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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de diferentes plaguicidas sobre el crecimiento de Azotobacter chroococcum]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Minimum inhibitory concentration and compatibility techniques were used for evaluating the effect of agrochemicals whose active ingredients are based on carboxin (5,6-dihydro-2-methyl-N-phenyl- 1,4-oxathiin-3carboxamide), tiram (tetramethylthioperoxydicarbonic diamide), imidacloprid (1-(6-cloro6-4-pyridinyl-methyl)-N-nitroimidazolidin-2-ilideneamina), cypermethrin ((1RS)-cis, trans-3-(2.2- dichlorovinyl)-2,2-dimethylcyclopropane carboxylate (RS)-cyano-3-phenoxybenzyl), S-metolachlor ((S)-2- chloro-N-(2-ethyl-6-methyl-phenyl)-N-(2-methoxy-1-methyl-ethyl)-acetamide), fluometuron (1,1-dimethyl-3 (alpha, alpha, alpha-trifluoro-m-tolyl)) urea and glyphosate (N-(phosphonomethyl) glycine)) on the viability of Monibac (a biological inoculant/biofertiliser produced by CORPOICA, Colombia) whose active ingredient is based on Azotobacter chroococcum AC1 (a non-symbiotic diazotrophic bacteria). The results demonstrated the susceptibility of the organism to 50% cypermethryn when it was mixed with other pesticides in the ratio regularly used in the field. It was found that the pesticides (carboxin, thiram, imidacloprid, S-metolachlor, fluometuron and glyphosate) had no significant effects (P]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font face="verdana" size="2">     <p><font size="3"><b>Efecto de diferentes plaguicidas sobre el crecimiento de <i><i>Azotobacter chroococcum</i></i></b></font></p>     <p><font size="2">Different pesticides’ effect on <i>Azotobacter chroococcum</i> growth</b></font></p>     <p><i>Diego Rivera<sup>1</sup> ,  Mauricio Camelo<sup>2</sup> ,  Germ&aacute;n Estrada<sup>3</sup> ,  Melissa Obando<sup>4</sup> ,  Ruth Bonilla<sup>5</sup>   </i></p><hr>     <p><sup>1</sup>Ingeniero de Producci&oacute;n Biotecnol&oacute;gico. Investigador Laboratorio Microbiolog&iacute;a de Suelos, Centro de Biotecnolog&iacute;a y Bioindustria CBB-Corpoica. <a href="mailto:"drivera@corpoica.org.co">drivera@corpoica.org.co</a>    <br>  <sup>2</sup>Microbi&oacute;logo Industrial. Investigador Laboratorio Microbiolog&iacute;a de Suelos, Centro de Biotecnolog&iacute;a y Bioindustria CBB-Corpoica. <a href="mailto:"mcamelo@corpoica.org.co">mcamelo@corpoica.org.co</a>    <br> <sup>3</sup>Microbi&oacute;logo Industrial. Investigador Embrapa Agrobiolog&iacute;a-Brasil. <a href="mailto:"adiablillo@hotmail.com">adiablillo@hotmail.com</a>     <br> <sup>4</sup> Ingeniera de Producci&oacute;n Biotecnol&oacute;gica. Investigadora Laboratorio Microbiolog&iacute;a de Suelos, Centro de Biotecnolog&iacute;a y Bioindustria CBB-Corpoica. <a href="mailto:"dobando@corpoica.org.co">dobando@corpoica.org.co</a></a>    <br> <sup>5</sup>Ph.D. Ciencias Agr&iacute;colas. L&iacute;der Laboratorio Microbiolog&iacute;a de Suelos, Centro de Biotecnolog&iacute;a y Bioindustria CBB-Corpoica. <a href="mailto:"rbonilla@corpoica.org.co.">rbonilla@corpoica.org.co</a>     <p>Recibido: septiembre 20 de 2009 Aprobado: junio 11 de 2010 <hr>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Resumen</b></p>      <p>Se evalu&oacute; el efecto de diferentes agroqu&iacute;micos cuyos principios activos se basan en Carboxin: 5,6-dihydro- 2-methyl-N-phenyL<sup>-1</sup>,4-oxathiin-3 carboxamide; Tiram: tetramethylthioperoxydicarbonic diamide; Imidacloprid: (1-(6-cloro6-4-piridinil-metil)-N-nitroimidazolidin-2-ilideneamina); Cipermetrina: (1RS)-cis,trans-3-(2,2-diclorovinil)-2,2-dimetilciclopropano carboxilato de (RS)-ciano-3-Fenoxibencilo; Smetolachloro: (S)-2-cloro-N-(2-etil-6-metil-fenil)-N-(2-metoxi-1-metil-etil)-acetamida; Fluometuron: 1,1- dimetil-3(alfa, alfa, alfa-trifluoro-m-tolil) urea y Glifosato: (N-(fosfonometil) glicina) sobre la viabilidad del inoculante biol&oacute;gico Monibac&reg; - Corpoica cuyo ingrediente activo es la bacteria diazotr&oacute;fica no simbi&oacute;tica <i>Azotobacter chroococcum</i> AC1, aplicando las t&eacute;cnicas de concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria y de compatibilidad. Los resultados demostraron la susceptibilidad del microorganismo frente al insecticida cipermetrina al 50% y al ser mezclado con los dem&aacute;s plaguicidas en la dosis utilizada regularmente en campo. Se encontr&oacute; que no hubo efectos significativos (P<0,05) en la aplicaci&oacute;n de los plaguicidas (Carboxin, Thiram, Imidacloprid, S-metolachloro, Fluometuron y Glifosato) sobre <i>A. chroococcum</i> AC1, bajo las diferentes dosis evaluadas infiriendo que esta bacteria en condiciones de laboratorio es capaz de tolerar estas sustancias qu&iacute;micas mediante diferentes mecanismos fisiol&oacute;gicos sin afectar su crecimiento.