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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación del pretratamiento con ácido sulfúrico diluido del pasto maralfalfa (Pennisetum glaucum x Pennisetum purpureum) para la producción de etanol.]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Dilute sulfuric acid pretreatment of goliath grass (Pennisetum glaucum x Pennisetum purpureum) for ethanol cellulosic]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The goliath grass (Pennisetum glaucum x Pennisetum purpureum) was pretreated with different sulfuric acid concentrations (0.8, 1.2 y 2.0% (w/w)) from low to high temperatures (110, 130, 150, 170 y 190 °C) followed by enzymatic hydrolysis and SSF of remaining solids. The maximum yield was 117 mg of ethanol/g biomass to 190 °C and 1.2 % (w/w) of sulfuric acid.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font face="verdana" size="2">      <p align="right"><font face="verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULO DE INVESTIGACI&Oacute;N</b></font></p>      <p><font size="4"><b> Evaluaci&oacute;n del pretratamiento con &aacute;cido sulf&uacute;rico diluido del pasto maralfalfa (<i>Pennisetum glaucum x Pennisetum purpureum</i>) para la producci&oacute;n de etanol.</b></font></p>      <p><font size="3"> Dilute sulfuric acid pretreatment of goliath grass (<i>Pennisetum glaucum x Pennisetum purpureum</i>) for ethanol cellulosic.</font></p>      <p><i>Lady Mateus<sup>1</sup>, Orlando Hern&aacute;ndez<sup>2</sup>, Mario Vel&aacute;squez<sup>3</sup>, Jos&eacute; de Jes&uacute;s D&iacute;az<sup>4</sup>.</i></p>      <p><sup>1</sup> Departamento de Ingenier&iacute;a Qu&iacute;mica y Ambiental, Universidad Nacional de Colombia Sede Bogot&aacute;. <a href="mailto:lmateusf@gmail.com">lmateusf@gmail.com</a>      <br>  <sup>2</sup> Departamento de Qu&iacute;mica, Universidad Nacional de Colombia Sede Bogot&aacute;. <a href="mailto:ohernandezf@unal.edu.co">ohernandezf@unal.edu.co</a>      <br>  <sup>3</sup> Departamento de Ingenier&iacute;a Qu&iacute;mica y Ambiental, Universidad Nacional de Colombia Sede Bogot&aacute;. <a href="mailto:mevelasquezl@gmail.com">mevelasquezl@gmail.com</a>    <br>  <sup>4</sup> Departamento de Qu&iacute;mica, Universidad Nacional de Colombia Sede Bogot&aacute;. <a href="mailto:jddiazv@unal.edu.co">jddiazv@unal.edu.co</a>    <br></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Recibido</b>: mayo 5 de 2011    <b>Aprobado</b>: junio 29 de 2012</p>  <hr>     <p><b>Resumen</b></p>      <p> Evaluar la producci&oacute;n de etanol a partir de cultivos lignocelul&oacute;sicos, espec&iacute;ficamente pastos de r&aacute;pido crecimiento en la regi&oacute;n, constituye una alternativa a la demanda de biocombustibles. En la presente investigaci&oacute;n se seleccion&oacute; el pasto Maralfalfa (<i>Pennisetum  glaucum x Pennisetum  purpureum</i>) utilizando el pretratamiento con &aacute;cido sulf&uacute;rico diluido a diferentes temperaturas (110, 130, 150, 170 y 190 &deg;C) y concentraciones de &aacute;cido (0.8, 1.2 y 2.0% (p/p)), seguido de un proceso de hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica utilizando celulasas y celobiosas comerciales y un proceso de hidr&oacute;lisis y fermentaci&oacute;n simultanea. La m&aacute;xima producci&oacute;n de etanol obtenido fue 117 mg etanol/ g biomasa pretratada a 190 &deg;C y 1,2 %(p/p) de &aacute;cido sulf&uacute;rico. El l&iacute;quido hidrolizado fue caracterizado calculando el porcentaje de glucosa, xilosa y lignina solubilizadas y degradadas durante el pretratamiento.</p>      <p><b>Palabras clave</b>: etanol lignocelul&oacute;sico, celulosa, hemicelulosa.</p>      <p><b>Abstract</b></p>      <p> The goliath grass (<i>Pennisetum  glaucum x Pennisetum  purpureum</i>) was pretreated with different sulfuric acid concentrations (0.8, 1.2 y 2.0% (w/w)) from low to high temperatures (110, 130, 150, 170 y 190 &deg;C) followed by enzymatic hydrolysis and SSF of remaining solids. The maximum yield was 117 mg of ethanol/g biomass to 190 &deg;C and 1.2 % (w/w) of sulfuric acid.</p>      <p><b>Key words</b>: lignocellulosic ethanol, hemicellulose, cellulose.</p>   <hr>      <p><b>Introducci&oacute;n</b></p>      <p> La producci&oacute;n de etanol a partir de biomasa lignocelul&oacute;sica ha sido ampliamente investigada, utilizando diversas fuentes de biomasa, tales como desechos agr&iacute;colas, cultivos sin aplicaciones alimenticias, papel reciclado y residuos s&oacute;lidos urbanos, entre otros. La habilidad de convertir los carbohidratos de los materiales lignocelul&oacute;sicos con una relaci&oacute;n costo - beneficio comercialmente factible, es el reto tecnol&oacute;gico de la actualidad. (Lau y Dale, 2009).</p>      <p> Las biomasas lignocelul&oacute;sicas est&aacute;n constituidas por extra&iacute;bles como ceras y l&iacute;pidos; carbohidratos, como el almid&oacute;n, la celulosa y hemicelulosa; lignina y minerales (Dien, 2009). La producci&oacute;n de etanol se realiza en cuatro etapas: primero, un pretratamiento que altere la estructura y composici&oacute;n de la biomasa, seguido de la hidr&oacute;lisis, que fracciona los carbohidratos en monosac&aacute;ridos, y la posterior fermentaci&oacute;n de estos carbohidratos en etanol y concentraci&oacute;n del mismo por destilaci&oacute;n (Mosier <i>et al</i>., 2005).