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<journal-title><![CDATA[Boletín de Investigaciones Marinas y Costeras - INVEMAR]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[INSTITUTO DE INVESTIGACIONES MARINAS Y COSTERAS "JOSE BENITO VIVES DE ANDRÉIS" (INVEMAR)    INSTITUTO DE INVESTIGACIONES MARINAS Y COSTERAS -JOSE BENITO VIVES DE ANDRÉIS- (INVEMAR)]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[RELACIONES FILOGEOGRÁFICAS DE ALGUNAS COLONIAS DE ALIMENTACIÓN Y ANIDACIÓN DE LA TORTUGA CAREY (ERETMOCHELYS IMBRICATA) EN EL PACÍFICO Y CARIBE COLOMBIANOS*]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[PHYLOGEOGRAPHIC RELATIONS OF SOME FEEDING AND NESTING OF HAWKSBILL TURTLE ROOKERIES (ERETMOCHELYS IMBRICATA) IN THE CARIBBEAN AND PACIFIC OF COLOMBIA]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The sea turtle Eretmochelys imbricata inhabits tropical waters of all oceans. IUCN considers this species to be critically endangered and its populations are affected by illegal international shell traffic. We present a pioneer research for Colombia and the Tropical Eastern Pacific, since populations located in 1) Parque Nacional Natural Gorgona, 2) Corales del Rosario y San Bernardo, and 3) Cabo de la Vela (Guajira) were genetically characterized using mtDNA control region sequences. Two new haplotypes for the Eastern Pacific were found, although with low diversity indexes (h: 0.2857 ± 0.1964; &pi;: 0.0009 ± 0.0008). Five haplotypes were found for Corales del Rosario and San Bernardo's populations, with high diversity indexes (h: 0.9333 ± 0.1217; &pi;: 0.0089 ± 0.0056). Finally, Cabo de la Vela population presented relatively high diversity indexes (h: 0.6429 ± 0.0539; &pi;: 0.0076 ± 0.0041). The genetic distance analysis revealed no significant differentiation between the Colombian Caribbean rookeries (&Phi;st = 0.002, p > 0.05; Fst = 0.083, p > 0.05). However, significant differences were found between Cabo de la Vela nesting rookery and eight nesting rookeries along the Caribbean Sea, which is a genetic pattern characteristic of sea turtles on a global scale. Our phylogeographic analysis revealed a deep split between the Atlantic and the Pacific-Indian Ocean. For Atlantic phylogroup no clear clustering between haplotypes was perceived, while in the Pacific-Indian phylogroup a possible distribution of isolation by distance was observed. The divergence time reported in this study between the Atlantic and Pacific-Indian lineages suggests a separation that may have occurred between the Pliocene and Pleistocene (7 Ma), possibly influenced by the rise of the Panama Isthmus.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Tortugas marinas]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">          <p align="center"><font size="4"><b>RELACIONES FILOGEOGR&Aacute;FICAS DE ALGUNAS COLONIAS DE ALIMENTACI&Oacute;N Y ANIDACI&Oacute;N DE LA TORTUGA CAREY (<i>ERETMOCHELYS IMBRICATA</i>) EN EL PAC&Iacute;FICO Y CARIBE COLOMBIANOS<a href="#*">*</a></b></font></p>          <p align="center"><font size="3"><b>PHYLOGEOGRAPHIC RELATIONS OF SOME FEEDING AND NESTING OF HAWKSBILL TURTLE ROOKERIES (<i>ERETMOCHELYS IMBRICATA</i>) IN THE CARIBBEAN AND PACIFIC OF COLOMBIA</b></font></p>        <p>&nbsp;</p>          <p><b>Natalia Trujillo-Arias<sup>1,2</sup>, Diego F. Amorocho<sup>3,4</sup>, Diana L&oacute;pez-&Aacute;lvarez<sup>5</sup> y Luz M. Mej&iacute;a-Ladino<sup>6</sup></b></p>          <p><i>1 Universidad del Quind&iacute;o, Armenia, Colombia. Carrera 15, Calle 12 Norte, Armenia, Quind&iacute;o, Colombia. <a href="mailto:natitrujillo@gmail.com">natitrujillo@gmail.com</a>.    <br>   2 Direcci&oacute;n actual: Museo Argentino de Ciencias Naturales, Avenida &Aacute;ngel Gallardo 470, Buenos Aires, Argentina.    <br>   3 Centro de Investigaci&oacute;n para el Manejo Ambiental y el Desarrollo (Cimad), Cali, Colombia.    <br>   4 World Wildlife Fund Inc (WWF), Carrera 35 No. 4A-25 Cali, Colombia. <a href="mailto:dfamorocho@wwf.org.co">dfamorocho@wwf.org.co</a>.    <br>   5 Instituto de Investigaci&oacute;n de Recursos Biol&oacute;gicos Alexander von Humboldt, Parque Cient&iacute;fico Agronatura Km 18 v&iacute;a Cali-Palmira, Palmira, Colombia. <a href="mailto:dianalopez430@gmail.com">dianalopez430@gmail.com</a>.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> 6 Instituto de Investigaciones Marinas y Costeras (Invemar). Parque Cient&iacute;fico Agronatura Km 18 v&iacute;a Cali-Palmira, Palmira, Colombia. <a href="mailto:mardeluz@hotmail.com">mardeluz@hotmail.com</a>.</i></p> <hr size="1" />          <p>&nbsp;</p>          <p><b>RESUMEN</b></p>          <p>La tortuga marina <i>Eretmochelys imbricata</i> habita en aguas tropicales de todos los oc&eacute;anos. La   especie est&aacute; considerada en peligro cr&iacute;tico de extinci&oacute;n por la IUCN y sus poblaciones se encuentran afectadas   por el tr&aacute;fico internacional de los escudos de su caparaz&oacute;n. La presente investigaci&oacute;n es pionera en Colombia y   en el oc&eacute;ano Pac&iacute;fico oriental tropical, ya que por medio de la amplificaci&oacute;n de secuencias de la regi&oacute;n control   del ADNmt se caracterizaron gen&eacute;ticamente las poblaciones de la especie localizadas en: 1) Parque Nacional   Natural Gorgona, 2) Corales del Rosario y San Bernardo y 3) Cabo de la Vela (La Guajira). Se encontraron dos   haplotipos nuevos para el Pac&iacute;fico oriental, aunque los &iacute;ndices de diversidad fueron bajos (h: 0.2857 &plusmn; 0.1964;   &pi;: 0.0009 &plusmn; 0.0008). Para la poblaci&oacute;n de Corales del Rosario y San Bernardo se encontraron cinco haplotipos   e &iacute;ndices de diversidad altos (h: 0.9333 &plusmn; 0.1217; &pi;: 0.0089 &plusmn; 0.0056). Finalmente, la poblaci&oacute;n del Cabo de la   Vela present&oacute; &iacute;ndices de diversidad relativamente altos (h: 0.6429 &plusmn; 0.0539; &pi;: 0.0076 &plusmn; 0.0041). Los an&aacute;lisis   de distancia gen&eacute;tica no revelaron diferenciaci&oacute;n significativa entre las colonias del Caribe colombiano (&Phi;st =   0.002, p &gt; 0.05; Fst = 0.083, p &gt; 0.05); sin embargo, s&iacute; se encontr&oacute; diferenciaci&oacute;n entre la colonia anidante del   Cabo de la Vela y ocho colonias anidantes en el mar Caribe, lo cual es un patr&oacute;n caracter&iacute;stico de la estructura   gen&eacute;tica a escala global de las tortugas marinas. Por medio de los an&aacute;lisis filogeogr&aacute;ficos se observ&oacute; una   profunda divisi&oacute;n entre el oc&eacute;ano Atl&aacute;ntico y la regi&oacute;n Pac&iacute;fico-&Iacute;ndica. Para el filogrupo del Atl&aacute;ntico no se   observ&oacute; una agrupaci&oacute;n clara entre los haplotipos, mientras que para el filogrupo del Pac&iacute;fico-&Iacute;ndico se observ&oacute;   una posible distribuci&oacute;n de aislamiento por distancia. El tiempo de divergencia registrado en este estudio entre   los linajes del Atl&aacute;ntico y Pac&iacute;fico-&Iacute;ndico sugiere una separaci&oacute;n que pudo haber ocurrido entre el Plioceno y el Pleistoceno (7 Ma), posiblemente influenciada por el levantamiento del istmo de Panam&aacute;.</p>          <p><i>PALABRAS CLAVES</i>: <i></i>Tortugas marinas, <i>Eretmochelys imbricata</i>, regi&oacute;n control ADN mitocondrial, diversidad gen&eacute;tica, an&aacute;lisis filogen&eacute;tico.</p>  <hr size="1" />          <p>&nbsp;</p>          <p><b>ABSTRACT</b></p>          <p>The sea turtle Eretmochelys   imbricata inhabits tropical waters of all oceans. IUCN considers this species to be critically endangered   and its populations are affected by illegal international shell traffic. We present a pioneer research for   Colombia and the Tropical Eastern Pacific, since populations located in 1) Parque Nacional Natural   Gorgona, 2) Corales del Rosario y San Bernardo, and 3) Cabo de la Vela (Guajira) were genetically   characterized using mtDNA control region sequences. Two new haplotypes for the Eastern Pacific were   found, although with low diversity indexes (h: 0.2857 &plusmn; 0.1964; &pi;: 0.0009 &plusmn; 0.0008). Five haplotypes   were found for Corales del Rosario and San Bernardo's populations, with high diversity indexes (h:   0.9333 &plusmn; 0.1217; &pi;: 0.0089 &plusmn; 0.0056). Finally, Cabo de la Vela population presented relatively high   diversity indexes (h: 0.6429 &plusmn; 0.0539; &pi;: 0.0076 &plusmn; 0.0041). The genetic distance analysis revealed no   significant differentiation between the Colombian Caribbean rookeries (&Phi;st = 0.002, p &gt; 0.05; Fst =   0.083, p &gt; 0.05). However, significant differences were found between Cabo de la Vela nesting rookery   and eight nesting rookeries along the Caribbean Sea, which is a genetic pattern characteristic of sea   turtles on a global scale. Our phylogeographic analysis revealed a deep split between the Atlantic and   the Pacific-Indian Ocean. For Atlantic phylogroup no clear clustering between haplotypes was perceived,   while in the Pacific-Indian phylogroup a possible distribution of isolation by distance was observed.   The divergence time reported in this study between the Atlantic and Pacific-Indian lineages suggests a   separation that may have occurred between the Pliocene and Pleistocene (7 Ma), possibly influenced by the rise of the Panama Isthmus.</p>          <p><i>KEYWORDS</i>: <i></i>Marine turtles, <i>Eretmochelys imbricata</i>, mitochondrial DNA control region, genetic diversity, phylogenetic analysis.