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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[El estrés por temperatura provoca necrosis en tabaco negro; cuantificación por análisis de imágenes]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Black tobacco (Nicotiana tabacum L.) is an important cash crop in Cuba; it is used in the manufactory of Habano cigars. Biotic and abiotic factors affect it, so the studies of physiological damages caused by stress are valuable. The aim of this research was to quantify the effects of temperature stress causing necrotic damage in leaves and to determine the accumulation of hydrogen peroxide (H2O2) in situ on the tissues of Nicotiana tabacum L. (variety Havana-2000). Different treatments of temperature were applied (4 ºC, 25 ºC, 45 ºC and 60 ºC) in leaves of 4 weeks old plants; the necrosis was revealed with trypan blue solution. The area of peroxide accumulation (H2O2) in tissues of complete plants 7 days after germination, submitted to the same stress conditions, was determined with DAB. The percentage of necrotic area and of accumulation of H2O2 was measured using the ImageJ software. It can acquire, display, edit, enhance, and analyze images. It was demonstrated that leaves treated to temperature of 4 ºC, independently of the time of exhibition, presented a bigger necrotic area (35%) in comparison with the rest of the treatments. The areas with H2O2 accumulation in situ were higher in the stress treatments with higher temperatures (45 ºC and 60 ºC). The detection and quantification of the necrosis produced by extreme temperatures combining the trypan blue method with the analysis of images is a useful tool to evaluate damages produced by temperature stress and it could be used to evaluate cell damages provoked by other types of stress.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align=right><font face="verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULO DE INVESTIGACI&Oacute;N</b></font></p>     <p><font size="3"><b> El estr&eacute;s por temperatura provoca necrosis en tabaco negro; cuantificaci&oacute;n por an&aacute;lisis de im&aacute;genes </b></font></p>     <p><font size="2">Temperature stress provoke necrosis in black tobacco; quantification by image analysis</font></p>     <p><i>Adriana Navarro Borrell<sup>1</sup> , Rosa Rod&eacute;s<sup>2</sup> , Patricia Ortega-Rod&eacute;s<sup>3</sup> , Eduardo Ortega<sup>4</sup></i></p>     <p> <sup>1</sup> Licenciada en Biolog&iacute;a, Laboratorio de Fisiolog&iacute;a Vegetal, Departamento de Biolog&iacute;a Vegetal, Facultad de Biolog&iacute;a, Universidad de La Habana, La Habana. <a href="mailto:adria@fq.uh.cu">adria@fq.uh.cu</a>    <br> <sup>2</sup> Doctora en Ciencias Biol&oacute;gicas. Profesor Titular, Laboratorio de Fisiolog&iacute;a Vegetal, Departamento de Biolog&iacute;a Vegetal, Facultad de Biolog&iacute;a, Universidad de La Habana, La Habana. <a href="mailto:rrodes@fq.uh.cu">rrodes@fq.uh.cu</a>    <br> <sup>3</sup> MSc. Biolog&iacute;a, Laboratorio de Fisiolog&iacute;a Vegetal, Departamento de Biolog&iacute;a Vegetal, Facultad de Biolog&iacute;a, Universidad de La Habana, La Habana. <a href="mailto:Vegetalportega@fq.uh.cu">Vegetalportega@fq.uh.cu</a>    <br> <sup>4</sup> Doctor en Ciencias Biol&oacute;gicas. Profesor Titular, Laboratorio de Fisiolog&iacute;a Vegetal, Departamento de Biolog&iacute;a Vegetal, Facultad de Biolog&iacute;a, Universidad de La Habana, La Habana. <a href="mailto:eortega@fq.uh.cu">eortega@fq.uh.cu</a>    <br> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Recibido: abril 15 de 2008 Aprobado: noviembre 24 de 2008</p>  <hr>      <p><b>Resumen</b></p>     <p> El tabaco negro (<i>Nicotiana tabacum</i> L.) es un importante cultivo econ&oacute;mico en Cuba por su uso en la manufactura de puros Habanos. Factores bi&oacute;ticos y abi&oacute;ticos lo afectan, de ah&iacute; que sea valioso el estudio de los da&ntilde;os fisiol&oacute;gicos que le produce el estr&eacute;s. El objetivo de este trabajo fue cuantificar los efectos del estr&eacute;s por temperatura sobre el da&ntilde;o por necrosis en hojas, y determinar la acumulaci&oacute;n de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno (H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>) <i>in situ</i> en los tejidos de <i>Nicotiana tabacum</i> L. (variedad Habana-2000). Se aplicaron diferentes tratamientos de temperatura (4 &ordm;C, 25 &ordm;C, 45 &ordm;C y 60 &ordm;C) a hojas de plantas de 4 semanas de edad; la necrosis se revel&oacute; con soluci&oacute;n de azul de tripano. El &aacute;rea de tejidos con acumulaci&oacute;n de per&oacute;xido (H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>) en pl&aacute;ntulas completas de 7 d&iacute;as de edad, sometidas a las mismas condiciones de estr&eacute;s, se determin&oacute; con DAB. Se estim&oacute; el porcentaje de &aacute;rea necrosada y de acumulaci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> utilizando