;stica particular fue la manipulaci&oacute;n    de la temperatura mediante un enfriador o &#8220;chiller&#8221; de 120.000 BTU.    El dise&ntilde;o de este ciclo se hizo con base en una modificaci&oacute;n y    adaptaci&oacute;n a condiciones tropicales del modelo de Arnold et al. (1978),    teniendo en cuanta las temperaturas superficiales reportadas por Sandoval (1999)    para la zona de Santa Marta, Caribe colombiano. El segundo grupo, con igual    n&uacute;mero de hembras, se mantuvo durante el mismo periodo bajo un ciclo    control donde no se manipul&oacute; la temperatura, dej&aacute;ndola libremente    bajo las condiciones reinantes en la zona de Punta Canoa (<a href="#tab1">Tabla    1</a>). </p>          <p>    <center><a name="tab1"><img src="img/revistas/mar/v34n1/v34n1a12tab1.gif"></a></center></p>        ]]></body>
<body><![CDATA[<p> La temperatura fue monitoreada a ma&ntilde;ana y tarde utilizando un equipo    digital HANNA HI9143 con una precisi&oacute;n de 0.1 &deg;C. Para la simulaci&oacute;n    del fotoperiodo, el cual fue igual para los dos grupos, se utilizaron dos l&aacute;mparas    fluorescentes de 20 W colocadas a 50 cm sobre la superficie de los tanques de    los peces. El r&eacute;gimen lum&iacute;nico que se aplic&oacute; correspondi&oacute;    a las condiciones naturales locales. </p>     <p> Los reproductores del ciclo artificial se mantuvieron en un sistema 95 % en    recirculaci&oacute;n, equipado con un desnatador superficial, una bater&iacute;a    de filtros de cartucho de 20, 5 y 1 &micro;m y dos biofiltros de 2 T de capacidad,    mientras que los reproductores del grupo control se mantuvieron en un sistema    100% en flujo directo, equipado con un desnatador superficial y una bater&iacute;a    de filtros igual al descrito anteriormente, pero sin biofiltraci&oacute;n. La    aireaci&oacute;n se suministr&oacute; constantemente a los dos sistemas por    medio de un blower de 2 HP. El ox&iacute;geno, pH, amonio total (TAN) y nitritos    fueron medidos peri&oacute;dicamente por m&eacute;todos convencionales. Las    concentraciones de estos par&aacute;metros se mantuvieron durante todo el experimento    dentro de los rangos aceptables para el mantenimiento de peces marinos (Tucker,    1998).</p>     <p><b>Toma y an&aacute;lisis de muestras:</b></p>     <p> Las muestras de sangre se tomaron mediante punci&oacute;n en el seno caudal,    utilizando jeringas de 3 ml sin heparinizar, con agujas hipod&eacute;rmicas    de 1 &frac12;&#8221; 22G. De la totalidad de las hembras se tomaron bimensualmente    muestras de 2 ml aproximadamente, las cuales fueron refrigeradas durante 3 hr    aproximadamente hasta el momento de su centrifugaci&oacute;n a 3.500 rpm durante    10 min en el laboratorio. Posteriormente el plasma sangu&iacute;neo fue almacenado    a &#8211;20 &deg;C durante 24 hr hasta su an&aacute;lisis, de acuerdo con lo    sugerido por Pankhurst (1994). Los niveles de los esteroides sexuales estradi&oacute;l    (E<sub>2</sub>) y testosterona (T) fueron determinados por el m&eacute;todo    de Fluoroinmunoensayo a tiempo de resoluci&oacute;n, siguiendo el protocolo    DELFIA<sup>&reg;</sup> 1244-056 y A050-101 respectivamente. </p>     <p> Las muestras o biopsias ov&aacute;ricas de las hembras fueron tomadas simult&aacute;neamente    con las de sangre mediante la introducci&oacute;n de una c&aacute;nula de 1.5    mm de di&aacute;metro externo por el oviducto, realizando una suave succi&oacute;n.    Una vez recolectados, los oocitos fueron fijados en formalina bufferada al 10%    en agua de mar filtrada de acuerdo con lo descrito por Watanabe et al. (1998)    y observados al estereoscopio. En cada ocasi&oacute;n se midieron por lo menos    50 oocitos mediante un micr&oacute;metro ocular de 30 &micro;m de precisi&oacute;n.  </p>     <p> El factor de condici&oacute;n (K), es un &iacute;ndice basado en la relaci&oacute;n    talla&#8211;peso del individuo y explica fundamentalmente el estado de bienestar    en que se encuentra el animal durante su vida. Si bien este factor no est&aacute;    dise&ntilde;ado para evaluar ciclos de acondicionamiento, s&iacute; nos da una    se&ntilde;al de la adaptabilidad de los peces al medio de confinamiento en t&eacute;rminos    cuantitativos, lo que nos permite determinar el efecto de cada uno de los ciclos    sobre el bienestar de los peces (Rodr&iacute;guez, 1992).</p>     <p> K = (W / L&sup3;)*100</p>     <p> Donde, K es el factor de condici&oacute;n, W el peso total en gramos y L la    longitud total del pez en cm. </p>     <p>Para comparar el efecto de los ciclos de acondicionamiento en t&eacute;rminos    de K, T y E<font size="1"><sub>2</sub></font>, se realizaron pruebas de hip&oacute;tesis    para la diferencia entre las medias de dos poblaciones con varianza desconocida,    donde la hip&oacute;tesis nula correspondi&oacute; a H<font size="1"><sub>o</sub></font>:    &micro;<font size="1"><sub>1</sub></font> - &micro;<font size="1"><sub>2</sub></font>    <u>&lt</u> 0, y la hip&oacute;tesis alternativa a H<font size="1"><sub>a</sub></font>:    &micro;<font size="1"><sub>1</sub></font> - &micro;<font size="1"><sub>2</sub></font>    &gt; 0.</p>     <p> Todas las estimaciones estad&iacute;sticas pertinentes se realizaron por medio    del paquete STRAGRAPHIC PLUS<sup>&reg;</sup> para Windows 2000. Primero se evalu&oacute;    la normalidad de las variables mediante el test de Kolmogorov-Smirnov y la homogeneidad    de las varianzas por medio de un chequeo de varianza (Variante check), condiciones    fundamentales para realizar las pruebas de regresi&oacute;n lineal. El modelo    de regresi&oacute;n lineal simple utilizado en esta investigaci&oacute;n est&aacute;    representado por la siguiente ecuaci&oacute;n:</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> y = a + &szlig;x</p>     <p> Donde y es un valor representativo de una de las subpoblaciones de Y, y &alpha;    , &szlig; se les conoce como los coeficientes de regresi&oacute;n de la poblaci&oacute;n    y geom&eacute;tricamente representan la ordenada al origen y la pendiente de    la recta, respectivamente (Daniel, 2002). </p>     <p> Para estimar la tendencia de los niveles de esteroides sexuales en las muestras    plasm&aacute;ticas se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de estad&iacute;stica    descriptiva, pues el bajo valor de n de la muestra no permiti&oacute; hacer    un an&aacute;lisis m&aacute;s exhaustivo. </p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>RESULTADOS</b></font></p>     <p>Al inicio de los ciclos artificial y control todas las hembras presentaron    un estado de madurez gonadal grado I y II (&Oslash;=50 &plusmn; 14 &micro;m),    seg&uacute;n la escala de Gonz&aacute;lez y Lugo (1997) (<a href="#fig1">Figura    1</a>). Este estado se mantuvo en los dos grupos alrededor de seis meses, al    cabo de los cuales se detect&oacute; por primera vez en el mes de mayo un incremento    en el di&aacute;metro medio de los oocitos de las tres hembras del ciclo artificial,    con valores de 122&plusmn;76, 86&plusmn;40 y 122&plusmn;87 &micro;m (<a href="#fig1">Figura    1</a>). Dicho incremento coincidi&oacute; y se correlacion&oacute; con la temperatura    y el fotoperiodo (r = 0.55, P=0.007 y r = 0.61, P=0.005, respectivamente) y    con el incremento de las concentraciones plasm&aacute;ticas de T y E<sub>2</sub>    (r = 0.62 P=0.049 y r = 0.82 P=0.009, respectivamente). Por su parte las hembras    del ciclo control no experimentaron evoluci&oacute;n alguna en el crecimiento    de sus oocitos y su correlaci&oacute;n con las variables ambientales temperatura    y fotoperiodo (r = 0,00, P=0.93 y r = 0.34, P=0.28 respectivamente), no fue    estad&iacute;sticamente significativa. El mismo comportamiento (correlaciones    d&eacute;biles, no significativas estad&iacute;sticamente), se observ&oacute;    con los esteroides sexuales T y E<sub>2</sub>, los cuales presentaron correlaciones    (r) con el di&aacute;metro de los oocitos de 0.28 y 0.28 (P=0.36 y P=0.37 respectivamente).  </p>        <p>    <center><a name="fig1"><img src="img/revistas/mar/v34n1/v34n1a12fig1.gif"></a></center></p>        <p> Durante los primeros seis meses las hembras del ciclo artificial no experimentaron    cambios en los niveles plasm&aacute;ticos de esteroides sexuales. Solo hacia    el final del ciclo, en el mes de mayo, se evidenci&oacute; un incremento en    las concentraciones de T y E2, las cuales coincidieron con el aumento del fotoperiodo    y la temperatura en el ciclo de acondicionamiento (<a href="#fig2">Figura 2</a>).    La variable ambiental que present&oacute; mayor relaci&oacute;n con la T y el    E<sub>2</sub> fue el fotoperiodo, el cual presento un coeficiente de correlaci&oacute;n    de 0.76 y 0.61 (P=0.004 y P=0.031, respectivamente), mientras que con la temperatura    la correlaci&oacute;n fue no significativa: no hay correlaci&oacute;n (r = 0.43,    P=0.051 y r = 0.26, P=0.39, respectivamente). </p>            <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="fig2"><img src="img/revistas/mar/v34n1/v34n1a12fig2.gif"></a></center></p> 	     <p> La variaci&oacute;n de los niveles de esteroides sexuales en el plasma sangu&iacute;neo    de los peces del ciclo control fue similar a la presentada por los peces del    ciclo artificial, en donde las bajas concentraciones de T y E<sub>2</sub> fueron    la constante durante los primeros meses del termoperiodo (<a href="#fig2">Figura    2</a>). Posteriormente se observ&oacute; un incremento de los niveles de los    esteroides en el mes de mayo, los cuales, como se mencion&oacute; anteriormente,    no incidieron en la maduraci&oacute;n y/o evoluci&oacute;n de los oocitos. Sin    embargo, este incremento en los esteroides sexuales T y E<sub>2</sub> coincidi&oacute;    y se correlacion&oacute; con el fotoperiodo (r = 0.84, P=0.002 y r = 0.61, P=0.034    respectivamente), pero no con la temperatura (r = 0.40 P=0.053 y r = 0.20, P=0.52    respectivamente).</p>     <p> El factor de condici&oacute;n en los peces del ciclo artificial aument&oacute;    durante todo el periodo experimental, mientras que los peces del control permanecieron    pr&aacute;cticamente constantes (<a href="#fig3">Figura 3</a>). En las pruebas    de hip&oacute;tesis, se observ&oacute; que el t calculado cay&oacute; en la    zona de rechazo de la hip&oacute;tesis nula (H<sub>o</sub>), es decir que las    dos medias poblacionales son estad&iacute;sticamente diferentes (P&lt;0.1) y    que el K de los peces del ciclo artificial es mayor que el K de los peces del    ciclo control. Sin embargo, en las pruebas de hip&oacute;tesis comparando los    esteroides T y E<sub>2</sub> no se presentaron diferencias significativas entre    las medias de los dos grupos. </p>              <p>    <center><a name="fig3"><img src="img/revistas/mar/v34n1/v34n1a12fig3.jpg"></a></center></p> 	       <p>&nbsp;</p>     <p><b><font size="3">DISCUSI&Oacute;N</font></b></p>     <p>En el presente estudio se pudo observar, que el ciclo artificial produjo un    efecto positivo sobre el bienestar de los pargos palmeros (Lutjanus analis),    cautivos, lo cual, posiblemente favoreci&oacute; su K y la maduraci&oacute;n    gonadal de los reproductores con respecto a sus semejantes del ciclo control,    que permanecieron inmaduros a trav&eacute;s de todo el periodo experimental.    El incremento del K en los peces del ciclo artificial se puede atribuir a una    preparaci&oacute;n fisiol&oacute;gica para la &eacute;poca reproductiva, como    lo explica Oasim (1957, en Rangarajan, 1971), cuando sugiere que las variaciones    del K en Blennius pholis son debidas al consumo o construcci&oacute;n de las    reservas para su maduraci&oacute;n gonadal. De acuerdo con este principio, el    objetivo de los primeros seis meses del ciclo artificial es el de preparar a    los peces para el recrudecimiento gonadal, acumulando reservas energ&eacute;ticas    en su cavidad abdominal. De acuerdo con Lam (1983), cuando la temperatura y    el fotoperiodo presentan una tendencia a la baja, los peces entran en un