</p>      <p><b>Palabras clave</b>: <i>Azotobacter chroococcum</i>, agroqu&iacute;micos, biofertilizante, inhibici&oacute;n.</p>      <p><b>Abstract</b></p>      <p>Minimum inhibitory concentration and compatibility techniques were used for evaluating the effect of agrochemicals whose active ingredients are based on carboxin (5,6-dihydro-2-methyl-N-phenyl- 1,4-oxathiin-3carboxamide), tiram (tetramethylthioperoxydicarbonic diamide), imidacloprid (1-(6-cloro6-4-pyridinyl-methyl)-N-nitroimidazolidin-2-ilideneamina), cypermethrin ((1RS)-cis, trans-3-(2.2- dichlorovinyl)-2,2-dimethylcyclopropane carboxylate (RS)-cyano-3-phenoxybenzyl), S-metolachlor ((S)-2- chloro-N-(2-ethyl-6-methyl-phenyl)-N-(2-methoxy-1-methyl-ethyl)-acetamide), fluometuron (1,1-dimethyl-3 (alpha, alpha, alpha-trifluoro-m-tolyl)) urea and glyphosate (N-(phosphonomethyl) glycine)) on the viability of Monibac (a biological inoculant/biofertiliser produced by CORPOICA, Colombia) whose active ingredient is based on <i>Azotobacter chroococcum</i> AC1 (a non-symbiotic diazotrophic bacteria). The results demonstrated the susceptibility of the organism to 50% cypermethryn when it was mixed with other pesticides in the ratio regularly used in the field. It was found that the pesticides (carboxin, thiram, imidacloprid, S-metolachlor, fluometuron and glyphosate) had no significant effects (P<0.05) at the different concentrations tested, suggesting that this bacterium is able to tolerate these chemicals by using different physiological mechanisms without affecting plant growth in the laboratory.</p>      <p><b>Key words</b>: <i>Azotobacter chroococcum</i>, agrochemical, bacteria, biofertiliser, inhibition.</p> <hr>     <p><b>Introducci&oacute;n</b></p>      <p>La utilizaci&oacute;n de agroqu&iacute;micos en los sistemas de producci&oacute;n intensivos tiene una clara acci&oacute;n sobre la microbiota del suelo, afectando directamente las numerosas poblaciones de microorganismos nativos de inter&eacute;s biol&oacute;gico expuestas a este tipo de sustancias. Como consecuencia de la retenci&oacute;n de ciertos plaguicidas en las part&iacute;culas del suelo, microorganismos ben&eacute;ficos, como muchas bacterias presentes en la mayor&iacute;a de los sistemas agr&iacute;colas, pueden sufrir alteraciones bioqu&iacute;micas, disminuyendo su actividad como biofertilizantes y su efecto promotor del crecimiento de las plantas (Paoletti, 1999).</p>      <p>Dentro de los diferentes plaguicidas empleados en el cultivo de algod&oacute;n se encuentran los fungicidas, cuyos principios activos se basan en: (5,6-dihydro-2-methyl-N-phenyL<sup>-1</sup>- ,4-oxathiin-3 carboxamide y tetramethylthioperoxydicarbonic diamide), los insecticidas: [(1-(6-cloro6-4-piridinil-metil)-N-nitroimidazolidin- 2-ilideneamina) y (1RS)-cis,trans-3-(2,2- diclorovinil)-2,2 dimetilciclopropano carboxilato de (RS)-ciano-3-Fenoxibencilo)], y los herbicidas: (S)-2-cloro-N-(2-etil-6-metil-fenil)-N-(2-metoxi- 1-metil-etil)-acetamida; 1,1-dimetil-3(alfa, alfa, alfa-trifluoro-m-tolil)urea y (N-(fosfonometil) glicina); siendo estos agroqu&iacute;micos los que permiten eliminar, controlar y manejar diferentes plagas y malezas en este cultivo de importancia econ&oacute;mica en Colombia. La actividad del plaguicida sobre la especie objetivo no es considerada un problema, debido a que en &eacute;sta se basa su eficacia y la raz&oacute;n de su utilizaci&oacute;n; sin embargo, los problemas derivan de la falta de selectividad debido a que en la liberaci&oacute;n de estas sustancias la toxicidad se puede extender a otras especies no objetivo. Este posible efecto no intencional sobre otros organismos obliga a realizar valoraciones a modo de minimizar su impacto sobre estos organismos y los diferentes cambios ambientales ocasionados por su constante e indiscriminada utilizaci&oacute;n en el suelo.