AMPLIFICACIÓN CRUZADA DE MICROSATÉLITES PARA ESTUDIOS POBLACIONALES DE DOS ESPECIES DE CAMARÓN DEL GÉNERO LITOPENAEUS EN COLOMBIA*
MICROSATELLITE CROSS-AMPLIFICATION FOR POPULATION GENETIC STUDIES IN SHRIMP SPECIES OF THE GENUS LITOPENAEUS IN COLOMBIA
Adriana Fresneda-Rodríguez, Luis Chasqui-Velasco y David Alonso-Carvajal
Instituto de Investigaciones Marinas y Costeras (Invemar), Playa Salguero, El Rodadero, Santa Marta, Colombia. adriana.fresneda@invemar.org.co, luis.chasqui@invemar.org.co, david.alonso@invemar.org.co.
RESUMEN
Los microsatélites son marcadores moleculares usados con frecuencia en estudios de genética de poblaciones, aunque su desarrollo es un proceso costoso y prolongado dada su elevada especificidad. Un método que permite ahorrar tiempo y dinero es la amplificación cruzada, que consiste en amplificar el ADN de una especie determinada (especie objetivo) utilizando cebadores que han sido diseñados para una especie diferente (especie fuente). Usando este método se evalúo la idoneidad de 15 loci microsatélites, desarrollados para las especies Litopenaeus setiferus y L. vannamei, para estudiar regiones microsatélites de L. schmitti y L. occidentalis. Cinco cebadores son adecuados para amplificar consistentemente microsatélites polimórficos en L. schmitti y cuatro en L. occidentalis. Los resultados muestran la utilidad de la amplificación cruzada con estos cebadores para estudios de genética poblacional de ambas especies.
PALABRAS CLAVE: Amplificación cruzada, marcadores moleculares, Litopenaeus schmitti, Litopenaeus occidentalis, microsatélites.
ABSTRACT
Microsatellites are molecular markers frequently used in population genetic studies despite of the high cost, and long time involved in developing them, mainly due to their high specificity. One method to save money and time is cross-amplification, which is the DNA amplification of the target species using primers developed for a different species. By using cross-amplification, the suitability of 15 developed microsatellite loci from Litopenaeus setiferus and L. vannamei to amplify microsatellite regions of L. schmitti and L. occidentalis was evaluated. Five primers showed consistent amplification and were polymorphic in L. schmitti and four in L. occidentalis. These results point out the usefulness of cross-amplification with these primers for population genetics studies of both species.
KEY WORDS: Cross-amplification, molecular markers, Litopenaeus schmitti, Litopenaeus occidentalis, microsatellites.
INTRODUCCIÓN
Las especies de camarón blanco, Litopenaeus schmitti y L. occidentalis, han sido históricamente importantes pilares de la industria pesquera nacional, así como las principales fuentes de ingreso económico para miles de familias de pescadores en las costas caribe y pacífica colombianas (Espinal et al., 2005). En la actualidad, como consecuencia de la sobreexplotación, el recurso camarón está en su nivel más bajo (Barreto et al., 2001; Rueda et al., 2006). El estudio de la estructura genética de una especie explotada permite la delimitación de stocks, así como la identificación de poblaciones vulnerables debido a una diversidad genética reducida y la definición de unidades poblacionales de manejo (Freeland, 2005). Varios tipos de marcadores moleculares como aloenzimas, RFLP, ADN mitocondrial y microsatélites han sido comúnmente usados en estudios de estructura genética (Benzie, 2000; Chu et al., 2003; Gusmão et al., 2005). Los microsatélites suelen considerarse como los más adecuados por ser marcadores codominantes al presentar un elevado grado de polimorfismo y poseer herencia mendeliana simple, además de que su genotipificación es automatizable (González, 2003). Estos son cadenas de ADN de secuencias simples repetidas, de longitud variable y que se distribuyen uniformemente en regiones no codificantes del genoma (Goldstein y Schlötterer, 1999). Para L. schmitti solo existen cinco loci microsatélites registrados en GenBank, con los cuales se ha estudiado la estructura poblacional a diferentes escalas geográficas (Espinosa et al., 2001; Maggioni et al., 2003; Borrell et al., 2004; Luvesuto, 2006). En el caso de L. occidentalis no existe información genética disponible. El bajo número de microsatélites específicos para L. schmitti ha llevado a recurrir a la amplificación cruzada con cebadores diseñados para especies cercanas como Litopenaues setiferus (Arena et al., 2003), resultando en amplificaciones cruzadas exitosas (Maggioni et al., 2003; Borrell et al., 2004, 2007; Luvesuto, 2006). Frente a la necesidad de conocer la estructura genética poblacional de las especies de camarones de aguas someras en Colombia, en este estudio se evaluó la utilidad para amplificar loci microsatélites de L. schmitti y L. occidentalis usando cebadores de regiones microsatélites diseñados para otras especies del género Litopenaeus, con el fin de aumentar el pool de cebadores disponibles para L. schmitti y de poner a disposición los primeros cebadores para L. occidentalis.