estado    de &#8220;latencia&#8221; gonadal con el fin de prepararse fisiol&oacute;gicamente    para la maduraci&oacute;n. Es por esta raz&oacute;n que las hembras no experimentaron    ninguna evoluci&oacute;n en su madurez gonadal durante esta primera fase y el    K no vari&oacute; considerablemente en los primeros tres meses. Este mismo comportamiento    se vio reflejado en los niveles de T y E<sub>2</sub> en el plasma sangu&iacute;neo,    los cuales no sufrieron cambios significativos durante este periodo. </p>     <p> Los dos &uacute;ltimos meses del ciclo artificial ten&iacute;an como objetivo    estimular la producci&oacute;n de esteroides sexuales para el crecimiento de    los oocitos, ajustando la temperatura y el fotoperiodo a niveles elevados. Durante    este proceso se observ&oacute; por primera vez un incremento en el di&aacute;metro    medio de los oocitos, el cual se relacion&oacute; con los niveles de T y sobre    todo con los de E<sub>2</sub> en el plasma sangu&iacute;neo de los peces del    ciclo artificial. De acuerdo con Kime et al. (1999), este incremento se debe    principalmente al aumento de los niveles de E2 en el plasma sangu&iacute;neo,    pues este promueve en el h&iacute;gado la producci&oacute;n de vitelogenina,    prote&iacute;na fundamental para el crecimiento y desarrollo de los oocitos.    Blythe et al. (1994) tambi&eacute;n encontr&oacute; en Morone saxatilis un incremento    de los niveles de estradi&oacute;l en el plasma sangu&iacute;neo previo al crecimiento    de los oocitos en hembras sometidas a tres fototermoperiodos de acondicionamiento.    Sin embargo, en nuestro caso las hembras del ciclo control no experimentaron    ninguna evoluci&oacute;n en su madurez gonadal, aun habiendo presentado niveles    de T y E<sub>2</sub> similares a los del ciclo artificial. Vale la pena tener    en cuenta lo descrito por Webb et al. (1999), para hembras de Acipenser transmontanus,    donde este fen&oacute;meno puede explicarse cuando se presentan temperaturas    por encima del rango &oacute;ptimo, las cuales causan una atresia folicular    y afectan la vitelog&eacute;nesis, disminuyendo la respuesta a est&iacute;mulos    hormonales externos. Por su parte Pankhurst y Thomas (1998), expresan que temperaturas    elevadas pueden generar en Oncorhynchus mykiss una incapacidad del fol&iacute;culo    para sintetizar la 17, 20&szlig;P y causar una demora en la maduraci&oacute;n    gonadal. </p>     <p> Durante el experimento la temperatura del ciclo control oscil&oacute; entre    25.7 y 28.5 &deg;C, reportadas como aptas para el desove de algunos lutjanidos    y de esta especie (Vernon et al.1983; Emata et al. 1994; Watanabe et al. 1998).    De acuerdo con lo reportado por Watanabe et al. (1998) y Turano et al. (2000),    el aumento en la temperatura es una de las condiciones principales con las que    se puede asociar la maduraci&oacute;n y el desove de algunos Lutj&aacute;nidos.    Sin embargo, cuando se mantiene una temperatura elevada por un periodo prolongado    de tiempo, como se present&oacute; en el ciclo control, se pueden presentar    inconvenientes en la maduraci&oacute;n de los peces (Pankhurst y Thomas, 1998).  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Como se observ&oacute; en los resultados, la influencia de las variables ambientales    (temperatura y fotoperiodo) sobre la esteroidog&eacute;nesis hace evidente la    estrecha relaci&oacute;n del medio ambiente con los procesos reproductivos del    pargo palmero (Casta&ntilde;o, 2003). Seg&uacute;n Munro (1990) y Sumpter (1990),    los factores ex&oacute;genos como la temperatura y el fotoperiodo, entre otros,    juegan un papel muy importante en la cascada endocrina de los tele&oacute;steos    ya que son los que regulan la estacionalidad de los ciclos reproductivos en    los peces. Durante esta investigaci&oacute;n se observ&oacute; que el fotoperiodo    se relacion&oacute; en una mayor proporci&oacute;n que la temperatura, con los    niveles de esteroides sexuales, hecho que se