</p>      <p>Entre los grupos microbianos reportados como organismos degradadores de plaguicidas, muchas de las bacterias heter&oacute;trofas se&ntilde;aladas los utilizan como sustratos, ya sea metabolizando las mol&eacute;culas o us&aacute;ndolas como nutriente y fuente de energ&iacute;a. Se incluyen en este grupo bacterias como: <i>Azotobacter sp., Pseudomonas sp., Agrobacterium sp., Bacillus sp., Clostridium sp., Flavobacterium sp.</i>, entre otros (Madigan et al., 2004).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El papel de las bacterias en la biodegradaci&oacute;n y transformaci&oacute;n de los plaguicidas en el suelo es variable y depende de la disponibilidad, movilidad y toxicidad del plaguicida, las propiedades fisicoqu&iacute;micas del suelo y del plaguicida, entre otros factores medioambientales (Racke, 1990).</p>      <p>Dentro de las bacterias diazotr&oacute;ficas, el g&eacute;nero Azotobacter es uno de los m&aacute;s estudiados en la agricultura gracias a su alta capacidad de biodegradaci&oacute;n, especialmente para la oxidaci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos sustituidos (Gonz&aacute;lez y Lluch, 1992); este hecho resulta de especial inter&eacute;s debido a que estas bacterias aumentan su actividad biol&oacute;gica en suelos agr&iacute;colas adicionados de residuos que poseen un alto contenido en sustancias fen&oacute;licas, pudi&eacute;ndose sugerir que estos microorganismos pueden contribuir a la biotransformaci&oacute;n de este tipo de residuos cuando se usen como fertilizantes. En este contexto, estos diaz&oacute;trofos son considerados por algunos investigadores como bacterias ciertamente ideales para los procesos de descontaminaci&oacute;n de suelos agr&iacute;colas con sustancias xenobi&oacute;ticas (Gonz&aacute;lez y Lluch, 1992).</p>      <p>La presente investigaci&oacute;n tuvo como objetivo evaluar, en condiciones de laboratorio, el grado de tolerancia de la bacteria <i>Azotobacter chroococcum</i> AC1, a la aplicaci&oacute;n de diferentes agroqu&iacute;micos empleados en el cultivo de algod&oacute;n.</p>      <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>      <p><b>Cepa de estudio</b>. Se emple&oacute; la cepa <i>A. chroococcum</i> AC1, proveniente del Banco de microorganismos del Laboratorio de Microbiolog&iacute;a de Suelos (CBB-Corpoica C.I. Tibaitat&aacute;), la cual fue aislada de cultivos de algod&oacute;n, en la Estaci&oacute;n Experimental Motilonia, Codazzi- Cesar (Bonilla y Morales, 2005).</p>      <p><b>Reactivaci&oacute;n del in&oacute;culo</b>. La cepa de A. chroococcum AC1, se reactiv&oacute; en placas de medio de cultivo agr&iacute;cola (g L<sup>-1</sup>): K<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub>*3H<sub>2</sub>O, 2,4; MgSO<sub>4</sub>*7H<sub>2</sub>O, 0,1; Glucosa, 5; CaCl<sub>2</sub>, 0,1; Extracto de Levadura, 5; MnSO<sub>4</sub>, 0,1; FeSO<sub>4</sub>*7H<sub>2</sub>O, 0,1; (NH<sub>4</sub>)2SO<sub>4</sub>, 4; pH: 7,2), mediante siembra por agotamiento. Se incubaron a 30&plusmn;2&deg; C durante 48 horas, realizando tinci&oacute;n de Gram para confirmar la pureza de la cepa.</p>      <p><b>Estandarizaci&oacute;n del in&oacute;culo</b>. Se realiz&oacute; una suspensi&oacute;n celular al 10% en soluci&oacute;n salina (NaCl 0,85%) de la cepa AC1 ajustada al tubo N° 5 de la escala de Mc. Farland; esta suspensi&oacute;n fue agregada al caldo agr&iacute;cola y se incub&oacute; durante 48 h a 30&plusmn;2 &deg;C y 120 rpm. Posteriormente, se determinaron las unidades formadoras de colonia por mililitro (UFC/mL) de in&oacute;culo empleando diluciones seriadas desde 10<sup>-2</sup> hasta 10<sup>-8</sup> y recuento en placa por la t&eacute;cnica de microgota (Doyle et al., 2000) despu&eacute;s de 48 h de incubaci&oacute;n a 30&plusmn;2 °C.</p>      <p><b>Determinaci&oacute;n de la viabilidad celular</b>. La concentraci&oacute;n celular (UFC/mL) fue determinada por medio de la t&eacute;cnica de recuento en placa sobre medio agr&iacute;cola, realizando diluciones seriadas en base diez desde 10-2 hasta 10-8. El tiempo de incubaci&oacute;n fue de 48 h.      <p><b>Determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria de Carboxin, Thiram, Imidacloprid, Cipermetrina, S-metolachloro, Fluometuron y Glifosato.