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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Distribución y diversidad genética de Begomovirus que infectan tomate (Solanum lycopersicum L) en Colombia]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Ciencias Agropecuarias área de énfasis mejoramiento genético  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Diseased caused by begomoviruses (Family Geminiviridae) constitute a serious constraint to tomato production in Colombia. However characterization of these new viruses had not been carried out so far. Here we report a large scale survey on the distribution and genetic diversity of tomato infecting geminiviruses which are affecting mayor growing area of this crop in the country. Viruses were detected by PCR using universal primers for members of genus Begomovirus. The RFLP analysis of PCR-amplified fragments showed individual and mixed infections of several geminiviruses in many of the samples. PCR-amplified fragments were cloned and sequenced. Based on sequence comparations and phylogenetic analysis, the Colombian geminivirus isolates were new world bipartite geminiviruses showing close relationship with PYMV and ToVEV. By means of bioinformatic analysis of cis-acting elements (iterons) involved in DNA replication of rep gene of Colombian geminivirus isolates was possible to postulate possible pseudorecombinación events that could occur between them but also confirm the occurrence of mixed infections.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="right"><font face="verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULO DE INVESTIGACI&Oacute;N</b></font></p>     <p><font size="4"><b> Distribuci&oacute;n  y diversidad gen&eacute;tica de <i>Begomovirus</i> que infectan tomate (<i>Solanum lycopersicum</i> L) en Colombia </b></font></p>     <p><font size="3"> Distribution and genetic diversity of tomato -infecting <i>Begomovirus</i> in Colombia </font></p>     <p><i> Juan Carlos Vaca-Vaca (MSc-PhD)<sup>1</sup>, Jhon Fredy Betancur-P&eacute;rez<sup>2</sup>, Karina L&oacute;pez-L&oacute;pez (Ph.D)<sup>3</sup>.</i></p>     <p> <sup>1</sup> Ph.D, Biotecnolog&iacute;a de Plantas; MSc. Microbiolog&iacute;a con &Eacute;nfasis en Biotecnolog&iacute;a;  Profesor del Departamento de Ciencias Agr&iacute;colas. Universidad Nacional de Colombia. AA 237. Palmira Valle del Cauca, Colombia.  Autor para correspondencia: <a href="mailto:jcvacav@unal.edu.co">jcvacav@unal.edu.co</a>    <br> <sup>2</sup> Candidato a Doctor en Ciencias Agropecuarias &aacute;rea de &eacute;nfasis mejoramiento gen&eacute;tico.    <br> <sup>3</sup> Ph.D, Biotecnolog&iacute;a de Plantas; Profesora Asociada del Departamento de Ciencias Biol&oacute;gicas.    <br> </p>     <p>Recibido: noviembre 29 de 2011 Aprobado: junio 14 de 2012</p>  <hr>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Resumen</b></p>     <p> Las enfermedades causadas por los begomovirus, (Familia <i>Geminiviridae</i>) constituyen una serie limitante para la producci&oacute;n del tomate en Colombia. Sin embargo, la caracterizaci&oacute;n de estos virus no ha sido realizada al momento. Aqu&iacute; presentamos los resultados de un muestreo a nivel nacional que buscaba conocer la distribuci&oacute;n y diversidad gen&eacute;tica de los geminivirus que est&aacute;n afectando el cultivo de tomate en Colombia. Los virus fueron detectados mediante PCR, empleando primer universales espec&iacute;ficos para el g&eacute;nero <i>Begomovirus</i>. Los fragmentos amplificados por PCR fueron sometidos a un an&aacute;lisis tipo RFLP cuyos resultados evidenciaron presencia de infecciones mixtas e individuales de geminivirus en la mayor&iacute;a de las muestras recolectadas en campo. Los fragmentos amplificados por PCR fueron clonados y secuenciados. El an&aacute;lisis de secuencia y filogen&eacute;tico mostr&oacute; que los aislados begomovirales colombianos eran gemininivirus bipartitas t&iacute;picos del Hemisferio Occidental y que algunos eran variantes de PYMV y otros de ToTEV. Mediante el an&aacute;lisis de los elementos cis-regulatorios (iterones) presentes en el promotor del gen de la prote&iacute;na asociada a replicaci&oacute;n (Rep) de los begomovirus aislados es posible postular eventos de pseudorecombinaci&oacute;n que podr&iacute;an suceder entre ellos durante la ocurrencia de infecciones mixtas en tomate.</p>     <p><b>Palabras clave</b>: <i>Geminivirus</i>, <i>Solanum licopersicum</i>, PCR-RFLP, infecciones mixtas.</p>      <p><b>Abstract</b></p>     <p> Diseased caused by begomoviruses (Family <i>Geminiviridae</i>) constitute a serious constraint to tomato production in Colombia. However characterization of these new viruses had not been carried out so far. Here we report a large scale survey on the distribution and genetic diversity of tomato infecting geminiviruses which are affecting mayor growing area of this crop in the country. Viruses were detected by PCR using universal primers for members of genus <i>Begomovirus</i>. The RFLP analysis of PCR-amplified fragments showed individual and mixed infections of several geminiviruses in many of the samples.  PCR-amplified fragments were cloned and sequenced. Based on sequence comparations and phylogenetic analysis, the Colombian geminivirus isolates were new world bipartite geminiviruses showing close relationship with PYMV and ToVEV. By means of bioinformatic analysis of cis-acting elements (iterons) involved in DNA replication of rep gene of Colombian geminivirus isolates was possible to postulate possible pseudorecombinaci&oacute;n events that could occur between them but also confirm the occurrence of mixed infections.</p>     <p><b>Key words</b>: <i>Geminivirus</i>, <i>Solanum licopersicum</i>, PCR-RFLP, mixed infections.</p>  <hr>      <p><b>Introducci&oacute;n</b></p>      <p> En Colombia, las investigaciones sobre enfermedades virales que afectan el cultivo de tomate han sido realizadas por medio de t&eacute;cnicas microsc&oacute;picas, serol&oacute;gicas y/o moleculares, identificando a la fecha virus pertenecientes a los g&eacute;neros: <i>Begomovirus</i>, (<i>Tomato yellow mosaic virus</i> -ToYMV), <i>Tobamovirus</i> (<i>Tobacco mosaic virus</i>  -TMV y/o <i>Tomato mosaic virus</i> -ToMV), <i>Cucumovirus</i> (<i>Cucumber mosaic virus</i>-CMV), <i>Tospovirus</i> (<i>Tomato spotted wilt virus</i> -TSWV, <i>Impatients necrotic spot virus</i> -INSV), <i>Crinivirus</i> (<i>Potato yellow vein virus</i> -PYVV), <i>Potyvirus</i> (<i>Pepper deforming mosaic virus</i> -PepDMV ) y <i>Nepovirus</i>, (<i>Tobacco ringspot virus</i> -TRSV) (Tamayo y Jaramillo, 2006; Uribe-Echeverri, et al. 2011). </p>      <p> Los virus clasificados dentro del g&eacute;nero <i>Begomovirus</i> (Familia <i>Geminiviridae</i>) se caracterizan por tener uno o dos componentes de DNA cadena sencilla, el vector biol&oacute;gico es la mosca blanca (Bemisia tabaci Genn; Homoptera: Aleyrodidae) e infectan plantas dicotiled&oacute;neas (Rojas et al. 2005). Los begomovirus bipartitas tienen dos componentes gen&oacute;micos, DNA-A y DNA-B. El DNA-A presenta cuatro marcos de lectura abiertos (MLA) los cuales codifican prote&iacute;nas requeridas para la replicaci&oacute;n, transcripci&oacute;n y encapsidaci&oacute;n del virus. El DNA-B tiene dos MLA, los cuales codifican prote&iacute;nas asociadas al movimiento viral y al desarrollo de s&iacute;ntomas (Hanley et al. 1999; Guti&eacute;rrez, 2000; Rojas et al. 2005). Rojas et al. (2005) describen que para el establecimiento de una infecci&oacute;n sist&eacute;mica eficiente se necesitan ambos componentes virales los cuales son encapsidados en forma independiente. </p>      <p> Los begomovirus  han sido considerados como un grupo emergente de virus en plantas por su severidad en las enfermedades causadas. En las &uacute;ltimas tres d&eacute;cadas se ha observado una alta incidencia de estos virus en regiones tropicales y subtropicales del mundo, causando p&eacute;rdidas devastadoras en producci&oacute;n en cultivos de frijol, yuca, algod&oacute;n, cucurbit&aacute;ceas y tomate (Morales y Anderson, 2001; Polston y Anderson, 1997). Am&eacute;rica Latina ha sido una regi&oacute;n muy afectada en cuanto al surgimiento de nuevos begomovirus, n&uacute;mero de cultivos afectados, p&eacute;rdidas en las cosechas y &aacute;reas agr&iacute;colas devastadas (Morales y Anderson, 2001). Los s&iacute;ntomas t&iacute;picos de la enfermedad causada por begomovirus son mosaicos amarillos brillantes, moteados amarillos, epinastias, clorosis foliar marginal, abultamientos foliares, reducci&oacute;n del &aacute;rea foliar, enanismo, retraso del crecimiento y reducci&oacute;n en tama&ntilde;o de los frutos hasta la abscisi&oacute;n floral en casos extremos (Hanley et al. 1999; Guti&eacute;rrez, 2000; Rojas et al. 2005). </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Reportes realizados por la FAO durante el periodo comprendido entre el a&ntilde;o 1990 y el a&ntilde;o 2007, estiman que la producci&oacute;n de tomate en Colombia pas&oacute; de 505.005 toneladas (en 23.400 ha) a 390.000 toneladas (en 15.000 ha), con una disminuci&oacute;n en el &aacute;rea sembrada del  35.9% (FAOSTAT 2007). De acuerdo a lo reportado por Morales et al. (2002), una de las causas en la disminuci&oacute;n en la producci&oacute;n del cultivo de tomate es la aparici&oacute;n de nuevas enfermedades virales, en especial aquellas causadas por virus del g&eacute;nero <i>Begomovirus</i>.