el programa de an&aacute;lisis y procesamiento de im&aacute;genes ImageJ. Este programa es capaz de adquirir, mostrar, editar, resaltar y analizar im&aacute;genes. Se demostr&oacute; que las hojas sometidas a 4 &ordm;C, independientemente del tiempo de exposici&oacute;n, presentaron una mayor &aacute;rea necrosada (35%) en comparaci&oacute;n con el resto de los tratamientos. Las &aacute;reas con acumulaci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> <i>in situ</i> fueron mayores en los tratamientos de estr&eacute;s por temperaturas altas (45 y 60 oC). La detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de la necrosis producida por temperaturas extremas, combinando el m&eacute;todo del azul de tripano con el an&aacute;lisis de im&aacute;genes, es una herramienta &uacute;til para valorar los da&ntilde;os producidos por estr&eacute;s de temperaturas y pudiera ser utilizado para valorar los da&ntilde;os celulares provocados por otros tipos de estr&eacute;s.</p>     <p><b>Palabras clave</b>: variedad-Habana-2000, especies reactivas de ox&iacute;geno, H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>.</p>      <p><b>Abstract</b></p>     <p> Black tobacco (<i>Nicotiana tabacum</i> L.) is an important cash crop in Cuba; it is used in the manufactory of Habano cigars. Biotic and abiotic factors affect it, so the studies of physiological damages caused by stress are valuable. The aim of this research was to quantify the effects of temperature stress causing necrotic damage in leaves and to determine the accumulation of hydrogen peroxide (H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>) <i>in situ</i> on the tissues of <i>Nicotiana tabacum</i> L. (variety Havana-2000). Different treatments of temperature were applied (4 &ordm;C, 25 &ordm;C, 45 &ordm;C and 60 &ordm;C) in leaves of 4 weeks old plants; the necrosis was revealed with trypan blue solution. The area of peroxide accumulation (H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>) in tissues of complete plants 7 days after germination, submitted to the same stress conditions, was determined with DAB. The percentage of necrotic area and of accumulation of H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> was measured using the ImageJ software. It can acquire, display, edit, enhance, and analyze images. It was demonstrated that leaves treated to temperature of 4 &ordm;C, independently of the time of exhibition, presented a bigger necrotic area (35%) in comparison with the rest of the treatments. The areas with H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> accumulation <i>in situ</i> were higher in the stress treatments with higher temperatures (45 &ordm;C and 60 &ordm;C). The detection and quantification of the necrosis produced by extreme temperatures combining the trypan blue method with the analysis of images is a useful tool to evaluate damages produced by temperature stress and it could be used to evaluate cell damages provoked by other types of stress.</p>     <p><b>Key words</b>: Habana-2000-variety, reactive oxygen species, H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>.</p>      <p><b>Introducci&oacute;n</b></p>      <p> En Cuba se produce un tabaco negro (<i>Nicotiana tabacum</i> L.) de muy alta calidad, con el cual se manufacturan los famosos puros Habanos. La variedad Habana-2000 ocupa m&aacute;s del 50% del &aacute;rea sembrada en Cuba para producir la hoja que se usa como capa para cubrir y dar terminaci&oacute;n a los Habanos (Guerra et &aacute;l., 2000). Aunque esta variedad fue seleccionada por su resistencia a muchas de las principales enfermedades del tabaco, es susceptible a otras como el virus del mosaico (M&eacute;ndez-Barcel&oacute; et &aacute;l., 2007); su valor econ&oacute;mico es tal que merece se profundice en su fisiolog&iacute;a ante condiciones de estr&eacute;s. </p>      <p> Todas las plantas est&aacute;n sometidas a factores de estr&eacute;s, tanto abi&oacute;ticos como bi&oacute;ticos; las especies reactivas de ox&iacute;geno (ERO), principalmente el per&oacute;xido (H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>), participan como se&ntilde;ales en la fisiolog&iacute;a de las mismas, y tienen un papel clave en la interacci&oacute;n cruzada entre las se&ntilde;ales provocadas tanto por estr&eacute;s bi&oacute;tico como abi&oacute;tico (Fujita et &aacute;l., 2006). </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> La temperatura es uno de los factores que mayor influencia tiene sobre el desarrollo de los cultivos y las variaciones en este par&aacute;metro pueden iniciar otras manifestaciones de estr&eacute;s durante las diferentes &eacute;pocas del a&ntilde;o. Las temperaturas a las que se someten los cultivos en el campo son generalmente altas; los valores medios anuales de temperatura del aire en Cuba est&aacute;n entre 24 &ordm;C y 26 &ordm;C. La temporada de noviembre a abril es menos calurosa y se conoce como invierno, mientras que los meses de mayo a octubre, m&aacute;s calurosos, son el verano. Las temperaturas m&aacute;ximas y m&iacute;nimas absolutas registradas son de 38,6 &ordm;C (agosto de 1969) y 0,6 &ordm;C (febrero de 1996). Como es t&iacute;pico en los climas tropicales, la variaci&oacute;n diaria de la temperatura puede ser mayor que la anual.