</b> Se utiliz&oacute; la t&eacute;cnica de difusi&oacute;n en agar, colocando la concentraci&oacute;n comercial aplicada en campo de cada uno de los plaguicidas y la mezcla de todos; adem&aacute;s, se evalu&oacute; una concentraci&oacute;n inferior y superior de la normalmente utilizada mediante el uso de pozos sobre el medio de cultivo agr&iacute;cola, y se emple&oacute; agua destilada est&eacute;ril como control (Dur&aacute;n, 1996). As&iacute; mismo, se evalu&oacute; la formaci&oacute;n de zonas de aclaramiento alrededor de los pitillos para analizar cualitativa y cuantitativamente los halos de inhibici&oacute;n sobre el crecimiento de la cepa de <i>A. chroococcum</i> AC1. Los experimentos fueron realizados por triplicado.</p>      <p><b>Compatibilidad de los plaguicidas con el medio Agr&iacute;cola.</b> Para esta prueba se combinaron diferentes concentraciones (bajamedia- alta) de los plaguicidas individualmente y la mezcla de todos (<a href="#t1">Tabla 1</a>); posteriormente, se realiz&oacute; la inoculaci&oacute;n con la cepa de <i>A. chroococcum</i> AC1, multiplicada en medio agr&iacute;cola; se tuvo en cuenta la solubilidad de los plaguicidas para realizar una &oacute;ptima difusi&oacute;n acatando en el proceso las recomendaciones impartidas por cada casa comercial de los agroqu&iacute;micos. Con el fin de determinar las c&eacute;lulas viables despu&eacute;s de 0 h y 12 h de incubaci&oacute;n a 30&plusmn;2° C, se realiz&oacute; el recuento en placa de UFC/mL del in&oacute;culo empleando diluciones seriadas desde 10<sup>-2</sup> hasta 10<sup>-8</sup> y recuento en placa por la t&eacute;cnica de microgota (Doyle et al., 2000). Los experimentos fueron realizados por triplicado.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="t1"><img src="img/revistas/biote/v12n1/v12n1a10t1.JPG">      <p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico.</b> Los datos fueron sometidos a un an&aacute;lisis de varianza y comparaci&oacute;n de medias por el Test de Duncan al 5% de probabilidad usando el paquete estad&iacute;stico SPSS, Versi&oacute;n 17.</p>      <p><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></p>      <p>Determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria de Carboxin, Thiram, Imidacloprid, Cipermetrina, S-metolachloro, Fluometuron y Glifosato (recomendaciones impartidas por cada empresa que comercializa los agroqu&iacute;micos). Al emplear los dos fungicidas con principios activos basados principalmente en dos compuestos como Carboxim y Thiram bajo una concentraci&oacute;n de 10%, 20% y 30% y de 5%, 10% y 15% respectivamente, se observ&oacute; la formaci&oacute;n de peque&ntilde;os halos de inhibici&oacute;n (zonas de aclaramiento) alrededor de la bacteria <i>A. chroococcum</i> AC1, inoculada en los pozos del medio de cultivo, lo cual manifiesta de forma cualitativa el efecto causado por estos tipos de fungicidas sobre la viabilidad del microorganismo; sin embargo, este resultado no representa un valor estad&iacute;sticamente significativo debido a que el halo de inhibici&oacute;n no present&oacute; un campo de influencia representativo en las distintas dosis utilizadas que pudieran haber afectado la multiplicaci&oacute;n del microorganismo (<a href="#f1">figura 1</a>).</p>     <p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/biote/v12n1/v12n1a10f1.JPG">       <p>Los resultados obtenidos por separado de halos de inhibici&oacute;n en las concentraciones utilizadas (<a href="#t1">Tabla 1</a>) de los fungicidas 1 y 2 no sobrepasan los 5 y 6 mm de espesor, respectivamente; adem&aacute;s, el crecimiento de <i>A. chroococcum</i> AC1 es &oacute;ptimo dentro del &aacute;rea de la placa. La concentraci&oacute;n del fungicida 2 al 10% present&oacute; el mayor halo de inhibici&oacute;n seguido por el fungicida 1 al 30% pero sin ejercer un efecto significativo (P<0,05) sobre la viabilidad de la bacteria.</p>      <p>El medio de cultivo present&oacute; un cambio de color, el cual se puede atribuir a la difusi&oacute;n de los agroqu&iacute;micos en el medio de cultivo sint&eacute;tico, y posiblemente no es un efecto ocasionado por cada uno de ellos.</p>      <p>Por otra parte, la evaluaci&oacute;n individual de los insecticidas Imidacloprid (10%, 20% y 30%) y Cipermetrina (40%, 50% y 60%) no presentaron ning&uacute;n efecto significativo (P<0,05) sobre la viabilidad de <i>A. chroococcum</i> AC1 en las diferentes concentraciones utilizadas, lo cual permiti&oacute; un &oacute;ptimo desarrollo del microorganismo; sin embargo, se procedi&oacute; a ratificar estos resultados utilizando la metodolog&iacute;a de compatibilidad.