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<publisher-name><![CDATA[INSTITUTO DE INVESTIGACIONES MARINAS Y COSTERAS "JOSE BENITO VIVES DE ANDRÉIS" (INVEMAR)    INSTITUTO DE INVESTIGACIONES MARINAS Y COSTERAS -JOSE BENITO VIVES DE ANDRÉIS- (INVEMAR)]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[CRECIMIENTO Y SUPERVIVENCIA DE LARVAS DE ARGOPECTEN NUCLEUS ALIMENTADAS CON DIFERENTES DIETAS MICROALGALES*]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The influence of the diet on larval growth of the scallops Argopecten nucleus was studied, testing six microalgae diets composed by single-algae and mixed diets of the species Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans y Tetraselmis suecica, handling a concentration per mL equivalent to 40000 cells of I. galbana and the response through the variables surviving, growth, appearance of the eye spot and state of condition (full, half-full and empty larvae) was measured. The diets containing I. galbana showed greater results over all the measured variables, with regard to those where it was not present. In particular, the mixed diet I. galbana + C. calcitrans presented superiority over all variables, although in the most cases was statistically similar to I. galbana + C. calcitrans + T. suecica, I. galbana + T. suecica and I. galbana alone. For the opposite, the diets with the lowest results were C. calcitrans and C. calcitrans + T. suecica. The results obtained are principally attributed to the nutritional composition mainly of high unsaturated fatty acids (HUFA) of each microalgae and each mixture supply, which is discussed in detail.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">          <p align="center"><font size="4"><b>CRECIMIENTO Y SUPERVIVENCIA DE LARVAS DE <i>ARGOPECTEN NUCLEUS</i> ALIMENTADAS CON DIFERENTES DIETAS MICROALGALES<a href="#*">*</a></b></font></p>          <p align="center"><font size="3"><b>GROWTH AND SURVIVAL LARVAE OF <i>ARGOPECTEN NUCLEUS</i> FED WITH DIFFERENT MICROALGAE DIETS</b></font></p>        <p>&nbsp;</p>          <p><b>Yenia Katerine Carre&ntilde;o Hern&aacute;ndez, Ernesto Acosta Ortiz y Javier G&oacute;mez-Le&oacute;n</b></p>          <p><i>Instituto de Investigaciones Marinas y Costeras-INVEMAR, Cerro Punta de Bet&iacute;n, Santa Marta, Colombia. <a href="mailto:katerine_carreno@invemar.org.co">katerine_carreno@invemar.org.co</a>, <a href="mailto:yo_kate84@yahoo.es">yo_kate84@yahoo.es</a> (YKCH); <a href="mailto:e_acosta@invemar.org. co">e_acosta@invemar.org. co</a> (E.A.O.); <a href="mailto:jgomezleon@invemar.org.co">jgomezleon@invemar.org.co</a> (JGL).</i></p> <hr size="1" />          <p>&nbsp;</p>          <p><b>RESUMEN</b></p>          <p>Se estudi&oacute; la influencia que ejerce la dieta sobre el desarrollo larvario del pect&iacute;nido <i>Argopecten nucleus</i>, probando seis dietas microalgales compuestas por dietas monoalgales y mezcla de las especies   <i>Isochrysis galbana</i>, <i>Chaetoceros calcitrans</i> y <i>Tetraselmis suecica</i> en relaci&oacute;n 1:1, manejando una   concentraci&oacute;n por mL equivalente al peso de 40000 c&eacute;lulas de <i>I. galbana</i>, midiendo la respuesta a trav&eacute;s   de las variables supervivencia, crecimiento, aparici&oacute;n de la mancha ocular y estado de condici&oacute;n (larvas   llenas, semillenas y vac&iacute;as). Las dietas que conten&iacute;an <i>I. galbana</i> presentaron los mayores valores en cada   una de las variables medidas, en comparaci&oacute;n con aquellas que carec&iacute;an de esta. Particularmente, la dieta   mixta <i>I. galbana</i> + <i>C. calcitrans</i> present&oacute; superioridad en todas las variables, aunque en la mayor&iacute;a de   los casos fue estad&iacute;sticamente similar a <i>I. galbana</i> + <i>C. calcitrans</i> + <i>T. suecica</i>, <i>I. galbana</i> + <i>T. suecica</i>   e <i>I. galbana</i> sola. Por el contrario, las dietas que arrojaron los resultados m&aacute;s bajos fueron <i>C. calcitrans</i>   y <i>C. calcitrans</i> + <i>T. suecica</i>. Los resultados obtenidos se atribuyen principalmente a la composici&oacute;n   nutricional, especialmente de &aacute;cidos grasos altamente insaturados (HUFA por sus siglas en ingl&eacute;s) de cada microalga y de cada mezcla suministrada, la cual se discute detalladamente.</p>          <p><i>PALABRAS CLAVE</i>: <i>Argopecten nucleus</i>, Larvas, Microalgas, <i>Isochrysis galbana</i>, HUFA.</p>  <hr size="1" />          ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>          <p><b>ABSTRACT</b></p>          <p>The influence of the diet on larval growth of the scallops <i>Argopecten nucleus</i> was studied, testing   six microalgae diets composed by single-algae and mixed diets of the species <i>Isochrysis galbana</i>,   <i>Chaetoceros calcitrans</i> y <i>Tetraselmis suecica</i>, handling a concentration per mL equivalent to 40000 cells   of <i>I. galbana</i> and the response through the variables surviving, growth, appearance of the eye spot and   state of condition (full, half-full and empty larvae) was measured. The diets containing <i>I. galbana</i> showed   greater results over all the measured variables, with regard to those where it was not present. In particular,   the mixed diet <i>I. galbana</i> + <i>C. calcitrans</i> presented superiority over all variables, although in the most   cases was statistically similar to <i>I. galbana</i> + <i>C. calcitrans</i> + <i>T. suecica</i>, <i>I. galbana</i> + <i>T. suecica</i> and <i>I. galbana</i> alone. For the opposite, the diets with the lowest results were <i>C. calcitrans</i> and <i>C. calcitrans</i> +   <i>T. suecica</i>. The results obtained are principally attributed to the nutritional composition mainly of high unsaturated fatty acids (HUFA) of each microalgae and each mixture supply, which is discussed in detail.</p>          <p><i>KEY WORDS</i>: <i>Argopecten nucleus</i>, Larvae, Microalgae, <i>Isochrysis galbana</i>, HUFA.</p>  <hr size="1" />          <p>&nbsp;</p>          <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>          <p><i>Argopecten nucleus</i> es un pect&iacute;nido filtrador epibent&oacute;nico que se encuentra   desde 10 hasta 50 m de profundidad y habita los fondos rocosos del mar Caribe; es   una especie libre, alcanza una talla de 5 cm y tiene una vida corta de aproximadamente   dos a&ntilde;os (D&iacute;az y Puyana, 1994). Ha sido identificado como uno de los pect&iacute;nidos   nativos con potencial para el cultivo por su r&aacute;pido crecimiento, alto contenido de   carne, bajos costos de producci&oacute;n en su cultivo intermedio y final, buen precio en el   mercado internacional de especies similares y por ser una valiosa fuente de alimento   (Urban, 1999; Valero <i>et al</i>., 2000). Dado que su disponibilidad de semilla en el   medio natural es baja, variable y poco predecible (Castellanos y Campos, 2007), la   producci&oacute;n de esta en laboratorio se convertir&iacute;a en la alternativa m&aacute;s eficiente para   suplir su demanda en un cultivo a gran escala. A pesar de que en Colombia se ha   logrado la producci&oacute;n de semilla en laboratorio de manera experimental (Velasco <i>et al</i>., 2007; Velasco y Barros, 2008), a&uacute;n es necesario continuar investigando aspectos   como el alimento y el tipo de dieta, sobre todo en la etapa larvaria, siendo estos unos   de los factores m&aacute;s limitantes para el crecimiento y la supervivencia de larvas de   moluscos pect&iacute;nidos (Uriarte y Far&iacute;as, 1999) y, de esta manera, lograr maximizar los   vol&uacute;menes de producci&oacute;n obtenidos hasta ahora, al reducir las tasas de mortalidad   en el cultivo larvario y, por ende, aumentar la posibilidad de obtener mayor n&uacute;mero de semillas por ciclo de producci&oacute;n.