</p>      <p> En las plantas la necrosis celular es un evento que se define como la muerte accidental, pasiva e indiscriminada de c&eacute;lulas causada por agentes externos, debido a la acumulaci&oacute;n fitot&oacute;xica de mol&eacute;culas espec&iacute;ficas despu&eacute;s de un evento traum&aacute;tico; es irreversible y se caracteriza por la p&eacute;rdida progresiva de la integridad de membrana que resulta en la liberaci&oacute;n de los componentes celulares (Breusegem y James, 2006). </p>      <p> Se conoce adem&aacute;s que la necrosis de tejidos en plantas expuestas a enfermedades o a estr&eacute;s abi&oacute;tico est&aacute; relacionada con la formaci&oacute;n de especies reactivas del ox&iacute;geno (ERO), (Kir&aacute;ly et &aacute;l., 1993; Baker y Orlandi, 1995; Fodor et &aacute;l., 2001). De hecho, se asume que la acumulaci&oacute;n de ERO puede ser responsable de las respuestas de hipersensibilidad en las plantas, as&iacute; como tambi&eacute;n de la resistencia a determinadas plagas.</p>      <p> Las ERO se producen constantemente como bioproductos de v&iacute;as metab&oacute;licas que tienen lugar en diferentes compartimientos celulares en las plantas. En condiciones normales estas mol&eacute;culas son eliminadas mediante diversos mecanismos de defensa. (Foyer y Noctor, 2000). El equilibrio entre la producci&oacute;n y la eliminaci&oacute;n de ERO  puede ser perturbado por numerosos factores ambientales, y en consecuencia, los niveles intracelulares de ERO pueden aumentar r&aacute;pidamente (Elstner, 1991).</p>      <p> El an&aacute;lisis de im&aacute;genes ha sido utilizado para evaluar da&ntilde;os en las plantas provocados por factores de estr&eacute;s. Tucker y Chakraborty (1997) desarrollaron un programa de computaci&oacute;n para detectar y caracterizar las lesiones de las hojas de cebada y girasol afectadas por dos enfermedades foliares. Kwat et &aacute;l. (2005) usaron un programa comercial para medir por an&aacute;lisis de im&aacute;genes las lesiones provocadas por la antracnosis del pepino (<i>Colletotrichum orbiculare</i>). Los efectos de factores bi&oacute;ticos y abi&oacute;ticos sobre las hojas de tabaco negro no han sido documentados utilizando una t&eacute;cnica tan &uacute;til y precisa como el an&aacute;lisis de im&aacute;genes.</p>      <p> El objetivo de este trabajo es cuantificar, utilizando el an&aacute;lisis computarizado de im&aacute;genes, el grado de necrosis celular por efecto de diferentes temperaturas, tomadas como modelo de estr&eacute;s, as&iacute; como la producci&oacute;n de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno (H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>) <i>in situ</i> en plantas de <i>Nicotiana tabacum</i> L. (variedad Habana-2000).</p>      <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>       <p><b>Plantas y condiciones de estr&eacute;s</b></p>     <p> Se utilizaron plantas de <i>Nicotiana tabacum</i> L., variedad Habana-2000, cultivadas en condiciones de temperatura controladas (25 &plusmn; 2 &ordm;C) con 12 horas de luz y 12 de oscuridad. Las plantas se desarrollaron en suelo ferral&iacute;tico amarillento lixiviado t&iacute;pico e&uacute;trico, con riego &oacute;ptimo hasta 4 semanas despu&eacute;s de la germinaci&oacute;n. Se cortaron las hojas 2 y 3 (considerando la hoja 1 el primordio foliar apical) y se sometieron a estr&eacute;s de temperatura. Los tratamientos fueron: 4 &ordm;C, 25 &ordm;C, 45 &ordm;C y 60 &ordm;C, aplicados durante 15 min utilizando un ba&ntilde;o de agua a temperatura controlada, y se hicieron 3 r&eacute;plicas por tratamiento. El tratamiento que m&aacute;s necrosis indujo a corto plazo (4 oC), se valor&oacute; tambi&eacute;n por per&iacute;odos de 15, 60 y 240 minutos.</p>      <p><b>Detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de la necrosis celular</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> El grado de necrosis producido por los tratamientos fue evaluado en las hojas enteras, las cuales fueron te&ntilde;idas con soluci&oacute;n de azul de tripano (10 mL de &aacute;cido l&aacute;ctico, 10 mL de glicerol, 10 mL de fenol y 10 mg de azul de tripano disueltos en 10 mL de agua destilada) seg&uacute;n el m&eacute;todo de Keogh (Koch y Slusarenko, 1990). Las hojas se agitaron durante 24 h en la soluci&oacute;n de tinci&oacute;n con azul de tripano y posteriormente fueron aclaradas con etanol al 90% durante 12 h con agitaci&oacute;n, lo que constituye una modificaci&oacute;n al m&eacute;todo original que utiliza hidrato de cloral para