vio reflejado en las correlaciones    obtenidas en los resultados. Webb et al. (1999) observ&oacute; en Acipenser    transmontanus este mismo comportamiento en hembras expuestas a tres diferentes    tratamientos de temperatura, concluyendo que la estacionalidad del fotoperiodo    se sobrepon&iacute;a a la estacionalidad t&eacute;rmica. Los mismos autores    sin embargo, no descartan la importancia de este &uacute;ltimo factor, pues    la temperatura es la encargada del desarrollo normal de la g&oacute;nada y valores    por encima de los rangos &oacute;ptimos de desove pueden ocasionar una incapacidad    de alcanzar la maduraci&oacute;n gonadal, como sucedi&oacute; en las hembras    del ciclo control. Al observar este comportamiento podemos inferir que la temperatura    aplicada al ciclo control no se encontr&oacute; en los rangos &oacute;ptimos    para el desarrollo y maduraci&oacute;n de los oocitos de la especie y que la    carencia de variaciones en su magnitud pudo afectar alg&uacute;n proceso reproductivo    de los peces all&iacute; confinados, mientras que la temperatura y las variaciones    aplicadas al ciclo artificial favorecieron de alguna manera dicho proceso. </p>     <p> Si bien en esta investigaci&oacute;n no existen los elementos suficientes    para determinar en qu&eacute; punto de la cascada endocrina ocurri&oacute; la    anomal&iacute;a que gener&oacute; la incapacidad de crecimiento de los oocitos    de las hembras control, s&iacute; podemos afirmar en forma emp&iacute;rica que    la exposici&oacute;n a periodos prolongados de temperaturas elevadas puede generar    para esta especie un efecto negativo en la maduraci&oacute;n de los oocitos,    evitando o retardando el proceso vitelog&eacute;nico. </p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p>La presente investigaci&oacute;n cont&oacute; con la ayuda profesional y oportuna    de las Doctoras Myrna de Mora, Myrna Patricia Mora y Myriam Rojas en el procesamiento    y an&aacute;lisis de las muestras sangu&iacute;neas. Se agradece la colaboraci&oacute;n    desinteresada de los se&ntilde;ores Ernesto G&oacute;mez y &#8220;Chiqui&#8221;    de la Empresa Pargos del Caribe, as&iacute; como de la tripulaci&oacute;n del    barco &#8220;Don Ram&oacute;n&#8221; (Capit&aacute;n Ostin, John, Germ&aacute;n,    Paul, Chino, Jairo, Tayson, Maldonado, Javier, Reyna, Winston, y Nikita), quienes    con sus equipos, esfuerzo y experiencia hicieron posible la captura de los reproductores.    Se cont&oacute; tambi&eacute;n con la colaboraci&oacute;n de investigadores    y estudiantes de la Corporaci&oacute;n Universitaria de Ciencias Aplicadas y    Ambientales (UDCA), as&iacute; como del personal cient&iacute;fico y administrativo    de la Corporaci&oacute;n Centro de Investigaci&oacute;n de la Acuicultura de    Colombia (CENIACUA). Se agradece a la Doctora Marcela Salazar Vallejo por la    revisi&oacute;n del manuscrito. La financiaci&oacute;n del trabajo fue otorgada    por el Instituto Colombiano de Investigaciones Cient&iacute;ficas Francisco    Jos&eacute; de Caldas (COLCIENCIAS) y por la UDCA. </p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></font></p>     <!-- ref --><p>1. Arnold, C.R., J.M. Wakeman, T.D. Williams y G.D.Treece. 1978. Spawning of    red snapper (Lutjanus campechanus) in captivity. Aquaculture 15: 301-302.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0122-9761200500010001200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 2. Blythe, W.G., I.A. Helfrich y .V. Sullivan. 1994. Sex steroid hormone and    vitellogenin levels in striped bass (Morone saxatilis) maturing under 6, 9 and    12 month photothermal cycles. Gen. Comp. Endocrinol. 94: 122-134.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0122-9761200500010001200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 3. Bj&ouml;rnsson, B.T., O. Halld&oacute;rsson, C. Haux, B. Norgerg y C. Brown.    1998. Photoperiod control of sexual maturation of the Atlantic halibut (Hippoglossus    hippoglossus) plasma tyroid hormone and calcium levels. Aquaculture 166: 117&#8211;140.