</p>      <p> Dada esta problem&aacute;tica begomoviral en cultivos de tomate, una estrategia para controlarlos es el uso de materiales de tomate resistentes a begomovirus end&eacute;micos del pa&iacute;s. Un primer paso para desarrollar un programa de mejoramiento gen&eacute;tico de tomate con resistencia a virus es conocer la identidad y diversidad gen&eacute;tica de los begomovirus que est&aacute;n afectando el cultivo en Colombia, con el fin de buscar materiales resistentes al begomovirus que prevalecen en las zonas productoras de tomate. En el presente trabajo de investigaci&oacute;n se reporta que las variantes begomovirales que actualmente est&aacute;n afectando el cultivo de tomate en Colombia est&aacute;n relacionados filogen&eacute;ticamente con el <i>Virus del mosaico amarillo</i> de la papa (PYMV) y con el <i>Tomato venezuela virus</i> (ToVEV).</p>      <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>       <p><b><i> Recolecci&oacute;n del material vegetal</i></b></p>      <p> Se colectaron hojas j&oacute;venes de plantas de tomate en 74 fincas en los departamentos del Valle del Cauca, Cundinamarca, Antioquia, Boyac&aacute; y Santander con s&iacute;ntomas caracter&iacute;sticos de la enfermedad begomoviral tales como: mosaicos amarillos brillantes, epinastias, clorosis foliar marginal, abultamientos foliares, reducci&oacute;n del &aacute;rea foliar, enanismo y retraso del crecimiento (Polston y Anderson, 1997). Los sitios de colecta fueron georeferenciados mediante el equipo GPS-CSX-60 (Garmin &reg;).</p>      <p><b><i> Extracci&oacute;n de DNA total</i></b></p>     <p> Con el prop&oacute;sito de llevar a cabo los diferentes an&aacute;lisis moleculares, el tejido foliar de cada muestra colectada fue macerado en nitr&oacute;geno l&iacute;quido (N<sub>2</sub>) y usado para la extracci&oacute;n del DNA gen&oacute;mico, este proceso se llev&oacute; a cabo siguiendo las recomendaciones del fabricante DNeasy Plant mini  Kit (Qiagen, Germany).</p>        <p><b><i> Reacci&oacute;n en Cadena de la Polimerasa (PCR)</i></b></p>     <p> Para la detecci&oacute;n del begomovirus se utiliz&oacute; la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa - PCR (<i>Polymerase Chain Reaction</i>), usando los iniciadores y las condiciones de PCR previamente reportadas por Rojas et al. (1993). La identificaci&oacute;n del componente A se realiz&oacute; usando los juegos de iniciadores PAL1v1978 / PAR1c496, los cuales amplifican una regi&oacute;n de 1.1kb y la identificaci&oacute;n del componente B con los iniciadores PBL1v2040 / PCRc1 los cuales amplifican una regi&oacute;n de 0.6kb. El equipo que se us&oacute; para la amplificaci&oacute;n fue un termociclador ICycler&reg; de BioRad &reg;. Los productos amplificados fueron observados en geles de agarosa al 1% (p/v) te&ntilde;idos con bromuro de etidio (10 ng/&micro;l), visualizados en un transiluminador de luz ultravioleta (Molecular Imager Gel DocXR+ Systems BIORAD &reg;)  y analizados mediante el uso del software Quantity One - 4.6.5 provisto por el fabricante del equipo.</p>      <p><b><i> PCR-RFLP</i></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P> Para determinar polimorfismos entre los fragmentos amplificados del componente A begomoviral, se llev&oacute; a cabo la t&eacute;cnica molecular PCR-RFLP (<i>Polymerase Chain Reaction - Restriction Fragment Length Polymorphism</i>) (Sambrook y Russell, 2001), la cu&aacute;l ha sido reportada para realizar estudios de diversidad gen&eacute;tica de geminivirus (Willment et al. 2001). Para seleccionar las enzimas de restricci&oacute;n se realiz&oacute; una b&uacute;squeda y an&aacute;lisis bioinform&aacute;tico en el Genebank (Benson et al. 2011) de secuencias reportadas para el componente gen&oacute;mico A de begomovirus que est&aacute;n  afectando el  cultivo de tomate en &aacute;reas del Caribe, Centro y Sur Am&eacute;rica, seleccionando las siguientes: <i>Tomato yellow mosaic virus</i> isolate Valle del Cauca (AY126610.1); <i>Potato yellow</i> mosaic Panam&aacute; virus (Y15034.1); <i>Potato yellow</i> mosaic Trinidad virus (AF039031.1); <i>Potato yellow</i> mosaic virus from Martinique (AY126610). Estas secuencias fueron procesadas en el programa Editseq&reg; (software DNASTAR&reg;) con el fin de contar con la secuencia parcial de aproximadamente 1100 pb (secuencia parcial de la prote&iacute;na de la c&aacute;pside, regi&oacute;n com&uacute;n y prote&iacute;na asociada a replicaci&oacute;n) que representan los fragmentos que se amplificaron con los iniciadores de Rojas et al. (1993) utilizados para la reacci&oacute;n de PCR. Las secuencias parciales de los componentes gen&oacute;micos A fueron cortados con diferentes enzimas de restricci&oacute;n en el programa MapDraw&reg; (software DNASTAR&reg;) (datos no mostrados). Con base en este an&aacute;lisis bioinform&aacute;tico se  seleccionaron las enzimas de restricci&oacute;n HincII, PstI, RsaI y SspI como mejores candidatos para el an&aacute;lisis por RFLP (<a href="#t2">Tabla 2</a>, restricci&oacute;n enzim&aacute;tica <i>in silico</i>).</p>      <p align="center"><a name="t1"></a><img src="img/revistas/biote/v14n1/v14n1a07t1.jpg"></p>      <p align="center"><a name="t2"></a><img src="img/revistas/biote/v14n1/v14n1a07t2.jpg"></p>      <p> Para la restricci&oacute;n enzim&aacute;tica <i>in vivo</i>, los fragmentos de 1100pb del componente A fueron amplificados por PCR y digeridos con cuatro enzimas de restricci&oacute;n: RsaI, PstI, SspI y HincII (Invitrogen &reg;). Las reacciones de digesti&oacute;n se llevaron a cabo siguiendo las metodolog&iacute;as descritas por el fabricante y los productos obtenidos fueron separados y visualizados en geles de poliacrilamida al 6% te&ntilde;ido con sales de plata.</p>      <p><b><i> Clonaci&oacute;n y secuenciaci&oacute;n</i></b></p>      <P> Los fragmentos de 1.1kb del componente A fueron purificados mediante el kit (Wizard&reg; Genomic DNA Purification Promega &reg;) y clonados en el vector TOPO TA (Invitrogen&reg;), siguiendo la metodolog&iacute;a descrita por el fabricante. Los fragmentos de 0.6kb del componente B fueron purificados mediante el kit (Wizard  Genomic DNA Purification Promega&reg;), digeridos con la enzima PstI y clonados en el vector pUC19, utilizando la enzima T4 ligasa. Las reacciones de ligaci&oacute;n fueron transformadas en c&eacute;lulas competentes <i>Escherichia coli</i> (One Shot, Invitrogen&reg;) por el m&eacute;todo de choque t&eacute;rmico (Sambrook y Russell 2001). A las colonias transformadas se les extrajo el DNA plasm&iacute;dico con el kit QIAprep Spin Miniprep (Qiagen, Germany) siguiendo la metodolog&iacute;a descrita por el fabricante. Para verificar la presencia del inserto se hizo un an&aacute;lisis de restricci&oacute;n usando las enzimas de restricci&oacute;n EcoRI y PstI, para liberar el inserto del vector TOPO TA y pUC19, respectivamente. Para la secuenciaci&oacute;n de los fragmentos clonados se utilizaron los iniciadores M13 Forward y M13 Reverse, esta fue llevada a cabo por la empresa Macrogen, la cual emplea el m&eacute;todo fluorescente del kit de secuenciaci&oacute;n enzim&aacute;tica The Big Dye Terminador DNA (Perkin - Elmer Inc., Branchburg, NJ) y un secuenciador ABI Prisma 377 (Applied Biosystem Inc. Foster City, CA).