clarificar despu&eacute;s de la tinci&oacute;n. Las im&aacute;genes de las hojas fueron registradas en esc&aacute;ner V600, modelo MRS-1200V6P con una resoluci&oacute;n de 100 dpi; estudios previos demostraron que resoluciones mayores no mejoraron la precisi&oacute;n de los resultados y, sin embargo, s&iacute; incrementaron el tama&ntilde;o (Mb) de la imagen (datos no mostrados). La proporci&oacute;n entre el &aacute;rea de tejido necrosado debido a los tratamientos y el &aacute;rea total de las hojas se determin&oacute; a trav&eacute;s del procesamiento y an&aacute;lisis de im&aacute;genes con el Programa ImageJ, (Abramoff et &aacute;l., 2004). ImageJ puede ser utilizado para medir &aacute;rea, media, centroide, per&iacute;metro, etc., de selecciones de inter&eacute;s. Adem&aacute;s, cuenta con analizador de part&iacute;culas autom&aacute;tico y herramientas para determinar longitudes y &aacute;ngulos. La calibraci&oacute;n espacial permite obtener medidas reales y los resultados se pueden imprimir, exportar hacia archivos de texto u hojas de c&aacute;lculo.</p>      <p><b><i>Detecci&oacute;n in situ del H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> en los tejidos de las plantas sometidas a estr&eacute;s </i></b></p>      <p> Se tomaron pl&aacute;ntulas completas de una semana despu&eacute;s de la germinaci&oacute;n y se lavaron cuidadosamente para no da&ntilde;ar las ra&iacute;ces. Se colocaron en viales con las ra&iacute;ces sumergidas en 200 &mu;L de soluci&oacute;n de 3,3 diaminobenzidina (DAB) 1 mg/mL<sup>-1</sup>, pH =3,8 (Thordal-Christensen et &aacute;l., 1997) y se mantuvieron durante 1 h en la oscuridad a 25 &ordm;C para que absorbieran el DAB. A continuaci&oacute;n las muestras se colocaron en un ba&ntilde;o de agua de temperatura controlada a 4 &ordm;C, 25 &ordm;C, 45 &ordm;C &oacute; 60 &ordm;C durante 1h, con iluminaci&oacute;n proporcionada por dos l&aacute;mparas (cada una con un tubo de luz fluorescente de 40 W, una iluminando desde arriba y otra lateralmente, a una distancia aproximada de 1 m de las plantas); las ra&iacute;ces se mantuvieron en la soluci&oacute;n DAB. Despu&eacute;s de la aplicaci&oacute;n de los diferentes tratamientos, las pl&aacute;ntulas fueron clarificadas por agitaci&oacute;n en etanol al 90% durante 15 min. Las im&aacute;genes se obtuvieron usando un esc&aacute;ner en las mismas condiciones explicadas anteriormente. El &aacute;rea de los &oacute;rganos donde se acumul&oacute; H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> (hojas, tallos y ra&iacute;ces) se visualiz&oacute; por el cambio de color que ocurre en los mismos (Thordal-Christensen et &aacute;l., 1997) y el &aacute;rea oscurecida se midi&oacute; utilizando el Programa ImageJ (Abramoff et &aacute;l., 2004) y se expres&oacute; como porcentaje del &aacute;rea total.</p>      <p><b><i>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</i></b></p>     <p> Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o completamente aleatorio en todos los experimentos. Se comprob&oacute; el cumplimiento de la normalidad y la homogeneidad de varianza en cada caso. Se realiz&oacute; un Anova de clasificaci&oacute;n simple para detectar la existencia de diferencias significativas entre los tratamientos. Se hizo una comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias mediante la prueba SNK. Las pruebas estad&iacute;sticas se realizaron en el programa Statistica (versi&oacute;n 6.0).</p>      <p><b>Resultados</b></p>      <p><b><i>Uso del an&aacute;lisis de im&aacute;genes para cuantificar los da&ntilde;os por estr&eacute;s</i></b></p>     <p> La <a href="#f1">figura 1</a> es un ejemplo de c&oacute;mo se presentan los resultados durante el uso del Programa para el an&aacute;lisis de las im&aacute;genes, lo que permite eliminar el factor subjetivo al comparar los tratamientos.</p>      <p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/biote/v10n2/v10n2a08f1.JPG">      <p><b><i>Necrosis celular producida por estr&eacute;s de temperatura</i></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Despu&eacute;s de aplicar los tratamientos de temperatura, la aplicaci&oacute;n de soluci&oacute;n con azul de tripano a las hojas revel&oacute; los tejidos necrosados, lo cual pudo ser observado en las im&aacute;genes escaneadas de los diferentes tratamientos (<a href="#f2">figura 2</a>). El azul de tripano se acumula en las c&eacute;lulas muertas (Peng et &aacute;l., 2003) y eso facilita la observaci&oacute;n de las &aacute;reas necrosadas.</p>      <p align="center"><a name="f2"><img src="img/revistas/biote/v10n2/v10n2a08f2.JPG">      <p> Los tratamientos a 4 &ordm;C y 60 &ordm;C indujeron una mayor proporci&oacute;n de tejido foliar con necrosis celular, la mayor cantidad relativa ocurri&oacute; en el tratamiento a 4 &ordm;C (<a href="#f2">figura 2</a>), donde se afect&oacute; hasta el 35% del &aacute;rea de la superficie total de la hoja, en s&oacute;lo 15 min. Debido a estos resultados, la temperatura de 4 oC se utiliz&oacute; para determinar el efecto del tiempo de estr&eacute;s sobre la necrosis.