</p>  <hr size="1" />          <p>&nbsp;</p>          ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>          <p>La tortuga carey (<i>Eretmochelys imbricata</i>) est&aacute; distribuida en todos los   oc&eacute;anos tropicales y subtropicales (Roberts <i>et al</i>., 2004) con una dieta particularmente   t&iacute;pica que incluye varias especies de esponjas y cnidarios marinos (Le&oacute;n y Bj&ouml;rndal,   2002). Esta especie ha sido fuertemente explotada por siglos debido al tr&aacute;fico ilegal   de los escudos de su caparaz&oacute;n (Mortimer <i>et al</i>., 2007); se cree que m&aacute;s de 10000   tortugas por a&ntilde;o han sido capturadas en d&eacute;cadas recientes en la regi&oacute;n del gran   Caribe (Canin, 1989), lo que ha ocasionado que muchas poblaciones anidantes   est&eacute;n gravemente reducidas o extintas como resultado de esa explotaci&oacute;n (Bowen   <i>et al</i>., 2007). Consecuentemente, la carey se encuentra categorizada como especie   en peligro cr&iacute;tico de extinci&oacute;n por la Uni&oacute;n Internacional para la Conservaci&oacute;n   de la Naturaleza (IUCN por sus siglas en ingl&eacute;s) (Mortimer y Donnelly, 2008) y   en el ap&eacute;ndice I de la Convenci&oacute;n sobre el Comercio Internacional de Especies Amenazadas de Fauna y Flora Silvestres, conocida como Cites (Traffic, 2002).</p>     <p>En el oc&eacute;ano Atl&aacute;ntico la tortuga carey ha presentado una disminuci&oacute;n   dr&aacute;stica de sus poblaciones; sin embargo, en comparaci&oacute;n con otras regiones presenta una distribuci&oacute;n y abundancia relativamente buena, registr&aacute;ndose poblaciones   anidantes y de forrajeo en la mayor&iacute;a de pa&iacute;ses del mar Caribe. En cambio, en el   oc&eacute;ano Pac&iacute;fico esta especie est&aacute; particularmente amenazada aproxim&aacute;ndose a la   extinci&oacute;n regional (Mortimer y Donnelly, 2008), especialmente en el oc&eacute;ano Pac&iacute;fico   oriental (OPO) donde alguna vez fueron consideradas comunes desde M&eacute;xico hasta   Ecuador (Cliffton <i>et al</i>., 1982), siendo actualmente la tortuga marina m&aacute;s escasa   de la regi&oacute;n (Cornelius, 1982). En 2007 la carey fue declarada funcionalmente   erradicada en el OPO, basados en los escasos registros de presencia de la especie y   distribuci&oacute;n de los arrecifes de coral en la regi&oacute;n (Mortimer y Donnelly, 2008; Gaos   <i>et al</i>., 2012). Sin embargo, seg&uacute;n un estudio reciente, se ha considerado a Ecuador,   M&eacute;xico, Nicaragua y El Salvador como pa&iacute;ses prioritarios para la conservaci&oacute;n de   esta especie en la regi&oacute;n, siendo este &uacute;ltimo, el pa&iacute;s de mayor prioridad, ya que   presenta la colonia de anidaci&oacute;n m&aacute;s grande para la carey en el Pac&iacute;fico Oriental   (Gaos <i>et al</i>., 2010).</p>     <p>A pesar de que se han identificado recientemente algunas poblaciones de   carey en el OPO (Gaos <i>et al</i>., 2010), hasta el momento no se han realizado estudios   gen&eacute;ticos en esas poblaciones. Los estudios se han realizado principalmente en   el oc&eacute;ano Atl&aacute;ntico (Bass <i>et al</i>., 1996; Bowen <i>et al</i>., 1996, 2004, 2006, 2007;   Bass, 1999; Gardu&ntilde;o-Andrade, 2000; Troeng <i>et al</i>., 2005; Lara-Ruiz <i>et al</i>., 2006;   Mortimer <i>et al</i>., 2007; V&eacute;lez-Zuazo <i>et al</i>., 2008; Blumenthal <i>et al</i>., 2009; Browne <i>et al</i>., 2010; Monz&oacute;n-Arg&uuml;ello <i>et al</i>., 2010, 2011; Leroux <i>et al</i>., 2012), mientras que las   poblaciones del Pac&iacute;fico-&Iacute;ndico han recibido una m&iacute;nima atenci&oacute;n (Okayama <i>et al</i>.,   1999; Nishizawa <i>et al</i>., 2009, 2010; Tabib <i>et al</i>., 2011; Nezhad <i>et al</i>., 2012).</p>     <p>En Colombia los estudios en tortugas marinas se han desarrollado   especialmente en la costa Caribe, enfoc&aacute;ndose en la conservaci&oacute;n de playas de   anidaci&oacute;n. A&uacute;n as&iacute;, el conocimiento sobre el estado de conservaci&oacute;n de esas especies,   su din&aacute;mica poblacional, historia de vida y amenazas es m&iacute;nimo, sin mencionar la   carencia de estudios en &aacute;reas de alimentaci&oacute;n que resultan m&aacute;s dif&iacute;ciles y costosos   (Rinc&oacute;n-D&iacute;az y Rodr&iacute;guez-Z&aacute;rate, 2004). Los trabajos que se han realizado para   la carey en playas de anidaci&oacute;n del Caribe colombiano han sido ejecutados en los   Parques Nacionales Naturales (PNN) Tayrona, Corales del Rosario y San Bernardo,   y en el Cabo de la Vela, Isla Fuerte e isla Tortuguilla (McCormick, 1997,1998;   Rinc&oacute;n <i>et al</i>., 2001; Arcos <i>et al</i>., 2002; Ceballos-Fonseca, 2004); mientras que para   la costa pac&iacute;fica se han registrado pocos avistamientos de la especie. Seg&uacute;n el trabajo   realizado por Gaos <i>et al</i>. (2010), para el Pac&iacute;fico colombiano se han registrado 25   individuos desde 1982 hasta 2009, siendo el PNN Gorgona, la regi&oacute;n del Pac&iacute;fico   colombiano con mayor registro de individuos, principalmente en actividades   relacionadas con la alimentaci&oacute;n.</p>     <p>De acuerdo con el dram&aacute;tico estado de la tortuga carey no solo en Colombia   sino tambi&eacute;n a nivel mundial, es necesario realizar estudios que brinden informaci&oacute;n   y comprensi&oacute;n de aspectos claves sobre su biolog&iacute;a, como el grado de aislamiento   entre colonias anidantes, v&iacute;as de migraci&oacute;n, el origen (colonia reproductora) de las   poblaciones forrajeras y la estructura y diversidad de sus poblaciones (Bowen <i>et al</i>.,   2007). Recientemente se han empleado t&eacute;cnicas moleculares que permiten analizar los   polimorfismos de ADN y los patrones de diversidad gen&eacute;tica de poblaciones naturales,   los cuales representan su genealog&iacute;a y el impacto relativo de eventos hist&oacute;ricos,   geogr&aacute;ficos y demogr&aacute;ficos (Avise, 2000; Nordborg e Innan, 2002). En particular los   polimorfismos del ADN mitocondrial (ADNmt) han sido usados en el estudio de linajes   maternos y estructura poblacional (Bowen <i>et al</i>., 1992), los cuales est&aacute;n &iacute;ntimamente   ligados con las caracter&iacute;sticas de historia de vida y procesos poblacionales hist&oacute;ricos,   &uacute;tiles para construir planes de conservaci&oacute;n (Reece <i>et al</i>., 2005).</p>     <p>El presente estudio es la primera investigaci&oacute;n en Colombia dirigida a   determinar el estado poblacional de los individuos de tortuga carey presentes en la   colonia de alimentaci&oacute;n m&aacute;s importante del Pac&iacute;fico colombiano ubicada en el PNN   Gorgona, y dos colonias del Caribe, una de anidaci&oacute;n en el Cabo de la Vela, La   Guajira, y una de alimentaci&oacute;n en Corales del Rosario y San Bernardo. El objetivo   es determinar por medio del an&aacute;lisis de la regi&oacute;n control del ADNmt, la diversidad   y estructura gen&eacute;tica de estas colonias y sus relaciones con las dem&aacute;s poblaciones   presentes en los oc&eacute;anos Atl&aacute;ntico, Pac&iacute;fico e &Iacute;ndico.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>&Aacute;REA DE ESTUDIO</b></p>     <p>Se analizaron siete muestras de individuos juveniles capturados en el PNN   Gorgona (2&deg;55'45"-3&deg;00'55" N y 78&deg;09'00"-78&deg;14'30"O), ubicado al sur occidente   del Pac&iacute;fico colombiano, y separado 56 km del continente. Isla Gorgona pertenece   pol&iacute;ticamente al municipio de Guapi (Cauca) y fue declarada &aacute;rea protegida mediante   la Resoluci&oacute;n Ejecutiva No. 141 de julio de 1984. Los sectores de muestreo fueron   los arrecifes coralinos de La Azufrada y Playa Blanca, localizados en el lado oriental   de la isla. Tambi&eacute;n se incluyeron dos muestras adicionales, la primera, corresponde   a un individuo capturado en el PNN Utr&iacute;a (Choc&oacute;); y la segunda, de otro capturado   en el PNN Sanquianga (Nari&ntilde;o) (<a href="#fig1">Figura 1</a>).</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="img/revistas/mar/v43n1/v43n1a08fig1.gif"><a name="fig1"></a></p>     <p>Por otro lado, se incluyeron muestras de tejido provenientes del Caribe   colombiano que hacen parte de la Colecci&oacute;n de Tejidos del Instituto Alexander   von Humboldt, las cuales corresponden a seis juveniles capturados en mar abierto   del archipi&eacute;lago Corales del Rosario y San Bernardo (Bol&iacute;var) y a 30 hembras   anidantes del Cabo de la Vela (La Guajira) (<a href="#fig1">Figura 1</a>). Dichas recolectas fueron realizadas bajo el Contrato de Acceso a los Recursos Gen&eacute;ticos No. 4 del 28 de   marzo de 2007, expedido por el Ministerio del Ambiente, Vivienda y Desarrollo   Territorial de Colombia.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>     <p>Extracci&oacute;n de ADN, amplificaci&oacute;n de PCR y determinaci&oacute;n de haplotipos   El ADN gen&oacute;mico fue aislado empleando el protocolo de FitzSimmons <i>et al</i>. (1997) para las muestras de tejido sangu&iacute;neo y el kit de extracci&oacute;n Tissue DNeasy   (Promega) para las muestras de tejido muscular. Un fragmento de 740 pb de la   regi&oacute;n control del ADN mitocondrial fue amplificado usando los cebadores LTEi9 (GGGAATAATCAAAAGAGAAGG-3') y H950 (GTCTCGGATTTAGGGGTTT-3')   (Abreu-Grobois <i>et al</i>., 2006). La regi&oacute;n amplificada en este estudio abarca un segmento   de 380 pb y uno de 480 pb previamente utilizados en estudios gen&eacute;ticos en poblaciones   de tortugas carey (Bass <i>et al</i>., 1996; Bowen <i>et al</i>., 1996; Bass, 1999; D&iacute;az-Fern&aacute;ndez <i>et al</i>., 1999; Nishizawa <i>et al</i>., 2010).