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El objetivo del pretratamiento es alterar la estructura de la biomasa lignocelul&oacute;sica para mejorar la accesibilidad de la celulosa a las enzimas que convierten los carbohidratos estructurales en monosac&aacute;ridos fermentables. El &eacute;xito del pretratamiento se mide en funci&oacute;n de la degradaci&oacute;n total &oacute; parcial de la lignina y la hemicelulosa como un indicador de la disociaci&oacute;n de la matriz celulosa-lignina, la disminuci&oacute;n de la cristalinidad y el aumento de la porosidad de la celulosa. El pretratamiento es considerado como una etapa con un impacto significativo en la factibilidad comercial del proceso, lo que justifica la necesidad de explorar y balancear las ventajas con los costos del procedimiento (Sun y Cheng, 2002; Mosier <i>et al</i>.., 2005; Dien, 2007). </p>      <p> Los pretratamientos se pueden clasificar en biol&oacute;gicos, qu&iacute;micos y f&iacute;sicos. Los biol&oacute;gicos ofrecen ventajas importantes como el bajo consumo energ&eacute;tico debido a la utilizaci&oacute;n de hongos que degradan la lignina y la hemicelulosa, pero son procesos que requieren m&aacute;s tiempo que los pretratamientos qu&iacute;micos y f&iacute;sicos. Entre tanto, los pretratamientos f&iacute;sicos, est&aacute;n basados en la reducci&oacute;n del tama&ntilde;o de la biomasa, logrando bajos rendimientos a costos elevados. Los pretratamientos con adici&oacute;n de solventes qu&iacute;micos son los m&aacute;s efectivos; sin embargo, no todos los pretratamientos qu&iacute;micos presentan un balance adecuado entre las ventajas ofrecidas y el costo de operaci&oacute;n (Yang y Wyman, 2008).</p>      <p> El pretratamiento  con &aacute;cido sulf&uacute;rico diluido ha sido ampliamente estudiado y el National Renewable Energy Laboratory (NREL) de los Estados Unidos, es la entidad que ha desarrollado los mayores avances tecnol&oacute;gicos, encontrando ventajas como la recuperaci&oacute;n del 80 al 90 % de los monosacaridos provenientes de la hemicelulosa. Aunque peque&ntilde;os porcentajes de lignina se disuelven durante el proceso, algunos estudios se&ntilde;alan el aumento significativo del porcentaje de celulosa hidrolizada. Entre las desventajas asociadas a este pretratamiento est&aacute;n la acci&oacute;n corrosiva del &aacute;cido sobre los equipos empleados en el procedimiento y la degradaci&oacute;n de los carbohidratos hidrolizados a compuestos derivados del furano, como el furfural proveniente de la hidr&oacute;lisis de las pentosas y el 5-hidroximetilfurfural (5-HMF) por hidr&oacute;lisis de las hexosas, como se muestra en la <a href="#f1">figura 1</a>, donde se esquematiza la formaci&oacute;n de compuestos que inhiben la fermentaci&oacute;n provenientes de la degradaci&oacute;n de los componentes principales de las biomasa lignocelul&oacute;sicas (Palmqvist y Hagerdal, 2000; Yang y Wyman, 2008).</p>      <p align="center"><a name="f1"></a><img src="img/revistas/biote/v14n1/v14n1a13f1.jpg"></p>      <p> Las investigaciones de la aplicaci&oacute;n del pretratamiento con &aacute;cido sulf&uacute;rico diluido se han realizado sobre diferentes biomasas herb&aacute;ceas como el pasto <i>Switchgrass</i> (Esteghlalian <i>et al</i>., 1997; Dien <i>et al</i>., 2006; Yat <i>et al</i>., 2008; Yang y Wyman, 2008; Morinelly <i>et al</i>., 2009),   el pasto Silvergrass (Guo <i>et al</i>., 2008) y residuos agr&iacute;colas de ma&iacute;z (Schell <i>et al</i>., 2003;  Weiss <i>et al</i>., 2010) entre otros, utilizando condiciones de reacci&oacute;n muy similares, con temperaturas mayores a 120 &deg;C y soluciones de &aacute;cido sulf&uacute;rico entre el 0.5 y el 3.0 % (p/p). </p>      <p> El pasto maralfalfa (<i>Pennisetum glaucum x Pennisetum purpureum</i>) es un pasto tropical con alta productividad en numerosos pa&iacute;ses de Latinoam&eacute;rica (Colombia, Brasil, Venezuela, entre otros) debido a su potencial como forraje para rumiantes (Clavero, 2009). Este pasto se caracteriza por presentarse como tallos cil&iacute;ndricos de 3,5 m de altura con una producci&oacute;n de 60 a 80 ton materia seca/ha&middot;a&ntilde;o. Entre sus fortalezas se encuentra el alto rendimiento de materia seca, la tolerancia a las sequ&iacute;as y a suelos &aacute;cidos (M&aacute;rmol, 2006).</p>      <p> El objetivo de este trabajo fue estudiar el pretratamiento con &aacute;cido sulf&uacute;rico diluido del pasto maralfalfa (<i>Pennisetum glaucum x Pennisetum purpureum</i>) considerando diversas temperaturas y concentraciones de &aacute;cido. Cuantificando luego el contenido de celulosa y hemicelulosa en el material pretratado, y el porcentaje de glucosa y xilosa obtenidos en la hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica de los mismos.