</p>      <p><b><i>Efecto del tiempo de exposici&oacute;n a 4 &ordm;C sobre el grado de necrosis celular en el tejido foliar</i></b></p>     <p> Si bien a simple vista parece que el tiempo de exposici&oacute;n tuvo consecuencias sobre el &aacute;rea necrosada (<a href="#f3">figura 3</a>), el an&aacute;lisis de las im&aacute;genes permiti&oacute; hacer una valoraci&oacute;n m&aacute;s precisa. Las ventajas de esta metodolog&iacute;a en este tipo de trabajo son evidentes y nos permiten proponer su uso para estudios semejantes.</p>      <p align="center"><a name="f3"><img src="img/revistas/biote/v10n2/v10n2a08f3.JPG">       <p> Como ya se hab&iacute;a demostrado previamente, hay diferencias en la necrosis de los tejidos sometidos a 25 &ordm;C y 4 &ordm;C, pero el aumento del tiempo de exposici&oacute;n de las hojas a 4 &ordm;C no provoc&oacute; diferencias significativas en el porcentaje de &aacute;rea necrosada de los tejidos foliares, determinado por el an&aacute;lisis de im&aacute;genes. Tampoco se observa un patr&oacute;n de tendencia del efecto de la necrosis a medida que se incrementa el tiempo del tratamiento (<a href="#f3">figura 3</a>).</p>      <p><b>Acumulaci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> <i>in situ</i> en tejidos sometidos al estr&eacute;s de temperatura</b></p>     <p> Las pl&aacute;ntulas sometidas a estr&eacute;s por temperatura durante un tiempo corto (1 h) mostraron &aacute;reas de color marr&oacute;n que son se&ntilde;al de que en los tejidos se acumul&oacute; H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> debido al tratamiento, y &eacute;ste reaccion&oacute; con DAB. Las &aacute;reas de acumulaci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> en las pl&aacute;ntulas fueron mayores en ra&iacute;ces, seguidas del tallo y las hojas (<a href="#f4">figura 4</a>).</p>      <p align="center"><a name="f4"><img src="img/revistas/biote/v10n2/v10n2a08f4.JPG">       ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Los valores m&aacute;s notables se detectaron en los tratamientos de estr&eacute;s por calor. El tratamiento a 45 &ordm;C provoc&oacute; valores medios de &aacute;reas con acumulaci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> <i>in situ</i> de 13,5% en relaci&oacute;n con la superficie total de la pl&aacute;ntula. A 60 &ordm;C se obtuvo una acumulaci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> del 12,5%, y a 4 &ordm;C solamente un 7,9%. Todos los valores resultan significativamente diferentes del control, que mostr&oacute; un 2,8% de &aacute;rea con acumulaci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> (<a href="#f4">figura 4</a>).</p>      <p><b>Discusi&oacute;n</b></p>     <p> La necrosis celular es uno de los eventos que m&aacute;s ocurren ante situaciones de estr&eacute;s (Op den Camp et &aacute;l., 2003), sin embargo, se han mencionado pocas o ninguna v&iacute;a para determinar cuantitativamente la envergadura del da&ntilde;o celular.</p>      <p> La tinci&oacute;n con azul de tripano es una de las v&iacute;as m&aacute;s utilizada para la detecci&oacute;n cualitativa de la necrosis, debido a que dicho compuesto es capaz de introducirse en las c&eacute;lulas muertas ti&ntilde;&eacute;ndolas de azul intenso o negro, mientras que las c&eacute;lulas saludables (exceptuando las venas) aparecen hialinas despu&eacute;s que se eliminan los pigmentos naturales de los tejidos vegetales (Peng et &aacute;l., 2003). Un ejemplo de los resultados alcanzados en este trabajo al utilizar el azul de tripano para detectar necrosis en tejidos afectados por condiciones de estr&eacute;s se presenta en la <a href="#f2">figura 2</a>. El uso de etanol 90% en sustituci&oacute;n del hidrato de cloral, usado en muy alta concentraci&oacute;n (2,5 g/mL<sup>-1</sup>) en el protocolo original para clarificar los tejidos de las hojas, result&oacute; muy eficiente, y se obtuvo una decoloraci&oacute;n exitosa sin perderse el azul de tripano que se hab&iacute;a acumulado en los tejidos necr&oacute;ticos (<a href="#f3">figura 3A</a>). Una ventaja adicional es que el etanol resulta inocuo para el investigador que realiza los protocolos de trabajo. El hidrato de cloral es una sustancia t&oacute;xica a las concentraciones utilizadas para decolorar los tejidos; seg&uacute;n Cooper (2007), una concentraci&oacute;n superior a 100 &mu;g mL<sup>-1</sup> es t&oacute;xica.</p>      <p> La estimaci&oacute;n a simple vista del grado de necrosis en un &oacute;rgano vegetal como la hoja es muy dif&iacute;cil y puede llegar a producir percepciones enga&ntilde;osas, como ocurre al observar los resultados de la <a href="#f3">figura 3A</a>. El an&aacute;lisis de imagen permite evitar el subjetivismo en este tipo de estudio (<a href="#f3">figura 3B</a>).