</p>       <p><b><i> An&aacute;lisis bioinform&aacute;tico</i></b></p>     <p> Las secuencias fueron editadas y ensambladas mediante el programa CodonCode Aligner&reg; (CodonCode Corporation). Para determinar la identidad de los begomovirus hallados en la presente investigaci&oacute;n, se realiz&oacute; una comparaci&oacute;n de secuencias mediante el algoritmo blastn (Zhang et al. 2000) disponible en la p&aacute;gina web de <i>Nacional Center for Biotechnology Information</i> (<a href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov" target="_blank">www.ncbi.nlm.nih.gov</a>). La edici&oacute;n y alineamiento m&uacute;ltiple de las secuencias parciales correspondientes a 151 nt de la regi&oacute;n 5' del Marco de Lectura Abierto (MLA) del gen de la prote&iacute;na de la capside (CP) de los begomovirus aislados y otros reportados en la base de datos GenBank (Benson et al. 2011), se realiz&oacute; en los programas Bioedit  (Hall, 1999) y ClustalW (Thompson et al. 1997). A partir de estos datos se construy&oacute; una matriz de identidad de secuencias de nucle&oacute;tidos en el programa BioEdit&reg;.</p>      <p> Para establecer y verificar las relaciones de parentesco y geogr&aacute;ficas entre el grupo de begomovirus identificados con otro grupo de begomovirus reportados en la base de datos GenBank GenBank (Benson et al. 2011), se realizaron an&aacute;lisis filogen&eacute;ticos de las secuencias parciales correspondientes a 151 nt de la regi&oacute;n 5' del Marco de Lectura Abierto (MLA) del gen de la prote&iacute;na de la capside (Cp) en el programa Geneious 4.8.3 &reg; Biomatters Ltd (<a href="http://www.geneious.com" target="_blank">www.geneious.com</a>); la similitud gen&eacute;tica  se calcul&oacute; de acuerdo al modelo de distancia gen&eacute;tica de Tamura-Nei (Nei, 1978) y el an&aacute;lisis de  agrupamiento se realiz&oacute; utilizando el m&eacute;todo UPGMA para secuencias de nucle&oacute;tidos (m&eacute;todo gr&aacute;fico de agrupamiento por parejas, que usa el promedio aritm&eacute;tico no ponderado).</p>     <p> La identificaci&oacute;n de secuencia repetitivas (regiones regulatorias o iterones) localizados en la regi&oacute;n promotora del gen de la prote&iacute;na asociada a replicaci&oacute;n (Rep) de los begomovirus  fue realizado con el algoritmo ClustalW presente en la herramienta MEGA (Tamura et al. 2011). Los begomovirus fueron alineados utilizando como se&ntilde;ales el cod&oacute;n de inicio de Rep, la caja TATA de Rep y los interones reportados para PYMV-Guadalupe (Ramos et al. 2003).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Las siguientes secuencias fueron tomadas de la base de datos GenBank (Benson et al. 2011) para realizar los an&aacute;lisis bioinform&aacute;ticos:</p>     <p> <i>Abutilon mosaic Bolivia virus</i> (AbMBV, HM585445),</p>      <p> <i>Abutilon mosaic virus</i> (AbMV, X15983), </p>     <p> <i>African cassava mosaic virus</i> (ACMV, J02057), </p>      <p> <i>Bean dwarf mosaic virus</i> (BDMV, M88179),</p>     <p> <i>Bean golden mosaic virus-&#91;Brazil&#93;</i> (BGMV, M88686), </p>      <p> <i>Bean golden yellow mosaic virus-&#91;Puerto Rico&#93;</i> (BGYMV, M10070), </p>     <p> <i>Chino del tomate virus_Sinaloa</i> (CdTVTo, AF101476.1), </p>      <p> <i>Leonurus mosaic virus</i> (LeMV, U92532),  </p>     <p> <i>Malvastrum yellow mosaic virus</i> (MalYMV, FJ600483.1) </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <i>Pepper golden mosaic virus</i> (PepGMV, AY928516.1);  </p>     <p> <i>Pepper huasteco yellow vein virus_Mexico</i> (PHYVV, X70418.1),  </p>      <p> <i>Potato yellow mosaic Panam&aacute; virus</i> (PYMPV, Y15034.1),  </p>     <p> <i>Potato yellow mosaic Trinidad virus</i> (PYMV-TT, AF039031.1),  </p>      <p> <i>Potato yellow mosaic virus from Martinique</i> (PYMV- Ma, AY126610),  </p>     <p> <i>Potato yellow mosaic virus Puerto Rico</i> (PYMV-To &#91;PR:Tom:04&#93;, AY965897). </p>      <p> <i>Potato yellow mosaic virus-&#91;Guadalupe&#93;</i> (PYMV-To &#91;GP:Tom&#93;, AY120882);  </p>     <p> <i>Potato yellow mosaic virus-&#91;Venezuela&#93;</i> (PYMV-Po &#91;VE&#93;, D00940),  </p>      <p> <i>Sida Brazil virus</i> (SiBV, FN436001),  </p>     <p> <i>Sida golden mosaic Costa Rica virus</i> (SGMCRV, X99550),  </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <i>Sida golden mosaic virus</i> (SiGMV, AF049336),  </p>     <p> <i>Squash leaf curl virus</i> (SqLCV, M38183),  </p>      <p> <i>Tomato chlorotic mottle virus-&#91;Brazil&#93;</i> (ToCMV, AF490004),</p>     <p> <i>Tomato golden mosaic virus</i> (TGMV, K02029), </p>      <p> <i>Tomato leaf curl New Delhi virus</i> (ToLCNDV, U15016),  </p>     <p> <i>Tomato leaf curl virus_Australia</i> (ToLCV-To, S53251),  </p>      <p> <i>Tomato mosaic Barbados virus</i> (ToMBV, AF213013),  </p>     <p> <i>Tomato mottle Taino virus</i> (ToMoTV, AF012300.1),  </p>      <p> <i>Tomato mottle leaf curl Zulia virus</i> (TMoLCV-Zulia, HQ171986.1) </p>     <p> <i>Tomato mottle virus</i> (ToMoV, L14460),  </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <i>Tomato rugose mosaic virus &#91;Brazil&#93;</i> (ToRMV, AF291705),  </p>     <p> <i>Tomato yellow leaf curl Sardinia virus &#91;Italy&#93; </I>(TYLCSV, X61153),  </p>      <p> <i>Tomato yellow leaf curl virus-Mild</i> &#91;Portugal&#93; (TYLCV, AF105975),  </p>     <p> <i>Tomato yellow mosaic virus isolate Valle del Cauca</i> (PYMV-Valle, EU518935),  </p>      <p> <i>Tomato yellow spot virus from Argentina</i> (ToYSV-Ar, FJ538207),  </p>     <p> <i>Tomato yellow vein streak virus</i> &#91;Argentina&#93; (TYVSV-Ar, GQ387369),  </p>      <p> <i>Tomato yellow vein streak virus</i> &#91;Brazil&#93; TYVSV-Br U79998),  </p>     <p> <i>Venezuela tomato geminivirus</i> (ToVEV, AF026464), </p>      <p> <i>Wissadula golden mosaic virus</i> (WGMV, WGU69280).  </p>      <p><b> Resultados y discusi&oacute;n </b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><i> Evidencia de infecciones mixtas de begomovirus que afectan tomate en Colombia.</i></b></p>     <p> Conociendo la alta incidencia que han tenido los <i>Begomovirus</i> (Familia <i>Geminiviridae</i>) en zonas productoras de tomate de la regi&oacute;n Andina Colombiana y el impacto que estos virus ha generado en los agricultores, se realizaron colectas de material vegetal (hojas de tomate) con s&iacute;ntomas virales caracter&iacute;sticos de begomovirus en los departamentos del Valle del Cauca, Boyac&aacute;, Cundinamarca, Antioquia y Santander (Vaca-Vaca et al. 2011). Para determinar la presencia de infecciones mixtas de begomovirus bipartitas en las muestras colectadas, se realiz&oacute; una extracci&oacute;n de DNA total y mediante PCR se amplificaron dos fragmentos de 1100pb y 600pb, correspondientes a una secci&oacute;n del componente geminiviral A y B, respectivamente. Por medio de esta estrategia molecular se evidenciaron begomovirus bipartitas pertenecientes a la Familia <i>Geminiviridae</i> en 24 muestras provenientes de los departamentos de Valle del Cauca, Cundinamarca y Santander (<a href="#t1">tabla 1</a>).</p>      <p> Con el fin de caracterizar las muestras positivas para begomovirus y determinar polimorfismos entre los diferentes virus detectados, se procedi&oacute; a realizar la t&eacute;cnica de RFLP (Polimorfismo de Longitud de Fragmentos de Restricci&oacute;n) a los diferentes fragmentos amplificados por PCR utilizando las enzimas de restricci&oacute;n HincII, PstI, RsaI y SspI (<a href="#t2">tabla 2</a>). Para realizar este an&aacute;lisis se emplearon 9 fragmentos de 1100 pb provenientes de Valle del Cauca (6TuV), Cundinamarca (26SiC, 27SiC, 28SiC, 29SiC, 30SiC) y Santander (59PdCS, 61PdCS y 66CeS). Los an&aacute;lisis de PCR-RFLP permitieron evidenciar la presencia de polimorfismos begomovirales entre las muestras de los diferentes departamentos (<a href="#f1">figura 1</a>).