</p>     <p>Las microalgas planct&oacute;nicas son el alimento m&aacute;s importante para los   pect&iacute;nidos en condiciones de laboratorio, tanto en su fase larvaria como en la adulta   (Far&iacute;as-Molina, 2001; Velasco, 2008). De la misma manera, la concentraci&oacute;n y el   tipo de alimento son imprescindibles para el &oacute;ptimo desarrollo larvario, el cual var&iacute;a   seg&uacute;n la especie. En la literatura no se encuentra un consenso para la alimentaci&oacute;n   de larvas de pect&iacute;nidos, la cual, seg&uacute;n autores como Winkler y Est&eacute;vez (2003) y   Far&iacute;as y Uriarte (2006), va desde 4000 hasta 50000 cel/mL, para especies como   <i>A. purpuratus</i>, <i>A. circularis </i>y Nodipecten nodosus; las especies de microalgas   m&aacute;s utilizadas son <i>Isochrysis galbana</i>, <i>I</i>. aff. <i>galbana</i> (T-ISO), <i>Pavlova lutheri</i>, <i>Tetraselmis suecica</i>, <i>Chaetoceros gracilis</i> y <i>C. calcitrans</i> (Far&iacute;as-Molina, 2001;   Velasco <i>et al</i>., 2007). Generalmente, se usa la mezcla de dos microalgas en las fases   iniciales, una flagelada y una diatomea, y cuando las larvas alcanzan tallas mayores,   se recomienda incluir tambi&eacute;n especies peque&ntilde;as de <i>Tetraselmis</i> (Helm <i>et al</i>., 2006).</p>     <p>Por tales motivos, en este trabajo se pretendi&oacute; establecer el efecto de la   dieta microalgal sobre la supervivencia y el crecimiento larvario de <i>A. nucleus</i>,   utilizando seis dietas formuladas en funci&oacute;n del peso seco, compuestas por las   microalgas <i>Isochrysis galbana</i> (alga flagelada), <i>Chaetoceros calcitrans</i> (diatomea) y <i>Tetraselmis suecica</i> (alga flagelada), las cuales se escogieron por su amplia   utilizaci&oacute;n en el cultivo de estos organismos y por el f&aacute;cil acceso que se tuvo a las   cepas. Con lo anterior se har&aacute; una contribuci&oacute;n al mejoramiento de la producci&oacute;n de   semilla de este bivalvo en laboratorio.</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>&Aacute;REA DE ESTUDIO</b></p>     <p>El presente estudio se realiz&oacute; en un laboratorio adaptado para tal fin, situado   cerca a la costa, a 4 Km de Punta Canoa, corregimiento de Cartagena, Bol&iacute;var (10&deg;23'   N, 75&deg;32' W). All&iacute;, la temperatura del agua de mar se mantuvo controlada seg&uacute;n se   requer&iacute;a en cada proceso y la salinidad vari&oacute; entre 34 y 37. A 100 m de este sector   funcionan las instalaciones de un laboratorio productor de postlarvas de camar&oacute;n, el   cual provey&oacute; agua de mar prefiltrada, agua dulce y energ&iacute;a el&eacute;ctrica.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>     <p><b>Colecta, maduraci&oacute;n y desove de reproductores</b></p>     <p>Se colectaron entre 20 y 30 individuos de <i>A. nucleus</i> en estadio de madurez   III en la escala modificada de Sastry (1963) y Cochard y Devauchelle (1993) de la   estaci&oacute;n experimental de cultivo de bivalvos de INVEMAR, en la bah&iacute;a de Neguange   (11&deg;20' N, 74&deg;05' W), Parque Nacional Natural Tayrona (PNNT), Santa Marta, en   donde la temperatura del agua de mar oscila entre 22 y 30 &deg;C seg&uacute;n la &eacute;poca del a&ntilde;o, la   salinidad de 33 a 37, las concentraciones de seston entre 0.2 y 4.7 mg/L y el porcentaje   org&aacute;nico en el agua entre 15 y 60 % (Urban, 1999). Los animales se transportaron   en una cava t&eacute;rmica a 21 &deg;C aproximadamente, hasta el laboratorio en Punta Canoa   (Bol&iacute;var). All&iacute; se aclimataron a 25 &deg;C y se colocaron en una canaleta con 250 L   de agua de mar filtrada (AMF) a 5 &micro;m, aireaci&oacute;n, alimentaci&oacute;n constante de 40000   cel/mL de las microalgas <i>Isochrysis galbana</i>, <i>Chaetoceros calcitrans</i> y <i>Tetraselmis suecica</i>, en una relaci&oacute;n 1:1:1, recambio diario del 200 %, temperatura de 23 a 26 &deg;C,   y salinidad entre 31.5 y 35.5, durante diez d&iacute;as. El d&iacute;a previo al desove se suspendi&oacute;   el alimento y el recambio de agua se increment&oacute; a un 300 %. Una vez alcanzaron el   estadio de madurez IV, 20 individuos se limpiaron con cepillo y cuchillo retirando   los epibiontes adheridos a la concha, se colocaron en un acuario de fondo negro, con   20 L de agua AMF (1 &micro;m) e irradiada con luz ultravioleta (UV) y aireaci&oacute;n baja. Se   inici&oacute; la inducci&oacute;n al desove por choque t&eacute;rmico (de 23 a 28 &deg;C, cada 30 min), y con   exposici&oacute;n de los animales a desecaci&oacute;n por 5 min cada 30 min, sumado a un proceso   de irradiaci&oacute;n constante con luz UV del agua utilizada. Al momento de expulsi&oacute;n de   los gametos, cada animal se coloc&oacute; por separado en un recipiente de 2 L de agua con   las mismas caracter&iacute;sticas utilizadas en la inducci&oacute;n.</p>     <p><b>Obtenci&oacute;n de larvas</b></p>     <p>Los gametos femeninos y masculinos se colectaron por separado, se   tamizaron por una malla de 90 &micro;m, los espermatozoides se colocaron en recipientes de   2 L y los ovocitos de cinco hembras se lavaron con abundante agua y se suspendieron   en un balde con 10 L de agua. Se estim&oacute; la concentraci&oacute;n de los productos gam&eacute;ticos   por medio de conteo de al&iacute;cuotas en microscopio, utilizando una placa Sedgewik   Rafter para los ovocitos y una Neubawer para los espermatozoides. Seguidamente,   se realiz&oacute; la fertilizaci&oacute;n a una relaci&oacute;n 100:1 durante 30 min, luego los cigotos se   tamizaron y lavaron en una malla de 23 &micro;m. El desarrollo embrionario se llev&oacute; a   cabo en tanques de fibra de vidrio de 500 L, con AMF a 1 &micro;m, irradiada con luz UV,   aireaci&oacute;n muy suave, temperatura de 24.5 a 25.5 &deg;C, salinidad de 36 y pH de 8. Las   larvas D se obtuvieron a las 24 h de la fertilizaci&oacute;n.  </p>     <p><b>Experimento de alimentaci&oacute;n larvaria</b></p>     <p>Con el fin de determinar una dieta microalgal que favorezca el crecimiento   y la supervivencia de larvas de <i>A. nucleus</i>, se probaron seis dietas: 1) <i>Isochrysis galbana</i> (ISO), 2) <i>Chaetoceros calcitrans</i> (CHA), 3) <i>I. galbana</i> + <i>C. calcitrans</i> en relaci&oacute;n 1:1, (ISO+CHA) 4) <i>I. galbana</i> + <i>Tetraselmis suecica</i> en relaci&oacute;n 1:1   (ISO+TETRA), 5) <i>C. calcitrans</i> + <i>T. suecica</i> en relaci&oacute;n 1:1 (CHA+TETRA), 6) <i>I. galbana</i> + <i>C. calcitrans</i> + <i>T. suecica</i> en relaci&oacute;n 1:1:1 (ISO+CHA+TETRA). Las   relaciones microalgales de las especies utilizadas en este experimento se realizaron   en funci&oacute;n a la equivalencia en peso seco de la especie <i>I. galbana</i>, dado que as&iacute;   se tiene en cuenta el valor nutricional de cada especie, puesto que una c&eacute;lula de <i>I. galbana</i> tiene m&aacute;s de cuatro veces la concentraci&oacute;n de &aacute;cidos grasos que posee una   de <i>C. calcitrans</i>, lo cual se pasa por alto cuando se hace la relaci&oacute;n en volumen o   n&uacute;mero de c&eacute;lulas. De este modo, al realizar la mezcla en la dieta ISO+CHA, se   usaron 20000 cel/mL de <i>I. galbana</i> y 84800 cel/mL de <i>C. calcitrans</i>, y de la mezcla   ISO+CHA+TETRA se utilizaron aproximadamente 13300 cel/mL de <i>I. galbana</i>,   56400 cel/mL de <i>C. calcitrans</i> y 5450 cel/mL de <i>T. suecica</i> (<a href="#tab1">Tabla 1</a>), manteniendo   as&iacute; las proporciones de los nutrientes de cada microalga.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="img/revistas/mar/v41n1/v41n1a06tab1.gif"><a name="tab1"></a></p>     <p>Las larvas D producidas fueron colectadas, contadas y distribuidas por   triplicado en botellones aforados a 15 L, provistos de agua de mar filtrada a 1 &micro;m   e irradiada con luz UV, aireaci&oacute;n suave, temperatura de 25&plusmn;1 &ordm;C, estableci&eacute;ndose   una densidad de siembra inicial de 10 larvas/mL y una concentraci&oacute;n de alimento   de 40000 cel/mL de las microalgas a utilizar. Cabe resaltar que estas dos &uacute;ltimas   condiciones son mayores que las trabajadas por otros autores [Urban (1999) con 0.4   larvas/mL y Velasco y Barros (2008) con 1 larva/mL y 20000 cel/mL de microalgas]   y se determinaron gracias a ensayos previos al presente. Este experimento concluy&oacute;   al momento de alcanzar el estado de larva con mancha ocular.</p>     <p>Diariamente se recambi&oacute; el agua drenando los botellones, reteniendo las   larvas de cada uno en una malla de 40 &micro;m, se suspendieron en recipientes de 1.5   L, de donde se tomaron tres muestras de 1 mL para su conteo y se seleccionaron   30 larvas al azar para determinar su longitud antero-posterior. Finalmente, se   realizaron observaciones directas al microscopio sobre su estado de condici&oacute;n:   gl&aacute;ndula digestiva llena, semillena y vac&iacute;a (<a href="#tab2">Tabla 2</a>); para lo anterior se utiliz&oacute; una   placa Sedgewick Rafter (SR). La temperatura y salinidad se tomaron diariamente,   utilizando un equipo multipar&aacute;metros port&aacute;til marca YSI Model 30, con una precisi&oacute;n   de 0.1 &deg;C y 0.1 ppt, y una resoluci&oacute;n de uno y dos decimales, respectivamente.   Asimismo, el pH se midi&oacute; con un pH-metro marca WTW 300i, con una precisi&oacute;n de   &lt; 0.005+1 d&iacute;gito y una resoluci&oacute;n de tres decimales.</p>       <p align="center"><img src="img/revistas/mar/v41n1/v41n1a06tab2.gif"><a name="tab2"></a></p>     <p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></p>     <p>Se revis&oacute; la homogeneidad de varianzas para cada variable por medio del test   de Cochran y la normalidad utilizando el estad&iacute;stico Shapiro-Wilks. Posteriormente,   los datos fueron sometidos al an&aacute;lisis de varianza de una v&iacute;a (ANOVA) para establecer   posibles diferencias entre los tratamientos. En donde se presentaron diferencias, se   realiz&oacute; una prueba de m&uacute;ltiples comparaciones para determinar cu&aacute;les tratamientos   ejerc&iacute;an mayor influencia sobre la variable en estudio, por medio de la prueba de Tukey   HSD. El an&aacute;lisis estad&iacute;stico se llev&oacute; a cabo utilizando el programa Statgraphics Plus 4.0   y las decisiones se tomaron teniendo en cuenta un intervalo de confianza (&alpha;) de 0.05.</p>     <p>&nbsp; </p>     <p><b>RESULTADOS</b></p>     <p>El experimento tuvo una duraci&oacute;n de 12 d&iacute;as (d), tiempo en el cual se present&oacute;   el estadio de mancha ocular en por lo menos uno de los tratamientos. Al final, se observ&oacute;   una notable diferencia con respecto a las variables supervivencia, crecimiento, estado   de condici&oacute;n y aparici&oacute;n de mancha ocular, entre las dietas monoalgales y mixtas que   conten&iacute;an <i>I. galbana</i>, siendo estas &uacute;ltimas las m&aacute;s favorables.</p>     <p><b>Supervivencia</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La supervivencia larvaria para el final del cultivo fue mayor con las dietas <i>I. galbana</i> + <i>C. calcitrans</i> (ISO+CHA), <i>I. galbana</i> + <i>T. suecica</i> (ISO+TETRA) e <i>I. galbana</i> + <i>C. calcitrans</i> + <i>T. suecica</i> (ISO+CHA+TETRA) con 48.6, 30.8 y 30.6 % respectivamente   (Figura 1a); por el contrario, los valores m&aacute;s bajos se registraron con <i>C. calcitrans</i> + <i>T. suecica</i> (CHA+TETRA); <i>C. calcitrans</i> (CHA) e <i>I. galbana</i> (ISO), con una supervivencia   del 22, 24 y 26 %. Se encontraron diferencias estad&iacute;sticas entre tratamientos (Gl= 5; F=   6.1; p= 0.0049), y los resultados obtenidos con las dietas ISO+CHA, ISO+TETRA e   ISO+CHA+TETRA fueron estad&iacute;sticamente homog&eacute;neos y superiores a los dem&aacute;s.</p>     <p><b>Crecimiento</b></p>     <p>La dieta con la que se obtuvo el mayor crecimiento larvario fue ISO+CHA   con un incremento diario de 9.7 &micro;m/d&iacute;a, alcanzando una talla de 195 &micro;m para el   &uacute;ltimo d&iacute;a de cultivo; en segundo lugar, la dieta ISO+CHA+TETRA present&oacute; un   incremento de 7.7 &micro;m/d&iacute;a, y una talla final de 176 &micro;m (<a href="#fig1">Figura 1b</a>).</p>       <p align="center"><img src="img/revistas/mar/v41n1/v41n1a06fig1.gif"><a name="fig1"></a></p>     <p> No se observaron diferencias marcadas en el crecimiento entre los dem&aacute;s   tratamientos, encontr&aacute;ndose que con ISO+TETRA se obtuvo una talla final de 153   &micro;m, con un incremento de 5.4 &micro;m/d&iacute;a. Los resultados de CHA y CHA+TETRA fueron   similares estad&iacute;sticamente entre s&iacute;, con un aumento de 5.1 y 5.0 &micro;m/d&iacute;a y una talla   final de 150 y 149 &micro;m, respectivamente. Por &uacute;ltimo, con la monodieta ISO las larvas   crecieron en total 143 &micro;m, increment&aacute;ndose este valor a raz&oacute;n de 4.2 &micro;m/d&iacute;a, siendo la de menor talla al final del experimento. Se presentaron diferencias estad&iacute;sticas   altamente significativas entre tratamientos (Gl= 5; F= 32.6; p= 0.00) y la dieta   ISO+CHA fue significativamente mayor que ISO+CHA+TETRA, y esta a su vez,   mayor que las dem&aacute;s.