</p>      <p><b> Materiales y m&eacute;todos</b></p>      <p><b><i> Preparaci&oacute;n de la biomasa </i></b></p>      <p>El pasto maralfalfa (<i>Pennisetum glaucum x Pennisetum purpureum</i>) fue cortado transversalmente en trozos de 5 cm y posteriormente molido en un molino de cuchillas hasta un tama&ntilde;o de 1 mm. Se almacen&oacute; en bolsas pl&aacute;sticas herm&eacute;ticamente cerradas.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><i> Caracterizaci&oacute;n de la biomasa </i></b></p>      <P>La biomasa fue caracterizada seg&uacute;n la metodolog&iacute;a publicada por el National Renewable Energy Laboratoy (NREL), determinando el contenido de s&oacute;lidos totales, cenizas, extractos, lignina soluble en &aacute;cido sulf&uacute;rico, lignina Klason y carbohidratos estructurales ( Sluiter <i>et al</i>., 2008a), ( Sluiter <i>et al</i>., 2008b) ( Sluiter <i>et al</i>., 2008c). Este procedimiento se realiz&oacute; por duplicado.</p>      <p><b><i> Pretratamiento con &aacute;cido sulf&uacute;rico </i></b></p>      <p> El pretratamiento se realiz&oacute; en el Laboratorio de Investigaci&oacute;n en Combustibles y Energ&iacute;a (LICE) adscrito al Departamento de Qu&iacute;mica de la Universidad Nacional de Colombia, en un reactor Parr con capacidad de 1 L, presi&oacute;n m&aacute;xima de 2000 psi, calentado con resistencia el&eacute;ctrica, controlando la temperatura de operaci&oacute;n con un controlador marca Temp Variac que tiene una temperatura de operaci&oacute;n m&aacute;xima de 350&deg;C. El reactor fue cargado con 15 g de biomasa protegidos dentro de una canasta de acero inoxidable fabricada en malla N&ordm; 60, la cual se coloc&oacute; dentro del reactor con 90 a 100 ml de la soluci&oacute;n de &aacute;cido sulf&uacute;rico a la concentraci&oacute;n requerida (0.8, 1.2 y 2.0 % (p/p)), manteniendo constante la proporci&oacute;n de s&oacute;lidos en el reactor en 15 % (p/p) y el tiempo de reacci&oacute;n en 60 min para todos los ensayos. Los s&oacute;lidos pretratados fueron lavados con agua desionizada y secados a 50 &deg;C durante 12 h.</p>      <p><b><i> An&aacute;lisis de productos de reacci&oacute;n </i></b></p>      <p> Los s&oacute;lidos pretratados son caracterizados con la metodolog&iacute;a NREL. Mientras que la fracci&oacute;n l&iacute;quida obtenida del pretratamiento, fue analizada con cromatograf&iacute;a liquida de alta eficiencia-HPLC, cuantificando el contenido de carbohidratos con una columna Biorad Aminex&reg; HPX-87H (7,8 x 300 mm), empleando como fase m&oacute;vil una soluci&oacute;n de &aacute;cido sulf&uacute;rico 5 mM a flujo de 0,6 mL/min y una temperatura de 60 &deg;C en el horno. Tambi&eacute;n se realiz&oacute; el an&aacute;lisis de los carbohidratos degradados y la lignina hidrolizada durante el pretratamiento, utilizando una columna Chromolite&reg; RP C-18 (4,6 x 100 mm), con una soluci&oacute;n de agua, metanol y &aacute;cido ac&eacute;tico al 1% (89 - 7 - 4 % (v/v)) como fase m&oacute;vil, 30 &deg;C de temperatura en el horno y un detector de arreglo de diodos. Los analitos de inter&eacute;s fueron furfural, 5-HMF, &aacute;cido hidroxibenzoico, 4-hidroxibenzaldehido, &aacute;cido vainill&iacute;nico, vanillina, &aacute;cido sir&iacute;ngico, &aacute;cido p-cum&aacute;rico, siringaldehido y &aacute;cido fer&uacute;lico. Cada procedimiento anal&iacute;tico se realiz&oacute; por duplicado.</p>      <p><b><i>Hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica </i></b></p>      <p> Los s&oacute;lidos pretratados con &aacute;cido sulf&uacute;rico diluido fueron hidrolizados utilizando una combinaci&oacute;n de enzimas comerciales de celulasa de <i>Trichoderma resei </i>con una actividad de 30 UPF/g celulosa y &szlig;-glucosidasa de <i>Aspergillus niger </i>con una actividad de 400 UI/g celulosa. La hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica se realiz&oacute; en el Centro Nacional de Investigaci&oacute;n en Utilizaciones Agr&iacute;colas del Departamento de Agricultura de Estados Unidos en Peoria, IL. La biomasa pretratada fue diluida en 30 mL de agua desionizada y una soluci&oacute;n amortiguadora de citrato 1 M para mantener el pH en 4.8. Adicionalmente, se agregaron 0.3 mL de timol (con una concentraci&oacute;n de 50 g/l en 70% (v/v) de etanol) como agente bactericida y la mezcla de enzimas. El procedimiento se realiz&oacute;  a 50 &deg;C y 100 rpm durante 72 h. La hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica de cada pasto pretratado se realizo por duplicado.</p>      <p><b><i> Hidr&oacute;lisis y fermentaci&oacute;n simult&aacute;nea </i></b></p>      <p> El pasto maralfalfa (<i>Pennisetum glaucum x Pennisetum purpureum</i>) pretratado con &aacute;cido sulf&uacute;rico con mayor porcentaje de glucosa y xilosa hidrolizados, fue sometido a un procedimiento de hidr&oacute;lisis y fermentaci&oacute;n simult&aacute;nea para evaluar la producci&oacute;n de etanol. Este procedimiento se realiz&oacute; en un proceso batch, conservando las mismas condiciones de la hidrolisis enzim&aacute;tica adicionando la levadura <i>Saccharomyces cerevisiae </i>D5A en YPD a 35 &deg;C y 100 rpm, durante 72 h. La hidr&oacute;lisis y fermentaci&oacute;n simult&aacute;nea se realiz&oacute; por duplicado.