</p>      <p align="center"><a name="f1"></a><img src="img/revistas/biote/v14n1/v14n1a07f1.jpg"></p>      <p> En la muestra del Valle del Cauca (<a href="#f1">figura 1</a>, carril 1) se observ&oacute; digesti&oacute;n del fragmento de 1100pb con las enzimas de restricci&oacute;n RsaI, PstI, SspI y HincII y la suma de los fragmentos obtenidos con las diferentes enzimas fue de 1100bp aproximadamente, lo que indicaba que en la muestra del Valle del Cauca predominaba una &uacute;nica variante begomoviral afectando los cultivos de tomate. En las muestras de Cundinamarca (<a href="#f1">figura 1</a>, carril 2-6) se observ&oacute; digesti&oacute;n con todas las enzimas de restricci&oacute;n utilizadas en el an&aacute;lisis mostrado un alto polimorfismo entre ellas. Con la enzima Pst I se obtuvieron tres patrones de restricci&oacute;n: a) un fragmento de 1100 pb para la muestras 27SiC, 28SiC y 29SiC; b) dos fragmentos de 670 pb y 630 pb para las muestras 26SiC, 28SiC, 29SiC y 30SiC, patr&oacute;n que fue similar al encontrado en la muestra de Valle y muestras de Santander; c) dos fragmentos de 850 y 820pb en la muestra 30SiC. Los resultados de este an&aacute;lisis permitieron evidenciar la presencia de tres entidades begomovirales diferentes en las muestras recolectadas en el departamento de Cundinamarca y se encontr&oacute; que en la muestras 28SiC, 29SiC y 30SiC, exist&iacute;an al menos dos entidades begomovirales presentes en cada muestra analizada. Este mismo resultado se observ&oacute; cuando el an&aacute;lisis de restricci&oacute;n se realiz&oacute; con la enzima Ssp I, donde la suma de los fragmentos liberados por algunas muestras (26SiC, 27SiC, 29SiC y 30SiC) es mayor de 1100 pb, evidenciando la presencia de m&aacute;s de un begomovirus por muestra analizada (<a href="#f1">figura 1</a>, carril 2- 6). Para el caso de las muestras recolectadas en el departamento de Santander (<a href="#f1">figura 1</a>, carril 7-9), el an&aacute;lisis tipo PCR-RFLP arroj&oacute; dos resultados: las muestras 59PdCS y 61PdCS presentaron dos patrones de restricci&oacute;n, implicando la presencia de al menos dos begomovirus diferentes; por su parte la muestra 66CeS present&oacute; un &uacute;nico patr&oacute;n de restricci&oacute;n. Este patr&oacute;n de restricci&oacute;n fue similar al observado cuando se analizaron las muestras 59PdCS y 61PdCS por esta metodolog&iacute;a. Por ejemplo, con la enzima Ssp I se liberan cuatro fragmentos en las muestras 59PdCS y 61PdCS de 850, 750, 600 y 350pb; mientras que la muestra 66CeS libera solo dos fragmentos de 600 y 350pb, respectivamente (<a href="#f1">figura 1</a>, carril 9). Es importante mencionar que las muestras 59PdCS y 61PdCS mostraron el mismo patr&oacute;n de restricci&oacute;n con las cuatro enzimas utilizadas (<a href="#t2">tabla 2</a>), lo que indica que ambas muestras presentan infecciones mixtas causadas por los mismos virus.</p>     <p> Estos resultados evidenciaron una distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica de los begomovirus que est&aacute;n afectando tomate en Colombia: hay un &uacute;nico begomovirus afectando el Valle; al menos tres begomovirus afectando Cundinamarca mientras que para el caso de Santander, se observaron al menos dos geminivirus afectando esta hortaliza. El patr&oacute;n de restricci&oacute;n presentado por el begomovirus de Valle del Cauca fue tambi&eacute;n observado en muestras analizadas de Cundinamarca y Santander, lo que estar&iacute;a indicando que este aislado geminiviral, podr&iacute;a estar presente en las &aacute;reas productoras de tomate ubicadas en estos departamentos.  Sin embargo, vale la pena anotar que algunos de los patrones de restricci&oacute;n observados en las muestras de Cundinamarca y Santander son exclusivos de cada una de estos departamentos. Estos resultados en conjunto nos indicar&iacute;an que al menos cuatro aislados geminivirales diferentes est&aacute;n afectando cultivos de tomate en Colombia.</p>      <p> Otro resultado obtenido de este an&aacute;lisis tipo PCR-RFLP es la detecci&oacute;n de mezclas de begomovirus afectando cultivos de tomate en &aacute;reas biogeogr&aacute;ficas particulares de Colombia. Este fue el caso de las muestras colectadas en los departamentos de Cundinamarca y Santander en los cu&aacute;les se evidencio la presencia de mezclas de al menos dos geminivirus en cada muestra analizada. La presencia de infecciones mixtas de dos o m&aacute;s geminivirus infectando una misma planta son comunes en cultivos ubicados en zonas tropicales y subtropicales del planeta (Harrison et al. 1997; Sanz et al. 2000). Actualmente hay evidencias que indican que la aparici&oacute;n de enfermedades geminivirales cada vez m&aacute;s severas pueden ser debido a las interacciones que entre este tipo de virus se pueden verificar cuando est&aacute;n presentes en infecciones mixtas (Pita et al. 2001). Entre geminivirus que se encuentran coinfectando una misma planta (infecci&oacute;n mixta) diferentes tipos de interacciones pueden verificarse entre ellos: algunas de ellas pueden implicar relaciones de sinergismo, que a la postre pueden conducir a la generaci&oacute;n de enfermedades en el tomate con sintomatolog&iacute;as m&aacute;s acentuadas que aquellas producidas por cada virus por separado, o tambi&eacute;n pueden verificarse interacciones virales antag&oacute;nicas en donde la presencia de un geminivirus particular interfiere con el desarrollo normal del ciclo infectivo del otro geminivirus presente en una misma planta conduciendo a infecciones cuyas sintomatolog&iacute;as son generalmente atenuadas (M&eacute;ndez et al. 2003). Si cualquiera de estos tipos de interacci&oacute;n entre geminivirus se est&aacute; verificando de manera particular en los cultivos de tomate de Santander y Cundinamarca es un t&oacute;pico interesante de abordar en futuras investigaciones.</p>      <p><b><i> El cultivo de tomate en Colombia es afectado por begomovirus relacionados con el Potato yellow mosaic virus y el Tomato venezuela virus </i></b></p>     <p> Con el fin de establecer la identidad de los begomovirus previamente detectados por PCR-RFLP, se procedi&oacute; a clonar y secuenciar los productos amplificados de los componentes A y B (<a href="#t1">tabla 1</a>). Para el componente gen&oacute;mico geminiviral A, se obtuvieron 13 clones en total: dos del Valle del Cauca provenientes de Tulu&aacute; (6TuV-A) y Caicedonia (7CaV-A); Siete clones de Cundinamarca, provenientes de fincas ubicadas en la localidad  de Silvania (27SiC-A, 28SiC-A, 29SiC1-A, 29SiC2-A, 30SiC1-A, 30SiC2-A, 30SiC3-A) y cuatro clones de Santander provenientes de las localidades de Pie de Cuesta (58PdCS-A, 59PdCS-A, 61PdCS-A) y Cepita (66CeS-A). Para el caso del componente gen&oacute;mico geminiviral B, se obtuvieron nueve clones en total: tres del Valle del Cauca provenientes de Pradera (5PrV-B), Caicedonia (7CaV-B) y Barrag&aacute;n (8BaV-B); cuatro de Cundinamarca provenientes de fincas en la localidad Silvania (26SiC-B, 27SiC-B, 28SiC-B, 29SiC-B) y dos de Santander provenientes de la localidad de Pie de Cuesta (59PdCS-B, 61PdCS-B).</p>      <p> Estos 22 fragmentos clonados fueron secuenciados, ensamblados y analizados en el programa blastn (Zhang et al. 2000). Los fragmentos correspondientes al componente gen&oacute;mico A presentaron un rango de longitud entre 1186 - 1287 bp y los fragmentos correspondientes al componente gen&oacute;mico B, una longitud de 510 - 558 bp. El an&aacute;lisis bioinform&aacute;tico de la secuencia de nucle&oacute;tidos de los fragmentos 29SiC1-A y 29SiC2-A indic&oacute; la presencia del mismo fragmento clonado, por lo tanto a partir de este momento se denomin&oacute; 29SiC-A. Este mismo hecho se observ&oacute; para los fragmentos provenientes de la muestra 30SiC-A, los cuales mostraron ser id&eacute;nticos entre s&iacute;. La secuencia de nucle&oacute;tidos de estos 19 fragmentos fue depositada en la base de datos Genbank (<a href="#t1">tabla 1</a>).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> El an&aacute;lisis con blastn para cada una de las secuencias de nucle&oacute;tidos provenientes del componente A geminiviral permiti&oacute; determinar la presencia de 3 entidades virales relacionadas con el <i>Virus del mosaico amarillo</i> de la papa (<i>Potato yellow mosaic virus</i>- PYMV) y <i>Tomato venezuela virus</i> (ToVEV) (<a href="#t3">tabla 3</a>). Dos fragmentos aislados de Valle del Cauca (6TuV-A, 7CaV-A) y dos de Cundinamarca (28SiC-A, 30SiC-A) presentaron su mayor porcentaje de identidad (96-99%) con Tomato yellow mosaic virus isolate Valle del Cauca (AY126610.1) (nombre propuesto no aceptado oficialmente por ICTV ya que se considera este puede ser una variante de PYMV; en este escrito se propone el acr&oacute;nimo PYMV-Valle para referirse a este virus), un begomovirus previamente reportado en Colombia infectando cultivos de tomate en la localidad de Rozo- Valle del Cauca (Mart&iacute;nez et al. 2008). Dos clones identificados en Cundinamarca (27SiC-A y 29SiC-A) presentaron identidades de 83% con Venezuela tomato geminivirus (AF026464.1), un begomovirus aislado de cultivos de tomate en Venezuela (Guzm&aacute;n et al. 1997) y posteriormente denominado ToVEV (<i>Tomato Venezuela virus</i>) por Arg&uuml;ello-Astorga & Ruiz-Medrano (2001). Por su parte, tres clones aislados en el departamento de Santander (58PdCS-A, 59PdCS-A, 61PdCS-A) presentaron valores de identidad de 93-94% con <i>Potato yellow mosaic</i> virus aislado Martinique (AF026464.1) un begomovirus reportado en el a&ntilde;o 2004 infectando plantas de tomate en isla Martinica (Urbino et al. 2004), mientras que el clon 66CeS-A tambi&eacute;n aislado en el departamento de Santander present&oacute; una identidad de 83% con Venezuela tomato virus (ToVEV). Estos resultados permiten afirmar que en las infecciones mixtas de geminivirus detectadas en este estudio afectando el cultivo tomate en Colombia hay tanto aislados begomovirales relacionados con PYMV como variantes lejanamente relacionados con el geminivirus ToVEV.