</p>     <p><b>Presencia de mancha ocular</b></p>     <p>Esta fue evidente en las larvas alimentadas con las dietas ISO+CHA e   ISO+CHA+TETRA a partir del noveno d&iacute;a, registrando un incremento diario de 15.1   y 10.6 %, presentando un total de 60.4 y 42.4 % de larvas con esta caracter&iacute;stica,   respectivamente, al &uacute;ltimo d&iacute;a de cultivo (d&iacute;a 12) (<a href="#fig1">Figura 1c</a>). Contrario a este   comportamiento, en ISO+TETRA, CHA+TETRA y CHA, la mancha ocular se observ&oacute;   el &uacute;ltimo d&iacute;a con un 1.2, 1.7 y 1.8 %, siendo ISO la &uacute;nica dieta en donde no se presentaron   larvas con mancha ocular. Se encontraron diferencias estad&iacute;sticamente significativas   entre tratamientos (Gl= 3; F= 329.1 y p= 0.00), y las dietas ISO+CHA+TETRA e   ISO+CHA fueron significativamente superiores a las dem&aacute;s.</p>     <p><b>Estado de condici&oacute;n diario</b></p>     <p>El comportamiento de esta variable se caracteriz&oacute; por la predominancia del   estado de condici&oacute;n de larvas llenas, seguido en menor medida por larvas semillenas   y hacia el final del experimento, un peque&ntilde;o porcentaje de larvas en estado de   condici&oacute;n vac&iacute;as (<a href="#fig2">Figura 2</a>).</p>       <p align="center"><img src="img/revistas/mar/v41n1/v41n1a06fig2.gif"><a name="fig2"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Al realizar un promedio general de dicho comportamiento a lo largo   del experimento en cada tratamiento, se logr&oacute; distinguir que los mayores   porcentajes promedio de larvas en estado de condici&oacute;n llenas se obtuvieron   con ISO+CHA e ISO+CHA+TETRA con 89.3 y 89.1 % respectivamente; para   ISO e ISO+TETRA los valores medios fueron 86.6 y 96.5 % y los menores   se obtuvieron con CHA (82.8 %) y CHA+TETRA (82.7 %). Con respecto al   estado de condici&oacute;n promedio de larvas semillenas, los porcentajes m&aacute;s bajos   se lograron con las dietas ISO+CHA (7.6 %) e ISO+CHA+TETRA (8.5 %) y   los m&aacute;s altos fueron CHA y CHA+TETRA con 13.4 y 13.1 %, respectivamente.   Por su parte, la presencia de larvas vac&iacute;as se determin&oacute; en menor medida con   las dietas ISO+CHA+TETRA, ISO e ISO+TETRA con 2.4 y 2.7 % en promedio   general para las dos &uacute;ltimas dietas, y en mayor medida en CHA con 3.7 % y   CHA+TETRA con 4.2 %.</p>     <p>Cabe destacar que los tratamientos ISO+CHA e ISO+CHA+TETRA no   registraron variaciones en la relaci&oacute;n de larvas llenas, semillenas y vac&iacute;as a lo   largo del experimento (Figuras 4c y d), en comparaci&oacute;n con ISO y CHA, en los   cuales se produjo una fuerte oscilaci&oacute;n entre todos los estados de condici&oacute;n en   los d&iacute;as 8 y 9, observ&aacute;ndose un descenso de larvas llenas y un incremento de   larvas semillenas y vac&iacute;as (Figuras 4a y b). Con ISO+TETRA y CHA+TETRA   la oscilaci&oacute;n se present&oacute; entre los d&iacute;as 10 y 11 para el primero y entre los d&iacute;as 9   y 11 para el segundo.</p>     <p>Se encontraron diferencias estad&iacute;sticamente significativas entre tratamientos   con relaci&oacute;n al estado de larvas llenas (Gl= 5; F= 2.3 y p= 0.0212) y semillenas   (Gl= 5; F= 3.2 y p= 0.0079), present&aacute;ndose un grupo homog&eacute;neo conformado por   ISO+CHA, ISO+CHA+TETRA, ISO e ISO+TETRA, con la mayor presencia de   larvas llenas, as&iacute; mismo, los porcentajes m&aacute;s bajos de larvas semillenas. Sin embargo,   todas las anteriores, excepto ISO+CHA, conforman el grupo homog&eacute;neo junto con   CHA y CHA+TETRA con los porcentajes m&aacute;s altos de larvas semillenas. Para   el estado de condici&oacute;n de larvas vac&iacute;as no se encontraron diferencias estad&iacute;sticas   significativas (Gl= 5; F= 0.8 y p= 0.5623).  </p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>DISCUSI&Oacute;N</b></p>     <p><b>Supervivencia</b></p>     <p>Los valores m&aacute;s altos de supervivencia se obtuvieron con las dietas   mixtas, en donde se incluy&oacute; la microalga <i>I. galbana</i>. Tales resultados se atribuyen   principalmente a la mezcla de microalgas en s&iacute;, puesto que se ha encontrado que, generalmente, las larvas de pect&iacute;nidos alimentadas con dos o m&aacute;s tipos de   microalgas tienen mayor crecimiento y supervivencia que al suministrar un solo   tipo, debido a la complementariedad de nutrientes que se logra al suministrar la   mezcla (Narvarte y Pascual, 2001; Helm <i>et al</i>., 2006; Bayne, 2008; Velasco y   Barros, 2008).</p>     <p>Por otro lado, se encuentran los requerimientos nutricionales de las larvas   en desarrollo, en especial los &aacute;cidos grasos altamente insaturados (HUFA por sus   siglas en ingl&eacute;s), que cumplen un rol generalizado en la estructuraci&oacute;n e integridad   funcional de las membranas y adem&aacute;s sirven como precursores de compuestos que   funcionan como reguladores de las funciones biol&oacute;gicas. Dentro de los HUFA, los   &aacute;cidos grasos identificados como esenciales son el DHA (&aacute;cido docosahexan&oacute;ico,   22:6n-3), el EPA (&aacute;cido eicosapentan&oacute;ico, 20:5n-3) y en menor medida el AA (&aacute;cido   araquid&oacute;nico, 20:4n-6) (Far&iacute;as-Molina, 2001; Helm <i>et al</i>., 2006).</p>     <p>Seg&uacute;n autores como Mart&iacute;nez (1991), Marty <i>et al</i>. (1992) y Delaunay <i>et al</i>. (1993), las larvas de los pect&iacute;nidos tienen un alto requerimiento de EPA en las   fases larvarias tempranas y una disminuci&oacute;n hacia la fase tard&iacute;a y posmetam&oacute;rfica,   mientras que los requerimientos de DHA parecen mantenerse altos durante toda la   vida larvaria e incluso despu&eacute;s de la metamorfosis. Seg&uacute;n esto y teniendo en cuenta   que la microalga <i>I. galbana</i> posee el porcentaje m&aacute;s alto de DHA con respecto a   las otras microalgas utilizadas en este experimento (<a href="#tab3">Tabla 3</a>), es l&oacute;gico pensar que   las mezclas microalgales que posean esta microalga tengan una ventaja nutricional   frente a las dem&aacute;s.</p>       <p align="center"><img src="img/revistas/mar/v41n1/v41n1a06tab3.gif"><a name="tab3"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>As&iacute;, el mayor valor de supervivencia fue logrado con la dieta ISO+CHA,   resultado que concuerda con lo hallado por Velasco (1997), quien realizando el   cultivo larvario de N. subnodosus encontr&oacute; que las larvas alimentadas con una   mezcla de <i>I. galbana</i> y <i>C. calcitrans</i> eran capaces de completar su desarrollo hasta la metamorfosis, mientras que alimentando s&oacute;lo con <i>C. calcitrans</i> no lograron   completar su desarrollo larvario. Este resultado, al igual que el obtenido en esta   investigaci&oacute;n, podr&iacute;a ser atribuido nuevamente a los requerimientos nutricionales de   las larvas y su relaci&oacute;n con el contenido de nutrientes de las microalgas utilizadas en   este experimento, pues como se mencion&oacute; anteriormente el EPA y el DHA son dos   de los &aacute;cidos grasos primordiales para la supervivencia y desarrollo de las larvas.   