</p>     <p>La amplificaci&oacute;n de la regi&oacute;n control de ADNmt se llev&oacute; acabo por medio de   la t&eacute;cnica de reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) usando una mezcla de PCR   de 25 &mu;L, la cual conten&iacute;a 50 ng/&mu;L de ADN total, 1 U de <i>Taq</i> polimerasa, 0.5 &mu;M de   cada cebador (IDT), 0.2 mM de dNTP's, 2.8 mM de MgCl2 y Buffer 1X (KCl 500   mM y 200 mM Tris-HCl pH 8.4). La desnaturalizaci&oacute;n, hibridaci&oacute;n y extensi&oacute;n se   realizaron a 94 &deg;C por 20 segundos, a 52 &deg;C por 30 segundos y a 72 &deg;C por 90 segundos,   respectivamente, durante un total de 30 ciclos; la primera desnaturalizaci&oacute;n y la &uacute;ltima   extensi&oacute;n fueron realizadas por cinco minutos. Los productos de PCR fueron purificados   con el m&eacute;todo de polietilenglicol al 20% (PEG 8000 y NaCl), para ser secuenciados   por electroforesis capilar multicolor en un equipo (ABI 310-3100) usando los mismos   cebadores empleados durante el proceso de PCR. Por &uacute;ltimo, las secuencias fueron   editadas y ensambladas usando el programa Sequencher 6.1 (Gene Code Corporation).</p>     <p><b>An&aacute;lisis de los datos    <br> Diversidad y estructura gen&eacute;tica</b></p>     <p>Para examinar la distribuci&oacute;n de los polimorfismos dentro de las secuencias   obtenidas se emple&oacute; el programa DnaSp (Librado y Rozas, 2009). Se determin&oacute; la   diversidad haplot&iacute;pica (h) y nucleot&iacute;dica (&pi;) para cada una de las colonias analizadas;   a su vez se cuantific&oacute; la diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica entre ellas por medio de un an&aacute;lisis   de comparaci&oacute;n de parejas de Fst (basada en la frecuencia convencional) (Raymond y   Rousset, 1995) y &Phi;st (Excoffier <i>et al</i>., 1992) usando 10000 permutaciones. Ese mismo   an&aacute;lisis fue realizado para determinar la conectividad entre la colonia anidante del Cabo   de la Vela con respecto a las dem&aacute;s colonias anidantes registradas en el Atl&aacute;ntico que   cuentan con informaci&oacute;n de haplotipos de 740 pb (V&eacute;lez-Zuazo <i>et al</i>., 2008; Browne <i>et al</i>., 2010 y Leroux <i>et al</i>., 2012). Por &uacute;ltimo, se realiz&oacute; un an&aacute;lisis jer&aacute;rquico de varianza   (Amova) para determinar c&oacute;mo se distribuye la variaci&oacute;n gen&eacute;tica entre los grupos   de haplotipos registrados para el Pac&iacute;fico y Caribe colombianos. Todos estos an&aacute;lisis   fueron realizados por medio de Arlequin V.3.11 (Excoffier <i>et al</i>., 2005).</p>     <p><b>An&aacute;lisis filogen&eacute;tico y tiempo de divergencia</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Para establecer las relaciones filogen&eacute;ticas entre los haplotipos de   este estudio y los registrados en Genbank para los oc&eacute;anos Atl&aacute;ntico, Pac&iacute;fico e   &Iacute;ndico, se construy&oacute; una red <i>median-joining</i> por medio del programa Network V 4.6 (Bandelt <i>et al</i>., 1999). La informaci&oacute;n de la frecuencia de cada haplotipo fue   obtenida de los trabajos realizados por V&eacute;lez-Zuazo <i>et al</i>. (2008), Browne <i>et al</i>. (2010), Nishizawa <i>et al</i>. (2010), Tabib <i>et al</i>. (2011) y Leroux <i>et al</i>. (2012). Los   loops ambiguos formados en la red resultante se resolvieron usando varios criterios   derivados de la teor&iacute;a de coalescencia: 1) Criterio de frecuencia: los haplotipos son   m&aacute;s probables a estar conectados a haplotipos con alta frecuencia que con aquellos   con frecuencia baja; 2) Criterio topol&oacute;gico: los haplotipos son m&aacute;s probables a   estar conectados con haplotipos centrales, que con haplotipos de los extremos; y 3)   Criterio geogr&aacute;fico: los haplotipos son m&aacute;s probables a estar conectados a haplotipos   de su misma poblaci&oacute;n o regi&oacute;n que a aquellos que est&aacute;n en poblaciones distantes   (Pfenninger y Posada, 2002). Los filogrupos de la red fueron identificados cuando un   grupo de haplotipos fue conectado por un solo haplotipo con m&iacute;nimas diferencias.</p>     <p>A su vez se realiz&oacute; un an&aacute;lisis filogen&eacute;tico para corroborar la existencia de   grupos monofileticos de haplotipos y estimar el tiempo de separaci&oacute;n entre las carey   de la regi&oacute;n Pac&iacute;fico-&Iacute;ndico &#91;se emplearon los haplotipos registrados en estudio para el   Pac&iacute;fico colombiano y los de Nishizawa <i>et al</i>. (2010) y Tabib <i>et al</i>. (2011)&#93; y las del   oc&eacute;ano Atl&aacute;ntico &#91;se emplearon los haplotipos registrados en este estudio para el Caribe   colombiano y los registrados por V&eacute;lez-Zuazo <i>et al</i>. (2008), Browne <i>et al</i>. (2010) y Leroux   <i>et al</i>. (2012)&#93;. Para esto se realizaron dos an&aacute;lisis probabil&iacute;sticos: 1) Inferencia bayesiana   por medio del programa MrBayes 3.1 (Ronquist y Huelsenbeck, 2003); cuatro cadenas de   Markov fueron corridas (una fr&iacute;a y tres calientes, utilizando el <i>default</i> del programa) por   5x10<sup>6</sup> generaciones con muestreo cada 1000 generaciones. Las probabilidades posteriores   fueron obtenidas para el &aacute;rbol consenso por regla de mayor&iacute;a. 2) M&aacute;xima verosimilitud   realizada empleando el programa PhyML v 3.1 (Guindon y Gascuel, 2003a), el soporte   de los nodos fue evaluado mediante Bootstrap no param&eacute;trico usando 500 r&eacute;plicas   (Felsenstein, 1895). En ambos m&eacute;todos el modelo de evoluci&oacute;n de secuencia empleado   fue (TrN + G) determinado por ModelTest 0.1.1 (Guindon y Gascuel, 2003b; Posada,   2008). Las especies empleadas como grupo externo fueron <i>Caretta caretta</i> (Genbank   Acc. Nos. EU179436.1 y EU179445.1), <i>Lepidochelys olivacea</i> (Genbank Acc. No. U40661.1) y <i>Lepidochelys kempii</i> (Genbank Acc. No. U40657.1).</p>     <p>Por &uacute;ltimo, para determinar los tiempos de divergencia del antecesor com&uacute;n   m&aacute;s reciente se utiliz&oacute; el programa Beast V 1.6.1 (Drummond y Rambaut, 2007). Dos   puntos de calibraci&oacute;n fueron empleados: 1) entre los g&eacute;neros <i>Caretta</i> y <i>Lepidochelys</i>,   16 millones de a&ntilde;os (Ma) (con un intervalo de confianza del 95% de 12 -20 Ma); y 2)   entre <i>Lepidochelys olivacea</i> y <i>L. kempii</i>, 5 Ma (con un intervalo de confianza de 95% de   4-6 Ma) (Naro-Maciel <i>et al</i>., 2008). Las condiciones empleadas para el an&aacute;lisis fueron:   modelo de evoluci&oacute;n molecular GTR usando Gamma + sitios invariantes con cuatro   categor&iacute;as Gamma, junto con la asunci&oacute;n de un reloj molecular relajado Lognormal con una tasa de sustituci&oacute;n por mill&oacute;n de a&ntilde;os de 0.018 (Monz&oacute;n-Arguello <i>et al</i>., 2011). Para todos los <i>prior</i> se emplearon los valores predeterminados por el programa, excepto   para la categor&iacute;a Tree Prior para la cual se us&oacute; el modelo Yule Process. Este modelo   fue seleccionado considerando: 1) el ajuste y convergencia de los datos empleando   dicho modelo; 2) el alto grado de divergencia gen&eacute;tica encontrado entre los linajes   de los oc&eacute;anos Pac&iacute;fico-&Iacute;ndico y Atl&aacute;ntico registrado en los an&aacute;lisis anteriores; 3) las   sugerencias de otros autores de considerar dos especies dentro del g&eacute;nero Eretmochelys   basadas en diferencias de coloraci&oacute;n y forma del caparaz&oacute;n &#91;<i>E. imbricata</i> para el oc&eacute;ano   Atl&aacute;ntico y <i>E. squamata</i> para el Pac&iacute;fico (Meylan, 1999)&#93;; y 4) considerando que los   intervalos de confianza obtenidos para los tiempos de divergencia obtenidos bajo un   modelo de coalescencia fueron demasiado grandes (ver Anexo 1).</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>RESULTADOS</b></p>     <p><b>Diversidad y estructura gen&eacute;tica</b></p>     <p>El an&aacute;lisis de las 45 secuencias analizadas revel&oacute; 34 sitios polim&oacute;rficos   en un segmento de 740 pb. Ese polimorfismo incluy&oacute; 28 transiciones, 17 entre   pirimidinas (T-C; C-T), 11 entre purinas (G-A; A-G) y 6 transversiones (4 entre C-A;   1 entre C-G y 1 entre T-G), las cuales definieron 10 haplotipos: seis previamente   registrados en el GenBank (Ei-A01, Ei-A02, Ei-A03, Ei-A09, Ei-A11 y Ei-A45),   uno registrado en la base de datos del Bitmar en M&eacute;xico (Ei-A63) (Alberto Abreu-Grobois, Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico. Mazatl&aacute;n, M&eacute;xico. 2008. Com. Pers.) y 3 haplotipos reportados por primera vez para el Pac&iacute;fico Oriental (Ei-PCol1, Ei-PCol2 y Ei-PCol3) (<a href="#tab1">Tabla 1</a>).</p>       <p align="center"><a href="img/revistas/mar/v43n1/v43n1a08tab1.gif" target="_blank">Tabla 1</a><a name="tab1"></a></p>     <p>En la colonia de alimentaci&oacute;n presente en los arrecifes coralinos del PNN   Gorgona se encontraron dos haplotipos nuevos (<a href="#tab2">Tabla 2</a>) hasta el momento &uacute;nicos   para la cuenca del Pac&iacute;fico Oriental Tropical; no obstante, dos secuencias similares   de 500 pb &#91;EiJ5 y EiJ8 (n&uacute;mero de acceso GenBank, AB485800.1 y AB485803.1,   respectivamente)&#93; fueron registrados en una colonia de alimentaci&oacute;n ubicada en las   islas Yaeyama, Jap&oacute;n (Nishisawa <i>et al</i>., 2010), las cuales son id&eacute;nticas hasta los   500 pb a los haplotipos Ei-P(Col1) y Ei-P(Col2), respectivamente. La diversidad   haplot&iacute;pica para la colonia del PNN Gorgona fue de 0.2857 &plusmn; 0.1964 y la diversidad   nucleot&iacute;dica fue de 0.0009 &plusmn; 0.0008 (<a href="#tab2">Tabla 2</a>). Para las dos muestras secuenciadas   del PNN Utr&iacute;a y Sanquianga se encontr&oacute; el haplotipo Ei-P(Col3) (<a href="#tab2">Tabla 2</a>), el cual   representa un registro nuevo para el Pac&iacute;fico oriental tropical, sin embargo, tambi&eacute;n   ha sido registrado en el golfo P&eacute;rsico como haplotipo Iran-3 (n&uacute;mero de acceso   GenBank GU997696) (Tabib <i>et al</i>., 2011).