</p>      <p> El programa ImageJ facilit&oacute; la cuantificaci&oacute;n del &aacute;rea total y del &aacute;rea afectada de los &oacute;rganos analizados (<a href="#f1">figura 1</a>). Este programa utiliza una serie de comandos para analizar im&aacute;genes modificadas a 8-bit en escala de grises. Durante las mediciones s&oacute;lo los pixeles resaltados son incluidos en el proceso en dependencia del &quot;Umbral&quot; (Threshold) establecido.</p>      <p> El &quot;Umbral&quot; se utiliza para establecer valores m&iacute;nimos y m&aacute;ximos de detecci&oacute;n, separando la imagen en las zonas de inter&eacute;s y el fondo. Los pixeles con valores de brillo y contraste mayores o iguales al umbral m&iacute;nimo, y aquellos menores o iguales que el umbral m&aacute;ximo aparecen en rojo mientras se usa el programa.</p>      <p> El comando &quot;Analizar Part&iacute;culas&quot; (AnalyseParticles) sirve para medir el conjunto de caracter&iacute;sticas seleccionadas. El c&aacute;lculo de &aacute;reas se realiza despu&eacute;s de la calibraci&oacute;n, para lo que se emplea el comando &quot;Establecer Escala&quot; (Set Scale), que permite implantar la escala espacial real de la imagen con ayuda de un patr&oacute;n de medidas conocido que se incluye en la imagen al escanearla.</p>      <p> El modo m&aacute;s eficiente para organizar los resultados es mediante el uso de una hoja de c&aacute;lculo.</p>      <p> Los tejidos foliares de tabaco de la variedad Habana-2000 presentaron mayor necrosis a bajas temperaturas (4 oC) que a las temperaturas altas aplicadas. La necrosis es un evento celular que ocurre de modo ca&oacute;tico y descontrolado (Reape et &aacute;l., 2008) en el cual ocurre lisis celular. En esta condici&oacute;n extrema los sistemas de protecci&oacute;n de la planta no fueron suficientes, y ocurri&oacute; lisis celular en mayor proporci&oacute;n detectable y cuantificable por los m&eacute;todos empleados. La diferencia pudiera estar relacionada con el hecho de que el tabaco tiene origen en zonas tropicales de Am&eacute;rica; adem&aacute;s, la variedad en cuesti&oacute;n fue seleccionada en Cuba donde la temperatura del aire puede llegar a ser de m&aacute;s de 38 &ordm;C (Lecha-Estela y Florido-Trujillo, 1989). Se ha informado que la variedad Habana-2000 (M&eacute;ndez-Barcel&oacute; et &aacute;l., 2007) es resistente a la necrosis ambiental; que la mayor necrosis s&oacute;lo haya sido provocada por las bajas temperaturas (4 &ordm;C) debe analizarse como positivo, ya que m&aacute;s de la mitad de la superficie de la provincia de Pinar del R&iacute;o, con participaci&oacute;n en la producci&oacute;n tabacalera, s&oacute;lo tiene un 5% de probabilidad de que la temperatura m&iacute;nima absoluta del aire alcance valores entre 4 y 6 &ordm;C (Lecha-Estela y Florido-Trujillo, 1989).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Toda la superficie de la provincia de Pinar del R&iacute;o tiene 95% de probabilidad de tener valores de temperatura m&aacute;xima absoluta entre 32 y 34 &ordm;C (Lecha-Estela y Florido-Trujillo, 1989); el peque&ntilde;o valor de necrosis provocado al someter las hojas a temperaturas de 45 oC (<a href="#f2">figura 2</a>) tiene una significaci&oacute;n pr&aacute;ctica muy valiosa ya que ser&iacute;an despreciables las afectaciones que provocar&iacute;an las temperaturas m&aacute;ximas del aire registradas en esta zona y otras del pa&iacute;s donde se cultiva el tabaco negro para la producci&oacute;n de puros Habanos.</p>      <p> Adem&aacute;s del estr&eacute;s de temperatura analizado, las plantas est&aacute;n expuestas continuamente a varios estreses abi&oacute;ticos y bi&oacute;ticos, y para sobrevivir a tales condiciones han desarrollado intrincados mecanismos para percibir las se&ntilde;ales externas. La producci&oacute;n de ERO, y muy especialmente el H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>, ha sido propuesta como proceso clave en respuesta a los estreses abi&oacute;ticos y bi&oacute;ticos, y se conoce que existe una interacci&oacute;n cruzada entre ellos (Fujita et &aacute;l., 2006). Teniendo en cuenta que muchos tipos de estr&eacute;s inducen la formaci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> se cuantific&oacute; este metabolito en condiciones de estr&eacute;s de temperatura. El H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> puede considerarse una se&ntilde;al que induzca la s&iacute;ntesis o activaci&oacute;n de sistemas antioxidantes tales como super&oacute;xido dismutasa (SOD), catalasa (CAT), ascorbato peroxidasa (APX) y glutati&oacute;n reductasa (GR) (Neill et &aacute;l., 2002).