Como se observa en la <a href="#tab3">Tabla 3</a>, la microalga <i>I. galbana</i> posee m&aacute;s alto contenido de   DHA, pero baja presencia de EPA, mientras que <i>C. calcitrans</i> contiene el m&aacute;s alto   contenido de EPA, pero baja concentraci&oacute;n de DHA, por lo cual, con la combinaci&oacute;n   de estas microalgas se crea un efecto sin&eacute;rgico, lo que permite complementar las   deficiencias de nutrientes esenciales de cada microalga (Helm <i>et al</i>., 2006, Bayne,   2008), produciendo por ende una nutrici&oacute;n m&aacute;s completa, balanceada y eficiente   para el desarrollo larvario.</p>     <p>Despu&eacute;s de la dieta ISO+CHA, el segundo y tercer valor m&aacute;s alto de   supervivencia se present&oacute; con las dietas ISO+TETRA y con ISO+CHA+TETRA   respectivamente, sin ser diferentes significativamente entre s&iacute;. La raz&oacute;n por la cual   ISO+TETRA arroj&oacute; el segundo valor m&aacute;s alto de supervivencia, se podr&iacute;a explicar   por el hecho que aunque <i>T. suecica</i> posee EPA en menor proporci&oacute;n que <i>C. calcitrans</i> e igual proporci&oacute;n de AA, esta microalga aporta mayor porcentaje de prote&iacute;nas que   todas las dem&aacute;s (<a href="#tab3">Tabla 3</a>). Seg&uacute;n Uriarte <i>et al</i>. (2001), una dieta con alto contenido   de prote&iacute;na mejora la calidad de vida de las larvas; por otro lado, la dieta constituida   por las tres microalgas evidencia que a pesar de los buenos resultados, la utilizaci&oacute;n   de <i>T. suecica</i> reduce la eficiencia de la supervivencia, por no tener una fuente muy   importante de &aacute;cidos grasos que complementen sustancialmente a las otras dos   especies y adem&aacute;s su participaci&oacute;n en la dieta obliga a disminuir en una tercera parte   los aportes de EPA y DHA aportados por las otras dos especies de microalgas.</p>     <p>La dieta ISO+CHA produjo una supervivencia larvaria del 48 %, la cual   supera en gran medida a la registrada por Velasco y Barros (2008), quienes probando   tres dietas microalgales, compuestas por 1) <i>I. galbana</i>, 2) <i>I. galbana</i> + <i>C. calcitrans</i> y 3) <i>I. galbana</i> + Emulsi&oacute;n de DHA, en larvas de esta misma especie, obtuvieron   un m&aacute;ximo de supervivencia larvaria del 4 % con la dieta 2. La diferencia de la   supervivencia entre estos dos trabajos posiblemente se deba a la manera en la que   se maneja la relaci&oacute;n microalgal, la cual es de 1:1 en ambos casos, puesto que los   primeros autores se basan en el n&uacute;mero de c&eacute;lulas, mientras que en el presente, se   hizo con respecto al peso seco de las microalgas (<a href="#tab1">Tabla 1</a>). Con la primera, no se   tiene en cuenta la cantidad de nutrientes aportados por cada microalga, por lo tanto,   no se suministran de manera equivalente. Estas mismos autoras sugieren que las mezclas microalgales realizadas de esta manera proveen un bajo equivalente en peso   seco de alimento, m&aacute;s que si se suministra una dieta monoalgal, y que un reemplazo   del 50 % de las c&eacute;lulas de <i>I. galbana</i> por un n&uacute;mero equivalente de c&eacute;lulas de <i>C. calcitrans</i>, podr&iacute;a causar que el peso seco total de la dieta decreciera en un 35 %   aproximadamente.</p>     <p><b>Crecimiento</b></p>     <p>Walne (1970) sugiri&oacute; que la mezcla microalgal tiene un efecto sin&eacute;rgico   que hace que se incremente la tasa de crecimiento. Helm <i>et al</i>. (2006) se&ntilde;alaron   que una combinaci&oacute;n de dos especies de microalgas de alto valor nutritivo que   incluya un flagelado y una diatomea de tama&ntilde;o adecuado invariablemente acelera   el crecimiento y desarrollo larvario en los bivalvos, como es el caso de la dieta   ISO+CHA, la cual present&oacute; el mayor crecimiento, confirmando que con esta   mezcla se asegura una nutrici&oacute;n m&aacute;s completa y balanceada, como se mencion&oacute;   anteriormente.</p>     <p>El segundo mayor crecimiento fue conseguido con la dieta   ISO+CHA+TETRA, aunque fue significativamente menor que el primero, al   mismo tiempo fue significativamente m&aacute;s alto que con las cuatro dietas restantes.   Esta superioridad en el crecimiento por parte de aquellas dietas que poseen las   microalgas <i>I. galbana</i> y <i>C. calcitrans</i>, confirman lo expresado en el &iacute;tem anterior,   al discutir el beneficio de utilizar microalgas con altos contenidos de &aacute;cidos grasos,   debido al papel que &eacute;stos cumplen en la supervivencia y crecimiento de las larvas,   encontr&aacute;ndose estas dos variables relacionadas entre s&iacute; y siendo las de mayor inter&eacute;s   comercial (Manahan y Crisp, 1982).</p>     <p>Seg&uacute;n Novoa (2007), la composici&oacute;n en compuestos esenciales   (amino&aacute;cidos, &aacute;cidos grasos, vitaminas) m&aacute;s que la cantidad total de prote&iacute;nas,   l&iacute;pidos totales o gl&uacute;cidos puede ser la responsable de las diferencias en cuanto   al valor nutricional de las microalgas. Esto es apoyado en parte por Webb y Chu   (1982) quienes sugieren que el valor nutricional de las especies microalgales no   est&aacute; relacionado con su contenido total de l&iacute;pidos y carbohidratos, sino que parece   estar correlacionado con la composici&oacute;n total de prote&iacute;nas y la composici&oacute;n   cualitativa de &aacute;cidos grasos.</p>     <p>Teniendo en cuenta los resultados obtenidos se podr&iacute;a afirmar que   entre mayores sean las concentraciones de &aacute;cidos grasos esenciales presentes   en las microalgas que conforman la dieta, en especial EPA y DHA, mayor ser&aacute;   el crecimiento alcanzado por las larvas; sin embargo, como se mencion&oacute; en el   &iacute;tem anterior, Far&iacute;as-Molina (2001) encontr&oacute; que en la fase larvaria temprana los pect&iacute;nidos podr&iacute;an tener un alto requerimiento de EPA y una disminuci&oacute;n   hacia la fase tard&iacute;a o postmetam&oacute;rfica, mientras que los requerimientos de DHA   parecen mantenerse altos durante toda la vida larvaria e incluso despu&eacute;s de la   metamorfosis. Esto explicar&iacute;a el comportamiento del crecimiento de las larvas a   lo largo del tiempo, en donde se mantuvo similar con todos los tratamientos hasta   el quinto d&iacute;a de cultivo, a partir del cual se observa la predominancia de las dietas   ISO+CHA+TETRA e ISO+CHA, las cuales tienen porcentajes balanceados de   ambos compuestos, mientras que con ISO+TETRA, CHA+TETRA, CHA e   ISO la tasa de crecimiento es menor, mostrando los valores m&aacute;s bajos al final   del experimento, debido a que con estas dietas se presenta deuda de alguno de   dichos compuestos (<a href="#tab4">Tabla 4</a>).