</p>       <p align="center"><img src="img/revistas/mar/v43n1/v43n1a08tab2.gif"><a name="tab2"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Para el &aacute;rea de alimentaci&oacute;n del PNN Corales del Rosario y San   Bernardo se registraron cinco haplotipos de seis individuos analizados. La   diversidad haplot&iacute;pica para esa colonia de alimentaci&oacute;n fue alta (h: 0.9333 &plusmn;   0.1217) comparada con otros &iacute;ndices encontrados en este estudio (<a href="#tab2">Tabla 2</a>). Por   &uacute;ltimo, para el &aacute;rea de anidaci&oacute;n del Cabo de la Vela se identificaron en total   cinco haplotipos, siendo el Ei-A11 el m&aacute;s frecuente, seguido del haplotipo Ei-A01. Los haplotipos Ei-A03 y Ei-A63 fueron registrados en esa colonia con una   baja frecuencia (<a href="#tab2">Tabla 2</a>).</p>     <p>Las comparaciones de parejas entre la colonia del Pac&iacute;fico y las   colonias del Caribe colombiano indicaron diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica significativa,   y ausencia de diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica significativa entre la colonia anidante del   Cabo de la Vela y la de alimentaci&oacute;n de Corales del Rosario y San Bernardo (&Phi;st   = 0.002, p &gt; 0.05; Fst = 0.083, p &gt; 0.05) (<a href="#tab3">Tabla 3</a>). El Amova obtenido soporta   la diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica encontrada entre el Pac&iacute;fico y Caribe colombiano,   con un 83.65% de la variaci&oacute;n causada por diferencias entre esas dos regiones   (p &lt; 0.01), mientras que el 14.91% de la variaci&oacute;n es causada por diferencias   dentro de cada regi&oacute;n; sin embargo, este &uacute;ltimo porcentaje no fue significativo   (p &gt; 0.05).</p>       <p align="center"><img src="img/revistas/mar/v43n1/v43n1a08tab3.gif"><a name="tab3"></a></p>     <p>Por otro lado, todas las comparaciones de distancia gen&eacute;tica realizadas   entre la colonia reproductiva del Cabo de la Vela y ocho colonias de anidaci&oacute;n   en el mar Caribe para las cuales se tiene informaci&oacute;n de haplotipos de 740 pb,   presentaron diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica significativa (<a href="#tab4">Tabla 4</a>). Las colonias que presentan mayor diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica con respecto a la colonia del Cabo de la   Vela fueron Guadalupe y Barbados-Leeward, mientras que las que presentaron   valores menores fueron Costa Rica y Nicaragua.</p>       <p align="center"><img src="img/revistas/mar/v43n1/v43n1a08tab4.gif"><a name="tab4"></a></p>     <p><b>An&aacute;lisis filogen&eacute;tico y tiempo de divergencia</b></p>     <p>La red <i>median-joining</i> m&aacute;s parsimoniosa mostr&oacute; dos filogrupos ampliamente   divergentes separados por 19 sustituciones (<a href="#fig2">Figura 2</a>). El primero conformado por   todos los haplotipos registrados para los oc&eacute;anos Pac&iacute;fico e &Iacute;ndico, presentando dos   clados, uno establecido alrededor del haplotipo Ei-P(Col3), el cual ha sido registrado   en este estudio para el Pac&iacute;fico colombiano adem&aacute;s del golfo P&eacute;rsico &#91;haplotipo   Iran-3 (Tabib <i>et al</i>., 2011)&#93;; esta agrupaci&oacute;n exhibe forma de estrella incluyendo los   haplotipos registrados para el PNN Gorgona y el golfo P&eacute;rsico, todos diferenciados   por una sustituci&oacute;n. El segundo clado est&aacute; formado alrededor del haplotipo Iran7   el cual fue registrado para el golfo P&eacute;rsico, no obstante, ese haplotipo tambi&eacute;n es   id&eacute;ntico a una de las secuencias registradas como haplotipo EiJ4 en las islas Yaeyama,   Jap&oacute;n (500 pb). Este clado tambi&eacute;n agrupa cuatro haplotipos diferenciados por una   sola sustituci&oacute;n, los cuales han sido registrados para Jap&oacute;n.</p>       <p align="center"><img src="img/revistas/mar/v43n1/v43n1a08fig2.gif"><a name="fig2"></a></p>     <p>El segundo filogrupo est&aacute; conformado por los haplotipos registrados para el   oc&eacute;ano Atl&aacute;ntico, el cual muestra dos clados divergentes separados por seis sustituciones. El primero tiene como haplotipo central a Ei-A01, uno de los m&aacute;s abundantes en el mar   Caribe; este clado exhibe una forma de estrella e incluye ocho haplotipos cercanamente   relacionados diferenciados por una sustituci&oacute;n, a excepci&oacute;n del Ei-A52, el cual est&aacute;   unido a Ei-A02. El segundo clado se distribuye alrededor de los haplotipos Ei-A11 y   Ei-A23; el primero es tambi&eacute;n uno de los haplotipos m&aacute;s abundantes en el mar Caribe,   y es central dentro de la red, el cual se encuentra unido a siete haplotipos diferenciados   por una sustituci&oacute;n y cinco haplotipos con una mayor diferenciaci&oacute;n (dos sustituciones).</p>     <p>En este mismo clado, se encuentra el haplotipo Ei-A23, principalmente observado en   M&eacute;xico y unido a los haplotipos Ei-41 y Ei-A22 registrados tambi&eacute;n para dicho pa&iacute;s pero   en menor frecuencia. Por &uacute;ltimo, los distintos m&eacute;todos de reconstrucci&oacute;n filogen&eacute;tica utilizados   (m&aacute;xima verosimilitud e inferencia bayesiana) generaron topolog&iacute;as altamente   concordantes revelando una profunda divisi&oacute;n entre los linajes de los oc&eacute;anos   Pac&iacute;fico-&Iacute;ndico y el Atl&aacute;ntico, con fuertes soporte en dichas agrupaciones. El an&aacute;lisis   de divergencia entre los linajes del oc&eacute;ano Atl&aacute;ntico y Pac&iacute;fico-&Iacute;ndico revel&oacute; un   tiempo de separaci&oacute;n de 7.2 Ma para dichas regiones (un intervalo de confianza del   95%, l&iacute;mite superior e inferior de: 2.2 a 9 Ma) (<a href="#fig3">Figura 3</a>).</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a href="img/revistas/mar/v43n1/v43n1a08fig3.gif" target="_blank">Figura 3</a><a name="fig3"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>DISCUSI&Oacute;N</b></p>     <p><b>Diversidad y estructura gen&eacute;tica</b></p>     <p>La diversidad observada en este estudio para la colonia de alimentaci&oacute;n del   PNN Gorgona es baja comparada con los &iacute;ndices de diversidad registrados para otras   colonias de alimentaci&oacute;n del oc&eacute;ano Pac&iacute;fico-&Iacute;ndico (golfo P&eacute;rsico, h: 0.69; e islas   Yaeyama, h: 0.78); sin embargo, es similar a la diversidad haplot&iacute;pica registrada   para la tortuga verde (<i>Chelonia mydas</i>) en el PNN Gorgona (h: 0.30, Amorocho <i>et al</i>., 2012). No obstante, los valores de diversidad nucleot&iacute;dica registrados para   ambas especies en la misma zona difieren (tortuga carey, &pi;: 0.0009; tortuga verde,   &pi;: 0.011); en parte, debido a las diferencias biol&oacute;gicas y ecol&oacute;gicas entre ambas   especies; por ejemplo, comportamiento solitario (<i>E. imbricata</i>) y gregario (<i>C. mydas</i>) (Sanches y Bellini, 1999), tipo de dieta (Naro-Maciel <i>et al</i>., 2008), &aacute;reas   de distribuci&oacute;n, fluctuaciones demogr&aacute;ficas y de proporci&oacute;n de sexos. Todas las   anteriores, pueden generar diferencias en el tama&ntilde;o efectivo de sus poblaciones,   y por ende distintos valores de diversidad; as&iacute; como tambi&eacute;n, el peque&ntilde;o tama&ntilde;o   muestral incluido de la colonia de carey en el PNN Gorgona. Sin embargo, a pesar de   lo anterior, la diversidad registrada en este estudio para la colonia del PNN Gorgona   es un reflejo del cr&iacute;tico estado de la especie en el Pac&iacute;fico colombiano.</p>     <p>Es posible, como se mencion&oacute; anteriormente, que la baja diversidad   registrada para la carey en esta regi&oacute;n de Colombia est&eacute; relacionada principalmente   con el peque&ntilde;o tama&ntilde;o muestral analizado en este estudio. Sin embargo, existen   otros aspectos que pueden estar determin&aacute;ndola, entre ellos, la erradicaci&oacute;n que ha   sufrido esta especie en los h&aacute;bitats m&aacute;s accesibles de la regi&oacute;n (Gaos <i>et al</i>., 2010)   y, al mismo tiempo, a la fuerte explotaci&oacute;n que soport&oacute; hasta mediados del siglo   veinte por la caza indiscriminada de los escudos de su caparaz&oacute;n, lo que conllev&oacute; a   una disminuci&oacute;n de las poblaciones de carey en el Pac&iacute;fico oriental, hasta el punto   de ser considera la especie m&aacute;s escasa de la regi&oacute;n e incluso extinta regionalmente   (Cliffton <i>et al</i>., 1982) hasta 2008, cuando se comprob&oacute; su presencia en el OPO (Gaos   <i>et al</i>., 2010).</p>     <p>As&iacute; mismo, otro factor que puede determinar la baja diversidad es que,   seg&uacute;n Bowen y Karl (2007), el Pac&iacute;fico oriental se considera la regi&oacute;n del oc&eacute;ano   m&aacute;s recientemente colonizada por la carey. Todos estos aspectos en conjunto pueden   estar implicando una disminuci&oacute;n de sus poblaciones, tanto por efecto antropog&eacute;nico   como por procesos de colonizaci&oacute;n, lo cual posiblemente gener&oacute; reducci&oacute;n   en el n&uacute;mero de individuos y, por ende, disminuci&oacute;n de la diversidad gen&eacute;tica   principalmente por efecto de deriva g&eacute;nica o por causa de un efecto fundador. Lo   anterior ha sido registrado para otros organismos, entre ellos <i>Dermochelys coriacea</i>   (Molfetti <i>et al</i>., 2013), <i>Podocnemis lewyana</i> (Restrepo <i>et al</i>., 2008) y <i>Tursiops aduncus</i> (Natoli <i>et al</i>., 2008). No obstante, para probar las hip&oacute;tesis de deriva g&eacute;nica   y/o efecto fundador es necesario aumentar el n&uacute;mero de individuos muestreados de   tortuga carey en el OPO.