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b> Resultados y discusi&oacute;n</b></p>      <p><b><i> Composici&oacute;n del pasto</i></b></p>      <p> La caracterizaci&oacute;n del pasto maralfalfa (<i>Pennisetum  glaucum x Pennisetum  purpureum</i>) (<a href="#t1">Tabla 1</a>) revela que los componentes principales son la celulosa y la hemicelulosa, sumando el 56.33 % de la biomasa seca, mientras que la lignina representa el 16.18 %. El contenido de celulosa y lignina est&aacute;n en el rango de valores reportados para los pastos, correspondiente del 25 al 40 % de celulosa y del 10 al 15 % de lignina; mientras que el contenido de hemicelulosa es m&aacute;s bajo que el 35 al 50 % reportado (Sun y Cheng, 2002).  La hemicelulosa est&aacute; compuesta principalmente por xilosa (87,41 %), galactosa (2,98 %) y arabinosa (9,60 %). El m&aacute;ximo potencial de recuperaci&oacute;n de glucosa y xilosa es 0,375 g y 0,232 g, respectivamente, por g de pasto maralfalfa seco, es decir, un total de 0,607 g de carbohidratos por g de biomasa seca.</p>      <p align="center"><a name="t1"></a><img src="img/revistas/biote/v14n1/v14n1a13t1.jpg"></p>      <p> El bajo contenido de lignina de la biomasa y la baja solubilidad de est&aacute; en &aacute;cido, permite inferir que en el pretratamiento con &aacute;cido sulf&uacute;rico no se presentar&aacute; una alta producci&oacute;n de inhibidores fen&oacute;licos en la fracci&oacute;n l&iacute;quida hidrolizada.</p>      <p> Todos los monosac&aacute;ridos son susceptibles de convertirse en etanol, dependiendo de los microorganismos utilizados en la fermentaci&oacute;n. De acuerdo con el software del NREL (<a href="http://www1.eere.energy.gov/biomass/ethanol_yield_calculator.html" target="_blank">http://www1.eere.energy.gov/biomass/ethanol_yield_calculator.html</a>), que usa la fracci&oacute;n en peso seco de az&uacute;cares polim&eacute;ricos para calcular el rendimiento te&oacute;rico de etanol, se obtiene un rendimiento de 66,2 y 44,0 gal/ton a partir de las hexosas y pentosas, respectivamente, para un total de 110,2 gal/ton de biomasa seca. El rendimiento te&oacute;rico de etanol a partir de pasto maralfalfa es ligeramente menor al calculado para el ma&iacute;z (124,4 gal/ton) y bagazo de ca&ntilde;a (111,5 gal/ton), lo cual es especialmente importante considerando el rendimiento y la flexibilidad de las condiciones de cultivo de la especie.</p>      <p><b><i> Pretratamiento con &aacute;cido sulf&uacute;rico</i>  </b></p>      <p> La caracterizaci&oacute;n de los pastos pretratados con &aacute;cido sulf&uacute;rico mostrado en la <a href="#t2">tabla 2</a>, demuestra que el pretratamiento aplicado hidroliza principalmente la hemicelulosa, disminuyendo su composici&oacute;n desde 22.54 % en la biomasa sin pretratar hasta su totalidad, en la reacci&oacute;n llevada a cabo a 190&deg;C y 2.0 % (p/p), logrando con estas condiciones de operaci&oacute;n el m&aacute;ximo porcentaje de celulosa en el material pretratado, correspondiente a 56.53 % (p/p).</p>      <p align="center"><a name="t2"></a><img src="img/revistas/biote/v14n1/v14n1a13t2.jpg"></p>      <p> El aumento de la fracci&oacute;n porcentual de celulosa en el material pretratado, se explica debido a la degradaci&oacute;n de la hemicelulosa, porque al disminuir el porcentaje de esta, el producto s&oacute;lido se enriqueci&oacute; en los componentes menos hidrolizados durante el pretratamiento, celulosa y lignina, lo cual favorece un proceso selectivo de hidr&oacute;lisis con celulasas, dirigida a la producci&oacute;n de glucosa, para su posterior fermentaci&oacute;n con <i>Saccharomyces cerevisiae</i>.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> La disminuci&oacute;n del contenido de hemicelulosa en los s&oacute;lidos pretratados, es uno de los indicadores m&aacute;s importantes de la efectividad del pretratamiento, debido a que refleja la desaparici&oacute;n de enlaces entre la lignina y la celulosa, sugiriendo el aumento de la porosidad del material lignocelul&oacute;sico y la digestibilidad enzim&aacute;tica en la hidr&oacute;lisis (McMillan, 1994).</p>      <p> En el producto l&iacute;quido se encuentra la hemicelulosa solubilizada durante el pretratamiento, correspondiente te&oacute;ricamente a la suma de la xilosa, oligosacaridos de xilosa y furfural  (<a href="#e1">ecuaci&oacute;n 1</a>), mientras que la celulosa hidrolizada corresponde a la suma de la glucosa, oligosacaridos de glucosa y 5-HMF (<a href="#e2">ecuaci&oacute;n 2</a>) (Dien, 2007). En esta investigaci&oacute;n no se cuantificaron los oligosacaridos de xilosa y glucosa, por lo tanto el an&aacute;lisis se realiza para los monosacaridos y productos de degradaci&oacute;n. Los resultados se presentan en la <a href="#f2">figura 2</a> .