</p>      <p>Las evaluaciones individuales o en conjunto de los herbicidas S-metolachloro, Fluometuron y Glifosato no mostraron un efecto negativo sobre la viabilidad de <i>A. chroococcum</i> AC1. Este resultado es importante debido a que normalmente en campo se utilizan estos tres herbicidas simult&aacute;neamente como sellantes en estados de preemergencia de la semilla de algod&oacute;n, presentando un crecimiento adecuado de la bacteria sin ning&uacute;n &iacute;ndice de inhibici&oacute;n en las diferentes concentraciones aplicadas, lo cual permite el uso del biofertilizante sin restricciones.</p>      <p>La mezcla de los herbicidas, fungicidas e insecticidas en la concentraci&oacute;n aplicada normalmente en campo di&oacute; como resultado un efecto inhibitorio significativo (P<0,05) sobre la viabilidad de <i>A. chroococcum</i> AC1, siendo &eacute;sta combinaci&oacute;n muy posiblemente la que ocasion&oacute; un mayor efecto sobre el crecimiento de la bacteria en comparaci&oacute;n con los plaguicidas utilizados individualmente (<a href="#f2">figura 2</a>).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f2"><img src="img/revistas/biote/v12n1/v12n1a10f2.JPG">       <p>De acuerdo con ello, se podr&iacute;a pensar que los plaguicidas utilizados pudieron tener dificultad para difundirse en el agar en la prueba de Gauze por varios factores de interacci&oacute;n, as&iacute; como por porosidad, procesos de adsorci&oacute;n, naturaleza del compuesto qu&iacute;mico, solubilidad, viscosidad, reactividad qu&iacute;mica, componentes del medio agr&iacute;cola, entre otros Garc&iacute;a y Ordo&ntilde;ez (2003); por esta raz&oacute;n, al entrar en contacto con <i>A. chroococcum</i> AC1, no se reflej&oacute; claramente un descenso en la biomasa del microorganismo. Adem&aacute;s, es posible que durante el periodo de incubaci&oacute;n los plaguicidas presentaran evaporaci&oacute;n por la exposici&oacute;n continua a una temperatura de 30 &plusmn; 2° C al cabo de 48 horas, y su efecto sobre el crecimiento no fuera determinado.</p>      <p>Seg&uacute;n Gonz&aacute;lez (2007), los plaguicidas con presiones de vapor menores a 1,0 x 10<sup>-8</sup> mm/Hg tienen bajo potencial para volatilizarse, mientras que con una presi&oacute;n de vapor mayor a 1,0 x 10<sup>-3</sup> tienen alto potencial para volatilizarse; por esta raz&oacute;n, la mayor&iacute;a de los plaguicidas utilizados en la prueba de concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria (CMI) presentaron valores aproximados al rango de volatilizaci&oacute;n en un porcentaje cercano al 50%.</p>      <p><b>Compatibilidad de los plaguicidas en el medio agr&iacute;cola.</b> Los resultados obtenidos demostraron el efecto causado en los dos tiempos de contacto de los plaguicidas sobre la bacteria <i>A. chroococcum</i> AC1. Cuando se utiliz&oacute; el fungicida 1 al 20% de concentraci&oacute;n sobre <i>A. chroococcum</i> AC1, el resultado demostr&oacute; una disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n celular durante las doce horas de contacto, obteniendo a la hora cero una concentraci&oacute;n celular de 6 x 10<sup>9</sup> UFC/mL y a las doce horas una concentraci&oacute;n de 6 x 10<sup>8</sup> UFC/mL; el efecto de este plaguicida produjo un descenso celular en una unidad logar&iacute;tmica (<a href="#f3">figura 3</a>); sin embargo, se podr&iacute;a inferir que el efecto inhibitorio del plaguicida sobre <i>A. chroococcum</i> AC1 no es tan relevante debido a que el microorganismo durante este tiempo pudo tolerarlo sin afectar completamente su biomasa; este resultado es similar al obtenido utilizando la metodolog&iacute;a de Gauze, lo que confirma la resistencia del microorganismo al aplicar este agroqu&iacute;mico.</p>       <p align="center"><a name="f3"><img src="img/revistas/biote/v12n1/v12n1a10f3.JPG">       <p>Al utilizar el fungicida 2 al 10%, se observ&oacute; que durante las primeras horas de contacto el microorganismo no sufre un descenso en su viabilidad de forma significativa; mientras que, a las doce horas de contacto, la bacteria disminuye su concentraci&oacute;n celular en una unidad logar&iacute;tmica lo cual es muy similar al resultado obtenido con el fungicida 1 permitiendo inferir que probablemente los ingredientes activos presentes en estos dos fungicidas son los responsables de generar un efecto negativo m&iacute;nimo en la concentraci&oacute;n celular de <i>A. chroococcum</i> AC1, en el caldo agr&iacute;cola (<a href="#f3">figura 3</a>).