</p>     <p>Por otro lado, debido a los pocos estudios que se han realizado en el OPO   sobre la tortuga carey, a la fecha no es posible determinar los linajes contribuyentes a   la colonia de alimentaci&oacute;n presente en el PNN Gorgona; si bien los haplotipos EiJ5 y   EiJ8 presentan secuencias id&eacute;nticas a Ei-P(Col1) y Ei-P(Col2), respectivamente, dichos   haplotipos presentan una longitud de 520 pb, dejando por fuera aproximadamente tres   sitios polim&oacute;rficos &#91;posiciones 554, 576 y 577 (<a href="#tab1">Tabla 1</a>)&#93; que han sido registrados para la   regi&oacute;n control del ADNmt de las carey. Por otra parte, es importante resaltar el hallazgo   del haplotipo Ei-P(Col3) encontrado en los individuos de PNN Utr&iacute;a y Sanquianga,   el cual tambi&eacute;n ha sido registrado para el golfo P&eacute;rsico; esto m&aacute;s que considerarse   evidencia de posible flujo g&eacute;nico entre ambas colonias, es probablemente debido a que   el haplotipo Ei-P(Col3), seg&uacute;n la teor&iacute;a de coalescencia, puede ser considerado uno de   los m&aacute;s ancestrales de los oc&eacute;anos Pac&iacute;fico e &Iacute;ndico, ya que dicho haplotipo dentro de la   red median-joining presenta una ubicaci&oacute;n central en el filogrupo del Pac&iacute;fico-&Iacute;ndico, y   del cual derivan la mayor&iacute;a de los haplotipos registrados para el Pac&iacute;fico colombiano y   el golfo P&eacute;rsico (<a href="#fig2">Figura 2</a>).</p>     <p>Por lo anterior, a&uacute;n no es posible determinar el origen de los individuos   registrados para el Pac&iacute;fico colombiano ya que todos los haplotipos registrados   para dicha regi&oacute;n son considerados "hu&eacute;rfanos", pues no se conoce el origen de   las poblaciones. Es posible que muchos de esos individuos provengan de grupos de   anidaci&oacute;n vecinos como El Salvador, Ecuador y otros pa&iacute;ses, pero hasta el momento   esa informaci&oacute;n no est&aacute; disponible. Por lo tanto, la poblaci&oacute;n de carey del Pac&iacute;fico   colombiano debe ser considerada una unidad de manejo independiente, y no se   recomienda realizar eventos de recolonizaci&oacute;n.</p>     <p>Los valores de diversidad gen&eacute;tica encontrados en las colonias analizadas   para la regi&oacute;n del Caribe colombiano fueron relativamente altos comparados con los   &iacute;ndices de diversidad registrados para Cuba (h: 0.213; &pi;: 0.016), Guadalupe (h: 0.131;   &pi;: 0.003) y M&eacute;xico (h: 0.363; &pi;: 0.001), y similares a los de algunas poblaciones   como Antigua (h: 0.5511; &pi;: 0.0044), Puerto Rico (h: 0.600; &pi;: 0.0098), Nicaragua   (h: 0.612; &pi;: 0.018) y Rep&uacute;blica Dominicana (h: 0.669; &pi;: 0.0100) (Leroux <i>et al</i>.,   2012). Sin embargo, al comparar las dos localidades del Caribe colombiano, se   observa que la colonia del Cabo de la Vela presenta &iacute;ndices de diversidad m&aacute;s bajos   a los encontrados en Corales del Rosario y San Bernardo, debido posiblemente a la   dominancia de los haplotipos Ei-A11 y Ei-A01, los cuales est&aacute;n presentes en 43 y   40% de los individuos analizados. Dichos haplotipos son considerados los m&aacute;s   abundantes en el mar Caribe, ya que se encuentran registrados para la mayor&iacute;a de las   colonias de carey en la regi&oacute;n (Antigua, Barbados, Brasil, Costa Rica, Guadalupe,   Nicaragua, Puerto Rico e islas V&iacute;rgenes, entre otras). Sin embargo, a pesar de que en   la colonia del Cabo de la Vela dominan esos dos haplotipos, al realizar el an&aacute;lisis de   diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica entre ella y las dem&aacute;s colonias del mar Caribe (<a href="#tab4">Tabla 4</a>) se   observa diferenciaci&oacute;n estad&iacute;sticamente significativa con todas las colonias anidantes   analizadas, esto debido al comportamiento filop&aacute;trico y fidelidad al sitio de anidaci&oacute;n   de las hembras de tortugas marinas, lo cual las lleva a presentar una fuerte estructura   gen&eacute;tica entre colonias anidantes a escala global (Bass <i>et al</i>., 1996; Bowen y Karl,   2007). No obstante, colonias pr&oacute;ximas pueden estar interconectadas, esto se observa   entre la del Cabo de la Vela y la de Corales del Rosario y San Bernardo, ya que se   encontr&oacute; ausencia de diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica significativa entre ambas (&Phi;st = 0.002,   p &gt; 0.05; Fst = 0.083, p &gt; 0.05) (<a href="#tab3">Tabla 3</a>), indicando que la colonia del Cabo est&aacute;   contribuyendo a la de alimentaci&oacute;n de Corales del Rosario y San Bernardo.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Por otro lado, en la colonia de anidaci&oacute;n del Caribe colombiano se registr&oacute;   el haplotipo Ei-A63, el cual hasta el momento s&oacute;lo hab&iacute;a sido registrado en tres   individuos presentes en una colonia de alimentaci&oacute;n en Nicaragua (Robin ReLoux. Southwest Fisheries Science Center. La Jolla, Estados Unidos. 2009. Com. Pers.);   por lo cual el hallazgo de ese haplotipo en una hembra anidante del Cabo de la Vela es una posible evidencia de que la colonia anidante del Caribe colombiano es fuente   potencial de individuos para dicho pa&iacute;s. Por &uacute;ltimo, la colonia que se alimenta en el   PNN Corales del Rosario y San Bernardo present&oacute; &iacute;ndices de diversidad altos, los   cuales son caracter&iacute;sticos de los sitios de alimentaci&oacute;n de las tortugas marinas en   donde se congregan individuos de diferentes colonias de anidaci&oacute;n. Es importante   recalcar que en esa colonia se registraron dos haplotipos poco frecuentes en el mar   Caribe (Ei-A02 y Ei-A45), particularmente Ei-A02, registrado &uacute;nicamente para   Nicaragua y Costa Rica.</p>     <p><b>An&aacute;lisis filogen&eacute;tico y tiempo de divergencia</b></p>     <p>Por medio de la red de haplotipos se observ&oacute; una profunda divisi&oacute;n entre   los individuos de los oc&eacute;anos Atl&aacute;ntico y Pac&iacute;fico-&Iacute;ndico. En particular para el   filogrupo del Atl&aacute;ntico no se observ&oacute; una agrupaci&oacute;n clara entre los haplotipos,   esto mismo fue registrado por Monz&oacute;n-Arguello <i>et al</i>. (2011) y Leroux <i>et al</i>. (2012). En general, la agrupaci&oacute;n de los haplotipos en esta regi&oacute;n no se ajusta a un   patr&oacute;n claro de distribuci&oacute;n, ya que todos los pa&iacute;ses tienen haplotipos distribuidos   en diferentes clados. Por su parte el filogrupo del Pac&iacute;fico-&Iacute;ndico presenta un   patr&oacute;n filogeogr&aacute;fico diferente al Atl&aacute;ntico, ya que se observa cierto grado de   aislamiento geogr&aacute;fico entre sus haplotipos, si bien en la red <i>median-joining</i> se   observa que algunos haplotipos como Iran7, Ei-PCol1 y Ei-PCol2 son id&eacute;nticos   a algunos de Jap&oacute;n. Como se mencion&oacute; anteriormente esta similitud no puede ser   determinada con claridad hasta el momento, pues la longitud de dichas secuencias   deja por fuera varios sitios polim&oacute;rficos. Considerando lo anterior, se puede   observar que la mayor&iacute;a de haplotipos son exclusivos de cada pa&iacute;s, ya que de un   total de doce, cuatro son end&eacute;micos del golfo P&eacute;rsico, cinco de Jap&oacute;n y dos del   Pac&iacute;fico colombiano. Y solo un haplotipo es compartido entre Ir&aacute;n y el Pac&iacute;fico   colombiano (Ei-PCol3).</p>     <p>Esta estructuraci&oacute;n ha sido registrada incluso a menor escala; un trabajo   realizado por Mostafavi <i>et al</i>. (2011) empleando microsat&eacute;lites registra que dos islas   del golfo P&eacute;rsico que no est&aacute;n a m&aacute;s de 350 km de distancia presentan una fuerte   diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica. Tambi&eacute;n el trabajo realizado por Reece <i>et al</i>. (2005) registra   que la tortuga carey presenta patrones caracter&iacute;sticos de flujo g&eacute;nico restringido por   aislamiento por distancia a causa de su alta fidelidad al sitio de anidamiento y <i>natal   homing</i>. Es posible que este patr&oacute;n sea m&aacute;s marcado entre los oc&eacute;anos Pac&iacute;fico e   &Iacute;ndico, pues la distancia que hay entre estas dos regiones es de m&aacute;s de 10000 km (i.e. entre Ir&aacute;n y Jap&oacute;n la distancia es de aproximadamente 5000 km).</p>     <p>Por otro lado, los resultados presentes en esta investigaci&oacute;n soportan   el origen monofil&eacute;tico de los linajes de ADNmt para las carey del Atl&aacute;ntico y del Pac&iacute;fico-&Iacute;ndico, indicando un tiempo de divergencia entre dichos linajes   similar al registrado para el g&eacute;nero <i>Chelonia</i> (tiempo de divergencia entre   la tortuga verde del Atl&aacute;ntico e &Iacute;ndico-Pac&iacute;fico: 7 Ma con un un intervalo   de confianza del 95%: 1.92 y 13.37 Ma) y g&eacute;nero <i>Lepidochelys</i> (tiempo de   divergencia entre <i>L. kempii</i> distribuida en el oc&eacute;ano Atl&aacute;ntico y <i>L. oliv&aacute;cea</i>  del oc&eacute;ano Pac&iacute;fico: 5 Ma con un intervalo de confianza del 95%: 4 y 6 Ma)   (Naro-Maciel <i>et al</i>., 2008). Esos tiempos de divergencia indican una profunda   divisi&oacute;n ocurrida entre el Plioceno y el Pleistoceno, per&iacute;odos caracterizados por   grandes cambios clim&aacute;ticos y eventos geol&oacute;gicos, entre ellos el levantamiento   del istmo de Panam&aacute;, el cual es considerado como una de las dos barreras   primarias que separa la fauna marina tropical del Atl&aacute;ntico y el Pac&iacute;fico e influye   fuertemente los patrones de especiaci&oacute;n y biodiversidad (Bowen y Karl, 2007). Recientemente, O'Dea <i>et al</i>. (2007) publicaron informaci&oacute;n acerca de registros   f&oacute;siles en el istmo de Panam&aacute; que les permiti&oacute; determinar que la formaci&oacute;n   de esa barrera empez&oacute; hace aproximadamente 10 Ma y que la mayor&iacute;a de los   cambios biol&oacute;gicos y ambientales que ocurrieron dentro del mundo marino en   respuesta al levantamiento del istmo ya hab&iacute;an terminado hace 3.5 Ma. Por   lo tanto, el tiempo de divergencia registrado en este estudio concuerda con la   informaci&oacute;n geol&oacute;gica que se tiene hasta el momento de la formaci&oacute;n del istmo   de Panam&aacute;, indicando que si bien el cierre total se dio hace 3.5 Ma, su proceso   de levantamiento tuvo efecto en la fauna marina mucho antes de dicho cierre.