</p>      <p align="center"><a name="e1"></a><img src="img/revistas/biote/v14n1/v14n1a13e1.jpg"></p>      <p align="center"><a name="e2"></a><img src="img/revistas/biote/v14n1/v14n1a13e2.jpg"></p>      <p align="center"><a name="f2"></a><img src="img/revistas/biote/v14n1/v14n1a13f2.jpg"></p>      <p> En lo concerniente al contenido de carbohidratos, glucosa, xilosa y arabinosa, en el producto l&iacute;quido de la reacci&oacute;n, estos alcanzan su m&aacute;xima concentraci&oacute;n a los 150&deg;C para las reacciones realizadas a 0.8 y 1.2 % y 130&deg;C para la realizada al 2.0 %. La degradaci&oacute;n de los carbohidratos se potencializa con el aumento de la temperatura y concentraci&oacute;n de &aacute;cido, hallando el m&aacute;ximo contenido de furfural y 5-HMF a 190&deg;C y 2.0 % (p/p). El porcentaje de degradaci&oacute;n de la xilosa y glucosa es de 2.18 y 1.00 %, respectivamente.</p>      <p> Igualmente, se observa que la lignina aumenta su porcentaje de hidr&oacute;lisis con respecto a la temperatura y concentraci&oacute;n de &aacute;cido en el pretratamiento, obteniendo el 0.30 %, correspondiente a 36.30 % de la lignina soluble de la biomasa sin pretratar.</p>      <p> La sumatoria del porcentaje de xilosa, arabinosa y carbohidratos degradados a furfural, no corresponde al total de la hemicelulosa hidrolizada calculada con la <a href="#e1">ecuaci&oacute;n 1</a>, lo que se puede explicar a la luz de dos posibles situaciones, la primera es la presencia de altas concentraciones de oligosac&aacute;ridos de xilosa - arabinosa y la segunda es la degradaci&oacute;n del furfural a &aacute;cido f&oacute;rmico.</p>      <p> Acudiendo al estudio de la cin&eacute;tica de hidr&oacute;lisis de la hemicelulosa del <i>Switchgrass</i> (Canettieri <i>et al</i>., 2007; Morinelly <i>et al</i>., 2009), se sabe que a concentraciones bajas de &aacute;cido sulf&uacute;rico (0.25 - 0.75 % (p/p)) y temperatura de 150&deg;C, se produce del 33 al 60 % de oligosac&aacute;ridos de xilosa y que la degradaci&oacute;n de xilosa a furfural no supera el 15 %, con respecto al contenido inicial. Por lo anterior, es posible que la primera situaci&oacute;n, alta concentraci&oacute;n de oligosacaridos en el producto l&iacute;quido de la reacci&oacute;n, sea la m&aacute;s probable. Esta hip&oacute;tesis es respaldada con el hecho de observar contaminaci&oacute;n con hongos en el producto l&iacute;quido de las reacciones de estudio preliminar, que se realizaron a las mismas condiciones de temperatura y concentraci&oacute;n de &aacute;cido y mayores tiempos de reacci&oacute;n.</p>      <p> La suma del porcentaje de glucosa y glucosa degradada a 5-HMF no supera el 2.04 %, pero al igual que en la hidr&oacute;lisis de la hemicelulosa, se sospecha la presencia de oligosac&aacute;ridos de glucosa en el producto l&iacute;quido de la reacci&oacute;n.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> La m&aacute;xima producci&oacute;n de carbohidratos glucosa y xilosa en el hidrolizado no se puede lograr simult&aacute;neamente, porque la m&aacute;xima producci&oacute;n de glucosa se presenta a temperaturas mayores que la de xilosa. Para este estudio la m&aacute;xima producci&oacute;n de glucosa se presenta en las reacciones realizadas a 150&deg;C, mientras que la m&aacute;xima producci&oacute;n de xilosa se presenta en los pretratamientos realizados a 130&deg;C. Este resultado es similar en la investigaci&oacute;n reportada por Dien <i>et al</i>. (2005), Dien <i>et al</i>. (2006) y Marzialetti <i>et al</i>. (2008).</p>      <p> El estudio del modelo cin&eacute;tico de la hidr&oacute;lisis de la xilosa durante el pretratamiento con &aacute;cido sulf&uacute;rico diluido en biomasas herb&aacute;ceas (Esteghlalian <i>et al</i>., 1997), indica que el pretratamiento realizado a 180&deg;C y 0.9 % (p/p) de &aacute;cido sulf&uacute;rico, logra el 90 % de hidr&oacute;lisis de la xilosa presente en el material vegetal sin pretratar. Este resultado se diferencia principalmente del obtenido en el presente estudio, en la concentraci&oacute;n de &aacute;cido sulf&uacute;rico empleada en el pretratamiento, lo cual puede estar relacionado con la capacidad de neutralizaci&oacute;n caracter&iacute;stica de la biomasa (Torget <i>et al</i>., 1990; Dien <i>et al</i>., 2005)</p>      <p> Considerando que los porcentajes de 5-HMF y furfural presentados en la <a href="#f2">figura 2 b</a> ) y d<a href="#f"> </a> ), son inferiores a los reportados en algunas publicaciones (Guo <i>et al</i>., 2008; Marzialetti <i>et al</i>., 2008) que estudian el pretratamiento con &aacute;cido sulf&uacute;rico diluido sobre biomasas herb&aacute;ceas y, adicionalmente se obtiene un bajo porcentaje de compuestos fen&oacute;licos presentes en el producto l&iacute;quido del pretratamiento, es posible generar la hip&oacute;tesis de la utilizaci&oacute;n del hidrolizado o producto l&iacute;quido del pretratamiento, en la producci&oacute;n de carbohidratos celul&oacute;sicos y no celul&oacute;sicos a trav&eacute;s de hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica (Chang y Holtzapple, 2000; Dom&iacute;nguez, 2003).</p>      <p><sup>1</sup>La lignina es la sumatoria de acido hidroxibenzico, 4-hidroxibenzaldehido, &aacute;cido vainill&iacute;nico, vanillina, &aacute;cido sir&iacute;ngico, &aacute;cido p-cum&aacute;rico, siringaldehido y &aacute;cido fer&uacute;lico</p>      <p><sup>2</sup> Porcentajes con respecto al contenido de glucosa, xilosa y lignina presentes en la biomasa sin pretratar.