</p>      <p>Al adicionar S-metolachlor (0,75%) en contacto con <i>A. chroococcum</i> AC1, a la hora cero se reporta una concentraci&oacute;n celular de 9 x 107 UFC/mL, lo cual demuestra que en este tiempo el microorganismo sufre un descenso de dos unidades logar&iacute;tmicas en la concentraci&oacute;n en comparaci&oacute;n con el recuento inicial; sin embargo, la biomasa de <i>A. chroococcum</i> AC1, es constante a lo largo de las doce horas, permitiendo inferir la adaptaci&oacute;n o posible resistencia de este microorganismo al herbicida en contacto sin ocasionar un efecto dr&aacute;stico sobre la viabilidad de la bacteria (<a href="#f3">figura 3</a>). Este resultado es similar al reportado por Gonz&aacute;lez-L&oacute;pez et al. (1999), quienes afirman que al agregar S-metolachlor en una dosis entre 5-50 µg/mL <i>A. chroococcum</i> no sufre un efecto negativo significativo en su concentraci&oacute;n, sin causar alteraciones en la producci&oacute;n de amino&aacute;cidos por este microorganismo.</p>      <p>Estudios realizados por Gonz&aacute;lez-L&oacute;pez et al. (1999) registraron la influencia de herbicidas tales como: alachlor, 2,4-D, 2,4,5-T y 2,3,6- TBA alrededor del 95% sobre la inhibici&oacute;n de <i>A. chroococcum</i>, afectando la producci&oacute;n de amino&aacute;cidos y su actividad biol&oacute;gica.</p>      <p>Por otra parte, los agroqu&iacute;micos Imidacloprid, Fluometurom y Glifosato no influyeron en la viabilidad de <i>A. chroococcum</i> AC1, en los dos tiempos de contacto evaluados, manteniendo una &oacute;ptima concentraci&oacute;n del microorganismo bajo la dosis aplicada en campo (<a href="#f3">figura 3</a>).</p>      <p>El Glifosato, tanto en el ensayo de Gauze como en la evaluaci&oacute;n de la compatibilidad con el medio agr&iacute;cola al emplear diferentes dosis (0,5%, 1% y 1,5%), present&oacute; un crecimiento masivo sin afectar la biomasa de la bacteria. Estos resultados son similares a los reportados por Giesy et al. (2000), que registran un bajo efecto del Glifosato sobre la poblaci&oacute;n de los microorganismos del suelo. Por otra parte, la mol&eacute;cula del plaguicida no permanece intacta por tiempo indefinido en el medioambiente, debido a que con el tiempo sufre una degradaci&oacute;n influenciada por microorganismos, actividad qu&iacute;mica, pH, temperatura y contenido de materia org&aacute;nica del suelo, entre otros (Giesy et al., 2000). De acuerdo con lo anterior, se podr&iacute;a pensar que existe la posibilidad de que el herbicida fue degradado por <i>A. chroococcum</i> AC1, sin causar ning&uacute;n efecto inhibitorio sobre su crecimiento, lo cual confirmar&iacute;a los resultados obtenidos por Santos y Flores (1995), sobre el posible efecto del Glifosato en el crecimiento, la respiraci&oacute;n y la fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno de A. chroococcum y <i>A. vinelandii</i> siendo demostrado el efecto t&oacute;xico en <i>A. vinelandii</i>; mientras que no hubo efecto en la tasa de crecimiento de A. chroococcum al utilizar altas dosis de este herbicida (20 kg ha<sup>-1</sup> y 28 kg ha<sup>-1</sup> de Glifosato) se produjo un efecto significativo sobre A. vinelandii y <i>A. chroococcum</i>, afectando la respiraci&oacute;n en 60% y la fijaci&oacute;n biol&oacute;gica de nitr&oacute;geno en el orden del 80% y 98%, respectivamente; por esta raz&oacute;n, la dosis manejada en el presente estudio (1 kg ha<sup>-1</sup>), permiti&oacute; garantizar que el Glifosato no produjera ning&uacute;n efecto sobre la viabilidad de la bacteria, la cual corresponde a la dosis aplicada en los cultivos de algod&oacute;n.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los resultados revelan que cuando se utiliz&oacute; el insecticida con base en Imidacloprid, estar&iacute;a indirectamente favorecido por el aporte de nutrientes resultante de la degradaci&oacute;n de este compuesto, los cuales podr&iacute;an ser utilizados como fuente de energ&iacute;a por el microorganismo (Tu, 1995). El resultado demostr&oacute; que al realizar la metodolog&iacute;a de compatibilidad en medio agr&iacute;cola no se obtuvo descenso en la concentraci&oacute;n celular, por lo cual se podr&iacute;a pensar muy posiblemente que este compuesto qu&iacute;mico no afecta la biomasa del microorganismo revalidando los resultados obtenidos anteriormente.