</p>     <p>Por &uacute;ltimo, los an&aacute;lisis filogen&eacute;ticos y el tiempo de divergencia registrado en   este estudio para la tortuga carey, revelan una profunda e importante divergencia entre   los linajes de los oc&eacute;anos Pac&iacute;fico-&Iacute;ndico y Atl&aacute;ntico, indicando que posiblemente   dichos linajes deben ser considerados como especies plenas, considerando adem&aacute;s de   los resultados ac&aacute; expuestos, las diferencias en tama&ntilde;o y coloraci&oacute;n (Meylan, 1999),   as&iacute; como dieta y uso de h&aacute;bitat (Gaos <i>et al</i>., 2010) en cada regi&oacute;n (Pac&iacute;fico-&Iacute;ndico y   Atl&aacute;ntico). Sin embargo, es importante para este tipo de conclusi&oacute;n realizar estudios   m&aacute;s detallados, empleando tanto el an&aacute;lisis de m&aacute;s marcadores mitocondriales (i.e. citocromo oxidasa I y citocromo b, entre otros), como nucleares, que permitir&iacute;an   tener una apreciaci&oacute;n m&aacute;s completa de la historia de dichos linajes.</p>     <p><b>Implicaciones para la conservaci&oacute;n</b></p>     <p>La carey actualmente es considerada una de las especies de tortugas   marinas con mayor riesgo de extinci&oacute;n a nivel mundial, ya que sus poblaciones   han presentado disminuciones dr&aacute;sticas en toda su distribuci&oacute;n. En la actualidad,   las playas de anidaci&oacute;n que hist&oacute;ricamente recib&iacute;an cientos o miles de tortugas   cada a&ntilde;o, ahora reciben un poco m&aacute;s de una docena de hembras anidantes (Spotila, 2004; Bowen <i>et al</i>., 2007). Varios son los factores que han contribuido a la   disminuci&oacute;n sus poblaciones, entre ellos est&aacute; la caza ilegal por los escudos de   su caparaz&oacute;n, caza furtiva de huevos, destrucci&oacute;n de h&aacute;bitat, desarrollo costero y   captura incidental en pesquer&iacute;as (Mast <i>et al</i>., 2004). Sumado a lo anterior, una de   las tantas amenazas que presenta esta especie en nuestro pa&iacute;s es el desconocimiento   total de sus poblaciones, lo cual impide el establecimiento de estrategias de   conservaci&oacute;n eficaces.</p>     <p>Por lo anterior, esta investigaci&oacute;n es de gran importancia para la   conservaci&oacute;n de las carey en Colombia pues brinda informaci&oacute;n valiosa para   el establecimiento de estrategias de conservaci&oacute;n por parte de las autoridades   colombianas, ya que por medio de la identificaci&oacute;n de haplotipos de ADNmt, los   &iacute;ndices de diversidad, estructura y relaciones geneal&oacute;gicas se pudo determinar que:   1) La colonia de alimentaci&oacute;n presente en el PNN Gorgona es de gran importancia   para la toda la regi&oacute;n del OPO ya que presenta haplotipos nunca antes registrados   para el Pac&iacute;fico oriental, lo cual evidencia la necesidad de conservar esa colonia. Sin embargo la existencia de esos haplotipos hu&eacute;rfanos subrayan la necesidad de   muestreo adicional en el PNN Gorgona, as&iacute; como tambi&eacute;n, la necesidad de expandir   los an&aacute;lisis gen&eacute;ticos a otras colonias de anidaci&oacute;n y alimentaci&oacute;n a lo largo de las   costas del Pac&iacute;fico, lo cual brindar&iacute;a bases s&oacute;lidas para implementar estrategias de   conservaci&oacute;n en la regi&oacute;n (i.e. el corredor marino del Pac&iacute;fico oriental tropical, el   cual es una iniciativa dirigida por los gobiernos de Ecuador, Colombia, Panam&aacute; y   Costa Rica para asegurar la integridad ecol&oacute;gica de &aacute;reas marinas protegidas). 2) La   evidencia de haplotipos compartidos entre las colonias del Caribe colombiano y el   resto del Caribe, demuestran el papel esencial que tienen los planes de conservaci&oacute;n   entre los diferentes pa&iacute;ses de la regi&oacute;n para asegurar la protecci&oacute;n de todos los   estadios de vida de las carey, con el fin de minimizar los riesgos de mortalidad en la   regi&oacute;n y asegurar la protecci&oacute;n a largo plazo de la especie.</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p>Los autores quieren expresar sus m&aacute;s sinceros agradecimientos al Instituto   de Investigaciones Marinas y Costeras (Invemar), al Centro de Investigaci&oacute;n para el   Manejo Ambiental y Desarrollo (Cimad) y al Instituto de Investigaci&oacute;n de Recursos   Biol&oacute;gicos Alexander von Humboldt, por el apoyo financiero, t&eacute;cnico y log&iacute;stico   prestado a lo largo de &eacute;sta investigaci&oacute;n. Al Dr. Alberto Abreu-Grobois por su ayuda   en la identificaci&oacute;n de algunos haplotipos. Al Dr. Gustavo Sebasti&aacute;n Cabanne por   sus sugerencias en el an&aacute;lisis de los datos.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></p>     <!-- ref --><p>1 Abreu-Grobois, F., J. Horrocks, A. Formia, R. LeRoux, X. V&eacute;lez-Zuazo, P. Dutton, L. Soares, P. Meylan y   D. Browne. 2006. New mDNA Dloop primers which work for a variety of marine turtle species may   increase the resolution capacity of mixed stock analysis. 178-179. En: Frick, M., A. Panagopoulou,   A. Rees y K. Williams (Eds.). 26th Annual Symposium on Sea Turtle Biology and Conservation. Archelon, Creta. 376 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0122-9761201400010000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>2 Amorocho, D. F, F. A. Abreu-Grobois, P. H. Dutton y R. D. Reina. 2012. Multiple distant origins for   green sea turtles aggregating off Gorgona Island in the Colombian Eastern Pacific. PLoS ONE, 7:   1-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0122-9761201400010000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>3 Arcos, M., A. Barrero, G. Guar&iacute;n y P. Quintero. 2002. Establecimiento y comparaciones de caracter&iacute;sticas   estructurales de puntos focales de anidaci&oacute;n de tortugas marinas ya establecidos en el sector de   Arrecifes Parque Nacional Natural. Seminario de investigaci&oacute;n, Univ. Bogot&aacute; Jorge Tadeo Lozano,   Santa Marta. 54 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0122-9761201400010000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>4 Avise, J. C. 2000. Phylogeography: the history and formation of species. Harvard University Press,   Cambridge. 447 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0122-9761201400010000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>5 Bandelt, H. J., P. Forster y A. R&ouml;hl. 1999. Median-joining networks for inferring intraspecific phylogenies. Mol. Biol. Evol., 16 (1): 37-48.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0122-9761201400010000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>6 Bass, A. 1999. Genetic analysis to elucidate the natural history and behavior of hawksbill turtles   (<i>Eretmochelys imbricata</i>) in the wider Caribbean: a review and re-analysis. Chelonian Cons. Biol.,   2: 195-199.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0122-9761201400010000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>7 Bass, A., D. Good, K. Bjorndal, J. Richardson, Z. Hillis, J. Horrocks y B. Bowen. 1996. Testing models of   female reproductive migratory behavior and population structure in the Caribbean hawksbill turtle,   <i>Eretmochelys imbricata</i>, with mDNA sequences. Mol. Ecol., 5: 321-328.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0122-9761201400010000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>8 Blumenthal, J., F. Abreu-Grobois, T. Austin, A. Broderick, M. Bruford, M. Coyne, G. Ebanks-Petrie, A. Formia, P. Meylan, A. Meylan y B. Godley. 2009. Turtle groups or turtle soup: dispersal patterns of   hawksbill turtles in the Caribbean. Mol. Ecol., 18: 4841-4853.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0122-9761201400010000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>9 Bowen, B. y S. Karl. 2007. Population genetics and phylogeography of sea turtles. Mol. Ecol., 16: 4886-4907.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0122-9761201400010000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>10 Bowen, B. W, A. B. Meylan, J. P. Ross, C. J. Limpus, G. H. Balazs y J. C. Avise. 1992. Global population   structure and natural history of the green turtle (<i>Chelonia mydas</i>) in terms of matriarchal phylogeny. Evolution, 46: 865-881.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0122-9761201400010000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>11 Bowen, B., A. Bass, A. Garc&iacute;a-Rodr&iacute;guez, C. Diez, R. Van Dam, A. Bolten, K. Bj&ouml;rndal, M. Miyamoto   y R. Ferl. 1996. Origin of hawksbill turtles in a Caribbean feeding area as indicated by genetic   markers. Ecol. Appl., 6: 566-572.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0122-9761201400010000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>12 Bowen, B., A. Bass, S. Chow, M. Bostrom, K. Bjorndal, A. Bolten, T. Okuyama, B. Bolker, S. Epperly,   E. Lacasella, D. Shaver, M. Dodd, S. Hopkinsmurphy, J. Musick, M. Swingle, K. Baransky, W. Teas, W. Witzell y P. Dutton. 2004. Natal homing in juvenile loggerhead turtles (<i>Caretta caretta</i>). Mol. Ecol., 13: 3797-3808.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0122-9761201400010000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>14 Bowen, B., W. Grant y Z. Hillis-Starr. 