</p>      <p align="center"><a name="t3"></a><img src="img/revistas/biote/v14n1/v14n1a07t3.jpg"></p>      <p> Para los fragmentos parciales del componente gen&oacute;mico geminiviral B, el an&aacute;lisis blastn de los clones 5PrV-B, 7CaV-B, 8BaV-B, 26SiC-B, 27SiC-B, 28SiC-B y 29SiC-B mostr&oacute; valores de identidad del 81 al 92% con PYMV aislado Panam&aacute; (Y15033.1). Mientras que el clon 59PdCS-B present&oacute; una identidad de 82% con PYMV aislado Puerto Rico (AY126613.1) y el clon 61PdCS-B una identidad de 82% con PYMV aislado Trinidad & Tobago (AF039032.1). La amplia diversidad a nivel de secuencia que presenta el fragmento correspondiente al componente gen&oacute;mico B con otros  geminivirus reportados en el Genebank es una situaci&oacute;n bastante com&uacute;n entre cepas de geminivirus bipartitas (Brown et al. 2005).</p>     <p> En conjunto estos resultados permiten plantear la posibilidad de que posibles eventos de pseurecombinaci&oacute;n podr&iacute;an ocurrir (Padidam et al. 1999) entre estos geminivirus, cuando &eacute;stos se encuentren presentes en  infecciones mixtas en plantas de tomate. Si estos posibles eventos de pseudorecombinaci&oacute;n se constituyen en una fuente de origen de nuevas variantes geminivirales que conduzcan al desarrollo de patolog&iacute;as m&aacute;s severas en este cultivo ser&aacute; materia de futuras investigaciones.</p>      <p> El gen de la c&aacute;pside (CP) presenta el mayor grado de conservaci&oacute;n de todos los genes de los geminivirus (Wyatt & Brown, 1996), por tanto a partir del an&aacute;lisis de la secuencia del gen CP se puede preliminarmente inferir la identidad de un begomovirus particular, as&iacute; como su distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica y su relaci&oacute;n con su vector biol&oacute;gico (Brown et al. 2001; Fauquet et al. 2008). A partir de este criterio se procedi&oacute; a realizar una matriz de identidad (<a href="#t4">tabla 4</a>) utilizando aproximadamente 151nt del extremo 5'del MLA de CP de cada uno de los 10 begomovirus aislados y se compararon contra las secuencias de un grupo de begomovirus reportados previamente afectando el tomate en otras latitudes del planeta y cuyas secuencias reposan en el GenBank (ver metodolog&iacute;a). Por medio de este an&aacute;lisis  se pudo evidenciar que  dos  begomovirus diferentes est&aacute;n afectando el tomate en Colombia: un primer grupo de ellos (clones 6TuV-A, 7CaV-A, 27SiC-A, 28SiC-A, 29SiC-A y 30SiC-A recolectados en los departamentos del Valle del Cauca y Cundinamarca), est&aacute;n relacionados con el PYMV tentativamente reportado como PYMV-Valle, con valores de identidad del 0,97 al 1. Este resultado podr&iacute;a indicar que PYMV emergi&oacute; simult&aacute;neamente en estas dos regiones del pa&iacute;s bien sea por la diseminaci&oacute;n efectiva del mismo por parte de su vector biol&oacute;gico o bien sea por el transporte de material vegetal infectado por este virus de entre estas dos regiones. Un segundo grupo de geminivirus (clonas 58PdCS-A, 59PdCS-A, 61PdCS-A y 66CeS-A todos provenientes de muestras colectadas en el departamento de Santander) que se encontraron afectando el cultivo de tomate en Colombia est&aacute;n relacionados con Tomato venezuela virus (ToVEV) con valores de identidad del 0,96 - 0,99. Es posible que la prevalencia de PYMV as&iacute; como de ToVEV afectando el cultivo de tomate en Colombia en diferentes zonas geogr&aacute;ficas del pa&iacute;s pueda ser el producto de una r&aacute;pida emergencia, a lo largo de un periodo medianamente largo de adaptaci&oacute;n a este hospedero, lo que condujo a un desplazamiento de cepas virales menos adaptadas al mismo, como se ha documentado en M&eacute;xico y Brasil en los &uacute;ltimos a&ntilde;os (Polston & Anderson, 1997; Riveiro et al. 2003). Este mismo  resultado puede reflejarse en el &aacute;rbol filogen&eacute;tico elaborado con las secuencias de CP de los geminivirus encontrados afectando el cultivo de tomate en campo (<a href="#f2">figura 2</a>) en donde el porcentaje de identidad para miembros de un mismo grupo estaba en concordancia con el criterio de identidad de CP (Brown et al. 2001). Estos resultados indican que diferentes cepas de begomovirus est&aacute;n afectando el cultivo de tomate en Colombia en diferentes zonas biogeogr&aacute;ficas del pa&iacute;s: es decir que los geminivirus que afectan el tomate en los departamentos de Valle del Cauca y Cundinamarca est&aacute;n principalmente relacionados con el PYMV, mientras que  begomovirus que afectan este mismo cultivo pero en Santander est&aacute;n relacionados con ToVEV, un geminivirus no emparentado con el PYMV (Guzm&aacute;n et al. 1997; Arg&uuml;ello & Medrano, 2001; Romay et al. 2010). Asimismo de los cladogramas se puede inferir que los geminivirus que afectan al tomate en Colombia todos pertenecen al hemisferio occidental (<a href="#f2">figura 2</a>) pues se agrupan junto con otros begomovirus reportados en esta parte del planeta tales como PHYVV, SiGMV, AbMV, PePGMV y BDMV este &uacute;ltimo ampliamente reportado afectando el cultivo de frijol en Colombia. A la fecha y de acuerdo a los resultados obtenidos en este estudio no hay evidencia de que alg&uacute;n geminivirus monopartita perteneciente al hemisferio oriental se encuentra afectando cultivo de tomate en Colombia (datos no mostrados).</p>      <p align="center"><a name="f2"></a><img src="img/revistas/biote/v14n1/v14n1a07f2.jpg"></p>      <p align="center"><a name="t4"></a><img src="img/revistas/biote/v14n1/v14n1a07t4.jpg"></p>      <p> Al realizar el an&aacute;lisis de secuencias de &aacute;cidos nucleicos para el extremo 5' del gen de la prote&iacute;na asociada a replicaci&oacute;n (Rep) de cada una de las clonas, se encontr&oacute; la presencia de cuatro variantes virales asociadas a PYMV: una primera asociada a PYMV-Valle con valores de identidad entre 0,96 y 0,99 con los clones 6TuV-A, 7CaV-A, 28SiC-A y 30SiC-A identificados en los departamentos de Valle del Cauca y Cundinamarca; una segunda entidad viral asociada a PYMV-Ma con valores de identidad de 0,93 con los clones 58PdCS-A, 59PdC-A y 61PdCS-A identificados en el departamento Santander; una tercera entidad asociada a CdTVTo con valores de identidad de 0,82 y 0,83 con los clones 27SiC-A y 29SiC-A; y una cuarta entidad viral asociada con los begomovirus PYMV - TT y BDMV con una identidad de 0,86 con el clon 66CeS-A identificado en el departamento de Santander (<a href="#t4">Tabla 4</a>). Es interesante encontrar tres clones, 27SiC-A, 29SiC-A y 66CeS-A, que a nivel de CP tienen una identidad de 0,94 -1,0 con PYMV, pero cuando se compara con Rep esta identidad tiene un valor bajo (<a href="#t4">Tabla 4</a>).  Este mismo resultado se encuentra cuando se compara su regi&oacute;n interg&eacute;nica (RI) encontrado un valor de identidad con PYMV de 0,47 (datos no mostrados). Con el fin de establecer la identidad de estos begomovirus, actualmente se est&aacute; trabajando en el laboratorio en la obtenci&oacute;n del genoma completo de 27SiC-A, 29SiC-A y 66CeS-A.</p>      <p><b><i> An&aacute;lisis de interones presentes en el promotor del gen de la prote&iacute;na asociada a la replicaci&oacute;n (Rep) de los begomovirus que afectan tomate en Colombia </i></b></p>     <p> Los geminivirus han evolucionado gracias a eventos de recombinaci&oacute;n y pseudorecombinaci&oacute;n sucedidos entre ellos a lo largo de la escala evolutiva (Van der Waltz et al. 2009; Padidam et al. 1999). Ese &uacute;ltimo mecanismo evolutivo (pseudorecombinaci&oacute;n) est&aacute; determinado en gran medida por la similitudes a nivel del los elementos cis-regulatorios (particularmente los iterones) presentes en el promotor del gen de la prote&iacute;na asociada a la replicaci&oacute;n (Rep) de estos virus. Basado en la teor&iacute;a del iter&oacute;n (Arg&uuml;ello-Astorga et al. 1994; Arg&uuml;ello-Astoga & Ruiz-Medrano, 2001) se realiz&oacute; el an&aacute;lisis bioinform&aacute;tico de los elementos cis-regulatorios (enfocado en la identificaci&oacute;n de los iterones) presentes en el promotor del gen de la prote&iacute;na asociada a la replicaci&oacute;n (Rep) de cada uno de los aislados geminivirales que se encontraron afectando el tomate en Colombia (<a href="#f3">figura 3</a>). La clona 59PdCS-A se descart&oacute; de este an&aacute;lisis dado que presenta una