</p>       <p align="center"><img src="img/revistas/mar/v41n1/v41n1a06tab4.gif"><a name="tab4"></a></p>     <p>Los altos valores de crecimiento obtenidos con las dietas mixtas ISO+CHA   e ISO+CHA+TETRA, concuerdan con lo observado en A. ventricosus, en donde   se ha demostrado que las larvas presentan mayor crecimiento con la mezcla de <i>I. galbana</i> y <i>C. gracilis</i> que con cada microalga por separado, porque con la   mezcla se incrementan los valores de dep&oacute;sito diario de prote&iacute;na y utilizaci&oacute;n   aparente de la misma (Mill&aacute;n-Tovar, 1997). Del mismo modo, Urban (1999)   registr&oacute; un crecimiento mayor de larvas de Pinctada imbricata aliment&aacute;ndolas   con una mezcla de <i>I. galbana</i> + <i>C. calcitrans</i> que administr&aacute;ndolas por   separado. Finalmente, Helm <i>et al</i>. (2006) afirman que las larvas de <i>C. gigas</i>, <i>C.   rhizophorae</i> y <i>Tapes philippinarum</i> alimentadas con una mezcla de <i>C. calcitrans</i> e <i>I. galbana</i> (Clon T-ISO) presentaron un mayor crecimiento que suministrando   estas microalgas por aparte. Por &uacute;ltimo, la tasa de crecimiento encontrada en este   experimento fue considerablemente mayor a la registrada por Velasco y Barros   (2008) y Urban (1999) para larvas de esta misma especie al probar diferentes   dietas (<a href="#tab5">Tabla 5</a>).</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="img/revistas/mar/v41n1/v41n1a06tab5.gif"><a name="tab5"></a></p>     <p><b>Mancha ocular</b></p>     <p>Esta es la &uacute;ltima fase del desarrollo larvario, marcando el comienzo de la   fijaci&oacute;n y posterior metamorfosis que, seg&uacute;n Helm <i>et al</i>. (2006), es una etapa cr&iacute;tica   en el desarrollo de las larvas, la que puede generar altas mortalidades y durante la cual   se producen grandes cambios anat&oacute;micos. Seg&uacute;n estos mismos autores y Velasco   (2008), el &eacute;xito de la transformaci&oacute;n hacia la forma juvenil y la supervivencia en esta   etapa dependen de una serie de factores, entre ellos la acumulaci&oacute;n de suficientes   reservas energ&eacute;ticas durante la fase larvaria. Teniendo en cuenta lo anterior, es   apropiado pensar que la aparici&oacute;n de la mancha ocular (una a cada lado de la larva,   entre la gl&aacute;ndula digestiva y las valvas) se presente mayormente con ISO+CHA e   ISO+CHA+TETRA, pues &eacute;stas han demostrado ser dietas altamente nutritivas, que   mejoran la supervivencia, el crecimiento y el estado de condici&oacute;n de las larvas.</p>     <p>En lo concerniente a las dem&aacute;s dietas, es posible que la falencia, escasez o   desequilibrio nutricional que presentaron impidieran la acumulaci&oacute;n de cantidades   adecuadas de energ&iacute;a, retrasando o impidiendo la formaci&oacute;n de la mancha ocular   y por ende el proceso de fijaci&oacute;n y posterior metamorfosis (Far&iacute;as-Molina, 2001;   Velasco, 2008; Velasco y Barros, 2008). Con respecto a esto, Soudant <i>et al</i>. (1995) se&ntilde;alan que la composici&oacute;n de &aacute;cidos grasos puede llegar a modificarse por dietas   microalgales monoespec&iacute;ficas bajas en DHA o EPA, lo cual conduce a perturbaciones   en la metamorfosis y crecimiento durante el desarrollo larvario en <i>Pecten maximus</i>.   As&iacute;, Soudant <i>et al</i>. (1998) afirman que, aunque <i>C. calcitrans</i> provoca buenas tasas de   crecimiento, no soporta la metamorfosis; tambi&eacute;n Velasco (1997), realizando el cultivo   larvario de <i>Nodipecten subnodosus</i>, encontr&oacute; que las larvas alimentadas con una mezcla   de <i>I. galbana</i> (T-Iso) y <i>C. calcitrans</i> o con T-Iso eran capaces de completar su desarrollo   hasta metamorfosis, mientras que no lo logr&oacute; alimentando solo con <i>C. calcitrans</i>.</p>     <p><b>Estado de condici&oacute;n</b></p>     <p>La mayor parte del tiempo, la tendencia de las larvas fue a mantenerse en el   estado de condici&oacute;n llenas en todos los tratamientos, lo cual indica que &eacute;stas realizaron   la ingesti&oacute;n de la dieta independientemente de las microalgas que la conformaran, lo   cual concuerda con los datos obtenidos por Lora-Vilchis y Maeda-Mart&iacute;nez (1997),   quienes registraron que al menos el 70 % de las larvas de <i>A. ventricosus circularis</i>  presentaron ingesti&oacute;n microalgal al probar 10 especies de microalgas. Sin embargo,   los resultados tambi&eacute;n indican que en aquellos tratamientos en los que se utiliz&oacute; <i>I. galbana</i> se present&oacute; un significativo aumento en el porcentaje de larvas llenas, a la vez   que se redujeron los porcentajes de larvas semillenas y vac&iacute;as. Esto confirma, una vez   m&aacute;s, la alta calidad de esta especie microalgal gracias al alto valor nutricional y a sus   caracter&iacute;sticas biol&oacute;gicas que la hace m&aacute;s digerible (cuerpo desnudo, m&oacute;vil, de tama&ntilde;o   peque&ntilde;o, forma ovoide), lo cual la acredita como una de las m&aacute;s apropiadas para la   alimentaci&oacute;n de los pect&iacute;nidos en su fases larvaria, juvenil y/o adulta (Velasco, 2008),   sobre todo cuando se utiliza con la microalga <i>C. calcitrans</i> cuya mezcla, como se   evidencia en estos resultados, crea una sinergia que produce resultados sobresalientes.   La raz&oacute;n por la cual las dietas que integraron en su composici&oacute;n a <i>I. galbana</i> presentaron mayor cantidad de larvas llenas, podr&iacute;a deberse a la digestibilidad de esta   microalga, pues, seg&uacute;n Bayne (2008), en el interior del tracto digestivo de las larvas   de los bivalvos las part&iacute;culas de alimento que son m&aacute;s digeribles tardan m&aacute;s tiempo   dentro del mismo (10-11 h) y las menos digeribles son expulsadas m&aacute;s r&aacute;pidamente.</p>     <p>Por otra parte, el hecho que en todos los tratamientos se hubiese presentado   una reducci&oacute;n en los porcentajes de larvas llenas entre los d&iacute;as 8 y 11, se debe   posiblemente a que durante esos d&iacute;as las larvas desarrollan el umbo y posteriormente   se da la secreci&oacute;n de la prodisoconcha II, la gl&aacute;ndula de la concha se transforma en   el manto, el cual originar&aacute; la cavidad paleal, y se forma el m&uacute;sculo aductor posterior   (Velasco, 2008); todo esto podr&iacute;a causar cierto grado de estr&eacute;s en el proceso de   alimentaci&oacute;n e implicar un mayor gasto de energ&iacute;a, debido a la segregaci&oacute;n de una   concha m&aacute;s gruesa, lo que genera, en consecuencia, un peso adicional y por lo tanto   un esfuerzo mayor para mantenerse nadando en la columna de agua (Cragg y Crisp, 1991). Teniendo en cuenta que dicha disminuci&oacute;n en el porcentaje de larvas llenas   se produjo levemente con las dietas ISO+CHA e ISO+CHA+TETRA, se podr&iacute;a   suponer que, gracias a la cantidad de nutrientes y la equilibrada relaci&oacute;n entre ellos,   estas ayudar&iacute;an a soportar m&aacute;s eficazmente dicho proceso; lo contrario ocurri&oacute; con   las dietas ISO, CHA, ISO+TETRA y CHA+TETRA, en donde este descenso fue   m&aacute;s evidente y se present&oacute; mayor retraso y menor homogeneidad en la formaci&oacute;n de   la larva umbonada, lo que indica que estas &uacute;ltimas dietas no satisfacen enteramente   los requerimientos nutricionales para ayudar a las larvas a llevar a cabo este paso.</p>     <p>En conclusi&oacute;n, la dieta mixta <i>I. galbana</i> + <i>C. calcitrans</i> fue la m&aacute;s apropiada   para alimentar las larvas de <i>A. nucleus</i>, gracias a que suple de manera equilibrada las   necesidades de &aacute;cidos grasos DHA, EPA y AA, esenciales para su correcto desarrollo.   