MATERIALES Y MÉTODOS
Para el estudio se utilizaron 162 individuos juveniles de camarón blanco del Caribe L. schmitti y 97 de camarón blanco del Pacífico L. occidentalis. Los individuos del Caribe provinieron de cuatro humedales costeros: laguna de Navío Quebrado en La Guajira (11º25'5"N, 73º05'2"W), Ciénaga Grande de Santa Marta en el Magdalena (10º59'29"N, 74º17'34"W), bahía de Barbacoas en Bolívar (10º13'45"N, 75º32'38"W) y bahía de Cispatá en Córdoba (09º22'59"N, 75º47'37"W). Los camarones del Pacífico provinieron de la bocana del río Anchicayá en Buenaventura (03º45'02"N, 77º11'26"W) y la bocana del río Rosario en Tumaco (01º47'36"N, 78º35'20"W), en la costa colombiana. Los animales hacen parte de la colección de referencia de crustáceos del Museo de Historia Natural Marina de Colombia (MHNMC) y se encuentran preservados en etanol al 96%, lo que garantiza la integridad de su ADN.
]]> El ADN se extrajo utilizando el kit DNeasy® Blood and Tissue de QIAGEN, a partir de muestras de músculo del tercer o cuarto segmento abdominal. Se realizó la verificación de la calidad y cantidad de ADN en geles de agarosa a una concentración de 0.8%, a partir de la intensidad de la fluorescencia emitida por el GelRedTM irradiado con luz UV y comparándola con el patrón de concentración del marcador de peso molecular HyperLadderTM IV (Bioline). Se utilizaron 15 cebadores específicos para regiones microsatélites de especies del género Litopenaeus, que se seleccionaron teniendo en cuenta el nivel de polimorfismo, la simplicidad de la unidad de repetición y el número de alelos de cada locus. De los 15 cebadores, cinco fueron aislados por Ball et al. (1998), a partir de una librería genómica de L. setiferus (Pse002, Pse004, Pse028, Pse035 y Pse036), tres por Cruz et al. (2002) para L. vannamei (Pvan0040, Pvan1758 y Pvan1815) y siete por Pérez et al. (2005) en esa misma especie (CNMMG339, CNM-MG362, CNM-MG367, CNM-MG406, CNM-MG430, CNMMG444 y CNM-MG494) (Tabla 1). El proceso de estandarización de la reacción de amplificación cruzada para cada locus partió de los protocolos descritos por esos autores (Tabla 2). La mezcla de reacción contenía 1 mM de amortiguador PCR (10X) (NH4), entre 1 y 2 mM de MgCl2, 200 µM de cada dNTPs (Bioline), entre 0.4 y 0.5 µM del cebador desalado correspondiente, 0.2 unidades por reacción de BiolaseTM DNA Polymerase, 2 µL del DNA molde y agua grado molecular hasta completar un volumen final de 13 µL. Las reacciones de amplificación fueron programadas en un termociclador Mastercycler® EP Gradient. El ajuste de la temperatura de hibridación se realizó partiendo de la registrada para L. setiferus (Ball et al., 1998) y L. vannamei (Cruz et al., 2002; Pérez et al., 2005). Para los cebadores de L. setiferus se utilizó un gradiente de temperatura entre 47 y 62 °C y para el trabajo con los cebadores de L. vannamei diseñados por Pérez et al. (2005), se realizó una modificación al protocolo inicial que consistió en eliminar el touchdown y adicionar un ciclo de amplificación con una temperatura de 55 °C por 30 segundos. En el caso de los cebadores evaluados por Cruz et al. (2002), se utilizaron temperaturas dos grados por debajo y dos grados por encima de la temperatura de hibridación para cada cebador. Para monitorear posibles problemas por contaminación en las corridas de amplificación se incluyeron controles negativos. El proceso de comprobación de amplificación se realizó en geles de agarosa a 2.5%, con un marcador de peso molecular HyperLadderTM V (Bioline). Una vez se estandarizaron las condiciones de PCR para los loci con los cuales se obtuvo amplificación exitosa, se procedió a la amplificación de las regiones microsatélite con los mismos cebadores marcados con diferentes fluorocromos (6-FAM, PET, NED y VIC), para hacer posible su posterior detección en un secuenciador automático. Esta técnica de análisis de fragmentos con cebadores fluoromarcados confiere rapidez y precisión en el análisis del tamaño de los alelos; además, es menos contaminante que otras técnicas de detección como son los geles de poliacrilamida. El proceso de genotipificación automática se realizó por medio de electroforesis capilar en un analizador genético Applied Biosystems 3500, con mezclas post-amplificación de los productos de PCR obtenidos a partir de los cebadores fluoromarcados. Los electroferogramas, que son gráficos donde se registra la intensidad de la señal fluorescente para cada alelo y la estimación de su tamaño en pares de bases dependiendo del número de repeticiones, fueron analizados en el programa GeneMapper® versión 4.1 (Applied Biosystems), el cual realiza la asignación de los genotipos automáticamente a partir de la información que se le suministra sobre cada uno de los cebadores (i.e. ámbito de peso obtenido en la amplificación y medida de repetición). El tamaño de los alelos se estimó con respecto a un marcador de peso molecular GeneScanTM LIZ-600® que se agregó a cada muestra durante la electroforesis. El análisis de diversidad genética para cada locus se hizo con el programa GenAlEx versión 6.41 (Peakall y Smouse, 2006) y la evaluación de la presencia de alelos nulos con el programa FreeNA (Chapuis y Estoup, 2007).