delecci&oacute;n en la regi&oacute;n com&uacute;n que no permite obtener resultados v&aacute;lidos. Por medio de este an&aacute;lisis se obtuvieron los siguientes resultados: primero, la disposici&oacute;n y n&uacute;mero de los iterones presentes en la regi&oacute;n promotora de Rep de los aislados geminivirales colombianos es similar a la que presentan los geminivirus presentes en el Hemisferio Occidental, de acuerdo al an&aacute;lisis filogen&eacute;tico y estructural publicado por Arg&uuml;ello-Astorga y colaboradores (1994). Segundo, de acuerdo a la disposici&oacute;n y orientaci&oacute;n de los iterones presentes en la regi&oacute;n promotora de Rep de los aislados geminivirales colombianos se puede hablar que &eacute;stos se distribuyen en dos grupos: un primer grupo de geminivirus (28SiC-A,30SiC-A, 6TuV-A, 7CaV-A, 58PdCS-A y 61PdCS-A) tienen cuatro iterones, dos en sentido directo y dos en sentido invertido, con una secuencia consenso AHHGGGGG; un segundo grupo de geminivirus (66CeS-A, 27SiC-A y 29SiC-A) que afectan el tomate en Colombia presentan una disposici&oacute;n diferente presentando &uacute;nicamente tres iterones, dos en sentido directo y uno en sentido invertido, con dos secuencias consensos: ATYGGKGT para 66CeS-A y ATTSGGTR para los aislados 27SiC-A y 29SiC-A. Esta &uacute;ltima secuencia consenso de iterones es diferente a las reportadas a la fecha en otros geminivirus del hemisferio occidental y la cu&aacute;l seria un aporte novedoso de este trabajo.  Tomando como base el resultado de estos an&aacute;lisis de iterones presentes en la regi&oacute;n promotora de Rep de los aislados geminivirales  que se encontraron afectando el tomate en Colombia se puede hipotetizar lo siguiente: </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f3"></a><img src="img/revistas/biote/v14n1/v14n1a07f3.jpg"></p>      <p><ol>       <li> Aquellos aislados geminivirales colombianos que tienen iterones cuyo consenso es AHHGGGGG presentes en muestras de Valle del Cauca, Santander y Cundinamarca no solo pueden sufrir eventos de pseudorecombinaci&oacute;n entre ellos sino adem&aacute;s con otros begomovirus cuyos iterones sean similares a nivel de secuencia tales como PYMV-Guadalupe, PYMV-Valle, ToMoTV y MalYMV. Si bien es cierto que ToMoTV, MalYMV y PYMV-Guadalupe no han sido reportados en Colombia afectando el tomate, no seria descabellado suponer que con el trasiego de material vegetal en un mundo globalizado como &eacute;ste, la introducci&oacute;n de estos geminivirus y su posible pseudorecombinaci&oacute;n con cualquiera de los aislados colombianos cuyos iterones sean similares podr&iacute;a conducir a una enfermedad geminiviral m&aacute;s acentuada (sinergismo) en tomate causando mayores p&eacute;rdidas a los productores. Existen pruebas irrefutables que dos geminivirus pueden pseudorecombinarse gracias a que la secuencia consenso de sus iterones era similar; los estudios que llevaron  a cabo Ramos y colaboradores en 2003 comprobaron, por medio de ensayos de inoculaci&oacute;n por biobalistica, que el virus taino del tomate (ToMoTV) co-bombardeado junto con el PYMV-Guadalupe en plantas de tomate y tabaco produc&iacute;an la aparici&oacute;n de s&iacute;ntomas t&iacute;picos de la enfermedad geminiviral. Ambos virus ten&iacute;an secuencias de iterones similares y jam&aacute;s se hab&iacute;an reportado juntos afectando el tomate. Es posible que este sinergismo entre geminivirus pueda evolutivamente permitirles la conquista de nuevos hospederos mediante una r&aacute;pida adaptaci&oacute;n a los mismos. </i>      <li> En cuanto se refiere a los aislados geminivirales colombianos cuyos iterones tienen secuencias consenso ATYGGKGT y ATTSGGTR, estos no podr&iacute;an pseudorecombinarse entre ellos ni con aquellos aislados geminivirales cuyo iter&oacute;n tenga la secuencia consenso AHHGGGGGG. Es decir, posiblemente al encontrarse ambos aislados en una misma planta de tomate en vez de darse una relaci&oacute;n sin&eacute;rgica posiblemente se dar&iacute;a un fen&oacute;meno de interferencia, gracias a la diferencia entre sus iterones, debido a que competir&iacute;an entre si por el replisoma de la planta. Es posible que desde un punto de vista evolutivo  estos eventos de interferencia conduzcan a las poblaciones de geminivirus con iterones diferentes a evolucionar hacia nichos distintos o simplemente limiten sus posibilidades de sinergismo solamente a un grupo particular de geminivirus que est&aacute;n compartiendo un &aacute;rea biogeogr&aacute;fica particular. Este podr&iacute;a ser el caso del aislado de Santander (66CeS-A) el cu&aacute;l por su disposici&oacute;n, secuencia y orientaci&oacute;n de sus iterones podr&iacute;a pseudorecombinar con PYMV-Trinidad as&iacute; como con TMoLCV-Zulia, todos los cu&aacute;les son geminivirus que est&aacute;n afectando el cultivo de tomate en un &aacute;rea geogr&aacute;fica com&uacute;n del nororiente del continente suramericano. Un caso particular se evidenci&oacute; en dos aislados geminivirales que se encontraron afectando el cultivo de tomate en Cundinamarca (27SiC-A y 29SiC-A) cuya secuencia consenso de iterones era ATTSGGTR; &eacute;stos podr&iacute;an formar pseudorecombinantes viables entre ellos mismos pero no con otros aislados de PYMV reportados a la fecha en el Caribe y en Colombia. Es decir, estos aislados a pesar de estar emparentados filogen&eacute;ticamante con PYMV no pueden transreplicarse con otros PYMV que no tengan iterones similares en secuencia con aquellos que &eacute;stos poseen. Asimismo esta diversidad en iterones encontrados al interior del las poblaciones de PYMV que est&aacute;n afectando el tomate en Colombia est&aacute;n en perfecta concordancia con la comprobaci&oacute;n de la presencia de infecciones mixtas de geminivirus en el cultivo de tomate en Colombia. Es decir, a trav&eacute;s del an&aacute;lisis bioinform&aacute;tico de iterones presentes en el promotor de la prote&iacute;na asociada a la replicaci&oacute;n de geminivirus que est&aacute;n afectando el tomate en Colombia, fue posible encontrar evidencia adicional que corrobora los resultados que indican la presencia de infecciones mixtas de &eacute;stos afectando este cultivo en diferentes zonas geogr&aacute;ficas del pa&iacute;s.</li>    </ol></p>      <p><b> Conclusiones </b></p>      <p> Los resultados obtenidos en este trabajo de investigaci&oacute;n permiten concluir que los geminivirus que est&aacute;n afectando actualmente el cultivo de tomate en Colombia pertenecen al g&eacute;nero de los <i>Begomovirus</i> y todos son bipartitas. No hay evidencia a la fecha de begomovirus monopartitas afectando esta hortaliza en Colombia. Se encontr&oacute; que variantes de los begomovirus identificados afectando el tomate en campo est&aacute;n relacionados filogen&eacute;ticamente con el <i>Virus del mosaico amarillo de la papa</i> (PYMV) y con el  <i>Tomato venezuela virus</i> (ToVEV). Existe una distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica de variantes de begomovirus identificados afectando el tomate en campo en Colombia: en el departamento de Santander predominan geminivirus relacionados filogen&eacute;ticamente con PYMV-Martinica y con ToVEV; en el departamento de Cundinamarca hay begomovirus emparentados con PYMV-Valle y con el ToVEV; y en el departamento de Valle del Cauca predominan &uacute;nicamente geminivirus relacionados con el PYMV-Valle.</p>      <p> Hay evidencia que indica que la enfermedad geminiviral en tomate en Colombia es causada por el accionar de dos o m&aacute;s geminivirus en infecciones mixtas  y que este hecho puede explicar la presencia de s&iacute;ntomas severos de enfermedad viral en algunos de las zonas tomateras muestreadas en el Pa&iacute;s. La  evidencia de la presencia de infecciones mixtas proviene de los resultados obtenidos por medio de RFLP, secuenciaci&oacute;n de fragmentos de PCR as&iacute; como an&aacute;lisis de Iterones presentes en el promotor del la prote&iacute;na asociada a la replicaci&oacute;n de geminivirus (Rep/ AL1). El an&aacute;lisis bioinform&aacute;tico de Iterones presentes en el promotor de la prote&iacute;na asociada a la replicaci&oacute;n de geminivirus (Rep) permite hipotetizar los siguiente: algunas de las variantes geminivirales de Valle del Cauca, Santander y Cundinamarca pueden sufrir eventos de pseudorecombinaci&oacute;n entre ellos as&iacute; como con los begomovirus PYMV-Guadalupe, PYMV-Valle, ToMoTV y MalYMV; mientras que dos  variantes geminivirales encontradas en Cundinamarca solo podr&iacute;an formar pseudorecombinantes viables entre ellos mismos pero no con otros aislados de PYMV reportados a la fecha en el Caribe y en Colombia. Estas interacciones pueden conducir a sinergismos o a interferencias seg&uacute;n la identidad a nivel de secuencia que se pueda verificar por sus iterones.