</p>      <p><b><i> Hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica</i>  </b></p>      <p> Comparando los porcentajes de glucosa y xilosa hidrolizados del pasto pretratado mostrados en la <a href="#f3">figura 3 </a>, se observa la importancia de la temperatura a la cual se realiz&oacute; el pretratamiento, indicando que es una variable altamente influyente en el porcentaje de glucosa hidrolizada. Para cualquier concentraci&oacute;n de &aacute;cido sulf&uacute;rico, el porcentaje m&aacute;s bajo de hidr&oacute;lisis se obtiene a la menor temperatura de pretratamiento, para este estudio 110&deg;C.</p>      <p align="center"><a name="f3"></a><img src="img/revistas/biote/v14n1/v14n1a13f3.jpg"></p>      <p> La hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica del pasto sin pretratar produjo el 12.90 % de glucosa y el 18.94 % de la xilosa presente en el pasto, equivalente a 0.044 g de glucosa y 0.043 g de xilosa por g de pasto maralfalfa.  Mientras que los pastos pretratados con &aacute;cido sulf&uacute;rico, previamente a la hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica, reportaron rendimientos de hidr&oacute;lisis de glucosa y xilosa mayores. Los  rendimientos m&aacute;s bajos corresponde al pasto pretratado a la menor temperatura y concentraci&oacute;n de &aacute;cido (110&deg;C y 0.8 % (p/p)), logrando el 16.07 y 32.83 % de glucosa y xilosa hidrolizada, respectivamente.</p>      <p> El pasto pretratado a 190&deg;C y 1.2 % (p/p)  fue el de mayor rendimiento, dando lugar a la hidr&oacute;lisis del 62.34% de glucosa y 61.09 % de xilosa presentes en el material pretratado,  equivalente a 0.128 g de glucosa y 0.006 g de xilosa por g de pasto maralfafa.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Los resultados obtenidos demuestran la importancia del pretratamiento para aumentar la hidr&oacute;lisis de glucosa a partir del pasto maralfalfa, logrando incrementar la hidrolisis de glucosa 2.9 veces, con respecto al pasto sin pretratar.</p>      <p> El m&aacute;ximo porcentaje de glucosa hidrolizada del pasto maralfalfa, es inferior al resultado reportado por Dien <i>et al</i>. (2006), quienes investigaron el efecto del pretratamiento con &aacute;cido sulf&uacute;rico diluido y la hidr&oacute;lisis utilizando la misma combinaci&oacute;n de enzimas, sobre otras especies de pastos, tales como el <i>Switchgrass</i> y el <i>Reed canarygrass</i>, obteniendo 83.8 % y 75.4 % de recuperaci&oacute;n de glucosa, respectivamente.</p>      <p> Seg&uacute;n lo reportado en la literatura, el contenido de lignina insoluble en &aacute;cido, puede ser utilizado en la predicci&oacute;n del porcentaje de carbohidratos estructurales en el material pretratado, con un coeficiente de correlaci&oacute;n superior al 80%. Tambi&eacute;n, que el procesamiento de pastos menos maduros es m&aacute;s eficiente en la hidr&oacute;lisis de glucosa (Torget <i>et al</i>., 1990; Dien <i>et al</i>., 2006)</p>      <p><b><i> Hidr&oacute;lisis y fermentaci&oacute;n simult&aacute;nea</i>   </b></p>       <p> La concentraci&oacute;n de celulosa por acci&oacute;n del pretratamiento con &aacute;cido sulf&uacute;rico en pasto pretratado favorece la producci&oacute;n de etanol, logrando el 60.7 % del rendimiento te&oacute;rico esperado, lo que indica una producci&oacute;n de 0.117 g de etanol por g de pasto pretratado.</p>      <p> El efecto de pretratamiento con &aacute;cido sulf&uacute;rico sobre el pasto maralfalfa se evidenci&oacute; en la diferencia entre la producci&oacute;n de etanol en un proceso de hidr&oacute;lisis y fermentaci&oacute;n del pasto sin pretratar y pretratado. En el proceso de hidr&oacute;lisis y fermentaci&oacute;n del pasto sin pretratar se obtuvo un rendimiento de 0.002 g de etanol por g de pasto, lo cual es 58.5 veces menos que con el pasto pretratado a 190&ordm;C y 1.2 % (p/p) de &aacute;cido sulf&uacute;rico.</p>      <p><b> Conclusiones </b></p>      <p> El pasto maralfalfa (<i>Pennisetum  glaucum x Pennisetum  purpureum</i>) contiene 0.375 g de glucosa y 0.232 g de xilosa, por g de materia seca, es decir, un total de 0.607 g de carbohidratos por g de biomasa seca. Las mejores condiciones de operaci&oacute;n para realizar el pretratamiento son 190&deg;C y 1.2 % (p/p) de &aacute;cido sulf&uacute;rico, con las cuales se obtiene s&oacute;lidos con 39.68 % de celulosa y 1.85 % de hemicelulosa, el cual al ser hidrolizado con <i>Trichoderma resei </i>y <i>Aspergillus niger </i>produce 0.128 g de glucosa y 0.006 g de xilosa por g de pasto maralfalfa. El proceso de hidr&oacute;lisis y fermentaci&oacute;n simult&aacute;nea del pasto pretratado a estas condiciones produce 0.117 g de etanol por g de pasto pretratado.