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
De los 15 cebadores evaluados en L. schmitti, los siguientes cinco permitieron una amplificación óptima: Pse028, Pse036, CNM-MG406, CNMMG430 y Lvan1815. Para L. occidentalis únicamente cuatro cebadores fueron apropiados para amplificar consistentemente microsatélites, estos son: Pse004, Pse036, Lvan1815 y CNM-MG406. Los cebadores Pse004 y CNM-MG367 fueron adecuados para que la ADN polimerasa amplificara regiones monomórficas en ambas especies (i.e. presentaron un solo alelo) y el cebador CNM-MG494 llevó a generar un patrón de bandas nucleotídicas que no permitió su lectura. El resto de los cebadores (Pse002, Pse035, CNM-MG339, CNM-MG362, CNM-MG444, Pvan0040, Pvan1758) no favorecieron el inicio de la elongación de ADN de ninguna de las dos especies estudiadas.
Todos los cebadores que favorecieron la amplificación de los fragmentos de ADN fueron polimórficos, presentaron un tamaño alélico entre 97 pb hasta 358 pb y un promedio de 18 ± 10 alelos/locus (rango entre 5 a 37) (Tablas 2 y 3). Los cebadores Pse028 y Pse036 presentaron un número alto de alelos y un bajo número de alelos nulos, además de tener una secuencia repetida perfecta, por lo que pueden ser considerados como buenos marcadores en estudios de genética de poblaciones de estas especies de camarones.
Se observó un déficit de heterocigotos para los microsatélites CNM-MG430 (HO 0.58, HE 0.75) y Lvan1815 (HO 0.43, HE 0.69) (Tablas 2 y 3), que puede ser explicado por la presencia de alelos nulos. Los alelos nulos se presentan cuando existe una mutación en la secuencia nucleotídica adyacente a los microsatélites, impidiendo que los cebadores se unan a la secuencia molde (Chapuis y Estoup, 2007). A diferencia del alelo ausente la ocurrencia del alelo nulo no se da al azar, lo que se obtiene es una falta de consistencia en la amplificación.
Este estudio demuestra la factibilidad del uso de la amplificación cruzada de microsatélites en las especies de camarones de aguas someras L. schmitti y L. occidentalis, realizada con cebadores desarrollados para otras especies del género Litopenaeus. La amplificación cruzada de regiones microsatélites es una técnica que ha sido usada con éxito en diferentes grupos (Bourret et al., 2008; Landínez-García et al., 2009; Shamblin et al., 2009) y que permite ahorrar tiempo y dinero al obviar el desarrollo de librerías genómicas. La comprobación de la utilidad de los cebadores heterólogos que amplificaron en L. schmitti, aumenta el banco de loci microsatélites disponibles para estudios poblacionales de esa especie. En el caso de L. occidentalis, este es el primer estudio donde se registran cebadores de loci microsatélites de utilidad para trabajos en genética de poblaciones.
]]>AGRADECIMIENTOS
Este estudio se realizó en el marco del proyecto "Identificación de humedales prioritarios para la protección de los estadios tempranos de vida del camarón de aguas someras en Colombia desde una perspectiva ecogenética", desarrollado por el Instituto de Investigaciones Marinas y Costeras (Invemar) y contó con la cofinanciación de Ecopetrol S. A., a través del convenio de colaboración DHS No. 133-09. Agradecemos al Museo de Historia Natural Marina de Colombia por el suministro de los tejidos utilizados en este estudio. También agradecemos el apoyo de la Universidad de Bogotá Jorge Tadeo Lozano sede Santa Marta, la Universidad del Magdalena y el Instituto de Genética de la Universidad Nacional de Colombia por el préstamo de equipos. Agradecemos a Giomar Borrero, por aportar sugerencias valiosas para solucionar situaciones durante este trabajo, así como a los revisores y editores anónimos que contribuyeron con sus comentarios a mejorar el documento.
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FECHA DE RECEPCIÓN: 29/03/2012 FECHA DE ACEPTACIÓN: 17/01/2013
*Contribución No. 1120 del Instituto de Investigaciones Marinas y Costeras (Invemar).
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