</p>      <p> El que los geminivirus que se encontraron afectando el tomate en Colombia sean en su mayor&iacute;a variantes begomovirales de PYMV facilita implementar un programa de mejoramiento gen&eacute;tico por v&iacute;as tradicionales o biotecnol&oacute;gicas encaminado  a la b&uacute;squeda de materiales de tomate con resistencia derivada de este fitopat&oacute;geno. A este respecto, nuestro grupo de trabajo se encuentra actualmente evaluando un banco de germoplasma de tomate silvestre inoculando aislados geminivirales colombianos mediante biobal&iacute;stica para identificar materiales promisorios resistentes a estos virus end&eacute;micos de Colombia.</p>      <p><b>Agradecimientos</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> El presente proyecto de investigaci&oacute;n fue financiado con recursos del Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural de Colombia, contrato 134-2008N6396-3460, y se desarrollo en asocio con la empresa Defrescura S.A. y la Universidad Nacional de Colombia. Los autores expresan su mas sincero agradecimiento a la Compa&ntilde;&iacute;a Agroindustrial de Semillas S.A., por su invaluable ayuda para la organizaci&oacute;n y recolecci&oacute;n del material vegetal a lo largo ancho del territorio Colombiano. Betancurt-Perez J. agradece a Colciencias la beca recibida para realizar estudios de doctorado en Ciencias Agropecuarias.</p>      <p><b>Referencias bibliogr&aacute;ficas</b></p>      <!-- ref --><p>1 Arg&uuml;ello-Astorga, G. R., and R. Ruiz-Medrano. 2001. An iteron-related domain is associated to motif 1 in the replication proteins of geminiviruses: identification of potential interacting amino acid-base pairs by a comparative approach. <i>Arch. Virol.</i> 146:1465-1485.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0123-3475201200010000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2 Arg&uuml;ello-Astorga, G., Guevara-Gonzalez, R. G., Herrera-Estrella, L. R., and R. F. Rivera-Bustamante. 1994. <i>Geminivirus</i> replication origins have a group-specific organization of iterative elements: a model for replication. <i>Virol</i>. 203: 90-100.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0123-3475201200010000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3 Benson D. A., Karsch-Mizrachi I., Lipman D.J., Ostell J. and E. W. Sayers. 2011. <i>Genbank. Nucleic Acids Res</i>. 39: on line.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0123-3475201200010000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4 Brown, J. K., Idris, A. M., Torres-Jerez, I., Banks, G. K., and S. D. Wyatt. 2001. The core region of the coat protein gene is highly useful in establishing the provisional identification and classification of begomoviruses. <i>Arch. Virol</i>. 146: 1581-1598.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0123-3475201200010000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5 Brown, J. K., Idris, A. M., Ostrow, N., Goldberg, R. F. and D.C. Stenger. 2005. Genetic and phenotypic variation of Pepper golden mosaic virus complex. <i>Phytopathol</i>. 95: 1217-1224.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0123-3475201200010000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6 Coutts, R. H., Coffin, R. S., Roberts, E. J. and W. D. Hamilton. 1991. The nucleotide sequence of the infectious cloned DNA components of potato yellow mosaic virus. <i>J. Gen. Virol</i>. 72: 1515-1520.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0123-3475201200010000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7 Duffy, S., and E. C. Holmes. 2009. Validation of high rates of nucleotide substitution in geminiviruses: phylogenetic evidence from East African cassava mosaic viruses. <i>J. Gen. Virol</i>. 90:1539-1547.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0123-3475201200010000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8 FAOSTAT. 2007. Food and Agriculture Organization of the United Nations. <a href="http://faostat.fao.org/" target="_blank">http://faostat.fao.org/</a>.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0123-3475201200010000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9 Fauquet, C. M., Bisaro, D. M., Briddon, R. W., Brown, J. K., Harrison, B. D., Rybicki, E. P., Stenger, D. C., and J. Stanley. 2003. Revision of taxonomic criteria for species demarcation in the <i>Geminiviridae</i>, and an updated list of begomovirus species. <i>Arch. Virol</i>. 148:405-421.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0123-3475201200010000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10 Fauquet, C. M., Briddon, R. W., Brown, J. K., Moriones, E., Stanley, J., Zerbini, M. and X. Zhou. 2008. <i>Geminivirus</i> strain demarcation and nomenclature. <i>Arch Virol</i>. 153:783-821.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0123-3475201200010000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11 Ge, L., Zhang, J., Zhou, X., and Li, Hongye. 2007. Genetic Structure and Population Variability of Tomato Yellow Leaf Curl China Virus. <i>J. Gen. Virol</i>. 34: 5902-5907.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0123-3475201200010000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12 Guti&eacute;rrez, C. 2000. DNA replication and cell cycle in plants: learning from geminiviruses. <i>The EMBO J</i>. 19: 792-799.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0123-3475201200010000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13 Guzman, P., Arredondo, C. R., Emmatty, D., Portillo, R. J. and R. L. Gilberton. 1997. Partial characterization of two whitefly-transmitted geminiviruses infecting tomatoes in Venezuela. <i>Plant Dis</i>. 81: 312.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0123-3475201200010000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14 Hall, T.A. 1999. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT. <i>Nucl. Acids. Symp. Ser.</i> 41:95-98.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0123-3475201200010000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15 Hanley-Bowdoin, L., Settlage, S. B., Orozco, B. M., Nagar, S. and D. Robertson. 1999. <i>Geminivirus</i>es: Models for plant DNA replication, transcription, and cell cycle regulation. <i>Crit. Rev. Plant. Sci.</I> 18:71-106.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0123-3475201200010000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16 Harrison, B.D., Zhou, X., Otim-Nape, G.W., Liu, Y. and D. Robinson. 1997. Role of a novel type of double infection in the geminivirus induced epidemic of severe cassava mosaic in Uganda. <i>Ann. Appl.Biol</i>. 131: 437-448.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0123-3475201200010000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17 Mahy, B. W. and M. H. V. Van Regenmortel. 2010. Plant and fungal virology. Elsevier. p 109.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0123-3475201200010000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18 Mart&iacute;nez, A. K., Morales, F. J. y F. A. Vallejo. 2008. Caracterizaci&oacute;n molecular de un begomovirus del tomate en el Valle del Cauca, Colombia, y b&uacute;squeda de fuentes de resistencia para el mejoramiento de la variedad Unapal Maravilla. <i>Acta Agron</i>. 57: 167-173.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0123-3475201200010000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19 Mendez-Lozano, J., Torres-Pacheco, I, Fauquet, C.M., and R.F. Rivera-Bustamante. 2003. Interactions between geminiviruses in a naturally occurring mixture: Pepper huasteco virus and Pepper golden mosaic virus. <i>Phytopathol</i>. 93: 270-277.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0123-3475201200010000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20 Morales, F. J., and P. K. Anderson. 2001. The emergence and dissemination of whitefly-transmitted geminivirus in Latin America. <i>Arch.Virol</i>. 146:415-441.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0123-3475201200010000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21 Morales, F. J., Mart&iacute;nez, A.K. y A. C. Velasco. 2002. Nuevos brotes de geminivirus en Colombia. <i>Fitopatol. Colombiana</i>. 26:76-78.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0123-3475201200010000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22 Morales, F. y C. Casta&ntilde;o. 2008. Enfermedades virales del frijol com&uacute;n en America Latina. CIAT-publicaciones. Palmira (Valle-Col). 