</p>      <p> Los pretratamientos realizados a temperaturas intermedias, entre 130 y 150&ordm;C, producen el mayor porcentaje de monosac&aacute;ridos hidrolizados en la fracci&oacute;n l&iacute;quida obtenida, predominando la xilosa - arabinosa. En tanto que en los pretratamientos realizados a altas temperaturas se presenta la formaci&oacute;n de componentes inhibitorios de la fermentaci&oacute;n, logrando la degradaci&oacute;n del 2.89 % de la xilosa - arabinosa a furfural y la degradaci&oacute;n del 1.00 % de la glucosa a 5 - HMF. El porcentaje de lignina degradada corresponde al 0.30 %.  </p>         <p><b> Referencias bibliogr&aacute;ficas  </b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>1 Canettieri E., Rocha G., Carvalho J., Silva J. 2007. Evaluation of the kinetics of xylose formation from dilute sulfuric acid hydrolysis of forest residues of <i>Eucalyptus grandisr</i>. <i>Industrial &amp; Enginnering Chemistry Research</i>. 46(7): 1938-1944.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0123-3475201200010001300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2 Chang V.; Holtzapple M. 2000. Fundamental factors affecting biomass enzymatic reactivity. <i>Applied Biochemistry and Biotechnology</i>. 84-86: 5 - 37.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0123-3475201200010001300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3 Clavero T., Razz R. 2009. Valor nutritivo del pasto maralfalfa (<i>Pennisetum Purpureum x Pennisetum Glaucum </i>) en condiciones de defoliaci&oacute;n. <i>Revista de la Facultad de Agronom&iacute;a de la Universidad del Zulia</i>. 26: 78-87.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0123-3475201200010001300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4 Dien B. 2010. Mass balances and analytical methods for biomass pretreatment experiments. En: Biomass to biofuels: strategies for global industries. Blackwell Publishing Ltd., Oxford, UK. Chapter 11. doi: 10.1002/9780470750025.ch11&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0123-3475201200010001300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5 Dien B., Bothast, R. 2009. A primer for lignocellulose biochemical conversion to fuel ethanol. En: Industrially robust enzymes and microorganisms for production of sugars and ethanol from agricultural biomass. National Center for Agricultural Utilization Research. pp.73-93.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0123-3475201200010001300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6 Dien B., Jung H., Vogel K., Casler M., Lamb J., Iten L., Mitchell R., Sarath G. 2006. Chemical composition and response to dilute-acid pretreatment and enzymatic saccharification of alfalfa, reed canarygrass, and switchgrass. <i>Biomass and Bioenergy</i>. 30(10): 880-891.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0123-3475201200010001300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7 Dien B, Jung H., Vogel K., Casler M., Lamb J., Iten L., Mitchell R., Sarath G. 2005. Converting herbaceous energy crops to bioethanol; a review with emphasis on pretreatment processes. En: Handbook of Industrial Biocatalysis. Cap&iacute;tulo 23. Boca Raton, FL: Taylor &amp; Francis Group. pp. 1-11.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0123-3475201200010001300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8 Dom&iacute;nguez J. M. 2003. Efecto de los productos de degradaci&oacute;n originados en la explosi&oacute;n por vapor de biomasa de chopo sobre <i>Kluyveromyces marxianus</i>. Madrid, Universidad Complutense de Madrid. Tesis doctoral.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0123-3475201200010001300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9 Esteghlalian A., Hashimoto A., Fenske J., Penner M. 1997. Modeling and optimization of the dilute sulfuric acid pretreatment of corn stover, poplar and switchgrass. <i>Bioresource Technology</i>. 59 (2-3): 129-136.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0123-3475201200010001300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10 Guo G., Chen W., Chen W., Men L., Hwang W. 2008. Characterization of dilute acid pretreatment of silvergrass pretreatment of silvergrass. <i>Bioresource Technology</i>. 99 (14): 6046-6053.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0123-3475201200010001300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11 <a href="http://www1.eere.energy.gov/biomass/ethanol_yield_calculator.html" target="_blank">http://www1.eere.energy.gov/biomass/ethanol_yield_calculator.html</a>.Consultado noviembre 20, 2010.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0123-3475201200010001300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12 Lau M., Dale B. 2009. Cellulosic ethanol production from AFEX-treated corn stover using <i>Saccharomyces cerevisiae </i>424A(LNH-ST). PNAS. 106(5): 1368-1373.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0123-3475201200010001300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13 McMillan J.D. 1994. Pretreatment of Lignocellulosic Biomass. En: Enzymatic Conversion of Biomass for Fuels Production. Chapter 15. pp. 292-324.