</p>      <p> Las &aacute;reas donde se detect&oacute; el H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> en las pl&aacute;ntulas de tabaco sometidas a 4 &ordm;C, 45 &ordm;C y 60 &ordm;C, fueron significativamente mayores que el control a 25 oC, y se obtuvieron los mayores valores a 45 &ordm;C y 60 &ordm;C, en ese orden. Las ra&iacute;ces fueron los &oacute;rganos donde se observ&oacute; mayor proporci&oacute;n de coloraci&oacute;n marr&oacute;n m&aacute;s intensa (indicativa de formaci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> que reacciona con DAB) comparado con los tallos y las hojas (<a href="#f4">figura 4</a>). Lee et &aacute;l. (2004) encontraron acumulaci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> en el orden mili-molar en las cercan&iacute;as de las membranas plasm&aacute;ticas de ra&iacute;ces de pepino expuestas a bajas temperaturas. El objetivo de estudiar pl&aacute;ntulas completas de tabaco sometidas a estr&eacute;s de temperatura fue determinar su efecto sobre la distribuci&oacute;n del per&oacute;xido en toda la planta.</p>      <p> El per&oacute;xido de hidr&oacute;geno, adem&aacute;s de su papel como especie reactiva de ox&iacute;geno, funciona como una mol&eacute;cula se&ntilde;al (Mino et &aacute;l., 2004). Songjie et &aacute;l. (2006) plantean que el H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> puede ser capaz de translocarse por el xilema y actuar como una de las se&ntilde;ales de la ra&iacute;z para controlar el movimiento de los estomas. Los resultados de este trabajo no muestran una aparente translocaci&oacute;n del H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> m&aacute;s all&aacute; del tallo, al menos a 4 oC. La acumulaci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> en los tejidos a altas temperaturas (45 y 60 oC) pudiera actuar como se&ntilde;al que active sistemas antioxidantes que impidan mayores acumulaciones de estos compuestos t&oacute;xicos y eviten mayor da&ntilde;o celular (Baptista et &aacute;l., 2007).</p>      <p> La detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de la necrosis y la acumulaci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> <i>in situ</i> producidas por temperaturas extremas, combinando el m&eacute;todo del azul de tripano con el an&aacute;lisis de im&aacute;genes, constituyen herramientas &uacute;tiles para valorar los da&ntilde;os producidos por estr&eacute;s de temperaturas y pudiera ser utilizado para valorar los da&ntilde;os celulares provocados por otros tipos de estr&eacute;s.</p>      <p><b>Referencias bibliogr&aacute;ficas</b></p>      <!-- ref --><p>1 Abramoff, M. D.; Magelhaes, P. J.; Ram, S. J. 2004. Image Processing with ImageJ. Biophotonics International. 11, 36-42.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0123-3475200800020000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2 Baker, C. J.; Orlandi, E. W. 1995. Active oxygen in plant pathogenesis. Annual Review of Phytopathology 33, 299-321.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0123-3475200800020000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3 Baptista, P.; Martins, A.; Pais, M. S.; Tavares, R. M.; Lino-Neto, T. 2007. Involvement of reactive oxygen species during early stages of ectomycorrhiza between Castanea sativa and Pisolithus tinctorius. Mycorrhiza 17, 185-193.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0123-3475200800020000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4 Breusegem, F. V.; James, F. D. 2006. Reactive oxygen species in plant cell death. Plant Physiology 141, 384-390.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0123-3475200800020000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5 Cooper, J. S. 2007. Toxicity, sedative-hypnotics. [online] Disponible en URL: http://www.emedicine.com/EMERG/topic525.htm [Fecha de consulta 14 de abril de 2008]&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0123-3475200800020000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6 Elstner, E. F. 1991. Mechanisms of oxygen activation in different compartments of plant cells. En: Pelland, E. J.; Steffen, K. L. (eds.). Active oxygen/oxidative stress in plant metabolism, (Rockville, MD: American Society of Plant Physiologists). pp. 13-25.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0123-3475200800020000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7 Fodor, J.; Hideg, &Eacute;.; Kecsk&eacute;s, A.; Kir&aacute;ly, Z. 2001. In vivo detection of tobacco mosaic virus-induced local and systemic oxidative burst by electron paramagnetic resonance spectroscopy. Plant and Cell Physiology 42, 775-779.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0123-3475200800020000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8 Foyer, C. H.; Noctor, G. 2000. Oxygen processing in photosynthesis: Regulation and signaling. New Phytologist 146, 359-388.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0123-3475200800020000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9 Fujita, M.; Fujita, Y.; Noutoshi, Y.; Fuminori T. F.; Narusaka, Y.; Yamaguchi-Shinozaki K.; Shinozaki, K. 2006. Crosstalk between abiotic and biotic stress responses: a current view from the points of convergence in the stress signaling networks. Current Opinion in Plant Biology 9, 436-442.