</p>      <p>La Cipermetrina demostr&oacute; un efecto inhibitorio sobre la concentraci&oacute;n celular de A. chroococcum AC1, a la hora cero 70 x 10<sup>5</sup> UFC/mL utilizando dosis al 40%, 50% y 60%. No obstante, a las doce horas de haber agregado este insecticida, la concentraci&oacute;n celular del microorganismo present&oacute; un ascenso en una unidad logar&iacute;tmica, debido posiblemente a la degradaci&oacute;n de este compuesto por <i>A. chroococcum</i> AC1. La Cipermetrina present&oacute; influencia negativa sobre la biomasa de este microorganismo en el momento de ser agregada (<a href="#f3">figura 3</a>).</p>      <p>La mezcla 1 de los agroqu&iacute;micos (fungi cidas+insecticidas+herbicidas) en las dosis aplicadas en campo presenta, a la hora cero de contacto, un efecto inhibitorio significativo de los agroqu&iacute;micos en su conjunto sobre <i>A. chroococcum</i> AC1, lo que permite inferir que posiblemente existe sinergia de todos o algunos de los componentes agregados en la mezcla con Cipermetrina generando un efecto que al cabo del tiempo impide el desarrollo normal del microorganismo (<a href="#f3">figura 3</a>).</p>      <p>Debido a que la Cipermetrina present&oacute; un efecto negativo individualmente sobre <i>A. chroococcum</i> AC1, a la hora de contacto, disminuyendo en cuatro unidades logar&iacute;tmicas la viabilidad del microorganismo, se procedi&oacute; a evaluar una nueva mezcla sin la adici&oacute;n de Cipermetrina (mezcla 2), la cual present&oacute; a las doce horas de contacto un efecto m&iacute;nimo sobre la viabilidad del microorganismo; este resultado permiti&oacute; establecer que no hubo un efecto significativo (P<0,05) sobre <i>A. chroococcum</i> AC1, cuando no se agreg&oacute; la Cipermetrina (<a href="#f3">figura 3</a>).</p>      <p>Los resultados revelan que <i>A. chroococcum</i> AC1 es susceptible al contacto con el insecticida Cipermetrina en la dosis normalmente aplicada en campo, tanto de forma individual o en mezcla de los agroqu&iacute;micos, induciendo de esta manera a los dem&aacute;s plaguicidas a una expresi&oacute;n m&aacute;s fuerte a trav&eacute;s del tiempo (<a href="#f3">figura 3</a>). Contrario a este resultado, al utilizar la metodolog&iacute;a de Gauze (concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria) no se present&oacute; inhibici&oacute;n de A. chroococcum AC1 por parte de la Cipermetrina, lo cual posiblemente se puede atribuir al proceso de precipitaci&oacute;n en el medio s&oacute;lido evitando que se pudiese observar la respuesta de dicho plaguicida frente al microorganismo, en comparaci&oacute;n con el medio l&iacute;quido donde fue visible el efecto.</p>      <p><b>Conclusiones</b></p>      <p>El efecto de compatibilidad de la bacteria con los herbicidas (S-metolachloro y Fluometuron) demostr&oacute; que <i>A. chroococcum</i> AC1, puede ser usado con los plaguicidas conjuntamente, sin alterar su concentraci&oacute;n.</p>      <p>La utilizaci&oacute;n de la Cipermetrina sola, o en mezcla con los otros agroqu&iacute;micos, causa un descenso dr&aacute;stico sobre la poblaci&oacute;n de A. chroococcum AC1.</p>      <p>Carboxim, Thiram, Imidacloprid individuales o en mezcla, sin Cipermetrina, no afectan significativamente el crecimiento de A. chroococcum AC1.</p>      <p>Este estudio preliminar contribuye a la comprensi&oacute;n de los efectos de agroqu&iacute;micos sobre <i>Azotobacter chroococcum</i> AC1 in vitro, por lo que se sugiere adelantar investigaciones m&aacute;s profundas en la b&uacute;squeda de microorganismos con potencial de degradaci&oacute;n de sustancias qu&iacute;micas en el suelo y su uso compatible en cultivos de inter&eacute;s agr&iacute;cola.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Agradecimientos</b></p>      <p>Los autores expresan sus agradecimientos a la Estaci&oacute;n Experimental Motilonia y al Centro de Biotecnolog&iacute;a y Bioindustria CBBCorpoica.</p>      <p><b>Referencias bibliogr&aacute;ficas</b></p>      <!