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0123-3475201200010001300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14 M&aacute;rmol J. 2006. Manejo de pastos y forrajes en la ganader&iacute;a de doble prop&oacute;sito. En: Memorias del X Seminario Manejo y Utilizaci&oacute;n de Pastos y Forrajes en Sistemas de Producci&oacute;n Animal. FUNDAPASTO y Facultad de Ciencias Veterinarias de la Universidad de Zulia Maracaibo (Venezuela). &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0123-3475201200010001300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15 Marzialetti T., Valenzuela M., Sievers C., Hoskins T., Agrawal P., Jones C. 2008. Dilute Acid Hydrolysis of Loblolly Pine: A Comprehensive Approach. <i>Industrial &amp; Enginnering Chemistry Research</i>. 47(19): 7131-7140.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0123-3475201200010001300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16 Morinelly J., Jesen J., Browne M., Co T., Shonnard  D. 2009. Kinetic Characterization of Xylose Monomer and Oligomer Concentrations during Dilute Acid Pretreatment of Lignocellulosic Biomass from Forests and Switchgrass. <i>Industrial &amp; Enginnering Chemistry Research</i>. 48: 9877-9884.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0123-3475201200010001300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17 Mosier N., Wyman C., Dale B., Elander R., Lee Y., Holtzapple M., Ladisch M. 2005. Features of promising technologies for pretreatment of lignocellulosic biomass. <i>Bioresource Technology</i>. 96: 673-686.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0123-3475201200010001300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18 Palmqvist E., Hagerdal B. 2000. Fermentation of lignocellulosic hydrolysates. II: inhibitors and mechanisms of inhibition. <i>Bioresource Technology</i>. 74(1): 25-33.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0123-3475201200010001300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19 Schell D., Farmer J., Newman M., McMillan J. 2003. Dilute-Sulfuric Acid Pretreatment of Corn Stover in Pilot-Scale Reactor. <i>Applied Biochemistry and Biotechnology</i>. 105(1): 69-85.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0123-3475201200010001300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20 Sluiter A.D., Hames B.R., Ruiz R.O., Scarlata C.J., Sluiter J.B., Templeton D.W. 2008a. Determination of Ash in Biomass: Laboratory Analytical Procedure (LAP).NREL/TP-510-42622. Golden, CO: National Renewable Energy Laboratory.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0123-3475201200010001300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21 Sluiter A.D., Hames B.R., Ruiz R.O., Scarlata C., Sluiter J.B., Templeton, D.W., Crocker, D. 2008b. Determination of Structural Carbohydrates and Lignin in Biomass: Laboratory Analytical Procedure (LAP). NREL/TP-510-42618. Golden, CO: National Renewable Energy Laboratory.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0123-3475201200010001300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22 Sluiter A.D., Ruiz R.O., Scarlata C.J., Sluiter, J.B., Templeton D.W. 2008c. Determination of Extractives in Biomass: Laboratory Analytical Procedure (LAP).NREL/TP-510-42619. Golden, CO: National Renewable Energy Laboratory.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0123-3475201200010001300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23 Sun Y., Cheng J. 2002. Hydrolysis of lignocellulosic materials for ethanol production: a review. <i>Bioresource Technology</i>. 83(1): 1-11.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0123-3475201200010001300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24 Sun Y., Cheng J. 2002. Hydrolysis of lignocellulosic materials for ethanol production: a review. <i>Bioresource Technology</i>. 83(1): 1-11.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0123-3475201200010001300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25 Yang Y. 2008. Ethanol Production Potential of Acid Pretreated Switchgrass Varieties. Biological and Agricultural Engineering. Raleigh, NC, North Carolina State University. Master of Science.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0123-3475201200010001300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26 Yang B., Wyman C. 2008. Pretreatment: the key to unlocking low-cost cellulosic ethanol. <i>Biofuels, Bioproducts &amp; Biorefining.</i> 2: 26-40.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0123-3475201200010001300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27 Yat S., Berger A., Shonnard D. 2008. Kinetic characterization for dilute sulfuric acid hydrolysis of timber varieties and switchgrass. <i>Bioresource Technology</i>. 99: 3855-3863.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0123-3475201200010001300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28 Weiss N., Farmer J., Schell D. 2010. Impact of corn stover composition on hemicellulose conversion during dilute acid pretreatment and enzymatic cellulose digestibility of the pretreated solids. <i>Bioresource Technology</i>.101: 674-678.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0123-3475201200010001300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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