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0123-3475200800020000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10 Guerra, J. G.; Rodr&iacute;guez-L&oacute;pez, N.; Andino-Ruibal, V.; Hern&aacute;ndez-Garc&iacute;a, B. 2000. Influencia de la distancia entre plantas y la altura de desbotonado en algunos indicadores econ&oacute;micos de la variedad &quot;Habana 2000&quot; cultivado bajo tela. Avances. Vol 2. [online] 2000 Abril-Junio Disponible en URL http://www.ciget.pinar.cu/No.%202000-2/TABACO.htm [Fecha de consulta 12 de abril de 2008].&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0123-3475200800020000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11 Kir&aacute;ly, Z.; El-Zahaby, H.; Galal, A.; Abdou, S.; &Aacute;d&aacute;m, A.; Barna, B.; Klement, Z. 1993. Effect of oxy free radicals on plant pathogenic bacteria and fungi and on some plant diseases. En: M&oacute;zsik, G.; Emerit, I.; Feh&eacute;r, J.; Matkovics, B.; Vincze, &Aacute;. (eds.).  Oxygen Free Radicals and Scavening in the Natural Sciences. Budapest: Akad Kiad&oacute;. pp. 9-19.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0123-3475200800020000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12 Koch, E.; Slusarenko, A. 1990. Arabidopsis is susceptible to infection by a downy mildew fungus. The Plant Cell 2, 437-445.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0123-3475200800020000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13 Kwack, M. S.; Kim, E. N.; Lee, H.; Kim, J. W.; Chun, S. Ch.; Kim, K. D. 2005. Digital image analysis to measure lesion area of cucumber anthracnose by Colletotrichum orbiculare. Journal of Genetical Plant Pathology 71, 418-421.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0123-3475200800020000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14 Lecha-Estela, L. B.; Florido-Trujillo, A. 1989. Principales caracter&iacute;sticas clim&aacute;ticas del r&eacute;gimen t&eacute;rmico del archipi&eacute;lago cubano. La Habana: Editorial Academia.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0123-3475200800020000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15 Lee, S. H; Singh, A. P.; Cheng, G. Ch. 2004. Rapid accumulation of hydrogen peroxide in cucumber roots due to exposure to low temperature appears to mediate decreases in water transport. Journal of Experimental Botany 55, 1733-1741.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0123-3475200800020000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16 M&eacute;ndez-Barcel&oacute;, A.; Rivas-Di&eacute;guez, A.; del Toro-Borrego, M. 2007. Elementos bioetol&oacute;gicos de las principales plagas del cultivo del tabaco en la zona norte de la provincia de Las Tunas. 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J.; Desikan, R.; Hancock, J. T. 2002. Hydrogen peroxide signaling. Plant Biology 5, 338-395.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0123-3475200800020000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19 Op den Camp, R.; Przybyla, D.; Ochsenbein, Ch.; Laloi, Ch.; Kim, Ch.; Danon, A.; Wagner, D.; Hideg, E.; G&ouml;bel, C.; Feussner, I.; Nater, M.; Apel, K. 2003. Rapid induction of distinct stress responses after the release of singlet oxygen in Arabidopsis. 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Programmed cell death in plants: distinguishing between different modes. Journal of Experimental Botany. Disponible en  &lt;http://jxb.oxfordjournals.org/cgi/reprint/59/3/435&gt; doi:10.1093/jxb/erm258&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0123-3475200800020000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22 Songjie, Y.; Conglin, H.; Zhongyi , W.; Jianfang, H.; Tianzhong, L.; Shigui, L.; Wensuo, J. 2006. Stomatal movement in response to long distance-communicated signals initiated by heat shock in partial roots of Commelina communis L. Science in China Series C: Life Sciences 49, 18-25&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0123-3475200800020000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23 Thordal-Christensen, H.; Zhang, Z.; Wei, Y.; Collinge. D. B. 1997. Subcellular localization of H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> in plants: H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> accumulation in papillae and hypersensitive response during the barley-powdery mildew interaction. Plant Journal 11, 1187-1194.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0123-3475200800020000800023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24 Tucker C. C.; Chakraborty, S. 1997. Quantitative assessment of lesion characteristics and disease severity using digital image processin. Journal of Phytopathology 145: 273-278.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0123-3475200800020000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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