86p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0123-3475201200010000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23 Mubin, M., Tahir, M. N., Shahid, M. S., Briddon, R. W., and S. Mansoor. 2009. Characterization of begomovirus components from a weed suggests that begomoviruses may associate with distinct DNA satellites in different geographical locations. <i>Virus Genes</i> 40:452-457.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0123-3475201200010000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24 NCBI (<a href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov" target="_blank">http://www.ncbi.nlm.nih.gov</a>).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0123-3475201200010000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25 Nei, M. 1978. Estimation of average heterozygosity and genetic distance from a small number of individuals. <i>Genetics</i> 89: 583-590.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0123-3475201200010000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26 Padidam, M., Beachy, R. N., and C. M. Fauquet. 1995. Classification and identification of geminiviruses using sequence comparisons. <i>J. Gen. Virol.</i> 76: 249-263.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0123-3475201200010000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27 Padidam. M., Sawyer. S. and C. M. Fauquet. 1999. Possible emergence of new geminiviruses by frequent recombination. <i>Virol</i>. 265:218-224.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0123-3475201200010000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28 Pita, J. S., Fondong, V. N., Sangare, A., Otim-Nape, G. W., Orwal, S., and C.M. Fauquet. 2001. Recombination, pseudorecombination, and synergism are determinant keys to the epidemic of severe cassava mosaic diseases in Uganda. <i>J. Gen. Virol</i>. 82: 655-665.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0123-3475201200010000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29 Polston, J. E., and P. K. Anderson. 1997. The emergence of whitefly-transmited geminivirus in tomato in the western hemisphere. <i>Plant Dis</i>. 81:1358-1369.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0123-3475201200010000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30 Ribeiro, S. G., Ambrozevicius, L. P., Avila, A. C., Bezerra, I. C., Calegario, R. F., Fernandez, J. J., Lima, M. F., Mello, R. N., Rocha, H. and F. M. Zerbini. 2003. Distribution and genetic diversity of tomato-infecting begomoviruses in Brazil. <i>Arch.Virol</i>. 148: 281-295.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0123-3475201200010000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31 Rojas M. R., Gilbertson R. L., Ruseel D. R. and D.P. Maxwell. 1993. Use of generate oligonucle&oacute;tidos in the polymerase chain reaction to detect whitefly-transmitted geminivirus. <i>Plant dis</i>. 77:340-347.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0123-3475201200010000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32 Rojas, M. R.; Hagen, C.; Lucas, W.J. and R. L. Gilbertson. 2005. Exploiting chinks in the plants armor: Evolution and emergence of <i>Geminivirus</i>. <i>Annu. Rev. Phytopathol</i>. 43: 361-394.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0123-3475201200010000700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>33 Romay, G., Geraud-Pouey, F., Chirinos, D., Morales, F., Herrera, E., Fernandez, C. and A. Martinez. 2010. Transmission of <i>Tomato Venezuela Virus</i> by <i>Bemisia tabaci</i> (<i>Gennadius</i>) (Hemiptera: <i>Aleyrodidae</i>), in Maracaibo, Venezuela. <i>Neotrop Entomol</i>. 39:266-274.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0123-3475201200010000700033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>34 Sambrook, J and D. Russell. 2001. Molecular Cloning. A laboratory Manual. 3rd. New York: Cold Spring Harbor Laboratory. 2344 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0123-3475201200010000700034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>35 Sanz, A. I., Fraile, A., Garcia-Arenal, F., Zhou, X., Robinson, D.J., Khalid, S., Butt, T. and B.D. Harrison. 2000. Multiple infection, recombination, and genome relationship among begomovirus isolates found in cotton and others plants in Pakistan. <i>J. Gen.Virol</i>. 81: 1839-1849.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0123-3475201200010000700035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>36 Seal, S. E., Van den Bosch, F. and M. Jeger. J. 2006. Factors influencing begomovirus evolution and their Increasing global significance: implications for sustainable control. <i>Crit. Rev. Plant. Sci</i>. 25: 1-23.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0123-3475201200010000700036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>37 Tamayo P. J. y J. E. Jaramillo. 2006. Enfermedades del tomate, piment&oacute;n, aj&iacute; y berenjena en Colombia. Gu&iacute;a para su diagn&oacute;stico y Manejo. Corpoica. pp. 69-79.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0123-3475201200010000700037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>38 Tamura, K., Peterson, D., Peterson, N., Stecher, G., Nei, M., and S. Kumar. 2011. MEGA5: Molecular Evolutionary Genetics Analysis using Maximum Likelihood, Evolutionary Distance, and Maximum Parsimony Methods. <i>Mol. Biol. Evol</i>. 28: 2731-2739.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S0123-3475201200010000700038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>39 Thompson, J. D., Gibson, T. J., Plewniak, F., Jeanmougin, F. and D. G. Higgins. 1997. The CUSTALX windows interface: Flexible strategies for multiple sequence alignment aided by quality analysis tools. <i>Nucleic Acid Res</i>. 25:4876-4882.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0123-3475201200010000700039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>40 Ueda, S., Onuki, M., Hanada, K. and Y. Takanami. 2008. Unique grouping of the Far East Asian begomovirus complex based on sequence analyses of the DNA-A genome and associated DNAb satellite molecules isolated from tomato, honeysuckle and Eupatorium plants in Japan. <i>Arch Virol</i> 153:417-426.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000154&pid=S0123-3475201200010000700040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>41 Urbino, C., Polston, J. E., Patte, C. P., and M. L. Caruana. 2004. Characterization and genetic diversity of Potato yellow mosaic virus from the Caribbean. <i>Arch Virol</i>. 149: 417-424.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0123-3475201200010000700041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>42 Uribe-Echeverri, P. T; Lopez-Lopez, K and J. C. Vaca-Vaca. 2011. Identificaci&oacute;n molecular de virus RNA que est&aacute;n afectando el cultivo de tomate en el departamento del Valle del Cauca- Colombia. XXX Congreso Colombiano y XVI Latinoamericano de Fitopatolog&iacute;a. Bogota D.C. Colombia. 17, 18 y 19 de Agosto del 2011.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000156&pid=S0123-3475201200010000700042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>43 Vaca-Vaca, J. V., Betancurt-P&eacute;rez, J. F., y L&oacute;pez-L&oacute;pez. K. 2011. Detecci&oacute;n, identificaci&oacute;n y localizaci&oacute;n geogr&aacute;fica de <i>Begomovirus</i> que afectan al tomate en Colombia. <i>Rev. Colomb. Biotecnol</i>. 8: 115-122.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0123-3475201200010000700043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>44 Willment, J. A., Martin, D. P., and E. P. Rybicki. 2001. Analysis of the diversity of African streak mastreviruses using PCR-generated RFLPs and partial sequence data. <i>Journal of Virol. Methods</i> 93: 75-87.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000158&pid=S0123-3475201200010000700044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>44 Wyatt, S.D. and J.K. Brown. 1997. Detection of geminiviruses in aqueous extracts by polymerase. <i>Phytopathol</i>. 86: 1288-1293.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0123-3475201200010000700045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>45 Zhang, Z., Schwartz, S., Wagner, L., and W. Miller. 2000. A greedy algorithm for aligning DNA sequences.  <i>J Comput Biol</i>. 7:203-14.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000160&pid=S0123-3475201200010000700046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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