A pesar que se encontraron resultados similares con esta dieta e <i>I. galbana</i> + <i>C. calcitrans</i> + <i>T. suecica</i>, el aporte de <i>T. suecica</i> no genera un beneficio significativo   y, por el contrario, incrementar&iacute;a los costos en la producci&oacute;n de alimento vivo en   laboratorio. Por su parte, el pobre desarrollo larvario obtenido alimentando con las   monodietas <i>I. galbana</i> y <i>C. calcitrans</i> confirma la deficiencia nutricional que se genera   utilizando estas microalgas por separado, lo mismo ocurre al mezclar esta &uacute;ltima con <i>T. suecica</i>, dado que ambas especies poseen valores nutricionales semejantes, por lo   que no hay complementariedad de nutrientes entre ellas.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los autores expresan sus agradecimientos al Departamento Administrativo de   Ciencia Tecnolog&iacute;a e Innovaci&oacute;n-COLCIENCIAS, por la financiaci&oacute;n de este estudio,   que hizo parte del trabajo de grado de la primera autora, y que estuvo enmarcado en el   proyecto "Optimizaci&oacute;n de la producci&oacute;n de postlarvas del osti&oacute;n Nodipecten nodosus   y la conchuela <i>Argopecten nucleus</i> en el Caribe colombiano", c&oacute;digo 2105-09-17982.   De igual manera, al Instituto de Investigaciones Marinas y Costeras "Jos&eacute; Benito   Vives de Andr&eacute;is" -INVEMAR, por el apoyo prestado a lo largo de esta investigaci&oacute;n.   Tambi&eacute;n a Mar&iacute;a Fernanda Virg&uuml;ez y Edgard Arias, propietarios de Hidrocultivos de   la Costa Ltda, a Fabi&aacute;n Cortes y Adolfo Sanju&aacute;n.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></p>     <!-- ref --><p>1 Barbosa, W. A. 2005. Efecto de la calidad de la dieta sobre la fisiolog&iacute;a energ&eacute;tica de los bivalvos   <i>Argopecten nucleus</i> y <i>Nodipecten nodosus</i> en condiciones de laboratorio. Tesis Biolog&iacute;a, Univ. del   Magdalena, Santa Marta. 59 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0122-9761201200010000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>2 Bayne, B. L. 2008. Physiological ecology of marine molluscan larvae. 299-343. En: Verdonk, N. H. van   den, J. A. M. Biggelaar y A. Tompa (Eds.). The Mollusca, Vol III. Development. Academic Press,   Nueva York. 258 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0122-9761201200010000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->   </p>     <!-- ref --><p>3 Brown, M. R., S. W. Jeffrey, J. K. Volkman y G. A. Dunstan. 1997. Nutritional properties of microalgae   for mariculture. Aquaculture, 151: 315-331.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0122-9761201200010000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->   </p>     <!-- ref --><p>4 Castellanos, C. y N. Campos. 2007. Variaci&oacute;n espacial y temporal de juveniles de <i>Pinctada imbricata</i>  (R&ouml;ding, 1798) y <i>Argopecten nucleus</i> (Born, 1778) en la regi&oacute;n norte del Caribe colombiano. Bol.   Inv. Mar Cost., 36: 209-22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0122-9761201200010000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>5 Cochard, J. C. y N. Devauchelle. 1993. Spawning, fecundity and larval survival and growth in relation to   controlled conditioning in native and transplanted populations of <i>Pecten maximus</i> (L): evidence for   the existence of separate stocks. J Exp. Mar. Biol. Ecol., 169: 41-56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0122-9761201200010000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>6 Cragg, S. M. y D. J. Crisp. 1991. The biology of scallop larvae. 75-132. En: Shumway, S. E. (Ed.).   Scallops: biology, ecology and aquaculture. Elsevier Science, &Aacute;msterdam. 1096 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0122-9761201200010000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->   </p>     <!-- ref --><p>7 Delaunay, F., Y. Marty, J. Moal y J. F. Samain. 1993. The effect of monoespecific algal diets on growth   and fatty acid composition of <i>Pecten maximus</i> (L.) larvae. J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 173: 163-179.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0122-9761201200010000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>8 D&iacute;az, J. M. y M. Puyana. 1994. Moluscos del Caribe colombiano. Un cat&aacute;logo ilustrado. Colciencias,   Fundaci&oacute;n Natura e INVEMAR. Editorial Presencia, Bogot&aacute;. 291 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0122-9761201200010000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->   </p>     <!-- ref --><p>9 Far&iacute;as, A. e I. Uriarte. 2006. Nutrition in pectinids. 521-542. En: Shumway, S. E. y G. J. Parsons (Eds.).   Scallops: biology, ecology and aquaculture. Segunda edici&oacute;n, Elsevier B. V., &Aacute;msterdam. 1460 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0122-9761201200010000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->   </p>     <!-- ref --><p>10 Far&iacute;as-Molina, A. 2001. Nutrici&oacute;n en moluscos pect&iacute;nidos. 89-104. En: Maeda-Mart&iacute;nez, A. N. (Ed.). Los   moluscos pect&iacute;nidos de Iberoam&eacute;rica: ciencia y acuicultura. McGraw-Hill Interamericana Editores,   S. A. M&eacute;xico D.F. 201 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0122-9761201200010000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->   </p>     <!-- ref --><p>11 Helm, M. M., N. Bourne y A. Lovatelli. 2006. Cultivo de bivalvos en criadero. Un manual pr&aacute;ctico. Doc.   T&eacute;c. Pesca FAO, 471, Roma. 182 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0122-9761201200010000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->   </p>     <!-- ref --><p>12 Lora-Vilchis, M. C. y A. N. Maeda-Mart&iacute;nez. 1997. Ingestion and digestion index of catarina scallop   <i>Argopecten ventricosus-circularis</i>, Sowerby, 1842, veliger larvae with ten microalgae species.   Aquacult. Res., 28: 905-910.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0122-9761201200010000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>13 Manahan, D. T. y D. J. Crisp. 1982. The role of dissolved organic material in the nutrition of pelagic   larvae: amino acid uptake by bivalve veligers. Amer. Zool., 22: 635-646.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0122-9761201200010000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->   </p>     <!-- ref --><p>14 Mart&iacute;nez, G. 1991. Estudios nutricionales en larvas de osti&oacute;n <i>Argopecten purpuratus</i>. Informe t&eacute;cnico,   Fondo Desarrollo Productivo, Corporaci&oacute;n de Fomento de la Producci&oacute;n-CORFO, Coquimbo,   Chile. 40 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0122-9761201200010000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>15 Marty, Y., Y. F. Delauna, J. Moal y F. J. Samain. 1992. Changes in the fatty acid composition of the   scallop <i>Pecten maximus</i> (L.) during larval development. J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 163: 221-234.