2006. Mixed-stock analysis reveals the migrations of juvenile   hawksbill turtles (<i>Eretmochelys imbricata</i>) in the Caribbean Sea. Mol. Ecol., 16: 49-60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0122-9761201400010000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>15 Bowen, B., W. Grant, Z. Hillis-Starr, D. Shaver, K. Bj&ouml;rndal, A. Bolten y A. Bass. 2007. Mixed-stock   analysis reveals the migrations of juvenile hawksbill turtles (<i>Eretmochelys imbricata</i>) in the   Caribbean Sea. Mol. Ecol., 16: 49-60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0122-9761201400010000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>16 Browne, D. C., J. A. Horrocks y F. A. Abreu-Grobois. 2010. Population subdivision in hawksbill turtles   nesting on Barbados, West Indies, determined from mitochondrial DNA control region sequences. Conservation Genetics, 11: 1541-1546.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0122-9761201400010000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>17 Canin, J. 1989. International trade in sea turtle products. 27-29. En: Eckert, S. A., K. L. Eckert, y T. H. Richardson (Eds.). Proc. Ninth Annual Workshop on Sea Turtle Conservation and Biology, NOAA   Tech. Mem. NMFS-SEFC-232, Jekyll Island. Estados Unidos. 251 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0122-9761201400010000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>18 Ceballos-Fonseca, C. 2004. Distribuci&oacute;n de playas de anidaci&oacute;n y &aacute;reas de alimentaci&oacute;n de tortugas   marinas y sus amenazas en el Caribe colombiano. Bol. Invest. Mar. Cost., 33: 79-99.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0122-9761201400010000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>19 Cliffton, K., D. O. Cornejo y R. S. Felger. 1982. Sea turtles of the Pacific coast of Mexico. 199-209. En: Bjorndal, K. A. (Ed.). Biology and conservation of sea turtles. Smithsonian Institution Press,   Washington. 423 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0122-9761201400010000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>20 Cornelius, S. E. 1982. Status of sea turtles along the Pacific coast of Middle America. 211-220. En:   Bjorndal, K. A. (Ed.). Biology and conservation of sea turtles. Smithsonian Institution Press,   Washington. 423 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0122-9761201400010000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>21 D&iacute;az-Fern&aacute;ndez, R., T. Okayama, T. Uchiyama, E. Carrillo, G. Espinosa, R. Marquez, C. Diez y H. Koike. 1999. Genetic sourcing for the hawksbill turtle, <i>Eretmochelys imbricata</i>, in the northern   Caribbean region. Chelonian Cons. Biol., 2: 296-300.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0122-9761201400010000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>22 Drummond, A. J. y A. Rambaut. 2007. Beast: Bayesian evolutionary analysis by sampling trees. BMC   Evol. Biol., 7: 214.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0122-9761201400010000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>23 Excoffier, L, P. E. Smouse y J. M. Quattro. 1992. Analysis of molecular variance inferred from metric   distances among DNA haplotypes: application to human mitochondrial DNA restriction data. Genetics, 131: 479-491.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0122-9761201400010000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>24 Excoffier, L., G. Laval y S. Schneider. 2005. Arlequin: A software for population genetics data analysis. Genetic and Biometry Laboratory, University of Geneva, Ginebra. 141 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0122-9761201400010000800023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>25 Felsenstein, J. 1985. PHYLIP. The Phylogeny Inference Package, versi&oacute;n 3.5. American Naturalist, 125:   1-15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0122-9761201400010000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>26 FitzSimmons, N., A. Goldizen, J. Norman, C. Moritz, J. Miller y C. Limpus. 1997. Philopatry of male   marine turtles inferred from mitochondrial markers. Proc. Nat. Acad. Sci., 94: 8912-8917.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0122-9761201400010000800025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>27 Gaos, A., F. Abreu-Grobois, J. Alfaro-Shigueto, D. Amorocho, R. Arauz, A. Baquero, R. Brise&ntilde;o, D. Chac&oacute;n, C. Due&ntilde;as, C. Hasbun, M. Liles, G. Mariona, C. Muccio, J. Mu&ntilde;oz, W. Nichols, M. Pe&ntilde;a,   J. Seminoff, M. V&aacute;squez, J. Urteaga, B. Wallace, I. Ya&ntilde;ez y P. Z&aacute;rate. 2010. Signs of hope in   the eastern Pacific: international collaboration reveals encouraging status for the severely depleted   population of hawksbill turtles <i>Eretmochelys imbricata</i>. Oryx, 44: 595-601.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0122-9761201400010000800026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>28 Gaos, A., R. Lewison, B. Wallace, I. Ya&ntilde;ez, M. Liles, N. Wallace, A. Baquero, C. Hasbun, M. V&aacute;squez, J. Urteaga y F. Seminoff. 2012. Spatial ecology of critically endangered hawksbill turtles <i>Eretmochelys   imbricata</i>: implications for management and conservation. Mar. Ecol. Progr. Ser., 450: 181-194.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0122-9761201400010000800027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>29 Gardu&ntilde;o-Andrade, M. 2000. Fecundidad de la tortuga de carey <i>Eretmochelys imbricata</i> en Las Coloradas,   Yucat&aacute;n, M&eacute;xico. Cienc. Pesq., 14: 67-70.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0122-9761201400010000800028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>30 Guindon, S. y O. Gascuel. 2003a. A simple, fast, and accurate algorithm to estimate large phylogenies by   maximum likelihood. Syst. Biol., 52 (5): 696-704.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0122-9761201400010000800029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>31 Guindon, S. y O. Gascuel. 2003b. PhyML: A simple, fast and accurate algorithm to estimate large   phylogenies by maximum likelihood. System. Biol., 5: 696-704.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0122-9761201400010000800030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>32 Lara-Ruiz, P., G. L&oacute;pez, F. Santos y L. Soares. 2006. Extensive hybridization in hawksbill turtles   (<i>Eretmochelys imbricata</i>) nesting in Brazil revealed by mDNA analyses. Cons. Gen., 7: 773-781.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0122-9761201400010000800031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>33 Le&oacute;n, Y. y K. Bj&ouml;rndal. 2002. Selective feeding in the hawksbill turtle, an important predator in coral reef   ecosystems. Mar. Ecol. Prog. Ser., 245: 249-258.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0122-9761201400010000800032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>34 Leroux, R. A, H. P. Dutton, F. A. Abreu-Grobois, C. J. Lagueux, C. L. Campbell, E. Delcroix, J. Chevalier,   J. A. Horrocks, Z. Hillis-Starr, S. Tro&euml;ng, E. Harrison y S. Stapleton. 2012. Re-examination of   population structure and phylogeography of hawksbill turtles in the wider Caribbean using longer   mtDNA sequences. J. Heredity, 103 (6): 806-820.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0122-9761201400010000800033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>35 Librado, P. y J. Rozas. 2009. DnaSP v5: A software for comprehensive analysis of DNA polymorphism   data. Bioinformatics, 25: 1451-1452.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0122-9761201400010000800034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>36 Mast, R. B., B. J. Hutchnson y N. J. Pi Lcher. 2004. IUCN SSC Marine Turtle Specialist Group news first   quarter 2004. Marine Turtle Newsletter, 104: 21-22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0122-9761201400010000800035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>37 McCormick, C. C. 1997. Porque ellas tambi&eacute;n tienen derecho a seguir dejando huella. Diagn&oacute;stico actual   de las tortugas marinas del archipi&eacute;lago de San Andr&eacute;s, Providencia y Santa Catalina, Fase II. Coralina, San Andr&eacute;s, Colombia. 67 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0122-9761201400010000800036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>38 McCormick, C. C. 1998. Diagn&oacute;stico actual de las tortugas marinas del archipi&eacute;lago de San Andr&eacute;s,   Providencia y Santa Catalina. Coralina, San Andr&eacute;s, Colombia. 41 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0122-9761201400010000800037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>39 Meylan, A. 1999. Status of the hawksbill turtle (<i>Eretmochelys imbricata</i>) in the Caribbean region. Chelonian Cons. Biol., 2: 177-184.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0122-9761201400010000800038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>40 Molfetti, E., S. Torres Vilaca, J. Y. Georges, V. Plot y E. Delcroix. 2013. Recent demographic history and   present fine-scale structure in the Northwest Atlantic leatherback (<i>Dermochelys coriacea</i>) turtle   population. PLoS ONE, 8: 1-11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S0122-9761201400010000800039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>41 Monz&oacute;n-Arg&uuml;ello, C., C. Rico, A. Marco, P. L&oacute;pez y L. L&oacute;pez-Jurado. 2010. Genetic characterization   of eastern Atlantic hawksbill turtles at a foraging group indicates major undiscovered nesting   populations in the region. J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 387: 9-14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S0122-9761201400010000800040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>42 Monz&oacute;n-Arg&uuml;ello, C., N. Loureiro, C. Delgado, A. Marco, J. L&oacute;pez, M. G&oacute;mez y F. Abreu-Grobois. 2011. Pr&iacute;ncipe island hawksbills: Genetic isolation of an eastern Atlantic stock. J. Exp. Mar. Biol. Ecol.,   407: 345-354.