-- ref --><p>1 Bonilla, B. R., Morales, G. 2005. Monibac: un biofertilizante con base en cepas nativas de Azotobacter sp. para incrementar la productividad y sostenibilidad del algodonero. Innovaci&oacute;n y cambio tecnol&oacute;gico. Bogot&aacute;: Corpoica. p. 30-34. Disponible en:  <a href="http://www.corpoica.org.co/SitioWeb/Archivos/Revista/5_Monibac_v4n2-3.PDF" target="_blank">http://www.corpoica.org.co/SitioWeb/Archivos/Revista/5_Monibac_v4n2-3.PDF</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0123-3475201000010001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2 Doyle, M., Beuchat, L., Montville, T. 2000. Microbiolog&iacute;a de los alimentos fundamentos y fronteras. Espa&ntilde;a: Acribia. p. 312-320.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0123-3475201000010001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3 Dur&aacute;n, L. 1996. Aislamiento de bacterias fosfatosolubilizadoras en fincas de los municipios de Bojac&aacute;, Gachancipa, Sop&oacute; en el departamento de Cundinamarca. Bacteriolog&iacute;a. Pontificia Universidad Javeriana. Facultad de Ciencias B&aacute;sicas. Bogot&aacute;. p. 56-64.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0123-3475201000010001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4 Garc&iacute;a, A., Ord&oacute;&ntilde;ez, D. 2003. Tesis de grado. Pontificia Universidad Javeriana. Aislamiento y caracterizaci&oacute;n de bacterias no filamentosas con capacidad degradadora de plaguicidas a partir de suelo superficial de cultivos de arroz (oryza sativa L,).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0123-3475201000010001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5 Giesy, J. P., Dobson, S., Solomon, K. R. 2000. Reviews of Environmental Contamination and Toxicology 167: 35-120.       &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0123-3475201000010001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6 Gonz&aacute;lez, J., Lluch, C. 1992. Biolog&iacute;a del nitr&oacute;geno. Interacci&oacute;n planta-microorganismo. Madrid: Rueda. p. 141-161.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0123-3475201000010001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7 Gonz&aacute;lez-L&oacute;pez, M., Mart&iacute;nez-Toledo., Rodelas, B., Salmer&oacute;n, V. 1999. Effect of some herbicides on the production of lisine by <i>Azotobacter chroococcum</i>. Department of Microbiology. University of Granada, Amino Acids 17: 165-173.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0123-3475201000010001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8 Gonz&aacute;lez, M. R. 2007. Presencia de residuos de fungicidas e insecticidas en muestras comerciales de hortalizas de hojas. Universidad de Vigo. Ourense. Departamento de Qu&iacute;mica Anal&iacute;tica y Alimentaria. p. 11-13.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0123-3475201000010001000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9 Madigan, M., Martinko, J., Parker, J. 2004. Brock. Biolog&iacute;a de los microorganismos. 10 edici&oacute;n revisada. Madrid: Prentice Hall Iberia. p. 986.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0123-3475201000010001000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10 Paoletti, M. G. 1999. The role of earthworms for assessment of sustainability and as bioindicators. Agriculture, Ecosystems and Environment 74 (1-3): 137-155.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0123-3475201000010001000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11 Racke, D. 1990. Pesticides in the soil microbial ecosistem. En enhanced biodegradation of pesticides in the environment. Washington D.C.: American Chemistry Society. p. 625.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0123-3475201000010001000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12 Santos, A. Flores, M. 1995. Effects of glyphosate on nitrogen of fixation of free-living heterotrophic bacteria. Journal Microbiology 20 (6): 349-352.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0123-3475201000010001000012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13 Tu, C. M. 1995. Effect of five insecticides on microbial and enzymatic activities in sandy soil. J Environ Sci Health 30: 289-306.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0123-3475201000010001000013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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