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0122-9761201200010000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>16 Mill&aacute;n-Tovar, M. M. 2008. Experimentos de inducci&oacute;n a la maduraci&oacute;n gon&aacute;dica de <i>Argopecten ventricosus</i>  (Sowerby, 1842) y estudio del valor nutricional de <i>Isochrysis galbana</i> y <i>Chaetoceros gracilis</i>, durante   su crianza larvaria. 115. En: Velasco, L. A. (Ed.). Biolog&iacute;a y cultivo de los pect&iacute;nidos de inter&eacute;s   comercial de Colombia. Editorial Universidad del Magdalena, Santa Marta. 258 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0122-9761201200010000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>17 Narvarte, M. A. y M. S. Pascual. 2001. Diet trial on tehuelche scallop <i>Aequipecten tehuelchus</i> (d'Orb)   larvae. Aquacult. Internat., 9:127-131.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0122-9761201200010000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>18 Novoa, S. 2007. Metabolismo lip&iacute;dico, &aacute;cidos grasos en el cultivo larvario de almeja babosa, <i>Venerupis   pullastra</i> (Montagu, 1803). Calidad ovocitaria, larvaria y nutricional con una aproximaci&oacute;n al uso de   la microencapsulaci&oacute;n lip&iacute;dica. Trabajo de Doctorado en Biolog&iacute;a, Univ. Santiago de Compostela,   Santiago de Compostela, Espa&ntilde;a. 244 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0122-9761201200010000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>19 Sastry, A. N. 1963. Reproduction of the bay scallop, <i>Aequipecten irradians</i> Lamarck. Influence of   temperature on maturation and spawning. Biol. Bull., 125: 146-153.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0122-9761201200010000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>20 Soudant, P., Y. Marty, J. Moal y J. F. Samain. 1995. Fatty acids composition of major polar lipids in   gonads of <i>Pecten maximus</i>. 125. En: Aquaculture Development Centre, University College Cork   (Ed.). Book of abstracts: 10th International Pectinid Workshop. University College Cork, Cork,   Irlanda. 155 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0122-9761201200010000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>21 Soudant, P., J. R. LeCoz, Y. Marty, J. Moal, R. Robert y J. F. Samain. 1998. Incorporation of microalgae   sterols by scallop <i>Pecten maximus</i> (L.) larvae. Comp. Biochem. Physiol., 119A (2): 451-457.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0122-9761201200010000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>22 Urban, H. J. 1999. Cultivo de bivalvos en el Caribe colombiano. Diagn&oacute;stico y evaluaci&oacute;n de la   factibilidad biol&oacute;gica, t&eacute;cnica y econ&oacute;mica del cultivo experimental de bivalvos de inter&eacute;s comercial   en el Caribe colombiano. Informe t&eacute;cnico final, Instituto de Investigaciones Marinas y Costeras-INVEMAR, Santa Marta. 212 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0122-9761201200010000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->   </p>     <!-- ref --><p>23 Uriarte, I. y A. Far&iacute;as. 1999. The effect of dietary protein content on growth and biochemical composition   of Chilean scallop <i>Argopecten purpuratus</i> (L) postlarvae and spat. Aquaculture, 180: 119-127.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0122-9761201200010000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>24 Uriarte, I., G. Rupp y A. Abarca. 2001. Producci&oacute;n de juveniles de pect&iacute;nidos iberoamericanos bajo   condiciones controladas. 147-171. En: Maeda-Mart&iacute;nez, A. N. (Ed.). 2001. Los moluscos   pect&iacute;nidos de Iberoam&eacute;rica: ciencia y acuicultura. McGraw-Hill Interamericana Editores, S. A.   M&eacute;xico D.F. 501 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0122-9761201200010000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->   </p>     <!-- ref --><p>25 Valero, A. P., S. S&aacute;nchez, S. Garc&iacute;a, C. C&oacute;rdoba, A. J. De La Roche, J. P. G&oacute;mez, J. Castellanos, C.   Torres, C. Rueda, M. E. Hern&aacute;ndez, R. Bautista, J. P. Assmus e Y. Caballero. 2000. Cultivo de   bivalvos marinos del Caribe colombiano. Col. Cienc. Tecnol., 18 (13): 10-16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0122-9761201200010000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->   </p>     <!-- ref --><p>26 Velasco, G. 1997. Cultivo larvario a nivel piloto del callo de hacha <i>Atrina maura</i> Sowerby y de la almeja   mano de le&oacute;n <i>Nodipecten subnodosus</i> Sowerby, con dos especies de microalgas. 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Editorial   Unimagdalena, Santa Marta. 258 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0122-9761201200010000600027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->   </p>     <!-- ref --><p>28 Velasco, L. A. y J. Barros. 2008. Experimental larval culture of the Caribbean scallops <i>Argopecten nucleus</i>   and <i>Nodipecten nodosus</i>. Aquaculture Res., 39: 603-618.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0122-9761201200010000600028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>29 Velasco, L. A., J. Barros y E. Acosta. 2007. Spawning induction and early development of the Caribbean   scallops <i>Argopecten nucleus</i> and <i>Nodipecten nodosus</i>. Aquaculture, 272: 767-773.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0122-9761201200010000600029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>30 Walne, P. R. 1970. Present problems in the culture of the larvae of <i>Ostrea edulis</i>. Helgol&auml;nder wiss.   Meeresunters., 20: 514-525.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0122-9761201200010000600030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p>31 Webb, K. I. y F. E. Chu 1982. Phytoplankton as a food source for bivalve larvae. 272-290. En: Pruder,   G.D., C. Langdon y D. Conklin (Eds.). Proceedings of the second international conference on   aquaculture nutrition; biochemical and physiological approaches to shellfish nutrition. Louisiana   State University, Baton Rouge, Estados Unidos. 444 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0122-9761201200010000600031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->   </p>     <!-- ref --><p>32 Winkler, F. M. y B. F. Est&eacute;vez, 2003. Effects of self-fertilization on growth and survival of larvae and   juveniles of the scallop <i>Argopecten purpuratus</i> L. J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 292: 93-102.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0122-9761201200010000600032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <p>&nbsp;</p>       <p>FECHA DE RECEPCI&Oacute;N: 28/05/2010&nbsp;  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; FECHA DE ACEPTACI&Oacute;N: 03/03/2012</p>       <p><i><a name="*">*</a>Contribuci&oacute;n No. 1103 del Instituto de Investigaciones Marinas y Costeras-INVEMAR.</i></p>   </font>     ]]></body>
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