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0122-9761200500010001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 4. Bromage, N.R. 1995. Broodstock management and seed quality &#8211; general    considerations, 1-24. En: Bromage, N.R. y R.J. Robert (Eds.). Broodstock management    and egg and larval quality. Blackwell, Oxford, 424 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0122-9761200500010001200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 5. Campbell, P.M., T.G. Pottinger y J.P.Sumpter. 1994. Preliminary evidence    that chronic confinement stress reduces the quality of gametes produced by brown    and rainbow trout. Aquaculture 120: 151-169.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0122-9761200500010001200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 6. Carragher, J.F. y N.W. Pankhurst. 1993. Plasma levels of sex steroids during    sexual maturation of snapper, Pagrus auratus (Sparidae), caught from the wild.    Aquaculture 109: 375&#8211;388&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0122-9761200500010001200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 7. Casta&ntilde;o, F. 2003. Seguimiento y evaluaci&oacute;n de la madurez    gonadal de reproductores cautivos de pargo palmero Lutjanus analis (C&uuml;vier,    1828) mediante la medici&oacute;n de calcio y esteroides sexuales en el plasma    sangu&iacute;neo durante dos fototermoperiodos de acondicionamiento. Tesis de    grado, Facultad de Biolog&iacute;a Marina, UJTL, Santa Marta, 87 p. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0122-9761200500010001200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 8. Cleary, J.J. y N.W. Pankhurst. 2000. The effect of capture and handling    stress on plasma steroid levels and gonadal condition in wild and farmer snapper    Pagrus auratus (Sparidae). J. Word Aquac. Soc. 31(4): 558-569.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0122-9761200500010001200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 9. Daniel, W.W. 2002. Bioestad&iacute;stica: Base para el an&aacute;lisis    de las ciencias de la salud. Limusa Wiley. Cuarta edici&oacute;n. M&eacute;xico    755 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0122-9761200500010001200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 10. Emata, A.C., B. Eullaran y T.U. Bagarinao. 1994. Induced spawing and early    life description of the mangrove red snapper, Lutjanus argentimaculatus. Aquaculture    121: 381-387.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0122-9761200500010001200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 11. G&oacute;nzalez, L.W. y T. Lugo. 1997. Ovog&eacute;nesis de Lutjanus purpureus    (Poey 1867, Pises: Lutjanidae) de la regi&oacute;n oriental de Venezuela. Bol.    Inv. Mar. Cost. 26: 53&#8211;60.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0122-9761200500010001200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 12. Kime, D.E., J.P. Nash y A.P. Scout. 1999. Vitellogenesis as a biomarker    of reproductive disruption by xenobiotics. Aquaculture 177: 345&#8211;352.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0122-9761200500010001200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 13. Kubokawa, K., T. Watanabe, M. Yoshioka y M. Iwata. 1999. Effects of acute    stress on plasma cortisol, sex steroid hormone and glucose levels in male and    female sockeye salmon during breeding season. Aquaculture 172: 335-349.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0122-9761200500010001200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 14. Lam, T.J. 1983. Environmental influences on gonadal activity in fish,    65-116. En: Hoar, W.S., D.J Randall y E.M. Donalson (Eds). Fish Physiology.     Vol 9, Reproduction, Parte B, Behavior and Fertility Control. Academic Press,    New York, 477 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0122-9761200500010001200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 15. Munro, A.D. 1990. Reproductive Seasonality in Teleosts: Environmental    Influences, 1-11. En: Munro, A.., A. Scott y T.J. Lam (Eds.). Editorial CRC,    Florida. 