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S0122-9761201400010000800041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>43 Mortimer, J. A. y M. Donnelly. 2008. <i>Eretmochelys imbricata</i>. IUCN red list of threatened species v. 2010.1. See <a href="http://www.iucnredlist.org" target="_blank">http://www.iucnredlist.org</a>. 01/04/2014.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S0122-9761201400010000800042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>44 Mortimer, J., M. Donnelly, A. Meylan y P. Meylan. 2007. Critically endangered hawksbill turtles:   Molecular genetics and the broad view of recovery. Mol. Ecol., 16: 3516-3517.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000171&pid=S0122-9761201400010000800043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>45 Mostafavi, G., S. Shahnavaz, M. Noroozi, M. R. Fatemi, M. H. Shahhosseiny y A. Mahvari. 2011. Population genetic of <i>Eretmochelys imbricata</i> in two Islands in the northern part of the Persian Gulf   using microsatellite markers. J. Mar. Sci. Eng., 1: 69-73.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000173&pid=S0122-9761201400010000800044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>46 Naro-Maciel, E., M. Le, N. N. FitzSimmons y G. Amato. 2008. Evolutionary relationships of marine   turtles: a molecular phylogeny based on nuclear and mitochondrial genes. Mol. Phyl. Evol., 2:   659-662.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000175&pid=S0122-9761201400010000800045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>47 Natoli, A., E. M. Victor, A. Peddemors y E. Hoelzel. 2008. Population structure of bottlenose dolphins   (<i>Tursiops aduncus</i>) impacted by bycatch along the east coast of South Africa. Cons. Gen., 9: 627-636.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000177&pid=S0122-9761201400010000800046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>48 Nezhad, S. R., E. Modheji y H. Zolgharnein. 2012. Polimorphism analysis of mitochondrial DNA   control region of hawksbill turtles (<i>Eretmochelys imbricata</i>) in the Persian Gulf. J. Fish. Aq. Sci., 7: 339-345.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000179&pid=S0122-9761201400010000800047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>49 Nishizawa, H., J. Okuyama, O. Abe, M. Kobayashi, K. Yoseda y N. Arai. 2009. Genetic diversity of the   green turtle nesting populations in Yaeyama Archipelago, Japan. Proc 4th International Symposium   on Seastar2000 and Asian Bio-logging Science, 27: 15-17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000181&pid=S0122-9761201400010000800048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>50 Nishizawa, H., J. Okuyama, M. Kobayashi, O. Abe y N. Arai. 2010. Comparative phylogeny and historical   perspectives on population genetics of the Pacific Hawksbill (<i>Eretmochelys imbricata</i>) and green   turtles (<i>Chelonia mydas</i>), inferred from feeding populations in the Yaeyama Islands, Japan. Zool. Sci., 27: 14-18.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000183&pid=S0122-9761201400010000800049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>51 Nordborg, M. y H. Innan. 2002. Molecular population genetics. Curr. Opin. Plant. Biol., 5: 69-73.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000185&pid=S0122-9761201400010000800050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>52 O'Dea, A., J. Jackson, H. Fortunato, J. Smith, L. D'Croz, K. Johnson y J. Todd. 2007. Environmental   change preceded Caribbean extinction by 2 million years. Proc. Nat. Acad. Sci., 104 (13):   5501-5006.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000187&pid=S0122-9761201400010000800051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>53 Okayama, T., R. D&iacute;az-Fern&aacute;ndez, M. Baba, O. Halim, N. Azeno y H. Koike. 1999. Genetic diversity of   the hawksbill turtle in the Indo-Pacific and Caribbean Regions. Chelonian Cons. Biol., 2: 362-367.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000189&pid=S0122-9761201400010000800052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>54 Pfenninger, M. y D. Posada. 2002. Phylogeographic history of the land snail <i>Candidula unifasciata</i>  (Helicellinae, Stylommatophora): fragmentation, corridor migration, and secondary contact. Evolution, 56 (9): 1776-1788.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000191&pid=S0122-9761201400010000800053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>55 Posada, D. 2008. jModelTest: phylogenetic model averaging. Mol. Biol. Evol., 25 (7): 1253-1256.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000193&pid=S0122-9761201400010000800054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>56 Raymond, M. y F. Rousset. 1995. An exact test for population differentiation. Evolution, 49: 1280-1283.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000195&pid=S0122-9761201400010000800055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>57 Reece, J. S., T. A. Castoe y C. L. Parkinson. 2005. Historical perspectives on population genetics and   conservation of three marine turtle species. Cons. Gen., 6: 235-251.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000197&pid=S0122-9761201400010000800056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>58 Restrepo, A, C. B. Brian y V. P. P&aacute;ez. 2008. Genetic variability in the Magdalena river turtle, <i>Podocnemis   lewyana</i> (Dum&eacute;ril, 1852), in the Mompos depression, Colombia. Actual. Biol., 89: 151-159.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000199&pid=S0122-9761201400010000800057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>60 Rinc&oacute;n-D&iacute;az, M. P. y C. J. Rodr&iacute;guez-Z&aacute;rate. 2004. Characterization of nesting and feeding areas of   sea turtles in San Bernardo Archipelago, Colombian Caribbean. Bulletin of Marine and Coastal   Research, 33: 137-158.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000201&pid=S0122-9761201400010000800058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>61 Rinc&oacute;n, M. P., D. F. Rivera, C. J. Rodr&iacute;guez y J. P. Tello. 2001. Establecimiento y caracterizaci&oacute;n   estructural de puntos focales de anidaci&oacute;n en el sector de Arrecifes, Parque Nacional Natural   Tayrona, Caribe colombiano. Seminario de investigaci&oacute;n, Univ. Bogot&aacute; Jorge Tadeo Lozano, Santa   Marta. 67 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000203&pid=S0122-9761201400010000800059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>62 Roberts, M., T. Schwartz y S. Karl. 2004. Global population genetic structure and male-mediated gene   flow in the green sea turtle (<i>Chelonia mydas</i>): analysis of microsatellite loci. Genetics, 166: 1857-1870.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000205&pid=S0122-9761201400010000800060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>63 Ronquist, F. y J. P. Huelsenbeck. 2003. Mrbayes 3: Bayesian phylogenetic inference under mixed models. Bioinformatics, 19:1572-1574.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000207&pid=S0122-9761201400010000800061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>64 Sanches, T. M. y C. Bellini. 1999. Juveniles <i>Eretmochelys imbricata</i> and <i>Chelonia mydas</i> in the   Archipelago of Fernando de Noronha, Brazil. Chelonian Cons. Biol., 3: 308-311.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000209&pid=S0122-9761201400010000800062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>65 Spotila, J. R. 2004. Sea turtles: a complete guide to their biology, behavior, and conservation. The Johns   Hopkins University Press and Oakwood Arts, Baltimore, EE. UU. 240 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000211&pid=S0122-9761201400010000800063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>66 Tabib, M., H. Zolgharnein, M. Mohammadi, M. Salari-Aliabadi, A. Qasemi, S. Roshani, H. Rajabi-Maham   y F. Frootan. 2011. mDNA variation of the critically endangered hawksbill turtle (<i>Eretmochelys   imbricata</i>) nesting on Iranian islands of the Persian Gulf. Gen. Mol. Res., 3: 1499-1503.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000213&pid=S0122-9761201400010000800064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>67 Traffic. 2002. Revisi&oacute;n de Cites sobre la explotaci&oacute;n, comercio y manejo de tortugas marinas en las   Antillas menores, Centro Am&eacute;rica, Colombia y Venezuela. Informe interino de un estudio   comisionado por Traffic Internacional a nombre de Cites, Santiago de Chile. 17 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000215&pid=S0122-9761201400010000800065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>68 Troeng, S., P. Dutton y D. Evans. 2005. Migration of hawksbill turtles <i>Eretmochelys imbricata</i> from   Tortuguero, Costa Rica. Ecography, 28: 394-402.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000217&pid=S0122-9761201400010000800066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>69 V&eacute;lez-Zuazo, X., W. Ramos, R. Van Dam, C. Diez, A. Abreu-Grobois y B. Witherington. 2008. Dispersal, recruitment and migratory behavior in a hawksbill sea turtle aggregation. Mol. Ecol., 17: 839-853.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000219&pid=S0122-9761201400010000800067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>FECHA DE RECEPCI&Oacute;N: 22/06/2012&nbsp;  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; FECHA DE ACEPTACI&Oacute;N: 16/03/2014</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><i><a name="*">*</a>Contribuci&oacute;n No. 1143 del Instituto de Investigaciones Marinas y Costeras (Invemar).</i></p> </font>      ]]></body><back>
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