241 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0122-9761200500010001200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 16. Pankhurst, N.W. 1994. Effect of gonadotropin releasing hormone analogue,    human chorionic gonadotropin and gonadal steroid on milt volume in the New Zealand    snapper, Pagrus auratus (Sparidae). Aquaculture 125: 185&#8211;197.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0122-9761200500010001200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 17. Pankhurst, N.W. y P.M. Thomas. 1998. Maintenance at elevated temperature    delays the steroidogenic and ovulatory responsiveness of the rainbow trout Oncorhynchus    mykiss to luteinizing hormone realesing hormone analog. Aquaculture 166: 163-177.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0122-9761200500010001200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 18. Rangarajan, K. 1971. Maturity and spawing of the snapper Lutjanus kasimira    from the andaman sea. Indian Journal Fish, 18(1-2): 114-125.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0122-9761200500010001200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 19. Rodr&iacute;guez, M. 1992. T&eacute;cnicas de evaluaci&oacute;n cuantitativa    de la madurez gon&aacute;dica en peces. AGT editor. M&eacute;xico. 3-51 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0122-9761200500010001200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 20. Sandoval, N. 1999. An&aacute;lisis reproductivo y de fecundidad de dos    especies demersales Lutjanus synagris y Lutjanus analis en el Golfo de Salamanca,    Caribe colombiano. Trabajo de grado presentado a la Facultad de Ingenier&iacute;a    de la Universidad del Magdalena para optar al t&iacute;tulo de Ingeniero Pesquero.    Santa Marta. 89 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0122-9761200500010001200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 21. Sumpter, J.P. 1990. Reproductive Seasonality in Teleosts: Environmental    Influences, 13-31. En: Munro, A., A. Scott y T.J. Lam (Eds.). Editorial CRC,    Florida. 241p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0122-9761200500010001200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 22. Tucker, J.W. Jr. 1998. Marine Fish Culture. Kluwer Academic Publishers,    London, 750 p. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0122-9761200500010001200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 23. Turano, M.A.J., D.A. Davis y C.R. Arnold. 2000. Observations and techniques    for maturation, spawning, and larval rearing of the yellowtail Ocyurus chrysurus.    J. World Aquac. Soc. 31(1): 59-68.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0122-9761200500010001200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 24. Vernon-Minton, R., J.P. Hawke y V.M. Tatum. 1983. Hormone induced spawing    of red snapper Lutjanus campechanus. Aquaculture 30: 363-368.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0122-9761200500010001200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 25. Watanabe, W.O., E.P. Ellis, S.C. Ellis, J. Chaves, C. Manfredi, R.W. Hagood,    M. Sparsis y S. Arneson. 1998. Artificial propagation of Mutton Snapper Lutjanus    analis, a new candidate marine fish for aquaculture. J. World Aquac. Soc. 29:    176&#8211;187.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0122-9761200500010001200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 26. Webb, M.A.H., J.P. Van Eenennaam, S. Doroshov y G.P. Moberg. 1999. Preliminary    observations on the effects of holding temperature on reproductive performance    of female white sturgeon, Acipenser transmontanus. Aquaculture 176: 315&#8211;329.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0122-9761200500010001200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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